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0086PreparacióndeADNparaelanálisisde
secuenciaciónenIlluminaMiSeq
HOLOTYPEHLA™96/7CONFIGURACIÓNAYCEYCONFIGURACIÓNBYCE(REF:H32YREF:H34)INSTRUCCIONESDEUSO
VERSIÓN1002/05/2018
OmixonBiocomputingLimited
OmixonHolotype96/7CONFIGURACIÓN|ConfiguraciónAyCE,yConfiguraciónByCE|Instruccionesdeusov10.ParausodediagnósticoinvitroCopyright©2017,OmixonBiocomputingLtd.Confidencialypropietario
Página2│50
ContenidoINFORMACIÓNDELFABRICANTE..........................................................................................................................8
SIGNIFICADODELOSSÍMBOLOS...........................................................................................................................8
CONTENIDODELKITHOLOTYPEHLA-96/7CONFIGURACIÓNAYCE(REF:H32)OCONFIGURACIÓNBYCE(REF:H34).............................................................................................................................................................9
CAJADECOMPONENTESDELCEBADOR..............................................................................................................................9CAJADECOMPONENTESDEREACTIVOSDEPREPARACIÓNDELABIBLIOTECA..............................................................................9PLACADEADAPTADORESDE96POCILLOS........................................................................................................................10LIBRODEEXCEL..........................................................................................................................................................10SOFTWARE–OMIXONHLATWIN.................................................................................................................................10
ENVÍOSYALMACENAMIENTO............................................................................................................................10
ADVERTENCIASYPRECAUCIONES.......................................................................................................................11
LIMITACIONESCONOCIDASDELPRODUCTO......................................................................................................................11
INFORMACIÓNDESEGURIDAD...........................................................................................................................11
PARÁMETROSDERENDIMIENTO........................................................................................................................12
ASISTENCIATÉCNICA..........................................................................................................................................12
Soportetelefónico:...........................................................................................................................................12
EQUIPOS,REACTIVOSYSUMINISTROS...............................................................................................................13
RECOMENDACIONESTÉCNICASYDELEQUIPO....................................................................................................................13RECOMENDACIONESDELREACTIVOASOCIADO..................................................................................................................13
CapacidaddelkitreactivodeMiSeq................................................................................................................14SUMINISTROSRECOMENDADOS.....................................................................................................................................14
AVISOLEGAL......................................................................................................................................................15
USOPREVISTO....................................................................................................................................................15
NOTAIMPORTANTEANTESDECOMENZAR........................................................................................................16
AISLAMIENTODEADNGENÓMICORECOMENDADO...........................................................................................................16
PRINCIPIODELMÉTODO.....................................................................................................................................17
RESUMENDEPASOS...........................................................................................................................................18
GLOSARIO/DEFINICIONES...................................................................................................................................19
PASO1–PREPARACIÓNDELAMEZCLAMAESTRADEAMPLIFICACIÓNDEHLA...................................................20
LISTADEREACTIVOS....................................................................................................................................................20PROTOCOLO..............................................................................................................................................................20
Mezclamaestra:HLA-A,B,C,DRB1,DPB1yDQA1..........................................................................................21Mezclamaestra:Grupo3deHLA-DQB1..........................................................................................................21
PASO2:AMPLIFICACIÓNHLADECLASEIYII......................................................................................................22
LISTADEREACTIVOS....................................................................................................................................................22PROTOCOLO..............................................................................................................................................................22
Mezclamaestracargadadepolimerasataq:HLA-A,B,C,DRB1,DPB1yDQA1..............................................22Mezclamaestracargadadepolimerasataq:Grupo3deHLA-DQB1..............................................................23AmplificacióndeclaseI(HLA-A,ByC).............................................................................................................23
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AmplificacióndeclaseII(HLA-DRB1,DPB1,DQA1yDQB1).............................................................................23Tamañosesperadosdelosamplicones............................................................................................................24
PASO3:CUANTIFICACIÓNYNORMALIZACIÓNDEAMPLICONES(MEDIANTEELUSODEFLUORÍMETRODEPLACAS).............................................................................................................................................................25
LISTADEREACTIVOS....................................................................................................................................................25PROTOCOLO..............................................................................................................................................................26
Agrupacióndeamplicones...............................................................................................................................27ExoSAP-ITPurificacióndeRCPExpresa............................................................................................................27
PASO4:PREPARACIÓNDELABIBLIOTECA..........................................................................................................28
LISTADEREACTIVOS....................................................................................................................................................28PROTOCOLO..............................................................................................................................................................28
Mezclamaestradefragmentación..................................................................................................................29Programadefragmentación............................................................................................................................29Mezclamaestradereparacióndeextremos....................................................................................................30Programadereparacióndeextremos..............................................................................................................30Mezclamaestradeligación.............................................................................................................................31Programadeligación.......................................................................................................................................31Agrupamientoypurificacióndebiblioteca......................................................................................................32
PASO5:SELECCIÓNDELTAMAÑODELABIBLIOTECA.........................................................................................34
LISTADEREACTIVOS....................................................................................................................................................34PROTOCOLO..............................................................................................................................................................34
PASO6:CUANTIFICACIÓNDEBIBLIOTECACONUNINSTRUMENTODERCPC......................................................35
LISTADEREACTIVOS....................................................................................................................................................35PROTOCOLO..............................................................................................................................................................35
MezcladelcebadorRCPc.................................................................................................................................35MezclamaestradeRCPc..................................................................................................................................36
PASO7:SECUENCIAMIENTOENELILLUMINAMISEQ..........................................................................................38
LISTADEREACTIVOS....................................................................................................................................................38CapacidaddelkitreactivodeMiSeq................................................................................................................38
PROTOCOLO..............................................................................................................................................................38
PASO8–ANÁLISISDEDATOSDELSECUENCIAMIENTOHLA................................................................................40
PROTOCOLOAUTOMATIZADO........................................................................................................................................40EstablecimientoyconfiguracióndeTI..............................................................................................................40Protocoloporanálisis.......................................................................................................................................40
PROTOCOLOMANUALDELSERVIDOR..............................................................................................................................40EstablecimientoyconfiguracióndeTI..............................................................................................................40Protocoloporanálisis.......................................................................................................................................40
PROTOCOLOMANUALDEESCRITORIO.............................................................................................................................41EstablecimientoyconfiguracióndeTI..............................................................................................................41Protocoloporanálisis.......................................................................................................................................41
FIGURASCOMPLEMENTARIAS............................................................................................................................42
EJEMPLODEPLACAPARAPLACADEAMPLICONES,PLACADEAMPLIFICACIÓN,PLACADEDILUCIÓN,PLACADECUANTIFICACIÓNDEAMPLICONES(PARAUNLOCUSINDIVIDUAL)YPLACADEREACCIÓN.......................................................................................42EJEMPLODEPLACAPARAPLACADECUANTIFICACIÓNDEESTÁNDARES...................................................................................42EJEMPLODEPLACADERCPCPARACUANTIFICACIÓNDEBIBLIOTECAKAPA............................................................................43
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APÉNDICE1:PIPPINPREP...................................................................................................................................44
PROGRAMACIÓNDELPIPPINPREP.................................................................................................................................44EJECUCIÓNDELPIPPINPREP.........................................................................................................................................44
APÉNDICE2:CUANTIFICACIÓNDEAMPLICONESCONUNINSTRUMENTODERCPC.............................................47
LISTADEREACTIVOS....................................................................................................................................................47PROTOCOLO..............................................................................................................................................................47
APÉNDICE3:CUANTIFICACIÓNDEBIBLIOTECACONUNTINTEFLUORESCENTEINTERCALADODEADNBC...........49
LISTADEREACTIVOS....................................................................................................................................................49PROTOCOLO..............................................................................................................................................................49
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Antecedentesdeldocumento:notasyactualizacionesimportantes
Versión Fecha Autor Resumendecambios Autorizadopor
Fechadeemisión
V1 05/12/2015 Robert
PollockPrimeraversión,borrador Gergely
Tölgyesi05/12/2015
V2 18/01/2016 RobertPollock
Segundoborrador,correccionesmenores GergelyTölgyesi
18/01/2016
V3 10/02/2016 RobertPollock
Tercerborrador,seactualizólaexplicacióndelossímbolos,seactualizólarecomendacióndelciclodecongelamiento/descongelamiento,seactualizóelusoprevisto
GergelyTölgyesi
10/02/2016
V4 26/02/2016 RobertPollock
Cuartoborrador,actualizacióndelaseccióndeinformacióndeseguridad
GergelyTölgyesi
26/02/2016
V5 05/04/2016 RobertPollock
Quintaversión,recomendaciónalternativadelacuantificacióndeamplicones
EfiMelista 05/04/2016
V6 09/04/2016 EfiMelista
Cambiomenordepalabrasde“enzimaLR-RCP”a“Polimerasataq”,enfuncióndelcambiodedocumentacióndeQiagen.
GergelyTölgyesi
09/04/2016
V7 23/04/2016 EfiMelista
Actualizacióndedeclaracionesdelgrupo1ygrupo2deDQB1
GergelyTölgyesi
23/04/2016
V8 30/05/2016 GergelyTölgyesi
Actualizacióndelamétricaderendimiento.Actualizacióndevolúmenesdereactivosenlapreparacióndelabibliotecaactualizada.ActualizacióndelaconfiguracionesdelproductoparalasplacasdeadaptadoresindexadasdeA2/A3/A4
EfiMelista 30/05/2016
V9 21/08/2017 GergelyTölgyesi
96/7ConfiguraciónB,configuracióndeplacadeadaptadoresindexadaagregada
EfiMelista 21/08/2017
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V10 14/12/2017 TündeVágó
Laeliminaciónde“DQB”delospotenciadoresdeDQB,laverificacióndelgeldespuésdeLR-RCPsevolvióopcional,simplificacióndelacuantificacióndeamplicones,segúnelcambiodevolumendelaagrupacióndelamuestraenkitsde11locus,reemplazodeExoSAP-ITporExoSAP-ITExpress,usodeQubitparalacuantificacióndelabiblioteca,grupo1ygrupo2delamezcladelcebadorDQB1reemplazadaporelgrupo3deDQB1,reduccióndeltiempodereaccióndereparaciónfinal,actualizacióndelmétododecuantificacióndebibliotecasobrelareduccióndeltiempodereaccióndeligadura,seeliminólahojademuestradelosApéndices.
EfiMelista 02/05/2018
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Exenciónderesponsabilidad
OmixonhahechotodoloposibleporgarantizarquelasInstruccionesdeUso(IFU,porsussiglaseninglés)seanprecisas.Omixonnoseresponsabilizaporerroresniomisionesquepudieranhaberocurrido. La información de estas IFU está sujeta a cambios sin previo aviso. Omixon no seresponsabilidadporningunaimprecisiónquepudierancontenerestasIFU.
OmixonsereservaelderechoamejorarestasIFUy/olosproductosquesedescribenenestasIFUencualquiermomentosinaviso.
Si encuentra información incorrecta, errónea o incompleta en estemanual, valoraremos suscomentariosysugerencias.Envíelosasupport@omixon.com.
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InformacióndelfabricanteNombredelacompañía:OmixonBiocomputingLtd
Direccióndevisita:Fehérváriút50-52/6
Ciudad:Budapest
Códigopostal:H-1117
País:Hungría
Significadodelossímbolos
Númerodepartida/lote
Númerodereferencia/catálogo
Consultelasinstruccionesdeuso
ContienereactivoparanúmerodepruebaN
Fabricantelegal.Losdatosquecontienenestesímbolohacenreferenciaalafechadefabricación
Temperaturadealmacenamientorecomendada
Fechadevencimiento
Dispositivomédicoparadiagnósticoinvitro
ContienecomponentedereemplazoComponentedereemplazo
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ContenidodelkitHolotypeHLA-96/7ConfiguraciónAyCE(REF:H32)oConfiguraciónByCE(REF:H34)
CajadecomponentesdelcebadorLacajadecomponentesdelcebadorproporcionasolucionesespecíficasdelcebador listaparausarparaamplificacióndeRCPdelargoalcance(LongRangePCR)degenesHLAA,B,C,DPB1,DQA1,DQB1yDRB1.Además,contienedostiposdeaditivosRCP(Potenciador1yPotenciador2).
Mezcladelcebador N.ºdereferencia Rxns Volumen/
tuboCantidadde
tubosCódigode
colorHLA-A P012 96 220µL 1 AmarilloHLA-B P022 96 220µL 1 RojoHLA-C P032 96 220µL 1 AnaranjadoHLA-DRB1 P042 96 220µL 1 VerdeHLA-DQB1(grupo3) P122 96 220µL 1 AzulHLA-DQA1 P072 96 220µL 1 MarrónHLA-DPB1 P082 96 220µL 1 PúrpuraPotenciador1 E01 96 1100µL 1 TransparentePotenciador2 E02 96 300µL 1 Transparente
CajadecomponentesdereactivosdepreparacióndelabibliotecaLacajadecomponentesdepreparacióndelabibliotecacontienelosreactivosparalapreparaciónde la biblioteca (fragmentación, producir los extremos romos y adenilar los extremos de losampliconesyligarlassecuenciasdeadaptadoresindexados)apartirdelosampliconesdeHLA.
Reactivo N.ºdereferencia Rxns Volumen/
tuboCantidadde
tubosCódigode
colorEnzimadefragmentación(A) R11 96 278µL 1 AmarilloSoluciónamortiguadoradefragmentación(B)
R21 96 278µL 1 Rojo
Enzimareparadoradeextremos(C)
R31 96 162µL 1 Verde
Soluciónamortiguadorareparadoradeextremos(D)
R41 96 324µL 1 Anaranjado
Enzimadeligación(E) R51 96 324µL 1 AzulSoluciónamortiguadoradeligación(F)
R61 96 1800µL 2 Negro
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Placadeadaptadoresde96pocillosEl componente de placa de adaptadores indexada de 96 pocillos contiene adaptadores NGSindexados listos para usar (oligonucleótidos de ADN bicatenario) en 5 µL de solución para lageneracióndebibliotecasindividualesdeNGS.Laplacadeadaptadoresindexadade96pocilloscontiene un tipo suficiente de adaptadores indexados para generar 96 bibliotecas NGSindividualesyparaidentificarmuestrasenlosprocesosposteriores.
Versióndelkit Reactivo N.ºdereferencia Rxns Vol/pocillo N.ºde
placasH32 PlacadeadaptadoresA(i1-96) N1 96 5µL 1H34 PlacadeadaptadoresB(i97-192) N2 96 5µL 1
LibrodeExcelSe proporciona un libro de Excel para respaldar el protocolo de Holotype HLA 96/7 con loscálculos,losdiseñosdeplacas,elmantenimientoderegistros,lageneracióndehojasdemuestradeMiSeqymuchomás.Sinotieneunacopia,póngaseencontactoconsupport@omixon.com.
Software–OmixonHLATwinPóngaseconcontactoconsales@omixon.comparaobtener loscréditosdeOmixonHLATwinnecesariosparalacompradelkitHolotypeHLA96/7.
Avisoimportante:UselostrescomponentesdelkitOmixonHolotypeHLA96/7yelsoftwareOmixonHLATwinenelmismoflujodetrabajoparaconstituirunflujodetrabajoparaelusodediagnósticoinvitro.Paraconocerlaslimitaciones,consultelaSecciónAdvertenciasyprecaucionesdeusodelproducto.
Los componentes de reemplazo están disponible a pedido especial del usuario. Recuerde queOmixonproporcionaelreemplazodecajasdecomponentes,node losviales individuales.Paraobtenermásinformación,consultesales@omixon.com.
EnvíosyalmacenamientoEnviadoenpaquetesdehielosecoencajasdeenvíodepoliestirenoextruido;debealmacenarsea-20°Calmomentodelallegada.Valideelcontroldetemperaturayelprocesodemonitoreodesuscongeladoresymanténgalosaunatemperaturaregular.
Loskitssinabrirsonestableshastalafechadevencimientodelkit(queseindicaenlaetiquetadelkit)cuandoselosalmacenaa-20°C.
Después de abrir el producto, se recomienda someter al producto a cuatro (4) ciclos decongelamiento/descongelamientoparagarantizar laestabilidaddelproducto. Loskitsabiertosseránestableshasta3mesescuandoselosalmacenaa-20°C.
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AdvertenciasyprecaucionesLimitacionesdeusodelproductoParaasegurarelmejorrendimientoposible,utiliceelflujodetrabajodelkitHolotypeHLA96/7yelsoftwareOmixonHLATwinparalatipificacióndeHLAmedianteNGSconlosmateriales,losreactivosylosequiposrecomendadosenlasección“Equiposyreactivos”.
ElusuariodebeverificaryvalidarelusodelosmaterialesdiferentesaaquellosidentificadosenlaSección“Equiposyreactivos”.
NoreconstituyanidiluyalosreactivosenvolúmenesdiferentesaaquellosquesedescribenenestasIFU.Noutiliceunvolumeninferioraldelosreactivos,diferentealespecificadoenestasIFU.Estasactividadespuedenconduciraerroresderendimiento.
OmixonnopuedebrindarsoporteencasodeproblemasderivadosporlafaltadeseguimientodelospasosdelprotocoloquesedescribenenestasIFU.
Noutiliceelproductosidetectadañosenloscomponentes(vialesrotos,placa,taponesfaltantes,etc.).
LimitacionesconocidasdelproductoConsulte el documento “Guía de limitaciones conocidas del producto” para determinar lasambigüedades conocidas y las limitaciones conocidas del software respecto del productoHolotypeHLA.EstaguíaseentregaconlasIFU,perotambiénlapodráencontrarenelsitiowebde Omixon en Instrucciones de uso deMyHolotype/Support and Services/HLA Twin o podrásolicitarlaasupport@omixon.com.
InformacióndeseguridadLea lassecciones“Informacióndeseguridad”y“Notas importantes”de losreactivoso loskitsespecificadosenlaSección“Equipos,reactivosysuministros”antesdecomenzar.
Cuandotrabajaconsustanciasquímicas,usesiempreunambodelaboratorioadecuado,guantesdescartablesygafasprotectoras.Paraobtenermásinformación,consultelashojasdedatosdeseguridad(SDS)apropiadasdisponiblesenelproveedordeproductosespecificado.
Para acceder a las generalidadesde los componentesquímicosde los reactivosdel producto,consultelasSDSdelkitHolotypeHLA96/7,disponibleapedido.
Desecheloscomponentesdelproductocomodesechomédicogeneral.
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ParámetrosderendimientoParámetrosprincipalesderendimientoestablecidossegúnlavalidacióndelproducto.
HLA-A HLA-B HLA-DRB1 HLA-C HLA-DPB1 HLA-DQA1 HLA-DQB1
Sensibilidad 99,054% 99,171% 98,335% 96,310% 98,818% 98,927% 95,724%
Especificidad 99,966% 99,982% 99,956% 99,863% 99,946% 99,881% 99,775%
Precisión 99,054% 99,171% 98,335% 96,310% 98,818% 98,927% 95,724%
Exactitud 99,935% 99,965% 99,915% 99,736% 99,897% 99,785% 99,572%
Reproducibilidad 100,00% 100,00% 99,28% 100,00% 99,28% 100,00% 99,28%
Repetitividad 100,00% 100,00% 100,00% 100,00% 100,00% 100,00% 100,00%
AsistenciatécnicaPararecibirasistenciageneralconesteprotocolo,póngaseencontactoconsupport@omixon.com
Soportetelefónico:EstadosUnidos|+1(617)500-0790Europa|+36705748001Restodelmundo|+1(617)500-0790
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Equipos,reactivosysuministros
Recomendacionestécnicasydelequipo§ Cicladortérmicoconformatode96pocillos.§ Fluorímetro de placas (o cualquier instrumento capaz de detectar fluorescencia en un
formato de placa de 96 pocillos, para uso con el sistemadeADNbicatenario [ADNbc*]PromegaQuantiFluor).
§ PippinPrep(Catn.ºPIP0001)oBluePippin(Catn.ºBLU0001)deSAGEScience.§ InstrumentodeRCPcconformatodeplacade96o384pocillos.§ FluorímetroQubit(Catn.ºQ33216,ThermoFisherScientific)(opcional).§ IlluminaMiSeq(Catn.ºSY-410-1003)§ Computadorade64bitscon4núcleosy16GBdememoriaRAMcomomínimo.§ Almacenamientodedatosalargoplazo(aproximadamente2TBdedatosporMiSeqporaño).
Recomendacionesdelreactivoasociado§ KitsdeRCPdelargoalcancedeQiagen(Catn.º206401,206402o206403).
§ Cadamuestrarequiere3,2µLdePolimerasataq.§ ElkitdeRCPdelargoalcanceCatn.º206401(20)contiene8µLdePolimerasataq.§ ElkitdeRCPdelargoalcanceCatn.º206402(100)contiene40µLdePolimerasataq.§ ElkitdeRCPdelargoalcanceCatn.º206403(250)contiene100µLdePolimerasataq.
§ ExoSAP-ITdeAffymetrix(Catn.º75001-200,75001-1ML,75001-4X-1MLo75001-10ML).§ Cadamuestraagrupadanecesita4µLdeenzimaExoSAP-IT.§ LaCatn.º75001-200contiene200µLdeenzimaExoSAP-ITExpress.§ LaCatn.º75001-1-MLcontiene1mLdeenzimaExoSAP-ITExpress.§ LaCatn.º75001-4X-1MLcontiene4mLdeenzimaExoSAP-ITExpress.§ LaCatn.º75001-10MLcontiene10mLdeenzimaExoSAP-ITExpress.
§ Kitdecuantificacióndebiblioteca:Illumina/UniversaldeKAPABiosystems(Cat.n.ºKK4824).§ KitdeensayoQubitdsDNABR(Catn.ºQ32850oQ32853)(opcional).
§ LaCatn.ºQ32850contiene100ensayos.§ LaCatn.ºQ32853contiene500ensayos.
§ SistemadeADNbcQuantiFluordePromega(Catn.ºE2670).§ CuentasAgencourtAMPureXPdeBeckmanCoulter(Catn.ºA63880,A63881oA63882).
§ CadaciclodeHolotypeHLAnecesitacomomáximo900µLdecuentasAMPureXP.§ LaCatn.ºA63880contiene5mLdecuentasAMPureXP.§ LaCatn.ºA63881contiene60mLdecuentasAMPureXP.§ LaCatn.ºA63882contiene450mLdecuentasAMPureXP.
§ Casetedegel,1.5%agarosa,libredetinciónconestándarinterno(MarcadorK/R2),paraPippinPrep/BluePippin(Cat.n.ºCDF1510paraPippinPrepyBDF1510paraBluePippin).
§ Etanoldegradomolecular(alcoholanhidro).§ Aguadegradomolecular(librededesoxirribonucleasayribonucleasa).§ Hidróxidodesodio.
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§ 1×soluciónamortiguadoraTE(pH8,0).§ KitreactivodeMiSeqdeIllumina.
CapacidaddelkitreactivodeMiSeq
KitreactivodeMiSeqdeIllumina
TiempoHoras
Muestras96/7
Cicloestándar500(MS-102-2003)
~39 96
Cicloestándar300(MS-102-2002)
~24 96
Ciclomicro300(MS-103-1002)
~19 28
Ciclonano500(MS-103-1003)
~28 12
Ciclonano300(MS-103-1001)
~17 6
Suministrosrecomendados§ Tubosdemicrocentrífugade1,5mL.§ Tubosdemicrocentrífugadebajaretenciónde1,5mL.§ Tubosdemicrocentrífugadebajaretenciónde2,0mL(serecomiendanlostubosEppendorf
DNALoBindCatn.º022431048).§ Tubosdepareddelgadade0,5mLpara instrumentoQbit (serecomiendan los tubosde
ensayoQubitCatn.ºQ32856).§ Pipetasdevolumenajustable(capacidadde1,0a1000µL).§ Pipetasdevolumenajustablede8canales(capacidadde1,0a100µL).§ Placasde96pocilloscompatiblesconelcicladortérmico.§ Placasóptimasde96pocilloscompatiblesconelfluorímetrodeplacas.§ Placasde96pocilloscompatiblesconelinstrumentodeRCPc.§ Sellosdeplacaparausogeneral.§ Sellosdeplacacompatiblesconloscicladorestérmicos(probadosparaRCPdelargoalcance).§ SellosdeplacasópticascompatiblesconelinstrumentoRCPc(opcionales).§ Piemagnéticocompatibleconlostubosdemicrocentrífugade2mL.§ Bastidoresenfriadoresde96pocillos(2unidades).§ Tuboscónicosde50mL.§ Depósitosde50mL.
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AvisolegalLas IFU y la totalidad de los contenidos del dispositivoHolotypeHLA 96/7 son propiedad deOmixonBiocomputingLimited (“Omixon”)yhansidodiseñadossoloparausocontractualporpartedelclienterespectodelproductoolosproductosquesedescribenenelpresenteyningunaotrafinalidad.Estedocumentoysuscontenidosnosepodránutilizarnidistribuirparaningunaotrafinalidadnitampocosepodráncomunicar,divulgaroreproducirdeningunaotramanerasinprevio consentimiento escrito deOmixon.Omixon no cederá ninguna licencia conforme a supatente,marcaregistrada,derechosdeautoroderechosconformealsistema“commonlaw”niderechossimilaresdetercerosconestedocumento.
OmixonHLATwin(“Software”)otorgaunalicenciaalclienteconformealostérminosycondicionesdeOmixonHLATwinEULA(www.omixon.com/hla-twin-eula/).Siustednoaceptalostérminosycondicionesdelpresente,Omixonnoleotorgarálalicenciadelsoftwareyustednopodráutilizarniinstalardichosoftware.
Elpersonalcalificadoycapacitadodemaneraadecuadadeberáseguirlasinstruccionescontenidasenestedocumentodemaneraestrictayexplícitaparagarantizarelusoseguroyadecuadodelosproductosquesedescribenenelpresente.Deberáleerycomprendertodosloscontenidosdeesteproductoantesdeutilizardicho(s)producto(s).
SINOLEEYSIGUEEXPLÍCITAMENTETODASLASINSTRUCCIONESCONTENIDASENELPRESENTE,LOSPRODUCTOSPODRÍANSUFRIRDAÑOSYLASPERSONASPODRÍANSUFRIRLESIONES,INCLUSOLOSUSUARIOSUOTRASPERSONAS,ADEMÁSDEDAÑOSALOSBIENES.
OMIXON NO ASUME RESPONSABILIDAD ALGUNA DERIVADA DEL USO INADECUADO DE LOSPRODUCTOSQUESEDESCRIBENENELPRESENTE(INCLUSOPIEZASOSOFTWARE)NIDELUSODEDICHOS PRODUCTOS FUERA DEL ALCANCE DE LAS LICENCIAS ESCRITAS O LOS PERMISOSEXPRESOS OTORGADOS POR OMIXON EN RELACIÓN CON LA ADQUISICIÓN DE DICHOSPRODUCTOSPORPARTEDELCLIENTE).
PARAUSODEDIAGNÓSTICOINVITRO©2017OmixonBiocomputingLtd.Todoslosderechosreservados.
UsoprevistoEl productoHolotypeHLA 96/7 – Configuración A y CE, y Configuración B y CE (denominado“HolotypeHLA”)esunacombinacióndereactivosdeensayodediagnósticoinvitroysoftwaredeanálisis dedatos (OmixonHLA Twin™) y tiene como finalidad la identificación y definicióndeantígenos leucocitarios humanos de Clase I y Clase II (HLA) para uso en tipificación de HLA,medianteelusode laplataforma Illumina®MiSeqNextGenerationSequencing.HolotypeHLAproporcionainformacióndehistocompatibilidadhumanadelaClaseIdellocusdeHLA(A,ByC)ylaClaseII(DPB1,DQA1,DQB1yDRB1),medianteADNgenómicohumano.
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El software Omixon HLA Twin™ incluido en el producto Holotype HLA tiene como finalidadinterpretaryemparejarlosdatosdesecuenciacióngeneradosenelsistemaIllumina®MiSeq,quederivaentipificacióndeHLAanivelalélicodeunpaso,altamenteprecisos,conmuybajatasadeambigüedadenelnivel2decampo.
ElproductoHolotypeHLAhasidodiseñadoparausodiagnósticoinvitroporpartedelpersonaldela atenciónmédica profesional, tales como técnicos ymédicos de laboratorio, entrenados entipificación de HLA en laboratorios de diagnóstico acreditados por EFI o ASHI o que puedentrabajarsegúnlasespecificacionesEFIyASHI.
Notaimportanteantesdecomenzar
AislamientodeADNgenómicorecomendadoElADNgenómicohumanosedebeprepararmediantekitsdepreparacióndeADNcomercialmentedisponibles y que generen buenas pruebas para garantizar la uniformidad de la preparación.Independientementedelenfoque,sedebedeterminarexactamentelaconcentraciónylapurezaparaobtenerunrendimientorobustodelensayo.
ElADNdebeestarlibredesustanciascontaminantesquepuedanafectarlaposterioramplificación,preparacióndelabibliotecaypasosdesecuenciación(porejemplo,alcohol,sales,detergentes,formaldehídoyheparina).Lasangrenosedeberecolectarentubosheparinizadosynosedebenutilizar lasmuestras de sangre de los pacientes en tratamiento con heparina, ni lasmuestraslipémicasohemolizadas.
ElADNgenómicopreparadosepuedeusardeinmediatosisepreparaenagualibredenucleasaosealmacenaduranteperíodosprolongadosa-20°Comenos.Recomendamosutilizaraguaparala preparación de ADNg ya que el ácido etilendiaminotetraacético (EDTA) en la soluciónamortiguadoradeTEpuedeinhibirlasreaccionesdereaccióndecadenapolimerasa(RCP)delargoalcance. Se deben evitar congelar y descongelar el producto reiteradamente para reducir ladegradación.
Serecomiendautilizarunaconcentraciónde20-30ng/µLdeADNparaproporcionar100-150ngdeADNgenómicoporamplificacióndeRCP.RecomendamosespecialmenteutilizarunmétododecuantificaciónbasadoenlafluorescenciaparadeterminarelADNg.
Serecomiendaespecialmenteutilizaruníndicedeabsorbanciaconvaloresde260nm/280nmy260nm/230nmde1,7–2.
ParalaamplificacióndeHLA-A,HLA-B,HLA-C,HLA-DRB1,HLA-DPB1,HLA-DQA1yHLA-DQB1,senecesitan0,8-1,2µgdeADNg.
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PrincipiodelmétodoDurantemuchosaños, lacomunidaddeHLAhaestadotrabajandoenunmétodoquepermitaidentificarconclaridadelampliopolimorfismodelosgenesdeHLAysusproductosgenéticos.Elevento de RCP, en combinación con otras tecnologías (secuenciación de Sanger, SSOP, SSP,Luminex) proporcionaron una fórmula para manejar de manera significativa la detección depolimorfismosdeHLA;noobstante,seobservarondiversaslimitacionesquecontinúaninhibiendonuestra capacidadpara caracterizar los genesHLAdemanera integral. Las tecnologíasque sedesarrollarondurante losúltimosañosdemaneraacumulativamediante ladenominadaNextGeneration Sequencing (NGS), han brindado nuevas oportunidades para permitir la completacaracterizacióndelosgenesHLAdemanerahaploide.LaNGStienedoscaracterísticasdistintivas:1)secuenciaciónclonaldefragmentosdeADNy2)rendimientoextremadamenteelevado.LaNGSproporcionalacapacidadparadividirenfaseslospolimorfismosy,porlotanto,eliminartodaslasambigüedadesyproporciona la tipificacióndeHLAaniveldecampo tresocuatro sinanálisisreflexivo,quepermiteintroducirunasoluciónpotencialmentetotalalproblemadetipificacióndeHLA.ElprotocoloqueaquísedescribeaprovechaestatecnologíaycombinaunaamplificacióndeRCPdelargoalcancedelosgenesHLAconsecuenciaciónenlaplataformaIlluminaMiSeq.Másespecíficamente,losgenesA,B,C,DQA1yDQB1deHLAseamplificanentodalalongituddelacodificación,eincluyeloselementosdelasregionesnotraducidasdelosextremos5’y3’,mientrasqueDRB1seamplificadesdeintron1aintron4yDPB1seamplificadeintron1a3’enlaregiónnotraducida.Posteriormente,losampliconesseprocesanmedianteunaseriedepasosque:
1. FragmentanlosampliconesauntamañoapropiadoparalasecuenciaciónenlaplataformadeIllumina,
2. extremosromosylosextremosdelosampliconesfragmentados.
3. LigarlassecuenciasdeadaptadoresqueseutilizanentodoelprocesodeMiSeqparacapturar,amplificarysecuenciarelADN.Losadaptadoresincluyenademásuníndicequeesunasecuenciabreve,únicaencadaadaptador,queidentificalosorígenesdelabiblioteca(muestra/locus).
Despuésdeagruparlasbibliotecasindexadasydespuésderealizarlaselecciónycuantificación,lamuestrasecargaenMiSeqparalasecuenciación.Elprocesotomaentre3y5días,segúnlaseleccióndelaceldadeflujoenlaplataformadeIllumina.Acontinuaciónsemuestraelresumendelospasosdelprotocolo:
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Resumendepasos
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Glosario/Definiciones§ Placadeamplicones:nombrealternativoaplacadeamplificación.§ Placadecuantificacióndeamplicones:placade96pocilloscompatibleconelfluorímetro
deplacasdondesecuantificanlosampliconesdiluidos.§ Placadeamplificación:placadeRCPde96pocillosutilizadaparaamplificarloslocusdeHLA.§ Biblioteca final: biblioteca que contiene todas las bibliotecas de muestra lista para
secuenciaciónenunúnicoprocesodeMiSeq.§ Placadereacción:placadondesellevanacabolasreaccionessecuencialesquefragmentan,
reparanlosextremosyliganlosadaptadoresindexadosenlasbibliotecasdemuestra.§ Placadereactivos:placautilizadaparafijarunaalícuotadelosreactivosvariosutilizados
paraprepararlasbibliotecas.§ Biblioteca demuestras: biblioteca preparadamediante la combinación (agrupación) de
todosloslocusdeHLAparaunamuestradada.§ Placadeampliconesagrupados:placaquecontieneunabibliotecademuestras(todoslos
locuscombinados)antesdecolocarlaenlospocillos.§ Placadecuantificacióndeestándares:placade96pocilloscompatibleconelfluorímetrode
placas donde los estándares de ADN se colocan para permitir la cuantificación deamplicones.
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Paso1–PreparacióndelamezclamaestradeamplificacióndeHLADuración:~1horay45minutosEste paso tiene como finalidad preparar mezclas maestras específicamente dellocus paraamplificar cada locus de HLA objetivo de manera individual. Los locus amplificados por esteprotocolosonHLA-A,HLA-B,HLA-C,HLA-DRB1,HLA-DPB1,HLA-DQA1yHLA-DQB1.
Nota: las mezclas maestras preparadas en este paso contienen todos los reactivos paraamplificación,exceptolaPolimerasataq.
ListadereactivosElemento Almacenamiento Suministradopor
MezcladelcebadorHLA-A -20°C OmixonMezcladelcebadorHLA-B -20°C OmixonMezcladelcebadorHLA-C -20°C OmixonMezcladelcebadorHLA-DRB1 -20°C OmixonMezcladelcebadorHLA-DPB1 -20°C OmixonMezcladelcebadorHLA-DQA1 -20°C OmixonMezcladelcebadorHLA-DQB1(grupo3) -20°C OmixonPotenciador1 -20°C OmixonPotenciador2 -20°C OmixonSoluciónamortiguadoradeRCPdelargoalcance(10×) -20°C QiagendNTPs(10mMcadauno) -20°C QiagenH2Odegradomolecular -20°C Qiagen
Protocolo1.1 –Quitardelalmacenamientotodaslasmezclasdelcebador,elPotenciador1y2,losdNTPs
enlasoluciónamortiguadoradeRCPdelargoalcance(10×)ydescongelaratemperaturaambiente.
1.2 – Preparar el potenciador combinado: agregar 132 µL de Potenciador 2 en el tubo delPotenciador1.CambiarelnombredeltubodelPotenciador1aPotenciadorCombinado.
1.3 –Prepararlamezclamaestraparacadamezcladelcebadorsegúnlastablasacontinuación:
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Mezclamaestra:HLA-A,B,C,DRB1,DPB1yDQA1
Reactivo Volumen/muestra/locus Volumen/96muestras/locusMezcladelcebador 2µL 204µLSoluciónamortiguadoradeRCPdelargoalcance(10×)
2,5µL 255µL
MezcladedNTP(10mMcadauno) 1,25µL 127,5µLH2Odegradomolecular 13,85µL 1412,7µLVolumenTotal 19,6µL 1999,2µL
Mezclamaestra:Grupo3deHLA-DQB1
Reactivo Volumen/muestra/locus Volumen/96muestras/locusMezcladelcebador 2µL 204µLSoluciónamortiguadoradeRCPdelargoalcance(10×)
2,5µL 255µL
MezcladedNTP(10mMcadauno) 1,25µL 127,5µLPotenciadorcombinado 5,6µL 571,2µLH2Odegradomolecular 7,85µL 800,7µLVolumenTotal 19,2µL 1958,4µL
1.1 –Coloquecadamezclamaestraenelvortexyagitedurante1segundo.Coloquelasmezclasmaestrassobrehielo.
1.2 –DiluyatodoslosADNgaunaconcentraciónde30ng/µL(elvolumenmínimoes45µL).
Nota:HolotypeHLAincluyesuficientesreactivospara96reaccionesmásunvolumenadicionalparacompensarlapérdidaporpipetayloserroresdeamplificación.
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Paso2:amplificaciónHLAdeclaseIyIIDuración:~7horasy50minutosElPaso2tienecomofinalidadampliarloslocusHLA.SehanoptimizadolasamplificacionesdeHLAClaseIyClaseIImediantedosjuegosseparadosdecondicionesdeRCP.Despuésdecompletarlas reacciones de RCP, la amplificación se verifica mediante electroforesis en gel de agarosa(opcional).
Consejorápido:laelectroforesisdelgeldeagarosa(paso2.5),sibienesrecomendado,noesrequeridoparacompletarelprotocolodeHolotypeHLAdeformaexitosa.Cuandolosampliconesestáncuantificados(Paso3),cualquierconcentraciónporencimade50ng/µLseconsideraunaamplificacióncorrecta.LaelectroforesisengeldeagarosaesunpasodecontroldecalidadimportanteynosedebeomitirsinexperienciasuficienteconelprotocolocompletodeHolotypeHLA.
ListadereactivosElemento Almacenamiento Suministradopor
MezclamaestradeHLA-A -20°C Paso1MezclamaestradeHLA-B -20°C Paso1MezclamaestradeHLA-C -20°C Paso1MezclamaestradeHLA-DRB1 -20°C Paso1MezclamaestradeHLA-DPB1 -20°C Paso1MezclamaestradeHLA-DQA1 -20°C Paso1MezclamaestraHLA-DQB1(grupo3) -20°C Paso1PolimerasaTaq -20°C QiagenADNg 4°C UsuarioH2Odegradomolecular 20°C Usuario
Protocolo2.1 –Retirarlapolimerasataqdelalmacenamiento,agitarlayagregarlaacadamezclamaestra
segúnlastablasacontinuación;paraello,enjuaguebienlaspuntasdelaspipetasytomeconunapipeta:
Mezclamaestracargadadepolimerasataq:HLA-A,B,C,DRB1,DPB1yDQA1Reactivo Volumen/muestra/locus Volumen/96muestras/locus
MezclamaestradelPaso1 19,6µL 1999,2µLPolimerasaTaq 0,4µL 40,8µLTotal 20µL 2040µL
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Mezclamaestracargadadepolimerasataq:Grupo3deHLA-DQB1
Reactivo Volumen/muestra/locus Volumen/96muestras/locusMezclamaestradelPaso1 19,2µL 1958,4µLPolimerasaTaq 0,8µL 81,6µLTotal 20µL 2040µL
2.2 –Coloquebrevementeenunvortexyagitetodalapolimerasataqcargadaenlasmezclasmaestras.Determinelaalícuotade20µLdecadamezclamaestracargadaconpolimerasataqenpocillosseparadosde96placasdeRCP.
Nota:LaamplificacióndeClaseIyClaseIIseoptimizanmediantedoscondicionesdeRCPdiferentes;porlotanto,lasmezclasmaestrasdelaClaseIylaClaseIInonecesitanestarenlamismaplaca.
2.3 –Agregue5µLdecadaADNgdiluidoenelpocilloapropiadodelasplacaspreparadasenelpasoanterior.Mezcledentrodelapipeta.Luegoselleconunsellotérmicoeinspeccionevisualmentecadapocillo.Agitetodaslasplacasdeamplificaciónenunacentrífuga.
2.4 –ColoquelasplacasdeamplificaciónencicladorestérmicosyejecutelosprogramasdelaamplificacióndeClaseIyClaseIIsegúnlastablasacontinuación:
AmplificacióndeclaseI(HLA-A,ByC)
Cantidaddeciclos Temperatura Tiempo1 95°C 3minutos 95°C 15segundos
35 65°C 30segundos 68°C 5minutos1 68°C 10minutos1 4°C ∞
AmplificacióndeclaseII(HLA-DRB1,DPB1,DQA1yDQB1)
Cantidaddeciclos Temperatura Tiempo1 95°C 3minutos 93°C 15segundos
35 60°C 30segundos 68°C 9minutos1 68°C 10minutos1 4°C ∞
Nota:Paraverificareléxitodelaamplificación,procese2µLdecadaamplicónengeldeagarosa2%estándara250durante30minutos.(Opcional)
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Tamañosesperadosdelosamplicones
LocusdeHLA Tamañoesperadodelosamplicones(kb)HLA-A,ByC ~3HLA-DRB1 ~4,3HLA-DPB1 ~6,7HLA-DQA1 ~6
HLA-DQB(grupo3) ~6,6
Puntodeparadaseguro.Losampliconessepuedenalmacenara4°Cdurantetodalanocheoa-20°Cdurantemástiempo.
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Paso3:cuantificaciónynormalizacióndeamplicones(medianteelusodefluorímetrodeplacas)Duración:~1horay50minutosSe recomienda llevar a cabo la cuantificación y normalización de amplicones para garantizaraportesprecisosalpasodepreparacióndelabiblioteca(opcional).LaconcentracióndeamplicónsemidemedianteelsistemadeADNbcQuantiFluorquecontieneunatintafluorescentedeuniónalADNestándarparallevaracabounacuantificaciónsensibledepequeñascantidadesdeADNbicatenario (ADNbc). Para obtener instrucciones acerca de cómo realizar la cuantificación deamplicónconunequipoRCPq,consulteelApéndice2.
Consejo:siserecomiendalacuantificacióndeamplicones,noesnecesariocompletarcorrectamenteelprotocolodeHolotypeHLA.Paranormalizarlosamplicones,noesnecesarioefectuarunamediciónprecisadelaconcentracióndeamplicones.Encambio,sepuedeusaruncálculoestimadodelasconcentracionesdeampliconesenfuncióndelaexperienciaolaelectroforesisdegeldeagarosa.Nosedebeomitirla cuantificación de amplicones sin tener experiencia uniforme en el protocolocompletodeHolotypeHLA.
ListadereactivosElemento Almacenamiento Suministradopor
PlacadeamplificacióndeclaseI 4°C Paso2PlacadeamplificacióndeclaseII 4°C Paso2ADNLambdaestándar(100ng/µL) 4°C PromegaTintadeADNbcQuantiFluor(200×) 4°C Promega20×soluciónamortiguadoraTE(pH7,5) 4°C PromegaH2Odegradomolecular 20°Ca25°C UsuarioExoSAP-iTExpress -20°C Affymetrix
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Protocolo3.1 –PrepararlosestándaresdelADNmediantediluciónseriadadelADNLambdaestándar(100
ng/µL)queseproporcionaenelkitdeQuantiFluorsegúnlatabladediluciónacontinuación.
Etiquetaeneltubo ADNdeentrada VolumendeADN(µL)
Volumen1xTE(µL)
Concentraciónfinal(ng/µL)
Estándar1 ADNLambda 7,5µL 492,5µL 1,5ng/µLEstándar2 Estándar1 250µL 250µL 0,75ng/µLEstándar3 Estándar2 250µL 250µL 0,38ng/µLEstándar4 Estándar3 250µL 250µL 0,19ng/µLEstándar5 Estándar4 250µL 250µL 0,09ng/µLEstándar6 Estándar5 250µL 250µL 0,05ng/µLEnblanco Enblanco 0µL 250µL 0ng/µL
3.2 – Prepare las placas de cuantificaciónde amplicones (vea las figuras complementarias).Dividaenalícuotas99µLdesoluciónamortiguadoraTE1xenlospocillosdeunaplacaópticade96pocillosparaelnúmerototaldeampliconesquedebecuantificarse.
3.3 –Agregue1µLdeampliconesdesdelospocilloscorrespondientedelasplacasdeampliconesalospocillosindividualesdelasplacasdecuantificacióndeamplicones.Mezcledentrodelapipeta.
3.4 –PrepareunasolucióndetrabajodetinteQuantiFluor1×conlasiguientefórmula:0,5µLdetinteQuantiFluor(200X)+99,5µLdesoluciónamortiguadoraTE1×.PreparesuficientesolucióndetrabajodetinteQuantiFluor1×detalformaquecadamuestra(totaldemuestrasenlasplacasdeamplicones)yelestándar(14entotal)recibanunaalícuotade100µL.
3.5 –Prepareunaplacadecuantificacióndeestándaresyplacasdecuantificacióndeamplicones.Dividaenalícuotas100µLdelasolucióndetrabajodetinteQuantiFluor1×alospocillosdelaplacaópticade96pocillosqueserálaplacadecuantificacióndeestándaresyalasplacasdecuantificacióndeampliconesdelPaso3.2.
3.6 –Conlosestándarespreparadosarriba,agregue100µLdecadaestándar,porduplicado,enlospocillosindividualesdelaplacadecuantificacióndeestándares(14pocillosentotal).Mezcledentrodelapipeta.
3.7 –Agitebienenvórticeparamezclarycentrifugue.
3.8 –Proceselaplacadecuantificacióndeestándaresenelfluorímetrodeplacaseguidodelasplacasdecuantificacióndeamplicones.
3.9 –CalculelaconcentracióndeADNenlasplacasdecuantificacióndeampliconescondatosRFUgeneradosporelfluorímetrodeplaca.ConsultelapestañaDilution(Dilución)enellibrodeejerciciossuministradoparaobtenerasistenciaconloscálculos.
3.10 – Diluya ADN en las placas de amplicones con H2O de grado molecular para que laconcentraciónfinaldeADNseadeaproximadamente67ng/µL.
§ SilaconcentracióndeADNesde150ng/µLomayor:agregue25µLdeH2O
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§ SilaconcentracióndeADNesde100a150ng/µL:agregue10µLdeH2O§ SilaconcentracióndeADNesdemenosde100ng/µL:noagregueH2O
Agrupacióndeamplicones3.11 –Agrupetodosloslocusdecadamuestraenunasolaplacadeagrupacióndeamplicones.
Combinelosvolúmenesindicadosparacadalocuscomoseindicaenlasiguientetablaparaobtenerunvolumenfinalde35µL:
LocusdeHLA VolumenagrupadoA 5µLB 5µLC 5µL
DRB1 5µLDPB1 5µLDQA1 5µL
DQB1grupo3 5µL
3.12 –Agregue4µLdeExoSAP-iTExpressencadabibliotecademuestras.Enjuaguelaspuntasdelaspipetaspormediodepipeteado.Sellelaplacaconunsellotérmicoycentrifugue.
3.13 –Coloquelaplacadeampliconesagrupadosenuncicladortérmicoyejecuteelsiguienteprograma:
ExoSAP-ITPurificacióndeRCPExpresa
Cantidaddeciclos Temperatura Tiempo1 37°C 4minutos1 80°C 1minuto1 4°C ∞
Puntodeparadaseguro.Losampliconessepuedenalmacenara4°Cdurantetodalanocheoa-20°Cdurantemástiempo.
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Paso4:PreparacióndelabibliotecaDuración:~3horasDuranteestepaso,losampliconesagrupadossepreparanparasecuenciarlosenelIlluminaMiSeq.Los amplicones se fragmentan enzimáticamente, los extremos se reparan y se adenilan, y losadaptadoresindexadosseliganalosextremos.LasbibliotecasluegoseagrupanseguidasdeunsolopasodelimpiezayconcentraciónqueserealizaconesferasAMPureXP.
Nota:Omixonrecomiendavolúmenesmayoresquelonecesariopara96muestras,porquemuchasdelasenzimasysolucionesamortiguadorassonviscosas,loquegeneraunexcesodepipeteado.
ListadereactivosElemento Almacenamiento Suministradopor
Placadeampliconesagrupados 4°C Paso3Enzimadefragmentación(A) -20°C OmixonSoluciónamortiguadoradefragmentación(B) -20°C OmixonEnzimareparadoradeextremos(C) -20°C OmixonSoluciónamortiguadorareparadoradeextremos(D) -20°C OmixonEnzimadeligación(E) -20°C OmixonSoluciónamortiguadoradeligación(F) -20°C OmixonPlacadeadaptadores -20°C OmixonEsferasAMPureXP 4°C BeckmanCoulter80%Etanol(preparadofresco) 20°Ca25°C UsuarioH2Odegradomolecular 20°Ca25°C Usuario
Protocolo4.1 –Enciendaelcicladortérmico.Verifiquequelatapacalefaccionadatometemperatura.
Nota:Asegúresedeagitarenvórticelaenzimadefragmentación(A)porcompletoantesdeusarla.
4.2 –Preparelamezclamaestradefragmentacióndeacuerdoconlasiguientetabla:
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Mezclamaestradefragmentación
Reactivo Volumenporbiblioteca(µL)
Volúmenesrecomendadospara96bibliotecas(µL)
Códigodecolor
Enzimadefragmentación(A) 2µL 220,8µL AmarilloSoluciónamortiguadoradefragmentación(B)
2µL 220,8µL Rojo
VolumenTotal 4µL 441,6µL
4.3 –Prepareunaplacadereactivos:coloqueunanuevaplacade96pocillosdeRCPenunestanteenfriadordeRCPydividaenalícuotasunacantidadigualdelamezclamaestradefragmentaciónencadapocillodeunasolacolumna.
Nota:LareaccióndefragmentaciónsehadiseñadoparabrindarADNdeuntamañoidealparasecuenciarloenelIlluminaMiSeq.Esimportantemantenerlosreactivosfríoshastaque la reacción comienceen el ciclador térmicopara evitar la fragmentaciónexcesiva.Serecomiendausarpipetasdevariaspuntasparaminimizarlasoportunidadesdefragmentaciónexcesiva.
4.4 –Centrifuguelaplacadeampliconescombinadospor10segundos,ycolóquelasobrehieloounbloquefrío.
4.5 –Prepareunaplacade reacción: coloqueunaplaca frescade96pocillosdeRCPenunbloquefríodeRCP.
4.6 –Agregue4µLdemezclamaestradefragmentacióndelaplacadereactivosenlospocillosde la placa de reacción en forma correspondiente con las muestras de la placa deampliconescombinados.Serecomiendausarunapipetadevariaspuntas.
4.7 – Transfiera 16 µL de amplicón desde la placa de amplicones agrupados al pocillocorrespondientedelaplacadereacciónconunapipetadevariaspuntas.Mezcledentrodelapipeta.
4.8 –Cubralaplacadereacciónconunsellotérmicoycentrifuguedurante10segundos.
4.9 –Incubelaplacadereacciónenuncicladortérmicoconelsiguienteprograma:
Programadefragmentación
Cantidaddeciclos Temperatura Tiempo1 37°C 10minutos1 70°C 15minutos1 4°C ∞
Puntodeparadaseguro.Lasbibliotecaspuedenalmacenarsea4°Cdurantelanocheoa-20°Cpormástiempo.
4.10 –Preparelamezclamaestradereparacióndeextremosdeacuerdoconlasiguientetabla:
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Mezclamaestradereparacióndeextremos
Reactivo Volumenporbiblioteca(µL)
Volúmenesrecomendadospara96bibliotecas(µL)
Códigodecolor
H2Odegradomolecular 1,25µL 139,2µL Enzimareparadoradeextremos(C) 1,25µL 139,2µL VerdeSoluciónamortiguadorareparadoradeextremos(D)
2,5µL 278,4µL Anaranjado
VolumenTotal 5µL µL
4.11 –Dividaenalícuotasunacantidadigualdemezclamaestradereparacióndeextremosenunasolacolumnasinusardelaplacadereactivos.
4.12 – Centrifugue la placa de reacción (que contiene las muestras fragmentadas) durante10segundos.Agregue5µLdemezclamaestradereparacióndeextremosdesdelaplacadereactivosencadapocillodelaplacadereacción.Serecomiendausarunapipetadevariaspuntas.Mezcledentrodelapipeta.
4.13 –Cubralaplacadereacciónconunsellotérmicoycentrifuguedurante10segundos.
4.14 –Incubelaplacadereacciónenuncicladortérmicoconelsiguienteprograma:
Programadereparacióndeextremos
Cantidaddeciclos Temperatura Tiempo1 20°C 30minutos1 70°C 5minutos1 4°C ∞
Puntodeparadaseguro.Lasbibliotecaspuedenalmacenarsea4°Cdurantelanocheoa-20°Cpormástiempo.
4.15 –Retirelaplacadeadaptadoresindexadosdelalmacenamientoydescongeleatemperaturaambientedespuésdequeelprogramadereparacióndeextremoscomienceenelcicladortérmico.Cuando laplacadeadaptadores lleguea la temperaturaambiente, centrifuguedurante3minutosa3000rpm.
4.16 –Quiteconcuidadoelsellodelaplacadeadaptadores.Nosacudalaplacadeadaptadoresunavezqueseretiróelselloparaevitarlacontaminacióncruzada.
4.17 –Transfieratodoelvolumendecadapocillodesdelaplacadereacción(25µL)alpocillocorrespondientedelaplacadeadaptadores.
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Nota:SiNOsevaausartodalaplacadeadaptadores,puedeusarsesolamenteelnúmerodeadaptadoresnecesarios.Corteelsellodelaplacaentrelospocillosquesevanausary lospocillosqueseconservarán.Quiteconcuidadoelsellode laplacadeadaptadores,dejandoelsellocolocadosobrelasplacasqueseconservarán.
a. Transfiera25µLdesdecadamuestradereparacióndeextremosdelaplacadereacciónaunpocillodelaplacadeadaptadores,mezclandobienconunapipeta.
b. Transfieralamuestracompletadesdelaplacadeadaptadoresalpocillooriginaldelaplacadereacción.
c. Vuelvaasellarlaplacadeadaptadoresyvuelvaaponerlaen-20°C.Uselaplacade reacciónen lugarde laplacadeadaptadorespara lospasos restantesdelmanual.
4.18 –Preparelamezclamaestradeligación.Preparesuficientemezclamaestradeligaciónparacadamuestra.
Mezclamaestradeligación
Reactivo Volumen(µL)
Volúmenesrecomendadospara96bibliotecas(µL)
Códigodecolor
Enzimadeligación(E) 2,5µL 252,5µL AzulSoluciónamortiguadoradeligación(F) 30µL 3030µL NegroVolumenTotal 32,5 3282,5µL
4.19 –Dividaenalícuotaslamezclamaestradeligaciónen3columnassinusardelaplacadereactivos.Serecomiendausarunapipetadevariaspuntas.
4.20 –Agregue32,5µLdemezclamaestradeligaciónencadapocillodelaplacadereacción.Serecomiendausarunapipetadevariaspuntas.Mezcledentrodelapipeta.
4.21 –Cubralaplacadereacciónconunsellotérmicoycentrifuguedurante10segundos.
4.22 –Incubelaplacadereacciónenelcicladortérmicoconelsiguienteprograma:
Programadeligación
Cantidaddeciclos Temperatura Tiempo1 25°C 10minutos1 70°C 10minutos1 4°C ∞
Puntodeparadaseguro.Lasbibliotecaspuedenalmacenarsea4°Cdurantelanocheoa-20°Cpormástiempo.
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Agrupamientoypurificacióndebiblioteca4.23 –PermitaquelasesferasAMPureXPlleguenatemperaturaambiente.Asegúresedeque
seanhomogéneas(singrumosnigránulos).Prepare5mLde80%etanol(4mLEtOH+1mLH2O)reciénhecho.
4.24 –Para crear laBiblioteca, combineunaalícuotade cadaamplicónagrupado,ahoraunaBibliotecademuestrasespecífica,enunúnicotubodemicrocentrífugadebajaretenciónde2,0mL.
I. Para 16muestras omás: calcule la cantidad de cada Biblioteca demuestras paraagruparlascomounaúnicaBibliotecaconunvolumentotalde900µL.Divida900µLentreelnúmerodebibliotecasdemuestras.EsteelvolumendealícuotaquedebetomarsedecadabibliotecademuestrasypipetearseenlaBiblioteca.
II. Paramenosde16muestras:transfiera60µLdecadabibliotecademuestrasaunaBiblioteca.
4.25 –Agregue900µLdeesferasAMPureXPaltubodelaBiblioteca.Agitebienconelvórticeycentrifuguebrevemente.Nopermitaquelasesferasseseparen.Incubelabibliotecapor10minutosatemperaturaambiente.
Nota:Sihaymenosde900µLdebibliotecaen laagrupaciónfinal,agregueunacantidad equivalente de esferas AMPure XP. Debe haber una relación 1:1 deagrupaciónfinalydeesferasAMPureXP.
4.26 –Coloqueeltubodebibliotecaenunsoportemagnéticoeincubedurante10minutos.
4.27 –Coneltuboenelsoportemagnético,retireydescarteconcuidadoelsobrenadantedeltubodelabiblioteca,sintocarlasesferas.
4.28 –Coneltuboenelsoportemagnético,agregueaproximadamentede1,5a2mLdeetanol80%preparado frescoal tubode labiblioteca.El volumenagregadodeetanoldebe sersuficienteparaquecubralasesferas.
Nota:Apliqueeletanolalcostadodeltubosinesferas.
4.29 –Incubeeltubodelabibliotecaatemperaturaambientedurante30segundos;después,retireydescarteconcuidadoelsobrenadante.
4.30 –Repitalospasos4.28y4.29.
4.31 – Centrifugue rápidamente el tubo de la biblioteca y vuelva a colocarlo en el soportemagnéticoconlatapaabierta.Retireeletanoresidualconunapipeta.Notoquelasesferas.
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Nota:Asegúresedequeelgránulodelaesferanocontienealcoholresidual.Estopuederequerirquesegireeltuboenelsoportemagnéticoparaquitareletanolsinperturbarelgránulodelaesfera.
4.32 – Permita que las esferas se sequen con el aire durante 5 a 8 minutos en el soportemagnéticohastaelquegránulodelaesferaquedeseco.
4.33 –Quiteeltubodelabibliotecadelsoportemagnéticoyeluyalabibliotecacon31µLdeagua de gradomolecular. No deje que la punta de la pipeta toque las esferas, porquequedaránpegadasaella.
4.34 – Agite en vórtice la biblioteca para volver a poner las esferas completamente ensuspensión. Centrifuguebrevemente si quedan algunas gotitas en las paredes laterales.Asegúresedequelasesferasquedenensuspensión.
4.35 –Incubelabibliotecaatemperaturaambientedurante2minutos.
4.36 –Coloqueeltubodelabibliotecasobreelsoportemagnéticodurante2minutos.
4.37 – Recolecte la biblioteca: manteniendo el tubo final de la Biblioteca en el soportemagnético,recolecte31µLdelsobrenadanteenunnuevotubodemicrocentrífugadebajaretenciónde1,5mL.
Puntodeparada seguro. Lasbibliotecaspuedenalmacenarsea -20 °Cporperíodosextensosdetiempo.
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Paso5:SeleccióndeltamañodelabibliotecaDuración:~1horaElpaso5hacequelabibliotecaavancedesdeelpaso4yrealizalaseleccióndeltamañoconelPippin Prep. El Pippin Prep puede seleccionar automáticamente un rango de tamaños defragmentosdeADNyeluirlosenunacámaraderecolección.Nota:puedeusarseBluePippinenlugardePippinPrep.ConsulteelApéndice1paraverlasInstruccionesdeusodelPippinPrep.
ListadereactivosElemento Almacenamiento Suministradopor
Casettecongeldeagarosa1,5%,sintinte 20°Ca25°C SageScienceSolucióndecargadePippin/mezclamarcadora(etiquetadaK) 4°C SageScienceBibliotecaagrupada 4°C Paso4
Nota:SeusaelMarcadorKconelPippinPrep.ElBluePippinusaelMarcadorR2.
Protocolo5.1 –HagaquelasolucióndecargadeMarcadorklleguealatemperaturaambiente.
5.2 –Combine31µLdelgrupocon10µLdelasolucióndecargadeMarcadork.
5.3 –Mezcleagitandoelvortexycentrifugue.
5.4 –ConfigureelPippinPrepparaquerecojafragmentosdeADNdeentre650y1300bps.Carguelamuestrade40µLenelpuertodemuestrasyprocese.Eltiempodeprocesamientodurade45a50minutos.
5.5 –Recolectetodoelcontenido(aproximadamente40µL)delpuertodeelucióndelPippinPrepytransfiéraloaunnuevotubodemicrocentrífugadebajaretenciónde1,5mL.Estaeslabibliotecadetamañoseleccionado.
Puntodeparada seguro. Lasbibliotecaspuedenalmacenarsea -20 °Cporperíodosextensosdetiempo.
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Paso6:CuantificacióndebibliotecaconuninstrumentodeRCPcDuración:~1horay15minutosEsnecesariocuantificarlabibliotecaseleccionadaportamañoafindeusarenformaóptimaelresultadodelsecuenciador IlluminaMiSeq.Laconcentraciónde labibliotecaseleccionadaportamañopuedemedirseconprecisiónpormediodeRCPc.Demaneraopcional,ustedpuedeusarelkitQubitdsDNABRyunamáquinaQubitparamedirlaconcentracióndelabiblioteca.Paraesteprotocolo,consulteelApéndice3.
ListadereactivosElemento Almacenamiento Suministradopor
10xPremezcladelcebadorIllumina -20°C KAPABiosystems2xMezclamaestraKAPASYBRFASTdeRCPc -20°C KAPABiosystemsEst.1(20,00pM) -20°C KAPABiosystemsEst.2(2,00pM) -20°C KAPABiosystemsEst.3(0,20pM) -20°C KAPABiosystemsEst.4(0,02pM) -20°C KAPABiosystemsEstándaresdeADNdeIllumina -20°C KAPABiosystemsH2Odegradomolecular 20°Ca25°C Usuario1×soluciónamortiguadoraTE(pH8,0). 20°Ca25°C UsuarioBibliotecadetamañoseleccionado 4°C Paso5
Protocolo1 –PreparelamezcladelcebadordeRCPcconlapremezcladelcebador10×Illuminaylas2×
mezclasmaestrasKAPASYBRFASTdeRCPc:
Nota: Los reactivos del kit KAPA SYBR FASTdeRCPc (mezclamaestra deRCPc,premezcladelcebadorysolucionesROX)secombinanduranteelprimerusodelkit.Estasolucióncombinadaesestableporalmenos30ciclosdecongelamiento/descongelamiento.SigaladocumentacióndeKAPAparadeterminarsiserecomiendaROXparasuinstrumentodeRCPc.
MezcladelcebadorRCPc
Reactivo Volumen(mL)10xPremezcladelcebadorIllumina 1mL2xMezclamaestraKAPASYBRFASTdeRCPc 5mLVolumenTotal 6mL
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2 –PreparelamezclamaestradeRCPc.
MezclamaestradeRCPc
Reactivo Volumen(µL)MezcladelcebadorRCPc 228µLH2Odegradomolecular 76µLVolumenTotal 304µL
3 –Prepareunadiluciónseriadadelabibliotecadetamañoseleccionado.
a. Prepareunadilución1:1000agregando1µLdebibliotecadetamañoseleccionadoa999µLdesoluciónamortiguadoraTE1×(pH8,0),yenjuaguemuybienlapuntadelapipeta.Agiteconelvortexycentrifugue.
b. Prepare una dilución 1:2000 agregando 100 µL de la dilución 1:1000 a 100 µL desoluciónamortiguadoraTE1×(pH8,0).Agiteconelvortexycentrifugue.
4 –PrepareunaplacadecuantificacióndeRCPcenunaplacaRCPfrescacompatibleconsusistemadeRCPc.
5 –Dividaenalícuotas16µLdelamezclamaestradeRCPcportriplicadoparalosestándares1a4,ladilución1:1000yladilución1:2000(vealasfigurascomplementarias).
6 –Dividaenalícuotas4µLdelosestándares1a4,ladilución1:1000yladilución1:2000entrelospocilloscorrespondientes.
7 –SellelaplacadecuantificacióndeRCPcycentrifúgueladurante10segundos.
Nota:EvitegenerarburbujasenlospocillosdelaplacadecuantificacióndeRCPc.Centrifuguesegúnseanecesarioparaeliminarlasburbujas.
8 –Configurelostriplicados1:1000y1:2000comomuestrasobjetivo,ydefinalosestándares(puntos:4,concentracióndeinicio:20pM,dilución:1:10).EjecuteelsiguienteprogramaenlamáquinadeRCPcparadeterminarlaconcentracióndeADNdelaBibliotecadetamañoseleccionado:
Cantidaddeciclos Temperatura Tiempo1 95°C 5minutos25
(sincurvadefusión)95°C 30segundos60°C 90segundos(adquisicióndedatos)
9 – Para convertir el resultado de RCPc de una concentración pM a una nM, ingrese losresultados“mediadecantidad”delosreplicadosdelasdosbibliotecasenlapestañadellibrodeejerciciosdeOmixonllamada“Cuantificacióndebiblioteca”.
10 –Conlosvolúmenesquefiguranenellibrodeejercicios,diluya10µLdelabibliotecadetamañoseleccionadoaunaconcentraciónde2nMconH2Oestérilenunnuevotubodemicrocentrífugadebajaretenciónde1,5mL.Almacenelabibliotecadetamañoseleccionadorestantea-20°C.
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Puntodeparada seguro. Lasbibliotecaspuedenalmacenarsea -20 °Cporperíodosextensosdetiempo.Enelcasodeunalmacenamientoa largoplazo,serecomiendaenfáticamenterecuantificarlabibliotecaantesdeprocesarlaenelMiSeq.
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Paso7:SecuenciamientoenelIlluminaMiSeqDuración:~24a40horasEl IlluminaMiSeqesun instrumentoNGSautomatizadoquepuedesecuenciar labibliotecadetamañoseleccionadoquesepreparóenlospasosanteriores.Eldesmultiplexadodelasmuestrasindizadasserealizaenformaautomáticaluegodehaberfinalizadoelprocesodesecuenciamiento.
Consejo rápido:puedeusarunpicodePhiXdel1%comouncontrol adicionalparamonitorear lareaccióndelsecuenciamiento.Consulte ladocumentaciónde IlluminasobreelcontroldePhiXparaobtenermásinformación.
ListadereactivosElemento Almacenamiento Suministradopor
Cartuchodereactivo -20°C IlluminaHT1 -20°C IlluminaPR2 4°C IlluminaCélulaflujoMiSeq 4°C IlluminaBibliotecaen2nM 4°C Paso6NaOH1No2N 20°Ca25°C UsuarioH2Odegradomolecular 20°Ca25°C Usuario
CapacidaddelkitreactivodeMiSeq
KitreactivodeMiSeqdeIllumina
TiempoHoras
Muestras96/7
Cicloestándar500(MS-102-2003)
~39 96
Cicloestándar300(MS-102-2002)
~24 96
Ciclomicro300(MS-103-1002)
~19 28
Ciclonano500(MS-103-1003)
~28 12
Ciclonano300(MS-103-1001)
~17 6
Protocolo7.1 –PrepareelMiSeqdeacuerdoconlosprotocolosestándaresdeIllumina.
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7.2 –PrepareunaBibliotecadesnaturalizadade1nM:Combine10µLde0,2NNaOHreciénpreparadoy10µLdelabibliotecaseleccionadadetamañodiluidode2nMenunnuevotubodemicrocentrífugadebaja retenciónde1,5mL.Agiteconel vortexy centrifugue.Incubeestabibliotecadesnaturalizadade1nMatemperaturaambientedurante5minutos.
7.3 –PrepareunaBibliotecadesnaturalizadade20pM:Agregue980µLdeHT1enfriadoalos20µLdelabibliotecadesnaturalizadade1nM.Agiteconelvortexycentrifugue.
7.4 –PrepareunaBibliotecadesnaturalizadade9pM:Agregue550µLdeHT1enfriadoy450µLde la biblioteca desnaturalizada de 20 pMa un nuevo tubodemicrocentrífuga de bajaretenciónde1,5mL.Agiteconelvortexycentrifugue.
7.5 –Transfiera600µLdelabibliotecadesnaturalizadade9pMeneldepósitodemuestrasdecargadecartuchodereactivoMiSeq.
Consejorápido:esrecomendableusarellibrodeejerciciossuministradoparacrearlaHojademuestraquerequiereelMiSeq.
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Paso8–AnálisisdedatosdelsecuenciamientoHLAElIlluminaMiSeqprocesarálabibliotecaagrupadade9pMygenerarádatosdesecuenciamientocomoarchivosfastq.ConsulteelmanualHLATwinparaobtenerasistenciaconlainstalacióncorrectadelHLATwinyconseguirinformaciónsobrecómointerpretarelanálisisdegenotipificacióndesusdatosde secuenciamiento. Para implementar el Protocolo automatizado yporproblemasrelacionadosconlainstalaciónoelanálisisdelosdatos,comuníqueseconsupport@omixon.com.
Protocoloautomatizado
EstablecimientoyconfiguracióndeTI1. InstaleHLATwinServerenelservidor.
§ InstaleHLATwinClientenunacomputadoracliente;puedenconectarsevariosHLATwinClientsalservidor.
§ Comuníquese con Soporte de Omixon (support@omixon.com) para instalaciones deinstalaciónpersonalizadasparalaAutomatización.
Protocoloporanálisis1. AbraHLATwinClienteiniciesesión.
2. Losdatosyasehanprocesadooseestánprocesando.ReviselosresultadosconelsistemaTrafficLightdelHLATwin.
3. Exporte los resultados de la genotipificación y/o las secuencias de consenso según searequerido.
Protocolomanualdelservidor
EstablecimientoyconfiguracióndeTI§ InstaleHLATwinServerenelservidor.§ InstaleHLATwinClientenunacomputadoracliente.
Protocoloporanálisis§ AbraHLATwinClienteiniciesesión.§ SeleccionelosdatosdeMiSeqenformatofastqofastq.gzeinicielaejecucióndelatipificación
deHolotypeHLA.§ Unavezque la tipificacióndeHolotypeHLAestá terminada, revise los resultadosconel
sistemaTrafficLightdeHLATwin.§ Exporte los resultados de la genotipificación y/o las secuencias de consenso según sea
requerido.
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Protocolomanualdeescritorio
EstablecimientoyconfiguracióndeTI§ InstaleHLATwinDesktop.
Protocoloporanálisis6 AbraHLATwineiniciesesión.
7 SeleccionelosdatosdeMiSeqenformatofastqofastq.gzeinicielaejecucióndelatipificacióndeHolotypeHLA.
8 Unavezque la tipificacióndeHolotypeHLAestá terminada, revise los resultadosconelsistemaTrafficLightdeHLATwin.
9 Exporte los resultados de la genotipificación y/o las secuencias de consenso según searequerido.
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Figurascomplementarias
Ejemplo de placa para Placa de amplicones, Placa de amplificación,Placadedilución,Placadecuantificacióndeamplicones(paraunlocusindividual)yPlacadereacción
EjemplodeplacaparaPlacadecuantificacióndeestándares
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EjemplodeplacadeRCPcparaCuantificacióndebibliotecaKAPA
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Apéndice1:PippinPrep
ProgramacióndelPippinPrep1. HagaclicenlapestañaProtocolEditor(Editordeprotocolo)yhagaclicenelbotón“New”
(Nuevo).
2. HagacliceneliconodelacarpetaalladodelcampoCassetteyseleccione“1.5%DFMarkerK”(MarcadorK1,5%DF)paraPippinPrepo“1.5%DFMarkerR2”(MarcadorR21,5%DF)paraBluePippin.
3. Enlavíaqueustedestáprogramando:
a. Resalteelcampo“Range”(Rango).b. Configurela“RefLane”(Víadereferencia)paraquecoincidaconelnúmerodevíaen
elcualestátrabajando.c. Configureelcampo“Start*”(Inicio*)en650.d. Configureelcampo“End*”(Fin*)en1300.
4. EnelcampoReferenceLane(Víadereferencia),seleccionelavíaenlacualestátrabajando.
5. Hagaclicenelbotón“SaveAs”(Guardarcomo)ypóngaleunnombreasuprograma.
EjecucióndelPippinPrep1. EnciendaelPippinPreppresionandoelbotóndeencendidoqueestáenlapartetraseradel
aparato.
2. InspeccionevisualmenteelPippinPrep.Asegúresedequelas5lucesLEDestánencendidasyqueelinteriordelaparatoestálimpioyseco.
3. HagaclicenellogotipodeSageSciencequeestáenlaparteinferiorderechadelapantalla.Estolepermitiráingresarunacontraseña.Lacontraseñapredeterminadadefábricaes“pips”.
4. HagaclicenlapestañaFactorySetup(Configuracióndefábrica)yasegúresedequeelvalordebaseaumbralestápuestoen0,02.
5. ColoqueeldispositivodecalibracióndentrodelPippinPrepyasegúresedequelabandaoscuraestábocaabajoyencimadelaslucesLED.
6. EnlapestañaMain(Principal),hagaclicenelbotón“Calibration”(Calibración).
7. En la ventana “Calibration” (Calibración), asegúrese de que el campo “Target I pHmA”(Objetivo IpHmA)estápuestoen0,80 (0,60paraBluePippin)y luegoaprieteelbotón“Calibration”(Calibración).
8. VayaalapestañaProtocols(Protocolos).Hagaclicenelbotón“Load”(Carga)yseleccioneel programa para Holotype HLA y la vía específica que usará usted. Asegúrese de losiguiente:
a. Lavíacorrectaestáencendida.b. Elindicadordeseleccióndeespectroanchoestáactivo.
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c. Lavíadereferenciaeslamismalíneaqueseprocesará.
9. VayaalapestañaMain(Principal).Asegúresedelosiguiente:
a. Elprogramaquecargóeselqueestáseleccionado.b. La vía de referencia apropiada está seleccionada y es también la vía en la que se
procesarálamuestra.
10. Inspeccioneelcasete.Antesdesacarlacintaquesellalospocillos,reviseparaversihayburbujasdetrásdelpuertodeelución.Sihayalgunaburbujadetrásdelpuertodeelución,golpeeyhagagirarelcaseteconsuavidadentresusmanosparasacarlas.
11. Coloqueelcasete,conlacintatodavíapuestasobrelospocillos,dentrodelPippinPrep.
12. Despeguelacintaconcuidadoyasegúresedesacarladesdelapartelimpiadelcasete(vía5)hacialaparteusadadelcasete(vía1).Tengacuidadodenosalpicarlíquidocuandoseretiralacinta,paraprevenirlacontaminación.
13. Quitetodoelvolumende lasoluciónamortiguadoradelpuertodeeluciónde lavíaqueusaráyagregue40µLdesoluciónamortiguadoradeelectroforesisfrescaenesepuertodeelución.
14. Coloqueunatiradelgadadecintasobrelospuertosdeelución.
15. Cualquier depósito que esté menos de 3/4 lleno debe completarse con soluciónamortiguadoradeelectroforesis.¡Nollenelospocillosenexceso!Elbordedelasoluciónamortiguadoradebe llegar justoalplástico,ynomásalto,para impedirquesearrastrecuandosedeslizalatapa.Apliquesoluciónamortiguadoradesdelospocilloslimpios(Vía5)alospocillosusados(Vía1).
16. Asegúresedequecadaunodelospocillosdecarga(pocillosconagarosa)estánllenosconla soluciónamortiguadoradeelectroforesis. La soluciónamortiguadoradebeestar justoencimadelaagarosa,yversecompletamenteplana.
17. CierredespacioelPippinPrepytengacuidadodequenadadelasoluciónamortiguadoratoquelatapamientrascierraeldispositivo.
18. Lleveacabolapruebadecontinuidad.Cuandolossensoressesecanligeramente,escomúnquelapruebadecontinuidadfalleunavez.Silapruebadecontinuidadfalla,hagalapruebaunavezmás.Unavezquesecompletelapruebadecontinuidad,abralentamenteelPippin.AsegúresedequelatapadelPippinPrepnoarrastrelíquidoporelcasete.
19. AgiteconelvortexlasolucióndecargadeMarcadorKbrevementeycentrifugue.Agregue10µLdesolucióndecargadeMarcadorKasusaproximadamente30µLdebiblioteca.
20. Agiteconelvortexsubibliotecabrevementeycentrifugue.
21. Extraiga40µLdesoluciónamortiguadoradelpocillodemuestraqueestaráusando.
22. Agregueaproximadamente40µLde subibliotecacargadaconMarcadorKalpocillodemuestraqueestaráusando.
23. Marquelavíaqueestáusandoconlasinicialesdeltécnicoylafecha.
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24. Cierre el Pippin Prep y haga clic en el botón “Start” (Inicio). Asegúrese de que la víaapropiadaestáencendida.Lamuestradebeprocesarseporunos45minutos.
25. Unavezquesecompletóelprocesamiento,abraelPippinPrepconcuidado.Espereparaversilatapaarrastraalgodelíquidoporelcasete.
26. Quitelatapaqueestásobrelospuertosdeelución,concuidadodenotocarnadadelíquido.
27. Transfieratodoelvolumendesdeelpuertodeeluciónaunnuevotubodebajaretenciónde1,5mL.
28. Cubratodoslospocillosabiertoscondospiezasdecintaselladoradeplacas.Recuerdedejarunapestañaenel lado limpio.Estoharáqueseamásfácilquitar lacintadesde lapartelimpiaalausada.
29. Coloqueelcaseteselladoensubolsaypóngaloaunlado.
30. TomeelcasetedelavadoylléneloconaguaMiliQ.CierreconsuavidadlatapadelPippinPrep,concuidadodenoderramarnadadellíquidoporelcasetedelavado.
32. DejeelPippinPrepcerradoporunoscuantossegundos.
33. AbraelPippinPrep,concuidadodenollevarnadadelíquidoporelcasetedelavado.
34. Quiteelcasetedelavado,vacíelodeaguaydejequeseseque.
35. LimpietodaelaguaquetengaelPippinPrepyciérrelosuavemente.
36. Seleccioneelbotón“ShutDown”(Apagar)delmenúdelPippinPrep.
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Apéndice2:CuantificacióndeampliconesconuninstrumentodeRCPcDuración:1horay50minutos
ListadereactivosElemento Almacenamiento Suministradopor
20×soluciónamortiguadoraTE(pH7,5) 4°C PromegaADNLambdaestándar(100ng/µL) 4°C PromegaTinte200×QuantiFluordeADNbc 4°C PromegaH2Oestéril 20°Ca25°C UsuarioPlaca(s)deamplificacióndeclaseI 4°C Paso2Placa(s)deamplificacióndeclaseII 4°C Paso2
Protocolo1. Cree una dilución serial con tubos demicrocentrífuga de 1,5mL y el estándar de ADN
QuantiFluorLambda(100ng/µL).Sigalasiguientetabladediluciones:
Etiquetaeneltubo ADNdeentrada VolumendeADN(µL)
Volumen1xTE(µL)
Concentraciónfinal(ng/µL)
Estándar1 ADNLambda 7,5µL 492,5µL 1,5ng/µLEstándar2 Estándar1 250µL 250µL 0,75ng/µLEstándar3 Estándar2 250µL 250µL 0,38ng/µLEstándar4 Estándar3 250µL 250µL 0,19ng/µLEstándar5 Estándar4 250µL 250µL 0,09ng/µLEstándar6 Estándar5 250µL 250µL 0,05ng/µLEstándar7,enblanco Enblanco 0µL 250µL 0ng/µL
2. Preparelasplacasdecuantificacióndeamplicones(vealasfigurascomplementarias).Dividaenalícuotas49,5µLdesoluciónamortiguadoraTE1xenlospocillosdeunaplacaópticade96pocillosparaelnúmerototaldeampliconesquedebecuantificarse.
3. Agregue0,5µLdeampliconesdesdelospocilloscorrespondientesdelasplacasdeampliconesapocillosindividualesdelasplacasdecuantificacióndeamplicones.Mezcledentrodelapipeta.
4. Prepareunasolucióndetrabajodetinte1×QuantiFluorconlasiguientefórmula:0,25µLtinte QuantiFluor (200X) + 49,75 µL solución amortiguadora TE 1×. Prepare suficientesolucióndetrabajodetinteQuantiFluor1×deformaquecadamuestra(totaldemuestrasenlasplacasdeamplicones)yelestándar(14entotal)recibanunaalícuotade50µL.
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5. Prepareunaplacadecuantificacióndeestándaresyplacasdecuantificacióndeamplicones.Dividaenalícuotas50µLdesolucióndetrabajodetinteQuantiFluor1×enlospocillosdelasplacasópticasde96pocillosconelformatodelaplacadecuantificacióndeestándaresylasplacasdecuantificacióndeamplicones(consultelasfigurascomplementarias).
6. Conlosestándarespreparadosarriba,agregue50µLdecadaestándar,porduplicado,alospocillosindividualesdelaplacadecuantificacióndeestándares(14pocillosentotal).
7. Agiteenvórticeparamezclarbienycentrifugue.
8. Coloque cadaplacade cuantificaciónen lamáquinadeRCPc, una a la vez, y ejecute elsiguienteprograma:
Cantidaddeciclos Temperatura Tiempo1 25°C 10segundos 25°C 15segundos2 25°C 30segundos(adquisicióndedatos)
9. CalculelaconcentracióndeADNdelasplacasdecuantificacióndeampliconesconlosdatosRFUenbrutogeneradosporelinstrumentodeRCPc.
10. DiluyaelADNdelasplacasdeampliconesconH2OestérilparaquelaconcentraciónfinaldeADNseadeaproximadamente67ng/µL.
§ SilaconcentracióndeADNesde150ng/µLomayor:agregue25µLdeH2O§ SilaconcentracióndeADNesde100a150ng/µL:agregue10µLdeH2O§ SilaconcentracióndeADNesmenorque100ng/µL,agregue0µLdeH2O.
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Apéndice3:CuantificacióndebibliotecaconuntintefluorescenteintercaladodeADNbcDuración:~15minutosLaconcentracióndelabibliotecadetamañoseleccionadopuedemedirseenformaprecisaconun tinte fluorescente ADNbc intercalado, como SYBR verde o un equivalente. Los kits y losinstrumentoscomercialmentedisponiblesparaestefinincluyenperonoselimitanallectorQubitdeThermoFisher(usaelkitdeensayodeADNbcQubitdeampliorango),ellectorQuantusdePromega(usael tintefluorescentedeADNbcQuantifluor)yotros.AquísedescribeelmétodoQubit,yaqueeselinstrumentodeusomáscomún.Siseusanotroinstrumentoyotrokit,sigalasinstruccionesestándardelfabricante.
Nota:EstemétodofluorimétricoparaelADNbcconstituyeunamanerarápidaperoprecisadedeterminarlaconcentracióndelabibliotecadetamañoseleccionadofinal.MidetodoelADNbcpresenteenlabiblioteca.
ListadereactivosElemento Almacenamiento Suministradopor
KitdeensayoQubitdsDNABR temperaturaambiente ThermoFisherEstándaresQubitdsDNABR 4°C ThermoFisherBibliotecadetamañoseleccionado 4°C Paso5
Protocolo6.1 –HagaquelosestándaresdeQubitlleguenalatemperaturaambiente.Preparetubosde
ensayodeQubit(500µL,paredesfinas)parasubibliotecaporduplicado,ylosdosestándares.Agiteenvórticeycentrifuguelosestándaresylabiblioteca.
6.2 –Agregue995µLdesoluciónamortiguadoray5µLdetinteauntubodecentrífugade1,5mL.Agiteconelvortexycentrifugue.
6.3 –Transfiera190µLdesdelamezcladereactivosalostubosdeQubitparalosdosestándares.Transfiera198µLdesdelamezcladereactivosalosdostubosdeQubitparalosduplicadosdelabiblioteca.
6.4 –Agregue10µLdesdeelestándar1altubodeQubitcorrespondienteyagiteenvórticedurante2segundos.Repitaparaelestándar2.
6.5 –Agregue2µLdesdelabibliotecaa losdostubosdeQubitcorrespondientesyagiteenvórticedurante2segundos.
6.6 –IncubelostubosdeQubitatemperaturaambientedurante2minutos.
6.7 –EnciendalamáquinadeQubityelijaBRprotocol(ProtocoloBR).
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6.8 –PongaeltubodeQubitestándar1ypresioneGO(Empezar).Repitaparaelestándar2.
6.9 –PongaeltubodebibliotecaenQubitypresioneGO(Empezar).Repitaparaelreplicado.
6.10 – Para convertir el resultado de Qubit de ng/µL a una concentración nM, ingrese laconcentración media de los dos replicados de la biblioteca en la pestaña del libro deejerciciosdeOmixonllamada“LibraryQuantitation”(Cuantificacióndebiblioteca).
6.11 – Con los resultados de lamedición delQubit, diluya 10µL de la Biblioteca de tamañoseleccionado a una concentración de 2 nM con H2O estéril en un nuevo tubo demicrocentrífugadebajaretenciónde1,5mL.Almacenelabibliotecadetamañoseleccionadorestantea-20°C.
Puntodeparadaseguro.Lasbibliotecaspuedenalmacenarsea-20°Cporperíodosextensosdetiempo.Enelcasodeunalmacenamientoalargoplazo,serecomiendaenfáticamenterecuantificarlabibliotecaantesdeprocesarlaenelMiSeq.
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