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Micetoma 1
MICETOMA
El micetoma es un pseudotumor inflamatorio crónico, localizado, no contagioso que afecta
progresivamente tejido cutáneo, subcutáneo y óseo, produciendo deformación y destrucción de
los tejidos invadidos, donde el agente causal forma micro colonias, que a simple vista tienen el
aspecto de gránulos de color blanco-amarillento, negro o rojo y que son eliminados por trayectos
fistulosos. El síndrome: tumefacción, presencia de fístulas y gránulos se considera
patognomónico de un micetoma.
Agentes etiológicos. Hay dos grupos fundamentales de microorganismos productores de
micetomas:
Eumycetes u hongos verdaderos.
Bacterias del orden de los Actinomycetales.
Actualmente se considera que 23 especies de hongos verdaderos y 10 especies de actinomicetos
pueden ser agentes causales de la enfermedad. La clasificación taxonómica de los agentes más
importantes de ambos grupos se describe a continuación:
División: Ascomycota
Clase: Euascomycetes
Orden: Dothidiales
Familia: Leptosphaeriaceae
Leptosphaeria senegalensis
Familia: Didymosphaeriaceae
Neostudina rosatti
Orden: Microascales
Familia: Microacaceae
Pseudoallescheria boydii (anam. Scedosporium apiospermium)
Clase: Hyphomycetes
Acremonium kiliensi
Acremonium recifei
Exophiala jeanselmei
Madurella grisea
Madurella mycetomatis
Micetoma 2
Clase: Coelomycetes
Pyrenochaeta romeroi
También Aspergillus nidulans, especies de Fusarium y de Curvularia (vistos anteriormente como
productores de Aspergilosis, Hialo y Feohifomicosis, respectivamente) han sido descriptos como
agentes productores de micetomas.
Dominio: Eubacteria
Reino: Monera
División: Schizomycota
Clase: Eubacter
Orden: Actinomycetales
Familia: Streptomycetaceae
Actinomadura madurae
Actinomadura pelletieri
Nocardia asteroides
Nocardia brasiliensis
Nocardia otitidiscaviarum
Familia: Streptomycetaceae
Streptomyces somaliensis
Los micetomas producidos por los eumycetes son llamados micetomas eumicóticos o también
micetomas maduromicóticos, al haber sido identificados por primera vez en la ciudad de
Madura (India). Los micetomas producidos por bacterias son llamados micetomas
actinomicóticos.
En la tabla N° 1 se muestra la frecuencia y color de los gránulos de los agentes mencionados:
Micetoma 3
Tabla N° 1: AGENTES PRODUCTORES DE MICETOMAS
Agentes Color de los gránulos Frecuencia
Micetoma actinomicótico
Nocardia asteroides Blanco Raro
Nocardia. brasiliensis Blanco Común
Nocardia otitidiscaviarum Blanco a amarillo Raro
Actinomadura madurae Blanco a amarillo Común
Actinomadura pelletieri Rojo Ocasional
Steptomyces somaliensis Amarillo a café Ocasional
Micetoma eumicótico
Madurella mycetomatis Negro Común
Madurella grisea Negro Ocasional
Pseudoallescheria boydii Blanco Común
Acremonium kiliensi Blanco Raro
Acremonium recifei Blanco Raro
Exophiala jeanselmei Negro Raro
Pyrenochaeta romeroi Negro Raro
Leptosphaeria senegalensis Negro Raro
Neostudina rosatii Negro Raro
Fusarium solani Blanco Raro
Epidemiología
Fuentes y vías de infección. Los microorganismos causales viven como saprófitos en la
naturaleza, en el suelo o en restos vegetales e ingresan al organismo humanos a través de algún
traumatismo, habitualmente una espina, aunque también pueden hacerlo mediante astillas de
madera, piedras, instrumentos metálicos, picaduras de insectos o mordeduras de animales.
Distribución. Es una enfermedad que existe en todo el mundo. Su distribución depende del
clima, el relieve del suelo, la precipitación fluvial y otros factores ecológicos. Es más frecuente
en países de clima tropical y subtropical. La mayor casuística corresponde a África ecuatorial.
Sudán registra 300-400 casos anuales. Los agentes más comunes son: M. mycetomatis, S.
somaliensis y A. pelletieri. México ocupa el segundo lugar de endemicidad, con condiciones
Micetoma 4
climáticas similares a la de África, pero difiere en los agentes etiológicos predominantes que son,
N. brasiliensis (86%) y A. madurae (10%). La tercera región endémica es en Madura, India, en
donde el 65% de los micetomas son actinomicóticos (A. madurae, N. brasiliensis y A. pelletieri)
y el 35 % restante corresponde a M. mycetomatis.
En la Argentina se han descrito muchos casos de micetomas, sobre todo en la zona Noroeste y
Centro de nuestro país (Salta, Jujuy, Tucumán, Santiago del Estero); N. brasiliensis y M. grisea
han sido los agentes más aislados.
Predomina en el sexo masculino, con proporción 4:1; se presenta en más del 60 % de los casos en
campesinos que andan descalzos, quienes están más expuestos a los traumatismos. La edad
promedio de presentación es entre los 20 y 50 años. El tiempo de evolución puede ser muy
variable, desde pocos meses hasta 50 años, siendo, en la mayoría de los casos, de 2 a 3 años. Se
considera que, si bien el estado nutricional, la higiene y el estado de salud influyen, la incidencia
de esta enfermedad depende más de la exposición al suelo y de los hábitos de trabajo del
paciente, por lo que puede considerarse como una enfermedad ocupacional.
En el Centro de Referencia de Micología (CEREMIC) en Rosario, en un período de 40 años
(1959-1998) se diagnosticaron 17 casos de micetomas: 10 eumicóticos (59 %) y 7
actinomicóticos (41 %). Las especies más aisladas fueron M. grisea (29,5 %) y N. asteroides
(17,6 %). Otros agentes aislados fueron: P. boydii, M. mycetomatis, F. solani, N. brasiliensis y A.
madurae. En el 100 % de los casos, la enfermedad fue observada exclusivamente en el pie y en
pacientes del sexo masculino. Es de destacar que la mayoría de éstos provenían de otras zonas
del país, generalmente de la región del norte argentino, que corresponde a la zona endémica de
nuestro país.
Cuadro clínico. Las partes descubiertas del cuerpo son las localizaciones más frecuentemente
involucradas; predominan las infecciones en el pie aunque puede observarse esta enfermedad en
rodilla, muslo, mano, antebrazo, brazo, hombro, pared abdominal, región pre-esternal y más
raramente cara o cabeza. La localización del micetoma tiene relación directa con el sitio de
inoculación.
Si bien pueden existir variaciones en el síndrome relacionadas con las diferentes etiologías, el
sitio anatómico afectado, el estado general del paciente y la duración de la lesión, las
características clínicas son, en forma esencial, las mismas. La lesión primaria se manifiesta por la
inflamación local, poco dolorosa del tejido subcutáneo en el lugar de inoculación. El cuadro
evoluciona lentamente hacia el reblandecimiento de la zona afectada donde posteriormente se
abren una o más fístulas a través de las cuales drena una secreción serosa, serosanguinolenta o
seropurulenta, con los gránulos característicos. Esta fístula puede curar de manera definitiva
Micetoma 5
(aparecen cicatrices fibrosas, hipo o hiperpigmentadas), puede dar una falsa cicatrización o puede
permanecer drenando. A medida que la enfermedad avanza se van abriendo nuevos trayectos
fistulosos.
Fig 1: Micetoma actinomicótico producido por Actinomadura madurae
Fig 2: Micetoma eumicótico producido por Madurella grisea
La evolución es lenta pero progresiva, sin regresión espontánea. La zona afectada aumenta de
volumen, se deforma, presenta un aspecto tumoral, con una consistencia dura de tipo leñoso. La
superficie está salpicada de muchas eminencias pequeñas, cada una de las cuales contiene el
Micetoma 6
orificio de una fístula. Muchas veces se advierte un borde mamelonado y carnosos en la boca de
las mismas (Fig 1 y 2). El microorganismo invade los tejidos más profundos destruyendo el
tejido conectivo subcutáneo, huesos (en algunos casos) y ligamentos, aunque más raramente
afectan tendones, músculos, y nervios.
Generalmente los micetomas actinomicóticos evolucionan más rápidamente que los eumicóticos
y los agentes actinomycetales son más osteofílicos, produciendo osteomielitis, osteoporosis e
hipertrofia con fusión de los huesos más pequeños. Puede haber discapacidad funcional del
miembro afectado por fibrosis de tejidos blandos, aumento de volumen o dolor, pero depende
sobre todo de la localización y es mayor cuando afecta a una articulación.
En la enfermedad eumicótica difícilmente haya diseminación hacia otras áreas cutáneas, en
cambio los agentes actinomicóticos (principalmente Nocardia brasiliensis) tienen gran tendencia
a diseminarse y provocar lesiones secundarias en otros sitios de la piel u órganos internos. Otras
diferencias entre los dos cuadros son los siguientes:
-Los agentes actinomicóticos producen lesiones más extensas y obliterantes en hueso, con
cambios tanto líticos como hipertróficos; durante el curso de la infección eumicótica, se presenta
lesión tardía del hueso con efectos líticos, pero no hipertróficos.
- Los actinomicetos invaden el músculo más rápidamente que los eumicetos
- Los agentes actinomicóticos causan proliferación celular, que contribuye a que los bordes sean
elevados alrededor de las fístulas, abiertas en la superficie cutánea. (Fig 1)
Diagnóstico diferencial. El micetoma presenta un cuadro típico que debe diagnosticarse
rápidamente. Se debe descartar la actinomicosis, producida principalmente por Actinomyces
israelii que presenta un cuadro semejante de induración firme, hinchazón y formación de
trayectos fistulosos con gránulos, pero el inicio de la enfermedad, la naturaleza endógena y el
cuadro clínico completo son característicos y forman una entidad clínica bien definida. La
nocardiosis generalizada con su infección primaria en pulmones y un curso clínico muy
diferente, conforma un cuadro clínico separado. Si el agente es Nocardia asteroides, no hay
gránulos. N. brasiliensis puede considerarse como agente de nocardiosis si el sitio primario
afectado es el tórax o los pulmones y la diseminación a otras áreas puede dar lugar a
“micetomas” en una gran variedad de órganos.
La botriomicosis (actinofitosis estafilocóccica) es una entidad que se parece fielmente al
micetoma, ya que produce hinchazón, granos y fístulas que drenan. Entre los agentes productores
se incluyen: Staphylococcus aureus, Pseudomona aeruginosa, Proteus spp., y posiblemente
Escherichia coli. El examen de los gránulos identifica rápidamente esta enfermedad.
Micetoma 7
Diagnóstico microbiológico.
Se basa en la descripción macro y microscópica de los gránulos, cultivos del material e
identificación de la cepa aislada.
Materiales: Pueden ser: pus o exudado obtenido por drenaje espontáneo o por presión de las
fístulas, que se deben recoger en gasa o recipiente estéril; o material de biopsia del trayecto
fistuloso. Generalmente se observan en estos materiales la presencia de gránulos que varían de
tamaño, de 300 a 2 mm o más, según el agente productor.
Estudio macroscópico de los gránulos. Se debe realizar el estudio de su morfología, textura,
color y aspecto (los más pequeños pueden observarse al microscopio o lupa) que en algunos
casos pueden contribuir a esclarecer la identidad del microorganismo causante.
Las características macroscópicas de los gránulos actino y eumicóticos correspondientes a los
distintos agentes etiológicos se resumen en las Tablas N° 2 y 3.
Examen microscópico directo de los gránulos. Se realiza con KOH y colorante Azul Cotton
(Gueguén). En el caso de un micetoma actinomicótico se puede observar el gránulo formado por
filamentos flexuosos muy finos, de 0,5 a 1 de diámetro, no tabicados, así como también
elementos cocoides y bacilares (Fig 3). Si es un micetoma eumicótico, se observa el gránulo
formado por filamentos hialinos o pigmentados, de 2 a 5 y la presencia de células grandes, de
15 o más, en la periferia (Fig 4).
Las características macro y microscópicas de los gránulos actino y eumicóticos correspondientes
a los distintos agentes etiológicos se resumen en las Tablas N° 2 y 3.
Coloraciones. Gram-Nicolle: es de utilidad para describir la macromorfología de los elementos
actinomicóticos que pueden aparecer como formas filamentosas flexuosas, bifurcadas o
ramificadas y microsifonadas, Gram (+) y rodeados de un matriz Gram (-). La coloración de
Kinyoun se utiliza para poner en evidencia la ácido-resistencia de los elementos actinomicóticos.
En un corte del material de biopsia que contenga los gránulos, coloreado con hematoxilina-
eosina, se observa el centro de los granos actinomicóticos un color claro, poco organizado, luego
una zona de basofilia y eosinofilia en la periferia. (Fig 3) Algunas especies pueden presentar
mazas en la periferia que es un material fuertemente eosinófilo que da lobulaciones.
Micetoma 8
En el corte de un grano eumicótico teñido con H-E se observa un entrelazado de hifas con
características propias de acuerdo a cada agente etiológico (Fig 4). En el caso de Madurella
grisea los filamentos están incluidos en una sustancia amorfa y pigmentada llamada cemento.
Fig 3: Grano actinomicótico – HE-100x
Fig 4: Grano eumicótico – HE - 400x
Micetoma 9
Tabla N° 2: Micetoma Actinomicótico. Características macro y micromorfológicas de
gránulos y colonias.
Especie Gránulo Histología (H-E) Morfología de la
colonia
Morfología
microscópica Nocardia
asteroides
Blanco, blando
suave, amorfo, 1
mm
Grupos de filamentos
homogéneos, forman una
malla laxa., mazas raras
Crecimiento rápido
a 37 ºC, plegada, no
vellosa amarillo-
naranja
Microfilamentos no
ramificados, que se
fragmentan en
bastones cortos y cocos,
acidorresistentes
Nocardia brasiliensis
Blanco a amarillo,
lobulado, blando,
suave, 1 mm
Igual al anterior, mazas comunes.
Crecimiento rápido a 30 ºC, plegadas,
no vellosa amarillo-
naranja
Microfilamentos no ramificados, que se
fragmentan en
bastones cortos y
cocos, acidorresistentes
Nocardia otitidiscaviarum
Ídem que el
anterior
Igual al anterior, mazas
comunes.
Crecimiento rápido
a 30 ºC, plegadas, no vellosa amarillo-
naranja
Microfilamentos, no
ramificados, que se fragmentan en
bastones cortos y
cocos,
acidorresistentes
Actinomadura
madurae
Blanco a
Rosado, oval a
lobulado suave, grande, 5mm
Centro vacío, amorfo,
cubierta periférica densa,
basófila, amplio borde rosado, margen laxo, con
flequillo de filamentos,
mazas, sin cemento
Crecimiento rápido
a 37 ºC, blanca a
crema, rugosa, no vellosa.
Microfilamentos
delicados, largos
sinuosos que no se fragmentan,
ramificados, no
acidorresistente
Actinomadura pelletieri
Rojo, duro, pequeño, oval a
lobulado, 1 mm
Redondo, homogéneo, coloración negra, banda
periférica clara, no hay
mazas, sin cemento
Crecimiento lento a 37 ºC, pequeña,
seca, no vellosa,
adherente, clara a rojo granate
Microfilamentos delicados,
ramificados, sin
fragmentar, ramificados, no
acidorresistentes
Streptomyces
somaliensis
Amarillo, duro,
redondo a oval, grande 2 mm
Tamaño variable, centro
amorfo, púrpura claro, con manchas rosadas,
filamentos negros en el
borde entero sin mazas,
tiene cemento
Crecimiento rápido
a 30 ºC, crema a pardo, rugoso, no
vellosa
Microfilamentos
delicados ramificados sin
fragmentar, produce
esporas, no
acidorresistentes
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Tabla N° 3: Micetoma eumicótico. Características macro y micromorfológicas de
gránulos y colonias.
Especie Gránulo Histología (H-E) Morfología de
la colonia
Morfología microscópica
Pseudoallescheria
boydii Blanco, suave,
oval a lobulado, < 2
mm
Hifas hialinas, 5 , cél. hinchadas
enormes, < 20 , sin cemento, bordes
rojos, periferia rosada
Crecimiento
rápido a vellosa blancuzco a gris
Hifas hialinas, finas,
aneloconidios unicelulares, grandes, en forma de limón,
sobre hifas o anelóforos simples
(Fig 1), cleistotecios oscuros. Anam.: Scedosporium
apiospermum y Graphium
Madurella
grisea
Negro, suave a
firme, oval a lobulado, < 1
mm
Poca sustancia
cementante oscura en bordes, células
poligonales en
periferia, filamentos hialinos en centro
Crecimiento muy
lento (Tº optima a 30ºC), canela a
gris, afelpada a
vellosa, pigmento oscuro difusible a
30ºC
Micelio estéril, presencia
aislada de clamidoconidios. (Fig 2)
Madurella
mycetomatis
Negro, firme a
quebradizo, oval a
lobulado, < 1
m, pueden estar
agregados
1-Tipo compacto con
cemento pardo 2-Tipo compacto con
cemento pardo en el
borde, células < 15
Crecimiento muy
lento (Tº optima 37ºC), vellosa,
aterciopelada,
crema a ocre
En cultivos viejos se ven
esclerotes negros < 2mm, en AHM muy aislados conidios, en
fialides pequeñas. (Fig 3)
Pyrenochaeta
romeroi
Negros,
blandos y de forma tubular,
de 0,5 a 1,5
Centro vacío,
amorfo, cubierta periférica de células
poligonales
Crecimiento
rápido a 30ºC, colonia vellosa,
lanosa, negro
grisácea, periferia clara
Hifas hialinas y pardas,
picnidios ostiolados parduscos, conidios elípticos hialinas a
amarillo oscuro, nacen en
fialides dentro de picnidios
Exophiala
jeanselmei
Negro, suave,
irregular a
vermicular, de tamaño
variable
Centro del gránulo
hueco sin sustancia
cementante, células
vesiculares < 10
Crecimiento lento,
negra, 1º húmeda
luego aterciopelada,
reverso negro
1º células levaduriformes,
anelides largas tubulares,
conidias variables en tamaño, alargadas.
Leptosphaeria
senegalensis
Negro, suave,
irregular, 1 a 2
mm
Hifas negras y
sustancia de cemento
en la periferia, centro hialino.
Crecimiento
rápido, gris,
velloso, reverso negro, pigmento
difusible
En AHM se forma ascostroma
negro, < 300 , ascosporas alargadas a ovales tabicadas.
Neotestudina
rosatti
Blanco a
pardusco, suave, < 1 mm
Poliédricos con
filamentos encajados en la sustancia
cementante en la
periferia. Algunas vesículas en el centro
basófilo
Crecimiento lento,
plegada, compacta, color
canela a pardo,
reverso dematiáceo, Tº
optima a 30ºC
No hay conidios. Se producen
ascos en ascostromas no ostiolados esféricos a ovales
(350 ), ascosporas negras, curvilíneas, de dos células
Micetoma 11
Cultivos. Para los cultivos el mejor material es una biopsia profunda, dado que está libre de
bacterias y de hongos contaminantes. El criterio a seguir con los cultivos de la muestra, depende
de lo observado en el examen directo.
Micetomas eumicóticos
Las muestras o gránulos que contienen eumicetos se pueden lavar en solución salina que
contenga antibiótico (excepto cicloheximida) y sembrar en medio Agar Sabouraud y Agar
Sabouraud-cloranfenicol, e incubar a 28 ºC. El crecimiento de los agentes eumicóticos puede ser
lento por lo que los cultivos no deben descartarse hasta las seis semanas. La identificación se
realiza a través de la macromorfología y la micromorfología de las colonias, principalmente por
las características del micelio vegetativo y la producción de conidios (que se puede estimular con
la utilización de medios naturales, como agar papa zanahoria y agar harina de maíz). En la Tabla
N° 3 figuran las principales características macro y micromorfológicas de los hongos productores
de micetomas.
Fig 1: Pseudoallescheria boydii
Fig 2: Madurella grisea
Micetoma 12
Fig 3: Madurella mycetomatis
Micetomas actinomicóticos
Los gránulos actinomicóticos se deben lavar varias veces con solución fisiológica estéril y se
siembran en los medios apropiados como agar sangre o infusión cerebro–corazón, Lowestein-
Jensen, medio Czapek sin sacarosa con rifocina y anzuelo de parafina; las cepas de Nocardia
crecen bien en Agar Sabouraud-extracto de levadura (AS-EL) El medio no debe contener
antibióticos. Se deben sembrar varias placas o tubos e incubarse a 37ºC. Las cepas de Nocardia
son de crecimiento rápido, no así las de Actinomadura que a menudo desarrollan después de
cuatro semanas de incubación.
Pruebas de identificación de actinomycetales aeróbicos: Las consideraciones para la
identificación de los actinomicetos aeróbicos son en primer lugar, la composición de la pared
celular, en segundo lugar la morfología de la colonia y de sus filamentos, y por último, las
reacciones fisiológicas. La micromorfología de la colonia se usa para determinar la presencia de
micelio aéreo, su color, ramificación, fragmentación y si la hay, formación de esporos.
1-Composición de la pared celular
El análisis de la pared celular es un requerimiento único en este misterioso grupo de
microorganismos. Muchas especies de Nocardia, Streptomyces, Actinomadura, etc., son muy
variables en su morfología y aún en su fisiología. Así que lo primero que se considera para su
clasificación es la composición química de su pared (Tabla N° 4). Son pruebas laboriosas que
requieren equipamiento especial y experiencia. En un principio los estudios se basaron en las
diferencias en la composición de aminoácidos de la pared celular, pero luego se encontró que la
composición de lípidos polares de la pared, podían distinguir los diferentes grupos de
actinomicetos. Las paredes celulares de todos los actinomicetos contienen glucosamina, ácido
murámico, alanina y ácido glutámico. Además, se encuentran como componentes importantes en
Micetoma 13
los grupos respectivos: (I) ácidos LL-diaminopimélico (DAP) y glicina; (III) meso-DAP; (IV)
meso-DAP, arabinosa y galactosa.
Tabla Nº 4: Constituyentes de la pared celular en relación con la Taxonomía
Tipo de pared Componentes
principales en la pared
Tipo celular
completo Género
I LL-DAP, glicina Glicina Streptomyces
Nocardioides
II meso-DAP, glicina Xilosa
Arabinosa Micromonospora
III meso-DAP
Madurosa
Galactosa Ninguno
Actinomadura
Dermatophilus Microbispora
Nocardiopsis
Thermoactinomyces Geodermatophilus
IV meso-DAP Arabinosa
Galactosa
Nocardia
Rhodococcus
Corynebacterium Mycobacterium
V Lisina, Ornitina Ácido aspártico Actinomyces
VI Lisina, ac aspártico,
galactosa Oerskovia
2-Morfología
El estudio de la morfología se realiza preparando cultivos en portaobjetos (lámina gelosada) en
medios proteínicos o pobres. La incubación se extiende entre de 10 a 14 días a temperatura a 30-
37ºC. En un medio proteínico se ha observado: color del micelio aéreo, morfología del micelio
vegetativo (la ramificación y la fragmentación de los microfilamentos y las esporas), producción
de pigmento difusible y no difusible.
3-Pruebas fisiológicas
La descomposición de los aminoácidos y de las proteínas, así como la utilización de los azúcares,
es un elemento importante en la identificación de actinomicetos aeróbicos. Después de haber
seleccionado una colonia aislada de la primera siembra, se hace un subcultivo en agar cerebro
corazón (sin añadir azúcares). Después que ha habido crecimiento suficiente, se hacen estrías en
un cuadrante de placa de Petri conteniendo medio con: tirosina, xantina, hipoxantina y caseína,
en estas placas se deben incorporar controles positivos y negativos. Dichas pruebas se incuban a
temperatura ambiente durante dos semanas (en caso de caseina), tres semanas (en caso de
xantina) y cuatro semanas (en caso de tirosina). Se pueden acelerar los resultados en algunos
casos incubando las pruebas a 35 ºC. Una combinación de estas y otras pruebas, permite separar
las diferentes especies de Nocardia, Actinomadura y Streptomyces. (Tabla N° 5).
Micetoma 14
En los últimos tiempos se han propuesto una serie de métodos de identificación de
actinomicetales aeróbicos fundamentados en la identificación de enzimas preformadas o en el
uso de equipos comerciales generados para otros fines, como lo son los equipos API para
bacterias o levaduras; pero que han demostrado tener aplicación a estos efectos, aunque hasta el
momento estas pruebas solo son de aplicación a un número reducido de especies, pero
afortunadamente son las más frecuentemente aisladas en muestras clínicas.
Serología.
La infección por actinomicetos y eumicetos induce una respuesta inmune humoral. Los
anticuerpos no tienen una función protectora pero pueden ser utilizados para los procedimientos
de diagnóstico (inmunodifusión en eumicetos) y prueba de ELISA en el caso de
actinomicetomas. No se han establecido aún, procedimientos serológicos normatizados para el
diagnóstico o pronóstico de micetomas. Entre los numerosos estudios realizados al respecto, se
han logrado separar fracciones de polisacáridos en algunos actinomicetales, como Nocardia
brasiliensis, con las que se demuestran anticuerpos precipitantes y una específica reacción
cutánea, pero sólo con fines de investigación. Utilizando la prueba de ELISA se detectaron
anticuerpos contra antigenos inmunodominantes intra citoplasmáticos de 24 y 26 kDa de
Nocardia brasiliensis; este estudio serológico se empleó para confirmar el diagnóstico en
pacientes y dar seguimiento a la terapéutica ya que los niveles de anticuerpos disminuyen cuando
la infección responde satisfactoriamente a la terapéutica.
Tabla N° 5
Micetoma 15
Tratamiento:
Es dificultoso por la baja penetración de ATB en tejido fibrosado.
- Micetoma Eumicótico:
- Itraconazol: 400mg/dia- 6 a 18 meses
- Posaconazol: 800mg/día 18 a 32 meses (no disponible)
- Cirugía conservadora (si no tiene lesión ósea): se extrae todo el micetoma con margen de
seguridad que es reemplazado por tejido de granulación+transplante de piel.
- Bajo índice de curación: solo el 30% de los pacientes se curan y el 33% presentan mejoría.
- Micetoma Actinomicótico:
- Trimetroprima-sulfametoxazol : 80-40 mg/ kg/día, meses a años
- Clotrimazol-ciprofloxacina (tiene + penetración ósea): 750mg/día por más de 1 año.
Bibliografía
- Mujica M.T., Biasoli M. y Bracalenti B.J.C. de: "Aislamiento y estudio de Pseudoallescheria
boydii de un micetoma podal". Rev. Argent. Micol. 1984, 7: 21-23.
- Biasoli M.S., Alvarez D.P. y Bracalenti B.J.C. de: "Study of a Madurella grisea isolated from a
foot mycetoma". Mycopathologia 1986, 94:117-121.
- Ramos, L; Luque, A. & Alvarez , D. 1986. Aislamiento e identificación de Madurella
mycetomatis de un micetoma podal. Bol Micológico; 3 (1):5-8.
- Rippon J.W. 1990. Micología Médica. Hongos y Actinomicetos patógenos. Tercera edición.
Interamericana Mc Graw-Hill., México, 574-628.
- Luque, A.; Mujica, M. T. & D´Anna, L. 1991. Micetoma podal por Fusarium solani. Bol
Micológico;6(1-2):55-57.
- Kwong-Chung K.J., Bennet M.D. 1992. Medical Micology. Lea & Febiger. Philadelphia -
London, 280-336.
- Gómez, C. et al. 1995. Micetoma podal a Madurella grisea. Acta de resúmenes VII Congreso
Argentino de Micología, XVII Jornadas Argentinas de Micología, Rosario, Argentina. 101-102.
- Gómez, C.R. y Biasoli, M.S. 1999. Diecisiete casos de Micetomas Actino y Eumicóticos en
Rosario, Argentina (1959-1998). Boletín Micológico 14 (1-2): 13-17.
- Salinas MC, Vera L, Welsh O, Rodríguez M. Antibody response to Nocardia brasiliensis
antigens in man. Zbl Bakt 1992, 276: 390-397.
- Vera LC, Salinas MC, Welsh O, Rodríguez M. Isolation and purification of two
immunodominat antigens from Nocardia brasiliensis. J Clin Microbiol 1992, 30: 1183-1188.
Micetoma 16
- Salinas MC, Casillas S, Welsh O, An ELISA for serological diagnosis of Nocardia brasiliensis
in clinical correlation of mycetoma infection J Clin Micribiol 1993, 31: 2901-2906.
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