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DR. CARLOS RAFAEL CABARRÚS PELLECER, S. J.
DRA. MARTA LUCRECIA MÉNDEZ GONZÁLEZ DE PENEDO
DR. EDUARDO VALDÉS BARRÍA, S. J.
LIC. ARIEL RIVERA IRÍAS
LIC. FABIOLA DE LA LUZ PADILLA BELTRANENA DE LORENZANA
SECRETARIA GENERAL:
VICERRECTOR ADMINISTRATIVO:
VICERRECTOR DE INTEGRACIÓN UNIVERSITARIA:
VICERRECTOR DE INVESTIGACIÓN Y PROYECCIÓN:
P. ROLANDO ENRIQUE ALVARADO LÓPEZ, S. J.
VICERRECTORA ACADÉMICA:
RECTOR:
AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD RAFAEL LANDÍVAR
AUTORIDADES DE LA FACULTAD DE CIENCIAS AMBIENTALES Y AGRÍCOLAS
DECANO: DR. ADOLFO OTTONIEL MONTERROSO RIVAS
VICEDECANO: ING. MIGUEL EDUARDO GARCÍA TURNIL
SECRETARIA: ING. REGINA CASTAÑEDA FUENTES
DIRECTOR DE CARRERA: ING. LUIS FELIPE CALDERÓN BRAN
TERNA QUE PRACTICÓ LA EVALUACIÓN
NOMBRE DEL ASESOR DE TRABAJO DE GRADUACIÓNDR. MAX MYROL RUBELSY GONZÁLEZ SALÁN
MGTR. ADÁN OBISPO RODAS CIFUENTES MGTR. LUIS AMÉRICO MÁRQUEZ HERNÁNDEZ
ING. LUIS FELIPE CALDERÓN BRAN
INDICE
Página
I INTRODUCCION 1
II MARCO TEORICO 2
2.1 Importancia del cultivo en Guatemala 2
2.1.1 Oferta de chile jalapeño en Guatemala 3
2.1.2 Demanda de chile jalapeño en Guatemala 3
2.2 Importancia de la producción de chile en la región 6
2.2.1 Características del híbrido 'Rey' 7
2.2.2 Condiciones edafoclimáticas de La Nueva Concepción, Escuintla
7
2.2.3 Densidades de siembra en La Nueva Concepción, Escuintla 7
2.2.4 Proceso de cosecha de chile en La Nueva Concepción, Escuintla
8
2.2.5 Nutrición vegetal del híbrido 'Rey' en La Nueva Concepción Escuintla
8
2.3 Fenología y manejo de Inductores de floración 9
2.3.1 Fisiología del cultivo de chile jalapeño 9
2.3.2 Manejo de floración y fructificación 10
2.3.3 Especificaciones de floración del cultivo 10
2.3.4 Inductores comerciales de floración y sus usos 11
2.4 Importancia agrícola de las citoquinias y giberelinas 13
2.4.1 Citoquininas 13
2.4.3 Giberelinas 14
2.5 Importancia de micronutrientes presentes en los inductores 15
2.5.1 Boro (B) 15
Página
2.5.2 Cobre (Cu) 16
2.5.3 Hierro (Fe) 16
2.5.4 Manganeso (Mn) 17
2.5.5 Molibdeno (Mo) 17
2.5.6 Zinc (Zn) 17
2.6 Recomendaciones de cosecha del chile jalapeño 18
III PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA 19
3.1 Definición del problema y justificación del trabajo 19
IV OBJETIVOS 21
4.1 Objetivo general 21
4.2 Objetivos específicos 21
V HIPOTESIS 21
VI METODOLOGIA 22
6.1 Localización de la evaluación 22
6.2 Materiales experimentales utilizados 22
6.3 Descripción de los tratamientos 23
6.4 Diseño experimental 24
6.5 Modelo estadístico del diseño experimental 24
6.6 Unidad experimental 24
6.7 Croquis de campo 25
6.8 Manejo del experimento 25
6.8.1 Preparación de terreno 25
6.8.2 Establecimiento y delimitación de las parcelas 26
Página
6.8.3 Trasplante del cultivo 26
6.8.4 Manejo agrícola y fitosanitario del cultivo 26
6.8.5 Aplicación de inductores de floración 27
6.9 Variables respuestas 28
6.10 Análisis de la información 29
VII RESULTADOS Y DISCUSION 30
7.1 Precocidad de floración de los tratamientos 30
7.2 Rendimiento del fruto (kg/ha) 34
7.2.1 Rendimiento (kg/ha) según categorías de calidad 37
7.3 Periodo de cosecha 39
7.4 Análisis comparativos de tratamientos 42
VIII CONCLUSIONES 44
IX RECOMENDACIONES 45
X BIBLIOGRAFIA 46
XI ANEXOS 48
INDICE DE CUADROS DE CONTENIDO
Cuadro Titulo Página
1 República de Guatemala, oferta histórica y proyectada de chile
jalapeño, periodo 2002-2011 (toneladas). 3
2 República de Guatemala, demanda potencial histórica y proyectada
de chile jalapeño, periodo 2002-2011 (toneladas). 4
3 República de Guatemala, consumo aparente histórico y proyectado
de chile jalapeño, periodo 2002-2011 (toneladas). 5
4 República de Guatemala, demanda insatisfecha histórica y
proyectada de chile jalapeño, periodo 2002-2011 (toneladas). 6
5 Cantidad en kg/ha de fertilizante aplicado 8
6 Clasificación de calidad de fruto de chile jalapeño hibrido 'Rey' 19
7 Tratamientos de inducción de floración en chile jalapeño evaluados en
La Nueva Concepción, Escuintla. 23
8
Análisis de varianza para la variable, precocidad de floración en chile
jalapeño en la evaluación de inductores de floración, Nueva
Concepción, Escuintla.
31
9
Prueba de medias Duncan, para la variable DDA, precocidad en
floración, en la evaluación de inductores de floración, Nueva
Concepción, Escuintla.
31
10 Precocidad de floración promedio de los días después de trasplante,
por tratamiento. 33
11
Análisis de varianza para la variable rendimiento de fruto (kg/ha) de
chile jalapeño en la evaluación de inductores de floración, Nueva
Concepción, Escuintla.
34
12
Prueba de medias Duncan, para rendimiento total de fruto de cinco
cosechas comerciales (kg/ha) en la evaluación de inductores de
floración, Nueva Concepción, Escuintla
35
13 Rendimiento (kg/ha) de fruto de chile jalapeño de tres tratamiento de
aplicación de inductores de floración 36
Página
14
Análisis de varianza para el rendimiento (kg/ha) según primera
categoría de calidad en fruto de chile jalapeño en la evaluación de
inductores de floración, Nueva Concepción, Escuintla.
37
15
Prueba de medias Duncan, para la variable de primera en calidad de
los frutos de chile jalapeño, en la evaluación de inductores de
floración, Nueva Concepción, Escuintla
38
16 Análisis de varianza para la variable, periodo de cosecha en chile
jalapeño, Nueva Concepción, Escuintla. 40
17
Prueba de medias Duncan, para la variable periodo de cosecha en
chile jalapeño en la evaluación de inductores de floración, Nueva
Concepción, Escuintla.
41
18 Cuadro comparativo entre los tratamientos sobre salientes, según
las variables respuestas 42
INDICE DE FIGURAS
Figura Título Página
1 Distribución al azar de los tratamientos sobre inducción floral en
chile jalapeño, evaluados en La Nueva Concepción, Escuintla 25
2 Rendimiento (kg/ha) por cada cosecha comercial 39
INDICE DE ANEXO
Anexo Título Página
1 Cronología del desarrollo del proyecto 48
2 Clasificación de calidad del fruto 51
3 Análisis de varianza para las variables respuestas 51
4 Cronograma de trabajo 52
5 Resumen financiero de costos de producción 53
EFECTO DE TRES INDUCTORES FLORALES EN CHILE JALAPEÑO (Capsicum
annuum L. Solananceae, Hibrido 'Rey') SOBRE EL RENDIMIENTO Y CALIDAD DE FRUTA EN LA REGION SUR DE ESCUINTLA
RESUMEN
El objetivo del estudio fue evaluar tres inductores de floración a tres diferentes dosis, y sus efectos sobre el rendimiento y calidad del fruto de chile jalapeño, para comercialización nacional, mediante la aplicación de inductores comerciales de floración. La investigación se realizó en el parcelamiento de La Nueva Concepción, Escuintla. Los productos y las dosis evaluadas fueron: Florone (precursor de citoquinina) a dosis baja (0.30 ml/L), recomendada (0.60 ml/L) y alta (0.90 ml/L), Maxiboost (precursor de citoquinina y giberelina) a dosis baja (0.75 L/ha), recomendada (1.50 L/ha) y alta (2.25 L/ha) y Newfol-plus (precursor de ácidos orgánicos) a dosis baja (5 L/ha), recomendada (10 L/ha) y alta (15 L/ha). El diseño experimental utilizado fue completamente al azar, con diez tratamientos y tres repeticiones. Las variables respuestas fueron: Precocidad de floración expresada en días después de trasplante, rendimiento biológico total (kg/ha) en las cinco cosechas comerciales y periodo biológico de cosecha, expresado en días de cosecha. Los resultados obtenidos indicaron que la aplicación de Newfol-plus a dosis recomendada y Florone a dosis baja, da una precocidad en floración en el 50% de las plantas a los 49 días después del trasplante. La aplicación de Maxiboost a dosis recomendada expresa el mayor rendimiento (2245 kg/ha) en un periodo productivo de cinco cosechas. La aplicación de Newfol-Plus a dosis recomendada expresó el mayor rendimiento en fruto clasificado en primera calidad (570 kg/ha). La aplicación de Newfol-plus a dosis recomendada y Florone a dosis baja, concentró la producción en los 113 días después de floración, demostrando que el uso de inductores beneficiará según las necesidades de los agricultores, mejorando sus producciones y ganancias.
EFFECT OF THREE FLOWER INDUCERS IN JALAPENO PEPPER (Capsicum annuum L. Solananceae, Hibrido 'Rey') ON THE YIELD AND FRUIT QUALITY, INTHE SOUTH
REGION OF ESCUINTLA
SUMMARY
The objective of this study was to evaluate three flowering inducers at three different doses, and their effects on the yield and fruit quality of jalapeno pepper for national marketing through the application of commercial flowering inducers. The research was carried out in the agricultural plot of La Nueva Concepción, Escuintla. The products and evaluated doses were: Florone (cytokines precursor) at a low dose (0.30 ml/L), recommended (0.60 ml/L) and high (0.90 ml/L); Maxiboost (cytokines and gibberellins precursor) at a low dose (0.75 L/ha), recommended (1.50 L/ha) and high (2.25 L/ha); and, Newfol-plus (organic acid precursor) at a low dose (5 L/ha), recommended (10 L/ha) and high (15 L/ha). A complete randomized block design was used, with ten treatments and three replicates. The response variables were: flowering precocity expressed in days after the transplant, total biological yield (kg/ha) in the five commercial harvests and biological harvest period, expressed in harvest days. The results obtained indicated that the application of Newfol-plus at the recommended dose and Florone at a low dose allow flowering precocity in about 50% of the plants at 49 days after the transplant. The application of Maxiboost at the recommended dose shows the highest yield (2245 kg/ha) in a productive period of five harvests. The application of Newfol-Plus at the recommended dose showed the highest yield of first-quality fruits (570 kg/ha). The application of Newfol-plus at the recommended dose and Florone at a low dose obtained the higher production 113 days after flowering, demonstrating that the use of inducers will satisfy the need of farmers, improving their productions and profit.
1
I. INTRODUCCION
La producción de chile jalapeño (Capsicum annuum L., Solananceae), híbrido 'Rey', se
ha convertido en una fuente económica para los horticultores. A nivel nacional se
siembran mil cuatrocientos hectáreas; en la región sur de Guatemala siembran un
promedio de cuatrocientas hectáreas, distribuidas en los departamentos de
Suchitepéquez, Santa Rosa y Escuintla. La Nueva Concepción, Escuintla siembra
aproximadamente cincuenta hectáreas anuales, donde más de ciento cincuenta familias
dependen de la producción de este cultivo y unas doscientas familias de manera
indirecta (Santizo, 2010).
Sin embargo, la falta de conocimiento e implementación de nuevas tecnologías, ha sido
una limitante para lograr obtener producciones económicamente rentables y productos
aceptables en el mercado. Esto ha provocado que el cincuenta por ciento de los
productores desistan de la producción del cultivo, ya que sus rendimientos son bajos,
mil cuatrocientos kg/ha promedio, la floración y fructificación del chile es espaciada y
dispersa. A la fecha se realizan entre ocho y diez cortes por cosecha, con diferentes
tamaños de fruto. En vista de ello, el reto de los productores de la región es adoptar
nuevas tecnologías, que les permitan mejorar el tamaño de los frutos y concentrar en un
menor periodo de tiempo la cosecha.
La presente investigación aporta propuestas de solución para mejorar rendimientos,
concentrar cosechas y lograr mejor uniformidad de frutos en cada corte. Esto
incentivará a los productores a tecnificar la producción de chile jalapeño híbrido 'Rey'
en la región sur. Por ende, será beneficiada la comunidad productora, quienes
mejorarán sus ganancias, cumpliendo con la exigencia del mercado. Además,
generarán más y nuevas fuentes de empleo se evaluó la respuesta del chile a la
aplicación de tres inductores de floración, de estos se incluyeron tres dosis, las cuales
fueron aplicados foliarmente sobre las plantas de chile jalapeño. La evaluación
pretendió determinar los efectos de los tratamientos sobre, la precocidad de la floración,
sobre el rendimiento biológico y sobre el período biológico productivo.
2
II. MARCO TEORICO
2.1 IMPORTANCIA DEL CULTIVO DE CHILE EN GUATEMALA
Guatemala es un país en vías de desarrollo. Su economía es la décima a nivel
latinoamericano. El sector más grande en la economía guatemalteca es la agricultura,
Los sectores que más aportes generan al PIB en Guatemala son:
agricultura, ganadería y pesca. El sector agrícola conforma un cuarto del PIB, dos
tercios de las exportaciones, y la mitad de la fuerza laboral. El país destaca por el
cultivo de productos agrícolas no tradicionales como brócoli, arveja china, col de
brúcelas, ajonjolí, espárragos y chile (Paxtor, 2011).
La agricultura sigue siendo el sector productivo con mayor importancia para Guatemala.
El 61% de la población habita en el área rural y depende de esta actividad para
satisfacer sus necesidades de ingresos; la población económica activa agrícola
constituye el 58.6% del total, es decir alrededor de 1.86 millones de personas laboran
en el sector. El 23.85% del PIB es generado en el sector agropecuario y aún aporta el
61.5 % de las divisas por exportaciones (Paxtor, 2011).
En el país se cultivan mil cuatrocientas hectáreas de chile jalapeño, producción que se
concentra en los departamentos de Suchitepéquez, Retalhuleu, Jutiapa, Jalapa,
Escuintla, Santa Rosa y Zacapa. El ingreso anual promedio por esta producción es de
veinte millones de quetzales (Paxtor, 2011).
La venta y comercialización del fruto de chile jalapeño están distribuidas de la siguiente
manera: 10% destinado a la exportación donde el mayor importador es El Salvador;
40% a la industria, la mayor demanda es Malher y el 50% al mercado cantonal, donde
la mayor demanda es CENMA (Serapio, 2011)
3
2.1.1 Oferta de chile jalapeño
En el estudio realizado por Serapio (2011), se determinó la oferta nacional de chile
jalapeños, mediante la producción nacional e importaciones, en un periodo de diez
años, registrando un incremento promedio de 2% anual, en el periodo evaluado el
incremento en la oferta es del 20%. En el cuadro 1 se muestra la oferta de chile
jalapeño.
Cuadro 1. República de Guatemala, oferta histórica y proyectada de chile jalapeño, periodo 2002-2011 (toneladas)
Años Producción Importaciones
Oferta total
2002 1106 103 1209 2003 1121 343 1464 2004 1140 309 1449 2005 1159 178 1337 2006 1178 318 1496
2007 a 1197 356 1552 2008 1216 393 1609 2009 1235 431 1666 2010 1254 468 1722 2011 1273 506 1779
a Cifras proyectadas método de mínimos cuadrados donde Yc = a+b
a x que para la producción nacional al 2007 es x=7, a=23049, b=418 para
importaciones x=4, a=1830, b=219 Fuente: Elaboración propia, con base en datos del Banco de Guatemala, Departamento estadístico,
Boletín Estadística Agrícola Continua 2005.
(Serapio, 2011).
2.1.2 Demanda de chile jalapeño
Demanda potencial histórica y proyectada de chile en Guatemala
En el estudio realizado por Serapio (2011), se determinó el efecto progresivo que
muestra la demanda potencial es en promedio 4% anual en el periodo evaluado el
incremento en la demanda histórica es del 40%.
4
Derivado del crecimiento poblacional; sin olvidar los usos en la industria de alimentos,
situación que fomenta el consumo. El cuadro 2 muestra la demanda potencial de chile
jalapeño en un periodo de diez años.
Cuadro 2. República de Guatemala, demanda potencial histórica y proyectada de chile jalapeño, periodo 2002-2011 (toneladas)
Años Población 1 Población
Delimitada (8%)
Consumo per cápita 2
(kg)
Demanda Potencial (T)
2002 11237196 898976 3.18 2860 2003 11726996 938160 3.18 2985 2004 12238146 979052 3.18 3115 2005 12771575 1021726 3.18 3251 2006 13328256 1066260 3.18 3392
2007 a 13909200 1112736 3.18 3540 2008 14515466 1161237 3.18 3694 2009 15148158 1211853 3.18 3856 2010 15808427 1264674 3.18 4024 2011 16497476 1319798 3.18 4199
a Cifras proyectadas según formula S=P (1+i), donde P= 11237196 i=0.043587, n= 5.
1 Cifra proyectada con base histórico INE, X Censo Nacional
de población y V de habitación, Elaboración propia, con base en datos del Banco de Guatemala, Departamento estadístico, Boletín Estadística
Agrícola Continua 2005. 2
Investigación de campo Grupo EPS, Primer semestre 2006 Fuente propia con base en datos del Instituto Nacional de
Estadística INE X Censo Nacional de Población y V de Habitación e Instituto de Nutrición de Centroamérica y Panamá INCAP.
(Serapio, 2011).
Consumo aparente histórico y proyectado
En el estudio realizado por Serapio (2011), se determinó, que el consumo aparente
histórico y proyectado tiene un incrementó del 7% anual, en el periodo evaluado el
incremento en el consumó aparente histórico es 70%.
Siendo necesario incrementar la producción nacional, para abastecer los diferentes
mercados sin necesidad del ingreso de producto del exterior por importaciones. El
cuadro 3 muestra el consumo aparente de chile jalapeño, en un periodo de diez años.
5
Cuadro 3. República de Guatemala, consumo aparente histórico y proyectado de chile jalapeño, periodo 2002-2011 (toneladas)
Años Producción Importaciones Exportaciones Consumo aparente
2002 1106 103 47 1162 2003 1121 343 70 1394 2004 1140 309 75 1374 2005 1159 178 92 1244 2006 1178 318 107 1389
2007 a 1197 356 121 1431 2008 1216 393 135 1474 2009 1235 431 149 1516 2010 1254 468 164 1558 2011 1273 506 178 1601
a Cifras proyectadas método de mínimos cuadrados donde Yc =a+b
a x donde a= 1408, b= 314 x=4 Fuente: Elaboración propia, con base en
datos, Boletín Estadística Agrícola Continua 2005. Departamento de Estadística del Banco de Guatemala.
(Serapio, 2011).
Demanda insatisfecha histórica y proyectada
En el estudio realizado por Serapio (2011), se determinó, que el promedio de
incremento de la demanda insatisfecha 6% anual, en el periodo evaluado el incremento
en la demanda insatisfecha es del 60%.
El crecimiento poblacional es un factor favorable para el incremento de la demanda
potencial y por los atributos que muestra el producto al convertirse en ingrediente
potencial de la industria de alimentos.
De acuerdo con Serapio (2011), en sus estudios demuestra que existe la necesidad de
abastecer el mercado, que los incrementos en la demanda son aun insatisfechos siendo
necesario poder aumentar las producciones nacionales. En el cuadro 4 se muestra la
demanda insatisfecha histórica de chile jalapeño en un periodo de diez años.
6
Cuadro 4. República de Guatemala, demanda insatisfecha histórica y proyectada de chile jalapeño, periodo 2002-2011 (toneladas)
Años Demanda Potencial Consumo aparente Demanda
Insatisfecha
2002 2860 1162 1698 2003 2985 1394 1590 2004 3115 1374 1741 2005 3251 1244 2006 2006 3392 1389 2003
2007 a 3540 1431 2109 2008 3694 1474 2221 2009 3856 1516 2339 2010 4024 1558 2465 2011 4199 1601 2598
Fuente: Elaboración propia, con base en datos de la Demanda Potencial y Consumo Aparente.
(Serapio, 2011).
2.2 IMPORTANCIA DE LA PRODUCCION DE CHILE JALAPEÑO EN LA REGIÓN
Santizo (2010), describe que actualmente entre cien y ciento cincuenta familias
dependen directamente de la siembra del chile jalapeño. La época del cultivo va de
junio a diciembre. A la salida de la época de lluvia el 75% de los productores siembran
con humedad residual; mientras que el otro 25% lo pueden hacer durante todo el año
por la tecnificación de sistemas de riego.
Las ventanas de mercado que buscan son: octubre a diciembre y de marzo a abril. El
área de producción registrada en el año 2012 fue de veinticinco hectáreas en Nueva
Concepción, Escuintla. Aunque chile jalapeño ya se siembra también en los municipios
de Siquinalá, La Democracia, La Gomera y Santa Lucia Cotzumalguapa, extendiéndose
cada día en la región sur de Guatemala. El destino de la cosecha actualmente es el
mercado nacional (Santizo, 2010).
El producto se vende en sacos de 16 – 18 kilogramos aproximadamente, puesto en la
zona de producción y sin estándares de calidad predefinidos, únicamente el peso
homogéneo (Santizo, 2010).
7
La importancia de cultivar chile jalapeño (Capsicum annuum L. Solananceae) híbrido
'Rey' en esta región, radica en su adaptabilidad a la zona. Esto debido a las condiciones
edáficas, climáticas y topográficas. Los registros de cosecha entre los años 2004 al
2010, indican que la media de producción fue de 1,400 kg/ha promedio (Santizo,
2010).
2.2.1 Características del híbrido 'Rey'
El híbrido 'Rey' es un cultivar que presenta plantas compactas y vigorosas. Sus frutos
son relativamente grandes, con pesos de hasta 40 g por fruto, con paredes gruesas y
pericarpio de color verde oscuro muy atractivo para el mercado (Gamarro, 2010)
Este híbrido presenta resistencia genética a la mancha bacteriana (Xanthomonas
campestris pv. vesicatoria), razas 1, 2 y 3. El tener resistencia genética a la mancha
bacteriana, hace de 'Rey' un híbrido ideal para condiciones de alta humedad relativa y
temperatura, dónde se sabe que la mancha bacteriana prevalecerá (Santizo, 2010).
2.2.2 Condiciones edafoclimáticas de La Nueva Concepción, Escuintla
Las condiciones climáticas de La Nueva Concepción registran rangos de temperatura
máximas de 39 ºC, mínimas de 13.8 ºC y humedad relativa alta entre 75-80%
(INSIVUMEH, 2010).
2.2.3 Densidades de siembra de chile jalapeño en La Nueva Concepción, Escuintla
En La Nueva Concepción, Escuintla se utiliza un distanciamiento de 0.25 – 0.35 m
sobre la hilera. Generalmente se utiliza doble surco por hilera. Sin embargo, hay
productores que siembran en hilera simple, y en ambos sistemas la distancia entre
hilera e hilera oscila entre 0.80 – 0.95 m. Dependiendo del distanciamiento utilizado se
8
pueden alcanzar poblaciones de 30,000 hasta 50,000 plantas por hectárea. Por el
hábito compacto de este híbrido, es recomendable usar altas densidades de población
(Soto, 2010).
2.2.4 El proceso de cosecha en La Nueva Concepción, Escuintla
Los agricultores de La Nueva Concepción, cuando inician el proceso de cosecha
proceden de la siguiente manera: se observa que el fruto posea una coloración verde
obscura brillante, sin pigmentación roja, de un tamaño acorde al híbrido y evitando que
el fruto presente rayas de corcho (Santizo, 2010).
Dado lo anterior Soto (2010), indica que el híbrido 'Rey' es uno de los más precoces,
concentra su producción y produce frutos grandes, por ende es conveniente vigilar muy
bien los campos justo antes de la cosecha para establecer el momento de corte. Al
seguir estas indicaciones se cortarán más frutos uniformes aceptables al mercado.
2.2.5 Nutrición vegetal del híbrido 'Rey' en La Nueva Concepción, Escuintla
Los agricultores nutren al híbrido durante todo su ciclo productivo, utilizando dos
fertilizantes (urea y triple 20), los cuales distribuyen las aplicaciones según su
experiencia, el cuadro 5 muestra las épocas de fertilización, durante el ciclo productivo
de chile jalapeño.
Cuadro 5. Cantidad en kg/ha de fertilizante aplicado
Época de aplicación Fertilizantes Cantidad (kg/ha)
Trasplante 20-20-20 400
15 Después de siembra 46-00-00 320
30 Días después de trasplante 20-20-20 400
1 era. Cosecha (entre- cosecha) 46-00-00 320
2 da. Cosecha 46-00-00 320
3 era. Cosecha 46-00-00 320
4 ta. Cosecha 46-00-00 320
9
Consolidando las aplicaciones de fertilizantes durante todo el período de producción las
cantidades utilizadas son las siguientes:
46 - 0 – 0 1600 kg/ha
20-20-20 800 kg/ha
Por otro lado, Bertsch (1995), indica que la nutrición vegetal del chile puede variar
según varios factores entre los cuales se pueden mencionar: calidad nutricional del
suelo, rendimiento proyectado, densidad del cultivo, entre otras. Sin embargo,
recomienda una fertilización 345 kg/ha nitrógeno, 130 kg/ha fósforo y 130 kg/ha de
potasio, tomando como referencias los análisis de suelo y análisis foliares del cultivo. La
aplicación de fósforo es vital para la producción de flores y el cuajado de frutos. Es
recomendable aplicarlo antes del trasplante.
Es necesario acortar el tiempo entre cada fertilización. Esta situación estimulará el
continuo crecimiento y garantizará un período mayor de producción de flores y
consecuentemente de frutos que mejoran el rendimiento, para alcanzar buenos
rendimientos la cantidad promedio de frutos es entre siete a diez unidades por planta en
cada corte (Gómez, 1984).
2.3 FENOLOGIA Y MANEJO DE INDUCTORES DE FLORACION
2.3.1 Fisiología del cultivo de chile jalapeño
Según estudio de fisiología realizado por Food and Agriculture Organization (1991), se
determinó que la planta de chile jalapeño responde a fases de crecimiento definidas:
I. De 26-82 días después de siembra en vivero (DDSV): esta fase se caracterizó
por un crecimiento lento, debido a que la planta está en desarrollo de su sistema
radical y foliar.
10
II. De 83-110 (DDSV): fase de rápido crecimiento vegetativo y reproductivo de las
plantas. La planta presenta los valores de índice de crecimiento y asimilación
más altos; los del índice de área foliar e índice de cosecha son crecientes. Tanto
la razón de área foliar como la de peso radical, presentan las reducciones más
importantes. Este período es pertinente para el manejo de inductores foliares
para su aprovechamiento y beneficio de los productos.
III. De 111-152 (DDSV): la tasa de crecimiento disminuye gradualmente. El
crecimiento vegetativo y reproductivo es menor que en la fase anterior.
2.3.2 Manejo de la floración y fructificación
González (2010), describe que el manejo de la floración en el cultivo de chile jalapeño
es delicado, pues es necesario tomar en cuenta la fisiología de las plantas. El cultivo y
particularmente cada planta no florecen en forma concentrada y uniforme.
Morfológicamente lo hacen por estratos, según las bifurcaciones de la estructura de la
planta. Lo cierto es que en cada bifurcación hay flores que se convierten en fruto y
otras que no. El inductor de floración deberá aumentar las bifurcaciones, aumentar y
concentrar las flores por estratos y madurar la mayoría de flores en frutos.
2.3.3 Especificaciones de la floración del cultivo
Ibar y Juscafresa (1987), indican que el jalapeño es muy sensible a las condiciones de
baja humedad relativa del aire y alta temperatura. Esto provoca una excesiva
transpiración que se manifiesta en la caída de flores y frutos, Las bajas temperaturas 8-
10 ºC, además de favorecer el aborto de flores y frutos, también disminuyen el ritmo de
producción y crecimiento de estos órganos.
Las altas temperaturas, especialmente cuando están asociadas a condiciones de
humedad atmosférica baja, inducen la caída de flores y frutos recién cuajados. Cuando
el fruto ya está en una fase avanzada de desarrollo resulta menos sensible a estos
efectos (Gil, 1991). Por otra parte, Erickson y Markhart (2002), manifiestan que las
altas temperaturas, es decir 36 °C o más durante más de 120 horas, afectan el ciclo
11
vegetativo, primordialmente las fases de reproducción. Las temperaturas óptimas para
crear un buen equilibrio entre el crecimiento vegetativo y la fructificación están entre 25-
29 ºC (FAO, 1991).
En virtud de lo anterior se ha iniciado una exhaustiva investigación en tecnología que
permita inducir la floración a pesar de las condiciones tanto internas como externas de
la planta.
Dentro de la tecnología sobresaliente está la de inductores de floración hortícolas, que
pretenden la estimulación mediante estrés en los puntos meristemáticos de la planta
para acelerar el proceso fisiológico deteniendo el crecimiento en elongación. El efecto
es directo sobre el follaje apical, por lo que la planta reacciona emitiendo puntos florales
de manera más temprana y no siendo estimulados por las condiciones externas y/o
fisiológicas (Vidal, 2005).
Los inductores de floración para las hortalizas están en proceso de investigación,
generalmente se utilizan los principios de fisiología para su fabricación, conociendo
como precursores de floración las hormonas de citoquininas, giberelinas, acidos,
auxinas, entre otros. Este efecto permitirá programar las cosechas, concentrar las
producciones, uniformizar el tamaño de fruto (Coboz, 2010).
2.3.4 Inductores comerciales de floración y sus usos
El proceso fisiológico es la respuesta natural de la planta a su desarrollo biológico. Esto
define las etapas de crecimiento, desarrollo y producción. La fase de desarrollo es
ventajosa para la utilización de productos de inducción floral. El inductor estimula a la
planta a aumentar bifurcaciones, detener crecimiento y desarrollo vegetativo,
cambiándolo a crecimiento productivo floral. Al acortar los entrenudos, se obtiene mayor
número de puntos florales por planta. Todo esto permitirá uniformidad de frutos, que
reducirá el número de cortes y concentrará categorías de calidad (Orellana, 2000).
12
Coboz (2010), describe que las plantas de chile jalapeño responderán a las condiciones
agroclimáticas naturales de la región. En consecuencia, se observan producciones
determinadas por la fisiología natural del cultivo. Los Inductores estimulan a la planta.
Inhiben el crecimiento vegetativo y promueven el desarrollo de la floración.
Inductor precursor de citoquininas
Coboz (2010), establece que el precursor de citoquinina es un producto con base
química de macronutrientes (P2O5, K2O), micronutrientes (B, Mo) y aminoácidos libres
4%, que inducen la floración como el establecimiento y maduración de los frutos, ya
que esta hormona estimula el desarrollo de la división celular.
El producto de inducción es obtenido a partir de la hidrólisis de las proteínas vegetales.
Es un líquido formulado con aminoácidos libres, elementos macro y micro. Todos ellos
están perfectamente equilibrados, ayudando a manipular la fase reproductiva.
Dosificación: Vía foliar: 65 ml/100 L.
Inductor precursor citoquininas y giberelinas
Mok & Mok (2001), indican que el precursor de citoquininas mas giberelinas es un
producto con base química de macronutrientes (Mg, S), micronutrientes (Mn, Fe, Cu,
Zn, B, Mo) y aminoácidos libres. Los aminoácidos intervienen directamente en la
floración, porque aceleran el proceso fisiológico de la planta, estimulando el desarrollo
celular. El producto de inducción es obtenido a partir de algas marinas, Euklonia
maxima.
Dosificación: Vía foliar 1.5 L/ha.
Inductor precursor ácidos orgánicos
Es un producto con base química de macronutrientes (CaO, MgO total, MgO
quelatado), micronutrientes (B) y ácidos orgánicos. Es inductor no hormonal de
13
floración de hortalizas, de aplicación foliar. Se ha desarrollado para tener mayor número
de puntos florales por planta, conseguir mayor floración y más agrupada con flores más
grandes y fértiles, equilibrar el desarrollo vegetativo acortando los entrenudos.
Su rápida y marcada efectividad es fruto de su contenido en nutrientes específicos y
esenciales para la floración y el desarrollo radicular unidos a los ácidos orgánicos de
bajo peso molecular. Este conjunto mejora de forma marcada la fisiología de la planta,
disminuye la transpiración, equilibra la vegetación favoreciendo los procesos de
madurez fisiológica de la planta y consecuentemente de la floración.
Dosificación: Vía foliar 1.0 L/ha.
2.4 IMPORTANCIA AGRÍCOLA DE LAS CITOQUININAS Y LAS GIBERELINAS
2.4.1 Citoquininas
Mok & Mok (2001), en sus aportes determinan que el término citoquinesis se refiere al
proceso de división celular, el cual podría ser considerado como el segundo proceso
madre de todos los procesos fisiológicos en los vegetales, ya que a este proceso le
antecede en importancia la diferenciación celular, la cual se encarga de dar origen a la
formación de cada uno de los órganos de cualquier vegetal.
Aunque la dominancia apical está determinada principalmente por las auxinas, las
citoquininas controlan la brotación de las yemas laterales. De esta forma, las
citoquininas contribuyen a determinar la arquitectura de una planta. Esta característica
ayuda al aumentar el número de bifurcaciones en la estructura de la planta para
aumentar el número de yemas florales (Mok & Mok, 2001).
Actualmente la utilización de citoquininas para regular y/o manipular eventos fisiológicos
específicos en los cultivos, está siendo cada vez más generalizada, ya que la
agricultura dispone de productos comerciales lo suficientemente específicos y eficientes
para ejercerlos. Existen en uso citoquininas en la producción de cultivos comerciales
que cuentan con productos con formulaciones de alta reactividad, a base de
14
forclorfigurono CPPU, que se aplican en todo tipo de hortalizas, frutales y plantas de
ornato. Puede afirmarse que todos los vegetales responden a la aplicación externa de
citoquininas (Azcon-Bieto & Talon, 1993).
El nivel de respuesta de cada vegetal está especialmente ligado al momento de
aplicación para lograr el objetivo de la misma, por lo que la diferenciación de aplicación
estará en función de la etapa fenológica del cultivo (Azcon-Bieto & Talon, 1993).
Una característica especial de estas hormonas, es que las dosificaciones necesarias
para obtener una respuesta adecuada en los vegetales a los que se aplican, son muy
bajas y que, adicionalmente a esta condición, se sabe que las plantas absorben una
fracción aún mucho menor. En todos estos casos, lo que se busca es incrementar la
cantidad y el calidad de los frutos (Mok & Mok, 2001).
2.4.2 Giberelinas
Desde su descubrimiento las giberelinas (GA) tomaron su posición como hormonas
críticas en el desarrollo de las plantas. Por su relevancia fisiológica, la “facilidad” de su
obtención y la consistencia de efecto al aplicarse a los cultivos, el uso comercial de
giberelinas ha sido una de las tecnologías más antiguas y extendidas en la agricultura
(Azcon-Bieto & Talon, 1993).
En ciertas especies como el chile jalapeño, que dependen de muchas condiciones
agroclimáticas para formar flores, las GA promueven dicho proceso. Por lo que su uso
deberá de ser moderado pues se ha establecido que estas hormonas inhiben la
formación de las flores y obviamente la fructificación; en campo es común observar
situaciones de excesiva suculencia (mucha síntesis de GA) y reducido número de
flores. Aplicaciones excesivas de GA a frutales y hortalizas puede inhibir la aparición de
flores, siendo un efecto a corto plazo (Azcon-Bieto & Talon, 1993).
Las GA se han identificado como hormonas que internamente participan en este
proceso, lo cual se ha comprobado por el efecto que tiene la aplicación de GA a varios
15
cultivos. Las GA tienen efectividad diferente para cuajar fruto según la especie y
variedad. En algunos casos, altas dosis inducirán la caída de frutos (Azcon-Bieto &
Talon, 1993).
El tejido carnoso de distintos frutos crece por división y alargamiento celular, en lo cual
participan las GA junto con citoquininas y auxinas. En general el efecto de la aplicación
de giberelinas para estimular el crecimiento de fruto es en la fase de división celular,
encontrándose poca respuesta en la fase de alargamiento, aunque para este uso
específico recientemente se ha demostrado que las citoquininas son tan efectivas como
estas sin, efectos secundarios negativos (Mok & Mok, 2001).
La presencia de GA en los tejidos mantiene su actividad en cuanto a presencia de
clorofila, ausencia de enzimas degradativas de proteínas, ácido nucleicos, entre otras.
Así, en la etapa de maduración de órganos cuando hay procesos degradativos diversos,
la cantidad de GA presente es baja.
2.5 IMPORTANCIA DE LOS MICRONUTRIENTES PRESENTES EN LOS
INDUCTORES
A&L Agricultura Laboratorioes (1986), determina que los micronutrientes también
llamados elementos traza, menores u oligoelementos, son necesarios en pequeñas
cantidades, sin embargo, no debe subestimarse la importancia de estos nutrientes.
Marshner (1990), describe que su principal función es catalizar los procesos en los que
la planta fabrica y emplea otros elementos. Estos son el hierro (Fe), el cobre (Cu), el
manganeso (Mn), el boro (B), el cinc (Zn) y el molibdeno (Mo).
2.5.1 Boro (B)
Se ha establecido que el (B) tiene un papel en el metabolismo celular, participa en la
síntesis del ácido ribonucleico (ARN) y facilita el transporte de azúcares a través de las
membranas y la degradación de la glucosa, que regula el contenido de fenoles y que
16
está involucrado en el metabolismo de las auxinas, sobre todo del ácido giberélico (A&L
Agricultura Laboratorioes, 1986).
En general, estimula el crecimiento de los tejidos del cambium y de los meristemos
apicales y favorece la producción de polen y la fecundación. El boro se aplica junto con
el molibdeno y el calcio para facilitar su movilidad y la producción de polen y
fructificación. Su aplicación siempre se realiza en la etapa vegetativa alta, con suficiente
masa foliar y antes de empezar la floración (A&L Agricultura Laboratorioes, 1986).
2.5.2 Cobre (Cu)
El cobre es componente de diversas enzimas de las plantas e interviene también en la
fotosíntesis, formando parte de las proteínas que participan en el transporte de
electrones y en su biosíntesis, tales como las oxidasas del ácido ascórbico, del fenol y
del fitocromo (ésta también contiene hierro), ya que su deficiencia al igual que la de zinc
paraliza la síntesis de estas. Favorece la asimilación de nitrógeno y actúa como
estabilizador de la clorofila (A&L Agricultura Laboratorioes, 1986).
2.5.3 Hierro (Fe)
El hierro tiene también función como componente estructural y como factor enzimático.
Es esencial para la síntesis de la clorofila. Aproximadamente el 75% del hierro presente
en las plantas está asociado a los cloroplastos, de ahí el importante papel que
desempeña en la fotosíntesis (A&L Agricultura Laboratorioes, 1986).
Es el micronutriente que en mayor cantidad consumen las plantas. Está
estructuralmente involucrado en las sulfa-ferro-proteínas que constituyen los dos
componentes del complejo enzimático responsable de la fijación biológica del nitrógeno
atmosférico, en los lípidos lamelares del núcleo, mitocondrias, citocromos, ferredoxina
(A&L Agricultura Laboratorioes, 1986).
17
Debido a su inmovilidad, el síntoma más característico es una clorosis general de las
hojas jóvenes, que puede aparecer como intervenal, pero que al cabo del tiempo
también los nervios acaban perdiendo clorofila (A&L Agricultura Laboratorioes, 1986).
2.5.4 Manganeso (Mn)
El manganeso también está relacionado con la fotosíntesis, actuando durante el
proceso de liberación de oxígeno como en la formación de la clorofila. Su presencia es
también fundamental para la activación de diversas enzimas relacionadas con el ciclo
de Kreb`s, especialmente de las que desencadenan las reacciones de oxidación-
reducción, descarboxilación e hidrólisis (A&L Agricultura Laboratorioes, 1986).
2.5.5 Molibdeno (Mo)
La función fundamental del molibdeno en el metabolismo vegetal está relacionada con
la fijación del nitrógeno atmosférico y con la asimilación de nitratos. Por ello los
síntomas de su deficiencia son más acusados cuando el nitrógeno se suministra en
forma de nitrato que en forma de ión amonio (A&L Agricultura Laboratorioes, 1986).
En las plantas con deficiencia de molibdeno los niveles de azúcares y de vitamina C son
bajos. Se utiliza además para frenar el crecimiento vegetativo y potenciar la floración.
Se aplica por vía foliar y radicular en la prefloración. En el primer caso ha de haber un
nivel alto de humedad y procurar mojar el envés de las hojas. El fósforo favorece su
asimilación (A&L Agricultura Laboratorioes, 1986).
2.5.6 Zinc (Zn)
El zinc está relacionado directamente con el crecimiento vegetal debido a su
participación en la biosíntesis de deshidrogenasas, proteínas y peptidasas, así como
algunas fitohormonas. Las plantas deficientes de zinc presentan bajos niveles de ácido
indolacético. También interviene como activador de diversas enzimas. Su deficiencia
también inhibe la síntesis de proteínas (A&L Agricultura Laboratorioes, 1986).
18
2.6 RECOMENDACIONES DE COSECHA DEL CHILE JALAPEÑO
Soto (2010), expone que la cosecha inicia aproximadamente a los 80 a 90 días después
del trasplante, sin embargo, por su precocidad, concentración de producción y facilidad
para dar tamaños grandes de frutos, es conveniente vigilar muy bien los campos justo
antes de la cosecha y así poder establecer el criterio de corte y de esta manera evitar
frutos rojos o verdes sobre maduros.
Así mismo se recomienda disminuir el tiempo entre cada corte para evitar frutos
"rayados" de corcho y que afecta la calidad de la cosecha, este fenómeno es causado
por la rapidez de producción del híbrido.
Siguiendo estas instrucciones se podrán cortar frutos uniformes y limpios de rayado por
corcho y manchados púrpuras, ésta última característica es distintiva de El 'Rey' por su
alta tolerancia a éste fenómeno que también baja la calidad de los frutos en el mercado
(Soto, 2010).
19
III. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
3.1 DEFINICION DEL PROBLEMA Y JUSTIFICACION DEL TRABAJO
Los productores de chile jalapeño, híbrido 'Rey', de la región sur Nueva Concepción,
Escuintla, disminuyen sus ganancias e incluso obtienen pérdidas las cuales en
promedio van desde dos mil a cinco mil quetzales por hectárea producida, debido a un
manejo agronómico tradicional al cultivo que se ha heredado en los últimos seis años.
Sumado a este tradicionalismo, se agregan los cambios en las condiciones
agroclimáticas que afectan fisiológicamente la producción del chile jalapeño (Vidal,
2000).
Estas alteraciones se ven reflejadas por rendimientos bajos y abundantes categorías de
calidad del fruto. Actualmente sus producciones van en un promedio de 1,000 kg/ha -
1,500 kg/ha por período de cosecha, esto escasamente cubre los costos que en
promedio son de Q 18,000.00/ha (Santizo, 2010).
El aumento en el número de cosechas durante el período productivo eleva los costos en
la producción, disminuyendo la capacidad de competitividad. Las abundantes
categorías de calidad por su relación de peso, tamaño y diámetro dificultan la
comercialización en todos los mercados. El cuadro 6 muestra la clasificación de frutos
de chile jalapeño, con calidad de exportación.
Cuadro 6. Clasificación de calidad de fruto de chile jalapeño hibrido 'Rey' Calidad Peso Largo Diámetro
1. era 40 - 50 g 8 - 9 cm 3 - 3.5 cm 2. da 30 - 40 g 7 - 8 cm 2.5 - 3 cm 3. da 20 - 30 g 6 - 7 cm 2 - 2.5 cm 4. ta 20 - 10 g 5 - 6 cm 1.5 - 2 cm 5. ta < 10 g < 5 cm < 1.5 cm
*Clasificación de calidad de frutos, las categorías 1era y 2da son la de mayor demanda en los mercados de exportación, industria y mercado cantonal. (Soto, 2010).
20
El fruto fisiológicamente maduro se desarrolla y alcanza el punto óptimo de corte de
manera heterogénea, lo que dificulta competir y ofrecer el producto en las ventanas
económicamente rentables (segundo semestre del año) para su comercialización en el
mercado nacional como internacional (Gamarro, 2010). La intención es disminuir a un
máximo de tres las categorías de calidad y concentrar la producción en cinco cosechas
viables.
La floración es paulatina pero desuniforme y particularmente cada planta desarrolla
flores pero en un periodo floral demasiado largo, obteniendo por ende cosechas
espaciadas y dispersas, transcurriendo un periodo de tiempo considerable; lo que
conlleva principalmente a aumentar el número de cortes a mas de seis, en el periodo
productivo, obteniendo gran variabilidad de categorías de calidad y aumenta el producto
de rechazo (Soto, 2010).
La variabilidad constante en la producción tradicional, mas la falta de tecnología para
innovar, dejó fuera al menos al 50% de los productores de la región, en un periodo de
seis años (2004-2010). Esto ha afectado a la comunidad desde el punto de vista social
y económico. No solo a los productores sino también a las familias que dependen de la
producción y mercadeo nacional de chile jalapeño.
El uso de inductores florales permitirá identificar y generar tecnología para estimular a
los productores mejorando la producción y calidad de chile jalapeño; Establecerá la
economía en la localidad, que se vio afectada por todos aquellos agricultores que
desistieron de su producción permitirá dar respuesta a la demanda de mercados
nacionales como de exportación, específicamente a El Salvador, favoreciendo no solo
familias productoras, sino a todo el proceso productivo en general. Proceso que se ha
paralizado porque la producción es insatisfactoria tanto en cantidad como calidad.
21
IV. OBJETIVOS
4.1. OBJETIVO GENERAL
Evaluar la respuesta del cultivo de chile jalapeño (Capsicum annuum L. Solananceae)
híbrido 'Rey', a la aplicación de tres inductores de floración, a tres diferentes dosis
según su presentación comercial, bajo el manejo agronómico prevaleciente en la región
sur de Guatemala.
4.2. OBJETIVOS ESPECIFICOS
Determinar los efectos de los tratamientos sobre el periodo de floración.
Determinar los efectos de los tratamientos sobre el rendimiento de fruta de chile
jalapeño.
Determinar los efectos de los tratamientos sobre el periodo de cosecha de chile
jalapeño.
V. HIPOTESIS
Al menos un inductor de floración a una dosis de aplicación favorecerá la precocidad y
la generación de flores en las plantas de chile jalapeño.
Al menos una inductor de floración a una dosis de aplicación, estimulará la producción,
aumentando el rendimiento (kg/ha de frutos).
Al menos un inductor de floración a una dosis de aplicación, propiciará un menor
período cosecha.
22
VI. METODOLOGIA
6.1 LOCALIZACION DE LA EVALUACION
El área experimental se localizó en el parcelamiento de Nueva Concepción,
departamento de Escuintla. Ubicada según el diccionario geográfico, a 147 km de la
ciudad capital de Guatemala, por la Carretera CA-9 (Guatemala-Escuintla), situado en
la parte sur del departamento de Escuintla. Su referencia geográfica es latitud 14° 05'
03" y en la longitud 91° 02' 55”, a una altura de 35 msnm. Zonas de vida Bosque
húmedo subtropical y Bosque muy húmedo subtropical cálido (Holdridge, 1967).
Temperaturas absolutas en el transcurso del año van entre los máximas 39 ºC mínimas
13.8 ºC, humedad relativa alta, entre los 75-80 % (INSIVUMEH, 2010).
Los suelos de las región son profundos, de origen volcánico, pendientes planas entre
los 0-4%, texturas franco-arcillosas a arenosas, altos niveles de materia orgánica,
estructura granular, color negro claro (Holdridge, 1967).
6.2 MATERIALES EXPERIMENTALES UTILIZADOS
Descripción de los materiales utilizados para la realización de la evaluación
experimental.
6.2.1 Cultivo de chile jalapeño
Hibrido 'Rey', en plántula en pilón
6.2.2 Inductores de floración
Precursor de citoquininas Florone (Atlantica Agricultura S.A ®).
Precursor de giberelinas y citoquininas Maxiboost (Nutri Feed ®).
Precursor de ácidos órganicos Newfol Plus (Marketin ARN international ®).
23
6.3 DESCRIPCION DE LOS TRATAMIENTOS
� Inductores de floración para hortalizas (3).
o Precursor (Pr) citoquinina.
o Precursor (Pr) citoquinina-giberelinas.
o Precursor (Pr) ácidos orgánicos-oxido de micro elementos.
� Dosis de aplicación (3).
o Dosis baja (0.5 menos de la dosis recomendada).
o Dosis recomendada.
o Dosis alta (0.5 más de la dosis recomendada).
Se evaluaron 10 tratamientos, nueve producto de la relación entre inductor y dosis, uno
correspondiente al testigo absoluto. El cuadro 7 define los tratamientos e identificación.
Cuadro 7. Tratamientos de inducción de floración en chile jalapeño evaluados en La Nueva Concepción, Escuintla.
Identificación Tratamientos
T1 Precursor (Pr) Citoquinina 0.30 cc/ L
T2 Precursor (Pr) Citoquinina 0.60 cc/ L
T3 Precursor (Pr) Citoquinina 0.90 cc/ L
T4 Precursor (Pr) Citoquinina-Giberelinas 0.75 L/ ha
T5 Precursor (Pr) Citoquinina-Giberelinas 1.50 L/ ha
T6 Precursor (Pr) Citoquinina-Giberelinas 2.25 L/ ha
T7 Precursor (Pr) ácidos orgánicos-Oxido
de microelementos 5.00 L/ ha
T8 Precursor (Pr) ácidos orgánicos-Oxido
de microelementos 10.0 L/ ha
T9 Precursor (Pr) ácidos orgánicos-Oxido
de microelementos 15.0 L/ ha
T10 Testigo Testigo
24
6.4 DISEÑO EXPERIMENTAL
Para la presente investigación se utilizó un diseño experimental al irrestricto azar, con
diez tratamientos y tres repeticiones.
6.5 MODELO ESTADÍSTICO DEL DISEÑO EXPERIMENTAL
El modelo estadístico para el diseño utilizado fue el siguiente:
Yi = µ + ti + εi
α = 0.05
En donde:
Yi Variable respuesta de la i-ésima unidad experimental
µ Efecto de la media general
ti Efecto del i-ésimo tratamiento
εi Efecto del error experimental asociado a la i-ésima unidad experimental
α Nivel de significancia = 0.05
6.6 UNIDAD EXPERIMENTAL
La unidad experimental estuvo constituida por una parcela de 3.8 metros de ancho por
4.9 metros de largo. En ella se establecieron cuatro surcos, distanciados a 0.95 m entre
ellos; se colocaron 14 plantas por surco, distanciadas a 0.35 m entre ellas.
Como parcela neta se consideraron los dos surcos centrales, eliminando las plantas de
los extremos de cada surco, es decir se consideraron un total de 24 plantas (7.98 m2).
25
6.7 CROQUIS DE CAMPO
La distribución aleatorizada en campo definitivo, se muestra en la figura 1.
Norte
Frente de Experimento
Figura 1. Distribución al azar de los tratamientos sobre inducción floral en chile jalapeño, evaluados en la Nueva Concepción, Escuintla.
6.8 MANEJO DEL EXPERIMENTO
6.8.1 Preparación del terreno
Inicio con un chapeo manual del área a sembrar, seguido de un paso mecánico de
rastra, con uso del implemento agrícola. La nivelación de surcos y calles fue realizada
manualmente utilizando equipo de labranza convencional.
T6 T1 T8 T2
T2 T4 T1 T10
T1 T5 T8 T2
T5 T10 T8 T10
T5 T6 T4 T7
T7 T7 T3 T6
T9 T3 T9 T9
T3 T4 Acopio
30.4 m
20 m
26
6.8.2 Establecimiento y delimitación de las parcelas
Fueron identificadas con rotulación visible y legible, especificando el tratamiento. La
delimitación entre tratamientos fue mediante una separación física de 1 metro.
6.8.3 Trasplante del cultivo
La siembra fue realizada de manera manual, en agujeros de 0.05 m ancho y 0.10 m de
profundidad. Utilizando las distancias de siembra siguientes:
Entre plantas 0.35 metros
Entre surcos 0.95 metros
Densidad 56 plantas por tratamiento/parcela experimental.
Re-trasplante: Fue necesario el retrasplante a los 3 y 5 días después de la siembra
definitiva, con el fin de mantener durante toda la investigación el total de 56 plantas por
tratamiento.
6.8.4 Manejo agrícola y fitosanitario del cultivo
Las fertilizaciones realizadas fueron programadas por el mismo agricultor, de manera
tradicional. Los productos y frecuencias de aplicación fueron de la siguiente manera
para todas las unidades experimentales:
Durante el trasplante 20-20-20 (Triple)
15 días después de trasplante (DDT) 46-00-00 (Urea)
30 DDT 20-20-20 (Triple)
1era cosecha productiva 46-00-00 (Urea)
2da cosecha productiva 46-00-00 (Urea)
27
3era cosecha productiva 46-00-0 (Urea)
4eta cosecha productiva 46-00-00 (Urea)
El control de malezas fue manual, realizado tres días después de cada aplicación de
fertilizantes de la siguiente manera:
18-20 días después de trasplante (DDT)
33-35 DDT
63-65 DDT
93-95 DDT
Para el control fitosanitario se realizaron cuatro aplicaciones, las cuales fueron:
10 DDT Benlate y Imidaclopid (Fungicida + Insecticida)
30 DDT Mancozeb y Piretroide (Fungicida + Insecticida)
60 DDT Benlate (Fungicida)
80 DDT Benlate y Imidaclopid (Fungicida + Insecticida)
6.8.5 Aplicación de inductores de floración
Las unidades experimentales fueron sometidas a la aplicación de un inductor a una
dosis respectiva, en los periodos que se detallan a continuación:
Primera aplicación: 35 DDT
Segunda aplicación: 77 DDT
Tercera aplicación: 112 DDT
28
6.9 VARIABLES RESPUESTAS
Período a floración (días después aplicación)
Rendimiento de fruto (kg/ha)
Periodo de cosecha (periodo en días)
6.9.1 Período a floración
Se registró el tiempo transcurrido de la primera aplicación del inductor a la primera
floración, expresado en días. La lectura de cada tratamiento, se hizo cuando el 50% de
las plantas en la parcela neta del tratamiento presentaban al menos una flor
completamente abierta.
6.9.2 Rendimiento de fruto
Rendimiento de la producción expresada en kilogramos por hectárea (kg/ha).
Rendimiento biológico total de la producción por cada tratamiento, determinada por la
totalidad del peso de las frutas cosechadas, incluyendo producto comercial y rechazo.
6.9.3 Periodo de cosecha
Este periodo se tomó desde inicio de la primera floración, hasta cuando el rendimiento
en cosecha fuera ≤ 20%, con respecto al mayor rendimiento en una cosecha,
evaluando las primeras cinco cosechas. El análisis de periodo de cosecha se basó en el
diagrama definido por Pareto, quien determina la relación del 80/20, por lo que el
periodo de cosecha a evaluar concentrara el 80% de la producción total con respecto al
mayor rendimiento en las primeras ó segunda cosechas.
29
6.10 ANALISIS DE LA INFORMACION
Las variables días fueron transformadas utilizando √(x) donde x es la cantidad de días,
datos para distribución normal en nuestro análisis de varianza.
Se realizó un análisis de varianza (ANDEVA) para cada una de las variables de
respuesta, según diseño experimental al irrestricto azar.
Para las variables que manifestaron diferencias estadísticas significativas entre los
tratamientos, se les aplicó una prueba de medias, utilizando la prueba de Duncan al 5%.
30
VII RESULTADOS Y DISCUSION
7.1 PRECOCIDAD DE FLORACION DE LOS TRATAMIENTOS
La evaluación de esta variable inició luego de la primera
aplicación de los inductores de floración, la cual se realizó
35 días después del trasplante (el tiempo de la primera
aplicación responde a la recomendación dada por el
proveedor del inductor de floración). Esta variable fue
medible mediante inspección diaria, iniciando a los 35 días
después de trasplante, transcurridas las 17:00 h, se observó parcela por parcela para
determinar la presencia o no de flor en las plantas. La determinación de contabilizar una
flor, era mediante la fisiología de la misma la cual debería incluir:
o Pétalos blancos totalmente extendidos.
o Anteras y pistilos visibles.
o Inclinación de la bifurcación entre 0 a 90º entre su tallo y flor.
Se contabilizó, cuando en la unidad experimental existiera al menos una flor por planta,
que las plantas con flor alcanzaran el 50% dentro de la parcela.
El efecto inicial luego de la aplicación de los inductores fue un marchitamiento, que se
mantuvo tres días después de la aplicación, de manera descendente (follaje aéreo
hacia tallo bajo).
Responde directamente proporcional a la dosis de aplicación del inductor: menor dosis
menor marchitamiento y menor pérdida de hojas; mayor dosis mayor marchitamiento y
mayor pérdida de hojas. El cuadro 8 se presenta el análisis de varianza para esta
variable.
31
Cuadro 8. Análisis de varianza para la variable, precocidad de floración en chile jalapeño en la evaluación de inductores de floración, Nueva Concepción, Escuintla.
FV G.L. S.C. C.M. F.C. Ft 0.05
Tratamiento 9 10.82 1.20 68.70 2.39 **
Error 20 0.35 0.02
Total 29 11.17
* * Existe diferencia estadísticas altamente significativas entre los tratamientos.
Se determinó mediante el ANDEVA que para la variable precocidad a floración, existe
significancia estadística entre los tratamientos. Al menos un inductor a una dosis
evaluada indujo a que la floración fuese más precoz en el 50% de las plantas.
Por lo que los tratamientos fueron sometidos a una prueba de medias la cual determinó
los grupos estadísticamente homogéneos.
Cuadro 9. Prueba de medias Duncan al (5%) para la variable precocidad en floración, en la evaluación de inductores de floración, Nueva Concepción, Escuintla
Tratamientos Medias Literales Grupos
T1 Pr citoquinina 0.5 Baja 8.75 a
I T3 Pr citoquinina 0.5 Alta 8.52 a
T2 Pr citoquinina Recomendada 8.08 a
T5 Pr citoquinina-giberelina Recomendada 7.72 a
T7 Pr ácidos orgánicos 0.5 Baja 7.45 b
II T6 Pr citoquinina-giberelina 0.5 Alta 7.43 b
T10 Testigo 7.41 b
T9 Pr ácido orgánico 0.5 Alta 7.09 c
III T4 Pr citoquinina-giberelina 0.5 Baja 7.05 c
T8 Pr ácido orgánico Recomendada 6.85 c
32
Se determinó que existen tres grupos estadísticamente homogéneos, siendo los
tratamientos 8, 4 y 9 los más precoces y los tratamientos 1, 2, 3 y 5 los más tardíos, el
testigo está clasificado en el grupo medio de precocidad de floración.
El tratamiento 9 y 8 (ácido orgánico) pertenece al grupo mas precoces, sin embargo, la
relación entre dosificación y precocidad no es directamente proporcional, pues aunque
se aplicó 0.5 más de la dosis recomendada, estadísticamente es igualmente precoz, sin
embargo, el costo de aplicación del producto se eleva un 50% y los beneficios en
inducción son los mismos.
El tratamiento 4 (citoquinina y giberelina) la aplicación de la dosis baja responde
estadísticamente a los tratamientos evaluados más precoces. Las dosis recomendada y
alta, causó un efecto de estrés (marchitamiento descendente), sobre las plantas por lo
que su recuperación y floración fuese más tardía.
El tratamiento (T10) testigo junto a los tratamientos 7 y 6 constituyen, el segundo grupo
más precoz, concluyendo que la aplicación de ácidos orgánicos a dosis bajas (T7) y
citoquininas y giberelinas a dosis altas (T6); no demostraron ningún efecto significativo
con respecto a inducción de floración.
Por lo anterior se determina que la precocidad para floración se alcanzó a los 49 días
después de trasplante, resultado obtenido para los tratamientos 9, 8 y 4.
La respuesta más tardía para floración se alcanzó a los 69 Días después del trasplante
resultado obtenido para los tratamientos 5,3,2 y 1.
El cuadro 10 muestra la precocidad de floración en días después de trasplante; la
transformación para las variables continua fué √(x), donde (x) son días;
33
Cuadro 10. Precocidad de floración promedio de los días después de trasplante, por tratamiento.
Tratamiento Medias
Promedio en días
(Precocidad de
floración DDT)
Aplicación de
inductor (DDT)
50% de floración
en parcelas (DDA)
T1 8.75 69 35 34
T3 8.52 69 35 34
T2 8.08 69 35 34
T5 7.72 69 35 34
T7 7.45 55 35 20
T6 7.43 55 35 20
T10 7.41 55 35 20
T9 7.09 49 35 14
T4 7.05 49 35 14
T8 6.85 49 35 14
DDT=Días Después de Trasplante. DDA= Días Después de 1era. aplicación
34
7.2 RENDIMIENTO DE FRUTO (kg/ha)
La cosecha fue realizada de forma manual, dejando únicamente canicas (inicio de
formación de fruto reconocido pues los pétalos de la flor han caído) y flores cortando
todo fruto formado.
La cosecha fue realizada, por cada tratamiento y repetición, para obtener el rendimiento
total de calidad comercial. El análisis en el centro de acopio consistió en pesar la
cantidad de frutos por tratamiento y repetición, registrando la información para
consolidar la información al final de la quinta cosecha. El cuadro 11 muestra el análisis
de varianza para esta variable.
Cuadro 11. Análisis de varianza para la variable rendimiento de fruto (kg/ha) de chile jalapeño en la evaluación de inductores de floración, Nueva Concepción, Escuintla.
F.V. G.L. S.C. C.M. F.C. Ft 0.05
Tratamientos 9 3357713 373079 28.12 2.39**
Error 20 265363 13268
Total 29 3623076
**Existe diferencia estadística altamente significativa entre los tratamientos.
Esta variable, considerada como la producción total de cinco cosechas comerciales,
demostró en la evaluación alta variabilidad entre los tratamientos, con lo que se puede
concluir que existe al menos un tratamiento con mayor rendimiento, por lo que el efecto
de aplicación de inductores a una dosis determinada si estimula la producción.
Por lo anterior los tratamientos fueron sometidos a una prueba de medias (cuadro 12),
la cual determinó los grupos estadísticamente homogéneos.
35
Cuadro 12. Prueba de medias Duncan a (5%) para rendimiento total de fruto de cinco cosechas comerciales (kg/ha) en la evaluación de inductores de floración, Nueva Concepción, Escuintla
Tratamiento Medias Promedio
(kg/ha) Literales Grupos
T5 Pr citoquinina-giberelina Recomendada 2245 2245 a I
T8 Pr ácidos orgánicos Recomendada 1860 1765 b
II
T7 Pr ácidos orgánicos 0.5 Baja 1798 1765 b
T2 Pr citoquinina Recomendada 1793 1765 b
T1 Pr citoquinina 0.5 Baja 1730 1765 b
T4 Pr citoquinina-giberelina 0.5 Baja 1715 1765 b
T9 Pr ácidos orgánicos 0.5 Alta 1691 1765 b
T6 Pr citoquinina-giberelina 0.5 Alta 1641 1303 c
III T10 Testigo 1398 1303 c
T3 Pr citoquinina 0.5 Alta 870 1303 c
Se concluye que existen tres diferentes grupos estadísticamente homogéneos, según
su rendimiento biológico, siendo el tratamiento 5 (citoquinina y giberelina-
recomendada) el de mayor rendimiento.
Los tratamiento 3, 6 y testigo, en el grupo tres alcanzaron un promedio de 1,303 kg/ha
siendo el grupo de menor rendimiento.
Los tratamientos 8, 7, 2, 1, 4 y 9, en el grupo dos alcanzaron un promedio de 1,765
kg/ha siendo el grupo de medianamente rendimiento.
El tratamiento más precoz en floración está presente en el segundo grupo estadístico
de rendimiento T8 (ácidos orgánicos – recomendado); por lo que se concluye que
estadísticamente, según este estudio, la relación entre precocidad y productividad no es
directa.
36
El tratamiento 5 ( citoquinina-giberelina a dosis recomendada); es el tratamiento que se
diferencia por alto rendimiento productivo. La relación entre dosis aplicada y
rendimiento no es proporcional al aplicar y aumentar la dosis en un 0.5 disminuye el
rendimiento, éstas hormonas inhiben la formación de las flores y obviamente la
fructificación; en campo es común observar situaciones de excesiva suculencia (mucha
síntesis de giberelinas) y reducido número de flores (Azcon-Bieto y Talon, 1993).
Aplicaciones excesivas de giberelinas a hortalizas puede inhibir la aparición de flores,
siendo un efecto a corto plazo. En el cuadro 13 se hace una comparación entre el
tratamiento con mayor rendimiento, el testigo y uno de los tratamientos de menor
rendimiento.
Cuadro 13. Rendimiento (kg/ha) de fruto de chile jalapeño de tres tratamiento de aplicación de inductores de floración
Tratamiento Medias Diferencia % Diferencia
T5 2245 -- --
Testigo 1398 847 37.72 %
T3 870 1375 61.24 %
Existe un efecto de variabilidad entre el rendimiento comparado con el testigo, el cual
es de un 37.72 % menos en producción.
El tratamiento 3 el cual es una dosis alta de citoquinina, produjo menos que el testigo
(61.24% menos en producción).
37
7.2.1 Rendimiento (kg/ha) según categorías de calidad
El destino de las producciones de chile jalapeño, actualmente es el mercado nacional,
con un 50% del consumo en mercado cantonal, otro 40% para la industria y el 10%
para la exportación. Los procesos de clasificación están comenzando a ser mejor
remunerados, en un cien por ciento aproximadamente (Santizo, 2010).
Se muestra en el cuadro 14, el análisis de varianza para el rendimiento expresado en
kg/ha de fruta clasificada de primera calidad. La clasificación es determinada por un
peso entre los 40-50 g, un largo entre los 8-9 cm y un diámetro de entre los 3-3.5 cm.
Según clasificación de producto destinado para la industria y exportación.
Cuadro 14. Análisis de varianza para el rendimiento (kg/ha) según primera categoría de calidad en fruto de chile jalapeño en la evaluación de inductores de floración, Nueva Concepción, Escuintla
FV G.L. S.C. C.M. F.C. Ft 0.05
Tratamiento 9 77475 8608 7.26 2.39**
Error 20 23710 1186
Total 29 101185
* * Existe diferencia estadísticas altamente significativas entre los tratamientos.
Se determinó mediante el ANDEVA que existe significancia estadística entre los
tratamientos. Por lo que los tratamientos fueron sometidos a una prueba de medias la
cual determinó los grupos estadísticamente homogéneos.
Se muestra en el cuadro 15, los resultados de la prueba de medias Duncan (5%) para la
variabilidad en calidad de los tratamientos sometidos a la aplicación de inductores
foliares.
38
Cuadro 15. Prueba de medias Duncan a (5%), para la variable calidad de los frutos de chile jalapeño, en la evaluación de inductores de floración, Nueva Concepción, Escuintla
Tratamiento Medias Promedio
(kg/ha) Literales Grupos
T8 Pr acido orgánico Recomendada 570 570 a I
T10 Testigo
408 383 b II
T9 Pr acido orgánico 0.5 Alta 357 383 b
T2 Pr citoquinina Recomendada 324 270 c III
T7 Pr acido orgánico 0.5 Baja 216 270 c
T1 Pr citoquinina 0.5 Baja 177 124 d
IV
T4 Pr citoquinina- giberelina 0.5 Baja 153 124 d
T5 Pr citoquinina - giberelina Recomendada 126 124 d
T3 Pr citoquinina 0.5 Alta 90 124 d
T6 Pr citoquinina- giberelina 0.5 Alta 75 124 d
Se determinó que existen cuatros grupos estadísticamente homogéneos, siendo el
tratamientos 8 el que expreso mayor rendimiento de fruta clasificada de primera. Los
tratamientos T1, T3, T4, T5 y T6 son homogéneos y expresaron el menor rendimiento
de primera calidad en sus frutos. El testigo (T10) está clasificado junto al tratamiento T9
como el grupo numero dos estadísticamente homogéneo para la categoría de
rendimiento de primera calidad.
El tratamiento más productivo (2245 kg/ha) fue el tratamiento T5, su expresión en la
clasificación de fruta en primera calidad esta en el grupo número cuatro, alcanzando un
promedio de 124 kg/ha de fruta clasificadas en primera calidad. Determinando que la
relación es inversamente proporcional (calidad vs cantidad).
La producción nacional está actualmente enfocada en plantas de chile jalapeño, con
mayor rendimiento que por calidad, pues el mercado primordial de la región es la central
de mayoreo, la cual actualmente no diferencia calidades específicas para su compra.
39
7.3 PERIODO DE COSECHA
Esta variable, considerada como el periodo de producción que inicia de la uniformidad
en floración (floración en el 50% de la parcela neta), hasta que la producción disminuye
a un ≤ 20%, tomado del rendimiento de la segunda cosecha, que según producción
nacional es el mayor rendimiento de la producción total, demostrable en la evaluación
experimental realizada. La figura 2 muestra los rendimientos (kg/ha) por cada cosecha,
considerando las primeras cinco cosechas.
Figura 2. Rendimiento de chile jalapeño (kg/ha) por cada cosecha comercial.
Este periodo de tiempo permitió conocer el tiempo crítico productivo, el cual sirve para
definir manejos agronómicos acordes a la necesidad fisiológica efectivamente
productiva (floración y fructificación), programar las etapas de siembra y cosecha
según necesidades de oferta y demanda.
0
500
1000
1500
2000
2500
3000
3500
Testigo T.1 T.2 T.3 T.4 T.5 T.6 T.7 T.8 T.9
Re
nd
imie
nto
en
(k
g/h
a)
1era cosecha
2da cosecha
3era cosecha
4ta cosecha
5ta cosecha
40
El manejo de inductores permite concentrar la producción, para definir y calendarizar
las producciones según la demanda del mercado, dentro de un periodo de cosecha.
El parámetro de finalización productiva fue del ≤ 20% (de la segunda ó tercera cosecha
según corresponda); pues al disminuir el rendimiento el impacto de manejo agrícola
(riego, fertilización, cosechas entre otras) afecta económicamente a los agricultores, por
lo que es conveniente dar por finalizada la producción. El análisis de varianza para esta
variable se muestra en el cuadro 16.
Cuadro 16. Análisis de varianza para la variable, periodo de cosecha en chile jalapeño, Nueva Concepción, Escuintla
F.V. G.L. S.C. C.M. F.C. Ft 0.05
Tratamientos 9 7.36 0.82 32.29 2.39**
Error 20 0.51 0.03
Total 29 7.86
**Existe diferencia estadística altamente significativa entre los tratamientos.
El análisis estadístico (ANDEVA) demuestra una alta variabilidad entre los tratamientos,
con lo que se puede concluir que existe al menos un tratamiento que posee un periodo
productivo menor, como un periodo productivo mayor, por lo que el efecto de aplicación
de inductores a una dosis determinada si estimula al periodo total de cosecha.
Por los resultados del análisis de varianza se procedió a realizar la respectiva prueba de
medias (cuadro 17).
41
Cuadro 17. Prueba de medias Duncan a (5%), para la variable periodo de cosecha en chile jalapeño en la evaluación de inductores de floración, Nueva Concepción, Escuintla
Tratamientos Medias √(dias)*
Promedio (dias) DDT
Literales Grupo
T1 Pr citoquinina 0.5 Baja 11.96 143 A I
T3 Pr citoquinina 0.5 Alta 11.94 143 a
T5 Pr citoquinina-giberelina Recomendada 11.39 128 b
II T2 Pr citoquinina Recomendada 11.32 128 b
T7 Pr ácidos orgánicos 0.5 Baja 11.21 128 b
T10 Testigo
11.18 125 c II
T6 Pr citoquinina-giberelina 0.5 Alta 10.87 113 d
IV T9 Pr ácidos orgánicos 0.5 Alta 10.64 113 d
T4 Pr citoquinina-giberelina 0.5 Baja 10.61 113 d
T8 Pr ácidos orgánicos Recomendada 10.48 113 d
* Transformación de días a variables continuas.
Se determinó que los tratamientos 1 y 3 fueron los que dispersó su producción llegando
a un promedio de 143 días después de floración (DDF). Los tratamientos 8, 4, 9 y 5
fueron los que concentraron su producción en un promedio de 113 días después de
inicio de floración (DDF).
El utilizar dosis del precursor de citoquininas (T1 y T3) provocó el mantenimiento de
plantas en estado productivo pues, existía la necesidad hormonal de producción de
células, sin embargo, el efecto de dosis baja permite la asimilación adecuada de los
componentes del inductor, por lo que la planta fue más longeva y productiva.
El utilizar dosis del precursor de citoquininas, giberelinas y ácidos orgánicos, permitió
estimular la concentración de la producción en un promedio de 113 (DDF), incluso
promedio menor que el testigo el cual concentró su producción en 125 (DDF).
42
Por lo anterior se concluye que existe un efecto en la concentración de cosecha en chile
jalapeño, cuando se utilizan inductores de floración. Para este estudio el rango fue de
30 días.
7.4 ANÁLISIS COMPARATIVOS DE TRATAMIENTOS
En el cuadro 18 se hace un análisis comparativo de las variables evaluadas con
respecto al testigo.
Cuadro 18. Cuadro comparativo entre los tratamientos sobre salientes, según las variables respuestas.
Descripción de tratamiento* Dimensionales Variables de Respuesta
T8 ácidos orgánicos recomendada 49 días
precocidad floración T10 Testigo testigo 55 días
T1 citoquinina 0.5 baja 69 días
T5 citoquinina y
giberelina recomendada 2245 kg/ha
rendimiento biológico T10 Testigo testigo 1398 kg/ha
T3 citoquinina 0.5 alta 870 kg/ha
T1 citoquinina 0.5 baja 143 días
periodo de cosecha T10 Testigo testigo 125 días
T8 ácidos orgánicos recomendada 113 días
*Los tratamientos utilizados fueron los más bajos y/o altos de cada grupo estadísticamente homogéneo,
el fin fue la comparación con el testigo.
El manejo de inductores de floración causa un efecto significativo entre las siguientes
variables respuesta:
• Precocidad de floración
• Rendimiento biológico
43
• Periodo de cosecha
Sin embargo, la utilización de inductores de floración posee cualidades específicas que
permiten el manejo agrícola sobre la floración, rendimiento y concentración ó dispersión
de la producción, beneficio que el agricultor deberá adecuar según la necesidad
productiva, que depende directamente de la demanda y oferta del mercado.
44
VIII. CONCLUSIONES
Se determinó que la utilización de inductores de floración y variación en dosis de
aplicación, causa variabilidad en la precocidad de floración, entre los diferentes
tratamientos evaluados. Los tratamientos 9 (precursor de ácidos orgánicos a dosis alta),
tratamiento 8 (precursor de ácidos orgánicos a dosis recomendada) y el tratamiento 4
(precursor de citoquininas y giberelinas a dosis baja) demuestran estadísticamente ser
la mejor opción para obtener precocidad en la floración; alcanzándola a 49 días
después de trasplante.
Se determinó que la utilización de inductores de floración y variación en dosis de
aplicación, causa variabilidad en los rendimientos productivos, entre los diferentes
tratamientos evaluados. El tratamiento 5 (precursores de citoquinina y giberelinas a
dosis recomendada), demuestra estadísticamente ser la mejor opción para elevar el
rendimiento productivo.
Se determinó que la utilización de inductores de floración y variación en dosis de
aplicación causa variabilidad en la calidad de los frutos, demostrando el tratamiento 8
(precursor de ácidos orgánicos a dosis recomendada), ser la mejor opción para obtener
frutos de primera calidad, en un promedio de 570 kg/ha de frutos clasificados en esta
categoría.
Se determinó que la utilización de inductores de floración y variación en dosis de
aplicación, causa variabilidad en el periodo de cosecha, entre los diferentes
tratamientos evaluados. Los tratamientos 9 (precursor de ácidos orgánicos a dosis alta),
tratamiento 8 (precursor de ácidos orgánicos a dosis recomendada), tratamiento 6
(precursor de citoquininas y giberelinas a dosis altas) y el tratamiento 4 (precursor de
citoquininas y giberelinas a dosis baja), fueron los que concentraron el 80% de
producción en 113 días después de iniciada la floración.
45
IX. RECOMENDACIONES
Económicamente se recomienda la utilización del inductor de floración T5 (precursores
de citoquinina y giberelinas a dosis recomendada) con el cual se obtiene una ganancia
neta de aproximadamente Q. 5,400.00/ha. El impacto en el costo de producción en la
utilización va desde Q 800 a Q1000.
Se recomienda realizar este mismo estudio en las zonas productivas de chile jalapeño
en Guatemala (Santa Rosa, Jutiapa, Jalapa y Retalhuleu); para determinar los efectos
sobre las plantas en estas condiciones.
Realizar estudios similares bajo condiciones controladas (invernaderos y macro
túneles), donde la humedad y temperatura son más homogéneas, para determinar el
efecto propio de los inductores, disminuyendo las variables de condiciones externas.
46
X. BIBLIOGRAFIA
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Azcon-Bieto, J y Talon, M. 1993. Fisiología y Bioquímica Vegetal, Madrid: McGraw Hill. 84-486-0033-9.
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Coboz S., 2010 investigador agrícola de Bayer, para el área hortícola de la costa sur, Guatemala C.A. Consulta en septiembre 2010.
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Ibar, L. y Juscafresa, A. 1987. “Tomates, pimientos y berenjenas”. Editorial Aedos, Barcelona; pag 89 - 90
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47
septiembre de 2010 en la siguiente dirección web//. http://www.inta.gov.ar/leales/info/pdf/tvidal.pdf
Holdridge, L. 1967.Clasificacion de Zonas de Vida para Guatemala
Marshner, H. 1990. Mineral nutrition of higherplants, New York, AcedemicPress.P. 105. Revisado en septiembre 2010.
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Paxtor, A. 2011. Federacion de asociacion agricolas de Guatemala, desarrollo del cultivo de chile jalapeño (Capsicum annuum L.,) en Guatemala. Obtenido el 31 de junio de 2011 desde dirección, http://prensalibre.com/economica/chile-jalapeño.
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48
XI. ANEXOS
Anexo 1 Cronología fotográfica del experimento
Preparación de campo
El procedimiento de preparación consistió en desmalezado manual, arado mecánico y
elaboración de surcos utilizando equipo de labranza convencional de la zona. Este
sistema de preparación es el común que realizan los agricultores de la zona,
Trasplante y mantenimiento de cultivo
Previo a la siembra se aplicó riego al terreno, hasta capacidad de campo (sin
encharcar), para facilitar el ahoyado y evitar el marchitamiento por trasplante. Se
utilizaron 15 jornales, quienes apoyaron en el trasplante, asignando una persona por
parcela (unidad experimental).
49
Aplicaciones de inductores de floración sobre el cultivo.
EL mecanismo de aplicación fue manual, con utilización de equipo de medición
específico (probetas, jeringas, pesas), la aplicación en campo definitivo fue utilizando
bomba de aspersión manual con boquilla cónica
Los productos utilizados para las aplicaciones fueron: como nombres comerciales
Newfol-plus, Florone, MAxxiboost.
Muestreo
50
Consistió en la medición y observación de las diferentes variables respuesta analizadas
en el experimento realizado por equipo capacitado.
Cosechas
Las cosechas fueron programadas y se cortó todo el producto, dejando únicamente
botones, los cosechadores fueron capacitados para poder seleccionar productos e
identificación de las parcelas cosechadas.
Análisis
Proceso que consistió en las mediciones de la variable rendimiento y calidad de fruto,
por lo que se realizó con el uso de equipo de medición (pesa análoga, pesa electrónica)
para cuantificar el rendimiento (kg/ha) de cada tratamiento.
51
Anexo 2 Clasificación de calidad de la fruta
Primera: chiles uniformes en color, tamaño, diámetro sabor característico, turgencia,
frescos; además entre un largo de: 8 – 9 cm diámetros de 3-4 cm y se estima un peso
de: 40-50 g por unidad.
Segunda: chiles uniformes en color, tamaño, sabor característico, turgencia, frescos;
además entre un largo de: 8 – 7 cm diámetros de 2-3 cm y se estima un peso de: 30-
40 g por unidad.
Tercera: chiles uniformes en color, tamaño, sabor característico, turgencia, frescos,
permitiendo algunas des uniformidades en su aspecto visual manchas, golpes,
además entre un largo de: ≤ 6 cm con diámetros ≤ 2 cm, un peso variante menor de
30 g por unidad.
Anexo 3 Análisis de varianza para las variables respuestas
Variables Simbología FC FT
Significancia Estadística 0.05
Días después de siembra DDS 68.7 2.39 **
Rendimiento kg/ha Ren kg/ha 28.11 2.39 **
Periodo de cosechas PCs 32.29 2.39 **
** Significancia altamente estadística entre los tratamientos
NS No hay significancia estadística entre los tratamientos
52
Anexo 4 Cronograma de trabajo
MES I MES II MES III MES IV MES V
ACTIVIDAD
SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM SEM
7 14 21 28 35 42 49 56 63 70 77 84 91 98 105 112 119 126 133 140
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20
Preparación del
Trasplante (plántulas
de vivero 30 -35 DDS)
Compra de Insumos
Agrícolas
Identificación de U.E.
Fertilización
Monitoreo
Fitosanitario
Control Fitosanitario
Control de Malezas
(Manual)
Aplicación del Inductor
Precocidad 50 %
Floración I
Cosecha I
Análisis Estadístico
Cosecha II II
Análisis Estadístico
Cosecha III III
Análisis Estadístico
Cosecha IV IV
Análisis Estadístico
Cosecha V V
Análisis Estadístico
Comercialización del
Producto
Análisis Estadístico
Análisis Financiero
Elaboración de Informe
53
Anexo 5 Resumen financiero de costos de producción
ANALISIS DE COSTOS DE PRODUCCION
EVALUACION EXPERIMENTAL
DATOS EVALUADOS DE PARCELAS
EXPERIMENTALES
Actividad Agrícola Unidad de Medida Unidad / ha Costo /
Unidad (Q)
Costo / ha
(Q)
I Preparación de suelo
M.O. Desmalezado Persona/Día 3 68 204
Arado Mecánico Hr 1 150 150
M.O. surqueado
manual Persona/Día 3 68 204
Sub –Total
558
II Trasplante
Plántulas Unidades 3200 0.25 800
MO. Ahoyado Persona/Día 8 68 544
MO. Trasplante Persona/Día 10 68 680
Sub –Total
2024
III Fertilización
Urea Q.Q. 175 35 6125
Triple 20 Q.Q. 200 17 3400
MO. Fertilizadores Persona/Día 3 68 204
Sub –Total
9729
54
IV Plagas
Mancozeb 80 Kg 2.5 45 112.5
Benomil 50 EC Kg 1 138 138
MO. Fertilizadores Persona/Día 2.5 68 170
Sub –Total
420.5
V Inductores de Floración
NEWFLO-PLUS Kg 1 175 175
FLORONE L 1.5 250 375
MAXIBOOST L 1.5 200 300
MO. Fertilizadores Persona/Día 2.5 68 170
Sub –Total
1020
VI Fungicidas
Monarca L 2 180 360
Bayfidon Duo L 1.5 390 585
Rienda L 1 200 200
M.O. Aplicación Persona/ Día 3 68 204
Sub –Total
1349
VII Riego
Préstamo de sistema Hr 2.5 100 250
M.O. Persona/Riego 2 68 136
Sub –Total
386
VIII Control de Malezas
M.O. limpia Manual Persona/Día 5 68 340
Sub –Total
340
55
IX Pre-Cosecha
Pita Metros 2 35 70
Arpillas (Sacos) Unidades 1000 0.55 550
Sub –Total
620
X Cosechas 1era a 5ta.
M.O. Cosechadores Persona/Día 25 68 1700
Sub –Total
1700
Cuadro Resumen de Costos de Producción
No. Actividades Sub Totales
en Quetzales
Los agricultores de la
zona utilizan mano de
obra familiar y maquinaria
propias, lo cual no es
contemplado como
costos de producción; en
el actual análisis se
consideró este costo
productivo.
I Preparación de suelo 558
II Trasplante 2024
III Fertilización 9729
IV Plagas 420.5
V Inductores 1020
VI Fungicidas 1349
VII Riego 386
VIII Control de Malezas 340
IX Pre-cosecha 620
X Cosecha 1700
Gran Total 18146.5
56
RESUMEN FINANCIERO
Análisis financiero T5 mayor rendimiento
Producción kg/ ha 2246
Precio de Venta kg / Q 10.5
Total de Ingreso Quetzales 23583
Costo de Producción Quetzales 18146.5
Ganancia Neta 5436.5
Análisis financiero T10 testigo
Producción kg/ ha 1399
Precio de Venta kg / Q 10.5
Total de Ingreso Quetzales 14689.5
Costo de Producción Quetzales 17126.5
Pérdida -2437
Análisis financiero T3 menor rendimiento
Producción kg/ ha 870
Precio de Venta kg / Q 10.5
Total de Ingreso Quetzales 9135
Costo de Producción Quetzales 18146.5
Pérdida -9011.5
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