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CONSEJO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGÍA -CONCYT-
SECRETARIA NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGÍA -SENACYT-
FONDO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGÍA -FONACYT-
INSTITUTO DE CIENCIA Y TECNOLOGÍA AGRÍCOLA –ICTA-
INFORME FINAL
Caracterización y evaluación morfológica, rejuvenecimiento,
incremento y documentación de germoplasma de Capsicum
de Guatemala
PROYECTO FODECYT No. 018-2010
Max Myrol Rubelsy González Salán, Ph.D.
Investigador Principal
GUATEMALA, OCTUBRE de 2012
i
AGRADECIMIENTOS:
La realización de este trabajo, ha sido posible gracias al apoyo financiero dentro del Fondo
Nacional de Ciencia y Tecnología –FONACYT-, otorgado por la Secretaría Nacional de
Ciencia y Tecnología –SENACYT- y el Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología –
CONCYT-
ii
OTROS AGRADECIMIENTOS
A Dios, creador de todas las cosas y a Jesucristo, su hijo, redentor y guía espiritual de nuestra
existencia profana.
A nuestras familias, por el apoyo cotidiano que nos brindan en la realización de nuestras
actividades como investigadores agrícolas.
A el Instituto de Ciencia y Tecnología Agrícolas –ICTA-, su Gerencia, Administración, Dirección
Técnica y a su personal técnico y operativo, quienes con el aporte del personal científico del
subprograma de Hortalizas, hicieron posible el desarrollo de las actividades planificadas de
carácter técnico de campo, de laboratorio, de invernadero y de gabinete en el proyecto, en tres
centros de Innovación: ICTA- CIOR-ZACAPA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa; ICTA-CIAL-
Chimaltenango, ICTA, La Alameda, Chimaltenango y ICTA-CINOR-San Jerónimo, San
Jerónimo, Baja Verapaz.
Al personal de campo del proyecto en sus tres fases, quienes pusieron todo su empeño porque se
alcanzaran y lograran los objetivos específicos del proyecto.
A los agricultores que siembran chile para consumo familiar, como condimento y sin fines de
lucro. Fueron ellos quienes hicieron posible y permitieron que estudiantes universitarios del país
realizarán recolectas de materiales criollos desde huertos tropicales, patios caseros y condiciones
silvestres.
A los amantes y fanáticos de chile, quienes con sus inquietudes están a la búsqueda continua de
más información sobre el género Capsicum.
Y a usted estimado lector, por interesarse en la lectura del presente informe.
iii
PRESENTACIÓN
El Instituto de Ciencia y Tecnología Agrícolas –ICTA - y el Fondo Nacional de Ciencia y
Tecnología – FODECYT- a través de la Secretaria Nacional de Ciencia y Tecnología –
SENACYT- hacen entrega a la comunidad científica y a la sociedad civil Guatemalteca, del
Informe del proyecto “Caracterización y evaluación morfológica, rejuvenecimiento, incremento y
Documentación de germoplasma de Capsicum de Guatemala”. Dicho proyecto fue financiado por
el Fondo Nacional de Ciencia y Tecnología –FONACYT- del Sistema Nacional de Ciencia y
Tecnología –SINCYT-
El estudio hace referencia al género Capsicum, al que pertenecen botánicamente todos los chiles
conocidos en Guatemala. La investigación tuvo el propósito de regenerar una colección activa de
chiles que tenía más de cuatro años de conservación en el banco de germoplasma de ICTA. Una
vez regenerada la colección, es posible constituir una colección a mediano plazo de conservación
para minimizar en lo posible la pérdida de genes del género que hoy por hoy constituyen la
materia prima para el fitomejoramiento de la especie en el futuro.
Adicionalmente, el estudio persiguió caracterizar morfológicamente los diferentes morfotipos de
chile presentes en la colección activa. Un catálogo fotográfico del fruto de los diferentes tipos de
chile fue generado y complementa la información digital generada. Esta información debe
compartirse con la sociedad científica del mundo y por ello debe colocarse en las redes sociales y
en los portales de ICTA y SENACYT. Su difusión y divulgación atraerá a potenciales fuentes
financieras de Cooperación Técnica bilateral o multilateral.
La información registrada en el presente estudio, contribuye al enriquecimiento de la cadena de
conocimiento que sobre el género Capsicum se ha generado en Guatemala. El Investigador
Principal y sus Investigadores Asociados, esperan que el lector obtenga los mejores provechos por
el análisis, la interpretación y utilización de dicha información.
iv
CONTENIDO
Página
RESUMEN.……………….…………………………………………………………… 1
SUMMARY………………………………………………………………………….... 2
PARTE I
I.1. INTRODUCCIÓN………………………………………………………............... 3
I.2. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
I.2.1. Antecedentes en Guatemala…………..…………………………………… 5
1.2.1.1. Diversidad morfológica del género Capsicum …………………… 5
1.2.1.2. Utilización reciente del germoplasma de Capsicum en Guatemala. 6
I.2.2. Justificación del trabajo de investigación …..…………………………….. . 6
1.2.2.1. Potencial del germoplasma de Capsicum en Guatemala………… . 6
I.3. OBJETIVOS E HIPOTESIS
I.3.1. Objetivos
I.3.1.1. General.……………………………………………………………. 8
I.3.1.2. Específicos.………………………………………………………... 8
I.3.2. Hipótesis…………………………………………………………………… 8
1.4. METODOLOGÌA
I.4. 1. La colección activa de germoplasma de Capsicum……………………… 10
1.4.2 Localización de las Fases de Ejecución del proyecto…………………..… 10
I..4.2.1. FASE I. Centro de Innovación de Oriente –CIOR-ZACAPA, ICTA,
Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa, 2010-2011………………………... 10
I.4.2.2. FASE II. Centro de Innovación del Altiplano- Chimaltenango
–CIAL-CHIMALTENANGO, ICTA, La Alameda, Chimaltenango,
2011……………………………………………………………………. 16
I.4.2.3 FASE III. Centro de Innovación del Norte –CINOR-, ICTA,
San Jerónimo, Baja Verapaz, 2011…….………………………………... 21
PARTE II
II. MARCO TEÓRICO…………………………………………………………… 25
II.1. El Género Capsicum …………………………………………………………… 25
II.2. Origen y distribución geográfica del género Capsicum………………….. 25
II.3. Clasificación taxonómica ..……………………………………………….. 26
II.4. Especies biológicas y morfológicas………………………………………. 28
II.5. Especies domesticadas……………………………………………………. 28
II.6. Especies silvestres………………………………………………………… 29
II.7. Domesticación de especies de Capsicum…………………………………. 29
II.8. Importancia de la caracterización y evaluación de germoplasma………… 32
II.9. Caracterización y evaluación morfo agronómica de Capsicum.………….. 32
II.10. Los recursos fitogenéticos de Guatemala………………………………. 34
II.11. Caracterización agro morfológica del género Capsicum en Guatemala… 38
v
PARTE III
III. RESULTADOS
III.1. Discusión de resultados…..………………………………………………. 39
III.1.1. Descriptores ambientales de los sitios de rejuvenecimiento, incremento,
y caracterización morfológica de la colección activa de germoplasma
de Capsicum……………………………………………………………. 39
III.1.2. Integración de los resultados obtenidos de acuerdo con los objetivos
Específicos de la investigación………………………………………… 54
III.1.3. Los datos de pasaporte, de caracterización y evaluación morfológica
De las accesiones de Capsicum cosechadas…………………………… 66
PARTE IV
IV.1. CONCLUSIONES………………………………………………………………. 68
IV.2. RECOMENDACIONES………………………………………………………… 71
IV.3 REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS…………………………………………... 73
IV.4. ANEXOS
ANEXO 1: Datos de pasaporte de las accesiones de chile……………………… 79
ANEXO 2: Caracterización y evaluación morfológica de las accesiones de chile. . 98
PARTE V
V.1. INFORME FINANCIERO……………………………………………………….. 196
vi
INDICE DE CUADROS
Página
1. Insecticidas, época y dosis de aplicación por aspersión en El Oasis, Estanzuela
Zacapa……………………………………………………………………………… 11
2. Fungicidas, época y dosis de aplicación por aspersión en El Oasis, Estanzuela,
Zacapa……………………………………………………………………………. 12
3. Nutrición de los chiles en El Oasis, Estanzuela, Zacapa…………………………… 12
4. Principales características de las especies domesticadas de Capsicum……………….. 29
5. Principales características de las especies silvestres de Capsicum..………………… 29
6. Descriptores de rejuvenecimiento y del sitio de caracterización, FASE I en
ICTA, Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa…………………………………………... 32
7. Número de semillas germinadas de 100 sembradas por accesión de
Capsicum, Fase I, ICTA, Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa……………………….. 43
8. Número de plantas establecidas ocho días después del trasplante para cada,
Accesión de Capsicum (10C), Fase I, ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa……….… 45
9. Descriptores del rejuvenecimiento y del sitio de Caracterización,
FASE II en CTA, Finca La Alameda, Chimaltenango……………………………….. 48
10. Descriptores del rejuvenecimiento y del sitio de Caracterización,
FASE III en ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz…………..….. 52
11. Número de semillas germinadas de 100 sembradas por accesión, de
Capsicum (11C), Fase III, ICTA, San Jerónimo, Baja Verapaz……………………. … 42
12. Número de plantas establecidas ocho días después del trasplante para cada,
Accesión de Capsicum (11C). Fase III, ICTA, San Jerónimo, Baja Verapaz………. … 54
13. Accesiones de chile sembradas, germinadas y establecidas en campo en
FASES I, II y III y otros datos……………….……………………………………… 55
14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum rejuvenecidas
en las FASES I y II y su destino de conservación…………………………………... 57
15. Accesiones de Capsicum (ID = 10c) que deberían pasar a formar parte de
la colección a mediano plazo de ICTA………….………….………………………. . 53
16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
Que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa,
Fase I, 2010-2011………………….………………………………………………… 66
17. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
Que se sembraron y cosecharon en el ICTA, La Alameda, Chimaltenango
Fase II, 2011..……………………..…………………………………………………. 97
18. Caracterización y evaluación morfológica de las accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa. Fase I, 2010-2011………….……………………….. . 98
19. Caracterización y evaluación morfológica de las accesiones de chile en ICTA,
La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011………………………………………… 173
20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de las accesiones de chile
En ICTA, San Jerónimo, Baja Verapaz……………………………………………… 184
vii
INDICE DE FOTOGRAFÍAS
Página
1. Diversidad morfológica en el género Capsicum…………………………….. 4
2. Vista parcial del sitio experimental en ICTA-CIOR, El Oasis, Estanzuela,
Zacapa………………………………………………………………………. 9
3. Registrando datos de descriptores de plántula………………………………. 12
4. Vista parcial de invernadero en Amadeo Export S.A……………………… 12
5. Preparación de terreno en ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa…………… 13
6. Trasplante y colocación de cobertores anti polinizadores…………………… 14
7. Estructura protegida……………………………………………………...... 16
8. Lavado de sustrato volcánico………………….……………………………. 17
9. Manguera para riego y drenaje……………………………………………… 17
10. Proceso de fertiriego y drenaje de excedentes de solución nutritiva…… ... 18
11. Diversidad de Capsicum pubescens Ruíz & Pavón ………………………… 19
12. C. pubescens Ruiz & Pavón listos para cosecha de frutos………………… 20
13. Frutos de C. pubescens Ruiz & Pavón recién cosechados………………… 20
14. Extracción de semillas del fruto y proceso de secado de las mismas…….. 21
15. Surqueo y creación de camas con colocación de
manguera de riego a 1.8 m………………………………………………….. 22
16. Emplasticado del suelo …………………………..…………………………. 22
17. Terreno listo para trasplante………………………………………………… 22
18. Semillero de accesiones de chile en ICTA, San Jerónimo…………………… 23
19. Plántulas para trasplante y vista del campo definitivo ya plantado…………… 23
20. Campo plantado y protegido con cobertores anti polinizadores…………….. 24
1
RESUMEN
Cuatrocientos noventa y seis (496) accesiones del germoplasma de Capsicum de Guatemala,
fueron sembradas de acuerdo a la altura sobre el nivel del mar en que fueron colectadas en tres
localidades, a saber: Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa (0-500 msnm), Finca San Jerónimo, San
Jerónimo, Baja Verapaz (>500 hasta 1500 msnm) y Finca La Alameda, Chimaltenango (> 1500
hasta < 2500 m), Estas siembras de accesiones de Capsicum tuvieron por objetivos: 1)rejuvenecer
el poder de germinación de semillas, 2) incrementar en cantidad semillas rejuvenecidas, 3)
caracterizar y evaluar morfológicamente las accesiones y 4) documentar la información sobre
pasaporte y caracterización morfológica. Esto permitió la creación de una colección nacional de
germoplasma de Capsicum que permite su rescate y conservación a mediano plazo en el banco de
germoplasma de ICTA y su utilización en el futuro cercano en procesos de mejora genética. Al
mismo tiempo la investigación, permitió generar información que documenta digitalmente el
género Capsicum. Las accesiones incrementaron su cantidad de semilla en más de 7 gramos cada
una. Ahora las accesiones de chile se almacenaron con un poder de germinación superior al 70%,
y están totalmente caracterizadas según descriptor oficial del género en el banco de Germoplasma
de ICTA. La documentación de cada accesión, conservada a mediano plazo está colgada en la
página WEB de ICTA y quiere colgar en el GRIN GLOBAL. Existe semilla disponible para
intercambiar y conservar a largo plazo en bancos mundiales de semilla y para generar futuros
procesos de mejora genética localmente.
Palabras claves
Capsicum spp, rejuvenecimiento de semilla, incremento de semilla, caracterización morfológica,
colección activa, conservación a mediano plazo.
2
SUMMARY
Four hundred ninety-six (496) Capsicum germplasm accessions from Guatemala, were seeded at
three locations, namely: Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa (0-500 m ), Finca San Jerónimo, San
Jerónimo, Baja Verapaz (> 500-1500 m) and Finca La Alameda, Chimaltenango (> 1500 to
<2500 m), These Capsicum planting accessions had the following objectives: 1) to rejuvenate the
germination power of the seed, 2) to increase the rejuvenated seed number, 3) to characterize and
to evaluate morphologically the accessions and 4) to document the information on passport and
characterization. This allowed the creation of a national collection of Capsicum germplasm,
allowing its rescue and medium term conservation in ICTA´s genebank and its utilization in
breeding program at the near future. While this research allowed to generate digital information
about the Capsicum genus, each accession increased its amount of seed over 7 grams and now the
chile accessions are stored with a germination power greater than 70%. Moreover, each accession
is fully and completely characterized with the official descriptor for the genus. The documentation
of each accession is hung on the website of ICTA and wants to be hanged on the GRIN GLOBAL
from USA. There is seed available to share and for preserving at long-term in global seed banks
and to generate future genetic improvement processes locally.
Key words:
Capsicum spp, regeneration, seed increase, morphological characterization, active collection,
medium term preservation.
3
PARTE I
I.1. INTRODUCCIÓN
El género Capsicum, que incluye entre 20 a 30 especies, tiene su centro de origen en las regiones
tropicales y subtropicales de América. Al menos cinco de sus especies son cultivadas a nivel
mundial. Sin embargo, la mayor producción de chiles está dada por Capsicum annuum L. En esta
especie, pero también en las otras especies domesticadas, se generaron los chiles dulces y los chile
picantes (Bosland, 1992).
En Guatemala existen tres especies domesticadas del género. Estas especies son: a) Capsicum
chinense, cuyo cultivar "Habanero" produce uno de los chiles más picantes que se conocen. Esta
especie es endémica en el Peten, b) Capsicum frutescens, cuyo cultivar "Tabasco" es famoso por
ser la materia prima para preparar la salsa del mismo nombre, c) Capsicum pubescens, cuyo
cultivar "Chile de caballo” es muy apreciado por su sabor y picor en el altiplano del país. En
Guatemala también se reportan tres especies silvestres. Estas son: Capsicum annuum var
aviculare, Capsicum lanceolatum y Capsicum ciliatum (Azurdia & González, 1986).
Después del descubrimiento de América todas las especies, principalmente Capsicum annuum L,
fueron dispersadas en distintas regiones del mundo y rápidamente se constituyeron en la principal
"especia" o condimento de comidas típicas de muchos países. Aunque su cultivo es generalmente
reducido en superficie en muchos países, este se encuentra ampliamente extendido alrededor del
mundo (Greenleaf, 1986, Pickersgill, 1997).
El fruto de las especies es una baya con características muy variables. El peso de los frutos fluctúa
entre unos pocos gramos hasta medio kilo. Se encuentran formas redondas, acorazonadas,
aguzadas, cilíndricas, cónicas, rectangulares y hasta cuadradas. Hay frutos inmaduros de color
blanco, verde, café y hasta negro. En maduro predominan los frutos de color rojo, pero también
los hay de color marfil, amarillo, anaranjado, café, lila o morado y negro. En la placenta se
disponen numerosas semillas pequeñas, planas y de color crema a pardo. Las semillas del C.
pubescens son de color negro, únicas en el genero (Bosland, 1992).
Existen grandes cantidades, más que suficientes, de formas y colores en los chiles cultivados
alrededor del mundo (Bosland, 1992; Dewitt 1996; Greenleaf, 1986, MacNeish, 1964 y
Pickersgill, 1997) y los usos para estos chiles son tan diversos como los tipos de frutos en el
género Capsicum (Bosland, 1993; Bosland, 1994; Cichewicz, 1996, Muhyi, 1995 y Scoville,
1912). Primariamente, los frutos son consumidos como vegetales frescos o como especia al ser
deshidratados. Por volumen, los productos de chile rojo, pungentes y no pungentes, representan
una de las más importantes especias commodite en el mundo. Ellas como especia adicionan
sabor, aroma y color a los alimentos mientras que proveen vitaminas, antioxidantes y minerales.
En muchos hogares, los chiles proveen la única vía necesaria para estimular la ingesta de dietas
blandas. El rango de productos alimenticios que contienen chile o sus constituyentes químicos es
amplio e incluye los alimentos étnicos, carnes, aderezos, mayonesa, lácteos, bebidas, caramelos,
galletas, repostería, panadería y pastelería, salsas y pastas. Los extractos de chile también son
utilizados en productos farmacéuticos y cosméticos. En adición a su uso como alimento,
condimento y medicina el chile también es usado como ornamento.
Existe una tremenda variación fenotípica en formas de fruta, tamaños, colores, así como en los
habito de la planta entre los cultivares de chile. Una forma práctica de clasificar esta enorme
diversidad es agrupar los chiles por tipo de fruto dentro de las especies (Azurdia, 1986). El
sistema de clasificación hortícola para chiles (Bosland, 1992) está basado, en el agrupamiento de
4
los cultivares por sus características hortícolamente similares, tales como la forma, el tamaño, el
color, la textura, el sabor y la pungencia del fruto. Esta clasificación es útil porque ésta hace
ordenar una ilimitada diversidad de cultivares. Aunque primariamente se elaboró para clasificar
cultivares de Capsicum annuum L., este sistema puede utilizarse también para las otras cuatro
especies cultivadas. Capsicum annuum L. es la especie más cultivada, diversa y conocida del
mundo. Dentro de esta especie, el tamaño del fruto puede variar desde 0.5 a más de 10 cms de
ancho. Algunos frutos tienen textura lisa y otros son rugosos. Los frutos pueden ser alargados,
ovalados, cónicos, acampanados, redondos o cuadrados. El color de los frutos inmaduros puede
variar. Los hay en tonos blancos, verdes claros, verdes oscuros, amarillentos, cafés, púrpuras y
negros. Mientras que el color del fruto maduro puede ser, amarillo, anaranjado, purpura, café,
negro y en su mayoría rojo. Pero también hay morfotipos de chile con frutos maduros, negros,
blanco y aún de color verde oscuro. Este sistema de identificación, es el método más comúnmente
utilizado hoy día. Por ejemplo, el muy bien conocido ´Cal Wonder´ es clasificado como
Capsicum annuum, bell pepper, cv.´Cal Wonder´. Este método capacita a quienes se relacionan
con chiles a comunicarse acerca de los chiles de una manera inteligente por abajo del nivel de
especies.
Sin embargo, la clasificación hortícola aunque tiene amplia aplicación en cultivares mejorados, no
es aplicable a cultivares criollos, ni mucho menos a cultivares silvestres. Si aunado a esto, se
incorpora la necesidad de conocer mejor el germoplasma del género Capsicum de origen
guatemalteco y su potencial de uso en programas de fitomejoramiento del género, se hace
prioritaria la caracterización y evaluación morfológica de los morfotipos disponibles. De igual
forma, dados los embates del cambio climático y cuyos efectos son evidentes en las respuestas de
los cultivos a cambios de temperatura, condiciones de humedad y al aparecimiento de nuevos
brotes de insectos y enfermedades más dañinos y virulentas, la evaluación pre fitomejoramiento
del germoplasma de Capsicum de Guatemala se hace urgente y emergente para adaptar las
especies del género a nuevos sistemas de producción.
En Guatemala el género Capsicum tiene amplia adaptación, existen cultivares que se adaptan a
condiciones a nivel del mar, a otros que prefieren alturas de los 2,000 metros sobre el nivel del
mar. En este rango de altura, la precipitación y la temperatura también varían y por ello, la
caracterización y evaluación morfológica se desarrolla en localidades que representen estos
factores ambientales lo mejor posible.
Como verdura fresca la composición nutritiva puede ser muy variable según el cultivar. En el
estado de verdura verde fresca, se destaca el alto contenido de ácido ascórbico, valor que es
superior al de muchos cítricos. Otros tipos de chile picante presentan valores 10 veces más altos de
Vitamina A que los chiles dulces. El picor es la característica organoléptica más relevante del
género. En la placenta de los frutos de chile, se ubican unas glándulas ricas en capsacinoides. El
capsacinode que más prevalece es la capsicina Lo picante de un fruto es variable según el cultivar,
el ambiente y el estrés de producción y el método de estimación. El resultado de la pungencia se
expresa en unidades Scoville (uS), en honor del inventor del método (Scoville, 1912)
Finalmente toda la información generada en la caracterización y evaluación morfológica debe
sistematizarse y hacerse disponible a los científicos en medios que permitan su intercambio y que
faciliten o al menos propicien el acceso regulado al germoplasma de interés.
5
I.2. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
Las recolecciones sistematizadas de Capsicum en Guatemala se reportan en el informe Búsqueda y
recolección de algunos cultivos nativos de Guatemala (Azurdia, 1986) y tesis de grado de
ingeniero agrónomo de la Facultad de Agronomía de la Universidad de San Carlos y en el informe
Recolección de germoplasma de chile tipo habanero (Capsicum chínense Jacq.) en el
departamento del Peten, AGROCYT 03-2002. Mientras que la caracterización agro morfológica y
bromatológica de la mayoría de las colectas está contenida en tesis de grado y en el informe
Caracterización de algunos cultivos nativos de Guatemala (Azurdia, 1995). Sin embargo, por la
falta de condiciones apropiadas de almacenamiento para semillas antes del 2000, los duplicados
nacionales de Capsicum de las recolecciones de los años 80 perdieron su viabilidad y poder de
germinación. Afortunadamente, copia de las accesiones, duplicados, se enviaron al banco de
Germoplasma del CATIE y están en resguardo en el mismo. El CATIE también compartió copias
de las accesiones de Capsicum con el banco de germoplasma del Centro Internacional de
Vegetales de Taiwán (AVRDC, por sus siglas en Ingles).
Hoy día el Instituto de Ciencia y Tecnología Agrícolas –ICTA- posee un banco de germoplasma
que permite la conservación de semillas ortodoxas por un periodo máximo de siete años. Se
cuenta con una temperatura controlada de 4º C y con una humedad relativa dentro del banco de
6% lo que permite conservar colecciones de Capsicum a mediano plazo. Sin embargo, ahora la
limitante es la falta de recursos para poder realizar de nuevo las recolecciones del germoplasma.
Por iniciativa propia y con el apoyo de estudiantes de la Universidad Rural y Universidad Rafael
Landivar, el investigador principal de este estudio, se dio a la tarea de orientar y captar desde el
2003 al 2009, la recolecta de genotipos de chiles desde huertos tropicales, caseros o familiares;
desde campos de agricultores de bajos recursos y poca tecnología agrícola y/o desde ambientes
silvestres. A finales del 2009 se lograron concentrar en una colección activa aproximadamente
325 accesiones de C. annuum, 30 accesiones de C. chínense, 17 accesiones de C. frutescens, 45
accesiones de C. pubescens y unas 50 accesiones de Capsicum no determinados
taxonómicamente. Esta colección activa, obviamente poseía accesiones con poca semilla que
URGENTEMENTE requerían de su multiplicación y rejuvenecimiento (Bosland, 1993; Dainello,
1986; y Erwin, 1937). Este proceso permitió simultáneamente la caracterización agro morfológica
de las accesiones y facilitó que en el futuro se tenga la disponibilidad de semilla para estudios
moleculares de diversidad genética y permitirá realizar evaluaciones de pre mejoramiento para la
búsqueda de genes que provean resistencia o tolerancia a condiciones bióticas y abióticas
influenciadas por el cambio climático.
I.2.1. Antecedentes en Guatemala.
I.2.1.1. Diversidad morfológica del género Capsicum:
Al analizar la variabilidad morfológica de Capsicum se constata que es posible encontrar
diferentes formas, tamaños y colores de fruta. También existen diferentes estructuras de planta,
diferentes grados de precocidad a floración y fructificación, diferentes grados de pubescencia en
tallos y hojas, diferentes grados de susceptibilidad a plagas y enfermedades (Bosland, 1991;
Greenleaf, 1986 y Tanksley, 1988), diferentes grados de pungencia, etc. Toda esta variabilidad
morfológica, hace que las poblaciones de Capsicum sean materia prima idónea para el desarrollo
de nuevos cultivares mejorados (IBPGR, 1983). Un ejemplo de esa diversidad se muestra en la
composición fotográfica siguiente.
6
Fotografía No. 1. Diversidad morfológica en el género Capsicum.
Fuente: NMSU, EUA 1994
I.2.1.2. Utilización reciente del germoplasma de Capsicum en Guatemala:
Con accesiones de la colección activa de Capsicum en ICTA, se desarrollaron recientemente tres
investigaciones aplicadas: a) Búsqueda de resistencia genética a Phytophthora capsici Leonian en
germoplasma de Capsicum de Guatemala, Desarrollo tecnológico del cultivo de Paprika en
Guatemala y Respuesta a las podas de formación del cultivar ´Cajamarca´ (C. chínense Jacq) con
propósitos ornamentales. Los resultados obtenidos tienen potencial promisorio. Otras
instituciones nacionales han realizado y están en el proceso de investigación aplicada en el
género para usos diversos de la población guatemalteca.
I.2.2. Justificación del trabajo de investigación
I.2.2.1. Potencial del germoplasma de Capsicum en Guatemala:
Desafortunadamente las especies cultivadas de Capsicum de Guatemala, no aparecen entre las
especies de importancia económica para la diversificación de la agricultura, mucho menos para
promover la agroindustria nacional. A nivel mundial, cada día se sabe más de los beneficios que
ofrece el género Capsicum en la industria de alimentos, la farmacología y la medicina humana (13
y 22) su consumo como hortaliza fresca entre los vegetarianos se ha incrementado, especialmente
por proveer antioxidantes a la dieta. La industria de alimentos, así como las empresas de
cosméticos, aprecian mucho el pigmento natural de Capsicum. En consecuencia, divulgar y
promover la potencialidad del género en su transformación y procesos agroindustriales es
importante para la industrialización del país. Como ya se mencionó, el género tiene diversos usos
que permiten el desarrollo de innovaciones tecnológicas productivas y agroindustriales que lo
hacen muy competitivo en el mercado nacional e internacional (Dainello, 1986 y Pickersgill,
7
1997). Lamentablemente, el potencial económico del género en nuestro país es desconocido. Así
por ejemplo, se puede mencionar que el potencial agroindustrial del género está en 1) la extracción
de pigmentos, 2) la extracción de capsicina pura, 3) la producción de páprika y 3) la obtención de
oleorresina. Adicional a lo anterior, el género Capsicum puede generar divisas al fomentarse las
empresas de producción comercial de semillas de chile mejoradas para el mundo. No menos
importante es el nicho de producción de plantas de Capsicum con propósitos ornamentales.
Finalmente, los efectos del cambio climático sobre la agricultura potencializan a los recursos
fitogenéticos del país. En particular recursos fitogenéticos de Capsicum por ser Guatemala un
centro secundario de diversidad de C. annuum L. Nuevos cultivares de chile con características
que permitan la adaptación del género a condiciones de estrés biótico y abiótico resultantes de la
variación climática se requerirán. La materia prima para lograrlos será la disponibilidad de
germoplasma debidamente evaluado y documentado.
8
I.3. OBJETIVOS E HIPOTESIS
I.3.1. Objetivos
I.3.1.1. General
Crear una colección nacional del germoplasma de Capsicum spp, a partir de una
colección activa, generada en los últimos siete años, por esfuerzo personal y con la
colaboración de estudiantes de la Universidad Rural y Universidad Rafael Landivar de
Guatemala, para su conservación a mediano plazo (6-7 años) y utilización en procesos de
mejoramiento genético bajo condiciones ambientales propias del país.
I.3.1.2. Específicos
I.3.1.2.1. Sembrar y evaluar las accesiones de la colección activa de germoplasma de
Capsicum para su REJUVENECIMIENTO (Manteniendo su diversidad genética y
recuperación de vigor y poder de germinación en la progenie)
I.3.1.2.2. Evaluar y caracterizar morfológicamente las accesiones de la colección activa
del germoplasma de Capsicum de Guatemala.
I.3.1.2.3. Sembrar y evaluar las accesiones de la colección activa de germoplasma de
Capsicum para su INCREMENTO en cantidad de semilla y así crear la colección de
mediano plazo de germoplasma de Capsicum de Guatemala (21).
I.3.1.2.4. Aprovechar el REJUVENECIMIENTO y el INCREMENTO de la colección
activa de germoplasma de Capsicum para su caracterización morfológica utilizando para
el efecto el descriptor oficial del IBPGR para el género (Azurdia, 1986 e IBPGR, 1995).
I.3.1.2.5. Rescate y conservación a mediano plazo en el banco de germoplasma.
I.3.1.2.6. Incrementar las accesiones al final del proceso en 100 gramos cada una y que
tengan un poder de germinación superior al 85%.
I.3.1.2.7. Generar la base de datos, documentación de la colección de mediano plazo de
germoplasma de Capsicum de Guatemala.
I.3.1.2.8. Divulgar a las autoridades, actores sociales e instituciones en el campo de su
competencia la información obtenida de la investigación.
I.3.2. Hipótesis.
Aunque la propuesta consideró la observación, la medición y el registro de lo observado,
la misma no constituyó una investigación experimental agrícola con la intención de
probar alguna hipótesis experimental. La misma, tuvo el enfoque de investigación
descriptiva en lo que respecta a la caracterización morfológica del germoplasma de
Capsicum y el propósito de rescatar y conservar una colección activa de germoplasma de
9
Capsicum que necesita de incremento de su semilla, de la recuperación de su vigor y de
su poder de germinación.
Los objetivos alcanzaron sus metas parcialmente, al lograr incrementar cada accesión su
cantidad de semilla y contar ahora con porcentajes de germinación de 70 hasta 100 % y la
caracterización morfológica del 80 % de las accesiones establecidas.
Fotografía 2. Vista parcial del sitio experimental en ICTA-CIOR, El Oasis,
Estanzuela, Zacapa.
Fuente: FODECYT 018-2010
10
I.4. METODOLOGÍA
I.4.1. La colección activa de germoplasma de Capsicum:
La colección activa de germoplasma de Capsicum, se constituyó con recolecciones
personales del investigador principal y la colaboración de estudiantes de la carrera de
Ingeniería Ambiental de la Facultad de Ciencias Naturales de la Universidad Rural de
Guatemala y de estudiantes de la carrera de Ingeniería Agrícola de Cultivos del Trópico
de la Facultad de Ciencias Ambientales y Agrícolas, sede Escuintla de la Universidad
Rafael Landivar de Guatemala. La misma se inició a conjuntar en el año 2003 y continuó
hasta finales del 2009. La estrategia para la obtención de una muestra de Capsicum que
llegó a constituirse en la colección activa fue: El origen de la muestra tenía que ser
exclusivamente de poblaciones de Capsicum en huertos tropicales familiares, en jardines
familiares o en ambientes silvestres.
El número final de accesiones de la colección activa de germoplasma de Capsicum que se
consideró en el rejuvenecimiento e incremento se resume a continuación:
Capsicum annuum L 354
Capsicum chínense Jacq. 30
Capsicum frutescens L 17
Capsicum pubescens 45
Capsicum spp 50
TOTAL DE ACCESIONES 496
I.4.2. Localización de las Fases de Ejecución del Proyecto:
Para la realización de la presente investigación, tres sitios experimentales fueron
seleccionados. Todos y cada uno de ellos pertenecen a estaciones experimentales de
Centros de Innovación Tecnológica del ICTA. Los sitios estaban localizados en: Fase I:
CIOR-Zacapa, Finca El Oasis, en Estanzuela, Zacapa; Fase II: CIAL-Chimaltenango,
Finca La Alameda, en La Alameda, Chimaltenango y Fase III: CINOR-San Jerónimo,
Finca San Jerónimo, en San Jerónimo, Baja Verapaz. El proceso técnico metodológico
utilizado en cada fase se presenta a continuación:
I.4.2.1. FASE 1: Centro de Innovación de Oriente, CIOR-Zacapa, ICTA. Finca El
Oasis, Estanzuela, Zacapa, 2010-2011.
El investigador asociado encargado de las actividades técnicas durante la Fase I, fue el
Ing. Agr. Héctor Hugo Ruano Solís, hruanosol@hotmail.com.
Localidad: La Finca El Oasis, está ubicada en las coordenadas geográficas: Latitud
Norte: 14º 57´51´´, Longitud Oeste: 89º 35´ 04´´ a una altitud de 210 metros sobre el nivel
del mar.
11
Época de realización: Desde Octubre del 2010 hasta Junio del 2011.
Accesiones: Se establecieron doscientos treinta y dos (232) accesiones en campo
definitivo de la colección activa de germoplasma de Capsicum de Guatemala para
altimetrías desde 0 a 500 metros sobre el nivel del mar.
Diseño Experimental: Debido a la naturaleza del proyecto no se implementó un diseño
experimental porque no se requería.
Distancias de trasplante: 1.80 m entre surcos, 0.20 m entre plantas. Parcela de 10
metros de largo conteniendo 50 plantas por accesión.
Área bruta de la parcela. 10m x 1.80 = 18 m2.
Variables de respuesta que se registraron: 1). Los descriptores ambientales del sitio y
2) Descriptores morfológicos Descriptores de Capsicum, IBPGR, 1987).
Análisis de la información
Adicional a lo requerido en los descriptores del género, la cantidad de semilla y su
porcentaje de germinación fue entregada al Banco de Germoplasma de ICTA por cada
accesión o morfotipo.
Manejo del cultivo
Elaboración y manejo de los semilleros.
La semilla de cada accesión o morfotipo evaluado en la presente investigación fue tratada
de la siguiente manera. Cien semillas de cada accesión fueron colocadas en tela organdí,
la cual fue sellada con bandas de hule. Etiquetas de papel bond liso de 120 gramos
fueron usadas para identificar cada accesión. La identificación se hizo con lápiz No.2.
Cada bolsita de organdí formada, contenía su respectiva etiqueta. Las bolsitas de organdí
conteniendo la semilla y su etiqueta respectiva, fueron inmersas en una solución de
hipoclorito de sodio por 5 minutos. Luego el exceso de hipoclorito de sodio fue
eliminado con dos enjuagues de agua destilada. Seguidamente, la semilla se puso a secar
en un área cálida, pero sin contacto directo con la luz solar. Se procedió a la siembra de
dos semillas por celda de cada accesión, cuando ésta estaba seca y las bandejas con
sustrato a base de Peat Moss preparadas.
Los semilleros de las accesiones de chile de la Fase I, se establecieron, en la Empresa
Amadeo Export, S.A. en Estanzuela, Zacapa. Las plántulas se trasplantaron al campo
definitivo 60 días después de su siembra. Se proveyó un control efectivo de las plagas y
enfermedades en el invernadero y al mismo tiempo se le dio el manejo comercial
estándar de la empresa a las accesiones. Se produjo una plántula sana y vigorosa.
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Fotografía No. 3 Registrando datos de descriptores de plántula
Fuente: FODECYT 018-2010
Fotografía No.4 Vista parcial de invernadero en Amadeo Export S.A.
Fuente: FODECYT 018-2010
Preparación del terreno definitivo:
El sitio experimental fue chapeado para eliminar vegetación que interfiriera con la
preparación mecanizada del campo. Seguidamente, el suelo se preparó haciendo un paso
de arado de discos y dos pasos de rastra cruzados. Se surqueó el terreno a 1.8 m,
levantándose camellones de 0.3 m. Para el efecto se utilizó un tractor con implementos
especiales que simultáneamente surqueó, colocó la manguera de riego por goteo al
centro del camellón y colocó el acolchado plástico (polietileno) sobre los camellones. El
área de terreno que se preparó fue de 0.63 Ha.
13
Fotografía No.5. Preparación de terreno en ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa
Fuente: FODECYT 018-2010
Riego pre y post trasplante:
Previo al trasplante de las accesiones de chile, se revisó el sistema de riego, se hicieron
varias reparaciones a la tubería y se dio servicio de mantenimiento a las llaves de paso y
a los conectores para optimizar el agua. Se realizó un riego de 12 horas de pre siembra
un día antes del trasplante y posteriormente a este, se irrigó cada cinco días por 8 horas
para mantener la capacidad de campo del terreno necesaria para el normal desarrollo y
productividad de cada una de las accesiones de chile plantadas.
Trasplante:
Para realizar esta actividad fue necesario previamente trazar las parcelas, ahoyar el
plástico a 0.2 m y recoger las tapitas de plástico del ahoyado. El trasplante de las
doscientas treinta y dos entradas de Capsicum de Guatemala, se llevó a cabo el veintitrés
de Noviembre de 2010, cuarenta y cinco días (45) después de la siembra del semillero.
De acuerdo con la cantidad de plántulas disponibles, se establecieron un máximo de
cincuenta (50) plántulas por entrada. Simultáneamente al trasplante, se colocaron por
entrada, seis tutores de bambú formando una V invertida y posteriormente y a medida
que se avanzaba con el trasplante, se fueron colocando mallas cobertores de polietileno a
cada entrada. Esto se hizo para evitar la presencia de insectos vectores de virus y en
consecuencia prevenir el daño que ocasionan los virus en fases tempranas de desarrollo y
crecimiento de los chiles. Porque fue imposible obtener más, sesenta cajas de malla anti
vectores de polietileno (50 mesh) se utilizaron en las accesiones más precoces para evitar
el ingreso de insectos polinizadores que indujeran cruzamientos indeseables en la entrada
y de esta manera garantizar la autofecundación.
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Fotografía No. 6. Trasplante y colocación de cobertores anti polinizadores
Fuente: FODECYT 018-2010.
Control de plagas.
Insectos del Follaje:
El control de plagas que se realizó fue principalmente para plagas del follaje de los
órdenes Ortóptera, Homóptera y Lepidóptera. En los meses de Enero y Febrero del año
2011 se rebasaron los umbrales de daño económico del Anthonomus eugenie, del
complejo de gusanos Spodoptera y de Helicoverpha zea. Las aspersiones de insecticidas
que se hicieron procuraron una buena cobertura sobre el follaje de la planta. Los
productos, la época de aplicación y las dosis empleadas se reportan el cuadro No.
Cuadro1. Insecticidas, época y dosis de aplicación por aspersión en El Oasis,
Estanzuela, Zacapa.
Ingrediente activo Época de Aplicación Dosis
Fenil-Pirazol-fipromil 52 días después del trasplante 2 L/Ha
Deltamethrin,
Triazophos
12, 25, 40, días después del
trasplante.
2.5 L/Ha.
Cloronicotinilo,
Thiacloprid,
Betacifluthon
8, 20, 35, 60, días después del
trasplante.
1 L/Ha.
Fuente: FODECYT 018-2010
Enfermedades.
Debido a la prevalencia inusual de humedades relativas altas en el sitio experimental la
aplicación de fungicidas químicos preventivos fue necesaria para evitar el daño por Tizón
Tardío (Phytophthora infestans) y Tizón temprano (Alternaría solani). En el cuadro se
reportan los ingredientes activos, la época de aplicación y la dosis empleada en las
aspersiones.
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Cuadro 2. Fungicidas, época y dosis de aplicación por aspersión en El Oasis,
Estanzuela, Zacapa.
PRODUCTO CUANDO SE APLICÓ DÓSIS
Mancozeb A los 8, 25, 40 días después del
trasplante.
2.5 kg/ha
Metallic copper A los 15, 30, 60 días después del
trasplante.
2.0 Kg/Ha.
Trifloxystrobin +
Tebuconazole
Cuando se presentaron los primeros
síntomas de las enfermedades.
0.25 kg/ha
Fuente: FODECYT 018-2010
Control de malezas
Esta actividad contempló dos métodos: la manual y el químico. El control químico
consistió en la aplicación del herbicida Glifosato, en una dosis de 2 litros por Ha, doce
días antes del trasplante de las accesiones de chile. El producto se dirigió a las calles no
cubiertas con plástico y donde se desarrollaba el crecimiento de malezas de hoja angosta
y ancha y donde el Cyperus spp, crecía agresivamente. Este control químico se repitió a
los 15 y 60 días después del trasplante utilizando pantallas que protegían a las plantas de
chile del contacto con el herbicida.
Por su lado, el control manual de malezas, se concentró sobre las hileras de chile y el área
que estaba cubierta con plástico. Se realizaron cuatro limpias manuales a cada una de las
accesiones, esto durante la fase de crecimiento vegetativo, por debajo y dentro de las
mallas cobertores, para evitar que las malezas compitieran por nutrientes, luz y espacio
con las plantas de chile.
Nutrición vegetal
En el plan de fertilización de esta Fase I, se utilizaron dos métodos de aplicación de
nutrientes: a) Ahoyado al suelo y b) por aspersiones al área foliar de los chiles. En el
Cuadro se aprecia el producto, su razón por superficie y la época de aplicación.
Cuadro 3. Nutrición de los chiles en El Oasis, Estanzuela, Zacapa
PRODUCTO Cantidad por área CUANDO SE APLICO
15-15-15 de fórmula
química.
272 Kg / Ha 10 días después del
trasplante se ahoyó a 15 cm
del pie de la planta de chile,
se colocó el fertilizante y se
cubrió con tierra.
N,P,K y elementos
menores: Ca, B y S
(Bayfolan Forte)
2 L / Ha 20, 35 y 50 y70 días
después del trasplante, con
buena cobertura del follaje
en la aspersión.
Fuente: FODECYT 018-2010
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I.4.2.2. FASE II. Centro de Innovación del Altiplano-Chimaltenango, -CIAL-
Chimaltenango, ICTA, La Alameda, Chimaltenango, 2011.
El investigador asociado encargado de las actividades técnicas durante la Fase II, fue el
Ing. Agr. Luis Américo Márquez, luamarquez@hotmail.com
Estructura protegida disponible: área
protegida de 10 x 20 metros.
Columnas y tijeras de madera: pared
de bloque de un metro de altura.
Paredes con malla anti vectores de 1.6
mm, techo plástico con protección UV
de 1 mil de grosor. Puerta de entrada
doble con pediluvio. Área de
preparación y almacenaje de
soluciones nutritivas. Esta estructura
contó con un sistema de hidroponía
que incluyó: macetas plásticas de
Fuente: FODECYT 018-2010
27.94 cm de diámetro sin drenaje; sustrato de piedra volcánica de hasta 0.5 cm de
diámetro y mangueras de riego/ drenaje de 2.54 cm de diámetro Las macetas estaban
montadas en tablas de maderas clavadas en columnas de 10 x 10 cm de ancho y a 0.9 m
de altura sobre el suelo. El área contó con agua para riego de las plantas.
Siembra de almacigo: Esta actividad se realizó a finales del mes de febrero cuando ya no
existían riesgos de heladas en el sitio de la experiencia. Las semillas de chile se
sembraron en bandejas plásticas de 244 celdas que se colocaron en un invernadero de
germinación. De la colección activa de Capsicum se seleccionaron 32 morfotipos de C.
pubescens Ruiz & Pavón para esta fase II. De los 32 morfotipos, 29 germinaron y
solamente a 23 de ellos se les registró la información requerida por el descriptor. Esto
debido a que estos morfotipos tuvieron más de 10 plantas para estimar y registrar el
descriptor correspondiente. La toma de datos se inició en la etapa fenológica de plántula
y continuó a lo largo de la fase vegetativa y reproductiva de los morfotipos: descriptores
de planta, de floración, de fruto y de semilla.
Fotografía No. 7. Estructura protegida
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Fotografía No. 8. Lavado del sustrato volcánico.
Fuente: FODECYT 018-2010
Preparación de la estructura hidropónica: se inició con el lavado del sustrato a utilizar
(roca volcánica). Se usó abundante cantidad de agua para eliminar adecuadamente
residuos de tierra, raíces y otros residuos que pudieran estar presentes en el sustrato. Ya
lavado el sustrato se colocó en macetas No.4 con dimensiones de 19.05 cm en la base,
27.94 cm en la parte superior y 8.63 cm de alto. La capacidad de la maceta fue de 8.4
litros. Individualmente se colocó la manguera de 2.54 cm que sirvió para el riego y
drenaje de las plantas de chile.
Fotografía No. 9. Manguera para fertiriego y drenaje.
Listo el contenedor con el sustrato, se procedió a
su desinfección Esta se realizó con una solución
ácida a pH = 3, durante 24 horas. Lugo se procedió
a drenar esta solución y se preparó otra a pH 5.5.
Ésta se dejó en los contenedores con el sustrato por
24 horas. Luego se drenó y se colocó agua a pH = 7
por otras 24 horas. Enseguida ésta agua se drenó.
Con esto se limpiaron impurezas y sales que aún
hubiesen quedado en el sustrato. Para acidificar el
agua se utilizó ácido sulfúrico 2N. Limpio y
desinfectado el sustrato, se procedió a trasplantar
las plántulas de chile de caballo cuando estas
Fuente: FODECYT 018-2010
tenían entre cuatro y seis hojas verdaderas, colocándolas al centro del contenedor. Con
una pequeña pala de jardinero se hizo a un lado el sustrato y se colocó la plántula: Luego
se regresó el sustrato y se acomodó de tal forma que la plántula quedó completamente
erecta.
El riego y la fertilización de las plántulas: estos se realizaron simultáneamente. Para
esto, se preparó la solución nutritiva en toneles de 200 litros de capacidad. Previo a diluir
18
los fertilizantes, se ajustó el pH del agua a 5.5. Al diluir un fertilizante se volvió a
verificar el pH de la solución, si varió, se volvió a ajustar la solución a un de pH 5.5.
Esto se realizó para cada uno de los fertilizantes a colocar como nutrientes. Al final se
ajustó el pH de la solución a 6.5. El pH se midió con un potenciómetro portátil, el ajuste
de éste se realizó con ácido sulfúrico 1N. Al finalizar la preparación de la solución
nutritiva, se realizó la medición de la conductividad eléctrica. Esto para verificar que la
presión osmótica de la solución no estuviese por arriba de la aceptada por el cultivo. De
preferencia y de acuerdo al cultivo, ésta estuvo entre 2 – 3 micro ohmios Para la
determinación se utilizó un conductímetro portátil.
Para realizar el riego en sí, se conectó el sistema de riego y drenaje al contenedor. El
sistema de riego y drenaje consistió en una cubeta de 10 L de capacidad con un tubo de
poliducto de 25 cm perforado en los primeros 20 cm. Éste fue introducido al contenedor
lateralmente. Fue forrado con tela de “Tul” para evitar que las raíces de las plantas de
chile al fondo del contenedor sin drenaje invadieran el tubo y obstruyeran el paso del
agua de riego. Luego de conectar la cubeta al este tubo de poliducto se elevó la cubeta
con la solución nutritiva. Se esperó a que el agua fluyera hasta la parte superior del
sustrato en el contenedor. Luego se bajó al piso la cubeta y por diferencia de altura la
solución regresó a la cubeta. Con la humedad que queda en el sustrato, la planta estuvo
hidratada por 24 - 48 horas, dependiendo de la etapa fenológica en la que se encontraba.
Normalmente el fertiriego se realizó cada dos días tres veces por semana durante todo el
ciclo de producción.
Para saber cuándo había que cambiar de solución nutritiva, se midió la conductividad
eléctrica (C.E) de la misma. Cuando ésta estaba llegando a un 25% de la C.E. original, se
preparó una nueva solución nutritiva. Los fertilizantes utilizados como fuentes para los
elementos mayores, N, P, K, Ca, Mg y S fueron hidrosolubles: CaNO3, MAP, Multi-K,
MgSO4, y MgNO3. Los elementos menores, Fe, Cu, Zn y Mo se adicionaron con un
fertilizante foliar (Bayfolan™) a razón de 1 cc por litro de agua.
Fotografía No. 10. Proceso de fertiriego y drenaje de excedentes de solución nutritiva
Fuente: FODECYT 018-2010
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Control de plagas y enfermedades:
Para el control de plagas y enfermedades en el módulo hidropónico, se requirió realizar
dos monitores de plagas y enfermedades por semana dentro de la estructura protegida. Al
detectarse la presencia de las mismas, se utilizó el producto adecuado, ya sea insecticida,
fungicida o acaricida de acuerdo a las indicaciones del fabricante en la etiqueta. Con los
muestreos constantes se pudo minimizar el uso de pesticidas, ya que el problema fue
detectado a tiempo que permitió realizar prácticas culturales o aplicaciones preventivas
para controlar la plaga o enfermedad. La plaga que en un momento se detectó y controló
a tiempo fue la de los trips. Problemas de enfermedades fungosas o bacterianas no fueron
detectados en el módulo hidropónico.
Manejo de problemas fisiológicos:
Estos problemas son muy comunes en los cultivos bajo cubierta. Si no se tiene un buen
control de la temperatura y humedad relativa estos son problemas potencialmente
riesgosos. Para la reducción de riesgo, se debe manejar adecuadamente la conductividad
eléctrica de la solución nutritiva y no forzar a la planta con su nutrición. En este estudio
se presentó el problema. El primer síntoma fue la presencia de meristemos apicales
flácidos en las horas de mayor temperatura. Posteriormente aparecieron deficiencias de
calcio en la base apical del fruto. Aunado a esto, un exceso de humedad relativa arriba
del 65 % fue adecuado para el aparecimiento de frutos acuosos. Una poda de hoja para
mejorar la ventilación entre plantas fue necesaria para controlar el problema. Por otro
lado, humedades relativas abajo del 50%, producen una deshidratación paulatina de las
plantas. Por eso las plantas siempre, se mantuvieron a capacidad de campo en el sustrato.
En plena maduración de fruto una deficiencia de agua pudo provocar rajaduras en los
mismos dañando su apariencia. Por esto también se tuvo mucho cuidado en la
disponibilidad de agua en este estado fenológico. Finalmente, se tuvo cuidado de que las
temperaturas máximas no superarán los 35 grados ni bajarán de los 12 grados mínimo, ya
que provocarían problemas de polinización y por ende deformación y pérdida de calidad.
Fotografía No. 11. Diversidad de Capsicum pubescens Ruiz & Pavón
Fuente: FODECYT 018-2010
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Cosecha y extracción, secado de semilla:
La cosecha se realizó cuando el fruto llegó a su completa madurez fisiológica e incluso
cuando empezó a deshidratarse. El fruto tuvo buena consistencia y se arrancó fácilmente
de la planta. La cosecha se hizo manual depositando los frutos de cada morfotipo en
canastas plásticas de 37.46 cm X 32.38 cm X 55.25 cm. Estas canastas se trasladaron a un
área protegida con ambiente seco (40% HR) y temperatura alta (35º C) en donde cada
fruto fue cortado en tiras para facilitar la separación de la semilla de la placenta. Por lo
carnoso del fruto, se separó la semilla de la placenta en el menor tiempo posible y ésta
fue colocada sobre papel periódico para su rápido secado. Una vez seca la semilla se
colocó en bolsas de papel kraft, se identificaron y se enviaron al Banco de Germoplasma
para su proceso de ingreso al mismo. Acá se le realizaron pruebas de germinación y se
estimó el peso de semilla producida previo a su almacenamiento para conservación a
mediano plazo.
Fotografía No. 12. C. pubescens Ruiz & Pavón listos para cosecha de frutos
Fuente: FODECYT 018-2010
Fotografía No. 13. Frutos de C. pubescens Ruiz & Pavón recién cosechados
Fuente: FODECYT 018-2010
21
Fotografía No. 14. Extracción de semillas del fruto y proceso de secado de las mismas.
Fuente: FODECYT 018-2010
I.4.2.3. FASE III. Centro de Innovación del Norte –CINOR- , ICTA, San Jerónimo,
Baja Verapaz.
El investigador asociado encargado de las actividades técnicas durante la Fase III, fue el
Técnico en Horticultura Eduardo Alfredo Landaverri, uradevernal@hotmail.com.
El área de estudio lo constituyó el Centro Experimental ICTA San Jerónimo, localizado
en el municipio de San Jerónimo departamento de Baja Verapaz, ubicado entre 930 a
1,000 msnm y 15° 05’ latitud norte y 90° 17’ longitud oeste.
En este sitio experimental predomina el clima templado con una temperatura media anual
de 22° centígrados y precipitación media anual DE 1,296 ml. (INSIVUMEH 2,010).
El trabajo de campo se inició en el mes de mayo de 2011. La preparación del suelo
consistió en un paso de arado de discos, dos pasos de rastra y el respectivo surqueado a
0.9 m entre sí. Luego fueron formadas camas de 1.80 m entre sí. Previo al trasplante
definitivo a campo abierto, se realizó la colocación del fertilizante químico base. Para el
efecto se utilizó la fórmula química: 15 N, 15 PO2,15 K con una dosis de 545 Kg por
hectárea. Las camas de 0.3 m de alto fueron cubiertas con cobertura de polietileno gris
negro de 0,7 mil de grosor. Esta cobertura fue perforada a 0.4 m para realizar el trasplante
de las plántulas de chile.
22
Fotografía No. 15. Surqueo y creación de camas con colocación de manguera de riego
a 1.8 m entre hileras.
Fuente: FODECYT 018-2010 Fuente: FODECYT 018-2010
Fotografía No.16. Emplasticado del suelo. Fotografía No. 17. Terreno listo para
el trasplante.
Fuente: FODECYT 018-2010 Fuente: FODECYT 018-2010.
En San Jerónimo, Baja Verapaz, se sembraron al almacigo 191 morfotipos de chiles
procedentes de la colección activa de Chiles de ICTA. Su origen altitudinal los ubica en
un rango de 500 a 1,500 msnm.
Almacigo o semillero:
Bandejas plásticas de 244 celdas fueron llenadas con el sustrato. De cada morfotipo de
chile fueron sembradas 100 semillas y en su momento oportuno se dejaron 50 plántulas
para el trasplante. La siembra de los 191 morfotipos fue realizada entre el 24 y 29 de
junio de 2011. Las plántulas de los morfotipos de chile fueron cultivadas en una
estructura protegida, casa malla. Durante su cultivo, fueron entonces regadas y
fitosanitariamente cuidadas. A los 20 días de la siembra se procedió a tomar y a registrar
la información sobre el porcentaje de germinación de cada uno de los morfotipos. Esta
información permitió establecer aquellos morfotipos que debían ser trasplantados a
campo definitivo para su incremento, rejuvenecimiento y caracterización morfológica.
23
Fotografía No. 18. Semillero de accesiones de chile en ICTA, San Jerónimo, BV.
Fuente: FODECYT 018 2010
Trasplante:
Las plántulas fueron trasplantadas a campo definitivo entre el 5 y el 12 de Agosto cuando
estas tenían 45 días de edad. La unidad experimental para cada morfotipo consistió de
50 plantas de 10 m de longitud por 1.8 m de ancho. El total de morfotipos trasplantados
alcanzó la cifra de 154, en virtud que 37 de estos no germinaron por problemas de
viabilidad y poder de germinación de la semilla. Las plantas en campo definitivo, fueron
inmediatamente protegidas con cajas de malla de polietileno. Esto evitaría el arribo de
insectos vectores de virus y al mismo tiempo permitiría la utilización de autografía para
el incremento y rejuvenecimiento de los morfotipos de chile.
Una vez emergidas las plántulas de chile en el almacigo ubicado en casa malla, se inició
la toma y el registro de datos requeridos para la caracterización morfológica de los
morfotipos de chile. Esta toma y registro de datos se continuó hasta cuando se decidió
abandonar el estudio por causas extremas del clima en la región de tal manera que se
tomó y registró datos solo sobre la planta y la floración. (IPGRI- AVRDC-CATIE 1995).
Fotografía No. 19. Plántulas de chile y vista del campo definitivo ya plantado
Fuente: FODECYT 018-2010 Fuente: FODECYT 018-2010
24
Manejo cultural en campo definitivo:
Durante el mes de septiembre 2011, fue necesario realizar un control mecánico de
malezas tanto sobre la hilera del cultivo, como entre las calles de las hileras de cultivo. Se
realizaron aplicaciones de fertilizantes hidrosolubles vía goteo. Para el control de plagas
se realizaron aplicaciones de los insecticidas Movento™, Rienda™, Evisect 50 SP™ y
Monarca™ en forma alterna semanal. Las enfermedades fueron prevenidas con
aplicaciones preventivas de los fungicidas Dithane™ y Antracol™. En todos los casos de
aplicación de pesticidas se siguieron las recomendaciones de los fabricantes expresadas n
la etiqueta del producto. Durante la fase de floración de los morfotipos, se confirmó la
especie botánica a la que cada uno de ellos pertenece.
Fotografía No. 20. Campo plantado y protegido con cobertores anti polinizadores.
Fuente: FODECYT 018-2010
25
PARTE II.
MARCO TEÓRICO
II.1. El Género Capsicum
Las especies de Capsicum son, casi sin excepción, plurianuales. La planta, de tallo
leñoso, forma normalmente un arbusto de hasta 15 dm de altura, algunas variedades
alcanzan tamaños superiores. Las flores son blancas o verdosas en la mayoría de las
variedades, salvo en el C. pubescens (Smith y Heiser 1957 y Yaqub y Smith, 1971), en
que tienen un color violáceo.
El fruto -técnicamente una baya- varía en coloración y tamaño de acuerdo a la variedad;
puede ser cúbico, cónico o esférico. De interior hueco, el fruto está dividido en dos o
cuatro costillas verticales que portan las semillas, de color amarillo pálido -salvo en C.
pubescens, que las presenta negras- (Smith y Heiser, 1957 y Yaqub y Smith, 1971). Sin
embargo, la mayor cantidad de semillas se aloja en la parte superior, junto al tallo. La
carnosidad del pimiento también varía según la especie. Cuando el fruto madura
fisiológicamente sus colores abarcan, según la especie, desde el blanco y el amarillo hasta
el morado intenso, pasando por el naranja, el rojo brillante y el lavanda. El color verde es
señal de inmadurez fisiológica, pero muchas especies de Capsicum se consumen también
en este estado fresco.
La forma de propagación es mediante semillas que se mantienen viables hasta por tres
años si se conservan en un ambiente adecuado. El fruto es una baya con varias celdas las
cuales están ligeramente unidas entre sí pues los tabiques que las separan no están
interconectados.
El género Capsicum está muy distribuido a nivel mundial y se encuentra en gran
diversidad de formas, tamaños, colores, sabores, olores y niveles de picor o pungencia
Bosland, 1992; Scoville, 1912 y Tanksley, 1984). Los tipos menos picantes que son los
que se utilizan para industrializar y a nivel casero, por lo general están compuestos en un
gran porcentaje por agua, en promedio un 74,3%. El contenido de proteína es de 2,3%, y
el de carbohidratos de 15,8%; otros de los componentes son vitaminas y minerales y
sustancias antioxidantes. Los parámetros para evaluar la calidad del chile picante son el
picor, el color y la cantidad de vitamina C.
II.2. Origen y distribución geográfica del género Capsicum:
Barbara Pickersgill, etnobotánica (Pickersgill, 1997), cree que los primeros morfotipos de
chile se originaron en el pasado remoto geológico en un área bordeada por las montañas
del Sur de Brasil hacia el Este, por Bolivia al Oeste y por Paraguay y el Norte de
Argentina hacia el Sur. Esta localidad es llamada “área nuclear” y tiene la más alta
concentración de especies silvestres de chile en el mundo. En esta área nuclear y
solamente aquí, crecen representativos de todas las mayores especies domesticadas del
género.
26
Los chiles eran desconocidos en Europa, Asia y África antes de que Cristóbal Colón
llegara a América (Bosland, 1992 y Dewitt y Bosland, 1996)). Colón pudo no ser el
primer europeo en América, pero a él se le da el crédito de haberlo introducido en Europa
y subsecuentemente al África y Asia. En sus viajes, él encontró una planta cuyo fruto
mimetizaba la pungencia de la pimienta negra, Piper nigrum (L). Colón erróneamente
nombró a la especie Capsicum “pimienta”. La planta no fue la pimienta negra, sino una
planta desconocida que más tarde se clasificó como Capsicum. Capsicum no está
relacionado al género Piper. En1493, Peter Martyr (De Witt y Bosland, 1996) escribió
que Colón trajo a casa “pimienta más pungente que aquella del Cáucaso”.
La nueva pimienta se dispersó rápidamente a lo largo de las rutas de especias entre
Europa y África, India, China y Japón. La nueva especie, a diferencia de la mayoría de
plantas introducidas desde el hemisferio occidental, fue incorporada instantáneamente a
las cocinas nacionales.
La relación de los seres humanos con el género Capsicum comenzó hace 10.000 o 12.000
años, cuando las primeras personas habitaron el hemisferio occidental. El género
Capsicum se asocia con poderes místicos y espirituales para nuestros ancestros. Su
domesticación no fue un evento aislado. Existen cinco especies diferentes domesticadas,
por lo que se infiere que Capsicum fue domesticado probablemente por lo menos cinco
veces independientemente (Bosland, 1996).
II.3. Clasificación taxonómica
División : Spermatofita
Clase : Dicotiledoneae
Orden : Solanales
Familia : Solanaceae
Genero : Capsicum
Especies domesticadas : Capsicum annuum
C. chinense
C. baccatum
C. frutescens
C. pubescens
El género Capsicum comprende especies originarias del Nuevo Mundo. No existe aún un
diagnóstico definitivo del género. Debouck y Libreros (1993) revisaron la información
existente sobre el número de especies y reconocen entre 10 y 25, considerando 11
especies dudosas de pertenecer al género. Basados en el color de la flor (blanca y
morada) se distinguen dos grupos de especies (IBPGR, 1983). El grupo de flor morada
reúne las especies Capsicum eximium, C. cardenassi y C. pubescens. El grupo de flor
blanca lo conforman dos subgrupos, el primero constituido por C. baccatum con sus dos
variedades botánicas C. baccatum var. baccatum y C. baccatum var.pendulum
(Eshbaugh, 1977), y el segundo conformado por C. annuum, C. frutescens y C. chinense.
Se presentan diferencias morfológicas entre los dos grupos, lo cual dificulta el
27
cruzamiento entre ellos (Eshbaugh, 1977; Gil Ortega, 1990). La especie C. chacoense, de
flor blanca, parece ser el nexo entre los dos grupos (Jensen et al., 1979).
A continuación, se presenta una reseña histórica del número de especies que han sido
clasificadas dentro del género Capsicum por diferentes investigadores desde 1699 hasta
1957.
AÑO: 1699
AUTOR: Morrison
TRABAJO: “Plantarum Historiae Universales Oxoniensis”
CLASIFICACIÓN: 33 variantes para ajíes
AÑO: 1700
AUTOR: Tournefort
CLASIFICACIÓN: Da al género el nombre Capsicum, y lista 27 especies.
AÑO: 1753
AUTOR: Linnaeus
TRABAJO: “Species Plantarum”
CLASIFICACION: Reduce Capsicum a dos especies, C. annuum y C. frutescens.
AÑO: 1767
AUTOR: Linnaeus
CLASIFICACION: Adiciona dos especies más, C. baccatum y C. grossum.
AÑO: 1790
AUTOR: Ruiz y Pavón
CLASIFICACION: Describen la especie Capsicum pubescens
AÑO: 1798
AUTOR: Willdenow
CLASIFICACION: Describe la especie C. pendulum
AÑO: 1852
AUTOR: Dunal
CLASIFICACION: Describe 50 especies en el género y lista otras 11 posibles
AÑO: 1898
AUTOR: Irish
CLASIFICACION: Reconoce solo dos especies, C. annuum y C. frutescens.
AÑO: 1923
AUTOR: L. H. Bailey
CLASIFICACION: Solo una especie, C. frutescens
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AÑO: 1953
AUTOR: Heiser y Smith
CLASIFICACION: Recategorizaron el género dentro de cuatro especies, C. annuum,
C. frutescens, C. baccatum y C. pubescens.
AÑO: 1957
AUTOR: Smith y Heiser
CLASIFICACION: Determinaron a C. chinense como especie única, provocando la
actual lista de cinco especies domesticadas.
En la actualidad, el género Capsicum consta de por lo menos 25 especies silvestres y
cinco especies domesticadas. Pero esto es solo un estimativo. Se cree que pudieran
descubrirse y nombrarse nuevas especies en el futuro (Bosland, 1996).
II.4. Especies biológicas y morfológicas
Los científicos definen las especies de dos maneras, las biológicas y las morfológicas.
Cada una se basa en un conjunto diferente de criterios para establecer el concepto de
especie. Un taxónomo, para establecer una especie morfológica, examina los rasgos
florales y observa similitudes y diferencias en las estructuras florales. Una especie
biológica se define como una población o serie de poblaciones dentro de la cual ocurre
libre flujo de genes bajo condiciones naturales. Esto significa que las dos poblaciones de
plantas deben poder producir progenie fértil en las subsecuentes generaciones. Si hay
intercambio genético libre entre dos poblaciones, se consideraría que ellas son de la
misma especie. Capsicum posee una multitud de formas de frutas, colores y tamaños. Sin
conocimiento genético, los primeros taxonomistas nombraron las especies basados
principalmente en la morfología de los frutos, o sea, según el concepto de especie
morfológica (Bosland, 1996).
Saccardo y La Gioria (1982, citado por Bosland, 1996), encontraron apareamiento
anormal de cromosomas en el cruce de una accesión de Colombia con otras de México y
Nuevo México (USA). La fertilidad reducida en la progenie fue causada por varias
translocaciones que habían ocurrido entre la población colombiana y las otras dos
poblaciones. El aislamiento geográfico ha permitido a las poblaciones de C. annuum
iniciar un proceso de diferenciación que posiblemente podría llevar a dos especies
diferentes.
II.5. Especies domesticadas
Con base en las características morfológicas se distinguen cinco especies domesticadas:
C. annuum L.; C. frutescens L.; C. baccatum var. Pendulum Wild.; C. chinense Jacq. y C.
pubescens R y P. A continuación en el Cuadro 4 se pueden observar las principales
características de las cinco especies domesticadas.
29
II.6. Especies silvestres
Las especies silvestres tienen importancia como posibles donantes de genes de interés, se
destacan C. chacoense A.T. Hunz, C. galapagoense A. T. Hunz, C. praetermissum H & S,
C. cardenassi H & S, C. eximium A. T. Hunz y C. tovarii Nom. Nud. Sus principales
características se describen en el Cuadro 5.
Cuadro 4. Principales características de las especies domesticadas de Capsicum.
Característica C. annuum C. frutescens C. chinense C. baccatum C. pubescens
Flores Solitarias Solitarias Dos o más por nudo Solitarias Solitarias e inclinadas
Pedicelos Declinados Erectos Erectos o declinados Erectos o declinados Erectos
Corola Blanco lechoso, Verdosa-blanca Verdosa-blanca Blanca o verdosa Morada
Ocasionalmente Ocasionalmente blanca
Púrpura blanca o morada
Manchas NO NO NO SI NO
Cáliz No tiene constricción No tiene constricción Tiene constricción Tiene constricción No tiene constricción
anular anular anular anular
Venas Prolongadas en No No Prolongadas en Prolongadas en
dientes cortos prolongadas en prolongadas en dientes dientes
dientes dientes prominentes
Pulpa Blanda Blanda Firme Firme Firme
Semillas Amarillas Amarillas Amarillas Amarillas Oscuras
No.
Cromosómico 2n=24 2n=24 2n=24 2n=24 2n=24
Un par de Un par de Un par de Un par de
cromosomas cromosomas cromosomas cromosomas
acrocéntricos acrocéntricos acrocéntricos acrocéntricos
Nombres Jalapeño Tabasco Habanero Escabeche Caballo
Comunes Serrano Diente de perro Panka Ají Siete caldos
Pimiento Pimiento de
Bell Cheiro
Chamborote
Cobanero
Fuente: Galmarini, 1992; USDA, 1994; IBPGR, 1983.
Cuadro 5 Principales características de las especies silvestres de Capsicum.
Característica C. chacoense C. galapagoense C. praetermissum C. cardenassi C. eximium C. tovari
Flores solitarias solitarias 2 a 5 por nudo Acampanuladas más de dos por púrpuras, con manchas amarillas
Con manchas nudo con manchas
amarillas amarillas
Pedicelo Erecto
Corola Blanca y mancha
Amarilla en la base
Cáliz Presenta constricción Tiene dientes No tiene dientes
Fruto Blando
Semillas Amarillas y rugosas
Distribución Norte argentino Galápagos Sur de Brasil Bolivia Norte argentino Región andina de Perú
Zonas adyacentes
a Bolivia y
Paraguay
Fuente: Galmarini, 1992; Hunziker, 1950.
II.7. Domesticación de especies de Capsicum.
Las especies silvestres del género Capsicum se distribuyen a través de la cadena
montañosa de los Andes suramericanos y en las costas montañosas y proximidades bajas
de las regiones del sur, sudeste y nordeste brasileño. La distribución es continua desde
Venezuela, Colombia, Ecuador, Perú, Bolivia, Brasil, Paraguay y Norte de Argentina
30
(Heiser & Smith, 1958). La distribución de especies silvestres ocurre en ambientes
ecológicos distintos. Por ejemplo, Eshbaugh (1983) cita un ambiente de áreas
semidesérticas para C. eximium, asociado a vegetación espinosa y de ambiente seco en el
sudeste de Bolivia. Hunziker (1950) reporta para C. chacoense var. tomentosum un
ambiente de bosque en Paraguay y Argentina. Heiser y Smith (1958) presentan un
ambiente seco para C. cardenasii en Bolivia. D´arcy & Eshbaugh (1974) citan ambientes
secos con elevaciones de 500 a 2000 metros para C. ciliatum y para C. tovarii, zonas
xerofíticas.
La actual distribución del género Capsicum hace difícil determinar la región de origen
para un determinado taxón y probablemente no se logre determinar un área precisa. Sin
embargo, se sabe que Río de Janeiro (Brasil) es uno de los principales centros de
diversidad, con mayor número de especies (García, 2006). A partir de la distribución
geográfica del género es posible elaborar mapas de patrones de diversidad, con una o más
áreas de concentración de especies, por esto denominados “centros de diversidad
genética”. Esto se puede relacionar a un nivel elevado de endemismo como es el caso de
Brasil, o estar distribuido en grandes áreas. Por ejemplo, C. ciliatum se distribuye de
Costa Rica hasta Perú, haciendo parte de tres centros de diversidad (Venezuela,
Colombia y Ecuador). C. baccatum var. baccatum integra los centros de Perú, Bolivia y
Argentina (García, 2006).
De las especies nativas por lo menos cinco fueron domesticadas independientemente en
diferentes regiones de México, América Central y Sur América; son cosechadas y
utilizadas por el hombre, estas son: C. pubescens, C. baccatum, C. annuum, C. chinense y
C. frutescens (IBPGR, 1983). Según Pickersgill, 1980, las tres especies C. annuum, C.
chinense y C. frutescens se consideran como un cultigrupo en vía de diferenciación.
Aunque pueden unirse brechas entre los acervos genéticos a través de la hibridación
artificial, esto raramente sucede en la naturaleza (Bosland, 1996). Algunas de las especies
dentro del género pueden ser agrupadas dentro de Complejos. Es posible el intercambio
genético dentro de un Complejo, aunque con algunas dificultades. Cada Complejo está
compuesto por las especies domesticadas y sus silvestres relacionados. Cada uno puede
verse como un acervo genético primario de diversidad. El Complejo pubescens consiste
en C. pubescens, C. eximium y C. cardenasii, mientras el Complejo baccatum está
compuesto por C. baccatum, C. praetermissum y C. tovarii. El Complejo annuum
consiste en C. annuum, C. frutescens, C. chinense, C.chacoense y C. galapagoense
(Bosland, 1996).
Según Pickersgill (1983, 1986), las plantas se dividen en tres categorías según el grado de
domesticación: Plantas domesticadas: Son aquellas en las cuales el hombre seleccionó
determinadas alteraciones genéticas, de modo que no son capaces de sobrevivir en
condiciones naturales, con una absoluta dependencia del hombre para su sobrevivencia.
Plantas semi-domesticadas: Son las encontradas en ambientes alterados por el hombre,
pero no presentan diferencias morfológicas significativas con relación a las poblaciones
silvestres donde se originaron. Presentan un grado bajo de dependencia con el hombre.
31
Plantas silvestres: Son las que normalmente no se presentan en ambientes antrópicos no
existe ningún grado de relación de dependencia con el hombre. Para Capsicum, todas las
especies silvestres tienen frutos pequeños, verdes, pungentes, que pueden ser ovales,
esféricos, cónicos u oblongos, crecen en forma erecta o decidua a madurez. Las semillas
son prevalentemente diseminadas por los pájaros atraídos por el color brillante de los
frutos. En contraste, las cultivadas presentan menor cantidad de frutos de mayor tamaño,
pendientes y persistentes y con variedad de colores: amarillo, naranja, violeta, marrón,
verde (García, 2006).
La mayoría de los trabajos arqueológicos relacionados a Capsicum fueron realizados
junto a las civilizaciones Maya y Azteca (México y Centro América) e Inca (Costa
Andina de América del Sur). Pickersgill (1969) en excavaciones en Perú, relata la
presencia de frutos y semillas de 2800 a 1800 a. c. y discute sobre evidencias de
domesticación (cálices fuertemente unidos a los frutos). Así mismo hace referencia a los
resultados de las excavaciones de Kaplan y Mac. Neish en 1960 y Mac. Neish en 1964,
donde fueron identificados ejemplares de Capsicum en sitios arqueológicos de América
Central y del Sur de 700 a. c., sugieren que estas plantas ya venían siendo utilizadas por
el hombre.
A pesar de que Capsicum no presentan suficiente calidad nutritiva para la alimentación
humana (carbohidratos y proteínas), su amplio uso se puede haber originado en el interés
que pudo haber causado la gran cantidad de frutos y colores del género. También pudo
haber sido el sabor y el aroma que es tan importante en Capsicum, como el color y la
forma. (Bosland, 1996).
El uso de los pimientos por parte de los primitivos de las Américas fue registrado en
algunos relatos de viajes de cronistas que participaron en los primeros viajes al nuevo
Mundo; así Pickersgill (1969) cita autores relacionados a expediciones en América como
Oviedo y Valdés en 1547, Acosta en 1590, Garcilazo de la Vega en 1609, Cobo en 1953,
entre otros. De acuerdo con estos relatos los pimientos americanos eran usadas en
alimentación tanto en forma de frutos como de hojas, en ritos religiosos, medicina y
como instrumento monetario de los Incas (García, 2006). Los datos arqueológicos, el
desconocimiento de los europeos de los pimientos americanos, los relatos del uso por
parte de los nativos del Nuevo Mundo, así como el conocimiento de la distribución de
especies no domesticadas son prueba suficiente del origen americano del género (García,
2006).
Eshbaugh (1983) sugiere tres rutas distintas de introducción del género Capsicum al
Viejo Mundo, a través de los primeros exploradores, de jardines botánicos que sirvieron
de instrumentos para introducción a las colonias de Inglaterra, Holanda y Francia, y de la
ruta de comercio de esclavos. Mc. Leod. et al. (1982), basados en análisis isoenzimáticos,
información geográfica de las especies domesticadas, concluyeron que la mayoría de las
especies se originaron en la región centro–sur de Bolivia, con posterior migración para
los Andes o regiones bajas de la Amazonía.
32
Se han postulados varias hipótesis para explicar la evolución del género. El origen mono
filético de las especies domesticadas a partir del ancestral común C. frutescens,
Davenport (1970); cuatro o cinco progenitores silvestres, que dieron origen cada uno a
una especie domesticada (Heiser citado por Mc. Leod, 1983); tres líneas independientes
de evolución, que llevaron a la domesticación de C. pubescens, C. baccatum y el
complejo annuum. Este complejo se originó a partir de una ancestral común en las
regiones bajas de la Amazonía, mientras C. baccatum, en las regiones bajas de Bolivia.
Recientemente y con base en análisis electroforético se propone a Colombia como
posible centro de origen para el complejo annuum con posterior migración hacia Centro
América y Sur América (Pickersgill, 1986).
II.8. Importancia de la caracterización y evaluación de germoplasma
En los bancos de germoplasma de los países de América del sur, Centroamérica y el
Caribe se encuentran aproximadamente 660.000 accesiones pertenecientes a un rango
amplio de géneros y especies de plantas las cuales están solo parcialmente documentadas.
En los últimos años se han realizado esfuerzos importantes en el registro y
almacenamiento de los datos de pasaporte y la caracterización de estas accesiones, así
como el intercambio de la información relacionada (Franco, 2003). Los recursos
fitogenéticos se conservan para utilizarlos, y ello sólo es posible si se conocen sus
características y posibles usos. La información que nos permite conocer el germoplasma y
determinar su utilidad proviene de tomar y analizar un conjunto de datos sobre el
germoplasma, en diversas etapas de la conservación pero principalmente durante la
caracterización y evaluación.
La caracterización y la evaluación son actividades complementarias que consisten en
describir los atributos cualitativos y cuantitativos de las accesiones de una misma especie
para diferenciarlas, determinar su utilidad, estructura, variabilidad genética y relaciones
entre ellas, y localizar genes que estimulen su uso en la producción o el mejoramiento de
cultivos. Las dos actividades requieren exactitud, cuidado y constancia e incluyen un
componente importante de registro de datos. Existen diferentes enfoques de la
caracterización en función del tipo de caracteres utilizados. A grandes rasgos los
principales grupos de caracteres utilizables en caracterización vegetal, permiten dividir
la caracterización en las siguientes clases: morfológica, fisiológica, citológica,
bioquímica y molecular (Gonzáles y Pita, 2001).
II.9. Caracterización y evaluación morfo agronómica de Capsicum.
El género Capsicum presenta alrededor de 20 a 25 especies silvestres (Heiser, 1985), y
algunas se pueden cruzar con las domesticadas. Se encontró dentro de éstas algunos genes
que permiten su adaptación a condiciones y ambientes difíciles. Con este grupo de
especies se ha realizado un intenso trabajo de manejo de germoplasma como lo
demuestra el hecho de la existencia de un número de colecciones de tamaño considerable
que según reportes del IBPGR sumaron 25 en 1983. En 1999, el IPGRI reportó 143
instituciones, con un total de 58.817 accesiones de Capsicum. En América Latina se
destacan las colecciones del Centro de Agricultura Tropical de Investigación y Enseñanza
33
(CATIE), de Costa Rica; la del Departamento de Fitotecnia de la Universidad de Vicosa
(Brasil); la de la sección de Recursos Genéticos del Centro de Investigaciones Agrícolas
de El Bajío (México), la de la Universidad Agraria de la Molina en Perú (Galmarini,
1992) y la de la Universidad Nacional de Colombia con 720 accesiones. Actualmente, el
AVRDC (Asian Vegetable Research and Development Center) en Taiwán cuenta con una
colección mundial de germoplasma de Capsicum de 6.844 accesiones de 95 países,
representando ocho especies. El AVRDC duplica, en contenido de accesiones, las
colecciones del CATIE (Costa Rica) y el USDA (Estados Unidos) juntos. Un total de
2.722 accesiones han sido caracterizadas por el AVRDC y otras han sido caracterizadas
por el Laboratorio Nacional de los Recursos Genéticos de las Plantas (NPGRL) en
Filipinas y por la Universidad de Kasetsart en Bangkok, Tailandia. La caracterización fue
basada en los descriptores propuestos por el IPGRI (Berke y Engle, 1997). En 1989, el
AVRDC creó el International Chilli Pepper Nursery (ICPN), que luego recibió el nombre
de International Network for Tropical Hot Pepper (INTHOPE). En la actualidad sus
políticas están centradas en el libre cambio del germoplasma de Capsicum, que se
extiende desde Asia hasta los países del trópico; así como de la información contenida en
el Centro de Documentación del Banco de Germoplasma (Berke y Engle, 1997).
Aproximadamente más de 1000 accesiones de Capsicum han sido también reportadas en
Costa Rica, Alemania, México y Estados Unidos. Pequeñas colecciones se encuentran en
otros lugares diferentes a los grandes Centros Mundiales de Germoplasma de Capsicum
(Berke y Engle, 1997). Dos grandes colecciones han sido reportadas en México. La más
grande es la del Instituto Nacional de Investigaciones Forestales y Agropecuarias
(INIFAP) en Celaya, Guanajuato, con 3590 accesiones. Una segunda colección se
encuentra en el Banco de Germoplasma de la Ciudad de México, con 1.500 accesiones
(Berke and Engle, 1997). Una colección de pimientos y ajíes (Capsicum) se inició en los
80 en el ICA Palmira. En 1983 se contaba con 135 materiales, en su mayoría colectados
en Colombia. Este banco de germoplasma fue homologado por el IBPGR, habiéndose
iniciado desde entonces intercambio de materiales con el extranjero, así como la
descripción del mismo (Garcia, 2006).
Los aumentos de germoplasma así como la caracterización y evaluación de los mismos en
un programa de recursos genéticos son básicos para su posterior utilización en un
programa de mejoramiento (Pickersgill, 1969). La caracterización consta del registro de
atributos de alta heredabilidad que se expresan en todos los ambientes (Williams, 1982) y
la evaluación comprende datos que se toman para una serie de caracteres que pueden ser
afectados por el ambiente, como también de aspectos específicos, incluyendo reacción
a enfermedades, plagas, sequía, etc. (Ford – Lloyd y Jackson, 1986). El registro de
información se realiza a través de la lista de descriptores, de los cuales comprenden cada
una de las variables a observarse con una calificación categorizante, que busca
estandarizar y uniformizar la descripción sistemática por cultivo y facilitar el intercambio
de información entre centros nacionales e internacionales (Engels, 1985).
II.10. Los recursos fitogenéticos de Guatemala.
34
A continuación se presenta un extracto de la recopilación histórica inédita y sin
publicación sobre los recursos fitogenéticos de Guatemala, que desarrolló el investigador
principal del FODECYT 18-2010 durante el año 1994, cuando se propuso la creación de
una Unidad de Recursos Fito genéticos en ICTA (González, 1994).
Los recursos fitogenéticos, los genes de cualquier especie son recursos naturales
limitados y perecederos. Estos son fuente de producción agro-pastoril-medicinal-
industrial- ornamental y forestal en un país. Estos son también la materia prima para los
fitomejoradores Los recursos fitogenéticos de cualquier especie poseen genes útiles
conocidos o desconocidos; genes resistentes a plagas y enfermedades por ejemplo, que
pueden ser incorporados a nuevas y más productivas variedades de plantas.
Mesoamérica es un área geográfica que comprende la mayor parte del sur de México
hasta la parte norte del territorio costarricense. Mesoamérica es reconocida
mundialmente por sus grandes culturas indígenas. También esta región del mundo es
reconocida por haber sido aquí donde la domesticación de plantas dio origen a la
agricultura en el continente.
Guatemala como parte de Mesoamérica es centro de origen, de diversidad y variabilidad
genética de muchas especies vegetales de importancia económica mundial, maíces,
frijoles, chiles, bledos, cucúrbitas entre otros muchos. Es bien reconocido que en
Guatemala la variabilidad genética de los cultivos mencionados es extremadamente alta.
Más importante aún, es que en Guatemala es posible encontrar parientes silvestres y
especies relacionadas a las especies de cultivos.
Guatemala es y ha sido fuente de germoplasma para el desarrollo de cultivares mejorados
transnacionales. Muchas variedades de maíz, frijol, chiles, tomates, güicoyes, ayotes,
aguacates, cacaos, zinnias, flor de pascua, por mencionar tan solo unos cuantos cultivos,
poseen una base genética guatemalteca y tienen hoy día amplia distribución a nivel
mundial.
En el territorio guatemalteco, según CATIE (CATIE, 1976), es posible encontrar 50 de un
total de 104 especies de plantas originarias de Mesoamérica de importancia económica
para el hombre. Aquí se pueden mencionar plantas forestales, plantas medicinales,
plantas par fibra natural, frutales tropicales, plantas forrajeras, plantas ornamentales,
plantas alimenticias tradicionales y no tradicionales. Sin embargo, de muchísimas
especies vegetales de Guatemala aún no se sabe nada acerca de su potencial de uso. El
potencial de uso y utilización de estas especies vegetales “desconocidas” está siendo
hipotecado por la destrucción irreversible de sus ecosistemas naturales.
Toda la diversidad fitogenética de Guatemala, conocida o desconocida su utilización, está
enfrentando el desafío de los cambios tecnológicos y los efectos del cambio climático.
Una alta erosión genética en las especies vegetales nativas de Guatemala provee el
inminente proceso de su extinción. El avance de la frontera agrícola, el uso
indiscriminado de pesticidas en la agricultura tecnificada, la introducción de cultivares
35
multinacionales que desplazan cultivares nativos y criollas, concatenado con la
colonización urbana mal planificada y la indiscriminada destrucción de bosques naturales
del país aceleran dramáticamente el proceso de erosión genética de los recursos
fitogenéticos del país.
Es por esta situación tan agravante, que los científicos guatemaltecos, estén cada día más
conscientes y preocupados en salvaguardar, preservar y utilizar los recursos fitogenéticos,
patrimonio natural del pueblo guatemalteco. Esta ardua tarea persigue contribuir al
desarrollo económico sostenible al pueblo de Guatemala. Por eso, si no se toman desde
ya las medidas correctivas y las decisiones oportunas al respecto, el futuro de las
generaciones venideras del país estará hipotecándose.
Para 1994, el Instituto de Ciencia y Tecnología Agrícolas –ICTA-, no contaba con la
unidad institucional que realizara investigación en recursos fitogenéticos. Es más no se
contaba con un banco de germoplasma. Esto representó que la actividad en recursos
fitogenéticos en Guatemala anterior a 1994, no haya evolucionado favorablemente. El
ICTA en colaboración con la Facultad de Agronomía de la Universidad de San Carlos y
otras instituciones intentó desarrollar actividades en recursos fitogenéticos con el apoyo
de IBPGR del grupo consultivo y la FAO, pero fue evidente que la falta de un banco de
germoplasma en el país fue el punto débil de los esfuerzos hechos.
La construcción de un banco de germoplasma a mediano plazo en el país se dio en el
2000. Esto ocurrió como consecuencia de los efectos que tuvo el Huracán Mitch sobre la
variabilidad genética de cultivos importantes en la dieta básica del guatemalteco, maíz y
frijol. Contar con un banco de germoplasma, fue un primer paso muy importante en la
conservación y salvaguarda de germoplasma ortodoxo nacional. Este banco impulsará y
promoverá la participación activa de otras instituciones públicas y no públicas en el
desarrollo de los recursos fitogenéticos del país.
Los trabajos de exploración y recolección de recursos fitogenéticos en Guatemala han
sido comunes desde principios del siglo XX. Para tener idea de los trabajos realizados
hasta 1994, el investigador principal del FODECYT 18-2010, continua con la reseña
histórica que documentó para ICTA en 1994.
En el cultivo de maíz (González ,1994) reporta que en 1940-41, McBryde, de la
Universidad Estatal de Ohio, EUA, recolectó 318 mazorcas de 38 sitios en 13
departamentos de la república. Los ejemplares fueron enviados al Museo Botánico de la
Universidad de Harward, EUA. En 1952-53, el ingeniero agrónomo Alejandro Fuentes,
investigador del entonces Instituto Agropecuario Nacional (IAN), patrocinado por la
Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América, recolectó 1154
materiales de maíz que contribuyeron con el trabajo que generó la clasificación de razas
de maíz. Los morfotipos fueron depositados en el banco del Instituto Nacional de
Investigaciones Agropecuarias de México (INIA) y posteriormente fueron trasladadas a lo
que hoy día es el banco de germoplasma de maíz en el Centro de Investigación y
Mejoramiento de Maíz y Trigo –CIMMYT- Un duplicado nacional se guardó en Labor
36
Ovalle, Olintepeque, Quetzaltenango. Hoy día dicho duplicado no existe más (González,
1994).
En 1950, Leheau y Shieber, según González (González, 1994) recolectaron 86 genotipos
de frijol. En ICTA no se cuenta con semilla ni con la información de pasaporte de los
genotipos colectados. Una de las recolecciones más recientes de frijol, fue conducida por
Debouk y Soto en 1985. Ellos colectaron 60 materiales cultivados y 40 materiales
silvestres. Un duplicado de lo colectado fue dejado en el banco activo del cultivo de frijol
de ICTA y otro duplicado fue enviado al banco de germoplasma del Centro Internacional
de Agricultura Tropical –CIAT- en Colombia. El banco activo del cultivo de frijol de
ICTA en Jutiapa, a la fecha ha colapsado.
Bukasov en 1930 (León, 1981), colectó 10 materiales de tomate en el área de Amatitlán,
Chimaltenango y la Capital. No hay información disponible sobre las colecciones
hechas. La producción comercial de tomate en Guatemala depende de cultivares
mejorados transnacionales. Sin embargo, en ciertos mercados del interior del país,
ocasionalmente es posible aún observar frutos de cultivares criollos y de parientes
silvestres de tomate. Es por lo tanto, aún posible rescatar variabilidad genética de tomate
en Guatemala.
Bukasov en 1948 (León, 1981), colecto papas silvestres en Guatemala, pero no se cuenta
con la información de pasaporte de ellas. Dardón en la década del 70, recolectó
germoplasma de papa en Guatemala para el Centro Internacional de Papa –CIP- en Perú.
Tampoco hay datos de pasaporte de los materiales colectados. En 1985, Ruano y Estrada
recolectaron 25 genotipos de para del altiplano occidental de Guatemala para el CIP. No
se dejaron duplicados ni la información de campo de los genotipos. En las décadas 80,
90 y del 2010 se realizaron introducciones de clones de papa desde el CIP hacia
Guatemala y nuevas misiones de exploración fueron conducidas. La información de estas
últimas se encuentran en la biblioteca central de ICTA.
Las frutas tropicales de Guatemala, también han sido objeto de recolecciones (González,
1994). Las primeras colectas las realizó Wilson Popenoe en 1928-30 para aguacate y
cacao. En 1985, Cervando Rivera colectó cacao silvestre para el IBPGR. Otros países
que han realizado expediciones recientes de colección de frutas son Israel y Japón.
En 1981 se aprobó el proyecto de Recolección de Recursos Fito genéticos de Guatemala.
Conjuntamente el ICTA, la FAUSAC y el Consejo Internacional de Recursos Fito
genéticos de FAO, implementaron el proyecto. Por cuatro años consecutivos se
recolectaron semillas y material vegetativo de multiplicación de los géneros: Amaranthus,
Capsicum, Cucurbita, Iponoea, Manihot y otros. El proyecto colectó: 93 accesiones de
bledo, 208 de chile, 66 de hierbamora, 19 de chipilín, 172 de yuca, 132 de camote, 29 de
malanga, 18 de quequexque y otras. El banco de germoplasma base del proyecto se
constituyó en la Unidad de Recursos Fito genéticos del Centro Agronómico Tropical de
Investigación y Enseñanza –CATIE- en Costa Rica. Al CATIE se enviaron todas las
accesiones de semilla ortodoxa recolectada por el proyecto. Jardines clonales fueron
37
establecidos en la Finca Bulbuyá, San Miguel Panaan, Suchitepequez de la FAUSAC y
en la Finca El OASIS, de ICTA en Estanzuela, Zacapa. A la fecha de hoy estos jardines
clonales ya no existen por la falta de los recursos económicos necesarios para su
mantenimiento y manejo agronómico (González, 1994).
En ICTA, La Alameda, Chimaltenango, se estableció (González, 1994) un cuarto de
almacenamiento al que se le colocó un sistema de deshumidificadores y un sistema
móvil de estanterías de madera. La semilla se colocaba en envases plásticos de cierre
hermético. El almacén no contaba con control de temperatura ambiente. Bajo estas
condiciones, semillas de Amaranthus, Capsicum, Cucurbita, Solanum, Crotalarias y otras
fueron guardadas. Para el año 2000, la semilla que se mantenía en este cuarto de
almacenamiento había perdido su vigor y su poder de germinación y se declararon como
perdidas.
El proyecto durante su ejecución, intercambió germoplasma de semillas y materiales
vegetativos con varios países interesados en el germoplasma. Semillas de tomate, bledos
y tubérculos del camote fueron enviados a los EUA. Semillas de Capsicum, Cucurbita y
Lycopersicon fueron enviados al CATIE, AVDRC, a las Filipinas y al Brasil. Tejidos de
cultivo de yuca al CIAT, entre otros. El informe final de este proyecto fue publicado
como “Búsqueda, Conservación y Caracterización de Algunos Cultivos de Guatemala en
1986 y se encuentra disponible en las bibliotecas de ICTA y de la FAUSAC (González.
1994).
Con el germoplasma disponible del proyecto de recolección (1982-84), se ejecutó una
segunda fase de Caracterización y Evaluación Preliminar de algunos cultivos nativos de
Guatemala. Aproximadamente 35 tesis de grado académico en la FAUSAC fueron
publicadas con el apoyo de este nuevo proyecto con el IBPGR. En la descripción de las
accesiones se utilizó el descriptor oficial del IBPGR para cada especie. O bien se generó
el descriptor correspondiente cuando no existía alguno oficial. El informe final del
proyecto “Caracterización de Recursos Fito Genéticos de Guatemala” fue editado por el
Dr. César Azúrdia y publicado en 1989 (González, 1994). Copias físicas del mismo
pueden obtenerse en ICTA y en la FAUSAC. En 1991, la FAUSAC con fondos de la
Dirección General de Investigaciones de la USAC –DIGI-, desarrolló el proyecto
“Desarrollo de Prácticas Agronómicas para el cultivo de Hortalizas nativas de
Guatemala” (Fernando Rodríguez, 1996).
Desafortunadamente, el esfuerzo hecho en colectar y conservar germoplasma nativo de
Guatemala en la década de los 80, se tradujo ya para el año 1994 en la pérdida irreparable
del germoplasma colectado. Pocos fueron los cultivares desarrollados a partir del mismo.
Sobreviven hoy día, los cultivares de yuca, ‘ICTA, IZABAL’ y de camote, ‘ICTA, SAN
ANTONIO’.
38
II.11. Caracterización agro morfológica del género Capsicum en Guatemala.
Durante la ejecución del proyecto “Búsqueda, Conservación y Caracterización de algunos
cultivos nativos de Guatemala (Azurdia y González, 1986), se colectaron 208 accesiones
del género Capsicum. Con estas accesiones se implementaron al menos cuatro
evaluaciones de caracterización agromorfológica y bromatológica de Capsicum spp. En
todas las evaluaciones se buscó establecer la variabilidad genética dentro de las
accesiones bajo estudio. Dendogramas fueron generados con la información colectada
utilizando los descriptores oficiales del género (IBPGR, 1986) y los mismos permitieron
confirmar botánicamente las especies de Capsicum que estaban presentes en el país. La
caracterización del germoplasma de Capsicum en ese entonces no permitió el incremento
ni el rejuvenecimiento de la semilla de las accesiones y poco, sino nada se hizo en
esfuerzos por usar el germoplasma en procesos de mejora genética localmente. A esa
fecha, la conservación de semillas ortodoxas era en envases plásticos herméticos bajo
condiciones de ambiente en almacenes que únicamente contaban con deshumificadores.
No existía el control de temperatura.
La caracterización morfológica, conducida en varias localidades del país (Azurdia, et al,
1995) mostró la alta variabilidad existente en el germoplasma guatemalteco, pues ningún
carácter observado o medido con el descriptor respectivo resultó constante. Dentro de los
caracteres estudiados, sobresale que el 62% de los materiales cultivados presentan
pedicelo erecto o intermedio, lo que a la par del 83% de estos mismos materiales que
tienen el estigma exserto puede permitir polinización cruzada que ayuda a producir
mayor variabilidad genética. Otro elemento es la posición de los frutos. Mientras que los
materiales cultivados presentan frutos declinados, los materiales silvestres los presentan
erectos.
El contenido nutricional entre cultivares mejorados y silvestres de Capsicum varia
(Molina et al, 1997). Los chiles silvestres presentan mayor contenido de kilocalorías y
fibra cruda y menor contenido de carotenos y ácido ascórbico que chiles mejorados.
Las tesis de grado, de los ingenieros agrónomos que se graduaron con la realización de
los estudios de caracterización morfológica de Capsicum se pueden consultar en los
centros de documentación de la Facultad de Agronomía de la Universidad de San Carlos
de Guatemala, del Instituto de Ciencia y Tecnología Agrícolas –ICTA- y del Colegio de
Ingenieros Agrónomos de Guatemala. Una síntesis de los trabajos realizados puede
obtenerse en “Caracterización de algunos cultivos nativos de Guatemala” (Azurdia et al,
1995).
39
PARTE III.
RESULTADOS
III.1. Discusión de resultados
Para facilidad de entendimiento de esta sección, se presentan los resultados más
relevantes por cada localidad o Fase de estudio y posteriormente se globalizan los
resultados en base a los objetivos específicos de la investigación.
III.1.1. Descriptores ambientales de los sitios de rejuvenecimiento, incremento y
caracterización morfológica de la colección activa de germoplasma de Capsicum:
A cada investigador asociado se le entregó electrónicamente la base de datos que había
que generar en el estudio. A todos se les explicó y dio la inducción necesaria para su
generación. Y aunque se les dio el seguimiento técnico respectivo, fue imposible que
todos generaran la misma información. Esto se aprecia al presentar por Fase, la
información más relevante de cada localidad.
III.1.1.a. Centro de Innovación de Oriente –CIOR-, ICTA, Finca El Oasis,
Estanzuela, Zacapa.
a.1. Topografía:
Esto se refiere a los perfiles en materia de elevación de la superficie del terreno a escala
macro. La referencia es FAO (1990):
3. Poco ondulado: 3 – 05.9 %
a.2. Forma del terreno de mayor nivel (Características fisiográficas generales)
Se refiere a la forma de la superficie de la tierra en la zona en la cual se encuentra el sitio
de rejuvenecimiento, incremento y caracterización del germoplasma de Capsicum:
1. Planicie
a.3. Elementos del suelo y posición
La descripción geomorfológica de los alrededores inmediatos de los sitios de
rejuvenecimiento, incremento y caracterización del germoplasma de Capsicum: Adaptado
de FAO, 1990 (Ver fig. 1. En el descriptor oficial para Capsicum (Capsicum spa.)
IBPGR, AVRDC y CATIE, 1995.
4. Valle
a.4. Pendiente (grados o porcentaje)
Pendiente estimada del sitio: 2-3 %
a.5. Forma de la pendiente
Se refiere a la forma general de la pendiente en ambas direcciones, vertical y horizontal
(FAO, 1990)
1. Recta
a.6. Aspecto de la pendiente
40
La dirección en la que está orientada la pendiente donde se recolecta la información.
Describa la dirección con símbolos N, S, E, O (Por ejemplo: una pendiente orientada a
dirección sudoeste tiene un aspecto SO):
NS.
a.7. Agricultura de cultivos (FAO, 1990)
a.7.1. Cultivos anuales
6. Cultivo bajo riego
a.7.2. Cultivos perennes
2. Cultivos con riego
a.8. Vegetación general en los alrededores y en los sitios (FAO, 1990)
4. Monte (Estrato continuo de árboles, generalmente no se tocan las copas de los
árboles, puede haber estratos de vegetación secundaria)
a.9. Material parental del suelo, FAO 1990:
9. No consolidados (no especificados)
a.10. Tipo de roca:
21. Arcilla calcárea.
a.11. Pedregosidad/ rocosidad/capa dura/ cementación
1. Insuficiente para afectar la labranza
a.12. Drenaje del suelo (Adaptado FAO, 1990:
2. Moderadamente drenado
a.13. Profundidad de la capa freática, FAO, 1990:
5. > 150 cm.
a.14. Calidad del agua freática (FAO, 1990):
2. Salobre
a.15. Humedad del suelo:
5. Ligeramente húmedo.
a.16. Color de la matriz del suelo, según FAO, 1990:
7. Marrón rojizo.
a.17. Contenido de la materia orgánica en el suelo:
5. Medio (como en zonas recientemente cultivadas pero aún no muy agotadas)
a.18. Erosión del suelo:
3. Baja.
41
a.19. Fragmentos de roca > 2 mm de acuerdo con su abundancia, FAO, 1990:
1. 0- 2 %
a.20. Clase de textura del suelo, FAO 1990:
3. Franco arcilloso.
a. 21. Clase según el tamaño de la partícula del suelo, FAO 1990:
1. Arcilla < 2µm
a.22. Clasificación Taxonómica del suelo:
Serie Chicaj, según Simmons, Tirano y Pinto, 1970.
a.23. Disponibilidad de agua:
2. Irrigado
a.24. Fertilidad del suelo basada en la vegetación existente:
5. Moderada.
a.25. Clima del sitio. Se debe registrar tan cerca del sitio como sea posible. El clima de
Zacapa es cálido seco.
1. Temperatura (o C). Temperaturas diurnas: media anual: 28.26º C, Máxima media
Anual: 34.18º C, mínima media anual 20.96º C, media anual del periodo entre el
trasplante y última cosecha: 33.1ºC, 22ºC y 28.6ºC,
respectivamente.
2. Lluvias: 600 mm promedio anual en cinco años (2006-2009).
3. Vientos: 5.7 Km/h, promedio anual en seis años (2006-2010).
a) Frecuencia de huracanes: No existen
4. Humedad relativa diurna (%) del período entre el trasplante y última cosecha:
Máxima 90 % y Mínima 32 %.
a.25. Descripción de las parcelas de rejuvenecimiento, incremento y caracterización por
accesión.
a.25.1. Distancia entre hileras: 1.8 m
a.25.2. Distancia entre plantas sobre la hilera: 0.20 m
a.25.3. Número de plantas por accesión: 50
a.25.4. Dimensiones de la parcela: 10 m de longitud x 1.8 m = 18m2
a.25.5. Número de accesiones a rejuvenecer e incrementar: 273
a.25.6. Distancia de separación entre accesiones sobre la hilera: 0.5 m
a.25.7. Número de plantas caracterizadas por accesión: 10
42
Cuadro 6. Descriptores de rejuvenecimiento y del sitio de caracterización, FASE I,
en ICTA, Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
DESCRIPTORES DE
REJUVENECIMIENTO
Número de parcela en el campo
abierto
10C007 al 10C280
Ubicación ICTA-CIOR
Colaborador Hugo Ruano
Riego. Indicar la cantidad, la
frecuencia y el método de aplicación
7.2 L cada tercer día vía goteo
Número de plantas establecidas por
hectárea
27,777
Número de plantas usadas como
fuente de semilla para cada
rejuvenecimiento
20-50
DESCRIPTORES DEL SITIO DE
CARACTERIZACIÓN
País donde se hizo la caracterización Guatemala
Sitio (Instituto de Investigación) ICTA, Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Latitud 14º57´51"
Longitud 89º35´04"
Elevación (m) 210 msnm
Nombre de la granja o instituto ICTA Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Nombre y dirección del evaluador Ing. Héctor Hugo Ruano Solís, ICTA, Oasis,
Estanzuela, Zacapa, Tel: 59629528, 55140360
Fecha de siembra (DDMMAAAA) 02/10/2010
Fecha de Siembra Almacigo 02/10/2011
Modalidad de siembra 1. En Invernadero
Fecha de trasplante 23/11/2010
Fecha de primera cosecha 15/03/2011
Fecha de última cosecha 15/04/2011
Fuente: FODECYT 018-2010
43
Cuadro 7. Número de semillas germinadas de 100 sembradas por accesión de
Capsicum (10C), Fase I, ICTA, Finca El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Accesión
No.
PlantasAccesión
No.
PlantasAccesión
No.
PlantasAccesión
No.
PlantasAccesión
No.
PlantasAccesión
No.
Plantas
10C07 80 10C48 14 10C111 32 10C153 44 10C195 69 10C242 32
10C08 95 10C49 93 10C112 41 10C154 24 10C196 26 10C243 40
10C09 71 10C50 70 10C113 13 10C155 7 10C197 69 10C245 18
10C11 89 10C51 28 10C114 26 10C156 14 10C198 41 10C246 78
10C12 85 10C52 28 10C115 94 10C157 81 10C199 90 10C247 75
10C13 73 10C54 18 10C116 64 10C158 96 10C201 67 10C248 92
10C14 85 10C55 5 10C117 84 10C159 20 10C203 40 10C249 44
10C15 96 10C56 30 10C118 98 10C160 14 10C204 34 10C250 93
10C16 54 10C58 70 10C119 29 10C161 17 10C205 83 10C251 87
10C17 10 10C59 66 10C120 16 10C162 39 10C206 71 10C252 95
10C19 91 10C60 46 10C121 5 10C163 38 10C207 55 10C253 40
10C20 89 10C61 14 10C122 13 10C164 23 10C208 87 10C254 85
10C21 59 10C64 57 10C123 85 10C165 37 10C209 45 10C255 77
10C22 94 10C65 60 10C124 51 10C166 26 10C210 92 10C256 59
10C23 82 10C66 12 10C125 60 10C167 42 10C211 89 10C257 69
10C24 74 10C68 10 10C128 87 10C169 74 10C212 82 10C258 67
10C25 69 10C71 5 10C129 52 10C170 71 10C213 84 10C259 94
10C26 98 10C72 85 10C130 74 10C171 42 10C214 53 10C260 82
10C27 93 10C76 13 10C132 23 10C172 40 10C215 78 10C261 91
10C28 40 10C78 90 10C133 48 10C173 46 10C216 62 10C262 79
10C29 97 10C79 82 10C134 79 10C174 21 10C217 18 10C264 79
10C30 97 10C80 27 10C135 14 10C175 33 10C218 86 10C265 90
10C31 98 10C81 38 10C136 92 10C176 22 10C219 61 10C266 94
10C32 74 10C82 30 10C137 94 10C179 8 10C220 80 10C267 79
10C33 88 10C86 5 10C138 70 10C180 6 10C221 72 10C268 40
10C34 96 10C89 42 10C139 67 10C181 64 10C222 88 10C270 60
10C35 96 10C91 30 10C140 31 10C182 81 10C223 69 10C271 32
10C36 95 10C92 45 10C141 12 10C183 55 10C224 85 10C272 93
10C37 99 10C94 29 10C142 7 10C184 29 10C225 56 10C273 72
10C38 97 10C95 55 10C143 43 10C185 25 10C226 66 10C274 35
10C39 94 10C96 89 10C144 28 10C186 35 10C228 57 10C275 86
10C40 39 10C97 26 10C145 46 10C187 26 10C230 36 10C276 99
10C41 60 10C98 47 10C146 72 10C188 24 10C232 86 10C277 80
10C42 99 10C101 93 10C147 14 10C189 5 10C233 24 10C278 35
10C43 92 10C103 79 10C148 17 10C190 66 10C234 62 10C279 36
10C44 85 10C105 82 10C149 70 10C191 34 10C235 45 10C280 91
10C45 49 10C107 36 10C150 72 10C192 86 10C238 57
10C46 49 10C109 18 10C151 56 10C193 76 10C239 33
10C47 89 10C110 25 10C152 5 10C194 40 10C240 33
Fuente FODECYT
018-2010
44
Cuadro 8. Número de plantas establecidas ocho días después del trasplante para cada
accesión de Capsicum (10C), Fase I, ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Accesión
No.
PlantasAccesión
No.
PlantasAccesión
No.
PlantasAccesión
No.
PlantasAccesión
No.
PlantasAccesión
No.
Plantas
10C07 50 10C48 14 10C111 32 10C153 44 10C195 50 10C242 32
10C08 50 10C49 50 10C112 41 10C154 24 10C196 26 10C243 40
10C09 50 10C50 50 10C113 13 10C155 7 10C197 50 10C245 18
10C11 50 10C51 28 10C114 26 10C156 14 10C198 41 10C246 50
10C12 50 10C52 28 10C115 50 10C157 50 10C199 50 10C247 50
10C13 50 10C54 18 10C116 50 10C158 50 10C201 50 10C248 50
10C14 50 10C55 5 10C117 50 10C159 20 10C203 40 10C249 44
10C15 50 10C56 30 10C118 50 10C160 14 10C204 34 10C250 50
10C16 50 10C58 50 10C119 29 10C161 17 10C205 50 10C251 50
10C17 10 10C59 50 10C120 16 10C162 39 10C206 50 10C252 50
10C19 50 10C60 46 10C121 5 10C163 38 10C207 50 10C253 40
10C20 50 10C61 14 10C122 13 10C164 23 10C208 50 10C254 50
10C21 50 10C64 50 10C123 50 10C165 37 10C209 45 10C255 50
10C22 50 10C65 50 10C124 50 10C166 26 10C210 50 10C256 50
10C23 50 10C66 12 10C125 50 10C167 42 10C211 50 10C257 50
10C24 50 10C68 10 10C128 50 10C169 50 10C212 50 10C258 50
10C25 50 10C71 5 10C129 50 10C170 50 10C213 50 10C259 50
10C26 50 10C72 50 10C130 50 10C171 42 10C214 50 10C260 50
10C27 50 10C76 13 10C132 23 10C172 40 10C215 50 10C261 50
10C28 40 10C78 50 10C133 48 10C173 46 10C216 50 10C262 50
10C29 50 10C79 50 10C134 50 10C174 21 10C217 18 10C264 50
10C30 50 10C80 27 10C135 14 10C175 33 10C218 50 10C265 50
10C31 50 10C81 38 10C136 50 10C176 22 10C219 50 10C266 50
10C32 50 10C82 30 10C137 50 10C179 8 10C220 50 10C267 50
10C33 50 10C86 5 10C138 50 10C180 6 10C221 50 10C268 40
10C34 50 10C89 43 10C139 50 10C181 50 10C222 50 10C270 50
10C35 50 10C91 30 10C140 31 10C182 50 10C223 50 10C271 32
10C36 50 10C92 45 10C141 12 10C183 50 10C224 50 10C272 50
10C37 50 10C94 29 10C142 7 10C184 29 10C225 50 10C273 50
10C38 50 10C95 50 10C143 43 10C185 25 10C226 50 10C274 35
10C39 50 10C96 50 10C144 28 10C186 35 10C228 50 10C275 50
10C40 39 10C97 26 10C145 46 10C187 26 10C230 36 10C276 50
10C41 50 10C98 47 10C146 50 10C188 24 10C232 50 10C277 50
10C42 50 10C101 50 10C147 14 10C189 5 10C233 24 10C278 35
10C43 50 10C103 50 10C148 17 10C190 50 10C234 50 10C279 36
10C44 50 10C105 50 10C149 50 10C191 34 10C235 45 10C280 50
10C45 49 10C107 36 10C150 50 10C192 50 10C238 50
10C46 49 10C109 18 10C151 50 10C193 50 10C239 33
10C47 50 10C110 25 10C152 5 10C194 40 10C240 33
Fuente FODECYT
018-2010
45
III.1.1.b. Centro de Innovación del Altiplano-Chimaltenango –CIAL-Chimaltenango,
ICTA, La Alameda, Chimaltenango
b.1. Topografía:
Esto se refiere a los perfiles en materia de elevación de la superficie del terreno a escala
macro. La referencia es FAO (1990):
2. Casi plano: 0.6 –2.9 %
b.2. Forma del terreno de mayor nivel (Características fisiográficas generales)
Se refiere a la forma de la superficie de la tierra en la zona en la cual se encuentra el sitio
de rejuvenecimiento, incremento y caracterización del germoplasma de Capsicum:
1. Planicie
b.3. Elementos del suelo y posición
La descripción geomorfológica de los alrededores inmediatos de los sitios de
rejuvenecimiento, incremento y caracterización del germoplasma de Capsicum: Adaptado
de FAO, 1990 (Ver fig. 1. En el descriptor oficial para Capsicum (Capsicum spp.)
IBPGR, AVRDC y CATIE, 1995.
4. Valle
b.4. Pendiente (grados o porcentaje)
Pendiente estimada del sitio: 1-3 %
b.5. Forma de la pendiente
Se refiere a la forma general de la pendiente en ambas direcciones, vertical y horizontal
(FAO, 1990)
1. Recta
b.6. Aspecto de la pendiente
La dirección en la que está orientada la pendiente donde se recolecta la información.
Describa la dirección con símbolos N, S, E, O (Por ejemplo: una pendiente orientada a
dirección sudoeste tiene un aspecto SO):
NO.
b.7. Agricultura de cultivos (FAO, 1990) b
7.1. Cultivos anuales
2. Sistema de Cultivo con barbecho
b..8. Vegetación general en los alrededores y en los sitios (FAO, 1990)
3. Bosque en la parte Sur Este (Estrato continuo de árboles. Traslape de copas de
los árboles).
b.9. Material parental del suelo, FAO 1990:
16: Intemperizado in situ.
b.10. Pedregosidad/ rocosidad/capa dura/ cementación
46
1. Insuficiente para afectar la labranza
b.11. Drenaje del suelo (Adaptado FAO, 1990:
7. Bien drenado
b.12. Profundidad de la capa freática, FAO, 1990:
5: > 150 cm.
b.13. Calidad del agua freática (FAO, 1990):
3. Fresca.
b.14. Humedad del suelo:
7: Húmedo
b.15. Color de la matriz del suelo, según FAO, 1990:
13. Grisáceo.
b.16. Contenido de la materia orgánica en el suelo:
3: Baja.
b.17. Erosión del suelo:
3: Baja.
b.18. Fragmentos de roca > 2 mm de acuerdo con su abundancia, FAO, 1990:
1: 0-2 %.
b.19. Clase de textura del suelo, FAO 1990:
9: Suelo franco areno arcilloso.
b. 20. Clase según el tamaño de la partícula del suelo, FAO 1990:
4: Arena muy fina, 64-125µm
b.21. Disponibilidad de agua:
1: Lluvioso.
b.22. Fertilidad del suelo basada en la vegetación existente:
5: Moderamente drenado.
b.23. Clima del sitio. Se debe registrar tan cerca del sitio como sea posible. El clima de
Chimaltenango es de templado a frio semihúmedo.
1. Temperatura (o C). Temperatura máxima media anual: 18.76º C, Temperatura mínima
media anual 12.1º C, Temperatura Máxima absoluta 26.68º C, Temperatura Mínima
absoluta 2.68º C.
2. Lluvias: 1103 mm promedio anual en cinco años (2006-2010).
47
3. Vientos: 5.4 Km/h, promedio anual en cinco años (2006-2010).
a) Frecuencia de huracanes: No existen
b.24 Descripción de las parcelas de rejuvenecimiento, incremento y caracterización por
accesión o morfotipo en casa malla, estructura protegida y sistema hidropónico con
sustrato de piedra volcánica.
b.24.1. Distancia entre hileras de plantas: 1.0 m
b.24.2. Distancia entre plantas sobre la hilera: 0.20 m
b.24.3. Número de plantas por morfotipo: al menos 20.
b.24.4. Dimensiones de la parcela: 4 m de longitud x 1 m = 4 m2
b.24.5. Número de morfotipos a rejuvenecer: 32
b.24.7. Número de plantas caracterizadas por accesión: al menos 10
Cuadro 9. Descriptores para el rejuvenecimiento y del sitio de Caracterización, FASE
II en ICTA, Finca La Alameda, Chimaltenango.
DESCRIPTORES DE
REJUVENECIMIENTO
Número de parcela en módulo hidropónico 11C01 al 11C32
Ubicación ICTA-CIAL CHIMALTENANGO
Colaborador Luis Américo Márquez
Riego. Indicar la cantidad, la frecuencia y el
método de aplicación
7.2 L cada tercer día vía hidropónica
Número de plantas usadas como fuente de semilla
para cada rejuvenecimiento
10-20
DESCRIPTORES DEL SITIO DE
CARACTERIZACIÓN
País donde se hizo la caracterización Guatemala
Sitio (Instituto de Investigación) ICTA, Finca La Alameda, Chimaltenango
Latitud N 14 39 38
Longitud O 90 49 10
Elevación (m) 1,800 msnm
Nombre de la granja o instituto ICTA, Finca La Alameda, Chimaltenango.
Nombre y dirección del evaluador Ing. Luis Américo Márquez, ICTA, La Alameda,
Chimaltenango Tel: 4324 7087
Fecha de Siembra Almacigo 03/03/2011
Modalidad de siembra 1. En invernadero
Fecha de trasplante 18/04/2011
Fecha de primera cosecha 30/06/2011
Fecha de última cosecha 15/02/2012
Fuente: FODECYT 018-2010
48
III.1.1.c. Centro de Innovación del Norte –CINOR-, ICTA, San Jerónimo, Baja
Verapaz.
c.1. Topografía:
Esto se refiere a los perfiles en materia de elevación de la superficie del terreno a escala
macro. La referencia es FAO (1990):
3. Poco ondulado: 3 – 05.9 %
c.2. Forma del terreno de mayor nivel (Características fisiográficas generales)
Se refiere a la forma de la superficie de la tierra en la zona en la cual se encuentra el sitio
de rejuvenecimiento, incremento y caracterización del germoplasma de Capsicum:
1. Planicie
c.3. Elementos del suelo y posición
La descripción geomorfológica de los alrededores inmediatos de los sitios de
rejuvenecimiento, incremento y caracterización del germoplasma de Capsicum: Adaptado
de FAO, 1990 (Ver fig. 1. En el descriptor oficial para Capsicum (Capsicum spa.)
IBPGR, AVRDC y CATIE, 1995.
4. Valle
c.4. Pendiente (grados o porcentaje)
Pendiente estimada del sitio: 2-3 %
c.5. Forma de la pendiente
Se refiere a la forma general de la pendiente en ambas direcciones, vertical y horizontal
(FAO, 1990)
1. Recta
c.6. Aspecto de la pendiente
La dirección en la que está orientada la pendiente donde se recolecta la información.
Describa la dirección con símbolos N, S, E, O (Por ejemplo: una pendiente orientada a
dirección sudoeste tiene un aspecto SO):
NS.
c.7. Agricultura de cultivos (FAO, 1990)
c.7.1. Cultivos anuales
6. Cultivo bajo riego
c.7.2. Cultivos perennes
2. Cultivos bajo riego
c.8. Vegetación general en los alrededores y en los sitios (FAO, 1990)
4. Monte (Estrato continuo de árboles, generalmente no se tocan las copas de los
árboles, puede haber estratos de vegetación secundaria)
c.9. Material parental del suelo, FAO 1990:
49
9. No consolidados (No especificados)
c.10. Tipo de roca:
39. Desconocido.
c.11. Pedregosidad/ rocosidad/capa dura/ cementación
1. Insuficiente para afectar la labranza
c.12. Drenaje del suelo (Adaptado FAO, 1990:
2. Moderadamente drenado
c.13. Profundidad de la capa freática, FAO, 1990:
5. > 150 cm
c.15. Calidad del agua freática (FAO, 1990):
2. Salobre
c.16. Humedad del suelo:
5. Ligeramente húmedo.
c.17. Color de la matriz del suelo, según FAO, 1990:
8. Marrón amarillento.
c.18. Contenido de la materia orgánica en el suelo:
5. Medio.
c.19. Erosión del suelo:
3. Baja.
c.20. Fragmentos de roca > 2 mm de acuerdo con su abundancia, FAO, 1990:
2. 2.1- 5%
c.21. Clase de textura del suelo, FAO 1990:
10. Suelo franco arenoso
c. 22. Clase según el tamaño de la partícula del suelo, FAO 1990:
6. Arena mediana: 201-630µm
c.23. Disponibilidad de agua:
2. Irrigado
c.24. Fertilidad del suelo basada en la vegetación existente:
3. Baja.
50
c.25. Clima del sitio. Se debe registrar tan cerca del sitio como sea posible. El clima de
San Jerónimo es cálido semi seco.
1. Temperatura (o C). Temperaturas media anual 21.36º C, Temperatura máxima 29.32º
C, Temperatura mínima15.16º C, Temperatura máxima absoluta 36.16º C, Temperatura
mínima absoluta 5.64º C.
2. Lluvias: 1258 mm promedio anual en seis años (2006-2010).
3. Vientos: 4.9 Km/h, promedio anual en seis años (2006-2010).
a) Frecuencia de huracanes: No existen
4. Humedad relativa diurna media anual 71.6 %
c.26 Descripción de las parcelas de rejuvenecimiento, incremento y caracterización por
accesión.
c.26.1. Distancia entre hileras: 1.8 m
c.26.2. Distancia entre plantas sobre la hilera: 0.20 m
c.26.3. Número de plantas por accesión: 50
c.26.4. Dimensiones de la parcela: 10 m de longitud x 1.8 m = 18m2
c.26.5. Número de accesiones o morfotipos a rejuvenecer e incrementar: 191
c.26.6. Distancia de separación entre morfotipos sobre la hilera: 0.5 m
c.26.7. Número de plantas caracterizadas por morfotipo: 10.
51
Cuadro 10. Descriptores del rejuvenecimiento y del sitio de Caracterización FASE III
en ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz.
DESCRIPTORES DE
REJUVENECIMIENTO
Número de parcela en el campo
abierto
11C033 al 11C223
Ubicación ICTA-CINOR
Colaborador Eduardo Landaverri
Riego. Indicar la cantidad, la
frecuencia y el método de aplicación
Cada tercer día vía goteo
Número de plantas establecidas por
hectárea
27,777
Número de plantas usadas como
fuente de semilla para cada
rejuvenecimiento
20-50
DESCRIPTORES DEL SITIO DE
CARACTERIZACIÓN
País donde se hizo la caracterización Guatemala
Sitio (Instituto de Investigación) ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja
Verapaz.
Latitud N 15º 03´40”
Longitud O 90º 15´00”
Elevación (m) 1000 msnm
Nombre de la granja o instituto ICTA Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja
Verapaz.
Nombre y dirección del evaluador Técnico Hortícola Eduardo Landaverri, ICTA,
Finca San Jerónimo, Baja Verapaz, Tel: 7940
2903
Fecha de Siembra Almacigo 24 y 29 de 06/2011
Modalidad de siembra 1. En invernadero o casa malla
Fecha de trasplante 5 y 2 de o8/ 2011
Fecha de primera cosecha NO SE COSECHÓ
Fecha de última cosecha NO SE COSECHÓ
Fuente: FODECYT 018-2010
52
Cuadro 11. Número de semillas germinadas de 100 sembradas por accesión de
Capsicum (11C), ICTA, San Jerónimo, Baja Verapaz
AccesiónNo.
SemillasAccesión
No.
SemillasAccesión
No.
SemillasAccesión
No.
SemillasAccesión
No.
Semillas
11C33 24 11C72 27 11C111 0 11C150 12 11C189 70
11C34 8 11C73 41 11C112 21 11C151 87 11C190 68
11C35 35 11C74 8 11C113 0 11C152 7 11C191 0
11C36 0 11C75 72 11C114 50 11C153 40 11C192 90
11C37 78 11C76 18 11C115 16 11C154 53 11C193 63
11C38 54 11C77 90 11C116 0 11C155 0 11C194 10
11C39 95 11C78 0 11C117 62 11C156 13 11C195 42
11C40 82 11C79 0 11C118 0 11C157 27 11C196 28
11C41 90 11C80 39 11C119 99 11C158 55 11C197 79
11C42 90 11C81 10 11C120 0 11C159 0 11C198 7
11C43 84 11C82 21 11C121 0 11C160 8 11C199 83
11C44 66 11C83 38 11C122 23 11C161 14 11C200 50
11C45 0 11C84 37 11C123 30 11C162 20 11C201 0
11C46 87 11C85 7 11C124 68 11C163 0 11C202 2
11C47 31 11C86 34 11C125 58 11C164 8 11C203 80
11C48 0 11C87 60 11C126 54 11C165 95 11C204 12
11C49 53 11C88 0 11C127 90 11C166 60 |11C205 53
11C50 0 11C89 36 11C128 66 11C167 77 11C206 27
11C51 30 11C90 74 11C129 60 11C168 55 11C207 0
11C52 0 11C91 72 11C130 28 11C169 0 11C208 0
11C53 0 11C92 44 11C131 73 11C170 59 11C209 24
11C54 0 11C93 0 11C132 42 11C171 75 11C210 0
11C55 99 11C94 0 11C133 43 11C172 79 11C211 13
11C56 76 11C95 16 11C134 90 11C173 89 11C212 50
11C57 22 11C96 61 11C135 67 11C174 75 11C213 0
11C58 34 11C97 82 11C136 51 11C175 76 11C214 6
11C59 71 11C98 20 11C137 4 11C176 64 11C215 21
11C60 12 11C99 64 11C138 55 11C177 0 11C216 9
11C61 86 11C100 59 11C139 90 11C178 52 11C217 37
11C62 23 11C101 24 11C140 69 11C179 81 11C218 11
11C63 25 11C102 31 11C141 24 11C180 92 11C219 30
11C64 33 11C103 5 11C142 57 11C181 21 11C220 64
11C65 23 11C104 0 11C143 63 11C182 48 11C221 21
11C66 46 11C105 0 11C144 73 11C183 55 11C222 100
11C67 58 11C106 0 11C145 28 11C184 50 11C223 61
11C68 46 11C107 0 11C146 84 11C185 50
11C69 20 11C108 0 11C147 0 11C186 65
11C70 52 11C109 0 11C148 69 11C187 84
11C71 75 11C110 25 11C149 0 11C188 22
Fuente FODECYT
18-2010
53
Cuadro 12. Número de plantas establecidas ocho días después del trasplante para cada
accesión de Capsicum (11C), Fase III, ICTA, San Jerónimo, Baja Verapaz
AccesiónNo.
PlantasAccesión
No.
PlantasAccesión
No.
PlantasAccesión
No.
PlantasAccesión
No.
Plantas
11C33 24 11C70 50 11C115 16 11C153 40 11C190 50
11C34 8 11C71 50 11C117 50 11C154 50 11C192 50
11C35 35 11C72 27 11C119 50 11C156 13 11C193 50
11C37 50 11C73 41 11C122 23 11C157 27 11C194 10
11C38 50 11C74 8 11C123 50 11C158 50 11C195 42
11C39 50 11C75 50 11C124 50 11C160 8 11C196 28
11C40 50 11C76 18 11C125 50 11C161 14 11C197 50
11C41 50 11C77 50 11C126 50 11C162 20 11C198 7
11C42 50 11C80 39 11C127 50 11C164 8 11C199 50
11C43 50 11C81 10 11C128 50 11C165 50 11C200 50
11C44 50 11C82 21 11C129 50 11C166 50 11C202 2
11C46 50 11C83 38 11C130 28 11C167 50 11C203 50
11C47 31 11C84 37 11C131 50 11C168 50 11C204 12
11C48 50 11C85 7 11C132 42 11C170 50 11C205 50
11C49 50 11C86 34 11C133 43 11C171 50 11C206 27
11C50 50 11C87 50 11C134 50 11C172 50 11C209 24
11C51 30 11C89 36 11C135 50 11C173 50 11C211 13
11C55 50 11C90 50 11C136 50 11C174 50 11C212 50
11C56 50 11C91 50 11C137 4 11C175 50 11C214 6
11C57 22 11C92 44 11C138 50 11C176 50 11C215 21
11C58 34 11C95 16 11C139 50 11C178 50 11C216 9
11C59 50 11C96 50 11C140 50 11C179 50 11C217 37
11C60 12 11C97 50 11C141 24 11C180 50 11C218 11
11C61 50 11C98 20 11C142 50 11C181 21 11C219 30
11C62 23 11C99 50 11C143 50 11C182 50 11C220 50
11C63 25 11C100 50 11C144 50 11C183 50 11C221 21
11C64 33 11C101 24 11C145 28 11C184 50 11C222 50
11C65 23 11C102 31 11C146 50 11C185 34 11C223 50
11C66 46 11C103 5 11C148 50 11C186 50
11C67 50 11C110 25 11C150 12 11C187 50
11C68 46 11C112 21 11C151 50 11C188 22
11C69 20 11C114 50 11C152 7 11C189 50 Fuente: FODECYT 018-2010
La mayoría de morfotipos de chiles se adaptan y establecen bien en condiciones de
estación cálida. Requieren de condiciones de crecimiento similares al tomate y la
berenjena. Se comportan bien en lugares libres de heladas para producir buena calidad
de frutos y altos rendimientos. Los chiles crecen pobremente en temperaturas que estén
en un rango de 5 -15º C. Para asegurar un buen establecimiento del cultivo y adecuados
rendimientos, la germinación de las semillas debe darse entre los 24 – 30º C. Los
rendimientos altos resultan cuando la temperatura diaria del día oscila entre los 18 – 32º
54
C. Generalmente, cuando las temperaturas diarias diurnas son inferiores a 15º C, el
crecimiento de las plantas se retarda ostensiblemente.
Por otro lado, como en la mayoría de los cultivos, el suelo ideal para producir chiles, es
uno que se describe como profundo, bien drenado, textura media franco areno arcilloso,
que conserve humedad y tenga algo de materia orgánica.
III.1.2. Integración de los resultados obtenidos de acuerdo con los objetivos
específicos de la investigación.
La presentación de los resultados generales se inicia con un resumen de lo acontecido con
los morfotipos o accesiones de chile que se sembraron en las diferentes localidades.
Cada localidad tuvo sus particularidades en el proceso. Pero, la localidad de San
Jerónimo, Fase III (May – Dic 2011), afrontó situaciones que se pueden atribuir a la
viabilidad y al vigor de la semilla de las accesiones, así como a problemas ajenos a la
buena voluntad del investigador asociado. En San Jerónimo las condiciones extremas del
clima obligaron a la suspensión del estudio. Acá la Depresión Tropical E 12, por exceso
de lluvia causó la inundación del sitio experimental por más de 72 horas y los vientos
huracanados causaron la caída de flores en antesis de la mayoría de las accesiones. La
Fase III fue imposible de volverse a repetir por la poca disponibilidad de recursos
remanentes. Prácticamente quedaba pendiente de la fase reproductiva de las accesiones:
la formación de frutos, su madurez fisiológica para cosecha, extracción de semilla, su
secado y envasado. El proceso de caracterización morfológica de estas accesiones ya no
era representativo de las mismas.
Cuadro 13. Accesiones de chile sembradas, germinadas y establecidas en FASES I, II y
III y otros datos.
Actividades Fase I,
Zacapa
Fase II,
Chimaltenango
Fase III, San
Jerónimo
Total
Accesiones sembradas en almacigo
o semillero
273 32 191 496
Accesiones que germinaron en
almacigo
224 29 154 407
Accesiones establecidas en campo
abierto o en hidroponía
224 29 153 406
Accesiones rejuvenecidas 224 29 0 253
Accesiones caracterizadas
morfológicamente
224 23 0 243
Accesiones con más de 100
gramos de semilla
52 22 0 74
Fuente: FODECYT 018-2010
Al revisar las metas de cada objetivo propuesto en el estudio se puede decir que el 51%
de las accesiones del germoplasma de Capsicum de la colección activa que se
establecieron en campo abierto o en hidroponía, fue REJUVENECIDO. Hoy se cuenta
55
con 253 accesiones rejuvenecidas, con porcentajes de germinación que oscilan entre un
22 a un 100 %, ideales para a) su conservación a mediano plazo en cámara fría a 5º C y
40 % de Humedad Relativa si tienen porcentajes de germinación superiores al 70% y b)
para su conservación como colección activa bajo las mismas condiciones del banco
(Porcentajes de germinación inferiores a 70%), pero ésta colección activa será muy útil si
inmediatamente se utiliza para realizar evaluaciones de pre mejoramiento orientadas a b-
1) rendimientos potenciales y características de calidad, b-2) Susceptibilidad al estrés
abiótico, b-3) Susceptibilidad al estrés biológico, b-4) Marcadores bioquímicos, b-5)
Marcadores moleculares entre otras investigaciones, b-6) Intercambio regulado de
germoplasma y b-7) nuevos incrementos y rejuvenecimiento de accesiones con menos de
10 gramos de semilla.
56
Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID
= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de
conservación.
ID Peso
en g
% de
Germinación
Localidad de
ICTA
A colección de
mediano plazo
A
colección
activa
10C007 152.20 61 Zacapa X X
10C008 185.48 80 Zacapa X X
10C009 11.34 65 Zacapa X
10C011 5.92 . Zacapa X
10C012 7.26 . Zacapa X
10C013 5.85 . Zacapa X
10C014 5.89 . Zacapa X
10C015 16.07 75 Zacapa X
10C016 10.69 15 Zacapa X
10C017 11.32 73 Zacapa X
10C019 31.27 41 Zacapa X
10C020 64.30 . Zacapa X
10C021 10.92 96 Zacapa X
10C022 6.54 . Zacapa X
10C023 19.05 16 Zacapa X
10C024 6.43 . Zacapa X
10C025 6.22 77 Zacapa X
10C026 102.75 51 Zacapa X X
10C027 177.31 64 Zacapa X X
10C028 3.95 . Zacapa X
10C029 59.03 76 Zacapa X
10C030 154.48 60 Zacapa X X
10C031 85.12 63 Zacapa X
10C032 73.02 3 Zacapa X
10C033 248.06 60 Zacapa X X
10C034 291.12 0 Zacapa X X
10C035 14.45 81 Zacapa X
10C036 188.07 64 Zacapa X X
10C038 34.02 43 Zacapa X
10C039 127.48 77 Zacapa X X
10C040 268.68 87 Zacapa X X
10C041 14.05 0 Zacapa X
10C042 15.00 . Zacapa X
10C043 31.11 61 Zacapa X
10C044 44.00 79 Zacapa X
10C045 158.10 56 Zacapa X X
10C046 125.07 89 Zacapa X X
57
ID Peso
en g
% de
Germinación
Localidad de
ICTA
A colección de
mediano plazo
A
colección
activa
10C047 101.55 44 Zacapa X X
10C048 31.99 28 Zacapa X
10C049 101.92 64 Zacapa X X
10C050 346.17 83 Zacapa X X
10C051 35.11 53 Zacapa X
10C052 72.27 0 Zacapa X
10C054 14.12 39 Zacapa X
10C055 137.34 37 Zacapa X X
10C056 161.67 73 Zacapa X X
10C058 105.07 57 Zacapa X X
10C059 6.63 . Zacapa X
10C060 33.84 80 Zacapa X
10C061 36.13 67 Zacapa X
10C065 34.90 8 Zacapa X
10C066 14.39 91 Zacapa X
10C068 54.67 69 Zacapa X
10C071 40.06 59 Zacapa X
10C072 57.81 81 Zacapa X
10C076 120.67 89 Zacapa X X
10C078 55.02 83 Zacapa X
10C079 72.22 31 Zacapa X
10C080 46.06 76 Zacapa X
10C081 40.33 87 Zacapa X
10C082 310.23 77 Zacapa X X
10C086 25.72 79 Zacapa X
10C089 41.87 81 Zacapa X
10C091 62.76 80 Zacapa X
10C092 107.12 56 Zacapa X X
10C094 88.50 71 Zacapa X
10C095 44.02 61 Zacapa X
10C096 45.45 . Zacapa X
10C097 34.26 83 Zacapa X
10C098 359.17 93 Zacapa X X
10C101 80.37 89 Zacapa X
10C103 286.57 0 Zacapa X X
10C105 31.91 69 Zacapa X
10C107 420.79 85 Zacapa X X
10C109 159.63 56 Zacapa X X
10C110 42.25 52 Zacapa X
10C111 510.48 76 Zacapa X X
…Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de conservación.
58
ID Peso
en g
% de
Germinación
Localidad de
ICTA
A colección de
mediano plazo
A
colección
activa
10C112 397.33 67 Zacapa X X
10C113 96.27 72 Zacapa X
10C114 93.90 49 Zacapa X
10C115 91.72 . Zacapa X
10C116 13.60 67 Zacapa X
10C117 56.15 81 Zacapa X
10C118 30.96 19 Zacapa X
10C119 64.58 1 Zacapa X
10C120 64.59 49 Zacapa X
10C121 19.70 87 Zacapa X
10C122 126.52 97 Zacapa X X
10C123 142.27 67 Zacapa X X
10C124 72.17 81 Zacapa X
10C125 38.16 28 Zacapa X
10C128 28.84 77 Zacapa X
10C129 16.58 100 Zacapa X
10C130 63.25 61 Zacapa X
10C132 62.47 20 Zacapa X
10C133 49.45 67 Zacapa X
10C134 74.12 . Zacapa X
10C135 236.12 3 Zacapa X X
10C136 33.46 93 Zacapa X
10C137 45.56 100 Zacapa X
10C138 67.01 7 Zacapa X
10C139 649.84 96 Zacapa X X
10C141 38.24 3 Zacapa X
10C142 42.05 43 Zacapa X
10C144 63.04 100 Zacapa X
10C145 36.06 64 Zacapa X
10C146 12.67 87 Zacapa X
10C147 68.97 12 Zacapa X
10C148 38.95 . Zacapa X
10C149 38.47 59 Zacapa X
10C150 72.90 32 Zacapa X
10C151 33.44 92 Zacapa X
10C152 77.72 1 Zacapa X
10C153 23.62 100 Zacapa X
10C154 70.85 0 Zacapa X
10C155 100.80 8 Zacapa X
10C156 63.72 100 Zacapa X
…Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de conservación.
59
ID Peso
en g
% de
Germinación
Localidad de
ICTA
A colección de
mediano plazo
A
colección
activa
10C157 202.32 37 Zacapa X X
10C158 5.07 . Zacapa X
10C159 27.96 0 Zacapa X
10C160 57.08 61 Zacapa X
10C161 26.39 1 Zacapa X
10C162 74.58 48 Zacapa X
10C164 61.00 76 Zacapa X
10C165 27.80 45 Zacapa X
10C166 183.35 71 Zacapa X X
10C167 21.46 67 Zacapa X
10C169 189.23 92 Zacapa X X
10C170 404.75 85 Zacapa X X
10C171 44.92 0 Zacapa X
10C172 73.60 . Zacapa X
10C173 106.02 0 Zacapa X X
10C174 35.84 55 Zacapa X
10C175 8.91 11 Zacapa X
10C176 15.16 77 Zacapa X
10C179 27.94 95 Zacapa X
10C180 55.27 100 Zacapa X
10C181 40.93 83 Zacapa X
10C182 20.95 9 Zacapa X
10C183 15.64 15 Zacapa X
10C184 14.19 73 Zacapa X
10C185 5.67 . Zacapa X
10C186 105.76 89 Zacapa X X
10C187 31.12 32 Zacapa X
10C188 27.75 0 Zacapa X
10C189 4.09 . Zacapa X
10C190 32.07 12 Zacapa X
10C191 61.42 4 Zacapa X
10C192 252.32 69 Zacapa X X
10C194 57.52 . Zacapa X
10C195 54.37 17 Zacapa X
10C196 5.92 . Zacapa X
10C197 35.72 48 Zacapa X
10C198 28.52 76 Zacapa X
10C199 23.53 65 Zacapa X
10C201 67.53 57 Zacapa X
10C202 7.27 61 Zacapa X
…Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de conservación.
60
ID Peso
en g
% de
Germinación
Localidad de
ICTA
A colección de
mediano plazo
A
colección
activa
10C203 58.16 80 Zacapa X
10C204 13.42 71 Zacapa X
10C205 119.37 100 Zacapa X X
10C206 30.77 . Zacapa X
10C207 78.09 0 Zacapa X
10C208 109.38 1 Zacapa X X
10C209 61.62 67 Zacapa X
10C210 110.50 1 Zacapa X X
10C211 54.42 100 Zacapa X
10C212 114.78 81 Zacapa X X
10C213 12.57 61 Zacapa X
10C215 5.45 . Zacapa X
10C216 3.97 . Zacapa X
10C217 5.02 . Zacapa X
10C218 5.27 . Zacapa X
10C219 4.56 . Zacapa X
10C220 7.64 . Zacapa X
10C221 6.04 . Zacapa X
10C222 8.30 . Zacapa X
10C223 4.46 . Zacapa X
10C224 3.92 . Zacapa X
10C225 5.50 . Zacapa X
10C226 6.82 . Zacapa X
10C228 17.32 57 Zacapa X
10C230 310.32 77 Zacapa X X
10C232 110.84 71 Zacapa X X
10C233 71.12 27 Zacapa X
10C234 6.05 85 Zacapa X
10C235 124.93 87 Zacapa X X
10C238 29.62 . Zacapa X
10C239 113.07 3 Zacapa X X
10C240 12.71 . Zacapa X
10C242 35.32 5 Zacapa X
10C243 77.92 77 Zacapa X
10C245 22.47 79 Zacapa X
10C247 183.22 . Zacapa X X
10C249 83.92 92 Zacapa X
10C250 29.73 80 Zacapa X
10C251 99.14 1 Zacapa X
10C252 32.09 . Zacapa X
…Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de conservación.
61
ID Peso
en g
% de
Germinación
Localidad de
ICTA
A colección de
mediano plazo
A
colección
activa
10C253 268.03 0 Zacapa X X
10C254 62.67 . Zacapa X
10C255 1.27 . Zacapa X
10C256 81.87 83 Zacapa X
10C257 20.32 81 Zacapa X
10C258 39.08 87 Zacapa X
10C259 63.44 84 Zacapa X
10C260 43.76 0 Zacapa X
10C261 54.85 21 Zacapa X
10C262 87.02 65 Zacapa X
10C264 175.78 89 Zacapa X X
10C265 90.25 23 Zacapa X
10C267 88.32 3 Zacapa X
10C268 36.30 0 Zacapa X
10C270 60.71 76 Zacapa X
10C272 74.56 68 Zacapa X
10C273 23.09 100 Zacapa X
10C274 55.62 . Zacapa X
10C275 330.44 92 Zacapa X X
10C276 111.30 65 Zacapa X X
10C277 63.85 52 Zacapa X
10C278 67.97 100 Zacapa X
10C279 36.96 . Zacapa X
10C280 86.42 100 Zacapa X
11C01 90 86 Chimaltenango X
11C03 23.2 76 Chimaltenango X
11C04 6.2 80 Chimaltenango X
11C05
Rojo
148.7 74 Chimaltenango X X
11C05
Amarillo
16.7 . Chimaltenango X
11C06 52.2 86 Chimaltenango X
11C08 230.2 68 Chimaltenango X X
11C09
Rojo
221.7 82 Chimaltenango X X
11C09
Amarillo
21.7 . Chimaltenango X
11C10
Amarillo
262.7 90 Chimaltenango X X
11C10
Rojo
6.2 Chimaltenango X
…Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de conservación.
62
ID Peso
en g
% de
Germinación
Localidad de
ICTA
A colección de
mediano plazo
A
colección
activa
11C11 181.2 86 Chimaltenango X X
11C12
Rojo
14.7 . Chimaltenango X
11C12
Amarillo
28.2 96 Chimaltenango X
11C13 74.2 86 Chimaltenango X
11C14 475.2 78 Chimaltenango X X
11C16
Amarillo
154.7 74 Chimaltenango X X
11C16
Rojo
61.7 . Chimaltenango X
11C17 269.2 72 Chimaltenango X X
11C18
Rojo
152.2 . Chimaltenango X X
11C18
Amarillo
203.2 84 Chimaltenango X X
11C19 336.2 84 Chimaltenango X X
11C20 322.2 88 Chimaltenango X X
11C21 390.2 88 Chimaltenango X X
11C22
Rojo
183.7 92 Chimaltenango X X
11C22
Amarillo
58.2 . Chimaltenango X
11C23 332.7 78 Chimaltenango X X
11C24
Rojo
198.2 90 Chimaltenango X X
11C24
Amarillo
194.7 . Chimaltenango X X
11C25 19.7 90 Chimaltenango X
11C26 229.2 78 Chimaltenango X X
11C27 390.2 76 Chimaltenango X X
11C28 385.7 74 Chimaltenango X X
11C29 328.2 80 Chimaltenango X X
11C30 220.2 90 Chimaltenango X X
11C31 372.2 22 Chimaltenango X X
11C32 191.7 74 Chimaltenango X X
Fuente: FODECYT 018-2010.
A las accesiones de chile con menos de 7 gramos de semilla, que se produjeron de ICTA,
Zacapa, intencionalmente no se les determinó su % de germinación. Estas accesiones y 7
gramos de cada una del resto de las accesiones de chile de la Fase I fueron enviadas a la
…Cuadro 14. Peso en gramos y % de germinación de las accesiones de Capsicum (ID= 10C) rejuvenecidas en las FASES I y II y su potencial destino de conservación.
63
Unidad de Recursos Fitogenéticos del Departamento de Agricultura de los Estados
Unidos de América –USDA- para su conservación a largo plazo. A cambio, el USDA
proporcionó al ICTA, el software GRIN-GLOBAL para la documentación de la
información generada en el género Capsicum. Con este software ICTA podrá poner al
alcance de la comunidad científica mundial la información que sobre los géneros de
especies vegetales como Zea, Phaseolus, Lycopersicom y otros, ha generado en los
últimos años.
La mayoría de morfotipos de chile se consideran autógamos. Sin embargo, las tasas de
polinización abierta se han estimado entre 2 y 90 % en diferentes especies de Capsicum.
Por esto, algunos técnicos consideran que el chile es una especie de polinización cruzada
facultativa. La polinización cruzada en chiles está asociada a insectos polinizadores y no
al viento o a la lluvia. En el proceso de regeneración de semilla por autogamia, se
garantiza la conservación de la pureza genética de la variabilidad existente en las
accesiones. Aunque se corre el riesgo que aquellas, accesiones de polinización cruzada,
no produzcan suficiente semilla. Este efecto de la polinización, fue claramente observada
en la Fase I. Las accesiones de mayor producción de semillas son materiales más
domesticados y por ende autógamos. Mientras que las accesiones que produjeron menos
semilla son materiales menos domesticados y por ende alógamos.
El germoplasma de Capsicum de la colección activa se incrementó en por lo menos 5
gramos de semilla por accesión. Esto permitirá crear la colección de germoplasma de
Capsicum de mediano plazo de Guatemala. Es de importante hacer la salvedad de que el
porcentaje de germinación requerido por las normas internacionales de los Bancos de
Germoplasma no se alcanzó en todos los morfotipos de chile.
Cuadro 15. Accesiones de Capsicum (ID =10C) que deberían pasar a formar parte de
la colección a mediano plazo de ICTA
No. ID Peso en g % de Germinación
1 10C008 185.48 80
2 10C015 16.07 75
3 10C017 11.32 73
4 10C021 10.92 96
5 10C025 6.22 77
6 10C029 59.03 76
7 10C035 14.45 81
8 10C039 127.48 77
9 10C040 268.68 87
10 10C044 44.00 88
11 10C046 125.07 89
12 10C050 346.17 83
13 10C056 161.67 73
14 10C060 33.84 80
64
No. ID Peso en g % de Germinación
15 10C066 14.39 91
16 10C072 57.81 81
17 10C076 120.67 89
18 10C078 55.02 83
19 10C080 46.06 76
20 10C081 40-33 87
21 10C082 310.23 77
22 10C086 24.72 79
23 10C089 41.87 81
24 10C091 62.76 80
25 10C094 88.50 71
26 10C097 34.26 83
27 10C098 359.17 93
28 10C101 80.37 89
29 10C107 420.79 85
30 10C111 510.48 76
31 10C113 96.27 72
32 10C117 56.15 81
33 10C121 19.70 87
34 10C122 126.52 97
35 10C124 72.17 81
36 10C128 28.84 77
37 10C129 16.58 100
38 10C136 33.46 93
39 10C137 45.56 100
40 10C139 649.84 96
41 10C144 64.04 100
42 10C146 12.67 87
43 10C151 33.44 92
44 10C153 23.62 100
45 10C156 63.72 100
46 10C164 61.00 76
47 10C166 183.35 69
48 10C169 189.23 92
49 10C170 404.75 85
50 10C176 15.16 77
51 10C179 27.94 95
52 10C180 55.27 100
53 10C181 40.93 83
54 10C184 14.19 73
55 10C186 105.76 89
56 10C198 28.52 76
…Cuadro 15. Accesiones de Capsicum (ID =10C) que
deberían pasar a formar parte de la colección a mediano
plazo de ICTA.
65
No. ID Peso en g % de Germinación
57 10C203 58.16 80
58 10C204 13.42 71
59 10C0205 119.37 100
60 10C211 54.42 100
61 10C0212 114.78 81
62 10C0230 310.32 77
63 10C0232 110.84 71
64 10C0235 124.93 87
65 10C243 77.92 77
66 10C245 22.47 79
67 10C249 83.92 92
68 10C250 29.73 80
69 10C256 81.87 83
70 10C257 20.32 81
71 10C258 39.08 87
72 10C259 63.44 84
73 10C264 175.78 89
74 10C270 60.71 76
75 10C273 23.09 100
76 10C0275 330.44 92
77 10C278 67.97 100
78 10C280 86.42 100
79 11C05 Rojo 148.7 74
80 11C08 230.2 68
81 11C09 Rojo 221.7 82
82 11C10 Amarillo 262.7 90
83 11C11 181.2 86
84 11C14 475.2 78
85 11C16 Amarillo 154.7 74
86 11C17 269.2 72
87 11C18 Rojo 152.2 86
88 11C18 Amarillo 203.2 84
89 11C19 336.2 84
90 11C20 322.2 88
91 11C21 390.2 88
92 11C22 Rojo 183.7 92
93 11C23 332.7 78
94 11C24 Rojo 198.2 90
95 11C24 Amarillo 194.7 89
96 11C26 229.2 78
97 11C27 390.2 76
98 11C28 385.7 74
…Cuadro 15. Accesiones de Capsicum (ID =10C) que
deberían pasar a formar parte de la colección a mediano
plazo de ICTA.
66
No. ID Peso en g % de Germinación
99 11C29 328.2 80
100 11C30 220.2 90
101 11C32 191.7 74
Fuente: FODECYT 018-2010
Accesiones con más de 5 gramos de semilla y con 70 % de poder de germinación deben
conformar la colección a mediano plazo. Lo ideal para almacenamiento a largo plazo es
de 85 % de germinación. Pero, ICTA no debe darse el lujo de botar esta semilla antes de
siete años. A los siete años debería realizarse un nuevo rejuvenecimiento e incremento
de esta semilla.
El 98 % de las accesiones del germoplasma de Capsicum de la colección activa que
fueron rejuvenecidas en el 2010 y el 2011, fueron caracterizadas morfológicamente. En
consecuencia se cuenta con la información base para documentar digitalmente la
colección de germoplasma de Capsicum de mediano plazo de Guatemala. Esta
información es fundamental para el intercambio de información y de germoplasma
regulado a nivel mundial. La documentación sobre Capsicum de Guatemala se colgó en
la página WEB de ICTA: www.icta.gob.gt y se recomienda colgarla también en el GRIN-
GLOBAL de los Estados Unidos de América. Este software fue obtenido para ICTA por
el Investigador Principal del proyecto desde el USDA y se recomienda instalarlo en una
computadora de escritorio para atender no solo este germoplasma de Capsicum, sino
también puede atender otros géneros de importancia agrícola para Guatemala, como Zea,
Phaseolus y otros.
III.1.1.3. Los datos de pasaporte, de caracterización y evaluación morfológica de las
accesiones de Capsicum cosechadas:
Los datos de pasaporte que se presentan en este informe en el ANEXO 1, pertenecen a las
accesiones de Capsicum que lograron incrementarse y rejuvenecerse en las FASES I y II.
La FASE III no logró cosecharse por pérdida completa de los materiales a causa de la
Tormenta Tropical 12E. La información sobre los datos de pasaporte de las accesiones de
Capsicum referidas se presenta en los cuadros 16 y 17, FASE I y FASE II,
respectivamente.
Para la caracterización y evaluación morfológica se utilizó el descriptor oficial del género
Capsicum del IBPGR. Diez plantas de cada accesión fueron observadas, medidas y
registradas para tal propósito. Los resultados de la caracterización y evaluación
morfológica de los materiales de Capsicum establecidos en las Fase I, II y III se reportan
en el ANEXO 2 en los cuadros 18, 19 y 20, FASE I, FASE II y FASE III,
respectivamente.
El rejuvenecimiento e incremento de semilla de las accesiones de Capsicum de
Guatemala acá realizado, permitirá el intercambio de germoplasma y documentación con
otros países interesados en el género. Pero, esto hace imperativo la implementación de
un sistema multilateral de acceso y distribución de beneficios en el marco del Tratado
…Cuadro 15. Accesiones de Capsicum (ID =10C) que
deberían pasar a formar parte de la colección a mediano
plazo de ICTA.
67
Internacional sobre los Recursos Fitogenéticos para la Alimentación y la Agricultura –
TIRD- . Sin embargo, Guatemala, a través del Ministerio de Agricultura, Ganadería y
Alimentación –MAGA-, punto focal del TIRFA, debe aún desarrollar e implementar el
sistema multilateral de acceso y distribución de beneficios de sus recursos fitogenéticos.
La información generada en el género Capsicum por esta investigación puede utilizarse
para una prueba piloto del referido sistema.
El germoplasma de Capsicum de Guatemala puede ser utilizado para la alimentación, la
farmacéutica, la industrialización y el ornato de hoy y del futuro. La semilla e
información generada en la presente investigación permitirá a ICTA-Guatemala,
conservar a mediano plazo la diversidad genética del género regenerada y podrá ubicar en
la Reserva Mundial de Semillas de Svalbard del Reino de Noruega, en el CATIE, Costa
Rica, o en el Asian Vegetable Research and Development Center –AVDRC- de China
Taiwán, una réplica de esta diversidad genética de Capsicum.
68
PARTE IV
IV.1. CONCLUSIONES
1. ICTA crea una colección nacional de Capsicum con 253 accesiones y la conserva
en su Banco de germoplasma por un mediano plazo (6-7) años. Conservar a mediano
plazo las semillas de las accesiones de chile no garantiza su perpetuidad, ni su
salvaguarda. Esto es un paliativo que maximiza en las condiciones de Guatemala, la
expresión de que, estamos conservando nuestros recursos fitogenéticos en riesgo de
extinción.
2. Únicamente se logró rejuvenecer e incrementar 253 accesiones de chile (62 % del
total sembrado). La regeneración de germoplasma de chile no es una tarea fácil. Existe
una tremenda variabilidad genética en vigor, poder de germinación y dormancia en las
semillas; en velocidad de establecimiento, desarrollo y crecimiento de las plantas y en
períodos fenológicos entre y dentro de los morfotipos de acuerdo con las condiciones
agroclimáticas donde se producen. En Zacapa se rejuvenecieron e incrementaron 224 y
en Chimaltenango 29 accesiones. En San Jerónimo se establecieron en campo definitivo
153 accesiones que desafortunadamente se perdieron por efectos de inundación y fuertes
vientos de la Depresión Tropical 12 E. (Véanse los cuadros: 13, 14 y 15)
3. Un total de 243 accesiones de chile fueron completamente caracterizadas y
evaluadas morfológicamente. En Zacapa 214 y en Chimaltenango 23 accesiones de chile,
respectivamente (Cuadros 18, 19 y 20). Esta información complementa lo ya registrado
en la década de los 80´s del siglo XX. Adicional a esta información numérica, también se
cuenta con un catálogo fotográfico de frutos de las accesiones rejuvenecidas e
incrementadas.
4. Las 253 accesiones de chile que fueron rejuvenecidas, al mismo tiempo,
incrementaron su cantidad de semilla. Su rejuvenecimiento evidenció que en Guatemala
existe germoplasma altamente domesticado en C. annuum y en C. pubescens, pero no en
todos los cultivares de C. chinense y C. frutescens. La única accesión de C. baccatum
que fue identificada entre el germoplasma de chiles de Guatemala, respondió muy bien al
aislamiento contra insectos polinizadores, por lo que se considera que es un cultivar
mejorado, recientemente introducido al país.
5. En la caracterización y evaluación morfológica de las accesiones de Capsicum que
lograron establecerse en campo en Zacapa o en condiciones de hidroponía en
Chimaltenango, se utilizó el descriptor oficial del género desarrollado por el IBPGR. A la
fecha, existe información adicional sobre caracterizaciones morfológicas realizadas en la
década de los 80´s del siglo XX. ICTA tiene en su posesión el programa informático y
computarizable: GRIN-GLOBAL. Este permite y facilita el intercambio de información y
de germoplasma de plantas para la agricultura y la alimentación a nivel mundial.
6. Se rescataron 253 accesiones de chile de Guatemala y se conservan bajo
condiciones apropiadas en el Banco de Germoplasma de ICTA.
69
7. Contar con 100 gramos de semilla de cada accesión de chile y accesiones con un
porcentaje de germinación superior al 85 % fue imposible. Sin embargo, en un gramo de
semillas de chile, hay en promedio cien semillas, la cual con una germinación del 50%,
permiten la regeneración de toda una accesión (Véanse cuadros: 13,14 y 15). Las 253
accesiones de chile rejuvenecidas tienen más de 7 gramos y más del 75 % de poder de
germinación.
8. Se generó la base de datos correspondiente a la documentación sobre pasaporte,
caracterización y evaluación morfológica para las 243 accesiones de Capsicum
rejuvenecidas e incrementadas en este estudio. Véanse los cuadros 16, 17, 18,19 y 20.
9. Se realizaron varias actividades de socialización de las actividades en proceso y de
los resultados obtenidos en la investigación. En Zacapa estudiantes de la EANOR
hicieron visitas al sitio experimental. Un día de campo se implementó para productores
de la región. En Chimaltenango, estudiantes de la Universidad Rafael Landivar sede
Escuintla y agricultores de Chimaltenango visitaron el módulo hidropónico donde se
desarrolló el estudio. Los investigadores asociados hicieron presentación de resultados
oficiales en el ICTA durante el 2010 y 2011. El investigador principal preparó un manual
fotográfico de la mayoría de las accesiones de chile que fueron documentadas.
OTRAS CONCLUSIONES:
10. El tratamiento de la semilla de chiles con hipoclorito de sodio al 10% por cinco
minutos, desinfectó la testa de las semillas de fitopatógenos de manera satisfactoria. A la
vez, este tratamiento mejoró la germinación de semillas que tenían más de cuatro años de
conservarse en la colección activa bajo condiciones del banco de germoplasma de ICTA.
11. Se apreció en el proceso de germinación de las accesiones de chile, que estas tenían
diferentes grados de vigor y por ende diferentes porcentajes de poder de germinación.
Existió un gradiente de germinación entre las accesiones. Algunas germinaron en
término de ocho días, pero otros requirieron hasta 20 días.
12. El uso de mallas, cajas o cobertores sobre las plantas de chile, evidenció que el
género Capsicum de Guatemala, tiene especies autógamas y alógamas como lo reporta la
literatura.. La especie C. annuum expresó claramente la autogamia. La mayoría de las
accesiones de esta especie fueron muy productivas bajo los cobertores. Mientras que, las
accesiones de C. chinense evidenciaron diferente grado de polinización cruzada. Las
accesiones más domesticadas tuvieron menos efectos por cruzas que aquellas accesiones
más silvestres. En Capsicum pubescens se esperaba que las accesiones fueran alógamas.
Sin embargo, sorprendentemente la mayoría, sino todas las accesiones evaluadas en un
sistema hidropónico y en condiciones protegidas, produjeron abundante semilla en estas
condiciones. El uso de polinización manual dirigida acá no fue requerido como se creía.
70
13. Se estableció que dentro del germoplasma de Chile evaluado, existen morfotipos
precoces, intermedios y tardíos. O sea materiales que para cosecha comercial requieren
de 90 a 120 días de ciclo fenológico.
71
IV.2. RECOMENDACIONES
1. La colección Nacional de Capsicum a mediano plazo debe conservarse en las
condiciones óptimas del banco de germoplasma de ICTA. La semilla de cada accesión de
chile debe monitorease anualmente por porcentaje de germinación.
2. Realizar un inventario de la colección activa de Capsicum de ICTA. Las 153
accesiones de chile pérdidas en San Jerónimo, Baja Verapaz en 2011, se recomienda que
a la brevedad posible, se incrementen.
3. La información existente desde los 80´s del siglo XX a la fecha, sobre
caracterización morfológica de Chiles, puede registrarse sistemáticamente. Se
recomienda la integración de esa información a una sola base de datos, ya sea en
DBgermo o en GRIN-GLOBAL.
4. Se recomienda el rejuvenecimiento e incremento del remanente de accesiones de
chile de la colección activa del ICTA y en particular las accesiones que se perdieron en
San Jerónimo, Baja Verapaz.
5. ICTA debe instalar el programa GRIN-GLOBAL del Departamento de Agricultura
de los Estados Unidos de América en alguno de sus servidores informáticos. O bien debe
utilizar el programa DBGermo del INTA, Argentina para documentar digitalmente toda la
información generada en este estudio de chiles
6. La mejor salvaguarda y conservación que puede tener el germoplasma de chile de
Guatemala, es su utilización en agricultura y alimentación humana. Por ello, ICTA debe
promover la evaluación de pre mejoramiento a condiciones de estrés biótico y abiótico y
poner a disponibilidad de la sociedad científica mundial sus resultados.
7. Con las semillas de accesiones de chile que tienen bajos porcentajes de
germinación, se recomienda realizar pruebas comparativas de germinación entre: a)
semillas tratadas con hipoclorito de sodio al 10%, por cinco minutos y b) semillas no
tratadas. Registrar las mediciones que se observen. Las diferencias en vigor y porcentaje
de germinación pueden atribuirse a efectos de dormancia en las semillas. Más
investigación sobre aspectos técnico-fisiológicos de la semilla de chile se hace necesaria
en Guatemala. También, es recomendable e importante que en un programa de
fitomejoramiento de chile a nivel nacional, se conozca perfectamente el modo de
reproducción de los materiales a utilizar, en particular de los parentales involucrados en
hibridaciones.
8. ICTA debe promover, utilizar, socializar y divulgar la información generada en
esta investigación, en las redes Facebook y Twiter para que investigadores de Capsicum
en el mundo entero tengan acceso a la documentación del género para su utilización en
el mejoramiento genético y por ende se promueva la cooperación técnica internacional
con la institución.
72
9. ICTA debe promover también el resguardo del germoplasma de chile a largo
plazo. Duplicados de la colección nacional a mediano plazo, deben enviarse por lo menos
a la Reserva Mundial de Semillas de Svalbard del Reino de Noruega, al CATIE en Costa
Rica, y /o al AVRDC en China Taiwán.
10. ICTA debe participar proactivamente en todas las iniciativas que sobre recursos
fitogenéticos para la agricultura y la alimentación se implementen en el país. Siendo la
única institución pública con un banco de germoplasma de mediano plazo para semillas
ortodoxas, deberá jugar el papel estratégico que le corresponde.
.
10. Todo el excedente de semilla de cada accesión de chile que logre almacenarse en
una colección de mediano plazo en el Banco de Germoplasma del ICTA, debe
mantenerse integrando también, la colección activa de chile que la originó. Esta semilla
puede ser utilizada nacionalmente para fines demostrativos de diversidad genética a nivel
de campo, investigaciones sobre el género y en especial en programas de
fitomejoramiento local.
73
IV.3. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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78
1V.4. ANEXOS
79
IV.4. ANEXOS
IV.4.1. ANEXO I, DATOS DE PASAPORTE DE ACCESIONES DE CHILE
Cuadro 16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa,
Fase I, 2010-2011.
80
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa,
Fase I, 2010-2011.
81
…Continuacion:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Fase I, 2010-2011.
82
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Fase I, 2010-2011.
83
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Fase I, 2010-2011.
84
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Fase I, 2010-2011.
85
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Fase I, 2010-2011.
86
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum que
se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa. Fase I
2010-2011.
87
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Fase I, 2010-2011.
88
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Fase I, 2010-2011.
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Fase I, 2010-2011.
89
90
…Continuacion:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Fase I, 2010-2011.
91
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Fase I, 2010-2011.
92
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Fase I, 2010-2011.
93
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa,
Fase I, 2010-2011.
94
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Fase I, 2010-2011.
95
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa,
Fase I, 2010-2011.
96
…Continuación:
Cuadro16. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa.
Fase I, 2010-2011.
97
Cuadro17. Datos de pasaporte de las accesiones de la colección activa de Capsicum
que se sembraron y cosecharon en el ICTA, La Alameda, Chimaltenango.
Fase II, 2011.
98
IV.4.2. ANEXO 2, CARACTERIZACIÓN Y EVALUACIÓN MORFOLÓGICA DE
LAS ACCESIONES DE CHILE.
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
99
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
100
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
101
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
102
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
103
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
104
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
105
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
106
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
c
107
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
108
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
109
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
110
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
111
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
112
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
113
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
114
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
115
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
116
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
117
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
118
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
119
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
120
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
121
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
122
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
123
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
124
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
125
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
126
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
127
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
128
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
129
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
130
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
131
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
132
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
133
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
134
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
135
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
136
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
137
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
138
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
139
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
140
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
141
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
142
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
143
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en ICTA,
El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
144
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
145
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
146
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
147
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
148
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
149
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
150
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
151
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
152
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
153
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
154
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
155
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
156
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
157
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
158
…Continuación:
Cuadro18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
159
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
160
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
161
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
162
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
163
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
164
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
165
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
166
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
167
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
168
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
169
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
170
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
171
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
172
…Continuación:
Cuadro 18. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
173
…Continuación:
Cuadro16. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, El Oasis, Estanzuela, Zacapa, Fase I, 2010-2011.
174
Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.
175
… Continuación:
Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.
176
… Continuación:
Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.
177
… Continuación:
Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.
178
… Continuación:
Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.
179
… Continuación:
Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.
180
… Continuación:
Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.
181
… Continuación:
Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.
182
… Continuación:
Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.
183
… Continuación:
Cuadro 19. Caracterización y evaluación morfológica de accesiones de chile en
ICTA, La Alameda, Chimaltenango, Fase II, 2011.
184
Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de las accesiones de chile
en ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.
185
…Continuación:
Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en
ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.
186
…Continuación:
Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en
ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.
187
…Continuación:
Cuadro 20 Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en
ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.
188
…Continuación:
Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en
ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.
189
…Continuación:
Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en
ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.
190
…Continuación:
Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en
ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.
191
…Continuación:
Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en
ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.
192
…Continuación:
Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en
ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.
193
…Continuación:
Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en
ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.
194
…Continuación:
Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en
ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.
195
…Continuación:
Cuadro 20. Caracterización y evaluación morfológica parcial de accesiones de chile en
ICTA, Finca San Jerónimo, San Jerónimo, Baja Verapaz, Fase III, 2011.
196
PARTE V
V.1. INFORME FINANCIERO
AD-R-0013
Nombre del Proyecto:
Numero del Proyecto: 018-2010
Investigador Principal y/o Responsable del Proyecto: DR. MAX MYROL RUBELSY GONZÁLEZ SALÁNMonto Autorizado: Q266,750.00 01/07/2010
Plazo en meses 24 meses
Fecha de Inicio y Finalización: 01/07/2010 al 30/06/2012
Menos (-) Mas (+)
0 Servicios personales
35 Retribuciones a destajo Q 43,500.00 Q 17,050.00 Q 60,550.00 Q -
1 Servicios no personales
181
Estudios, investigaciones y proyectos de factibilidad
(Evaluación Externa de Impacto) 8,000.00Q Q 8,000.00
121 Divulgación e información 1,000.00Q Q 1,000.00
122 Impresión, encuadernación y reproducción 3,500.00Q 2,998.00Q 6,398.00Q Q 100.00
133 Viáticos en el interior 20,160.00Q 15,920.00Q 4,240.00Q Q -
185 Servicios de capacitación 5,000.00Q 5,000.00Q Q -
2 MATERIALES Y SUMINISTROS
214
Productos agroforestales, madera, corcho y sus
manufacturas 2,000.00Q 357.30Q 1,642.70Q Q -
231 Hilados y telas 56.40Q 200.00Q 143.60Q Q -
241 Papel de escritorio 500.00Q 1,700.45Q 1,971.50Q 753.35Q Q 17.70
243 Productos de papel o cartón 4,000.00Q 4,548.25Q 8,548.25Q Q -
244 Productos de artes gráficas 0.19Q 56.00Q 55.81Q Q -
254 Artículos de caucho 1,000.00Q 1,000.00Q Q -
259 Otros productos de cuero y caucho 1,000.00Q 1,000.00Q Q -
262 Combustibles y Lubricantes 29,000.00Q 6,210.04Q 35,210.04Q Q -
263 Abonos y fertilizantes 4,000.00Q 8,386.00Q 12,386.00Q Q -
264 Insecticidas, fumigantes y similares 4,000.00Q 1,545.00Q 5,545.00Q Q -
267 Tintes, pinturas y colorantes 1,000.00Q 2,150.00Q 2,101.50Q Q 1,048.50
268 Productos plásticos, nylon, vinil y pvc 50,000.00Q 15,000.00Q 323.22Q 35,323.22Q Q -
269 Otros productos químicos y conexos 1,040.00Q 1,049.00Q 1,900.00Q 1,633.80Q Q 257.20
271 Productos de arcilla 300.00Q 325.00Q 625.00Q Q -
272 Productos de vidrio 1,320.00Q 10,500.00Q 9,180.00Q Q -
283 Productos de metal 15,000.00Q 14,745.00Q 255.00Q Q -
286 Herramientas menores 3,000.00Q 1,745.22Q 83.59Q 1,026.70Q Q 311.67
291 Útiles de oficina 500.00Q 685.42Q 1,151.74Q Q 33.68
295
Útiles menores, médico-quirúrgicos y de
laboratorio 1,000.00Q 1,000.00Q Q -
298 Accesorios y repuestos en general 500.00Q 500.00Q Q -
299 Otros materiales y suministros 375.00Q 375.00Q Q -
3
PROPIEDAD, PLANTA, EQUIPO E
INTANGIBLES
321 Maquinaria y equipo de producción 45,000.00Q 45,000.00Q Q -
324 Equipo educacional, cultural y recreativo 287.00Q 6,000.00Q 5,713.00Q Q -
323 Equipo médico-sanitario y de laboratorio 15,115.00Q 45,755.00Q 30,640.00Q Q -
329 Otras maquinarias y equipos 3,186.46Q 10,420.00Q 7,233.54Q Q -
GASTOS DE ADMÓN. (10%) 24,250.00Q 24,250.00Q -Q
266,750.00Q 122,982.02Q 122,982.02Q 255,981.25Q 10,768.75Q
MONTO AUTORIZADO 266,750.00Q Disponibilidad 10,768.75Q
(-) EJECUTADO 255,981.25Q
SUBTOTAL 10,768.75Q
(-) CAJA CHICA
TOTAL POR EJECUTAR 10,768.75Q
Ejecutado Pendiente de
Ejecutar
FICHA DE EJECUCIÓN PRESUPUESTARIA
LINEA:
FODECYT
"Caracterización y evaluación morfológica, rejuvenecimiento, incremento y documentación de
Germoplasma de Capsicum en Guatemala"
Orden de Inicio (y/o Fecha primer pago):
Grupo Renglon Nombre del Gasto Asignacion
Presupuestaria
TRANSFERENCIA
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