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UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE
SAN LUIS POTOSÍ
Facultad de Ingeniería
“Extracción de flavonoides del orujo y
escobillón de uva (Vitis vinífera)”
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Taller Integrador III
Asesor: M.C. Cecilia Y. Garibay Flores
Presenta: Dalila Pérez Castillo
AGENDA:
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* Introducción:
• La uva (Vitis vinífera) es una frutaobtenida de la vid, vienen en racimos yson pequeñas y dulces.
• Según su uso final se clasifican en dos
grandes grupos: las de mesa, que seconsumen frescas o como uvas pasas y,las viníferas, que se emplean para laelaboración del vino.
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• Los flavonoides contenidos en las uvas
son antioxidantes no enzimáticos querompen la cadena en la fase lipídicabloqueando los radicales libres evitandoo previniendo la peroxidacion lipídica.
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Antecedentes:
Universidad Autónoma de San Luis Potosí (2004)
Efecto cosmético positivo del extracto de semilla de uva en piel humana.
Universidad de Illinois (2002)
Componentes de las uvas inhiben enzima clave en la proliferación del cáncer
Universidad de Barcelona (2011)
Compuestos de la uva protegen de la radiación solar
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Justificación:
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Objetivo:
• Extraer y cuantificar los flavonoidespresentes en el orujo y escobillón de uva(Vitis vinífera) para adicionarlos a alimentosy productos de uso humano
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Orujo: Escobillón:
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Identificación de flavonoides por método de Folin
Ciocalteau y de Liu y cols.
Estudio y prueba de posibles opciones de micro
encapsulado y esferificación
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Cronograma de actividades:
FEBRERO MARZO ABRIL MAYO
Obtención de
extracto y
estimación de
concentraciones
Identificación de
flavonoides
Experimentación
para
esterificación
Observaciones y
conclusiones 13
Procedimientos:
1. Deshidratación de muestras:
Temperatura: 40°C
Tiempo: 10 - 12 hrs.
2. Molienda de muestras.
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Orujo
Escobillón
METODOLOGÍA:
3. Obtención del extracto por el
método soxhlet
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4. Determinación de flavonoides totales porel método de Liu y Col. (catequina):
16
Preparación de 5 mL de muestra
Adición de 1.2mL agua destilada y
0.07mL NaNO2
Adición de 0.15 mL de AlCl3
Adición de 0.5 mL de NaOH y aforo
a 2.5mL con agua destilada
Medición de absorbancia a
510 nm
5. Determinación de polifenoles totales por el
método de Folin- Ciocalteau:
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Preparación de 0.5 mL de muestra
Adición de 0.75 mL de reactivo
Folin-Ciocalteau
Adición de 0.75 mL de
carbonato de sodio 20%
Reposo por 90 min a
temperatura ambiente
Medición de absorbancia a
760 nm
Diseño experimental:
• Para los resultados de la cuantificación de flavonoidestotales se utilizará un análisis de varianza considerando undiseño experimental completamente basal, ya que semanipulan variables independientes sobre una variabledependiente en situaciones de control.
• Dichas situaciones de control son:
* Temperatura de secado: 40ºC
* Tiempo de secado: 10 – 12 hrs. 18
Variables independientes
o Orujo de uva
o Escobillón de uva
• Variable dependientes:
o Concentración de flavonoides.
• La selección de las muestras para ser procesadas se
realiza de manera aleatoria
• Se aplicará una prueba Anova al ser 30 muestras para
análisis.19
Resultados:
• Para hacer posible la cuantificación de poli fenoles contenidos en las muestras, fue necesario tomar en primera instancia la densidad de los tres extractos.
20
Muestra Orujo Escobillón Mixta
Densidad
g/ml 0.947 0.922 0.938
Cuadro 1: Densidad de extractos
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Método de Liu y Col.:
Cuadro 2: Concentración de catequina
PROMEDIOS
Orujo Escobillón Mixta
Absorbancia 3.84 3.804 3.93
Mg cat. / ml
extracto
144.14 142.78 147.52
Mg cat. / g extracto 136.50 131.64 138.38
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Método de Folin - Ciocalteau
Cuadro 3. Concentración de ácido gálico
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PROMEDIOS
Orujo Escobillón Mixta
Absorbancia 3.732 3.729 3.882
Mg ag. / ml
extracto
61.47 61.42 63.94
Mg ag. / g extracto 58.21 56.63 59.98
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Discusión de resultados:
• Si comparamos nuestros resultadoscon datos ya existentes de contenidode flavonoides en otros frutos,tenemos que:
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26
CUADRO 4: CONCENTRACIÓN DE FLAVONOIDES EN DIFERENTES FRUTOS.
FRUTO FLAVONOIDES
(mg/g peso)
Zarzamora 2.56
Arándano 3.60
Fresa 0.80
Ext. Mixto (Liu y col) 138.38
Ext. Mixto (Folin) 59.98
• Los resultados que tenemos sobre la cuantificaciónde poli fenoles son de todos los tipos que se puedenencontrar, incluyendo antocianos, taninos,catequina, ácido gálico, resveratrol, etc.
• La técnica que utilizamos cuantifica polifenolestotales sin hacer distinción del tipo de polifenoles,esa es la razón de tener valores muy altos.
• Para realizar una caracterización de los polifenoles
se deben recurrir a técnicas como la cromatografíalíquida (Hplc).
27
Prueba de esferificación:
28
29La duración de las esferas esta reportada como 1.5 meses.
La liofilización y el secado por lecho fluidizado (por espuma) por años.
Muestra
Ml gastados/ 100
esferas formadas
Orujo 8.2 ml
Escobillón 8.1
Mixta 9.4 30
De un volumen inicial de 50 ml, después de 100
gotas de Alginato en la solución, obtenemos
que:
Conclusiones:
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32
33
Referencias:
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