Biología de la reproducción

Biología de la reproducción

Neil Duncan

Instituto de Recerca y Tecnologia Agroalimentarias

(IRTA) Sant Carles de la Rapita, Spain

Capacitación en el Cultivo

de Corvina (Argyrosomus regius)

2-17 de junio, 2021

[email protected]

El mundo tiene muchas diferentes hábitats de agua.

Todos poblados por peces resultando en la evaluación de mas que 30,000 especies.

La evolución de una diversidad de estrategias de reproducción

Determinación de sexo - genética a ambiental

Diferenciación sexual – sexo fijo, hermafrodismo

Talla a pubertad

Época de puesta, numero de puestas

Fecundidad

Fertilización Interna o externa

Tamaño de huevo y características

Cuidado parental

Introducción general

Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021

La reproducción es energéticamente exigente.

La maduración requiere de un período considerable para desarrollarse.

La meta es producir progenie que maduran y participan en la puesta. Estrategias para aumentar supervivencia durante periodos críticos en muchas ambientes diferentes.



Tipo de desarrollo gonadal

• Síncrono

• Síncrono en grupos

•Asíncrono

Tamaño de huevo

• Huevo grande - fecundidad baja

• Huevo pequeño - fecundidad alta

Desarrollo ovárico



Periodisidad de desoves

Estacionalidad de desoves y frecuencia

Relacionado con los cambios ambientales y sobrevivencia de la progenie.

Ultimate factors (las factores definitivos).

Programación del proceso de maduración

Tiempo para gametogénesis y estados finales coinciden con el ambiente óptima para la sobrevivencia de la progenie.

Proximate factors (las factores proximales).



Determinación Sexual

y

Diferenciación Sexual

Determinación Sexual

Serie compleja de procesos que interactúan.

Genético

Ambiental (por ejemplo, temperatura),

Comportamental

Factores fisiológicos



Lábil, flexible.

Gonochoristic

Hermafroditas

Protandrous (machos).

Protogynous (hembras).


Corvina (Agyrosomus regius) 10-15 días - aumento de las células germinales en el

ovario. 23-26 días - conducto de espermatozoides y cavidad

ovárica presente. 40 días - oogénesis, meiosis. 60-70 días - espermatogénesis, meiosis. Actividad de los esteroides medida antes y durante

estos períodos en poblaciones de un solo sexo. Hormona determinante del sexo estradiol.Nagahama, 2000. Proceedings of the 6th International Symposium on the Reproductive Physiology of Fish.



Diferenciación Sexual - corvina


Cavidad

Espermatocyte Ovocito

Desarrollo ovárico

11 04/06/2021

Mugil cephalus

Ramos et al., 2021


Bromage and

Cumaranatunga

1988

Mañanós et al.,

2008


Mañanós et al., 2008

Maduración: Oogénesis

Tyler and Sumpter 1996


Desarrollo ovárico Diferenciación Sexual Crecimiento primario

Basofilic (Haematoxylin and Eosin H&E)

Fase Cortical Alveolus Basofilic

Vitelogénesis Acidofilic

Maduración final Ovulación Atresia


Ovogénesis El proceso de ovogénesis

Etapa de proliferación oogonial

Transformándose en oocitos primarios.

Células epiteliales que forman el folículo ovárico

(Harvey y Hoar, 1979; Nagahama, 1983; Zohar, 1989).


Etapa II

Etapa III

Etapa I

Nucleolos

Zona Radiada

Citoplasma

Núcleo Basofilico

Formación de las

Capas Foliculares

Alveolo Cortical

En ésta fase los oocitos se caracterizan por un gran núcleo rodeado por numerosos nucleolos, además de la presencia en el citoplasma de una estructura denominada corpúsculo de Balbiani formado por varios organelos celulares tales como mitocondrias, cuerpos de Golgi, retículo endoplásmico granuloso, cuerpos multivesiculares, y gránulos de lípidos. En conjunto tienen la función de servir de centro metabólico y de formación de organelos dentro del oocito. Durante la previtelogénesis, las células del epitelio folicular se diferencian para formar dos capas. La capa interna es la granulosa y la externa es la teca Además una membrana gruesa se forma entre el oocito y la capa granulosa, la zona pelúcida que se caracteriza por tener una apariencia estriada, debido a que se encuentra atravesada por microvellosidades, que actúan en el transporte de nutrientes hacia el oocito por falta de irrigación sanguínea (Nagahama, 1983; Zohar, 1989).


Vitelogénesis

Comprende la incorporación de vitelo a su citoplasma, material conformado por: proteínas, carbohidratos, ácidos nucleicos y lípidos que sirven como fuente de energía durante el desarrollo embrionario (Hopson y Wessells, 1990)

El vitelo se deposita bajo la forma de: gotas de aceite, vesículas y gránulos de vitelo (Harvey y Hoar, 1979; Piper et al., 1992)

La vitelogénesis es exógena los gránulos de vitelo se producen a partir de la vitelogenina, fosfolipoproteínaproducida y secretada por el hígado (Nagahama, 1983; NgeIdler, 1983; Zohar, 1989).

NúcleoGlóbulos de Vítelo

Primer crecimiento y estado 4

Desarrollo ovárico


Vitelogenesis


Vitelogenesis


Desarrollo ovárico


Espermatogénesis

Formación de la estructura del lóbulo. Epitelio germinal y células epiteliales secretoras de Sertoli.

Células germinales aisladas.

Células germinales en quistes.

Las células germinales se dividen y forman espermatozoides.

Los espermatozoides se liberan en el lúmen.


Espermatogénesis

BillardCapacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021

Billard


Espermatogénesis

Espermatogonia A

Espermatogonia B

Espermatozoa

Espermatid

Espermatocyte

Endocrinología Hormonas relacionadas

Liberadora de gonadotropina (GnRH).

Gonadotropina (GtH), FSH, LH

Esteroides - estrógeno, testosterona y progestágenos

Dopamina

Prosteglandinas


Endocrinología


Endocrinología

Eje Hipotálamo-Hipófisis-gónada

Hipotálamo produce la hormona liberadora de gonadotropina (GnRH) que controla la liberación de gonadotropinas (GtHs).

Hipófisis produce dos gonadotropinas (GtH), FSH y LH

FSH controla gametogénesis

LH controla maduración final y ovulación

Ambiente

externa

Ambiente

interna

Celebro

Hipotálamos

Hormonas liberadoras

Pituitaria

o

Hipófisis

Gonadotropina

Hormona(s)

Ovario Testes

Huevos Esperma

Progestágenos

estrógenos Andrógenas


Machos Solea senegalensis

T – ng / mL x20

LH – ng / mL x1

FSH – ng / mL x2

KT – ng/mL x1

Hembras Solea senegalensis

T – ng / mL x150

LH – ng / mL x1

FSH – ng / mL x3

E2 – ng/mL x10

VTG – mg / mL x20

Control Ambiental Meta es reproducirse en el momento que da la máxima

oportunidad de supervivencia del progenie.

Reproducción para logar que periodos critico coinciden con alto producción de alimento y baja predación.

La maduración requiere de un período considerable para desarrollarse.

Control endógeno

Encadenado por cambios ambientales


Factores Definitivos Disponibilidad de alimento adecuado.

Riesgo de predación.


Factores Proximate Cambio estacional del fotoperiodo.

Cambio estacional en temperatura.

Ciclos de la luna.

Cambios climáticos, particularmente lluvias.

Disponibilidad de alimento.



Fig. Diagram of environmental factors affecting a fish.

Sea

sonal

Food

avai

labil

ity

Cycl

es o

f

Envir

onm

enta

l fa

ctors

Adequate

Nutrition

Protein

Lipids

Vitamins

Spawning

timed with

maximum food availability

and survival of offspring

Maturation entrained

Maturation entrained

Environmental factors

Weather cycles – Ocean currents – PHOTOPERIOD – TEMPERATURE – Lunar cycles

Size threshold.

Cycl

es o

f

Envir

onm

enta

l fa

ctors

Sea

sonal

Food a

vai

labil

ity


THE END

GRACIAS

Familia Sciaenidae

Producción Mundial y Especies Emergentes de América Latina

Jonathan Chacón Guzmán

Parque Marino del Pacifico - Universidad Nacional de Costa Rica

[email protected]

mailto:[email protected]

Larimichthys crocea

Aspectos Generales

Presenta aproximadamente 70 géneros con 280 especies. Son especies donde

predominan tonos blancos, plateados y amarillos. La familia presenta una

marcada variedad de tallas.

Totoaba macdonaldi

2 m

100 kg.

2,3 m

150 kg.

https://www.biolib.cz/en/image/id324278/

Argyrosomus regius

https://centrosconacyt.mx/objeto/cultivo-la-totoaba/

Larimichthys crocea

80 cm

5 kg.

http://www.fishtedb.org/project/species-

detail?species=Larimichthys+crocea&page=2&per-page=30

Alimento predominante:

• Crustáceos

• Moluscos

• Peces

Roncadores o Tambores

Ramcharitar, J., Gannon, D. P., & Popper, A. N. (2006). Bioacoustics of fishes of the family Sciaenidae (croakers and drums).

Transactions of the American Fisheries Society, 135(5), 1409-1431.

Los sonidos permiten su localización

Ubicación por sonido :

• Ubicación del cardumen

• Encierro con redes de enmalle

• Golpes o explosivos para asustarlas

• Sobreexplotación

Vejiga fresca $100-200 en Costa Rica

$8.000 a $16.000 / Kilo

FAO. 2020b. Fishery and Aquaculture Statistics. Global aquaculture production 1950-2018 (FishstatJ). In: FAO Fisheries and Aquaculture Department [online]. Rome. Updated 2020.

www.fao.org/fishery/statistics/software/fishstatj/en

Disminución del recurso corvina en el mundo

FAO. 2020b. Fishery and Aquaculture Statistics. Global aquaculture production 1950-2018 (FishstatJ). In: FAO Fisheries and

Aquaculture Department [online]. Rome. Updated 2020. www.fao.org/fishery/statistics/software/fishstatj/en

Tomado de: Chacón-Guzmán et al., (2021) (en preparación)

Hábitat

Estuarios, bocas de río, aguas salobre y

dulces

Habitan fondos lodosos, arenosos y

rocosos

Son especies euritermas 2 a 38 °C y

eurihalinas 0 a 39 ppt

Reproducción

Iteróparas: múltiples ciclos reproductivos en el curso de su vida

Gonocóricas: tienen solo uno de al menos dos posibles sexos

Asincrónicas: Contiene oocitos en todos los estados (madura por partes)

Primera madurez sexual: varía según la especie

Especies pequeñas: 2-4 años, aprox. 15-30 cm LT

Especies grandes: 4-6 años, aprox. 60-120 cm LT

Época reproductiva: Varía según especie y ubicación geográfica (trópico,

zonas templadas y frías). Temperatura el detonante principal.


1. Especies con mercado (valor: $ 3 – $15 Kg.)

2. Carne blanca de buena calidad y aceptación

3. Valor agregado por venta de vejiga gaseosa (en algunas especies)

Potencial de Acuicultura

Porque pagan tanto los chinos por la sopa de vejiga ?

4. Adaptabilidad a diferentes salinidades de cultivo (rangos óptimos

menores) ej. L. crocea (6.5-34 ppt natural, pero rango ideal de

cultivo (24,5-30 ppt)

5. Tasas elevadas de crecimiento (2.4 g/día) ej. A. regius

6. Aceptables factores de conversión (1- 2)

7. Comprobadas: altas tasas de sobrevivencia larval (25-75%

especies con mayor dominio) L. crocea y S. ocellatus (China).

8. Biometría larvaria aceptable: Huevos (800-1000 µm) larvas

iniciales (2.4-2.9 cm (LT))

Producción Mundial 2016 – 2019

253 597,0 281 258,8 305 743,2 340 273,3

2016 2017 2018 2019

Tomado de: FishStatJ - Programa informático para

series cronológicas de estadísticas de pesca y

acuicultura, FAO 2021.

https://www.aquaculturealliance.org/advocate/goal-

2019-revision-y-pronostico-de-la-produccion-mundial-

de-peces/

1. Salmon Atlántico )S. salar): 2 423 000

2. Dorada (S. aurata): 228 576

3. Lubina (D. labrax): 210 623

4. Corvina Amarilla (L. crocea): 197 980

5. Salmon cocho (O. kisutch) 187 000

6. Pampano (T. blochii): 125 000

7. Seriola (S. quiqueradiata) : 138 900

2018

1. Larimichthys crocea

2. Sciaenops ocellatus

3. Argyrosomus regius

4. Umbrina cirrosa

5. Miichthys miiuy

6. Argyrosomus japonicus

Especies con producción Mundial registrada en FAO

Tomado de: FishStatJ - Programa informático para series cronológicas de

estadísticas de pesca y acuicultura, FAO 2021

2019 Ton.

225 549

77 008

37 526

132,6

47

10

Distribución

88.5%

L. Crocea

S. Ocellatus

M. miiuy

8.4%

A. regius*

A. japonicus

S. ocellatus

2.3%

A. Regius

U. cirrosa

S.ocellatus

China-88%

295.736 ton

0,8 %

S. ocellatus

Principales productores mundiales (FAO 2021)

Egipto-7.9%

25.320 ton

U.S.-0.73%

3.244 ton

Martinica

Guadalupe

México

Producciones menores no

registradas en FAO:

T. macdonaldi Mexico

C. gilberti Chile – Peru?

España-1.16%

4.535 ton

https://www.etapainfantil.com/mapamundi-para-imprimir

Factores de Éxito


Success factors L. crocea S. ocellatus A. regius

Alta fecundidad x x x

Control reproducivo con hormonas x x x

Altas tasas de sobrevivencia larval x x x

Copépodos naturales disponibles x x -

Factores de conversión alimenticia aceptables x x x

Capacidad de cultivo en alta densidad x x x

Especies eurihalinas x x x

Se adaptan a tecnologías de otras especies x x x

Alta rentabilidad de los cultivos x x x

Bienes y servicios de la industria consolidados x x x

Soporte de gobiernos locales y nacionales x x x

Principales Problemas


Principal problems

x - x

x - -

x x (China) -

x - -Especies suceptibles a la manipulación y estrés

Uso de desechos de pescado para alimentación

Acelerado desarrollo no planeado y no controlado

L. crocea S. ocellatus

Baja diversidad genética en los reproductores

A. regius

https://www.remoteasiaphoto.com/photo/oyster-farms-amp-floating-houses/

Acuicultura de la Familia Sciaenidae en América Latina ?

V.G.

V.G.

V.G.


• “OPTIMIZACIÓN DEL CULTIVO DE LARVAS Y JUVENILES DE CORVINA REINA

(Cynoscion albus, Günther 1864) EN CONDICIONES DE LABORATORIO”

Inicio 2020

Madurez ideal para inducción 4-6 Kg

900 UI HCG

Principales conclusiones


1. La familias Scianidae es una de las familias más productivas y con

mayor potencial para acuicultura en mundo

2. Existe un importante desarrollo tecnológico en algunas especies

consolidadas que puede ser adaptado a las condiciones y especies

emergentes de cada país

3. Se debe hacer un análisis exhaustivo (mercado, zootecnia, bienes

y servicios presentes, entre otros) para determinar la factibilidad de

desarrollo de cada especie.

4. América Latina requiere de planes integrales de desarrollo

tecnológico continuo con las especies seleccionadas

Programa de Acuicultura y Biotecnología Marina

(506) 26 61 52 75 (506) 88 17 28 61

[email protected]

www.parquemarino.org

GRACIAS

http://www.parquemarino.org/

Gestión de Reproductores

Centrado en la corvina (Argyrosomus regius)

Neil Duncan





2-17 de junio, 2021

[email protected]


Salvaje Cautiverio

Maduración: Control

El pre - acondicionamiento de reproductores implica proporcionar la nutrición y el ambiente correctos (físicos y sociales) para permitir que la maduración continúe hasta las etapas finales con la producción de gametos viables y el desove.

Acondicionamiento de reproductores

Ibarra-Zatarain and Duncan 2015

Ref: Mañanos, Duncan y

Mylonas 2008

Reproduction and control

of ovulation, spermiation

and spawning in cultured

fish. In: Methods in

Reproductive Aquaculture.

Maduración: Control



Pasos: Puntos críticos

1. Planificación y conocimientos

– Formación de protocolo

2. Obtención de reproductores

3. Estabulación de reproductores

4. Nutrición

5. Ambiente durante gametogénesis

6. Ambiente para espermiación / maduración final de ovocito –ovulación y la puesta

Pool of potential brood fish

Spawning

Optimal environment for final

maturation and ovulation /

spermiation

Optimal environment

for gametogenesis

Adequate

Nutrition

Yes

Yes

Yes

Yes

Fig. Flow diagram of critical points in the induction of spawning in captivity.

Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction

and control of ovulation, spermiation and spawning in

cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.







4. Nutrición




Spawning



spermiation

Optimal environment

for gametogenesis

Adequate

Nutrition

Yes

Yes

Yes

Yes





01.1 QUÈ ÉS?

Planificación y

conocimientos

Formación de protocolo

Protocolo para obtención de puesta:

• Estrategia de diferenciación del sexo

Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction and control of ovulation, spermiation and spawning in cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.


01.1 QUÈ ÉS?

Planificación y

conocimientos




• Talla o edad de primero madurez y talla optima



01.1 QUÈ ÉS?

Planificación y

conocimientos





• El periodo de gametogénesis, y las condiciones ambientales durante el periodo

• El periodo de puestas, y las condiciones ambientales durante el periodo



01.1 QUÈ ÉS?

Planificación y

conocimientos







• Información de la endocrinología de la reproducción de la especie.

• Información de inducción hormonal de la puesta.

– Fechas de inducción.

– Características de los peces, peso etc.

– Tamaño de oocito

– Hormona y dosis que aplicó.

– Datos de las puestas y calidad de huevo: i.e. numero de puestas, latencia periodo, numero de huevos, tamaño de huevos, tasa de fertilización / eclosión.



01.1 QUÈ ÉS?

Planificación y

conocimientos














• Información de comportamiento de la puesta, forman grupos, parejas?

• Tipos de huevos, son pelágicos, tamaño, periodo de incubación.



01.1 QUÈ ÉS?

Planificación y

conocimientos














• Información de comportamiento de la puesta, forman grupos, parejas?

• Tipos de huevos, son pelágicos, tamaño, periodo de incubación.

• Datos de fecundidad









4. Nutrición




Spawning



spermiation

Optimal environment

for gametogenesis

Adequate

Nutrition

Yes

Yes

Yes

Yes





01.1 QUÈ ÉS?

Obtención de reproductores

Planificación e información

Pesca

Selección madurez / sexo

Mantener peces a bordo del barco

Muestreo de los peces

Ambiente y bienestar de la cultura

Enfermedades

Parásitos

Bacteria

virus

Consideraciones para formar un grupo de reproductores








4. Nutrición




Spawning



spermiation

Optimal environment

for gametogenesis

Adequate

Nutrition

Yes

Yes

Yes

Yes





01.1 QUÈ ÉS?

1. Libertad de sed, hambre y desnutrición, mediante el acceso a una dieta adecuada de alta calidad y un entorno en el que se pueda mantener el equilibrio de líquidos y electrolitos.

2. Libre de molestias, manteniendo el agua a una temperatura y composición química adecuadas y proporcionando recintos o tanques bien diseñados, con sombreado si es necesario.

3. Libertad de dolor, lesiones y enfermedades, evitando situaciones que puedan causar dolor, lesiones o enfermedades, mediante un diagnóstico y tratamiento rápidos de la enfermedad y la muerte humana.

4. Libertad para ejercer un comportamiento normal, proporcionando el espacio y el entorno adecuados para la especie.

5. Libertad de miedo y angustia, minimizando en la medida de lo posible situaciones estresantes como la manipulación o el ataque de depredadores, realizando cambios graduales en la calidad de la cría y el agua, y mediante el sacrificio humano.

Medio ambiente

en cautiverio y

bienestar

RSPCA; Huntingford 2006


01.1 QUÈ ÉS?

• Calidad del agua - mejor disponible, niveles de oxígeno, pH y contaminantes (amoníaco, nitratos y contaminantes como fertilizantes, herbicidas y pesticidas) SENTIDO COMÚN

• Un suministro de agua limpia con

• flujo abierto de 5-6 volúmenes de tanque / día

• recirculación con 50% de renovación / día

• La temperatura debe ser óptima

• El tanque debe ser autolimpiante bien diseñado

• Las densidades de siembra deben ser bajas, por debajo de 5kg / m3

• Alimentación de dietas de alta calidad

• Un mínima de intervenciones de zootecnia y molestias


Medio ambiente

en cautiverio y

bienestar

01.1 QUÈ ÉS?

Semana 1: Dejar los peces sin molestias, incluida la no alimentación.

Semana 2: Un baño de formol, un baño de H2O2 y ofrecer alimento de la dieta natural de los peces

Semana 3: Un baño de formol, un baño de H2O2 y ofrecer alimento de la dieta natural de los peces.

Semana 4: Un baño de formol, un baño de H2O2 y ofrecer alimento de la dieta natural de los peces.

Semana 5 o cuando los peces se están alimentando: un tratamiento oral para parásitos internos y externos como prazinquantel

Pathogen to be controlled Chemical* Spacies Dosing Administration

External parasites, protozoa, monogenea, copepods.

Also external bacteria.Formalin Fish 100 µL/L 1 hour bath

External bacteria and protozoa, (Amylodinium) H2O2 Fish 150 µL/L 1 hour bath

Internal and external parasites Praziquantel Fish 5 mg/kg In feed or orally with a canula

Internal bacteria Enrofloxicina Fish 10 mg/kgInjection every other day for

minimum period of 10 days.

Internal bacteria Oxytetracycline Fish 10 mg/kgInjection every other day for

minimum period of 10 days.

External bacteria, fungus and protozoa H2O2 Fish eggs 500 µL/L 15 minute bath

External bacteria and protozoa active iodine Fish eggs 50 mg/L 10-60 minute bath

*The authors do not recommend the use of unapproved chemicals to treat fish. All treatments should be previously tested on

a small number of organisms that will not cause a finacial loss to the farm.

Medio ambiente

en cautiverio y

bienestar

Diseases







4. Nutrición




Spawning



spermiation

Optimal environment

for gametogenesis

Adequate

Nutrition

Yes

Yes

Yes

Yes





01.1 QUÈ ÉS?

Ácidos grasos esenciales, en particular el ácido araquidónico (ARA), el ácido docosahexaenoico (DHA) y el ácido eicosapentaenoico (EPA),

Niveles de vitamina E

Nivel de proteína y perfil de aminoácidos,

Carotenoides

Vitaminas C, A y B6

Estrategia

Dieta en base de la dieta natural con artículos de alta calidad, sardina, calamares, políquetos, camarones

Incluir una dieta de reproductores de una especie de un nivel trófico similar

Pellets

Massas

Incorporación a la dieta natural

Skretting.com Repro Vitalis Cal

Nutrición








4. Nutrición




Spawning



spermiation

Optimal environment

for gametogenesis

Adequate

Nutrition

Yes

Yes

Yes

Yes





01.1 QUÈ ÉS?

Control ambiental

• Fotoperíodo

• Temperatura

• Disponibilidad de alimentos

• Lunar

• Ciclos de marea

• Ciclos meteorológicos

• Precipitación

• Corrientes y presión oceánicas

• Interacciones sociales y espacio para el comportamiento

• Sustratos

La gametogénesis suele ser más flexible ambientalmente que la maduración final, la espermación y el desove.

Spawning bream








4. Nutrición




Optimal environment

for final maturation

and ovulation /

spermiation

Successful hormone induction

of final maturation

and ovulation /

spermiation

Optimal

environment

for gametogenesis

Successful hormone

induction of gametogenesis

Adequate

Nutrition

Spawning

Yes

No maturation, no

spawning or spawning of

poor egg quality.

Recondition fish for next

reproductive cycle.

Yes

Yes

Yes

Yes

No

No

No

No

01.1 QUÈ ÉS?

Corvina Argyrosomus regius


01.1 QUÈ ÉS?



Pesca





Enfermedades

Parásitos

Bacteria

virus



01.1 QUÈ ÉS?



Pesca





Enfermedades

Parásitos

Bacteria

virus



01.1 QUÈ ÉS?

Planificación y

conocimientos



• Estrategia de diferenciación del sexo gonochoristic?

• Talla o edad de primero madurez y talla optima >8kg (Nuno Prista)

• El periodo de gametogénesis, y las condiciones ambientales durante el periodo – Winter to spring 15-20ºC

• El periodo de puestas, y las condiciones ambientales durante el periodo – Winter to spring 15-20ºC

• Información de la endocrinología de la reproducción de la especie. no information

• Información de inducción hormonal de la puesta. no information

– Red drum – injection of 20 micrograms / kg

– Orange corvina. - injection de 100 micrograms / kg

– Seriola – Implant of 40 micrograms / kg

– Meagre – 15 microgramos ovaprim

• Información de comportamiento de la puesta, forman grupos, parejas? no information

• Tipos de huevos, son pelágicos, tamaño, periodo de incubación. Pelagic 1mm

• Datos de fecundidad no information



01.1 QUÈ ÉS?



Pesca





Enfermedades

Parásitos

Bacteria

virus



01.1 QUÈ ÉS?

Reproducción y aclimatación.

Formación de estocks

Captura y transporte

Se consiguió doce corvinas (suministrados como 6

hembras y 6 machos) de los asesores de la captura

de peces vivos Flying Sharks


01.1 QUÈ ÉS?



Pesca





Enfermedades

Parásitos

Bacteria

virus



01.1 QUÈ ÉS?


Formación de stocks

Muestreo

• Anestesiados: 2-fenoxietanol, concentración de 167

ppmillion

• Pesados, marcados con una chip (PIT tag), examinados para

parásitos, muestreados por sangre y dados una inyección

antibiótica (10mg/Kg Enrofloxin).


01.1 QUÈ ÉS?

Reproducción y domesticación.


Parásitos

• Para controlar parásitos:

• Baños diarios de formalina (100ppmilion / una hora) para tres

dias consecutivos, semanalmente para las primeras tres

semanas,

•Tratamiento de de-parasitismo del praziquantel oral (5mg/Kg

peso corporal PC).

• Parásitos identificados como monogenea, dos especies sin

descripción del genero Calceostoma.

Karl Andree

Karl Andree


01.1 QUÈ ÉS?



Pesca




Ambiente y bienestar de los peces

Enfermedades

Parásitos

Bacteria

virus



01.1 QUÈ ÉS?

Aclimatación de reproductores salvajes

• Planificación de sistemas

– Diseño de tanques

– Temperaturas y fotoperiodo natural

• Programa de aclimatación

– Un periodo de ajuste (1 semana)

– Tratamientos ante-parásitos

– Alimentación

01.1 QUÈ ÉS?



Alimentación

Condiciones de cultivo.

Se alimentaron sardina y calamar en el ratio de 3:1.

A temperaturas de 18-21°C los corvinas comieron 2.5%PC.

A temperaturas de 14-16°C los corvinas comieron 0.8%PC

Repro vitalis 0.1% biomasa

Fotoperiodo: luz natural, aproximadamente 50 lux

Temperatura fue un perfil natural amortiguo para mantener la

temperatura entre 14-25°C. (bajada a 8°C)

Recirculación un pico del amoníaco de 1.2mg/L y a una semana en

0.5mg/L. se estabilizo con 1-2mg/L del amoníaco.

01.1 QUÈ ÉS?

Objetivo parcial

1) Formar stocks

Caso 1: Calamares y

pecado de la 3 ª semana

de cautiverio a 0,8-2,5%

del peso corporal.

Temperatura de 16-22

ºC, importante para la

alimentación. Febrero-

Marzo, presente los

ejemplares maduros.

Caso 2: No se

alimentaron durante el

invierno, no maduraron

durante la primavera.

Maduraron en el

segundo año. 0

5

10

15

20

25

24-O

ct

7-N

ov

21-N

ov

5-D

ec

19-D

ec

2-J

an

16-J

an

30-J

an

13-F

eb

27-F

eb

13-M

ar

27-M

ar

10-A

pr

24-A

pr

8-M

ay

22-M

ay

Tem

pera

ture

ºC

Case 2

Case 1

Aqua Solutions

Biotech







4. Nutrición




Optimal environment

for final maturation

and ovulation /

spermiation

Successful hormone induction

of final maturation

and ovulation /

spermiation

Optimal

environment

for gametogenesis

Successful hormone

induction of gametogenesis

Adequate

Nutrition

Spawning

Yes

No maturation, no

spawning or spawning of

poor egg quality.

Recondition fish for next

reproductive cycle.

Yes

Yes

Yes

Yes

No

No

No

No

01.1 QUÈ ÉS?Época de reproducción

¿Hay puestas espontaneas?

Revisión de madurez

Inducción de la puesta


01.1 QUÈ ÉS?Protocolo de desove inducido

Dos aspectos importantes:

1. Etapa de desarrollo del ovario: diámetro del

ovocito.

2. Dosis de hormonasInduced spawning

protocol

Ibarra-Castro, L., Duncan, N.J., 2007. GnRHa-induced

spawning of wild-caught spotted rose snapper Lutjanus

guttatus. Aquaculture 272, 737–746


01.1 QUÈ ÉS?

Obtener una muestra de ovario

Pasos

Obtener una biopsia usando una cánula

1) Anestésis el pez

2) Obtener una muestra de ovario insertando la

cánula en el ovario

3) Mantener los peces anestesiados

Examinar la muestra

4) Poner la muestra de tejido ovárico en un

portaobjetos de microscopio. Romper el tejido con dos

agujas y bañar la muestra con solución de limpieza (6 mL de

etanol absoluto, 3 mL de formol, 2 mL de glicerol y 1 mL de

ácido acético)

5) Estimar el % por área que es de ovocitos grandes

6) Medida 20 de los ovocitos más grandes

7) Administrar la hormona


01.1 QUÈ ÉS?

Obtener una muestra de ovario, una biopsia de tejido ovárico

El oviducto suele estar entre el ano y el poro urinario.

El ano está más cerca de la cabeza y el poro urinario más cercano a la cola.

Introduzca la cánula al oviducto

Entra la mitad de la distancia entre la aleta pélvica y el oviducto.

Haga una succión.

Retira la cánula manteniendo la succión.

Cierra la cánula con la lengua.

Retire la cánula y retire la muestra de la cánula

Anus - oviduct - urinary pore


01.1 QUÈ ÉS?

Obtain a biopsy of ovarian tissue from seabass


01.1 QUÈ ÉS?

Examen de ovocitos, solución de limpieza

• Ovocitos

<650μm

•(0,65 mm)

• Bajo

porcentaje de

ovocitos

grandes <60%

• Este pez

debe dejarse

madurar y no

se debe

aplicar

hormona

01.1 QUÈ ÉS?


• Ovocitos

grandes >

650μm

(0.65mm)

• Alto

porcentaje de

oocitos grandes

>60%

• Este pez debe

ser inducido a

desovar con

GnRHa

•

01.1 QUÈ ÉS?


• Ovocitos

grandes >

650um.

• Alto

porcentaje de

oocitos grandes

>60%

• Este pez debe

ser inducido a

desovar con

GnRHa

•

01.1 QUÈ ÉS?

Examen de ovocitos, solución de limpieza• Este pez ha

terminado de

desovar y está

entrando en atresia,

regresión del ovario

• A = ovocitos en

atresia

• O = buen ovocito

• Po = óvulos post

ovulados que no

fueron desovados y

están en atresia

• 1ºO = ovocitos en

1º fase de

crecimiento

• Este pez

probablemente no

responderá a la

inducción hormonal

O

Po

A

A

A

A

1ºO

1ºO

01.1 QUÈ ÉS?

Examen de ovocitos, solución de limpieza• Este pez ha

terminado de

desovar y se

encuentra en etapas

avanzadas de

atresia, regresión del

ovario

• A = ovocitos en

atresia

•Po = óvulos post

ovulados que no

fueron desovados y

están en atresia

• 1ºO = ovocitos en

1º fase de

crecimiento

• Este pez no

responderá a la

inducción hormonal

PoA

A

A

A

1ºO

1ºO A

AAA

01.1 QUÈ ÉS?



Época de maduración ?

EPOCA DE MADUREZMuestreos de madurez se encontró hebras que tenían ovocitos de

promedio de 566±9 um con ovocitos con núcleo migrando


01.1 QUÈ ÉS?

Disfunción Reproductiva

Disfunción Reproductiva

• No hay vitelogenesis– ?

• Detenidos en vitelogenesis– Inducción hormonal

• No hay liberación de huevos– Liberación por mano con presión

abdominal

• Revisiones por Zohar y Mylonas


Eje

Cerebro

→

Pituitaria

→

Gonadas

externo

medio ambiente

interno

medio ambiente

cerebro

hipotálamo

Liberación de hormonas

glándula pituitaria

o

pituitaria

Gonadotrópico

Hormona(s)

ovario testículo

huevos esperma

Progestágenos

Estrógenos andrógenos


Eje

Cerebro

→

Pituitaria

→

Gonadas

externo

medio ambiente

interno

medio ambiente

cerebro

hipotálamo



o

pituitaria

Gonadotrópico

Hormona(s)

ovario testículo

huevos esperma

Progestágenos


GnRHa o LHRHa

Extractos de

hipófisis o hCG

Aplicación de hormonas exógenos



Aplicación de hormonas exógenos – Qué hormona?

Zohar 1995 Gilthead seabream In: Broodstock management and egg and larval quality.

Vida media corta

Gonadotropin

releasing hormones

GnRHa o LHRHa

External

Environment

Internal

Environment

Brain

Hypothalamus

Releasing Hormones

Pituitary Gland

or

Hipofisis

Gonadotropic

Hormone(s)

Ovary Testis

Eggs Sperm

Progestagens

Oestrogens Androgens

GnRHa o LHRHa

Gonadotropin releasing hormones

GnRHa o LHRHa

Zohar 1995 Gilthead seabream In: Broodstock management and egg and larval quality.

Aplicación de hormonas exógenos – Qué hormona?

Vida media

corta

Solución de

implante

Agonistas del receptor de LH

Extractos pituitarios – extracto pituitario

de la carpa

gonadotropina coriónica humana

Ventajas: Directo, sin efecto dopamina

Inconvenientes: Inmunidad, patógenos

hormona luteinizante recombinante

externo

medio ambiente

interno

medio ambiente

cerebro

hipotálamo



o

pituitaria

Gonadotrópico

Hormona(s)

ovario testículo

huevos esperma

Progestágenos


Extractos de

hipófisis o hCG

Aplicación de hormonas exógenos



Aplicación de hormonas exógenos – Qué dosis?

Gonadotropin releasing hormones

GnRHa o LHRHa

01.1 QUÈ ÉS?

500 600 700 800 900 1000 1100 1200 1300 1400

150

250

350

450

550

650

750

850

Egg size

Oo

cyte

siz

e

y = -95.9872 + 0.623725 x

r2 = 61.7 %

95% Confidence interval

Huevo = 1mm, Ovocito = 0.53mm

Aplicación de hormonas exógenos – Qué dosis?



Family Species Similar hormone therapies Hormone tharpies (µg kg-1 body weight)

Percichthyidae Dicentrarchus labrax GnRHa affective for

inducing spawning.

Doses required:

Implants: 25-100 µg kg-1

Injections: 1-40 µg kg-1

10 µg kg-1 GnRHa repeated inj. (Mylonas et al 2003)

Moronidae

Morone saxatilis x

M. chrysops 62 µg kg-1 GnRHa EVAc imp (Mylonas 1996)

Centropomidae Lates calcarifer 37.5–75 µg kg-1 GnRHa imp (Garcia 1989)

Sparidae Sparus aurata 100 µg kg-1 GnRHa EVAc imp (Zohar et al 1995)

Sciaenidae Sciaenops ocellatus 20 µg kg-1 GnRHa inj. (Thomas et al 1995)

Carangidae Seriola dumerili 2 x 40 µg kg-1 GnRHa EVAc imp (Mylonas 2004)

Scombridae Thunnus thynnus 40-100 µg kg-1 GnRHa EVAc imp (Corriero 2007)

Paralichthyidae Paralichthys lethostigma 100 µg kg-1 GnRHa imp (Smith et al 1999)

Scophthalmida

e Psetta maxima 25 µg kg-1 GnRHa imp (Mugnier et al 2000)

Tetraodontidae Sphoeroides annulatus 40 µg kg-1 GnRHa inj. (Duncan et al 2003)

Chanidae Chanos chanos 10-33 µg kg-1 inj. (Marte et al 1987, 1988)

Salmonidae Salmo salar 50 µg kg-1 EVAc imp. (Tarranger et al 2003)

Acipenseridae Huso huso 1 µg kg-1 inj. (Dettlaff et al 1993)

Lutjanidae Lutjanus argentimaculatus

GtH or higher doses of

GnRHa required:

hCG: 1000-1760 IU kg-1

GnRH: 100 µg kg-1 (inj.)

1000 IU kg-1 hCG inj.

100 µg kg-1 GnRHa inj. (Emata 2003)

Ictaluridae Ictalurus punctatus

1000-1760 IU kg-1 hCG inj.

1º = 10; 2º = 90 µg kg-1 GnRHa inj. (Legendre et al 1996)

Clariidae Clarias gariepimus

Dopermine inhibition of

GnRH described.

GtH or GnRHa +

dompamine antagonist

required:

hCG: 44-4000 IU kg-1

cGtH: 300-600 µg kg-1

GnRH: 20-50 µg kg-1+

antagonist (PIM, MET)

4000 IU kg-1 hCG inj

50 µg kg-1 GnRHa + 500 µg kg-1 PIM inj. (Richter et al 1995)

Mugilidae Mugil Cephalus

1º = 14-21, 2º= 30-48 IU g-1 of hCG (Kuo 1995)

1º = 10 µg kg-1 GnRHa + 15 mg kg-1 of MET 2º = 20 µg kg-1 GnRHa +

15 mg kg-1 MET (Aizan et al 2005)

Cyprinidae Cyprinus carpio

1º = 50-100 µg.kg-1 cGtH; 2º = 250-500 µg kg-1 cGtH (Rothbard and

Yaron 1995)

1º = 2 µg.kg-1 GnRHa + 0.5 µg.kg-1 PIM; 2º = 18 µg.kg-1 GnRHa + 4.5

µg.kg-1 PIM (Mikolajczyk et al 2004)

01.1 QUÈ ÉS?



Inducción de la puesta.

Inducción de la puesta 26 Marzo 2007

2 hembras tratadas con inyección única 20 µg.kg-1 = 3 puestas y un

total de 7,221,000 huevos flotando, 160,370 huevos/kg

2 hembras tratadas con implante de 50 µg.kg-1 = 9 puestas y un total de

9,515,000 huevos flotando, 216,250 huevos/kg

0

500000

1000000

1500000

2000000

2500000

3000000

3500000

4000000

Imp

Iny

Imp

Iny

Imp

Iny

Imp

Iny

Imp

Iny

Imp

Iny

Imp

Iny

Imp

Iny

Imp

Iny

Imp

Iny

Imp

Iny

Imp

Iny

Imp

Iny

Imp

Iny

Imp

Iny

29

Mar

30

Mar

31

Mar

1

Abril

2

Abril

3

Abril

4

Abril

5

Abril

6

Abril

7

Abril

8

Abril

9

Abril

10

Abril

11

Abril

12

AbrilNum

ero

de h

uevos


01.1 QUÈ ÉS?



Inducción de la puesta.

Spawning0

500000

1000000

1500000

2000000

2500000

3000000

3500000

4000000

Imp Iny Imp Iny Imp Iny Imp Iny Imp Iny Imp Iny Imp Iny Imp Iny Imp Iny

6 May 7 May 8 May 9 May 10 May 11 May 12 May 13 May 14 May

Total flotando + no flotando

Flotando

Fertilisación

Eclosión

Inducción de la puesta 4 Mayo 2007

2 hembras tratadas con inyección única 20 µg.kg-1 = 2 puestas y un

total de 1,798,300 de huevos flotando

2 hembras tratadas con implante de 50 µg.kg-1 = 4 puestas y un total

de 2,915,000 huevos flotando.

Revisión en Junio, atresia y esperma de calidad reducida


Gaussian regression

r2 = 0.89

Dose µg.kg-1

-5 0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60

Nu

mbe

r of la

rvea w

ith y

olk

sa

c a

bsorb

ed

0.0

2.0e+5

4.0e+5

6.0e+5

8.0e+5

1.0e+6

1.2e+6

1.4e+6

1.6e+6

1.8e+6

2.0e+6

a

b

oXX

y

−

−

=

2

5.0

01.1 QUÈ ÉS?Cerrando el ciclo, reproducción en primera generación desde cautiverio.

Primera maduración a 5-6 kg

Éxito de desove similar. Dosis óptima para inyección 15 μg Kg-1 GnRHa inyección única

H. Fernández-Palacios, D. Schuchardt, J. Roo, L. Robaina, C.M. Hernández-Cruz and

N. Duncan. The effect of different doses of a single GnRHa injection on the spawning

of meagre broodstock (Argyrosomus regius) Submitted to Aquaculture.Research

Reproductores criados en cautiverio


01.1 QUÈ ÉS?Objetivo parcial

5) Inducción hormonal

• Inducción exitoso cada 7 días

• Puestas de marzo a septiembre

• Puestas múltiples

Aqua Solutions

Biotech



2) Microsatélites

AquaSolutions Biotech,

Parque Tecnológico de

Andalucia, Málaga

Se describieron 10

microsatélites

PCR multiplex

Análisis de paternidad

Aqua Solutions

Biotech



2) Microsatélites

AquaSolutions Biotech,

Parque Tecnológico de

Andalucia, Málaga

Se describieron 10

microsatélites

PCR multiplex

Análisis de paternidad

Aqua Solutions

Biotech

01.1 QUÈ ÉS?

Protocolo de desove

Protocolo de desove:

Estrategia de diferenciación sexual - gonocorónica

Tamaño o edad en la primera madurez -> 8kg salvaje 5-6 kg en

cultivo

El período de gametogénesis, y las condiciones ambientales

durante el período - Invierno - Primavera 15+ ºC de

alimentación de sardinas, calamares y Skretting vitalis-reprod

El período de desove, y las condiciones ambientales durante el

período – primavera-verano 16-23° C

Información de inducción hormonal del desove.

Fecha de inducción - marzo-septiembre

Características del pescado - 6-30 kg

Tamaño del ovocito -> 0.56 mm

Hormona y dosis. Implante GnRHa, 50 microgramos / kg,

inyección de 15-20 microgramos / kg,

Detalles del desove: 0.2-3.5 millones / desove (media 1.7

millones) fertilización> 80%

Período de latencia – 48-72 horas (desde la aplicación)

Tipos de huevos – 0.9-1 mm pelágico

Datos de fecundidad - 282.000 a 498.000 por kg (130.000 por

desove inducido)


Gracias por su atenciónEl fin.


Calidad de los gametos y su gestión en la fertilización artificial

de la corvina (Argyrosomus regius) para facilitar la realización

de programas de mejora genética

Neil Duncan





2-17 de junio, 2021

[email protected]


Calidad de los gametos y su gestión en la fertilización artificial de la corvina (Argyrosomus regius) para facilitar la realización de programas de mejora genética

Sandra Ramos Júdez

Neil Duncan, (IRTA), Christian Fauvel, (IFREMER),

Gilberto Dutto, (IFREMER), Wendy Gonzalez, (IRTA).

REPRODUCCIÓN Y MEJORA GENÉTICA II

INTRODUCCIÓN


Producción acuícola europea (t)

INTRODUCCIÓN

Baja variedad de familias y de poblaciones

Programas de cría para evitar la endogamia

CRIA MEDIANTE EL CRUCE DE PAREJAS

FERTILIZACIÓN ARTIFICIAL

• Mayor número de familias en menor tiempo.

• Menos estrés de los individuos

Definir un protocolo para la obtención de gametos femeninos de alta calidad.Determinación del tiempo de ovulación tras la inducción hormonal.

OBJETIVOS

Establecer la ratio esperma:óvulo óptima para obtener las mayores tasas de fertilización.

Desarrollar un protocolo para la fertilización artificial.


MATERIAL Y MÉTODOS

♂

♀

Selección de reproductores por su estado de madurez.1


Anestesia (70,6 mg/L MS-222)

♂

♀

Selección de reproductores por su estado de madurez.

MATERIAL Y MÉTODOS

1

• Total: 5 machos (15,94 ± 2,75 kg)

• Total: 13 hembras (20,45 ± 6,22 kg)


♂

♀


MATERIAL Y MÉTODOS

♀• Biopsias ováricas por canulación.

1

• Total: 5 machos (15,94 ± 2,75 kg)

• Total: 13 hembras (20,45 ± 6,22 kg)


• Total: 5 machos (15,94 ± 2,75 kg)

• Total: 13 hembras (20,45 ± 6,22 kg)

♂

♀


MATERIAL Y MÉTODOS

♀• Biopsias ováricas por canulación.• Hembras seleccionadas: Oocitos en

plena vitelogénesis (diámetro >550 µm)

>550 µm

1


♀

♂

MATERIAL Y MÉTODOS

Protocolo de inducción hormonal.2


♀

♂

MATERIAL Y MÉTODOS

Protocolo de inducción hormonal.

Inyección intramuscular de GnRHa Dosis = 15 µg/kg

♀

9-10 h después

2

Total: 24 inducciones con GnRHa (en diferentes semanas y rotando las hembras).


♀

♂

MATERIAL Y MÉTODOS


♀

24h

• Diluido en Leibovitz 1:4.• Análisis (motilidad,

velocidad y duración).• Mantenido sobre hielo.

9-10 h después

Obtención de esperma

Obtención de gametos masculinos.3



♀ ♀

♂

DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE OVULACIÓN TRAS LA INDUCCIÓN HORMONAL

♀

♂


24h

MATERIAL Y MÉTODOS

Obtención de gametos femeninos.

9-10 h después


Masajes abdominales

Cada 2:30 horas

35h

2:30h 2:30h 2:30h

Tiempo de ovulación:Tiempo transcurrido entre la inducción hormonal y el primer momento en el que se obtienen huevos ovulados.

4


♀ ♀

♂

♀

♂


24h

MATERIAL Y MÉTODOS

Fertilización artificial.

9-10 h después


FERTILIZACIÓN

5

Agua de mar

Óvulos

Esperma diluido

Incubaciones en triplicado.

De 17,8 ºC a 18,4 ºC.

Durante 30 h.

Revisión de la tasa de fertilización (% del

número de huevos con embriones) en

400 huevos/incubador.


MATERIAL Y MÉTODOS

PARTE 1: DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE OVULACIÓN

¿CUÁNDO HACER EL MASAJE ABDOMINAL Y OBTENER LOS GAMETOS DE MEJOR CALIDAD?


MATERIAL Y MÉTODOS


XVI Congreso Nacional de Acuicultura


PARTE 2: DETERMINACIÓN DE LA PROPORCIÓN ÓPTIMA DE ESPERMA:ÓVULO


MATERIAL Y MÉTODOS




PARTE 2: DETERMINACIÓN DE LA PROPORCIÓN ÓPTIMA DE ESPERMA:HUEVO

1 Obtención de gametos



MATERIAL Y MÉTODOS




1 Obtención de gametosFertilización artificial con diferente concentración de esperma (1:4 Leibovitz).


2


MATERIAL Y MÉTODOS




1 Obtención de gametosFertilización artificial con diferente concentración de esperma (1:4 Leibovitz).


2:00 h

Revisión de la tasa de fertilización

en 100 huevos de cada fertilización

2

RESULTADOSPARTE 1:

DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE OVULACIÓN TRAS LA INDUCCIÓN HORMONAL


PARTE 1: TIEMPO DE OVULACIÓN

RESULTADOS

RESULTADOS

1 2 3 4



RESULTADOS


1 2 3 4

RESULTADOS

1 2 3 4

32,5±43,50%

51,11±28,04%

27,49±16,39%

5,72±3,90%


RESULTADOS




RESULTADOSPARTE 2:

DETERMINACIÓN DE LA RATIO ESPERMA:ÓVULO


RESULTADOS

No hubo diferencias significativas en las tasas de fertilización entre machos. Sí (P < 0.05) entre las hembras (indica diferente calidad de gametos).

---> Se combinaron los datos por hembras para obtener regresiones

♂♀

RATIO ESPERMA:ÓVULO



RESULTADOS



♂♀

Tasa

de

fert

iliza

ció

n (

%)

Ratio esperma:óvuloCapacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021

RESULTADOS



♂♀

Tasa

de

fert

iliza

ció

n (

%)

Ratio esperma:óvulo


RESULTADOS



♂♀

Tasa

de

fert

iliza

ció

n (

%)

Ratio esperma:óvulo

P < 0,05


Las hembras mantenidas a 18ºC deben ser examinadas tras 38 h de la inducción hormonal con el fin de obtener la mejor calidad de gametos femeninos.

Protocolo de fertilización artificial:Mezclar:

CONCLUSIONES

Agua de mar

Óvulos

Esperma diluido

(~ 1.700 óvulos) extraídos en el periodo de 2-3 horas tras la

ovulación

(1:4 en Leibovitz modificado = ~ 3,4 x 108 espermatozoides)

Activación inmediata de un mínimo de 0,5 mL de agua

de mar/mL de huevos


GRACIAS POR SU ATENCIÓN


Cultivo larvario y preengorde

Alicia Estévez





2-17 de junio, 2021

[email protected]


Características de la larva de corvina

- Rápido crecimiento

- Aparición temprana de la vejiga natatoria (dia 3-4 después de la

eclosión)

- Alta supervivencia cuando están bien alimentadas (más del 60%)

Growth in weight DW=11.55*exp(0.151*age)

R2= 0.612

Age (dah)

0 10 20 30

Dry weight ( g)

0

500

1000

1500

2000

2500

Growth in legthSL=2.924*exp(0.0296*age)

R2= 0.84

Age (dah)

0 10 20 30

SL (mm)

0

2

4

6

8

10

Phytoplankton

Rotifers

Artemia

Microdiet


Parámetros a considerar en el cultivo larvario de corvina

1) Temperatura

No hay demasiados estudios publicados sobre el crecimiento de las larvas

de corvina a distinta temperatura, prácticamente en todos los estudios

publicados se ha usado una temperatura en torno a los 20ºC

Temperatura (ºC) Talla (mm) 30 dph

19-20 6,1-8,5

20-23 15,1

21-25 11,7

20-21 6-8


Age (dph)0 5 10 15 20 25 30 35

Dry

weig

ht

(g)

0

100

200

300

400

500

1000 lux

500 lux

50 lux

0 2 4 6 8 10 12 14 16 18

10

20

30

40

50

60

70

80

90

a

a

b

a

a

b


1) Intensidad de luz

En un trabajo publicado en 2013 (Vallés & Estévez) se estudió el efecto

tanto de la intensidad de luz como de la longitud del fotoperiodo. Una luz

excesivamente brillante (1000 lux) o demasiado baja (50 lux) dio lugar a

un menor crecimiento (tanto en longitud como en peso) de las larvas,

además de provocar stress


a

ab

b

b

Age (dph)0 5 10 15 20 25 30 35

Dry

weig

ht

(g)

0

1000

2000

3000

4000

24L:0D

18L:6D

12L:12D

8L:16D

a

a

b

b

0 2 4 6 8 10 12 14 16

0

50

100

150

200

250

300


3) Fotoperiodo

De igual manera el uso de fotoperiodos largos (24hL o 18hL:6hO) permite

a las larvas tener acceso a las presas vivas durante más tiempo dando

lugar a un mayor crecimiento. El uso de 24hL no es recomendable pues

provoca una mayor incidencia de canibalismo y stress en las larvas y por

lo tanto una menor supervivencia



3) Intensidad de luz y fotoperiodo

La luz excesiva o un fotoperiodo demasiado largo provoca stress en las

larvas, que permanecen mucho más tiempo en la superficie del agua

hiperinflando la vejiga natatoria. El exceso de presas vivas en el agua

(sobre todo nauplios de Artemia) también provoca stress en las larvas e

hiperinflación de la vejiga.

Fotoperiodo (h) Hiperinflacion

20dph

Hiperinflacion

26 dph

24L:0O 31,25 22

16L:8O 12 0

12L:12O 0 0

8L:16O 0 0



3) Intensidad de luz y fotoperiodo

Lo aconsejable durante el cultivo larvario es usar 12hL:12hO o 16hL:8hO y

500 lux para lograr un buen crecimiento y supervivencia a 30 dph

Fotoperiodo Intensidad

(lux)

SL

(mm)

DW

(mg)

Supervivencia

(%)

16L:8O 20 4,69 0,13 9,59

500 5,66 0,33 17,88

1000 5,07 0,21 15,27

24L:0O 500 9,41 2,22 6,18

16L:8O 500 8,45 2,12 13,79

12L:12O 500 6,96 0,80 27,26

8L:16O 500 6,53 0,63 47,74



3) Alimentación con presas vivas

Es imprescindible alimentar las larvas en cuanto abren la boca y antes de que

agoten las reservas de vitelo y la gota de grasa, si se retrasa demasiado la

alimentación se puede alcanzar el punto de no retorno alimentario, momento

en el que la larva está tan debilitada que aunque se suministre alimento, no

persigue las presas vivas y acaba muriendo

Retraso primera alimentación dentón

Edad (días)

0 2 4 6 8 10 12 14

Pe

so

se

co

(g

)

0

20

40

60

80

100

ayuno

día 3

día 5

y= 12.118 e0.152 edad

y= 8.697 e0.1471 edad

y= 24.52 - 1.08 edad



3) Alimentación con presas vivas

La mayoría de los productores de corvina utilizan la misma secuencia de

alimentación que en el cultivo de dorada: Microalgas (Nannochloropsis spp) del

dia 2 al 15, rotíferos del dia 2 al 15, Artemia enriquecida desde el dia 12 al 30 y

microdietas del dia 20 al 30 (destete).

En un trabajo publicado por Roo et al (2010) se usaron 3 secuencias distintas

con buenos resultados de supervivencia y crecimiento a dia 30

Secuencia SL

(mm)

DW

(mg)

Supervivencia

(%)

T1 8,00 1,45 36,75

T2 7,25 1,05 50,90

T3 6,91 0,91 50,93

T1 T2 T3

Microalgas 2-11 2-15 2-19

Rotifero enriquecido 2-11 2-15 2-19

Nauplios Artemia 8-11 12-15 16-19

Metanauplios enriquecidos 10-30 14-30 18-30

Microdietas 20-30 20-30 20-30


Edad (dph)

0 5 10 15 20 25 30 35

Peso (

g)

0

1000

2000

3000

4000

5000

25 larvas/L

50 larvas/L

100 larvas/L

y= 21.96 e0.173*edad

y= 30.56 e0.135*edad

y= 31.004 e0.119*edad


4) Densidad de larvas

Generalmente se utilizan 50 larvas/litro. Hay dos trabajos publicados (Estevez

et al, 2007, Roo et al, 2010) en los que se ensayaron distintas densidades de

larvas (25, 50 y 100 larvas/l y 50 y 125 larvas/l) en los que se demostró que

usando densidades bajas la supervivencia y crecimiento son mucho mejores,

aunque económicamente no es rentable.

Densidad SL (mm)

DW(mg)

Supervivencia (%)

50 8,02 1,45 40,92

125 6,75 0,81 53,24

Densidad DW (mg)

Supervivencia (%)

25 3,94 10,7

50 1,74 12,6

100 1,08 13,7



5) Destete con microdietas

Es uno de los problemas del cultivo, se realizaba generalmente a partir del dia

20 pero con la mejora en la formulación de microdietas se puede hacer a dia

12-15, teniendo cuidado de evitar el canibalismo.

En el trabajo de Campoverde et

al (2017) se demostró que es

posible hacer el destete a dia

12 si se baja la intensidad de

luz de 500 a 150-20 lux a partir

del dia 13 para evitar el

canibalismo.



6) Requerimientos en ácidos grasos

Existe poca información sobre los requerimientos específicos de la corvina, al ser

un pez carnívoro y de rápido crecimiento precisa que los acidos grasos omega 3

estén presentes en la dieta y se estima un requerimiento de DHA (acido

docosahexanoico, 22:6n-3) en torno al 12-15% (Campoverde & Estévez, 2017)

GroupsDHA-M DHA-H RP Hemp

% T

FA

0

20

40

60

80

100

120

SAT

MUFA

n-6

n-3

Comparison small and big fish

GroupsDHA-M DHA-H RP Hemp

% T

FA

0

5

10

15

20

25

30

EPA

DHA


Principales problemas del cultivo

1) Hiperinflación de la vejiga natatoria debido al stress

Como se ha indicado antes, la corvina es una larva muy sensible al stress.

Se ha detectado que tanto el uso de un exceso de luz (intensidad y

duración) como de presas vivas presentes en el agua (especialmente los

nauplios de Artemia) provocan la hiperinflación de la vejiga natatoria.

Otros autores (Cárdenas, 2008) también lo achacan a una elevada carga

bacteriana en el agua.



2) Canibalismo

Es uno de los grandes problemas durante el cultivo larvario y en especial durante

el destete. La diferencia de talla entre las larvas hace que los ejemplares más

grandes ataquen y se coman a los pequeños, hay varias maneras de reducir la

incidencia:

1.- Bajando la intensidad de luz

2.- Suministrando alimento de forma más frecuente

3.- Separando las tallas (grading)

4.- Para algunas especies proporcionando refugios

5.- Usando densidades bajas (mesocosmos)

6.- Domesticando más a la especie (huevos

obtenidos de segunda o tercera generación)



2) Canibalismo

A nivel industrial la forma más efectiva de reducir la incidencia de canibalismo es

la selección de talla (grading) realizada a menudo. Los sistemas más empleados

son los siguientes:


Diferencias de crecimiento

Los productores siempre han comentado las diferencias de crecimiento

observadas entre distintos grupos de juveniles. En los años 2014 y 2015 hicimos

un ensayo en el IRTA para ver si era cierto y se podía corregir haciendo

selección de tallas.

En 2014 usamos 6 familias distintas de larvas cultivadas por separado. El dia 50

se separaron los juveniles en 3 grupos (S, M, L)

Family

Related half-

sib family

Spawning Date

(Tank) Female Male

1 2 and 3 24/04/2014 (V8-1) 5-wild 19-wild

2 1 01/05/2014 (V8-1) 5-wild 20-wild

3 1 01/05/2014 (V8-2) 1-wild 19-wild

4 - 24/04/2014 (C2)

16-

cultured 21-wild

5 - 01/05/2014 (C1) 2-wild 22-wild

6 - 01/05/2014 (V6)

13-

cultured 17-wild

Larval growth second group

Age (dph)

0 10 20 30 40

Dry

we

ight (

g)

0

5000

10000

15000

20000

25000

30000

V8-1(2)

C1

V6

V8-2



El dia 116 se hizo de nuevo una separación de tallas y se formaron 3 grupo

se unos 80 peces. El crecimiento registrado se muestra en la tabla y la

figura siguientes2014

53 dph 88 dph 116 dph 144 dph 164 dph 185 dph 205 dph 227 dph

19/06/2014 24/07/2014 SGR 21/08/2014 SGR 18/09/2014 SGR 08/10/2014 SGR 29/10/2014 SGR 19/11/2014 SGR 11/12/2014 SGR

S 0,43 0,4 9,42 1,8 2,27 17,855 1,786 2,80 31,488 6,052 3,35 45,55 8,57 3,65 61,01 15,14 4,04 71,58 21,31 4,07 79,47 24,40 4,18

M 15,47 3,9 22,682 1,288 3,02 41,214 4,488 3,61 58,59 8,55 3,88 78,13 14,81 4,28 94,18 19,79 4,33 101,33 23,48 4,41

L 5,26 3,4 43,23 17 3,72 27,184 1,544 3,17 47,768 5,311 3,75 65,26 9,06 3,99 94,39 13,46 4,47 113,93 21,00 4,51 125,55 26,49 4,62

Growth of fish in 2014

S M L

100 d 7,82 10,84 15,67

200 d 66,67 85,94 104,18

360 d 160,83 206,10 261,79

540 d 266,76 341,28 439,11

Juvenile ongrowing 2014

Sampling date1/6/14 1/7/14 1/8/14 1/9/14 1/10/14 1/11/14 1/12/14 1/1/15

We

igth

(g)

0

20

40

60

80

100

120

140

160

S

M

L

Age (days)50 100 150 200 250

N= 725

N= 79 L 89 M 86 S



En 2015 hicimos un nuevo ensayo pero esta vez usando4 familias y mezclando

todas las larvas, se distribuyeron en 4 tanques de 1500L para el cultivo larvario. El

dia 50 se clasificaron en S, M, L y el dia 110 de nuevo se hizo una separación de

tallas

Family

Spawning Date

(Tank) Female Male

Hatched

larvae (N)

1 13/05/2015 (V7) 5-wild 19-wild 122617

2 13/05/2015 (V6) 6-wild 23-cultured 141983

3 13/05/2015 (V8-1) 1-wild 20-wild 66500

4 13/05/2015 (V8-2) 8-wild 22-wild 8050


Sampling date29/6/15 13/7/15 27/7/15 10/8/15 24/8/15 7/9/15 21/9/15 5/10/15 19/10/15

We

igh

t (g

)0

10

20

30

40

50

60

70

S

M

L

N= 3024

N= 100 x 9 tanks

Age (dph)40 60 80 100 120 140 160 180



El crecimiento de los peces se muestra en la siguiente tabla y como en el

2014, el crecimiento fue claramente distinto entre los peces S, M y L

2015

49 dph 83 dph 110 dph 112 dph 134 dph 155 dph 190 dph

02/07/2015 05/08/2015 SGR 01/09/2015 SGR 03/09/2015 SGR 25/09/2015 SGR 16/10/2015 SGR 05/11/2015 SGR

S 0,263 0,030 4,806 1,20 1,61 17,841 5,646 2,82 13,96 1,39 1,20 19,07 2,79 2,83 26,13 4,04 3,12 29,89 5,31 3,30

M 0,434 0,093 7,030 1,83 1,97 22,171 5,776 3,03 21,50 1,47 1,52 30,43 3,53 3,28 38,61 6,13 3,49 45,83 8,79 3,72

L 1,202 0,494 12,359 5,69 2,51 37,950 14,961 3,54 29,18 1,56 1,56 39,76 5,40 3,53 55,12 8,40 3,83 66,62 11,88 4,08

Growth of fish in 2015

S M L

100 d 12,27 19,26 24,24

200 d 33,17 50,33 73,33

360 d 66,61 100,04 151,87

540 d 104,23 155,97 240,24


Sampling date29/6/15 13/7/15 27/7/15 10/8/15 24/8/15 7/9/15 21/9/15 5/10/15 19/10/15

Weig

ht

(g)

0

10

20

30

40

50

60

70

S

M

L

N= 3024

N= 100 x 9 tanks

Age (dph)40 60 80 100 120 140 160 180



Con esos resultados calculamos cual es el coste de producción para los peces

considerados S y L

PRODUCTION COST OF L- AND S- GROWING

FISH (1000 juveniles)

L- S-

Juveniles (0.6€/unit) 600 600

Food 10-30 gr (2.4€/Kg) 90 136,8

30-250 gr (2.04€/Kg) 1526 2557,7

250-500 gr 1943,1 3243,6

Total 4159,1 6538,1

Market price (9,3€/Kg) 4650 4650

Como conclusión general podemos decir que en el caso de la corvina los peces

clasificados como L (grandes) siempre muestran un crecimiento mayor que los

M (medianos) y S (pequeños). No hay crecimiento compensatorio tras la

clasificación.

Comportamiento de la corvina (Argyrosomus regius) durante

la fase de engorda

Neil Duncan





2-17 de junio, 2021

[email protected]

Comparación de alimentación programada y alimentación de

auto-demanda para la corvina

Neil Duncan, Alicia Estevez, Ana Roque, Elvira

Fatsini, Jordi Comas





2-17 de junio, 2021

Introducción: Cuellos de botella

Variación del crecimiento en la engorda de la corvina

¿Base genética?

¿Base medioambiental?

¿Necesita mejorar los métodos de alimentación?


Introducción: Demanda de alimentación

Demanda de alimentación en salmón atlántico (Salmo salar):

• Mejora de las tasas de crecimiento

• Mejora de la relación de conversión de alimentos (FCR)

• Reducción de la variación en el tamaño

• Reducción de la agresión en (Noble et al., 2007, 2008)

Demanda de alimentación en lubina europea (Dicentrarchus labrax):

• Mejora de las tasas de crecimiento

• FCR mejorado (Azzaydi et al., 1998, 2000),

La alimentación de la demanda en salmón del Atlántico se utilizó para mejorar las tablas de alimentación,

el crecimiento y la FCR (Noble et al., 2008)

La alimentación de la lubina europeo en relación con los ritmos de alimentación en comparación con la

alimentación a lo largo del día dio el mismo o mejor crecimiento y una menor FCR (Azzaydi et al., 2000,

1999).

La investigación en jaulas y tanques sobre salmón y lubina dio resultados similares.

Azzaydi, et al, 1998. Aquaculture, 163: 285-296

Azzaydi, et al,1999. Aquaculture, 170 253-266

Azzaydi, et al, 2000. Aquaculture, 182: 329-338

Noble, et al, 2007. Aquaculture Res 38, 1686–1691

Noble, et al, 2008. Aquaculture 275, 163-168


Objetivo:

Comparar la alimentación automática programada con la alimentación auto-

demanda en tanques.

Condiciones para simular las condiciones de cría en jaulas (temperatura y

fotoperiodo) y alimentación automatizada programada para seguir las

prácticas de alimentación en jaulas.


Métodos

RAS 1 RAS 2 RAS 3

Prog 1

AD 1

Prog 3

Prog 2 AD 3

AD 2

Sistema de recirculación (RAS)

Iniciado el 04/Oct → 06/Sept

Corvinas de 50g al principio, todos los peces

entrenados para la auto-demanda

200 → 75 peces por tanque

Fotoperiodo natural

Temperatura simulada de cultivo en jaula

Alimentación programada (Prog) –

• Tasa de alimentación de empresa de pienso

• Programa similar a los períodos de

alimentación en jaulas 09:00-10:00, 13:00-

14:00 y 17:00-18:00

• 50-100g = 3 x 1 hora de períodos de

alimentación

• 100-300g = 2 x 1 hora de períodos de

alimentación

Alimentación de auto-demanda (AD) –

• Péndulo para demandar alimento

• Alimentación de 5g por demanda

• Registro de tiempo de demanda


Métodos

Sistemas de auto-demanda o

auto-alimentación

Métodos

Datos registrados

• Crecimiento

• Frecuencia del tamaño en la población

• Tasa de conversión de alimentación (FCR en ingles)

• Actividad con dos sensores de movimiento

• Superior 20 cm por debajo de la superficie

• Parte inferior a 80 cm de la superficie (20 cm desde la parte inferior)

• Momento de la demanda de alimentación – patrón de alimentación

• Condición de aletas

• Velocidad de natación

• Comportamiento agresivo


Resultados

Crecimiento


Resultados

Crecimiento (media±SEM, n=120)

Biomasa kg / m3


Resultados

Tasa especifica de crecimiento

No hubo diferencias significativas entre tipo de alimentación


Resultados

Crecimiento – Variación de tamaño – Coeficiente de variación (CV)

El grado de variabilidad en relación con la media de la población



Results

Growth – Size variation - Frequency distribution

06/09/201704/10/2016

Número de peces en la categoría de peso de talla (g), muestra de 120 peces



Resultados

Tasa de conversión de alimentación (FCR)


Promedio FCR programado 1.50 ± 0.02, Promedio auto-demanda 1.42 ± 0.01

FCR > 1.5 coincidieron con las temperaturas extremas (15ºC y 25ºC)

y/o las densidades de siembra más altas >20 kg/m3.


Resultados

Comportamiento


Resultados

Comportamiento – actividad de alimentación – patrón de alimentación

00:00:00 04:00:00 08:00:00 12:00:00 16:00:00 20:00:00 00:00:00

oct

nov

des

gen

feb

març

abr

maig

juny

jul

ag

set

oct

Hour

00:00:00 04:00:00 08:00:00 12:00:00 16:00:00 20:00:00 00:00:00 00:00:00 04:00:00 08:00:00 12:00:00 16:00:00 20:00:00 00:00:00


Resultados


Demandas acumuladas por hora durante todo el año / experimento


Significativamente

mayor demanda durante

la noche en

comparación con el día.

Durante la noche (19:00

a 06:00) 720 ± 22

demandas/hora

Durante el día (07:00 a

18:00) de 439 ± 22

demandas/hora.

Resultados


Demandas acumuladas por hora del 4 de octubre al 21 de abril


Resultados


Demandas acumuladas por hora durante el 22 de abril al 6 de septiembre


Resultados

Comportamiento

Actividad – sensores

de movimiento

Sensor superior

Sensor de fondo

Resultados

Condición de la

aleta

oct 2016- sept

2017

1 – aleta perfecto

2 – poco daño de

las aletas

3 - daño pesado

de las aletas

4 – sin aleta

n=60



No hubo comportamiento agresivo

Resultados

Velocidad de

natación.

Programada:

37.8 ± 0.93 mm/s

Auto-demanda:

31.9 ± 0.95 mm/s.

Diferencias en

programada.

No diferencias en

auto-demanda


Conclusiones

• Las prácticas de engorda de 2 a 3 períodos de alimentación durante las horas

de luz del día dan el mismo crecimiento, FCR y variación de tamaño que la

demanda de alimentación cuando los peces prefieren comer.

• Comparación de parámetros entre la alimentación programada y la

alimentación auto-demanda:

• Sin diferencias en el crecimiento

• Variación de tamaño similar

• Niveles bajos y similares de daño a las aletas

• No hay diferencia en FCR

• Alimentación durante todo el ciclo de 24 horas, incluso durante la noche

• Niveles más altos de alimentación durante la noche

• La corvina suba para llenar toda la columna de agua durante la noche y

permanece más profundo en el tanque durante el día


Gracias por su atenciónEl fin.

Introducción y Vista General del Cultivos de Sciaenidae

Ignasi Gairin

Instituto de Recerca y Tecnología Agroalimentarias

(IRTA) Sant Carles de la Ràpita, Spain



2-17 de junio, 2021

[email protected]


CORVINA: ALEVINAJE Y TRANSPORTE

2


CARACTERISTICAS DEL ALEVINAJE

• Rápido crecimiento de los alevines a temperaturas elevadas y

muy buenas conversiones del pienso

• Se recomienda llevar a cabo clasificaciones muy frecuentes para

limitar las dispersiones del lote.

• El canibalismo es un factor de riesgo muy importante hasta el

peso de 10 g



Muestra una alta sensibilidad a las manipulaciones:

• Durante las clasificaciones se utiliza anestésico a unas dosis inferiores a las

que se usan en dorada. 40 ppm ms222

• Las escamas se desprenden con mucha facilidad por cualquier rozadura

(clasificaciones, carga y descarga en transporte, despesque en jaula)

• Para cualquier manipulación es recomendable evitar una alta acumulación de

peces en la red



• La tasa diaria de alimentación es prácticamente el doble de la ración que le

correspondería a la dorada

• La alimentación debe ser ad libitum con especial importancia a las tomas de

primera hora de la mañana

• Se recomienda el uso de comederos automáticos y que la alimentación a mano

sea muy lenta para facilitar la ingestión por parte de los alevines

• En la fase de alevinaje y a temperaturas óptimas pueden preengordar a una

SGR superior al 2,7%



• Las temperaturas óptimas de crecimiento están entre los 20 y los 26 ºC

• Es una especie muy sensible a la alta intensidad lumínica. La fase de alevinaje

se debe llevar a cabo en naves cerradas o en tanques exteriores con telas de

sombreo.

• En tanques expuestos al sol, los alevines siempre buscarán los zonas más

resguardadas de la luz

• Existen todavía unas calidades de lote de alevines muy diversas,

describiéndose lotes con crecimientos excelentes y otros con resultados

deficientes (G – M – P)



• Es una especie con un comportamiento más de fondo que la dorada y la lubina

• Tiende a formar grupos de alta densidad de individuos

• Tiene una natación muy lenta, es por este motivo por el que aprovecha más el

pienso que ingiere en crecimiento

• Es una especie con un índice de conversión muy bajo. Por debajo de 0,7 en la

fase de alevín

• Se suelen utilizar piensos menos grasos que en el caso de la dorada y la lubina




TRANSPORTE

Los camiones irán provistos del siguiente material:

• Las 12 cubas de 2 m3 deben ser isotermas para amortiguar las variaciones de

la temperatura exterior

• Un compresor de aire alimentará las parrillas de las cubas con aire filtrado

• Botellas de oxígeno

• Cada cuba dispone de su propio sistema de regulación, distribución y

difusión de oxígeno (1 caudalímetro por cuba)

• Una bomba de agua autónoma para caudales de 6 a 30 m3/h

• Un caudalímetro de agua, cuba a cuba, que permita el control de los caudales

durante las operaciones de renovación de agua


TRANSPORTE

El chofer dispondrá del siguiente material :

• 2 oxímetros en perfecto estado de funcionamiento (1 en uso + 1 de emergencia).

• Un medidor de pH

• Un kit rápido de medición de amonio

• Una regla de medición graduada para conocer el nivel de agua en las cubas.

• Un teléfono móvil conectado permanentemente.

• Un pulverizador a presión y una reserva de formol para la desinfección del camión.


TRANSPORTE

• La carga de agua de mar en las cubas del camión se realizará al menos una hora

antes del inicio de la carga de los alevines.

• La puesta en marcha del compresor y del sistema de oxigenación se llevará a cabo

antes del inicio de la carga de los alevines.

• Las operaciones de carga se llevarán a cabo por un miembro del personal de la

empresa suministradora de los alevines utilizando una bomba de trasvase de peces

o cargando los alevines con cubos.

• El chofer estará presente en todas las operaciones de carga. Permanecerá encima

del camión verificando y supervisando el llenado de alevines en las cubas.


TRANSPORTE

• Los alevines estarán en ayuno durante 12-24 horas antes de ser cargados al

camión

Camión: Carga de alevines de dorada en 24 m3 de agua

• Alevín de 2 gramos: 800 kg/camión

• Alevín de 5 gramos: 1.300 kg/camión

• Alevín de 10 gramos: 1.600 Kg/camión


TRANSPORTE

• Para minimizar el estrés, las cargas de los alevines para los transportes se

realizarán a un ritmo lento.

• La temperatura del agua se acondicionará a 20ºC para disminuir la actividad de

los alevines durante el transporte

• La menor actividad de los peces disminuirá la frecuencia respiratoria y la

posible bajada de pH


TRANSPORTE

SUPERVISIÓN DURANTE EL TRANSPORTE

• Una vez estabilizados los niveles de oxígeno, la medición de la temperatura y la

de oxígeno, se realizará cada 4 horas.

• El transportista anotará en el informe del viaje cualquier incidente que pudiera

afectar al buen estado de los alevines.

• Si el chofer aprecia una mortalidad anormal durante el trayecto deberá contactar

lo más pronto posible con una de las personas responsables


TRANSPORTE

• La corvina tiene una alta sensibilidad a la sobresaturación de gases

• Ya sea en clasificaciones o durante el transporte se aconseja no superar el 120-

140% de saturación de oxígeno en el agua

• Con la finalidad de favorecer el comportamiento de fondo de los alevines,

durante el transporte se evitará poner un burbujeo fuerte que agite los peces en

las cubas del camión


TRANSPORTE

• A la llegada al destino, el camión iniciará el cambio de agua en el lugar en el

que el cliente le indique siempre que el chófer lo estime un lugar adecuado

• En alevines de corvina, el tiempo de acondicionamiento se incrementará en un

50% antes de la descarga respecto a la dorada (mínimo 3 horas, óptimo 4

horas), respetando que durante el cambio no se supere la diferencia de

temperatura de 1,5 grado/hora

• Una renovación rápida podría causar un rápido cambio de pH y un paso de la

sustancias nitrogenadas de la forma de amonio a la de amoníaco

• El transporte hasta las jaulas se llevará a cabo con las mismas indicaciones


TRANSPORTE

Wellboat

• Transporte en barco con tanques

• Tiene mucha más capacidad que un camión

• Se puede dar un intercambio de agua en continuo durante

el viaje

• La velocidad de desplazamiento es más lenta

• Se debe valorar el coste


PREENGORDE – TRANSPORTE – ENGORDE

¿Qué es lo que más importante para el cliente?

1. Número de alevines

2. Peso medio de los alevines

3. Dispersión del lote

4. Deformidades visibles en los alevines

5. Se entrega un porcentaje de alevines sin cargo

para compensar bajas.

6. Es recomendable asistir a las cargas


ANECDOTAS EN ESPAÑA

Existen jaulas de engorde asiladas en las Islas Canarias:

• Viaje de alto riesgo por la logística que requiere:

1. Viaje en camión hasta el puerto de embarque

2. Viaje en barco de más de 36 h

3. Cambio de agua durante la travesía

4. Llegada al puerto canario

5. Viaje en camión hasta el muelle de descarga


ANECDOTAS EN ESPAÑA

• El cultivo de corvina en España tuvo una gran expansión en los años 2005-2006

• Una nueva especie con un gran crecimiento

• Sin patologías hasta la fecha

• Un año más tarde había mucha oferta de corvina de 1 Kg

• Portugal era un mercado conocido para la venta de esta especie

• Las corvinas iban creciendo y se pasaban de talla de mercado

• Portugal no demandaba tanta corvina y su mercado no era de corvina de 1,6 -

1,8 Kg

• La situación empezaba a ser preocupante:

1. Corvinas + grandes, + biomasa/jaula, + pienso

2. Hubo jaulas que abrieron la red

3. Planificación de mercado para cualquier nueva especie


Muchas gracias

Documents

Biología de la reproducción