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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE ESTUDIOS SUPERIORES
PLANTEL IZTACALA
MÉDICO CIRUJANO
LABORATORIO I (INSTRUMENTACIÓN)
GRUPO 1163
EQUIPO 3
REPORTE DE LABORATORIO (BIOMETRIA HEMATICA, QUIMICA SANGUINEA
Y COPROPARASITOSCOPIA)
INTEGRANTES:
BARAJAS ARREDONDO JUAN CARLOS
CARRILLO LAMPÓN SOFÍA ANTONIETA
FERNANDEZ BRAVO WILLIAM
GARCIA QUINTERO SOCORRO
HERNÁNDEZ CAMPOS NUBIA AMÉRICA
HERNÁNDEZ OLIVERA MAURICIO
JASSO BARCENAS MARTHA PATRICIA
MARTÍNEZ CARRANZA CRISTIAN ANDRÉS
MEDINA FLORES KARLA IVONNE
NAVA TABARES SAÚL
PERALTA JARQUÍN LORENA
RAMÍREZ CANALES ÁNGEL
1
INDICE:
REPORTE DE BIOMETRIA HEMATICA………………………………….... 3 INTRODUCCIÓN.…………...…………...…………...…………......... 4 OBJETIVO.…………………...…………...…………...…………........ 5 MARCO TEORICO.………...…………...…………...…………......... 5 HIPOTESIS.…………………...…………...…………...…………....... 9 MATERIALES.…………………...…………...…………...…………… 9 DESARROLLO.…………………...…………...…………...…………. 10 DATOS OBTENIDOS.…………………...…………...……………..... 13 ANALISIS DE DATOS OBTENIDOS.…………………...………....... 14 CONCLUSIONES.……………….………...…………...…………...... 14
REPORTE DE QUIMICA SANGUINEA……………………………………... 15 INTRODUCCIÓN…………………………………………………….... 16 OBJETIVO……………………………………………………………… 16 MARCO TEORICO…………………………………………………….. 16 HIPOTESIS……………………………………………………………..
.17
MATERIALES…………………………………………………………. 17 DESARROLLO………………………………………………………... 18 DATOS OBTENIDOS………………………………………………… 19 ANALISIS DE DATOS OBTENIDOS……………………………….. 19 CONCLUSIONES…………………………………………………….. 19
REPORTE DE COPROPARASITOSCOPIO………………………………. 20 INTRODUCCIÓN……………………………………………………... 21 OBJETIVO……………………………………………………………… 21 MARCO TEORICO……………………………………………………. 21 HIPOTESIS…………………………………………………………….. 21 MATERIALES………………………………………………………….. 22 DESARROLLO………………………………………………………… 22 DATOS OBTENIDOS…………………………………………………. 23 CONCLUSIONES……………………………………………………… 23
BIBLIOGRAFÍA………………………………………………………………… 24
2
REPORTE DE BIOMETRÍA HEMÁTICA
A CARGO DE:
BARAJAS ARREDONDO JUAN CARLOS
CARRILLO LAMPÓN SOFÍA ANTONIETA
MARTÍNEZ CARRANZA CRISTIAN ANDRÉS
NAVA TABARES SAÚL
3
INTRODUCCIÓN
La Biometría Hemática (o Hemograma) es una prueba de sangre para evaluar
nuestro estado general de salud y detectar una amplia gama de enfermedades,
incluyendo anemia, infecciones, leucemia, alergias, así como ayuda para controlar
muchas enfermedades diferentes, detectar problemas de coagulación de la sangre o
trastornos de la sangre, evaluar la producción de glóbulos rojos o destrucción, y un largo
etc.
Es uno de los estudios de rutina de mayor importancia, debido a su facilidad y
costo accesible; esta prueba se divide en 2 bloques:
Fórmula roja: Determina los parámetros relacionados con los eritrocitos.
Hematocrito (H+)
Hemoglobina (Hb)
Conteo eritrocítico (Eri)
Fórmula blanca: Determina los parámetros relacionados con los leucocitos.
Cuenta Leucocitaria.
Cuenta Leucocitaria Diferencial.
En el caso particular de la siguiente Biometría Hemática que se llevó a cabo por el
equipo número 3, del grupo 1163 de la carrera de medicina, la intención principal fue la
determinación de la Formula Roja, refiriéndonos específicamente a los niveles de
hemoglobina, hematocrito, velocidad de sedimentación globular, valor corpuscular medio
(VCM) y la determinación del número de eritrocitos en la sangre de un paciente masculino
de etapa preescolar con posible cuadro de desnutrición a causa, presuntamente, de
parasitosis.
A partir de los resultados que nuestro experimento nos arroje, podremos
comprobar o descartar que nuestro paciente posea alguna deficiencia de estos factores a
estudiar, lo cual, nos llevará a determinar si nuestro paciente presenta algún padecimiento
de carácter anémico.
Con esto también se comprobará que el cuerpo humano es una unidad compleja,
compuesta por diversos sistemas, todos relacionados los unos con los otros, que lo hacen
ser dicha unidad y que si alguno de estos sistemas se ve afectado, el resto de los
sistemas se pueden llegar a ver afectados debido a la relación que tienen; así como lo
4
veremos con la contratación de otras 2 pruebas, hablamos del Coproparasitoscópico y la
Química Sanguínea.
OBJETIVO
El principal y primordial objetivo de la realización de esta prueba será la
comprobación o el descarte de la presencia de anemia provocada por desnutrición a
causa de giardiasis y ascariasis en un paciente masculino, de etapa preescolar, el
cual, se tiene la sospecha, tiene deficiencia de hierro que conlleva estar enfermo del
padecimiento anteriormente descartado.
MARCO TEÓRICO
Para poder comenzar nuestro experimento, lo primero que debemos conocer y
comprender, son los conceptos básicos que se estarán utilizando durante el desarrollo del
siguiente informe.
La sangre: Es un tejido fluido que circula por capilares, venas y arterias de todos los
vertebrados e invertebrados. Su color rojo característico es debido a la presencia del
pigmento hemoglobínico contenido en los eritrocitos.
Es un tipo de tejido conjuntivo especializado, con una matriz coloidal líquida y una
constitución compleja. Tiene una fase sólida (elementos formes, que incluye a los
glóbulos blancos, los glóbulos rojos y las plaquetas) y una fase líquida, representada por
el plasma sanguíneo.
Su función principal es la logística de distribución e integración sistémica, cuya contención
en los vasos sanguíneos (espacio vascular) admite su distribución (circulación sanguínea)
hacia casi todo el cuerpo.
La sangre humana está compuesta de un 22% de elementos sólidos y un 78% de agua.
Los componentes de la sangre humana son:
El plasma, en el que están suspendidas las células sanguíneas, incluye:
o Glóbulos rojos (eritrocitos) - transportan oxígeno desde los pulmones hacia
el resto del cuerpo.
o Glóbulos blancos (leucocitos) - ayudan a combatir las infecciones y asisten
en el proceso inmunológico. Los distintos tipos de glóbulos blancos son:
5
Linfocitos
Monocitos
Eosinófilos
Basófilos
Neutrófilos (granulocitos)
o Plaquetas (trombocitos) - ayudan en la coagulación de la sangre.
Glóbulos de grasa
Sustancias químicas, entre las que se incluyen:
o Carbohidratos
o Proteínas
o Hormonas
Gases, entre los que se incluyen:
o Oxígeno
o Dióxido de carbono
o Nitrógeno
Los eritrocitos, o hematíes, son las células sanguíneas especializadas en el transporte
de oxígeno y dióxido de carbono unidos a hemoglobina. Son de pequeño tamaño y tienen
forma bicóncava.
La forma bicóncava les permite tener una gran superficie en relación a su volumen. De
este modo se favorece el intercambio de oxígeno y dióxido de carbono entre el interior de
los eritrocitos y el plasma sanguíneo. Los eritrocitos están en el interior de los vasos
sanguíneos. Su función es transportar el oxígeno desde los pulmones hacia los tejidos del
organismo y el dióxido de carbono en sentido opuesto. Tanto el oxígeno como el dióxido de
carbono se transportan unidos a la hemoglobina.
Los valores normales de eritrocitos en millones/dL son:
Género Edad (años) Valores Normales
Femenino 0 – 1
2 – 5
6 – 10
11 – 15
3.84 - 5.50
4.16 – 5.52
4.31 – 5.64
4.33 – 5.63
6
16 – 20
>20
4.00 – 5.46
3.87 – 5.44
Masculin
o
0 – 1
2 – 5
6 – 10
11 – 15
16 – 20
>20
4.02 – 5.49
4.25 – 5.66
4.41 – 5.69
4.62 – 6.05
4.81 – 6.18
4.39 – 6.10
La hemoglobina, es una proteína globular, que se encuentra en grandes cantidades
dentro de los glóbulos rojos y es de vital importancia fisiológica, para el aporte normal de
oxígeno a los tejidos.
Los valores normales de hemoglobina (Hb) en g/dL son:
Género Edad (años) Valores Normales
Femenino 0-1
2-5
6-10
11-15
16-20
>20
11.14 – 14.70
11.40 – 15.79
12.16 – 16.10
12.90 – 16.30
12.20 – 16.20
11.70 – 16.30
Masculin
o
0 – 1
2 – 5
6 – 10
11 – 15
16 – 20
>20
10.60 – 15.36
11.60 – 15.30
12.50 – 16.00
13.20 – 17.62
14.90 – 18.65
13.80 – 18.50
7
El hematocrito se le define como el porcentaje de volumen de la sangre que ocupan los
glóbulos rojos. Este análisis puede ordenarlo un médico en caso de tener sospechas de
anemia, deficiencia en la dieta, leucemia o alguna otra afección médica.
Loa valores normales de hematocrito (Hto) en porcentaje son:
Género Edad (años) Valores Normales
Femenino 0 – 1
2 – 5
6 – 10
11 – 15
16 – 20
>20
33.68 – 46.15
35.90 – 47.10
37.10 – 48.00
39.50 – 49-15
36.60 – 49.17
35.40 – 49.40
Masculin
o
0 – 1
2 – 5
6 – 10
11 – 15
16 – 20
>20
32.37 – 44.92
35.60 – 46.52
37.10 – 48.00
39.50 – 49.15
36.60 – 49.17
35.40 – 49.40
La velocidad de sedimentación globular (VSG) es una prueba diagnóstica usualmente
utilizada en medicina la cual consiste en medir la velocidad con la que los eritrocitos
provenientes de una muestra de plasma sanguíneo se sedimentan en un tiempo
determinado, el cual generalmente es una hora.
Los parámetros normales de VSG en mm/h son:
Adultos Valores de Referencia
<50 años
Varones
Mujeres
>50 años
Varones
1 – 15 mm/h
1 – 20 mm/h
1 – 20 mm/h
8
Niños 1 – 15 mm/h
Sistema práctico de detección de posible patología en adultos:Varones: edad/2
Mujeres: edad + 10/2El volumen corpuscular medio (VCM), es el volumen eritrocitario medio de la muestra
analizada expresada en fentolitros.
Los valores normales del VCM en fL son:
Género Edad (años) Valores Normales
Femenino
Masculin
o
Todas
Todas
83 – 100
83 – 100
HIPÓTESIS
El paciente presentará disminución en los niveles de hemoglobina, hematocrito,
aumento en la velocidad de sedimentación globular y alguna alteración en el valor
corpuscular medio, lo que indicaría presencia de anemia; todo lo anterior se deberá a la
mala alimentación de la cual se sabe con anterioridad y de un posible cuadro de
parasitosis.
MATERIALES
1 Espectofotómetro
1 Microscopio
1 Microcentrífuga
1 Pipeta de Shali (0.02 mL)
1 Tubo de Ensaye con 0.25 mL de EDTA al 10%
1 Pipeta de Thoma para glóbulos rojos
1 Cámara de Neubauer (hematocitómetro o cámara contadora)
9
1 Tubo de Wintrobe
1 Gradilla de sedimentación globular (Wintrobe)
4 Portaobjetos
2 Tubos capilares
1 Pipeta Pasteur con bulbo
1 Frasco con solución salina isotónica
1 Frasco con reactivo de Drabkin
1 Paquete de Sanitas
1 Tubo de ensaye con la sangre a estudiar
DESARROLLO
HEMOGLOBINA
Se determinó por la formación del complejo cianometahemoglobina, por medio del
reactivo de Drabkin.
Técnica
1. Se macaron 2 tubos de ensaye de 13x100. Uno se marcó con la letra “b” –
blanco y el otro con la letra “p” – problema.
2. En cada uno de los tubos se depositaron 5 mL de reactivo de Drabkin.
3. Con la pipeta de Shali con boquilla, se aspiró sangre por encima de la marca
20.
4. Se limpió el exceso de sangre con una Sanita.
5. Se aforó a la marca 20.
6. Se depositó en el tubo con la letra “p” y se aspiró y sopló varias veces sobre el
reactivo hasta que la mezcla quedó totalmente homogeneizada.
10
7. Se dejó reposar durante 30 minutos a temperatura ambiente agitando con
cierta frecuencia para que el reactivo de Drabkin rompiera el eritrocito y la
hemoglobina contenida dentro de él pudiera ser medible.
8. Pasados los 30 minutos que se dejó reposar, la densidad óptica se midió en el
espectrofotómetro a 540 nm en absorbancia, y de esta medición se obtuvo un
valor de 0.22 que se multiplicó por el factor 36.8 (es un valor previamente
establecido) y el resultado (8.09) se reporta en g/100mL.
CUENTA DE ERITROCITOS
Técnica
1. Se aspiró la sangre con la pipeta de Thoma para glóbulos rojos hasta la marca
de 0.5, se limpió el extremo de la pipeta con una sanita y posteriormente se
llenó con líquido de Gowers hasta la marca “101” con mucho cuidado para
evitar la entrada de aire.
2. Se agitó durante un par de minutos en ángulo recto al eje longitudinal de la
pipeta.
3. Soplando, se eliminaron las 3 a 5 primeras gotas de la pipeta.
4. Se procedió a llenar la cámara Neubauer (contadora) mediante un goteo parejo
único del líquido debajo del cubreobjetos.
5. Se dejaron transcurrir 4 minutos, con el fin de que se sedimentaran los
eritrocitos.
6. Se colocó la cámara en la platina del microscopio, se enfocó con el objetivo de
10x y posteriormente se observó la cuadrícula para asegurarse que las células
se encontraban en dilución homogénea.
7. Se cambió al objetivo de 40x, desde luego, reduciendo adecuadamente la
iluminación.
11
8. Se contaron los eritrocitos situados en los límites superiores izquierdo de los
cuadros pequeños cuadros de la cuadrícula del hematocitómetro de Neubauer
(1 central y 4 angulares), y se ignoraron aquellos que tocaban los límites
derecho e inferior.
9. Se anotó la cantidad hallada en cada uno de los cuadros antes mencionados.
10. Se multiplicó la cantidad hallada por 10,000 con el propósito de obtener el
número de eritrocitos por microlitro de sangre y el resultado fue de 3.5
millones/mm3.
HEMATOCRITO
Técnica del microhematocrito
1. Se recogió la sangre por medio de un capilar y se llenó hasta las 34
parte de su
longitud total del tubo, y se inclinó para acelerar el llenado. Se tapó uno de los
extremos (el que no había tenido contacto con la sangre) con una pequeña
porción de plastilina y se limpió el exceso de sangre con una sanita.
2. Se colocó en la microcentrífuga clínica, con la parte cerrada sobre la
empaquetadura de caucho, se colocó la tapa, se atornilló y se centrifugó a
11,000 revoluciones por minuto durante 7 minutos.
3. Pasados estos 7 minutos, se procedió a sacar los capilares de la
microcentrífuga clínica y con una regla se midió desde la superficie de
separación de plastilina hasta el menisco del plasma (100%). Después se
midió el paquete globular y se determinó el porcentaje que le correspondía.
4. El porcentaje obtenido fue del 26%
VELOCIDAD DE SEDIMENTACIÓN GLOBULAR
12
Técnica:
1. Se tomó la sangre del tubo en que se encontraba contenida con una pipeta
Pasteur y se deslizó la pipeta de Wintrobe hasta el fondo del tubo de ensaye
vaciando la sangre con suavidad y se retiró de esta misma forma para evitar la
formación de burbujas y espuma de modo que quedó una columna compacta
de sangre.
2. Se llevó el tubo de Wintrobe a la gradilla de sedimentación previamente
rotulada y se anotó la hora en que fue colocada la muestra en el tubo. Se dejó
reposar en la gradilla por una hora. Pasado este tiempo, se anotaron los
milímetros que descendió la columna de sangre.
3. La sangre descendió un total de 3 mm en una hora.
VOLUMEN CORPUSCULAR MEDIO (VCM)
Técnica
1. Para poder obtener el valor del volumen corpuscular medio, únicamente es
necesario realizar la siguiente ecuación:
Hematocrito (% ) x10
n°de eritrocitos(millones
mm3 )
2. El resultado, por lo tanto, sería 74.28 fL.
DATOS OBTENIDOS
Los datos obtenidos de este análisis fueron los siguientes:
Hemoglobina 8 g/100mL
Cuenta de Eritrocitos 3.5 millones/mm3
13
Hematocrito 26%
Velocidad de Sedimentación Globular 9 mm/h
Volumen Corpuscular Medio 74.28 fL
ANÁLISIS DE LOS DATOS OBTENIDOS
De acuerdo a los datos obtenidos en este experimento, comparándolos con las
referencias de valores normales anteriormente planteados, podríamos decir lo siguiente:
a) Del valor de hemoglobina obtenida en la examinación se observa que está por
debajo del parámetro normal debido a que la referencia de normalidad oscila entre
11.60 – 15.30 g/100mL, de los cuales nuestro paciente muestra únicamente 8
g/mL
b) Igualmente, en la conteo de eritrocitos se muestra una disminución con referencia
a los valores normales ya que en la normalidad el valor va de entre 4.25 – 5.66
millones/mL mientras que los resultados arrojan que nuestro paciente presenta 3.5
millones/mL.
c) El hematocrito, paralelamente manifiesta una reducción en relación a los valores
de normalidad ya que estos fluctúan entre 35.60 – 46.52 % y el que se encuentra
presente en la sangre analizada revela la presencia únicamente el 26%.
d) De los datos obtenidos, la velocidad de sedimentación es el único valor, de los
adquiridos, que se encuentra dentro de los rangos normales ya que estos se
establecen entre 1 – 15 mm y el resultante del experimento fue de 9 mm.
e) Por último, al igual que casi todos los factores antes analizados, el volumen
corpuscular medio se encuentra por debajo de los valores normales que son de 83
– 100 fL y el resultado arroja que el paciente presenta 74.28 fL.
CONCLUSIONES.
14
Como conclusiones podríamos, a partir de los datos analizados, decir que la
sangre estudiada muestra una deficiencia importante en los niveles de los factores que se
pretendía investigar.
Con esto, se confirma que el paciente, del cual se estudió la sangre, presenta un
padecimiento de anemia de carácter microcítico ya que la disminución que se registra en
el examen indica la existencia de esta patología. Se determina que es una anemia
microcítica debido a que el valor corpuscular medio se encuentra por debajo de los 85 fL,
además de que el resto de los valores, exceptuando la velocidad de sedimentación
globular, se encuentran reducidos de una forma considerable.
REPORTE DE QUIMICA SANGUINEA
A CARGO DE:
FERNANDEZ BRAVO WILLIAM
GARCIA QUINTERO SOCORRO
JASSO BARCENAS MARTHA PATRICIA
MEDINA FLORES KARLA IVONNE
15
INTRODUCCION.
El examen se realizó con el fin de comprobar o descartar si nuestro paciente
presenta desnutrición. Determinando los niveles de Proteínas Totales, se trata una
medición aproximada de todas las proteínas presentes en la parte líquida de la sangre. La
prueba que determina las proteínas totales en sangre, examina específicamente la
cantidad total de dos tipos de proteínas: globulinas y albúmina. Se realiza con el fin de
evaluar la posible presencia de enfermedades nutricionales, en el cual el cuerpo no
absorbe suficientes proteínas.
Al obtener los resultados del experimento se verificara si el paciente presenta un
cuadro de desnutrición a causa de la deficiencia de proteínas.
OBJETIVO
El objetivo de este experimento es comprobar si el paciente masculino, de etapa
preescolar, presenta un cuadro de desnutrición a causa de la deficiencia ingesta de
proteínas por lo cual se diagnosticara al obtener los resultados de la Proteína Total así
como la Determinación de Albumina, de este proceso.
MARCO TEORICO
Proteínas totales del suero: albumina y globulina
Cálculos:
Concentración del patrón de proteínas g/100 Ml – F
16
Lectura (absorbancia) del patrón de proteínas
Determinación de la albumina
Cálculos:
F – Concentración del patrón de albúmina g/100 mL
Lectura (absorbancia) del patrón de albúmina
HIPOTESIS
El paciente masculino, de etapa preescolar, presentara un bajo nivel te proteínas totales como también de albumina, lo cual indicara que presenta cuadro de desnutrición severa.
MATERIAL
Técnica de Henry-Sobel-Berman (Biuret modificado)
5 mL de sangre (sin anticuagulante)
Reactivo de Biuret
Patrón de proteínas g/100 mL.
NaOH 3%
1 Gradilla
3 Tubos de ensayo de 16 x 150 mL. 2 Tubos de ensayo 13 x 100 mL. 2 Pipetas graduadas de 10 mL. 2 Pipetas graduadas de 1 mL. 1 Ligadura 1 Jeringa de 5 a 10 mL. 1 Spectronic 20 1 Centrifuga clínica
MATERIAL
Determinación de Albumina (técnica verde de bromocresol)
1 Gradilla 5 Tubos de ensayo de 16 x 150 mL. 2 Tubos de ensayo 13 x 100 mL.
17
1 Pipeta graduada de 10 mL. 1 Pipeta graduada de 2mL. 2 Pipetas Sahli 20 CMM 1 Boquilla con tubo látex para micropipeta 1 Ligadura 1 Frasco con torundas alcoholizadas 1 Frasco con agua destilada 1 Pipeta pasteur con bulbo de goma 1 EspectrofotometroSpectronic 20 1 centrifuga clínica
DESARROLLO
PROTEINA TOTAL/TECNICA DE HENRY-SOBEL-BERMAN(Biuret modificado) Recursos: por muestra Biológicos: 5 mL de sangre (sin anticoagulante) Reactivos: Reactivo de Biuret, patrón de proteínas g/100mL, NaOH al 3% Marcar los 3 tubos de ensayo como Blanco, Patrón y problema
TUBOS BLANCO PATRON PROBLEMAPATRON DE PROTEINAS - 0.1 mL -SUERO PROBLEMA - - 5.0 mLNaOH AL 3% 5.0 mL 5.0 mL 5.0 mLREACTIVO DE BIURET 1.0 mL 1.0 mL 1.0 mL
OBTENCION DE MUESTRA Obtener 5 Ml de sangre venosa. Depositar la sangre en un tubo de ensayo de 13 x 100 y dejar que
coagule. Obtener el suero, centrifugado a 2500 rpm durante 5 min. Con ayuda de la pipeta pasteur separar el sobrenadante (suero) y
transferirlo a un tubo de 13 x 100 limpio y seco. Este será el suero problema.
Seguir lo indicado en el cuadro para la técnica.
DETERMINACION DE ALBUMINA(TECNICA VERDE DE BROMOCRESOL) Recursos: por muestra Biológicos: 5 mL de sangre Reactivos: Reactivo verde de bromocresol, Patrón de albumina de concentración
conocida, Agua destilada.
OBTENCION DE MUESTRA: Obtener 5 mL de sangre venosa Depositar la sangre en un tubo de ensayo de 13 x 100 y dejar que coagule Obtener el suero centrifugado a 2500 rmp durante 5 minutos
18
Con una pipeta pasteur separar el suero (sobrenadante) y transferirlo a un tubo de 13 x 100 limpio y seco. Este será el suero problema.
REACTIVO BLANCO PATRON PROBLEMAPATRON DE ALBUMINA - 20 µ L (0.02 mL)SUERO PROBLEMA - - 20 µ L(0.02 mL)AGUA DESTILADA 8.0 mL 8.0 mL 8.0 mLREACTIVO VERDE DE BROMOCRESOL 2.0 mL 2.0 mL 2.0 mL
Mezclar por inversión y leer en Spectronick 20 a 630 nm, ajustando a 100% de transmitancia con el tubo blanco de reactivos.
Leer en absorbancia.
DATOS OBTENIDOS
Proteína Total: 4.7 g/dl
Albumina: 1.9 g/dl
ANALISIS DE LOS DATOS OBTENIDOS
De acuerdo con los datos obtenidos en este experimento, comparándolos con los valores
normales anteriormente planteados, podríamos decir lo siguiente:
Del valor de proteína total obtenida en la exanimación se observa que está por
debajo del parámetro normal debido a que la referencia de normalidad oscila entre
6.4g/dl-8.1g/dl, de los cuales nuestro paciente muestra únicamente 4.7 g/dl
La albumina, manifiesta una reducción en relación a los valores de normalidad ya
que estos oscila entre 3.9-5 g/dl y el que se encuentra presente en la sangre
analizada revela la presencia únicamente 1.9 g/dl.
CONCLUSIÓN
Con los datos obtenidos del examen podemosobservar que nuestro paciente sufre
de una déficit en proteínas totales ya que los valores esperados o normales de proteínas
totales van de 6.0 – 7.9 g/dl y en albumina son de 3.5 y 5.0 g/dl. Las causas más usuales
son la desnutrición y la pérdida en la absorción de aminoácidos durante la digestióny
pérdida por las diarreas a causa de algunos parásitos como la guardia y áscaris que se
adhieren en las vellosidades intestinales.
19
REPORTE DE COPROPARASITOSCOPICO
A CARGO DE:
HERNÁNDEZ CAMPOS NUBIA AMÉRICA
HERNÁNDEZ OLIVERA MAURICIO
PERALTA JARQUÍN LORENA
RAMÍREZ CANALES ÁNGEL
20
INTRODUCCIÓN
Esta prueba se realiza para poder comprobar o descartar algún tipo de parasito
intestinal por medio del análisis de la materia fecal.
Obteniendo los resultados podremos saber con certeza que es lo que el paciente
tiene y así poder actuar frente al problema, es necesario conocer previamente estos
parásitos para poder decidir a qué tipo pertenece y el estudio sea más rápido y concreto.
En esta prueba, podemos ver como el humano puede estar en contacto con estos
parásitos y rápidamente infectarse sin darse cuenta, y hasta que no se tiene síntomas con
respecto a la enfermedad que el parasito representa, no se da cuenta del problema que
tiene tal vez desde hace mucho tiempo.
OBJETIVO.
El principal es conocer a partir del análisis la materia fecal que tipo de parásitos
puede tener nuestro paciente.
MARCO TEORICO
Es uno de los estudios de laboratorio en el que se analiza la materia fecal. En particular
este estudio se utiliza para detectar la presencia de parásitos intestinales, lo que sirve
para establecer un diagnóstico definitivo de parasitosis. Las infestaciones por helmintos
(gusanos) se diagnostican mediante la identificación de los huevos en las heces, las
infestaciones por protozoos (p. ej., amebas) se diagnostican mediante los hallazgos de
trofozoitos (estado activo), quistes u ooquistes (estadios acorazados) en las heces. Se
requiere una muestra de heces reciente, la cantidad de muestra es importante y ésta
preferentemente no debe exceder el tamaño de un limón.
21
HIPOTESIS
De acuerdo con los síntomas y signos que presenta el paciente, pretendemos por medio
de este estudio poder identificar algunos parásitos para poder validar nuestro diagnóstico.
MATERIALES
Muestra: materia fecal
Solución de sulfato de zinc (Faust D’Antoni y Sawitz) densidad 1180
Solución de yodo (lugol)
Agua destilada o de la llave
Centrífuga clínica
Microscopio
Gradilla para tubos
2 tubos de ensayo de 13 x 100
1 Varilla de vidrio.
2 Capsulas de porcelana
1 Colador de malla fina
1 Pipeta de 10 mL
1 Portaobjetos
1 Cubreobjetos
DESARROLLO
Técnica:
1. Se colocó una pequeña porción de la muestra fecal en el colador de malla fina.
2. Se añadió 10 mL de agua y se mezcló con una varilla de vidrio para separar la
metería orgánica de la muestra.
3. Se colocó la emulsión en el tubo de ensayo hasta ¾ partes del tubo.
4. Se centrifugó la mezcla durante un minuto a 1500 rpm durante tres minutos.
5. Decantación del líquido sobrenadante.
6. Se añadió agua al sedimento y se revolvió con ayuda de la varilla de vidrio.
22
7. Nuevamente la muestra se centrifugó a 1500 rpm durante tres minutos
8. Decantación del líquido sobrenadante.
9. Se realizó el procedimiento anterior hasta que al sacar de la centrifugadora el
líquido sobrenadante fuera de completamente trasparente.
10. Una vez que el líquido sobrenadante era completamente trasparente se añadió el
sulfato de Zinc (Faust) hasta ¾ partes del tubo de ensayo.
11. Se centrifugó la muestra a 1500 rpm durante tres minutos.
12. Se colocó el tubo de ensayo en la gradilla y con mucho cuidado se llenó hasta el
borde con Faust
13. Colocamos el cubreobjetos obre el borde del tubo, de manera que este tocara el
líquido.
14. Se dejó reposar durante 10 minutos.
15. Pasados los 10 minutos se colocó en un portaobjetos una gota de lugol, retiramos
el cubreobjetos del tubo de ensayo y se colocó sobre el portaobjetos, de modo que
se mezclaran la muestra y el lugol.
16. Se observó al microscopio para detectar la presencia de quistes o huevecillos.
DATOS OBTENIDOS
Al observar al microscopio, se detectó la presencia de dos paracitos, que eran:
Giardia Lamblia.
Ascaris Lumbricoides.
CONCLUSIONES
23
A partir los datos obtenidos se confirma que el paciente, presenta un cuadro de Giardisis y
Ascariasis.
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