CAPÍTULO 5

CRÍA Y ALOJAMIENTO DE ANFIBIOS

Sandra L. Barnett, MA, John F. Cover, Jr, BS, y Kevin M. Wright, DVM

5.1 INTRODUCCIÓN Gran parte de la morbilidad y mortalidad de los anfibios en cautividad es el resultado de malas prácticas de cría. Por desarrollar y utilizar buenas habilidades de cría, los cuidadores

de anfibios puede minimizar o evitar muchas de los problemas médicos descritos en este libro, así como

sus tratamientos potencialmente caros y que consumen mucho tiempo. La mayoría de los anfibios prosperarán en cautiverio, dando un cuidado adecuado, un ambiente correcto y una dieta equilibrada.

Algunas especies, como la rana de cuernos adornada, Ceratophrys ornata, la rana de garras africana, Xenopus laevis, y la salamandra tigre, Ambystoma tigrinum,

son notablemente adaptables y pueden ser mantenidas bajo una variedad de condiciones, que van desde el espartano hasta el complejo. Otras especies, como los sapos de pie tocado

Atelopus spp. y la rana de Darwin, Rhinoderma darwinii, Puede seguir siendo problemático de mantener a largo plazo

y para reproducir. El éxito en mantener a los anfibios viene de pagar atención a las docenas de pequeños detalles discutidos en

el presente capítulo se refiere a la manipulación, el alojamiento y la nutrición. La adhesión a estas directrices puede marcar la diferencia entre un anfibio cautivo que hace mal

y muere prematuramente, y uno que prospera positivamente.

5.2 PLANIFICACIÓN DE UNA ADQUISICIÓN El primer paso hacia la propiedad responsable de los anfibios es revisar la literatura disponible sobre la deseada

especie, antes de adquirir el animal. Alguno¡as descripciones exhaustivas de los cuidados en cautividad de los anfibios

(Coburn, 1992; Mattison, 1993a, b; Murphy et aI, 1994; National Research Consejo, 1974; Schulte, 1980; Staniszewski,

1995; Stettler, 1981; Zimmerman, 1986). Avanzado Vivarium Systems publica una serie de publicaciones abiertas de folletos (La Biblioteca Herpetocultural) sobre la ganadería

de especies de reptiles y anfibios comunes (por ejemplo, de Vosjoli et aI., 1996). Estos económicos folletos disponibles en mascotas y acuarios

tiendas. Otra fuente de información sobre la historia natural y la ganadería

en anfibios son revistas de aficionados,

disponible en centros de mascotas y acuarios, así como en algunas

librerías y centros de noticias. Una amplia variedad de libros, los vendedores se anuncian en las revistas de hobbies, y son un buen punto de partida para muchos de los libros más nuevos

así como los textos oscuros o agotados. El personal encargado del cuidado de los animales en los zoológicos y acuarios, o sus miembros de la sociedad herpetológica local puede proporcionar a menudo

asesoramiento detallado sobre la cría de un animal en particular o especies. Slavens and Slavens (1998) publica anualmente un

inventario actualizado de reptiles y anfibios en zoológicos y colecciones privadas. Internet ofrece acceso a numerosos sitios web con información sobre anfibios

la agricultura y la ganadería. No toda la información es editada y revisada por expertos; tenga cuidado. Las buenas prácticas zootécnicas se basan en una minuciosa

comprensión de la historia natural de una especie. Valiosa información relativa a los requisitos de hábitat, la temperatura

preferencias, comportamiento, reproducción, dieta en la naturaleza y similares se pueden encontrar en revistas científicas

(Table 5.1) disponible en la biblioteca pública o universitaria local, o mediante suscripción directa.

Hay varios libros de referencia excelentes (Duellman & Trueb, 1986; Stebbins & Cohen, 1995; Zug, 1993) que cubren la biología y la historia natural de la región.

anfibios. Mattison (1987) ofrece un excelente relato popular sobre la historia natural de los anuranos.

Si se planea recolectar anfibios directamente de la naturaleza (asumiendo que no hay leyes que prohíban

(que), uno tiene una oportunidad inestimable de hacer de primera mano observaciones sobre el comportamiento y el hábitat de la especie. Estos pueden variar en base diaria o estacional, así que

las observaciones a largo plazo son las mejores.

Si un anfibio capturado en estado salvaje se obtiene de alguien de lo contrario, se debe hacer todo lo posible para averiguar como en la medida de lo posible sobre el lugar de origen del animal, ya que el hábitat natural de la especie puede variar geográficamente.

También es útil para averiguar cuánto tiempo un nueva compra ha estado en cautiverio, cómo ha sido

alojados y alimentados, y qué medicamentos, si los hubiera, han

Cuadro 5.1. Discursos y publicaciones de organizaciones científicas herpetológicas.

Organización

Publicaciones

Sociedad para el Estudio de Anfibios y Reptiles Dpto. de Zoología

Universidad de Ohio

Atenas, OH 45701

Revista de Herpetología

Revisión Herpetológica Contribuciones a la Herpetología

Catálogo de Anfibios y Reptiles Americanos

Liga de Herpetólogos, Inc

Dpto. de Ciencias Biológicas Universidad Estatal del Este de Tennessee

Herpetologica

Monografías Herpetológicas

Johnson City, TN 37614

Sociedad Americana de Ictiólogos y Herpetólogos

Museo Estatal de Florida Universidad de Florida

Gainesville, FL 32611

Copeia

.

ha sido administrada. Esta información es útil para evaluar

la condición física actual del anfibio, y puede ayudar a determinar sus preferencias alimentarias. Es importante darse cuenta de que la resistencia de un

El espécimen y la aptitud para la captura pueden variar estacionalmente. Así, la rana leopardo del norte, Rana pipiens,

que acaba de completar el desove primaveral puede que no sea tan robusto y tolerante al cambio ambiental como un animal recolectado en el otoño después de un verano de

la alimentación pesada (Consejo Nacional de Investigación, 1974).

5.3 MANIPULACIÓN Y TRANSPORTE DE UN NUEVA ADQUISICIÓN Después de recopilar información sobre la historia natural

y la cría en cautividad de las especies deseadas, ha llegado el momento para hacer los preparativos físicos para el deseado adquirido anfibio. Esto incluye la preparación de un

recinto de cuarentena, así como de forma permanente un alojamiento para los anfibios (véase la sección 5.5, alojamiento), hacer los arreglos para un suministro constante de alimentos (disponible

desde el primer día de la llegada del animal), y la preparación para el transporte del animal a su nuevo hogar. Sólo después de que se hayan completado estos pasos, es cuando adquirimos el anfibio.

En el caso de un anfibio capturado en estado salvaje, el cuidado en cautiverio comienza en el momento en que el animal es recogido. El animal

debe manipularse con plástico desechable limpio o látex guantes o manos mojadas con agua para reducir al mínimo daño a la delicada piel del anfibio y a su protección.

capa de moco. Es conveniente usar una botella con pulverizador llena de agua fresca para mojarse las manos. El pulverizador puede

también se utiliza para lavar suavemente los restos del anfibio. En general, es aconsejable no limpiar la piel de los anfibios,

y sólo debe intentarse con un hisopo o con un paño suave. paño pre-humedecido con agua fresca. Es muy fácil de hacer Lo ideal es que el colector se cambie de guantes o se lave la ropa.

manos a fondo entre el manejo de diferentes anfibios. Esto es importante no sólo por razones higiénicas, sino para evitar la transferencia involuntaria de cualquier

secreciones nocivas o sustancias que contengan feromonas de un animal a otro. La piel y

las secreciones glandulares de una especie pueden ser nocivas

a otro.

Los anfibios tienen un sentido del olfato bien desarrollado, y las feromonas son un modo importante de comunicación en muchas especies (para una revisión, ver Stebbins &

Cohen, 1995). Las salamandras territoriales, por ejemplo, comunican su dominio, en parte, a través de los medios químicos Es posible transferir estas feromonas desde

un individuo a otro durante la manipulación, esparciendo así las señales feromónicas estresantes entre los animales.

Otra consideración en el manejo de los anfibios se refiere a la transferencia de calor de las manos del colector al animal. Esto puede ser significativo si se emplean

pequeños anfibios, y puede ser térmicamente estresante. Además, los anfibios pueden luchar duro contra su secuestrador, lo que provoca daños en la piel y en otras partes del cuerpo.

lesiones, como la dislocación de articulaciones. El anfibio recién capturado debe ser colocado en un

contenedor de transporte de plástico o bolsa de plástico estanca tan pronto como sea posible (ver Capítulo 8, Técnicas clínicas). Cada contenedor o bolsa debe contener sólo una

especies, ya que la piel defensiva y las secreciones glandulares de algunas especies son tóxicas para otras especies. Los anfibios sensibles pueden ser envenenados no sólo por

contacto con un espécimen nocivo, pero indirectamente, por contacto con un contenedor contaminado por un

uso anterior.

Siempre que sea posible, los anfibios deben ser colocados en

contenedores o bolsas individuales, para evitar que los animales puedan herirse unos a otros de forma inadvertida o intencionada.

Si un contenedor de transporte está abarrotado con

anfibios, existe un mayor riesgo de niveles peligrosos de los niveles de amoníaco o urea derivados de su micción. Como mínimo, sólo los especímenes del mismo tamaño deben

ser alojados juntos durante el transporte, y cada anfibio debe tener suficiente espacio para que no sea

obligado a sentarse sobre (o debajo de) otro animal. Las bolsas de plástico son especialmente buenas para transportar especímenes grandes o hiperactivos que pueden lesionarse a sí mismos

en contenedores duros. Lo mejor es utilizar el sistema de bolsas de plástico utilizadas en el comercio de peces mascota, como el plástico las bolsas que se venden para el almacenamiento de alimentos en el supermercado no son

de forma fiable y estanca. Una pequeña cantidad de agua debería se añadida a las bolsas que contengan productos terrestres o semiacuáticos

anfibios. Las bolsas pueden estar llenas de un tercio de agua para alojar especies totalmente acuáticas y larvas. Es preferible a transportar un anfibio en el mismo

agua en la que ha estado viviendo, para reducir al mínimo los riesgos fisiológicos. estrés en ella. Ningún material vegetal debe ser añadido a la bolsa, ya que algunas plantas producen sustancias nocivas

y el material vegetal en descomposición puede ensuciar el agua. La bolsa se puede inflar con aire fresco y

cerrado con un nudo o una banda elástica bien enrollada (un

espécimen caprichoso puede resultar lesionado con un a banda elástica mal puesta). El agua en el debe cambiarse por lo menos una vez al día para quitar de la bolsa

residuos peligrosos. Los anfibios son especialmente vulnerables a condiciones antihigiénicas debido a su delgada, permeable piel, absorbe fácilmente las toxinas de los productos orgánicos

los residuos. Los recipientes de plástico para alimentos con tapas a presión funcionan bien

para el transporte de anfibios terrestres. Algunos fabricantes tratan los envases de alimentos con agentes antifúngicos que puede ser tóxico para algunos anfibios, por lo tanto

los recipientes nuevos deben ser remojados y enjuagados a fondo antes de su uso. En la parte superior se pueden taladrar unos pequeños orificios de ventilación.

pared o tapa de los contenedores de plástico. Los agujeros debe lijarse cuidadosamente en la superficie interior.

Varias capas de toallas de papel, goma espuma de caucho, todo natural se debe agregar esponja o musgo al recipiente después de humedecerlo con agua dulce, y luego

escurrido, por lo que no es lo suficientemente pesado como para herir al anfibio. si el material se desplaza durante el transporte. También, los contenedores de transporte deben estar protegidos de la contaminación directa

la luz del sol en todo momento para evitar que su interior alcance temperaturas letales para los anfibios. Los anfibios deben mantenerse a su temperatura preferida.

durante el transporte. Especies fósiles, en particular, no se adaptan a la temperatura rápida, a los

cambios y puede tolerar sólo una térmica, muy estrecho rango. Las especies de gran altitud pueden mantenerse frescas en enfriadores de espuma con bolsas de hielo, o con climatizador,

refrigeradores de alimentos que funcionan con un paquete de baterías o con el enchufe del cigarrillo en los automóviles. Los paquetes de calor pueden ser usado en cajas de espuma de poliestireno para mantener las especies adaptadas al calor

a temperaturas óptimas durante el transporte a través de climas más fríos. Los envases térmicos nunca deben

entrar en contacto directo con un animal o su contenedor. Los embalajes pueden fijarse al suelo de la nevera mediante cinta adhesiva para conductos y separada del contenedor del animal por

al menos 13 cm (5 in) de periódico arrugado o rallado. El contenedor de transporte debe estar bien acolchado e inmovilizado en la nevera por el periódico. "Palomitas de maíz"

o de espuma de poliestireno "cacahuete" el material de embalaje no es Recomendado para el transporte de animales, ya que los objetos pueden

ser desplazado demasiado en la caja durante el tránsito. Los agujeros no deben ser perforados en el refrigerador. El objetivo es aislar el contenido del refrigerador en condiciones térmicas exteriores.

Incluso con la tapa cerrada, la mayoría de los envases permiten suficiente intercambio de gases con el exterior para proporcionar suficiente oxígeno en el ambiente "cerrado" para un anfibio. Sin embargo,

un contenedor de transporte lleno de animales puede que requieren una mejor ventilación, a tiempos de transporte prolongados.

Cuando se transporta un anfibio a su nuevo hogar,

hágalo lo más rápido posible para minimizar el estrés. Pronto después de que un animal se instala en su alojamiento de cuarentena, a los anfibios se les debe ofrecer una pequeña comida. Esto es especialmente

cierto para los anfibios y especies muy jóvenes con un alto metabolismo, como las mantellas, Mantella

spp. y ranas venenosas (familia Dendrobatidae).

Si un anfibio recién adquirido es delgado, tenga cuidado con

alimentárlo mucho en la comida. Es posible que el animal no ha comido durante algún tiempo, y en consecuencia

el revestimiento velloso de su tracto intestinal puede ser atrofiado. Sin la superficie de absorción del

funcionamiento del intestino, los alimentos ingeridos no pueden ser utilizados por el animal, y puede dar lugar a graves problemas digestivos. la angustia, incluso la muerte. Alimentaciones frecuentes pequeñas

se recomienda para acondicionar lentamente el sistema gastrointestinal. del tracto gastrointestinal.

Si un anfibio recién adquirido no está por debajo de su peso,

todavía es aconsejable alimentar con pequeñas cantidades de comida. Esto salvaguardará contra un posible malestar gastrointestinal a causa de cualquier cambio brusco entre su antiguo y actual

dieta.

5.4 CUARENTENA Los anfibios recién adquiridos deben ser puestos en cuarentena. lejos de la colección establecida para disminuir la posibilidad de introducir enfermedades o parásitos en el residente

(animales). Los recién llegados pueden parecer sanos y robustos, pero podrían estar albergando patógenos

que otros animales pueden ser sensibles. Además, el nuevo,

los animales pueden enfermarse después de su llegada, debido a que el estrés experimentado en el tránsito y durante el ajuste

a un nuevo ambiente y dieta. Aspectos detallados de alojamiento apropiado para la cuarentena se discuten

en otro lugar (Capítulo 23, Cuarentena), al igual que los médicos ponen protocolos para el procesamiento de anfibios mediante cuarentena. Es estresante que un animal se mude a un nuevo hogar.

un entorno desconocido. Dependiendo de la fuente, el anfibio pueden haber sido sometidos a una variedad de actividades antes de llegar a su destino final.

Entre estos factores estresantes se encuentran la hidratación inadecuada, la inapropiada y las rápidas fluctuaciones de temperatura,

la privación de alimentos, los empujones físicos y el mal manejo, condiciones insalubres, hacinamiento y vivienda con compañeros inapropiados. Además, el anfibio

puede haber raspado o cortado su delicada piel en el transporte, creando vías para que los patógenos entren en la cuerpo. La situación se ve agravada por el efecto de

estrés, que deprime la función inmunológica del animal, lo que la hace más vulnerable a las infecciones. En el Acuario Nacional de Baltimore (NAIB),

el estrés sobre los anfibios recién adquiridos se reduce al mínimo

alojar a los animales en recintos bien enriquecidos que incluyan

los elementos esenciales del hábitat natural de la especie. En el NAIB, se trasladan pequeños anfibios no acuáticos temporalmente en contenedores de plástico (por ejemplo, Small Pal

Pens®, Rolf C. Hagen USA Corporation, Mansfield, MA; Smallworld®, Penn Plax, Garden City, NY) sólo el tiempo suficiente para recoger muestras fecales no contaminadas

para análisis de laboratorio. Las ranas grandes se ponen en plástico gris botes de basura con tapa de fibra de vidrio. Un papel húmedo

se coloca un sustrato de toallas y una cabaña de plástico (refugio) temporales para reducir el estrés del anfibio Se pueden agregar filamentos verticales de hojas de plástico para

ranas arborícolas para posarse. Los contenedores y basureros utilizados para la recolección de las heces se enjuagan con agua dulce y la toalla de papel

se cambia diariamente. Por lo general, sin embargo, los anfibios se guardan en estos contenedores no más de un par de veces.

horas para una especie diurna, o de un día para otro para una nocturna. La jaula espartana comparable ha sido exitosa usada en el zoológico de Filadelfia para el

período de cuarentena e incluso para el mantenimiento a largo plazo de algunas especies adaptables de anfibios. Sin embargo, la ruta más conservadora de usar un sistema enriquecido

es aconsejable en caso de duda sobre la resistencia de un espécimen. Durante la cuarentena, la manipulación de animales y humanos

la actividad en el área debe mantenerse al mínimo. presentar abrasiones pueden ocurrir cuando los anfibios se asustan y

saltan a las paredes transparentes de su recinto. Estas las abrasiones proporcionan vías para que los patógenos entren en el y pueden tardar meses en sanar. Incluso cuando

las lesiones se han curado, puede haber poco atractivo, permanente Pérdida de pigmentación y cicatrices. Una ayuda para evitar los saltos salvajes en el tanque

paredes es pegar con cinta adhesiva papel multicolor al exterior para proporcionar una barrera visual. Las Barreras de color sólido

puede no ser tan fácilmente percibido por algunos anfibios. Las barreras negras pueden hacer un vidrio o plástico limpio. la superficie actúa como un espejo. Las imágenes en el espejo de la

animal, su alimento vivo, y el interior de la jaula puede realmente fomentar un comportamiento llamativo. Una opción para minimizar el trauma del golpe es

pegar con cinta adhesiva, pegamento o usar ventosas de plástico para adherir el plástico envoltura de burbujas a la pared interior del recinto como un

cojín. La envoltura de burbujas translúcida también puede hacer la pared más obvia para el anfibio y prevenir un comportamiento llamativo en primer lugar. Otra alternativa

es colocar las plantas cerca de la pared, para desalentar el salto y para amortiguar cualquier golpe. En el caso de recintos acuáticos con una superficie estéril,

suelo transparente, lo mejor es colocar el depósito en un superficie opaca para disuadir al anfibio de intentar nadar a través del fondo del tanque. Este comportamiento

también puede resultar en abrasiones del rostro.

La provisión de refugios adecuados previene o reduce

comportamientos inquietos. Si un anfibio parece estar incómodo con su entorno, el recinto debe ser reexaminado para eliminar las condiciones estresantes.

5.5 VIVIENDA 5.5.1 Descripción general:

Los recintos para anfibios en cautividad pueden variar desde sistemas espartanos hasta sistemas altamente complejos. El coste inicial de

los recintos espartanos son bastante bajos y el tiempo de preparación es de un mínimo en comparación con los recintos naturalistas. Sin embargo, los recintos espartanos carecen de las características biológicas naturales.

de los sistemas complejos, y por lo tanto requieren más limpieza y mantenimiento manual. Esta intervención

perturba la vida diaria de los anfibios y, para algunos especie, puede ser bastante estresante. Los recintos espartanos no son estéticamente agradables,

y en algunos casos puede que no den cabida a todo el comportamiento para una especie. Con el fin de lograr éxito reproductivo con muchos anfibios, y simplemente

mantener vivas a muchas de las especies más delicadas, puede ser necesario un recinto más naturalista. Los anfibios son ectotermos. Tienen poco metabolismo

control de su temperatura corporal y derivar su temperatura a partir del ambiente ambiental,

agua, sustrato y, en algunas especies, a través de tomar el sol. Como todos los demás animales, los anfibios prefieren temperaturas a las que su cuerpo funciona de forma óptima

para una actividad determinada. Temperaturas por encima y por encima de por debajo de la temperatura preferida puede ser estresante y perjudicar la capacidad del animal para funcionar normalmente.

El estrés térmico puede llevar a la enfermedad o incluso a la muerte.

Dado un gradiente térmico, los anfibios son capaces de Ejercitar de algún control térmico, a menudo dentro de límites amplios, por ajustes de comportamiento y fisiológicos.

Un gradiente térmico permite a un anfibio desarrollar una fiebre de comportamiento cuando se combate la infección. Los anfibios tienen piel glandular a través de la cual

absorben pasivamente y pierden agua, así como respiran (marginalmente en los caecilianos); no beben agua.

Los anfibios están sujetos a desecación si se colocan en un lugar totalmente seco. el medio ambiente seco, y la mayoría de las especies requieren contacto con un sustrato húmedo y aire relativamente húmedo

para mantener un balance hídrico positivo. Sin embargo, algunos los anfibios tienen dificultades con la retención excesiva de agua si se coloca en un ambiente demasiado húmedo. Dada una

gradiente de humedad, los anfibios son capaces de osmorregular al entrar y salir de diferentes tipos de humedad regímenes, y haciendo ajustes posturales.

La mayoría de los anfibios tienen un cuerpo pequeño, O al menos muchas especies.

"mantente al margen". Su microhábitat es la interfaz de

la hojarasca, la superficie de una hoja, la capa superior del el suelo o el fondo de un arroyo, o el medio ambiente subterráneo de rocas y madrigueras. Hay que tener cuidado de mirar más allá

el macroentorno más grande, donde la temperatura, la humedad y los niveles de luz pueden ser sorprendentemente diferentes que en el mundo ocupado por estos

pequeños animales. La mayoría de los anfibios son reservados. En su forma natural

hábitat, a menudo son presa de otros animales. El comportamiento críptico, a menudo aumentado por el camuflaje, es una parte integral de su vida. Incluso especies atrevidas con

coloración aposemática brillante (advertencia) por lo general huyen o esconderse si está suficientemente amenazado. El sentido del olfato está bien desarrollado en la mayoría de los anfibios,

especialmente en sapos excavadores, tritones, salamandras,

y en caecilianos (ver Duellman & Trueb,

1986 para su revisión). Las feromonas son elementos importantes

en el comportamiento de muchas especies. La tecnología espacial patrón de señales feromónicas puede definir fuertemente un

mundo de los anfibios. Cuando se selecciona un alojamiento para un anfibio, es importante para considerar no sólo el estilo de vida de los deseados

especie, sino cómo se mantendrá el recinto en el tiempo a largo plazo. Idealmente, un recinto y su soporte de vida el sistema debe requerir poco mantenimiento, y puede ser

atendida con un mínimo de molestias a los habitantes de la jaula. Un entorno estable, con un mínimo de interferencias por manos humanas, puede ser fundamental para el éxito

con delicadas especies de anfibios. Es prudente planear con anticipación y tener un recinto de emergencia

disponible, en caso de que un anfibio enfermo o lesionado de repente necesitan ser separados del grupo. Cuando no sea posible, los animales comprometidos deberían ser tratados en

su recinto doméstico. Este es el ambiente familiar en la que se sentirán menos estresados, y presumiblemente, sus sistemas inmunológicos funcionarán al máximo.

Si el problema es de origen social, puede ser necesario

para eliminar temporal o permanentemente los aislamos. En

en cualquier caso, puede ser menos estresante para los enfermos o heridos que el animal se aísle en su vivero normal y se permite la recuperación sin interferencias o posibles

estrés de los compañeros de jaula. Si hay una segunda oportunidad adecuada en un recinto, puede ser mejor retirar a los animales sanos

de la jaula de la casa, ya que están en mejores condiciones para lidiar con el estrés de una mudanza que sus enfermos o herido. Sin embargo, la feromona residual

puede continuar la contaminación por los antiguos compañeros de jaula

para ser una fuente de estrés para un anfibio enfermo.

en su casa original. Si la contaminación por feromonas

o cualquier otra contaminación química se sospecha,

Los anfibios enfermos deben ser trasladados a un lugar previamente desocupado.

vivero.

5.5.2 El Recinto Básico de Anfibios

Los materiales más comúnmente usados para los anfibios

las cajas son de vidrio y plástico. El plástico tiene la ventaja que puede ser fácilmente cortado y taladrado, tal y como se hace para instalar plomería y crear agujeros de ventilación. Un gran

desventaja del plástico es que se raya fácilmente. En tiempo, esto puede oscurecer la visión en el tanque. Rascarse también áspera las superficies de la pared, lo que hace más fácil que

pequeños insectos trepadores puedan escapar. Los plásticos también son más absorbente que el vidrio, y puede recoger y después

lixiviar desinfectantes u otros contaminantes nocivos a los habitantes de la jaula. Muchos plásticos se vuelven amarillos y frágil después de una exposición prolongada a la luz ultravioleta

sin embargo, esta luz se utiliza comúnmente sobre las jaulas de anfibios por sus posibles beneficios para la salud de los animales (véase la sección 5.6.4, Iluminación).

El vidrio no es tan fácil de perforar como el plástico, pero el vidrio en, empresas y algunas tiendas de acuarios perforarán agujeros en las paredes y el suelo de los tanques de vidrio sin templar por

una pequeña cuota. En NAIB, los acuarios de vidrio empotrado y los acuarios de plomería

recipientes de plástico (por ejemplo, Small Pal Pens®, Rolf C. Hagen USA Corp., Mansfield, MA) se utilizan para albergar la mayor parte de la colección de anfibios (aproximadamente 50

especies de anuros, 1800 ejemplares). Las dimensiones del tanque y el enriquecimiento varían en función de las necesidades particulares de cada país. los requisitos de hábitat de los especímenes alojados, pero

se utiliza el mismo diseño básico de tanque en toda la colección (Figura 5.1). Es aplicable a una amplia gama de

anfibios, como se describe a continuación. NAIB utiliza tapas con bisagras hechas a medida y fabricadas con marco de ventana de vinilo sobre todos los anfibios

(véase la figura 5.1), excepto para las jaulas de plástico "Pal Bolígrafos", que vienen con tapas de plástico a presión. El El marco de vinilo es relativamente resistente a la intemperie y a la intemperie.

no abrasivo. Los marcos se encajan con marcos extraíbles. paneles de fibra de vidrio para la protección de las ventanas. Los paneles permiten

aire fresco para entrar en la jaula y permitir la transmisión de radiación ultravioleta (UV) potencialmente beneficiosa

de fuentes aéreas. Usando tapas con bisagras,

Figura 5.1. Vista lateral del recinto básico de anfibios sin amueblar utilizado en el Acuario Nacional de Baltimore. A. sección transversal

de nomina

I Un tablero de 2.5 X 5 cm (1" X 2") que sostiene el borde del tanque, inclinándolo hacia el desagüe. B. anillos de biofiltro de plástico de

2,5 cm de diámetro exterior

(1" OD) usado como pilotes para el piso falso, secciones de tubería de PVC pueden ser sustituidas como pilotes. C. piso falso hecho de

una hoja de plástico"

cajas de huevos" o paneles difusores de luz. D. Una sola capa de malla de fibra de vidrio para ventanas con un borde de 2.5 cm (1")

doblado y presionado contra

la pared del tanque por medio de grava sobrepuesta, o sellada a la pared del tanque con caucho de silicona. E. Tapa de dos paneles hecha

de una ventana de vinilo de 2.5 cm (1") de ancho.

enmarcado de la pantalla. F. panel de fibra de vidrio desmontable de la ventana de la pantalla. G. Tuerca de nylon y mango de la tapa del

perno; los demás herrajes de plástico o acero inoxidable

puede ser sustituido. H. todas las bisagras de piano de plástico unidas con tuercas y pernos de nylon; se pueden sustituir por herrajes de

acero inoxidable. I. acuario

hilo dental para filtrar usado como un tapón en el pozo de sifón, para mantener a los animales y los escombros fuera. J. pozo de sifón de

plástico transparente sellado permanentemente en su lugar

con caucho de silicona; el pozo se extiende por debajo del falso suelo, para permitir que los residuos y el agua sucia se desvíen de la zona del subsuelo utilizando un

manguera de plástico blando extraíble alimentada por el pozo. N. capa de grava de guisante. O. cubierta húmeda de musgo de hoja seca

rehidratado o musgo esfagno.

Como alternativa al uso de un pozo sifónico, el fondo del tanque puede ser conectado a una tubería mediante un sistema de mamparo (K,

L, M). Un agujero debe

se perforará en el cristal inferior del acuario para utilizar este sistema. K. Se puede instalar un sistema de mamparo desmontable y

conectarlo a un desagüe.

de la manguera. Alternativamente, un conector de tubo macho de nylon o polietileno con un extremo roscado de 2,5 cm (1,0") de

diámetro exterior puede ser

epoxied en el agujero de drenaje y cortar a ras con el piso interior del tanque; el extremo cónico encaja a presión en la manguera de

drenaje flexible; un plástico

el conector para manguera de jardín puede ser sustituido por el conector macho-reductor. L. tubo de vinilo flexible de 1,7 cm (11116") de

diámetro exterior;

1,3 cm (0,5") de diámetro interior). M. Llave de plástico. (Sandy Barnett)

en lugar de una construcción de una sola pieza, sólo una parte del

la jaula debe ser descubierta durante el mantenimiento, lo que significa que

ayuda a minimizar las posibilidades de escape de los anfibios

e insectos alimentarios.

El marco de la pantalla de aluminio puede ser sustituido por un marco de aluminio.

para el marco de vinilo, que no está disponible fácilmente,

pero cualquier metal debe ser usado con precaución en una tienda.

recinto de anfibios: debido a los riesgos de toxicosis metálicas.

La malla estándar de fibra de vidrio para ventanas pasa a los insectos pequeños

(p. ej., moscas de la fruta), pero la detección que sea lo suficientemente fina

para retener insectos muy pequeños es prohibitivamente caro.

Tapa de tela de ferretería galvanizada y tapas de aluminio

no se recomienda el cribado de ventanas ya que

la delicada piel de los anfibios.

También existe la posibilidad de que el metal galvanizado

Las pantallas lixiviarán los niveles nocivos de zinc.

Hojas cortadas a medida de termoplástico transparente (por ejemplo, plexiglás)

®, Lexsan®) también pueden servir como tapas.

se deben perforar pequeños agujeros en el plástico para la ventilación. Se debe tener cuidado de que los agujeros estén perfectamente alineados.

liso en la superficie interior de la tapa para los animales y su seguridad. Las principales desventajas de los plásticos sólidos o las tapas de vidrio es que reducen significativamente la ventilación

(ver Sección 5.6.2, Humedad), y eliminan potencialmente luz UV beneficiosa (véase el apartado 5.6.4, Iluminación).

Además, algunos plásticos tienden a deformarse con el tiempo, que pueden crear brechas de tamaño suficiente para permitir que los habitantes puedan escapar.

Hay algunos viveros de plástico disponibles en el mercado que están diseñadas para encajar perfectamente en el encima de todos los acuarios de cristal (por ejemplo, "Pal Pen Tank Lids,"

distribuido por Hagen). Estas tapas encajan bien y, en general, proporcionar una buena ventilación e iluminación. Sin embargo las moscas de la fruta y los insectos pequeños pueden arrastrarse

a través de las ranuras de ventilación. 5.5.3 Pautas generales para la instalación y el mantenimiento del gabinete Mantenimiento

Pegamentos y Selladores. Sólo colas homologadas para

las aplicaciones en acuarios deben ser usadas en anfibios los recintos. Las nuevas construcciones deben ser minuciosamente curado, y luego empapado durante varios días en repetidas

baños de agua limpia para reducir los niveles nocivos de contaminantes. Whitaker (1993) describe la hiperactividad en

un gran número de ranas venenosas (familia Dendrobatidae) expuestos a tuberías de PVC recién encoladas con cemento de PVC.

En NAIB, la pasta epoxi de dos partes "PC-T'' (Protective Coating Co., Allentown, PA) se utiliza para reparar líneas de fisuras en acuarios de plástico, para fijar mamparos

a tanques de vidrio y plástico, y para encolar diversos materiales porosos. y muebles de jaulas de anfibios no porosas juntos. Este epoxi es fácil de trabajar, tiene una larga configuración.

y se adhiere bien aunque sea de forma bastante imprecisa.

medido y mezclado. Un producto similar por el mismo

PC-11" puede utilizarse en superficies mojadas. Aquastick™ (Two Little Fishies, Inc., Coconut Grove, FL) es otra pasta epoxi segura que viene pre-medida.

para su uso. Tiene la ventaja de que se adhiere a superficies húmedas y curado bajo el agua. Cada vez que se utiliza epoxi, debe permitirse que se cure completamente

durante al menos 24 horas, y el epoxi curado debe ser enjuagado con agua limpia varias veces antes de colocarlo

el objeto en contacto con un anfibio vivo.

Calidad del agua. El agua utilizada en un recinto de anfibios

debe estar libre de sustancias nocivas tales como

cloro, cloramina, amoníaco y metales pesados. Aunque la mayoría de los anfibios adultos son tolerantes a niveles bastante altos de cloro, huevos y larvas pueden ser

extremadamente sensible. Se recomienda que el agua del grifo destinados a ser utilizados con anfibios, pasen por un filtro de carbón activado o envejecido durante al menos 24 horas

en un recipiente abierto para extraer el cloro. La adición de una piedra de aire acelerará enormemente el envejecimiento

proceso. Se debe tener precaución después de la adición.

de un sistema de filtración de agua, como el contenido mineral del agua puede ser alterada además de eliminar

cloro. Como ejemplo, los renacuajos del rana venenosa teñidora, Dendrobates tinctorius, fueron criado con éxito en agua de grifo envejecida en la ciudad de Filadelfia.

Zoo, . Se recomienda que los acondicionadores de agua vendidos para

uso con peces tropicales no se debe usar para preparar el agua para los anfibios. O'Reilly et a1. (1995) reportan que el agua de grifo tratada con productos químicos convencionales utilizados para

los peces tropicales son a menudo fatales para el caimán del Río Cauca, Typhlonectes natans, el caciliano más vendido,en los Estados Unidos.

Además, algunos acondicionadores de agua puede reducir o eliminar los colorantes de los medicamentos, como la malaquita verde, azul de metileno y permanganato de potasio,

y por lo tanto podría interferir con un tratamiento médico. El agua completamente desionizada es perjudicial para la salud acuática. anfibios, como el esfuerzo necesario para mantener el osmótico

el equilibrio de sus tejidos corporales no puede mantenerse mucho tiempo contra tal gradiente. Estanque artificial

agua destilada o de ósmosis inversa 3 etapas, y aditivos minerales se ha utilizado con mucho éxito con anfibios acuáticos (véase el cuadro 24.1.). Embotellado

El agua de manantial también se utiliza comúnmente con los anfibios. Cualquier agua nueva añadida a un anfibio el recinto debe estar a la misma temperatura que en

el tanque de la casa para evitar el choque térmico a los animales. (Vea el Capítulo 12, Calidad del agua.)

Si el agua se ofrece en un tazón a los anfibios, es imperativo

que el agua esté limpia. Las bacterias pueden colonizar

tazones de agua rápidamente, y a un ritmo aún más rápido cuando

el agua está contaminada con heces, comida o cobertizo piel. Esto requiere que el tazón se limpie diariamente y se desinfecta varias veces por semana para reducir el riesgo de infección.

la posibilidad de que el cuenco sea una fuente de patógenos (ver Wright, 1993, para información sobre desinfectantes). Mantener una roca emergente en el agua

permitirá que los insectos de la comida que se caigan escapen. Los insectos ahogados contaminan rápidamente el agua.

Sustrato. Un sustrato de grava de grado medio puede

sirven como un excelente filtro biológico en un anfibio del recinto. La grava debe ser demasiado grande para

el anfibio para ingerir o tan pequeño y suave que puede pasar a través del tracto digestivo. De lo contrario, el anfibio puede sufrir complicaciones que surjan

de un impacto de un cuerpo extraño gastrointestinal. Es sabio utilizar la grava lisa para reducir al mínimo la posibilidad

de daño a la delicada piel del anfibio, especialmente

si el animal tiende a cavar. La grava lisa también

minimizar los daños internos y facilitar el paso, si el anfibio ingiere algo de ella. La grava debe ser de un color típico de la naturaleza del animal

hábitat. Para muchos anfibios terrestres y rocosos, esto significa que el animal se mezclará con el sustrato. Este camuflaje no sólo es interesante

para observar, pero presumiblemente ayuda a hacer que el anfibio se sienten menos vulnerables y menos estresados.

Si se va a utilizar arena para recubrir la grava, es mejor para usar arena plateada de horticultura en lugar de arena de construcción. Este último tiende a formar una costra después de la misma.

ha sido humedecido y secado. Se recomienda utilizar tierra o mezclas para macetas

con moderación, a menos que sea esencial para el estilo de vida de los anfibios (por ejemplo, fósiles o bosques. especies). Un sustrato de suelo es más trabajo para el servicio y

drena menos bien que un simple sustrato de grava cubierto con musgo o hojarasca. Con una planificación adecuada, es posible crear un exuberante recinto plantado con tierra

justo alrededor de las raíces de las plantas, o usando plantas epifitas (que no requieren tierra) y musgos secos rehidratados

y hojarasca (Placa 5.1).

Si se usa tierra sobre grava, una capa de ventana de fibra de vidrio

se puede intercalar en el medio para prevenir

el suelo de la obstrucción de la capa de grava. Hierba tela de protección, disponible en ferreterías y tiendas de jardinería, también se puede utilizar para este propósito, pero tiende a atascarse

con diminutas partículas de tierra durante un período de meses. Muchas mezclas de tierra vegetal y mezclas para macetas que se venden comercialmente no son adecuados para recintos de anfibios porque

contienen aditivos químicos potencialmente peligrosos. Estos incluyen surfactantes para humedecer el suelo, antifúngicos agentes, fertilizantes y agentes de aireación que son

potencialmente peligroso si se ingiere (por ejemplo, perlita, espuma de poliestireno).

El compost que contiene estiércol debe ser

evitada por completo, porque es demasiado ácida y a menudo están presentes sustancias químicas indeseables. Turba musgo y las mezclas de macetas que contienen musgo de turba deben ser

evitada. Son demasiado ácidos para muchos anfibios. e irritará su piel. Los Cecilianos, en particular, son muy sensibles al contacto con la turba (O'Reilly et aI..,

1995). Cuando se utiliza suelo, la composición debe coincidir con

el hábitat natural de los anfibios. Por ejemplo,

los sapos de patas largas, Scaphiopus spp. y Spea spp,

lo hacen mejor en suelos arenosos y limosos, mientras que las salamandras sin pulmones

(familia Plethodontidae) prefieren ricos, orgánicos suelos con pH neutro. El suelo de composición adecuada se puede recoger en

el campo, siempre y cuando esté libre de contaminantes (p. ej., motor, etc.). aceite, gasolina, sal de pavimento, pintura). En general, hay pocas implicaciones negativas para la salud de usar

suelo limpio pero no estéril. Algunos de los organismos presentes en el suelo, de hecho, puede ayudar a mantener el vivero

sanos, descomponiendo los productos de desecho de los anfibios y material vegetal muerto. Sin embargo, si uno quiere estar absolutamente seguro contra la posibilidad de exponer

un anfibio cautivo a organismos indeseables, tales como como los ácaros trombiculidos, el suelo debe ser tratado con calor o frío. El tratamiento térmico es a menudo eficaz para matar

artrópodos parásitos, y también puede destruir los óvulos de parásitos helmintos. El suelo a tratar debe ser dispuesta en una capa de no más de 2,5 cm (1 in) de profundidad,

y horneado a una temperatura de al menos 95°C (200°F) durante 30 minutos o más. Alternativamente, la exposición

del suelo a temperaturas muy por debajo del punto de congelación de el agua (O°C, 32°F) durante varias semanas puede matar del suelo artrópodos. Otra opción es colocar el suelo en una

bolsa de plástico oscura y colóquela bajo la luz directa del sol durante varias horas. La putrefacción de la madera (madera desmenuzada de troncos en descomposición) es

un excelente sustrato para muchos anfibios de bosque. La materia fresca puede contener incluso invertebrados

especies que son alimento nutritivo para los anfibios en cautiverio. Una vez más, sin embargo, hay que sopesar los beneficios de usar un sustrato vivo contra la posibilidad de introducir

invertebrados indeseables y enfermedades en

el ambiente de cautiverio. Si se desea que la madera se pudra libre de plagas, se puede tratar congelándolo o colocándolo en una bolsa de plástico oscura a la luz directa del sol. Tratamiento en el horno puede hacer que la madera se carbonice o altere de alguna otra manera.

composición. El suelo de un vivero debe drenarse fácilmente, de modo que de agua no se forman en ella. Además, el suelo debe

tener un gradiente de humedad, de modo que el anfibio puede realizar las funciones normales de osmorregulación (véase la sección

5.6.2, Humedad). El rango del gradiente de humedad

que se debe proporcionar dependerá de las necesidades particulares de cada país.

requisitos de la especie que se va a alojar.

Si un anfibio parece evitar el suelo en su recinto (por ejemplo, si una especie fósil permanece en la superficie), o muestra signos de irritación por contacto (por ejemplo, eritema de la superficie ventral, la inapetencia), el contenido de humedad

o la composición del suelo puede ser inapropiada y la la tierra debe ser reemplazada.

Cubierta del suelo. Las coberturas comunes incluyen

musgo vivo, hoja rehidratada y musgo esfagno, mantillo y pepitas de madera dura, y hojarasca. Todos los estos materiales, excepto la hojarasca, se pueden comprar

en los centros de jardinería. Si se mantienen adecuadamente, estos sustratos se desarrollarán

una compleja comunidad de microorganismos benéficos que ayudará a mantener el sustrato "sano", rompiéndolo de los productos de desecho de los anfibios y

material vegetal muerto. Por supuesto, este sistema viviente puede fallar si el vivero está superpoblado y la biocarga es demasiado alto. Hay que encontrar un equilibrio. Rápida limpieza

de grandes excrementos a mano se recomienda, con sustitución en el lugar de trabajo de los productos muy sucios o descompuestos al menos cada pocos meses.

Los musgos vivos a menudo tienen un pobre desempeño en los viveros porque

los niveles de luz tienden a ser inadecuados y la humedad niveles demasiado altos o demasiado bajos. Algunos anfibios (por ejemplo.., algunos especímenes de cacilianos terrestres) parecen ser

irritados por el contacto prolongado con el musgo esfagno o musgo de hoja (O'Reilly et aI., 1995). El musgo esfagno es considerablemente más barato que la

de hojas de musgo. El esfagno húmedo es una solución asequible cuando se necesita un sustrato para alojar temporalmente a un

anuro o salamandra terrestre o fósil, como, por ejemplo, durante un procedimiento médico o una cuarentena. Las principales desventajas del esfagno son que

se desmorona fácilmente (los trozos pequeños se adhieren a los anfibios y se ingieren fácilmente con las presas) A medida que el esfagno se descompone

y se embala (durante un período de muchas semanas), el agua y los desechos no pasan fácilmente a través de ella, y se

puede convertirse en un caldo de cultivo para las enfermedades anaeróbicas indeseables. bacterias. Sin embargo, cuando se mantiene húmedo y cambiado regularmente, se puede utilizar durante un largo período de tiempo.

tiempo para albergar muchas especies de anfibios. El musgo en láminas es caro pero atractivo. Puede ser dispuesto para formar un sustrato liso, parecido a una alfombra

que da a los insectos alimentarios pocos lugares para esconderse y facilita su captura por anfibios que se alimentan en la superficie. Además, la integridad estructural de la lámina de musgo reduce

las posibilidades de que el anfibio accidentalmente ingieren musgo durante la captura de alimentos.

Una alfombra apretada de musgo de hoja es útil para estabilizar la orilla a lo largo de un arroyo o estanque, y para evitar que

un anfibio tire los escombros en el agua.

Los mantillos y pepitas de cedro y pino deben ser evita, ya que contienen compuestos naturales que son potencialmente tóxico para los anfibios si no son tratados. Sólo sin tratar

se debe usar mantillo de madera dura. El cuidado debe ser tomado para remover del mantillo cualquier trozo de madera que podría dañar al anfibio. El mantillo retiene la humedad

y ayuda a humidificar el vivero. El mantillo debe ser reemplazado por lo menos cada pocos meses.

La congelación o la esterilización a la luz del sol son las mejores opciones para tratar el musgo, las hojas y la corteza para eliminarlos. de organismos indeseables.

Un sustrato heterogéneo puede ser necesario para acomodar diferentes aspectos del comportamiento de un anfibio desde la excavación de túneles en el suelo hasta la búsqueda de alimento por debajo de la tierra seca

hojas. El mundo natural rara vez es un entorno homogéneo, y tampoco lo es el vivero saludable.

En algunos casos, puede ser deseable alojar anfibios sobre un sustrato de toalla de papel húmedo (ver Sección 5.5.8, Cercados de Piso de Bosque Terrestre).

El papel toalla sin blanquear es un sustrato muy higiénico. cuando está fresco, pero se degrada rápidamente y es orgánico los desechos se acumulan en la superficie. Muchos anfibios

están inquietos y aparentemente estresados sobre una toalla de papel sustrato, aunque otros (p.e., muchas especies de salamandras terrestres) lo hacen bien (ver Sección 5.5.8).

Proporcionando puntos de escondite en forma de bolas arrugadas

de papel o pliegues en el sustrato de la toalla puede aliviar el dolor. estrés experimentado por algunos individuos.

Plantas. Las plantas, ya sean artificiales o vivas, sirven para muchas funciones en el vivero. Proporcionan cobertura

y lugares de descanso, perchas elevadas para despliegues territoriales, sitios de oviposición en algunas zonas terrestres y arbóreas especies, y actúan para filtrar la luz de arriba,

creando una iluminación más tenue a nivel del suelo que la mayoría de los anfibios prefieren. Las plantas vivas proporcionan beneficios sobre las plantas artificiales. Algunas de las

las plantas de interior ayudan a purificar el aire y a utilizar productos orgánicos residuos en el suelo (Raloff, 1989). Las plantas vivas también aumentan

la humedad en un recinto. Plantas acuáticas ayudar a oxigenar el agua y eliminar de ella las sustancias orgánicas nocivas residuos.

Tanto las plantas terrestres como las acuáticas pueden enraizarse directamente en el sustrato, o pueden ser colocados de forma individual macetas que están enterradas en el sustrato. Mantener

las plantas en sus macetas facilitan la limpieza y el reemplazo de las jaulas de material vegetal antiguo, con un mínimo de

perturbación a los habitantes de la jaula. Además, las macetas protegen plantas contra anfibios que tienden a cavar. Plástico las macetas son preferibles a la terracota, ya que las primeras son

Ligero, no abrasivo, no absorbente y fácil de usar limpiado. Se recomiendan las plantas que prosperan en niveles bajos de luz

para recintos de anfibios, en los que se somete

la iluminación la más apropiada. Plantas terrestres resistentes que son especialmente tolerantes a la luz baja incluyen el Lirio de paz, Spathiphyllum tasson, la belleza esmeralda,

Aglaonema commutatus, la reina de la plata, Aglaonema roebelinii, golden pothos, Epipremnum aureum, y la palma enana, Chamaedorea elegans. Una amplia

la revisión de las especies de plantas apropiadas para el vivero es dado en Mattison (l993b).

Muchas de las plantas comunes del vivero contienen oxalatos.

Si es consumido por los insectos presa, hay un potencial para que estos oxalatos creen problemas en los anfibios consumiendo los insectos. Es preferible que libere sólo la cantidad de insectos comedores de plantas que pueda haber en

anfibios introducidos, como la cantidad que puedan comer dentro de un recinto unas pocas horas. Cuando se ofrecen grillos, un pequeño plato de comida de grillo se puede colocar en el recinto para

ofrecer a los insectos una alternativa a comerse el vivero plantas. Comida de cricket preparada comercialmente, que es

fortificada, también aumentará el contenido nutricional de los insectos comederos (Allen & Oftedal, 1989). Cualquier planta que se utilice en el recinto de los anfibios

debe estar libre de espinas y bordes afilados y rígido propinas. Muchas bromelias tienen hojas rígidas con espinas a lo largo de los bordes. Estas plantas podrían empalar o cortar en

la delicada piel de un anfibio saltando a través del o peleas con una jaula. Estas plantas debe ser evitado.

Las plantas que se compran en un vivero a menudo

Estan contaminados con fertilizantes, pesticidas, fungicidas,

y detergentes (para mejorar el brillo de las plantas sin posibilidad de colapso, deterioro natural). El suelo de la maceta puede ser igualmente contagioso, los muebles pesados del tanque deben descansar

directamente en el suelo . Como protección contra estos peligros, todas las plantas (falsas) deben estar en el sustrato en lugar de encima del sustrato. Othshould

algunas plantas deben ser retiradas de su maceta original y, de la misma manera, el animal puede socavar el mobiliario y las instalaciones. la mayor cantidad de tierra posible debe ser removida del lugar de la lesión o de la muerte en un

derrumbe. También es posible que arranquemos raíces. Toda la planta debe ser completamente de tela o de plástico, si no las paredes de la jaula podrían dañarse en tal caso.

Las bromelias arbóreas y otras epífitas pueden ser colocadas en las paredeso maderas… ligeramente envuelto en fibra de helecho de Osmunda o alambrado para ser fijado con seguridad junto

con caucho de silicona o un árbol de vainas.

Si se desea una pared de roca o una cascada, las rocas deberan estar bien fijadas y seguras se puede

etulizar productos epoxicos. Estos productos naturales absorbentes son epóxicos no tóxicos a prueba de terremotos (por ejemplo, Aquastick™, Two Little)

Las algas verdes a menudo crecen en las piscinas no perturbadas. corrientes de vivarios. Las algas verdes pueden ser puntos beneficiosos en el gradiente térmico y de

humedad, así como en la limpieza del agua, El tipo de refugio más apropiado depende de Ramas, rocas y otros muebles pesados. sobre las especies de anfibios involucradas.

.

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ramas, y las rocas lisas pueden ser utilizadas para proporcionar

barreras visuales dentro del recinto. Debe haber un mínimo de escondite o retiro por anfibio, más si la especie en cuestión es territorial.

Los retiros deben estar dispersos por todo el recinto. en zonas de temperatura y humedad diferentes,

para que un anfibio pueda esconderse en un lugar con un microclima apropiado. Retiros estilo cueva no debe utilizarse con especies de anfibios que

no los usarán (por ejemplo, la rana mona gigante), Phyllomedusa hieolor). Para muchos de estos anfibios, las cuevas son refugios para presas vivas que no se comen.

La corteza de corcho puede servir de doble función como retirada y como una plataforma de alimentación para muchas especies de ranas pequeñas,

como las mantellas, Mantella spp., el pie rapado Atelopus spp. y las ranas venenosas (familia Dendrobatidae). Insectos pequeños (mosca de la fruta, mosca de la fruta, insectos que eclosionan

grillos, colémbolos) pueden ser rociados sobre la corteza, donde son presa fácil para las ranas. Incluso si el recinto es recién nebulizado, los insectos no se pegarán a la

corteza, porque absorbe y expulsa la humedad rápidamente. La corteza de corcho puede ser esterilizada en autoclave para su esterilización sin necesidad de

alterar su apariencia. Los retiros de anfibios pueden ser hechos de forma oscura contenedores de plástico de colores. Los ejemplos incluyen el plástico

tazones, recipientes de almacenamiento, macetas y el refuerzo en el fondo de muchas botellas de refrescos. El contenedor elegido simplemente se da la vuelta al revés,

y un agujero de acceso ligeramente más alto y ancho que el el anfibio es cortado en la pared. El borde del acceso el agujero y la superficie interior del retiro debe ser

liso, para que el anfibio no se lastime a sí mismo. El tamaño del retiro dependerá del número,

tamaño, y las especies de anfibios que se alojan. El retiro debe ser lo suficientemente profundo para permitir que el anfibio para esconder completamente su cuerpo en un lugar relativamente oscuro.

medio ambiente. La mayoría de los anfibios que usan escondites prefieren uno con un techo bajo, para que puedan encajar su cuerpo debajo de él con su dorso tocándose o

casi tocando el techo. Entre las posibles explicaciones para esta preferencia son la conservación del agua,

termorregulación y evitación de depredadores. Similar a otros hábitats de anfibios, los recintos acuáticos debe incluir múltiples retiros oscuros. Un subordinado:

los anfibios no deben ser forzados a compartir una retirada con un animal más dominante, y los animales no debería tener que aventurarse mucho para buscar cobertura. Mobiliario:

debe arreglarse de tal manera que cuando se ofrezca comida, está relativamente cerca de un refugio, como una roca sumergida o una cueva de madera, o una sección de tubería de PVC.

5.5.4 Ubicación del gabinete

Actividad circundante. Es importante colocar un un recinto de anfibios en un lugar apropiado. Localizar

animales lejos de áreas de alto tráfico y ruidosas ruidos (las salamandras y los caecilianos tienen un desarrollo deficiente.

sensibilidad auditiva, pero al menos algunas especies pueden detectar la vibración del sustrato que el tráfico provoca y el ruido fuerte que pueden generar los sonidos). Algunos anfibios son tímidos y

se asusta fácilmente. Si uno espera ser testigo de su complejos comportamientos, es útil estar quieto o moverse.

despacio y en silencio!

Vibración. Localice a los animales lejos de las fuentes de vibración.

La investigación ha demostrado que algunos anfibios

se ven afectados por la exposición a vibraciones constantes (National Consejo de Investigación, 1974). Cuando sea posible, haga no colocar filtros de cartucho, bombas de aire y otros filtros motorizados

aparatos que vibran sobre la misma superficie que un

un recinto de anfibios. Si esto debe hacerse, coloque una almohadilla debajo del aparato para absorber la mayor parte de la vibración como sea posible.

Entorno controlado. Localice a los animales donde

se les puede proporcionar la temperatura, la humedad, e iluminación que experimentarían en la naturaleza. Esto probablemente se logra mejor en un animal dedicado

sala donde la actividad humana y el medio ambiente puede ser cuidadosamente controlado. Evite las habitaciones

con fuertes fluctuaciones diarias de temperatura.

Evite la luz solar directa. No poner a los anfibios

sus recintos a la luz directa del sol. Las temperaturas letales pueden

ser alcanzados rápidamente en viveros de vidrio o de plástico expuestos a la luz directa del sol. Además, incluso si las temperaturas letales no se alcanzan, la rápida variación de la temperatura

puede causar estrés térmico a los anfibios.

Escapadas. ¡Planea las fugas! Si un anfibio escapa

en un cuarto seco, puede sucumbir rápidamente a la desecación.

Una solución es instalar uno o más sistemas "oasis" para el anfibio en el suelo de la habitación. Estos pueden ser tan simples como un contenedor de plástico sin tapa

de lado, y acolchado con musgo húmedo . Se recomienda que los oasis se ajusten a lo largo de la muralla, ya que los anfibios viajan a menudo en

el perímetro de un recinto (en este caso, la habitación).

5.5.5 Recintos para estanques acuáticos

Recinto Complejo para Estanque. El recinto del estanque es

apropiado para anfibios acuáticos adaptados a la vida en masas de agua relativamente tranquilas o de bajo caudal. Estos anfibios incluyen a las larvas que viven en los estanques, los anfibios neoténicos

salamandras que habitan en estanques, tritones acuáticos y ranas acuáticas (Xenopus spp. y Pipa spp.). Estos

a menudo las especies están inquietas en un acuario con importantes

movimiento del agua. El recinto que albergara a los anfibios requiere sólo una ligera modificación del acuario estándar para peces para

acomodar la necesidad de muchos anfibios El recinto básico y de bajo mantenimiento de la laguna (Figura

5.2, Placa 5.2) utiliza un filtro de subgravación con un sustrato de grava de unos 5 cm de espesor. El filtro puede ser

operado por un elevador aéreo. Alternativamente, un recipiente externo

se puede utilizar para crear una subgravación de flujo inverso del

filtro. El agua da salida del recipiente se envía al tubo de elevación, para desplazarse bajo el falso suelo y subir a través de la cama de grava. Esto difunde la corriente de agua de los alambiques.

habitantes del agua: El agua de retorno es aspirada de la columna de agua sobre la grava, en el lado opuesto

del tanque de la entrada del tanque. Es importante examinar el flujo de salida del tanque para que los anfibios no puedan ser atrapados por la fuerza de su succión. Un filtro

con una amplia superficie de superficie se recomienda para dispersar la fuerza de la absorción. El recinto debe incluir áreas poco profundas donde

los anfibios pueden descansar y tragar aire. Muchos anfibios acuáticos dependen en cierta medida de la respiración pulmonar

y puede ahogarse si no se le da la oportunidad.

Poco profundo

las áreas de descanso pueden ser creadas por flotadores robustos o emergentes vegetación, rocas lisas o maderas que sobresalen en un ángulo bajo fuera del agua, o corteza flotante. Para

algunas especies semiaquáticas, como la de América del Sur rana toro, Leptodactylus pentadactylus, es necesario proporcionar una gran área de tierra que bordea el agua para acomodar

su gama completa de comportamientos. Similar a otros hábitats de anfibios, los recintos acuáticos

debe incluir múltiples retiros oscuros. Estos, los refugios pueden ser hechos de rocas apiladas, sumergidas madera, o secciones de tubería de PVC. Un mínimo de un retiro

por anfibio, aunque se recomiendan más se pueden realizar retiros en todo el vivero

para permitir el acceso a un rango de temperaturas.

Figura 5.2. Vista lateral del recinto del estanque para anfibios. A. montaje de piso falso (ver Figura 5.1 B-D). B. capa de grava de

guisante aproximadamente

"2" (5 em) de espesor. C. cueva de roca submarina. D. tubo de elevación de aire sellado a la pared del tanque y suelo falso con

caucho de silicona (también sirve como acceso)

del puerto al subsuelo para desviar los escombros). E. agujero en la pared del tanque para la línea de aire y el cable del calentador;

alternativamente, se puede cortar un agujero en la pared del tanque.

tapa. F. (véase la figura 5.1 E-H). G. Calentador de acuario (para protección adicional, puede ser revestido con un tubo de PVC

perforado). H. anclado

isla de la corteza de corcho. I. planta acuática lo suficientemente alta y fuerte como para proporcionar una percha cerca de la

superficie del agua para los habitantes del tanque. J. línea de agua. K. tronco de madera dura emergente que proporciona un refugio subacuático y un área de descanso en aguas poco

profundas. L. de drenaje (véase la figura 5.1 KM).

(Sandy Barnett)

Recinto para estanque espartano. Puede ser necesario aislar

un anfibio en un simple tanque donde el contenido puede ser reemplazado o desinfectado regularmente.

los recintos pueden no tener sustrato, y sólo plástico plantas y tal vez tuberías de PVC para el enriquecimiento subacuático. Piezas flotantes de espuma de poliestireno, plástico

se pueden colocar estantes o plantas de plástico en el recinto para crear aguas poco profundas o áreas de descanso expuestas.

El sistema de descarga y llenado se puede utilizar para el mantenimiento del agua. en el tanque espartano. Un sifón o aspirador de agua debe utilizarse para eliminar todos los alimentos no consumidos y otros

escombros diariamente, y se recomiendan cambios parciales de agua regulares

para prevenir la acumulación de amoníaco y urea. La frecuencia de los cambios de agua y la cantidad de agua que debe ser intercambiado dependerá del volumen

de agua en el recinto y en el número, tamaño, y especies de anfibios que se mantienen. Como punto de partida se debe hacer un cambio de agua del 10% cada 2

días. El agua de cambio debe ser envejecida y traída a la la misma temperatura que el agua del tanque de la casa para evitar

choque químico y térmico a los anfibios. Se puede añadir una piedra de aire al tanque espartano para prevenir la acumulación de suciedad en la superficie del agua y

oxigenar el agua. Un filtro de esponja se puede utilizar para la filtración biológica, pero debe ser aumentada por cambios parciales de agua regulares y limpieza inmediata de

escombros gruesos, como heces o alimentos no consumidos. los filtros no pueden manejar altos niveles de amoníaco y son

más adecuados para pequeños grupos de pequeños anfibios, tales como como larvas de anuros y salamandras adaptadas para vivir en

estanques. Si un anfibio alberga o es sospechoso de

que alberga una enfermedad infecciosa, será necesario desechar periódicamente el filtro de esponja, ya que no puede estar completamente desinfectado. Sin embargo, los filtros de esponja

son relativamente baratos y fáciles de reemplazar. Tenga en cuenta que el filtro de esponja toma tiempo para alcanzar la máxima eficiencia en la filtración biológica, y frecuentes

reemplazos evitarán que esto suceda. Además, los organismos beneficiosos del filtro puede que se eliminen con algunos medicamentos en el agua.

Otra opción de filtración en el tanque espartano es un pequeño filtro en la caja del tanque que proporciona una..:

filtración mecánica y química, pero no es fuertemente suficiente para crear una corriente significativa. Dicho filtro se desinfectan fácilmente, y el material filtrante puede ser remplazado

al mismo tiempo. Sin embargo, los filtros de caja, como filtros de esponja, necesitan tiempo para alcanzar la máxima eficiencia, y la sustitución frecuente de todo el material filtrante evitará

que esto suceda. También, ¡el carbón activado elimina ciertos medicamentos del agua. No se recomiendan materiales porosos naturales en

el tanque de hospital espartano, ya que son más difíciles de

manejar y desinfectar. Si un anfibio está sufriendo

de una enfermedad infecciosa que es difícil de controlar. el recinto y todo el mobiliario deben ser eliminado y desinfectado después de cada tratamiento.

Hay algunas especies de anfibios excepcionalmente resistentes, como el axolotl, Ambystoma mexicanum,

y la rana de garras africana, Xenopus laevis,

que a menudo se mantienen con éxito durante mucho tiempo en recintos acuáticos relativamente espartanos.

Los recintos de estanques espartanos se utilizan a menudo para la cría. ranas larvarias que habitan en los estanques asta la metamorfosis. Plástico

plantas o plantas acuáticas vivas y resistentes que no requieren

Enraizamiento en el sustrato (como Elodea canadensis).

se puede añadir para proporcionar áreas de cobertura y descanso. las plantas también ayudarán a librar el agua de los daños orgánicos o

residuos. Algunos renacuajos se comen la vegetación, o las algas que crecen en él. Corteza de corcho, espuma de poliestireno, estantes de plástico, o una orilla inclinada puede servir como rellano

para nuevas metamorfosis, así como proporcionar cobertura y una superficie para el crecimiento de algas.

Estos tanques de viveros espartanos requieren más trabajo diario. Mas mantenimiento que un recinto montado con subgravación pero el suelo estéril del recinto espartano

puede facilitar enormemente la recuperación de renacuajos pequeños. En los tanques con fondo de grava, los renacuajos pequeños pueden ser muy difícil de atrapar, ya que buscan cobertura entremedio de

las rocas cuando se alarman. 5.5.6 Recintos de Arroyos Acuáticos

Recinto Complejo de Arroyo Acuático. El acuático

recinto de la corriente es adecuado para anfibios adaptados que viven en corrientes bien oxigenadas, por lo general frescas con una

corriente significativa. Las especies típicas incluyen sapos, Atelopus spp., la rana de cola, Ascaphus truei,

el maestro del infierno, Cryptobranchus alleganiensis, y las larvas de muchas salamandras que habitan en los arroyos y salamandras ribereñas, como las salamandras de los arroyos americanos, Eurycea

spp., las salamandras de primavera, Gyrinophilus spp, y la salamandra gigante del Pacífico, Dicampton ensatus.

El recinto básico con corriente (Figura 5.3) tiene un falso

suelo recubierto de grava, similar al recinto del estanque. El área profunda del arroyo debe tener una profundidad, con cuevas y grietas donde los ocupantes del tanque

pueden buscar refugio, así como las zonas de aguas poco profundas en las que el anfibio puede descansar y tragar aire. Dependiendo de la

especie, el agua puede ser poco profunda en todas partes, lo que permite el anfibio en cualquier punto alcanzar su cabeza hasta tragar aire mientras mantiene los pies en el suelo del arroyo.

También puede haber áreas de tierra expuestas, si es apropiado. para la especie. A diferencia del tanque del estanque, el recinto del arroyo tiene un

filtro de potencia de moderada a fuerte para agua rápida el volumen de fuerza o salida, Está configurado de tal manera que proporciona una filtración de

subgravación, además de llevar el agua a través de un sistema gracias al filtro de cartucho o cabezal motor.

Es preferible utilizar filtros de tipo canister en el exterior a los de tipo intank. en recintos de anfibios. Filtros exteriores hay menos trabajo que quitar y limpiar, y un apagado

en la manguera de suministro permite que el medio filtrante

pueda ser cambiado con un mínimo de perturbación a los

Figura 5.3. Vista lateral del recinto del arroyo para anfibios. A. sección transversal del tablero que soporta el borde del tanque,

inclinándolo hacia el

la salida del agua termina. B. montaje del piso falso (ver Figura 5.1 B-D). C. capa de gravilla de aproximadamente 5 cm (2") de

espesor. D. roca submarina

cueva. E. área de descanso en aguas poco profundas. F. cueva de roca parcialmente inundada. G. cascada. H. para repartir el flujo de agua. I. Salida de agua de

el filtro del frasco. J. en la pared del tanque lo suficientemente grande como para pasar el tubo del filtro del cartucho. K. (véase

la figura 5.1 E-H). L. golden pothos,

Epipremnum aureum, una vid robusta capaz de vivir "enraizada" en el agua y tolerante a grandes alteraciones radiculares. M. roca

emergente cubierta con hojas de musgo húmedas. N. entrada de agua al filtro del frasco. O. línea de agua. P. (véase la figura 5.1 K-M). (Sandy

Barnett)

animales. Adiciónado de un filtro de goteo en el agua de retorno

puede aumentar aún más la filtración y el oxígeno disuelto niveles: El flujo de salida del filtro de la lata se puede utilizar para

crear una cascada. Una cascada añade atractivo estético, puede proporcionar información adicional subacuática y terrestre en los hábitat para los animales, y ayuda a oxigenar y biológicamente

filtrar el agua. Una cascada también puede servir para canalizar o dispersar la fuerza de la corriente de agua, dependiendo de la configuración de la roca.

A muchos anfibios que viven en los arroyos les va mejor en los recintos

con una corriente. El maestro del infierno, Cryptobranchus

alleganiensis, parece preferir un recinto

que proporciona una corriente lo suficientemente fuerte como para ondular su pliegues de piel. El animal se balanceará de lado a lado si

no se suministra corriente, presumiblemente para oxigenar mejor

su piel para la respiración. Si se suministra una corriente

en un recinto, algunos de los refugios submarinos deben estar dispuestos perpendicularmente a la corriente

para que los animales dispongan de zonas de aguas tranquilas.

Si la toma de agua para el filtro de lata está localizada

por encima del sustrato, se debe tener cuidado de filtrar

de manera que los anfibios no puedan ser atrapados por

la fuerza de succión del filtro. Si es necesario recoger las heces

para el examen de parásitos, el filtro del frasco puede pararse

temporalmente, y el método de vertido y llenado para mantener la calidad del agua. Una bomba de aire fuerte puede se agregará temporalmente a la configuración, de forma similar a como es

usado en el tanque del estanque acuático, para mantener la limpieza en funcionamiento y en buen estado durante el tiempo de inactividad del filtro También se puede colocar una piedra de aire en el

cuerpo de agua principal para oxigenar aún más el agua. Si el

el filtro del frasco se deja apagado por más de unas pocas horas. debe descomponerse y limpiarse antes de volver a utilizarlo, ya que

las bacterias anaeróbicas crecerán y renderizarán el medio filtrante no apto para su uso.

Puede ser difícil encontrar plantas acuáticas que prosperen en un recinto de arroyo, debido a la fuerza del agua corriente y desarraigo por parte de los ocupantes del tanque. Dorado

pothos, Epipremnum aureum, un rastrero muy resistente puede ser anclada sin tierra a la roca emergente o una rama muerta, y se hundió en el agua.

no sólo filtrará la luz de techo si no que proporcionará comodidad para los ocupantes de los tanques, pero también ayudará a limpiar el agua, eliminando los desechos dañinos.

Anfibios adaptados para vivir en un hábitat de arroyo generalmente requieren agua que está altamente saturada con

oxígeno disuelto y contiene niveles indetectables de amoníaco o nitrito. Los habitantes de las corrientes son extremadamente sensibles a las toxinas y fluctuaciones del pH. Se recomienda

que las resinas absorbentes de amoníaco se utilicen en combinación con carbón activado en el filtro. Además, el agua parcial cambios (10-200/0 semanales) son altamente recomendables.

Los escombros grandes deben ser desviados diariamente. Recinto Spartan Stream. Una versión muy simplificada

del recinto del arroyo puede ser aconsejable. Tal que el recinto espartano no tiene sustrato. Tiene una roca simple o retiros de tubería de PVC, y un área de tierra hecha de material apilado

rocas, láminas de plástico o espuma de poliestireno. La calidad del agua es con un filtro de cartucho. Este tipo de cerramiento es Fácilmente desmontable para su limpieza y desinfección.

Hay muchas especies de anfibios que viven en los arroyos que lo hacen mal en una configuración espartana, incluso en una situación temporal.

Base: Larvas de la salamandra de montaña de los Pirineos, Euproctus asper, se mantiene mejor cuando se mantiene en un sustrato de grava que en un suelo estéril (Wisniewski,

1986). Posiblemente el sustrato permite que las larvas Puedan descansar en posiciones más ergonómicas que otras larvas, privadas d sustrato.

5.5.7 Recinto del Lado del Arroyo

El recinto del lado del arroyo es apropiado para los anfibios que viven en los márgenes de arroyos o estanques.

Estos anfibios son generalmente buenos nadadores, y algunos pasan mucho tiempo en el agua.

Otros se quedan en tierra o cerca de la orilla del agua, entrando Al agua sólo para reproducirse o viajar a otro lugar Los habitantes de los lados del arroyo incluyen el stubfoot

sapos, Atelopus spp., la rana verde, Rana clamitans, la rana toro, Rana catesbeiana (también adaptada a la vida en un hábitat de estanque), la rana peluda, Trichobatrachus

robusto, la rana de cola, Ascaphus truei, la rana americana salamandras de arroyo, Eurycea spp., las salamandras oscuras,

Desmognathus spp., las salamandras de primavera, Gyrinophilus spp. y el gigante del Pacífico salamandra, Dicamptodon ensatus.

El recinto básico del lado de la corriente (Placa 5.3, Figura5.4) i ncluye un arroyo y un área de tierra cubierta con musgo y/u hojas sobre un sustrato de grava. El recinto

debe ser lo más largo posible para acomodar diferentes aspectos de la corriente. El tamaño del arroyo

debe adaptarse al estilo de vida de las especies de anfibios que estan siendo alojados. Debe tener áreas de más rápido y agua de movimiento más lento, incluyendo rifles y relativamente

remolinos silenciosos. Si un anfibio tiene que luchar contra una

acorriente fuerte durante largos períodos de tiempo, puede agotarse. La profundidad del agua no debe exceder en ningún punto de

la altura de los hombros del anfibio, a menos que las especies en particular sea conocido por ser un nadador fuerte. En la cabecera del arroyo puede haber una cascada

formada por rocas apiladas. En algunos rincones el trabajo con roca puede proporcionar retiros fríos y húmedos para los anfibios. Un trozo ranurado de corteza de corcho se puede utilizar como

una base para los arroyos. El flujo de salida del filtro del frasco puede ser dirigido a la parte alta del corcho, y el agua puede

derramar el corcho en la piscina del fondo. Alternativamente, "cajas de huevos" y cribado de plástico pueden ser unidos entre sí para formar un canal para la corriente

Una combinación de roca de río grande y grava pequeña puede ser usado para rellenar el lecho del arroyo. La grava puede ser pegada a la caja de huevos con caucho de silicona para proporcionar

una estructura segura para el arroyo y grava suelta y se pueden añadir rocas para crear el agua deseada en

movimiento. Se pueden orientar grandes trozos de roca o madera en ángulo con la corriente para formar remolinos donde el movimiento del agua es mínimo. Una sección dividida de PVC

puede utilizarse para el mismo fin. El agua en el recinto del lado del arroyo debe estar bien oxigenado en todo momento, que será si la corriente y la corriente

son los contornos son apropiados. Idealmente, el área de tierra en el recinto del lado del arroyo incluye un gradiente de humedad que va desde saturado

cerca de la orilla del agua y de la cascada, para que

drenade pero aúna ligeramente húmeda, la más alejada de la de la corriente. Áreas pequeñas con hojarasca seca, pero no polvorienta, rocas secas o ramas caídas, y las plantas vivas servira para

diversificar las opciones de humedad disponibles para el anfibio. Vegetación viva, rocas, ramas, macetas, y

la corteza de corcho puede ser utilizada para crear retiros terrestres, al igual que así como refugios en aguas poco profundas. Estos últimos refugios

debe permitir que el anfibio descanse en agua no más profunda que la altura de los hombros, para que el animal pueda tragar aire sin hundirse en el agua.

Una parte de la vegetación debe ser plantada cerca y colgando de el arroyo para proporcionar cobertura y perchas, así como los lugares de oviposición de algunas especies de plantas terrestres.

y anfibios arbóreos.

5.5.8 Envolventes de Piso Forestal Terrestre

Recinto del Complejo del Piso del Bosque Terrestre. El

el recinto del suelo forestal terrestre es apropiado para

Figura SA. Vista lateral del recinto a la orilla del arroyo para anfibios. A. sección transversal del tablero que soporta el borde del tanque,

inclinándolo hacia

la salida del agua termina. B. montaje del piso falso (ver Figura 5.1 B-D). C. capa de gravilla de aproximadamente 5 em (2") de espesor.

D. húmedo

de hojas de musgo. E. planta viva, en maceta, con la base de la maceta apoyada en la rejilla de fibra de vidrio. F. riffle. G. Cascada que

corre sobre rocas apiladas

para crear retiros de grietas húmedas. H. la salida de agua del filtro del frasco. I. la conexión de la manguera para esparcir el flujo de

agua. J. Agujero en la pared del tanque

lo suficientemente grande como para pasar por el tubo del filtro del frasco. K. (véase la figura 5.1 E-H). L. área sucia. M. Plataforma de

alimentación de cavidades de corteza de corcho. N. Eddy.

O. la entrada de agua al filtro del frasco. P. línea de agua. Q. grava siliconada al tamizado de las cajas de huevos para formar el lecho del

arroyo. R. Conjunto de drenaje (ver

Figura 5.1 K-M). S. rama de madera dura. T. streamway. U. percha de roca. V. puente de corcho sobre aguas poco profundas, que

proporciona un refugio semiacuático.

w. hojarasca sobre hojas húmedas de musgo. (Sandy Barnett)

muchas especies de plantas terrestres y semiarborreicas

anuranos. Además, muchas especies de salamandra sin pulmones (Plethodontidae) y salamandra topo (Ambystomatidae)

lo hará bien en un ambiente terrestre. El recinto del suelo forestal terrestre (Placa 5.4, Figuras 5.5, 5.6) tiene un sustrato de grava, con la tierra

En un area cubierta por una capa de musgo húmedo, hojarasca, mantillo de madera dura, podredumbre de la madera y/o tierra. Es posible que sea un estanque poco profundo o un recipiente de agua para las especies que utilizan

aguas estancadas, pero muchos cacilianos terrestres y las salamandras tienden a evitar el agua estancada y

pueden ahogarse si quedan atrapados en aguas más profundas de lo que son. El recinto del suelo forestal terrestre se enriquece de forma similar

al área de tierra del vivero de la orilla del arroyo (ver Sección 5.5.7, Recinto del Lado del Arroyo). El cuidado debe ser no sobreplantar el recinto terrestre. Mientras

los anfibios requieren cierta cobertura, es posible plantar el follaje tan denso que los animales tienen dificultad

encontrando y capturando presas, o gastan demasiada energía en la cacería. El resultado final es que los anfibios tienen un peso inferior al normal, un vivero lleno de comida viva no consumida y sus

excrementos, y en el caso de algunos insectos de la comida, puede haber una gran cantidad de plantas dañadas por insectos! Por otro lado, un recinto que tiene muy poca vegetación puede dejar a los anfibios

Sentirse expuesto y excesivamente estresados. Recinto Terrestre Espartano. Hay algunas especies terrestres

anfibios que pueden ser mantenidos durante mucho tiempo en recintos espartanos. La mayoría de las salamandras son

algo sedentario en la naturaleza, y muchas terrestres de las especies prosperan en configuraciones tan simples como en cjasde plástico enriquecidas con papel húmedo y arrugado

de toalla (Maruska, 1994) o placas de petri que contengan

varias capas de papel de filtro húmedo (Jaeger, 1992).

Figura 5.5. Vista lateral del recinto terrestre para anfibios. A. sección transversal del tablero que soporta el borde del tanque,

inclinándolo hacia

el desagüe. B. montaje del piso falso (ver Figura 5.1 B-D). C. capa de gravilla de aproximadamente 2.5-5 cm (1-2") de espesor. D.

musgo de hoja húmedo. E. planta viva, en maceta, con la base de la maceta apoyada en la rejilla de fibra de vidrio. F. cabaña de plástico oscuro. G. (véase la

figura 5.1 E-H). H. corteza de corcho

plataforma de alimentación de cavernas. I. el borde volcado de la rejilla de fibra de vidrio del piso; proporciona una ruta de

escape para los insectos de la comida que caen en la piscina y

nadar o flotar hasta la pared de cristal. J. piscina poco profunda. K. línea de agua. L. (véase la figura 5.1 K-M). M. hojarasca

sobre hojas húmedas de musgo.

(Sandy Barnett)

Figura 5.6. Vista de la sección transversal de las capas de sustrato en un sistema terrestre

del recinto. (George Grall, Acuario Nacional de Baltimore)

5.5.9 Recinto terrestre para fósiles

El recinto fósil terrestre es apropiado para los cacilianos terrestres, muchas de las salamandras topo,

Ambystoma spp., algunas de las salamandras sin pulmones (familia Plethodontidae), las ranas de tomate, Dyscophus spp. y los sapos spadefoot (familia

Pelobatidae). El diseño básico de un vivero terrestre es apropiado

para los anfibios fósiles, aunque estos últimos, los animales necesitan una base de suelo profunda de al menos 10 cm (4 in) para excavar (Figura 5.7). El área de la piscina puede ser bastante

pequeñas o eliminados por completo, a menos que la especie necesita una gran piscina para la cría. Es mejor utilizar un recinto que maximice el uso del suelo.

La altura del vivero de fósiles tiene que ser sólo un poco más alto que la profundidad del suelo. A 76 L

(20 galones) acuario largo, funciona bien para una cría de grupo de especies de tamaño mediano, como el jaspeado salamandra, Ambystoma opacum, aunque más grande

especies como el caciliano mexicano Dermophis mexicanus, debe ser alojado en un depósito de 114 L (30 galones)

Acuario Criador

Es esencial que exista un gradiente de humedad

en todo el recinto fósil, con un extremo del tanque que tenga un suelo más seco que el otro, y el fondo siendo el suelo más húmedo que el suelo de la superficie. Este

permitirá que el anfibio busque una solución apropiada un microambiente. La manera más fácil de configurar este entorno

es usar un acuario largo, e inclinarlo a lo largo con un ladrillo o tabla bajo el extremo superior. Apoye siempre el peso de un vivero de cristal en el

y no en el propio cristal, para evitar que se produzcan roturas del vidrio o aflojamiento de las juntas. El Agua se añade sólo en el extremo inferior de la caja.

Esto crea un gradiente de tierra húmeda a seca desde el de abajo hacia arriba.

Es esencial tener un suelo bien drenado y un suelo libre de obstrucciones. para que el agua no se acumule en las

madrigueras. Para evitar que la cama de grava se obstruya con

suciedad, se puede colocar una capa de apantallamiento de ventanas entre la grava y el sustrato.

Muchos anfibios fósiles son bastante fuertes para su tamaño y pueden empujar fácilmente y abrir una puerta mal asegurada.

tapa de la jaula. Se recomienda que la tapa tenga un cierre mecanismo, o ser cargado con un ladrillo, o objeto comparativamente pesado.

Las especies fósiles, por su naturaleza, pasan gran parte de su tiempo bajo tierra, fuera de vista. Una estrategia para incrementar su valor de visualización, al mismo tiempo que permite

que muestren un comportamiento normal de madriguera, es grava en un montículo alto en el centro del reciento. y colocar un foso de tierra profunda alrededor del perímetro,

rellenando el espacio entre el montículo de grava y el de las paredes del vivero. Esta configuración permite al anfibio

construir madrigueras que sean visibles en el recinto.

sección. Se debe colocar plástico negro o papel oscuro

Figura 5.7. Vista lateral del recinto fósil para anfibios. A. sección transversal del tablero que soporta el borde del tanque,

inclinándolo hacia

el desagüe. B. montaje del piso falso (ver Figura 5.1 B-D). C. capa de gravilla de aproximadamente 2.5-5 em (1-2") de espesor.

D. tierra por lo menos 10 em (4

en) profundo. E. madriguera hecha por un anfibio fósil. F. hojarasca. G. clip para asegurar la tapa contra escapes. H. planta viva, en maceta, con la base

de la maceta que descansa sobre la pantalla de fibra de vidrio. I. Tapa estándar de una sola pieza blindada del acuario/vivario. J. corteza de madera dura o corteza de corcho. K. húmedo

de hojas de musgo. L. Una sola capa de fibra de vidrio en las ventanas para evitar que el suelo que recubre la ventana obstruya la

capa de grava que se encuentra debajo. M. Conjunto de drenaje

(ver Figura 5.1 K-M) (Sandy Barnett)

sobre la pared de la madriguera para mantener un ambiente oscuro

cuando el vivero no está siendo observado. Un montón de tierra cubierta en forma de hojas muertas, rocas planas, corteza, macizos de musgo esfagno u hoja

se recomienda el uso de musgo para que los anfibios fósiles puede forrajear en la superficie del suelo pero permanezca bajo el agua cubierta. Pequeñas secciones de termoplástico (por ejemplo, plexiglás)

puede ser colocado en la superficie del suelo, en el que un anfibio puede usar para cubrirse cuando está en la superficie.

El termoplástico de color oscuro es necesario para muchas salamandras. para sentirse seguro, pero los caecilianos tienen tan pobre vision que el plástico transparente puede ser usado para estas madrigueras.

Los tubos de PVC con bordes redondeados se pueden hundir en ángulo

en el suelo para proporcionar madrigueras ya hechas. Una mirada transparente a la madriguera se puede hacer cortando el tubo a lo largo y colocando el lado abierto hacia arriba contra el

vidrio. Muchas salamandras de ambystomid fácilmente usarán estas estructuras. Las plantas vivas generalmente tienen una mala relación con los anfibios fósiles;

la actividad de excavación interrumpe constantemente el sistema radicular. Pothos dorados, Epipremnum aureum,

y Cordatum philodendron, Philodendron

oxicardium, se encuentran entre las plantas resistentes que manejan

tales disturbios. Si otras plantas van a ser plantadas

es mejor mantenerlos en sus macetas. Una capa se puede poner en ella grava en la parte superior de cada maceta para desalentar cuando excaben.

Otra forma de añadir verdor a una jaula fósil es usar un registro de epífitas. Su construcción se describe por de Vosjoli (1995). Básicamente, el tronco epifítico es un rollo

de corcho o una rama de madera dura adecuada cubierta con epifitas de diferentes tamaños y formas.

El recinto fósil puede ser usado para motivar ciertos anfibios, como sirenas, Siren spp. y sapos de patas largas (familia Pelobatidae). La capa de suelo

debe ser profunda, de más de 30 cm (12 in), y debe ser humedecido a fondo. La caja se puede dejar que se seque para que la superficie del suelo se desarrolle

grietas de la sequedad. la formación de especies creará una cámara de nido y estivan a través de este período de sequedad. Humectación de

el suelo volverá a sacar a los anfibios de la estivación. Después de que la tierra se haya humedecido unos días,

los anfibios terrestres enterrados pueden ser desenterrados y permitirles rehidratarse en un baño poco profundo. Los Anfibios acuáticos pueden ser devueltos a su recinto acuático normal.

5.5.10 Recintos arbóreos

Recinto Arbóreo Complejo. El diseño básico para

un vivero de suelo de bosque terrestre es apropiado para arboricultura de anfibios, aunque el recinto arbóreo debe ser lo más alto posible y estar provisto de

plantas y ramas. Los Acuarios hexagonales que son especialmente adecuados para este fin están disponibles en un

variedad de tamaños. Los recintos arbóreos pueden ser muy complejos, asumiendo la aparición de un bosque ricamente estratificado, con

ramas cubiertas de musgos y plantas epifitas, vegetación terrestre, y una piscina. La parte de atrás y los lados las paredes pueden estar cubiertas con láminas de corteza de corcho o de corcho tropical

helechos y plantados con vegetación más epifítica, o trepar por las enredaderas. Se fomenta el crecimiento de las paredes por goteo de agua a través de la pared con una recirculante

bomba, cabezal motor o filtro de cartucho. Una carcasa mucho más sencilla que satisface las necesidades de los clientes.

las necesidades de los anuros arbóreos se ha utilizado con éxito

durante años en el Acuario Nacional de Baltimore (Placa 5.5, Figuras 5.8, 5.9). Consiste en una grava y substrato recubierto de musgo húmedo en láminas. Uno o dos

plantas grandes en maceta, por lo general una especie de hoja ancha de Agleonema, están parcialmente enterrados en la grava. las plantas llenan la mayor parte del espacio vertical abierto en el

del recinto. Una o dos ramas de madera dura, con una fuerte inclinación horizontal, proporciona una inclinación arbórea

perchas para los anfibios, pero algunas inclinadas verticalmente también deben estar disponibles. En el suelo de la jaula, hay una piscina o agua poco profunda

tazón de fuente. Un pequeño pothos dorado, Epipremnum aureum,

o el lirio de la paz, Spathiphyllum sp., puede ser plantado al lado del agua para cubrir a los animales.

La sección de agua del vivero arbóreo no es profundo. Una profundidad de agua de 2.5 em (1 in) es adecuada.

Deberán utilizarse plantas de hoja ancha si el desove va a ser en las hojas si anuros que se alojarán en el recinto. Desde que algunos anuros depositan en hojas que sobresalen del agua,

se debe tener cuidado de ubicar las plantas cerca del agua o borde. Algunos anuros arbóreos (por ejemplo, la rana arbórea del reloj de arena,

Hyla ebraccata, y la rana de hoja de lado naranja, Phyllomedusa hypochondrialis) duerme fácilmente sobre la pared interior lisa de los retiros de plástico oscuro o

contenedores. Aunque estos refugios no son particularmente atractivos, hacen que sea rápido y fácil de inventariar y

monitorear ranas que de otra manera podrían ser difíciles de encontrar durante su período de sueño. Recinto Arbóreo de Cliffside. Muchas grietas en la vivienda de los

anfibios, como la salamandra verde, Aneides

Eneus, y algunas de las delgadas salamandras, Batrachoseps

spp. Que no son arbóreas, y lo hacen mejor en un recinto alto

con paredes de roca altas en lugar de corcho u otro material vegetal. Las rocas deben estar firmemente fijadas entre sí

con caucho de silicona o un impermeable no tóxico y apilados de tal manera que haya una variedad de grietas para servir como retiros. Un ligero goteo en

una cara de la superficie de la roca creará un gradiente de humedad que pueden fomentar la reproducción en esas zonas (similares

a las condiciones de la naturaleza).

Figura 5.8. Vista lateral del recinto arbóreo para anfibios. A. sección transversal del tablero que soporta el borde del tanque, inclinándolo

hacia

el desagüe. B. montaje del piso falso (ver Figura 5.1 B-D). C. capa de grava de aproximadamente 2.5-5 em (1 a 2") de espesor. D.

Roca perca. E. húmedo

de hojas de musgo. F. corte la rama de madera dura o la vid robusta sin bordes ni puntas afiladas. G. planta viva, en maceta, con la base

de la maceta apoyada en

la pantalla de fibra de vidrio. H. (véase la figura 5.1 E-H). I. pooL superficial]. borde volteado hacia arriba de la rejilla del piso de fibra

de vidrio; proporciona una ruta de escape.

para los insectos de la comida que caen en la piscina y nadan o se dirigen a la pared de vidrio. K. nivel del agua. L. (véase la figura 5.1 K-M). (Sandy

Barnett)

Recinto arbóreo espartano. Una versión espartana de

el terrario arbóreo ha sido utilizado con éxito en el zoológico de Filadelfia para albergar algunas especies de anfibios

durante la cuarentena y durante el período de ciertos tratamientos médicos. El piso del tanque está cubierto con toallas de papel húmedas. El enriquecimiento se limita a un

tazón de agua y tiras de plástico mylar o plantas de plástico colgadas de las paredes. Los anfibios pueden esconderse detrás de las tiras de plástico o las plantas de plástico, aferradas a las

paredes o plástico. Una tira oscura de plástico se cuelga en el fuera de una pared del recinto para bloquear la luz.

Cría de la rana de cruz de Nueva Granada,

Smilisca phaeota, ocurrió en tal recinto. 5.6 CONTROL AMBIENTAL Temperatura, humedad, precipitación e iluminación son parámetros ambientales que afectan profundamente

la salud de un anfibio, así como su comportamiento, y éxito reproductivo. El éxito de la cría depende

en el control de estos parámetros para producir la función equivalente al microhábitat natural del anfibio en cautiverio. El ambiente de cautiverio debe

incluir cualquier fluctuación diaria de estos parámetros encontrados por el anfibio en la naturaleza. Para muchas especies de anfibios, puede ser necesario

simular las fluctuaciones estacionales de ciertas

Figura 5.9. Vista lateral de un recinto alto para anfibios arbóreos

que muestran patrones apropiados de circulación de aire (después de Stettler, 1981).

Incluso los viveros altos pueden ventilar bien con la colocación adecuada de

orificios de ventilación/paneles para crear corrientes de aire cruzadas. A. Desagüe. B.

montaje falso en el suelo (véase la figura 5.1 B-D). C. piedra de aire conectada

a una bomba de aire exterior del acuario. D. pool. E. Ventilación con rejilla

agujeros en una pared del recinto, a un nivel bajo (alternativamente, un

La bomba de aire del acuario se puede utilizar para añadir aire fresco en la parte baja del recinto).

F. aire caliente y húmedo que se eleva desde el agua caliente o la masa terrestre

(por ejemplo, calentado por un calentador sumergible de acuario, calentamiento por debajo del tanque).

o cinta adhesiva, o cable calefactor enterrado). G. frente del recinto con

una puerta de acceso corrediza o con bisagras. H. techo blindado. I. Ventilación

agujeros en el capó del vivero para que el aire caliente escape. J. Campana de vivero

sosteniendo fluorescentes y focos. K. aire ventilado. L. pequeña ventilación

ventilador en el interior del capó. M. el cribado de cajas de huevos blancos para reducir el resplandor de

luces de arriba. N. higrómetro/termómetro. O. masa terrestre. P. agujero

en la pared para las líneas eléctricas y de aire. Q. Grava de guisante. (Sandy Barnett)

variables ambientales para estimular los ciclos reproductivos.

Esto incluye condiciones apropiadas para la hibernación o estivación en muchas especies templadas. Sin embargo,

la eliminación de estos ciclos de inactividad no dañan a los anfibios mismos. De hecho, la creación de

condiciones adecuadas para la hibernación o la estimulación, y

asegurándose de que los anfibios estén preparados físicamente para manejarlo puede ser difícil, y estos arreglos es mejor dejarlos en manos de herpetocultores experimentados.

Información sobre las condiciones climáticas en los alrededores del mundo (temperatura, humedad, viento, precipitaciones) está disponible en el disco de la computadora (WeatherDisc Associates,

1995). La biblioteca de la Comisión Nacional de Oceanografía y Administración Atmosférica en Silver Springs, MD (3011713-2600 ext. 124) enviará por fax una cantidad limitada

de estos datos climatológicos a cualquier persona que llame sin costo alguno. Muchas bibliotecas públicas y universitarias también tienen acceso

a este material. Estos datos pueden ser útiles para configurar condiciones apropiadas en el ambiente de cautiverio. 5.6.1 Temperatura

La temperatura óptima del aire en un recinto de anfibios dependerá de la especie que se esté alojando y

en el lugar de origen del espécimen. Tiempo aproximados, gradientes espaciales de temperatura sugeridas que se presentan en los anfibios terrestres postlarvales

según el tipo de hábitat: tierras bajas tropicales especies 24-30°C (75-85°F); tropical montano

formas 18-24°C (65-75°F); formas subtropicales 21-27°C (70-80°F); y formas templadas, verano 18-24°C (65-75°F), hibernación invernal 10-16°C

(50-60°F). Estos rangos son sólo guías aproximadas, y las temperaturas pueden necesitar ser ajustadas más altas o menor dependiendo de la respuesta de un anfibio en particular

a las temperaturas proporcionadas. La temperatura óptima del agua en un anfibio acuático, el recinto dependerá de la especie a la que pertenezca

alojados y en el lugar de origen del espécimen. Aproximado

gradientes de temperatura temporal-espacial sugerido para mantener a los anfibios adultos y larvarios acuáticos que presentan según un amplio hábitat

tipo: especies tropicales de tierras bajas 24-30°C (75-85°F), especies montanas tropicales 18-24°C (65-7 5°F), subtropicales especies 21-27°C (70-80°F), templadas

especies de arroyos en verano 16-21°C (60-70°F), y especies de estanques templados en verano 18-24°C

(65-75°F). La mayoría de las especies templadas de anfibios acuáticos experimentan una caída de 9°C (15°F) o más en el invierno, por lo que puede ser necesaria una unidad de enfriamiento. Alternativamente,

toda la habitación se puede enfriar con aire acondicionado. Estos rangos son sólo guías aproximadas, y las temperaturas pueden necesitar ser ajustadas más altas o

menor dependiendo de la respuesta de un anfibio en particular a las temperaturas proporcionadas.

Algunos anfibios se someten a un cambio diario de temperatura o preferencia. Las especies diurnas pueden buscar temperaturas más bajas durante la noche, mientras que las especies nocturnas pueden buscar las

temperaturas durante el día. Cuando se colocan en un lugar-

mal gradiente en el laboratorio, el mudpuppy, Necturus

maculoso, una especie completamente acuática, nocturna

especies activas, selecciona temperaturas considerablemente más altas por la noche que durante el día (Hutchison y Spriestersbach, 1986).

Un termómetro de máximo-mínimo debe estar en los puntos más cálidos y frescos del recinto, en todo momento para asegurarse de que la temperatura diaria

(temporal y espacial) es apropiado. Termómetros digitales de máximo-mínimo, con control remoto. para una segunda ubicación, están disponibles en

algunas tiendas de electrónica/aparatos (por ejemplo, Dual Display Termómetro de interior/exterior, Cat. No. 63-1020, Radio

Shack, Ft. Worth, TX) así como a través del laboratorio y compañías de suministros herpetológicos. Algunos modelos también incluyen un higrómetro para medir la humedad relativa.

En las Especies de anfibios de tierras bajas tropicales y subtropicales normalmente pueden ser mantenidos y criados a una temperatura adecuada temperatura constante durante todo el año. Sin embargo, muchos

se estimulan, estas especies templadas de anfibios para reproducirse sólo después de un período de hibernación en

temperaturas más frescas. Gotas estacionales de 6-8°C (10-8°C) 15°F) o más pueden ser necesarios para inducir el ciclo de la atrofia de la gónada y el recrudecimiento necesarios para

la cría. Los anfibios controlan su temperatura corporal mediante los mecanismos conductuales como los fisiológicos (para

una reseña, ver Duellman & Trueb, 1986; Stebbins &

Cohen, 1995). El control de la conducta implica movimiento de un lugar a otro dentro de la temperatura

mosaico del entorno y ajustes posturales que aumentan o disminuyen el contacto con el medio ambiente

fuentes de temperatura. Control fisiológico

incluye el cambio de la tasa y la cantidad de pérdida de agua por evaporación de la piel, cambios en la piel color para afectar la absorción y la reflectancia de los rayos solares

radiación, y posiblemente vasodilatación periférica y constricción. Para muchas especies de anfibios, un gradiente térmico

dentro del recinto es deseable en la mayoría de los casos. para que los animales puedan termorregularse. En

en la mayoría de los casos, la zona más cálida no debería ser más de 5-8°C (10-15°F) por encima del área más fría del gabinete. El calentamiento del sustrato se puede lograr utilizando

una almohadilla térmica de bajo voltaje, o una calefacción flexible (véase Fogel, 1993, para una revisión de la calefacción. equipo). Las"rocas calientes" eléctricas son demasiado calientes para

anfibios y nunca deben ser utilizados. Para las regiones templadas de dichos anfibios, el gradiente térmico en el recinto puede

ser reducido en magnitud o eliminado durante la hibernación invernal. Tomar el sol parece ser importante en la temperatura corporal

la regulación en algunas especies de anfibios (para ello

véase Stebbins & Cohen, 1995). Tomar el sol puede

tiener lugar a la luz directa del sol, o debajo de rocas u otros

materiales calentados por el sol. Muchos recién metamorfoseados los anuros parecen especialmente propensos a sentarse en el sol cuando hay humedad adecuada en el sustrato o la

oportunidad de entrar rápidamente en el agua para compensar la pérdida de agua por evaporación. Juveniles del verde

sapo, Bufo debilis, aceleran la alimentación, digestión y

crecimiento elevando su temperatura corporal a través de tomar el sol (Seymour, 1972). Un punto de asoleamiento puede ser proporcionado por un bajo voltage

o un foco incandescente. El primer tipo de lámpara no produce luz visible y

es preferible cuando se necesita calefacción nocturna, o donde el anfibio asoleado es fotofóbico. Incandescentes, las luces son preferibles para uso diurno con

especies de anfibios que normalmente se asolean a la luz del sol. Los lagartos heliofílicos pueden ser confundidos por combinaciones antinaturales de luz y temperatura (por ejemplo, luz brillante

con bajas temperaturas) y no logran termorregularse (Sievert & Hutchison, 1991). Es posible

que los anfibios asoleados podrían experimentar la misma dificultad. Se debe tener cuidado de que cualquier luz que genere calor

no seca demasiado el aire. Además, es importante que los anfibios no entran en contacto directo con la fuente de calor, lo que podría causar desecación y problemas térmicos

quemaduras; sin embargo, los tubos fluorescentes emiten sólo pequeñas cantidades de calor (a diferencia de la unidad de arranque, que puede llegar a ser bastante caliente). Las ágiles ranas arbóreas a menudo descansan en la luz

presumiblemente por el calor. Esto no se sabe si puede ser perjudicial para estos anfibios. Es mejor proteger

la unidad de arranque con cribado, o utilizar un mando a distancia

situado fuera de la jaula. Se utiliza dentro del recinto, sin embargo, la unidad de arranque puede servir como fuente de calor ambiental.

Requisitos de calefacción para las especies acuáticas y el de las larvas de las especies terrestres se cumplen fácilmente con los estándares calentadores de acuarios. Una forma sencilla de prevenir que el

anfibio pueda entrar en contacto directo con el calentador es poner una sección de tubería de PVC. Los agujeros deben ser

perforados en la tubería para mejorar el flujo de agua a través de ella. La tubería debe ser lo suficientemente pequeña en diámetro para mantener el anfibio hacia fuera, pero lo suficientemente grande para que la calefacción

no toca la pared interior de la casa. También hay disponibles tubos de plástico transparente, aunque más más caro que la tubería de PVC, y tienen la ventaja de que

la luz indicadora del calentador se puede ver sin obstrucciones. Estos tubos transparentes deben pedirse a

empresas proveedoras de especialidades plásticas. Los calentadores de acuarios también se pueden utilizar para añadir calor a recintos terrestres que tienen un estanque o arroyo.

Una vez más, el calentador se debe enfundar en un pedazo de tubería de PVC altamente perforada o de plástico transparente, o de otro modo que los habitantes de la jaula no puedan directamente tener

contacto con el elemento calefactor.

5.6.2 Humedad

La humedad en un recinto de anfibios debería Coincidir con las del microhábitat natural de la especie. La Humedad

se controla generalmente ajustando el importe de ventilación, y variando la cantidad de agua que se añade a la jaula y se libera al aire.

Una botella de spray con bomba se puede usar varias veces al día para aumentar la humedad, pero el efecto cada vez es temporal.

Reducir la cantidad de ventilación en un recinto, cubriendo una hoja de plástico sobre la parte superior, para que por ejemplo, aumentará la humedad. Pero también puede

crear una atmósfera estancada, reduciendo los costes térmicos y de gradientes de humedad, y el aumento de los anfibios a la susceptibilidad de las enfermedades (Baetjer, 1968). Además, muchas

las especies de plantas no prosperan en ambientes mal ventilados. Una forma eficaz de aumentar la humedad sin reducir

la ventilación es crear áreas de agua en movimiento. instalar una cascada o un arroyo, o poner una piedra de aire en una piscina o un tazón de agua. Las plantas vivas también ayudarán a

aumentar la humedad. Los viveros altos son especialmente propensos a la acumulación de aire estancado cerca del fondo. Dichos recintos

a menudo tienen muy poca temperatura y humedad gradientes, debido a la falta de circulación de aire. Una Refrigeración pequeña

como los que se utilizan para refrigerar ordenadores, puede colocarse en la parte superior del tanque para dar la vuelta al aire. Los ventiladores deben ser dirigidos hacia abajo, hacia

una pared interior del recinto, con el objetivo de reducir al mínimo

cualquier flujo de aire fuerte sobre los anfibios

a sí mismos. Alternativamente, los orificios de ventilación pueden ser perforados en una pared inferior del tanque para crear una cruz (véase la figura 5.9). La fuerza de la corriente de aire

se puede aumentar mediante la instalación de un pequeño ventilador de cara hacia arriba en la parte superior del recinto, de modo que arrastre aire a través del vivero.

La mayoría de las especies de anfibios no acuáticos pasan una gran parte de su tiempo en microhábitats protegidos

donde la humedad relativa es alta. Incluso las especies encontradas en macrohábitats séricos pueden pasar gran parte de su tiempo en madrigueras o bajo rocas donde la humedad

los niveles son altos. Los patrones de actividad pueden verse afectados por los niveles de humedad. Por ejemplo, la selva tropical dendrobatidae las ranas exhibirán altos niveles de actividad sobre un sustrato húmedo

en alta humedad, pero buscará refugio como humedad si los niveles bajan. Una humedad relativa superior a 700/0

se adapta a la mayoría de las especies de anfibios. Sin embargo, es mejor para proporcionar una gradiente de humedad dentro del recinto, para que un anfibio pueda buscar su microambiente preferido.

Algunos anfibios (por ejemplo, la rana arbórea cerosa,

Phyllomedusa sauvagii, la rana mono gigante, Phyllomedusa

hieolor) desarrollará problemas de la piel si continuamente estan

expuestos a una alta humedad y de hecho, se adapten a gastar al menos una parte de su ciclo diario

en un ambiente de baja humedad. Un área de menor humedad se puede establecer utilizando focos de baja potencia

sobre parte del recinto durante el día. Los refugios deben estar disponibles a lo largo de toda la humedad.

en un recinto, de modo que un anfibio no es obligado a elegir entre la seguridad y el encuentro fisiológico necesidades.

Si se puede dedicar una sala para alojar anfibios,

se puede instalar un humidificador de área. El cuidado debe ser de la limpieza y desinfección de la unidad semanalmente, ya que

puede albergar y propagar bacterias potencialmente patógenas y hongos (Hunter, 1989). Una solución de 120 ml (4

fl oz) de vinagre blanco y 946 ml (1 qt) de agua.

para disolver los depósitos minerales y limpiar los (Pinkham & Higgenbotham, 1976). Esto debe ir seguido de un baño desinfectante o

aerosol de hipoclorito de sodio (lejía) a una dilución de

30 ml (1 onza líquida) de blanqueador por cada cuarto de galón (946 ml) de agua.

La solución debe dejarse en las partes del humidificador.

durante al menos 15 minutos, luego enjuague bien con agua dulce (Wright, 1993).

En cuanto a la ventilación en el local, 1-2 aire los cambios por hora deben proporcionar un nivel satisfactorio de ventilación sin dejar de mantener una humedad adecuada

para los anfibios (Pough, 1992).

5.6.3 Precipitación

La precipitación es un desencadenante esencial para el comportamiento reproductivo en muchas especies de anfibios (para una revisión, ver Duellman & Trueb, 1986; Stebbins & Cohen,

1995; Zug, 1993). Para los anfibios tropicales terrestres, a menudo es el inicio de la temporada de lluvias después de la

la estación seca que estimula el comportamiento reproductivo. Inundación (asociada con la lluvia) y unas gotas de agua provoca un comportamiento reproductivo en muchos países tropicales.

especies terrestres acuáticas y reproductoras de arroyos. Y entre muchas especies templadas, la hibernación termino por las lluvias de primavera es a menudo el estímulo para la reproducción.

Simular estas señales ambientales en una cautiva es esencial para propagar con éxito muchas

especies de anfibios. Wright (1994) discute varias opciones para la construcción de "cámaras de lluvia" para anfibios reproductores.

El recinto anfibio básico de NAIB puede ser modificado para proporcionar duchas de lluvia. El flujo de salida de El filtro es desviado a una bandeja perforada colocada

sobre la parte superior de la jaula. La intensidad de la lluvia la ducha se controla por el número de agujeros en el

y la velocidad del flujo de agua. El objetivo es tener una lluvia suave sobre una porción del tanque, permitiendo que el anfibio pueda evitarlo si así lo desean. (Este patrón

de la lluvia también proporciona un área más seca donde los alimentos vivos los insectos pueden congregarse, lo que minimiza las pérdidas de insectos

por ahogamiento.)

Si se retira el material filtrante del frasco,

y la unidad se utiliza estrictamente para mover el agua, puede ser

programada en un temporizador para que llueva automáticamente sobre la caja, según sea necesario. Un temporizador no debe ser usado con un filtro cargado.

de lata, ya que el sistema se volverá anaeróbico si el flujo de agua se interrumpe durante más de un minuto. unas pocas horas, la bacteria nitrificante morirá.

5.6.4 iluminación

La iluminación adecuada para la salud y la reproducción

el éxito en los anfibios en cautiverio es un tema de mucho debate. Un enfoque conservador, y el que es recomendada aquí, es proporcionar una iluminación que imita,

lo más cerca posible, las características espectrales, la intensidad, y la duración de la luz encontrada en los anfibios

hábitat natural. Hay numerosas marcas de luces fluorescentes en el mercado que pretende ser de "espectro completo", es decir, para

duplicar el espectro de la luz solar natural. la particular preocupación del herpetocultor es la emisión de luz en la porción ultravioleta B del espectro

(285-320 nm). Es bien sabido que la radiación ultravioleta B

desempeña un papel clave en la biogénesis de la vitamina D3 en la piel expuesta de los vertebrados endotérmicos (Holick, 1989). Hay pruebas de que esto también es cierto

para al menos algunas especies de reptiles (Allen, 1989) y anfibios (St. Lezin, 1983). Como precaución contra la deficiencia de vitamina D3 y sus complicaciones, la mayoría de los herpetocultores

utilizan una iluminación de espectro completo (que emite radiación ultravioleta B) sobre ciertos anfibios, además de

para fortificar la dieta con esta vitamina como parte de un multivitamínico, programa de suplementación multimineral. Desafortunadamente, la cantidad de radiación ultravioleta B

emitido por muchos de los fluorescentes de espectro completo especialmente durante un largo período de tiempo, es sospechoso. Se recomienda que cualquiera que sea el espectro completo

se recomienda que las luces, se sustituyen cada 6-12 meses. Además, las luces no deben colocarse más

de 46 cm (18 in) del suelo de la jaula, ya que la intensidad de las emisiones se reduce rápidamente al aumentar la distancia de la fuente. En la NAIB, al menos dos personas de 4-

pies (122 cm) de tubos fluorescentes "Instant Sun" (Verilux, Stamford, CT) se colocan sobre todos los recintos de anfibios aproximadamente 8 cm (3 in) por encima de la malla o

tapas. Algunas otras bombillas han sido fabricadas y que se han distribuido recientemente y que emiten una mayor proporción de su salida como radiación ultravioleta B (por ejemplo, ReptiSun

310@, ZooMed, San Luis Obispo, CA; Reptile DLight, 8% Tipo, Ultraviolet Resources International,

Cleveland, OH) (Gehrmann, 1996), pero no hay antecedentes a largo plazo para su uso con anfibios

Debe señalarse que muchos de los "espectro completo" y filamento de tungsteno de "amplio espectro" incandescente de las lámparas actualmente en el mercado no producen rayos ultravioletas.

B (Gehrmann, 1992) o niveles muy bajos de radiación radiación ultravioleta B (Gehrmann, 1996). Estas

luces son útiles para proporcionar luz visible y calor, pero su modesta producción de luz ultravioleta, ya sea ultravioleta. A o radiación ultravioleta B, hace que su papel

en la biogénesis de la vitamina D es cuestionable. Un radiómetro que mide la emisión ultravioleta B y una que mide la emisión ultravioleta: actualmente está disponible.

en el comercio de mascotas, pero es algo caro (ZooMed, San Luis Obispo, CA). Estos radiómetros no pueden

separar las longitudes de onda biológicamente relevantes dentro de las categorías, y son diferentes de aquellas que se utiliza para reportar la emisión ultravioleta de

bombillas disponibles (Gehrmann, 1996). Otros radiómetros están disponibles en el mercado y pueden ayudar a identificar la idoneidad de los bulbos (actividad biológica), así como

su vida útil. La radiación ultravioleta no se transmite bien a través de de vidrio o plástico estándar. Ahora hay plásticos especiales

en el mercado que están diseñados específicamente para el ultravioleta y su

transmisión de luz, pero son caros y no están disponibles comúnmente. Esto significa que cuando las luces se colocan encima de una tapa de la carcasa hecha de vidrio o

plástico (incluyendo láminas delgadas de plástico flexible), la emision ultravioleta La radiación B es eliminada. Por esta razón, las luces no debe estar envuelto en un escudo de plástico, y

sólo debe colocarse por encima de una tapa con rejilla que permita penetración directa de la luz. Alternativamente, sin cubrir

las luces fluorescentes pueden estar ubicadas dentro del recinto. Recientemente, se introdujo una cubierta de vidrio para acuarios con bajo contenido de plomo. en el mercado que pretende permitir

transmisión de luz ultravioleta. De hecho, pequeñas cantidades de radiación ultravioleta-A se transmiten a través del vidrio, pero poca o ninguna radiación ultravioleta B (Messonnier, 1995).

Las necesidades de iluminación de los anfibios nocturnos son muy mal conocidas, la iluminación de bajo nivel para replicar el ciclo de la luna. En la NAIB, la iluminación de

luces nocturnas de diodo (LED), colocadas directamente por encima de la tapa de una jaula, parecen producir la luz adecuada para anuros nocturnos para cazar, y sin embargo no parecen

interfieren con otras actividades nocturnas (por ejemplo, llamadas masculinas), reproducción, alimentación). Luz roja (IS-watt incandescente

detrás de un filtro rojo), y "brillante" (4 vatios). luces blancas nocturnas colocadas a varios pies (menos de 1 m) de un recinto, parecen interferir con el normal

comportamiento nocturno. Las bombillas de luz de luna diseñadas para los acuarios marinos pueden tener alguna utilidad en la herpetocultura de anfibios nocturnos, pero esto sigue siendo

para ser estudiado. En general, los anfibios parecen preferir iluminación (tomar el sol es una excepción notable).

El resplandor de las luces sobre un recinto de anfibios puede reducirse poniendo una lámina de plástico en una caja de huevos

directamente debajo de la lámpara. Este

se vende en muchas ferreterías y tiendas de iluminación

para su uso con lámparas de techo fluorescentes. Tiene un gran.., patrón cuadrado abierto que permite la transmisión directa de la luz de arriba.

Aunque la iluminación de los recintos debe ser ante todo satisfacer las necesidades de los anfibios, como secundario

deberán tenerse en cuenta las necesidades de alumbrado de plantas. Mediante la selección de plantas que prosperan en zonas moderadas a bajos niveles de luz, plantando las plantas que más luz demandan

las más cercanas a las luces, y la disposición de las plantas para sombrear por lo menos algunas de las áreas frecuentadas por los los anfibios, es posible tener un vivero que reúne

las necesidades tanto de las plantas como de los animales. Cabe señalar que las luces incandescentes y fluorescentes vendidas específicamente para el cultivo de plantas de interior (por ejemplo, Gro-Lux® y

Gro-Luxlws®, Sylvania Corporation, Danvers, MA) no producen radiación ultravioleta B (Gehrmann, 1994)

y no debe utilizarse en lugar de los fluorescentes de espectro completo.

iluminación en los recintos de los animales. El fotoperíodo en el vivero debe ser mantenido en un ciclo que imita a los que se encuentran dentro de

el rango natural de los anfibios. La Marina de los Estados Unidos Sitio web del Observatorio (http://aa.usno.navy.mil/AAJ data/docs/RS_One Year.html) proporciona una calculadora para

determinar la hora de la salida y puesta del sol en cualquier parte del mundo Los datos de la duración del día también están disponibles en la

serie impresa, Almanaque Astronómico (Almanaque Náutico Oficina, 1999). Se recomienda que las luces sobre un anfibio

puedan encenderse y apagarse en secuencia, para simular el amanecer y el anochecer. Las transiciones crepusculares se ha demostrado que tiene un efecto significativo en la normalización de

patrones de actividad de los animales de laboratorio (Greenberg, 1992). Aunque esta investigación no incluyó a los anfibios,

es razonable asumir que los anfibios avistados se benefician de una iluminación gradual en lugar de abruptos cambios, tal como ocurren en la naturaleza.

5.7 NUTRICIÓN Antes de la metamorfosis, los anuros pueden ser herbívoros, omnívoro, o carnívoro, dependiendo de las especies. Después de la metamorfosis, las dietas típicamente cambian

siendo completamente carnívoros, aunque hay unas pocas excepciones. Salamandras larvarias y adultas y

los caciques son estrictamente carnívoros. (Véase también el capítulo 6, Dietas para Anfibios en Cautividad. El tipo y tamaño de presa varía, dependiendo de la etapa de vida,

tamaño, y especies de anfibios. La etapa adulta de algunas especies se especializan en pequeños insectos de hojarasca. Las especies más grandes de anfibios tienden a ser oportunistas

y se aprovechan de una variedad de especies que van desde artrópodos a pequeños vertebrados.

Es un concepto erróneo que los animales salvajes son mas nutritivos

y siempre seleccionará una dieta balanceada si se puede (Allen, 1989). Una dieta cautiva no debe

basarse simplemente en lo que come un anfibio más fácilmente. Tenga en cuenta que la selección de alimentos en el medio silvestre depende de una serie de factores, entre los que se incluyen

cambios estacionales en la composición y abundancia de presas, la experiencia previa del anfibio con una particular especies de presas, así como los atributos de tamaño, movimiento

(orientación y velocidad), palatabilidad y nutrientes (Stebbins & Cohen, 1995). Es la responsabilidad de herpetoculturistas para idear variadas

dietas balanceadas para sus anfibios en cautiverio. Las presas cautivas y el contorno del cuerpo deben imitar

presas salvajes y apariencia corporal. Es especialmente importante que los anfibios tengan buen peso antes de

cualquier intento de cría, ya que se trata de un producto energéticamente caro.

y, en algunas especies, un período de poca o ninguna ingesta de alimentos. La sobrealimentación y la obesidad pueden ser un problema para algunos

especies de anfibios en cautiverio (por ejemplo, los anfibios de White's rana arborícola, Pelodryas caerulea, rana cornuda ornamentada, Ceratophrys ornata, salamandra tigre, Ambystoma

tigrinum). La frecuencia de alimentación recomendada varía con la especie, la edad y el nivel de actividad (el cual

puede estar influenciada por el enriquecimiento de la jaula y el medio ambiente. ) del anfibio Joven, en crecimiento. los animales, y los buscadores activos prosperan con la alimentación diaria.

Depredadores maduros que se sientan y esperan (por ejemplo, las ranas con cuernos, Ceratophrys spp.) normalmente mantiene un buen cuerpo peso con una comida grande cada 2 semanas.

En general, los anfibios larvales deben ser alimentados con pequeñas cantidades diarias, en lugar de varias comidas grandes semanalmente.

Para las especies propensas al canibalismo, es importante proporcionar comida abundante si los renacuajos van a ser criados comunalmente. Se recomienda que la alimentación, así como

como limpieza, se haga en un horario variable. Larvas de la rana toro, Rana catesbeiana,puede responder a un horario fijo de perturbación (alimentación y limpieza de tanques)

por acumulación de grasa celómica y retrasada metamorfosis (Culley, 1991; Horseman et ai., 1976). El exceso de grasa restringe la movilidad de algunas ranas,

que lleva a la inanición y a la muerte en algunos casos. El los estudios concluyeron que las larvas deben ser perturbadas en

un horario irregular, desde la eclosión hasta el momento de su nacimiento metamorfosis, para prevenir estos problemas. Alimentos de invertebrados comunes para los animales terrestres postlarvales

los anfibios incluyen gusanos rojos, lombrices de tierra, gusanos blancos, grillos, gusanos de mosca y adultos, fruta moscas, colémbolos, larvas de gusano de harina, larvas de polilla de cera,

y larvas de escarabajos zófobos. Los anfibios acuáticos también pueden aceptar invertebrados como las lombrices de sangre, el negro

gusanos, camarones lavados en salmuera, Artemia spp. camarones y cangrejos de río. Técnicas de cultivo en vivo Los alimentos se tratan en el Capítulo 6, Dietas para anfibios en cautiverio,

así como las siguientes fuentes: Axelrod &

Schultz, 1990; Brown, 1995; Culley, 1991; Frye

1991,1992; Maestría, 1975; Consejo Nacional de Investigaciones, 1974. Fuentes adicionales con información sobre dietas

y el cuidado de algunos de los anfibios más comunes son: anuranos (Cover et aI., 1994; de Vosjoli, 1990a, 1990b; de Vosjoli et aI. 1996; Fenolio &

Ready, 1995; Le Berre, 1993) salamandras (Balsai, 1994; Fenolio & Ready, 1996; Harkavy, 1993; Jaeger, 1992; Maruska, 1994; Staniszewski, 1996;

Webb, 1994), caecilians (O'Reilly et aI., 1995; Wake, 1994). Barredoras de campo e invertebrados de hojarasca de

zonas en las que no se han utilizado plaguicidas y herbicidas

son excelentes fuentes de alimento para los anfibios. Como

precaución, sin embargo, los insectos de colores brillantes deben ser evitados a menos que se sepa positivamente que no son tóxicos. Las larvas de mosquito son un buen alimento para muchas larvas de

salamandras, así como para algunos renacuajos. A menudo un cubo de agua que se deja afuera en clima cálido a menudo se siembran en pocos días. Equipos de captura

e insectos está disponible en Bio-Quip Productos (17803 Avenida La Salle, Gardena, CA).

El Consejo Nacional de Investigación (1974) señala que espinacas cocidas, un alimento que comúnmente se da de comer a muchos herbívoros renacuajos, debe evitarse porque puede

causar cálculos renales. Lechuga Romana y escarola cocidas las lechugas no causan este problema, aunque su valor nutricional es pobre la adecuación sigue siendo incierta. En la NAIB,

los renacuajos de casi todas las especies de anuros son alimentados con alimentos secos (Sera Micron: Alimento en polvo para peces de la etapa 1 para

Newborn Fry, Sera, Heinsburg, Alemania). En NAIB, larvas que habitan en los arroyos del sapo arlequín del pie rastrero, Atelopus v. varius, se alimenta de Sera Micron, así como de algas

que es cultivado internamente en accesorios de tubería de PVC y en las rocas.

REFERENCIAS __________ _ Allen, M.E. 1989. Aspectos nutricionales del insecto. Tesis doctoral,

Michigan State University, East Lansing, MI, 205 pp. "¡Allen, M.E. y O.T. Ofteda! 1989. Manipulación dietética del calcio contenido de los grillos de comida. Journal of Zoo and Wildlife Medicine 20( 1 ):26-33. Axelrod, H.R. y L.P. Schultz. 1990. Manual del Acuario Tropical Peces. TFH Publications, Inc, Neptune City, NJ, 718 pp. Baetjer, A.M. 1968. Papel de la temperatura y la humedad ambientales en Susceptibilidad a las enfermedades. Arch Environ Health 16:565-570.

Balsai, M.J. 1994. Axolotls. Revista Reptiles y Anfibios (Marzo/Abril):41-51. Brown, L.E. 1995. Éxito en la cría de gusanos de la harina. Reptiles y Anfibios Revista (MarchiApril):74-79. Cardeilhac, P.T. y B.R. Whitaker. 1988. Tratamientos, usos y aplicaciones del cobre precauciones. Clínicas Veterinarias de Norteamérica: Práctica con animales pequeños 18(2):435-448.

Coburn,]. 1992. El cuidado adecuado de los anfibios. TFH Publications, Inc., Neptune City, NJ, 256 pp. Cover, J.F. Jr., S.L. Barnett, y R.L. Saunders. 1994. Gestión de las cautivas y la cría de ranas dendrobatidas y ranas hílidas neotropicales en el National Acuario de Baltimore, en ].B. Murphy, K. Adler y ].T. Collins (Eds.): Manejo y conservación en cautiverio de anfibios y reptiles. Sociedad para el Estudio de Anfibios y Reptiles, St. Louis, MO, pp. 267-273.

Culley, D.D. 1991. Bufo culture, en e.E. Nash (Ed.): Producción de productos acuáticos Animales, World Animal Science C4. Elsevier Science Publishers, Reino Unido Vancouver, Canadá, pp. 185-205. de Vosjoli, P. 1990a. El cuidado y mantenimiento general de las ranas con cuernos. Advanced Vivarium Systems, Lakeside, CA, 32 pp. de Vosjoli, P. 1990b. El cuidado y mantenimiento general del árbol de White's Tree Ranas y Ranas de Árbol de Labio Blanco. Sistemas avanzados de viveros, Lakeside, AC, 28 págs.

de Vosjoli, P. 1995. Diseño de viveros. Un vivero de selva tropical. El Vivero 7(2):14-16. de Vosjoli, P., R. Mailloux y D. Ready. 1996. Cuidados y crianza del ganado popular Ranas de Árbol. Advanced Vivarium Systems, Santee, CA. Duellman, W.E. y L. Trueb. 1986. Biología de los anfibios. McGraw-Hill Book Co., Nueva York, 670 págs. Fenolio, D. y M. Listo. 1995. Ranas filomedusinas de América Latina en los salvajes y en cautiverio. El Vivero 5(6):26-37.

Fenolio, D. y M. Listo. 1996. California: el estado de Ensatina. El Vivero 7(4):32-60. Fogel, D. 1993. Heating Herps en la década de 1990. El Vivero 4(6):8-11.

Frye, F.L. 1991. Una Guía Práctica para la Alimentación de Reptiles en Cautividad. Krieger Publishing Co, Malabar, FL, 171 pp. Frye, F.L. 1992. Invertebrados cautivos: A Guide to Their Biology and Husbandry. Krieger Publishing Co, Malabar, FL, 160 pp. Gehrmann, W.H. 1992. No UV B de Filamento de Tungsteno Incandescente Lámparas. Boletín de la Asociación de Veterinarios Reptiles y Anfibios 2(2):5. Gehrmann, W.H. 1994. Características espectrales de las lámparas utilizadas habitualmente

en la herpetocultura. El Vivero 5(5):16-29. Gehrmann, W.H. 1996. Iluminación de reptiles: una perspectiva actual. El Vivero 8(2):44-45, 62. Greenberg, N. 1992. La psique sauriana revisitada: lagartijas en investigación, en D.O. Schaeffer, K.M. Kleinow y L. Krulisch (Eds.): El cuidado y uso de los anfibios, Reptiles y peces en investigación. El Centro de Científicos para los Animales Welfare, Bethesda, MD, pp. 75-86. Harkavy, R. 1993. Salamandras topo - género Ambystoma. Reptiles y Anfibios

Revista (Sept/Oct):6-17. Holick, M.F. 1989. Aspectos filogenéticos y evolutivos de la vitamina D del fitoplancton a los humanos, en P.K.T. Pang y M.P. Schreibman (Eds.): Endocrinología de Vertebrados: Fundamentos e Implicaciones Biomédicas. "¡Vo!" 3, Regulación de calcio y fosfato. Prensa académica, Nueva York, págs. 7 a 43. Horseman, N.D., A.H. Meier, y D.D. Culley, Jr. 1976. Variaciones diarias

en los efectos de las perturbaciones sobre el crecimiento, el engorde y la metamorfosis en la rana toro (Rana catesbeiana) renacuajo.]. Exp. ¡Zoo!. 198:353-357. Hunter, L.M. 1989. El Hogar Saludable. Rodale Press, Emaús, PA, 313 págs. Hutchison, V.H. y K.K. Spriestersbach. 1986. Morir! y ciclos estacionales de termorregulación de la actividad y del comportamiento en la salamandra Necturus macu/oslts. Copeia 1986(3):612-618. Jaeger, R.G. 1992. Alojamiento, manipulación y nutrición de las salamandras, en

D.O. Schaeffer, K.M. Kleinow y L. Krulisch (Eds.): El cuidado y uso de Anfibios, Reptiles y Peces en Investigación. El Centro de Científicos para la Animal Welfare, Bethesda, MD, pp. 25-29. Le Berre, F. 1993. Notas sobre tres especies de ranas del género Mantel/a. El Vivero 4(6):19-22. Maruska, E.]. 1994. Procedimientos para la creación y el mantenimiento de una salamandra en ].B. Murphy, K. Adler y ].T. Collins (Eds.): Cautivo Manejo y conservación de anfibios y reptiles. Sociedad para

the Study of Amphibians and Reptiles, St. Louis, MO, pp. 229-242. Maestros, e.O. 1975. Enciclopedia de los alimentos vivos. TFH Publications, Inc., Neptune City, NJ. Mattison, C. 1987. Ranas y sapos del mundo. Hechos en File, Inc, Nueva York, 191 págs. Mattison, C. 1993a. El cuidado de reptiles y anfibios en cautiverio. Sterling Publishing Co. en Nueva York, 317 pp. Mattison, e. 1993b. Mantenimiento y cría de anfibios: Cecilianos, Newts, Salamandras, ranas y sapos. Blandford, Londres, Reino Unido, 222 págs.

Messonnier, S.P. 1995. Uso incorrecto de la luz ultravioleta. Boletín de la Asociación de Veterinarios Reptiles y Anfibios 5(3):4. Murphy, J.B., K. Adler y].T. Collins (Eds.). 1994. Gestión de Cautivas y Conservación de Anfibios y Reptiles. Sociedad para el Study of Amphibians and Reptiles, St. Louis, MO, 408 pp.

VetBooks

Consejo Nacional de Investigación. 1974. Anfibios: Directrices para la cría, Cuidado y manejo de animales de laboratorio. Academia Nacional de Sciences, Washington, DC, 153 pp. Oficina del Almanaque Náutico, Observatorio Naval de Estados Unidos. 1999. Almanaque Astronómico 2000. Oficina de Imprenta del Gobierno, Washington, DC.

O'Reilly, J., D. Fenolio y M. Ready. 1995. Anfibios sin limbo: Caecilianos. El Vivero 7(1):26-54. Pinkham, M.E. y P. Higgenbotham. 1976. Lo Mejor de Consejos útiles. Mary Ellen Enterprises, Minneapolis, MN, 95 pp. Pough, F.H. 1992. Establecimiento de directrices para el cuidado de reptiles y anfibios

y Fishes, en D.O. Schaeffer, K.M. Kleinow y L. Krulisch (Eds.): El

Cuidado y uso de anfibios, reptiles y peces en la investigación. Los científicos Center for Animal Welfare, Bethesda, MD. pp. 7-17. RaloH,]. 1989. La vegetación filtra la contaminación del aire interior. Noticias de Ciencia

136(14):212. Schulte, R. 1980. Froesche und Kroeten. Eugen Ulmer GmbH, Stuttgart,

Alemania, 240 págs. Seymour, R.S. 1972. Termorregulación conductual por sapos verdes juveniles, Bufo debilis. Copeia 1972(2):572-575.

Sievert, L.M. y V.H. Hutchison. 1991. La influencia del fotoperíodo y de la posición de una fuente de luz sobre la termorregulación del comportamiento en Crotaphytus

collaris (Squamata: Iguanidae). Copeia 1991(1):105-110. Slavens, F.L. y K. Slavens. 1998. Reptiles y anfibios en cautiverio: Crianza - Longevidad e inventario actual 1 de enero de 1998. Bosque Park Zoological Gardens, Seattle, WA, 423 pp. St. Lezin, M.A. 1983. Ocurrencia filogenética de la vitamina D y la provitamina D Esteroles. Tesis de maestría, MIT Press, Cambridge, MA.

Staniszewski, M. 1995. Anfibios en cautiverio. TFH Publications, Inc., Neptune City, NJ, 544 pp.

CRÍA Y ALOJAMIENTO DE ANFIBIOS--61 Staniszewski, M. 1996. El mantenimiento y la cría de Tritones Anillados en

cautiverio. Reptile & Amphibian Magazine (mayo-junio):46-54.

Stebbins, R.C. y N.W. Cohen. 1995. Una historia natural de los anfibios. Princeton University Press, Princeton, NJ, 316 pp. Stettler, P.H. 1981. manual de ciencia de terrarios: tipos de terrarios, animales, Plantas, comida. Franckh'sche Verlagshandlung, Stuttgart, Alemania, 228 págs. Wake, M.H. 1994. Cecilianos (Amphibia: Gymnophiona) en cautiverio, en

J.B. Murphy, K. Adler y].T. Collins (Eds.): Gestión de Cautivas y Conservación de anfibios y reptiles. Sociedad para el Estudio de los Anfibios y Reptiles, St. Louis, MO, pp. 223-228. WeatherDisc Associates. 1995. El disco meteorológico mundial WeatherDisc. Disco de ordenador producido bianualmente por WeathDisc Associates, Seattle, WA. Webb, G.R. 1994. La salamandra topo, Ambystoma talpoideum: Un ideal Especies de acuarios. Reptile & Amphibian Magazine (enero/febrero):71-79.

Whitaker, B.R. 1993. El uso de colas de cloruro de polivinilo y su potencial toxicidad para los anfibios. 1993 Actas de la Asociación Americana de Zoo Veterinarians, pp. 16-18. Wisniewski, P.]. 1986. Supervivencia de sustratos y renacuajos en Euproctus a. asper.

Boletín de la Sociedad Herpetológica Británica 18:19. Wright, K. 1993. Desinfección para el herpetocultor. El Vivero 5(1):31-33. Wright, K. 1994. La importancia de las cámaras de lluvia en la herpetocultura. El

Vivero 6( 1):38--40. Zimmerman, E. 1986. Cría de animales de terrario: Anfibios y reptiles. Cuidado, Comportamiento, Reproducción. TFH Publications, Inc, Neptune Ciudad, NJ, 384 pp. Zug, G.R. 1993. Herpetología: Una Biología Introductoria de los Anfibios y

Reptiles. Academic Press, Inc, San Diego, CA, 527 pp.