CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO DE …€¦ · secretaria de salud laboratorio estatal de salud publica “dr. galo soberon y parra“ departamento de control microbiolÓgico laboratorio

SECRETARIA DE SALUD LABORATORIO ESTATAL DE SALUD PUBLICA

“DR. GALO SOBERON Y PARRA“ DEPARTAMENTO DE CONTROL MICROBIOLÓGICO

LABORATORIO DE MICOBACTERIAS

ELABORADO POR:

QBP. PATRICIA VILLANUEVA F. QFB. ARACELI HERNÁNDEZ G.

QUIMICAS ANALISTAS

REVISADO POR:

QBP. LAURA TOMASA ANGEL PABLO

JEFA DE LABORATORIO

APROBADO POR:

MC. NORMA EDITH MARTÍNEZ HERNANDEZ

JEFA DE DEPARTAMENTO

CLAVE: TB-P-003 REVISIÓN N° 02 SUSTITUYE A REVISIÓN N° 01

EMISIÓN: 14-04-16 EXPIRACIÓN: 14-04-18 PÁGINA 1 DE 18

CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO DE MUESTRAS

APLICABLES AL LABORATORIO DE MICOBACTERIAS

DRA. ELIZABETH GODOY GALEANA

DIRECTORA DEL LESPAG

ACAPULCO, GUERRERO, MARZO DE 2016




CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO DE MUESTRAS APLICABLES AL LABORATORIO DE MICOBACTERIAS

CLAVE: TB-P-003 REVISIÓN N° 02 EMISION: 14-04-16

SUSTITUYE A REVISIÓN N° .01 EXPIRACIÓN: 14-04-18 PÁGINA 2 DE 18

1.- OBJETIVO Homogeneizar los procedimientos de identificación, etiquetado, documentación y embalaje para asegurar la adecuada conservación y transporte de las muestras y laminillas que se envían al Laboratorio Estatal de Salud Pública “Dr. Galo Soberón y Parra” para el diagnóstico y control de tratamiento de la tuberculosis y lepra.

2.- ALCANCE Aplica a todas las muestras que se reciben en el Laboratorio Estatal de Salud Pública “Dr. Galo Soberón y Parra” para el diagnóstico y control de tuberculosis y lepra, así como laminillas para supervisión indirecta, provenientes de los Laboratorios de la Red Estatal de tuberculosis y lepra.

3.- DEFINICIONES Aerosol infeccioso: Suspensión de partículas de agentes infecciosos que puede ser inhalada y provocar infección. Control de Calidad: A la supervisión indirecta que se efectúa a distancia y consiste en la comparación de los resultados de la lectura de laminillas de baciloscopias y el análisis y evaluación de la información mensual enviada al Laboratorio Estatal por los diferentes laboratorios que integran la Red de Tuberculosis y Lepra. Criterios de Aceptación: Al conjunto de características que debe cumplir una muestra desde la toma, manejo, conservación y transporte, para obtener resultados confiables. Criterios de Rechazo: Al conjunto de características inadecuadas de una muestra en la toma, manejo, conservación y transporte. Esterilización: Proceso que elimina todas las clases de microorganismos y esporas. Lepra: A la enfermedad infectocontagiosa crónica, causada por Mycobacterium leprae que afecta principalmente piel y nervios periféricos, puede afectar otros órganos y en ocasiones es sistémica. Muestra biológica: Al espécimen de origen humano susceptible al análisis. Peligro: Todo aquello que tiene el potencial de provocar daños, con la independencia de la probabilidad de que ocurra. Riesgo: Combinación de la probabilidad y las consecuencias de un incidente en relación con un peligro específico. Supervisión indirecta o control de calidad: Se efectúa a distancia y consiste en la comparación de los resultados de la lectura de laminillas de baciloscopias y el análisis y evaluación de la información mensual enviada por los laboratorios.







Transmisión por el aire: Transmisión de la enfermedad provocada por la propagación de núcleos de gotículas que siguen siendo infecciosas cuando se encuentran en suspensión en el aire. Tuberculosis: A la enfermedad infecciosa, causada por el complejo M. tuberculosis (M. tuberculosis, M. bovis, M. microti, M. africanum, M. canettii, M. caprae y M. pinnipedii), que se transmite del enfermo al sujeto sano por inhalación de material infectante., de madre infectada al producto, ingestión de leche contaminada, contacto con personas enfermas bacilíferas o animales enfermos . Puede ser de localización pulmonar o extrapulmonar.

4.- DOCUMENTOS APLICABLES

Modificación a la Norma Oficial Mexicana NOM-006-SSA2-2013, Para la prevención y control de la tuberculosis.

Norma Oficial Mexicana NOM-027-SSA2-2007, Para la prevención y control de la lepra.

Organización Panamericana de la Salud. Manual para el diagnóstico bacteriológico de la

tuberculosis. Normas y guía técnica. Parte I Baciloscopia. Organización Mundial de la Salud, 2008.

Secretaría de Salud. Manual de Técnicas de Laboratorio para el Examen Baciloscópico. Primera edición, 2003.

Instituto de Diagnóstico y Referencia Epidemiológicos. Manual de procedimientos de Laboratorio de

lepra. Noviembre 2000.

Organización Mundial de la Salud, Manual de Bioseguridad en el Laboratorio de Tuberculosis, 2013.

5.- RESPONSABILIDADES Personal médico y de enfermería: elaboración de solicitud de estudio, toma, manejo, conservación y transporte de la muestra. Responsables jurisdiccionales del Programa de Tuberculosis y Lepra: organización para el envió de muestras para cultivo acompañadas de la solicitud de estudio correspondiente, envió de informes mensuales y control de calidad. Coordinación de Recepción de Muestras y Atención al Público: recibir las muestras y laminillas que ingresan al Laboratorio Estatal aplicando los criterios de aceptación y rechazo. Laboratorio de Micobacterias: procesar las muestras y realizar la supervisión indirecta a los laboratorios de la Red de tuberculosis y Lepra.







6.- DESCRIPCIÓN DE LA ACTIVIDAD El éxito en el aislamiento de Mycobacterium tuberculosis depende básicamente de la obtención de una muestra de calidad. El tiempo y la temperatura ambiente son factores que disminuyen las posibilidades de aislamiento, por lo que es necesario evitar el retraso en el traslado de muestras y cumplir con las recomendaciones que se mencionan a continuación.

Para realizar una entrega y recepción eficiente de muestras, debe atender las siguientes indicaciones:

CRITERIOS DE ACEPTACIÓN

Estos criterios se aplicarán a partir de la fecha de la publicación.

Una muestra de calidad es aquella que:

a) Proviene del sitio de la lesión (por ejemplo: si se sospecha de tuberculosis renal la muestra ideal es una serie de muestras de orina y no de expectoración).

b) En cantidad suficiente (dependiendo el tipo de muestra). c) Contenida en un recipiente adecuado, según sea el caso.

d) Identificada correctamente. Es recomendable rotular el cuerpo del envase, jamás la tapa, antes de

la toma de la muestra, con los siguientes datos:

Nombre completo y edad del paciente.

Tipo de muestra (expectoración, orina, biopsia, etc.).

Hora y fecha de toma (día/mes/año).

e) Conservada a temperatura de refrigeración entre 4 a 8°C, desde la toma hasta la entrega al Laboratorio Estatal. Se recomienda el uso de refrigerantes para conservar la muestra, evitar utilizar hielo para no contaminarla.

f) Transportada correctamente. Cerrar perfectamente el envase que contiene la muestra, introducirlo

en bolsa plástica para evitar contaminación por derrames, colocarla dentro de una caja de material resistente de preferencia térmico que contenga refrigerante, protegidas de la luz solar para mantener las muestras en condiciones óptimas durante el transporte.

g) Acompañada del formato de solicitud correspondiente, llenado correctamente en su totalidad.

h) Se recibirán en el Laboratorio Estatal de Salud Pública “Dr. Galo Soberón y Parra” todas las muestras enviadas para diagnóstico y control de Tuberculosis por cultivo que cumplan con los criterios de aceptación.

i) Las muestras para diagnóstico de tuberculosis por baciloscopia se enviarán al laboratorio local más cercano al domicilio del paciente.







CRITERIOS DE RECHAZO

Toda muestra que no cumpla con alguno de los criterios de aceptación será rechazada:

a) En cantidad insuficiente, según el tipo de muestra. b) Contenida en un recipiente inadecuado, sin rotulo o con datos incorrectos.

c) Sin el formato TB-F-001 SOLICITUD DE CULTIVOS Y BACILOSCOPIAS DE TUBERCULOSIS, o

bien, que el formato sea llenado incorrectamente, de manera incompleta o con datos ilegibles y sin resumen clínico.

d) Muestra derramada masivamente.

e) Conservación inadecuada: expuesta a la luz solar, sin red fría (refrigerantes) o rebasando el tiempo

establecido de entrega al Laboratorio Estatal, de acuerdo al tipo de muestra.

f) Transporte incorrecto: envase abierto, fuera de un contenedor térmico, muestras que vengan en contacto con agua de deshielo.

g) Laminillas rotas o empaquetadas incorrectamente y que se encuentren fuera del periodo de supervisión.

RECEPCIÓN DE MUESTRAS

El ingreso de las muestras y laminillas al Laboratorio Estatal de Salud Pública “Dr. Galo Soberón y Parra”, se hará únicamente a través de la Coordinación de Recepción de Muestras y Atención al Público en los horarios siguientes:

Las muestras de expectoración para diagnóstico y control de tuberculosis por cultivo se recibirán de lunes a jueves en un horario de 07:00 a 18:30 pm y los viernes en un horario de 07:00 a 10:30 am.

Las muestras extrapulmonares (líquido cefalorraquídeo, orina, biopsia, líquido pleural, etc.) se recibirán de lunes a viernes de 7:00 a 10:30 am con previo aviso al Laboratorio de Micobacterias, teléfono: 4418502 ext. 24 y 25.

Los pacientes para diagnóstico y control de lepra se atenderán en un horario de lunes a viernes de 07:00am a 10:30 am.

Las laminillas de supervisión de tuberculosis y lepra se recibirán de lunes a viernes en un horario de

07:00 a 18:30 pm. El resultado podrá consultarse en la página Web del Laboratorio Estatal de Salud Pública “Dr. Galo Soberón y Parra” www.lesp-guerrero.gob.mx ingresando el número de registro asignado a la muestra.

http://www.lesp-guerrero.gob.mx/







DIAGNÓSTICO DE TUBERCULOSIS POR BACILOSCOPIA CRITERIOS DE ACEPTACIÓN

Muestra: expectoración. Esta debe ser mucopurulenta (el color varía de blanco opaco, verde-amarillentas o rojizas cuando son sanguinolentas). En caso de que la muestra sea saliva o secreción nasal es conveniente recibirla, procesarla y anotar la observación, porque aun cuando no sea una muestra de buena calidad, puede contener bacilos. Insistir en las instrucciones indicando al paciente el procedimiento para la recolección de otra muestra. Se recomienda la obtención de tres muestras por sintomático respiratorio. La primera muestra debe ser tomada en el momento de la consulta con el médico, quien explicará al paciente las indicaciones con lenguaje claro y sencillo para que obtenga una muestra adecuada, e indicará que la segunda muestra la debe de recolectar en su casa por la mañana al despertar y la tercera muestra al momento de entregar la segunda en el servicio de salud, o también puede ser recolectada por el paciente al despertar en su casa. Cantidad: 3-5 ml. Se podrá aceptar una muestra en cantidad mínima de 1 mililitro en casos especiales. Recipiente: El envase para la muestra debe reunir las siguientes características:

a) Boca ancha de aproximadamente 6 cm de diámetro, que facilite la recolección y permita al analista elegir la porción mucopurulenta de la muestra.

b) Tapa de rosca, para disminuir el riesgo de derramar la muestra durante el transporte y de producir aerosoles al abrirla en el laboratorio.

c) Etiquetado correctamente para que permita la identificación del envase.

d) Capacidad de 50 a 60 ml aproximadamente para recolectar un volumen suficiente de muestra.

e) De pared lisa y transparente, para poder juzgar la calidad de la muestra sin abrir el envase.

f) Desechable para facilitar su eliminación. Toma de muestra: debe llevarse a cabo en un área bien ventilada e iluminada con luz solar o al aire libre, evitando tomarla en lugares concurridos de espacios cerrados como baños; debido a que los bacilos pueden permanecer en el ambiente por un largo periodo de tiempo. Para obtener una muestra de calidad, se deben seguir los pasos mostrados en la Figura 1. Conservación: asegurarse que los frascos se encuentren debidamente cerrados, introducirlos en bolsa plástica de forma individual para evitar derrames. Si las muestras no se entregan inmediatamente al laboratorio, deberán ser refrigeradas entre 4 - 8ºC o conservadas en un lugar fresco protegidas de la luz solar. Trasporte: termos o contenedores adecuados que contengan refrigerantes que conserven una temperatura entre 4-8º C; tratando de mantener los frascos con muestra en forma vertical con el fin de evitar derrames y exposición a la luz solar. Las muestras deben venir acompañadas del formato TB-F-001 SOLICITUD DE CULTIVOS Y BACILOSCOPIAS DE TUBERCULOSIS utilizando el formato actualizado, llenado correctamente.







Indicando si es una baciloscopia de diagnóstico 1ª, 2ª o 3ª de pacientes que no han tomado tratamiento antituberculoso o si se trata de baciloscopia de control 1ª, 2ª, 3ª, 4ª, 5ª o 6ª de pacientes que estén tomando tratamiento antituberculoso.

DIAGNÓSTICO DE TUBERCULOSIS POR CULTIVO

Todas las muestras enviadas para cultivo de Tuberculosis deben venir acompañadas del formato TB-F-001 SOLICITUD DE CULTIVOS Y BACILOSCOPIAS DE TUBERCULOSIS utilizando el formato actualizado, llenado correctamente e incluir un breve resumen clínico el cual debe contemplar los siguientes puntos:

Indicar si el paciente presenta sintomatología compatible con tuberculosis.

Si hay convivencia con un enfermo de tuberculosis.

Si el paciente cursa con tratamiento antituberculoso, indicar el tipo de tratamiento, fecha de inicio y de término.

Indicar resultados de baciloscopias de diagnóstico y control y/o cultivos realizados con anterioridad.

Si el paciente recibió tratamientos antituberculosos con anterioridad, indicar el tipo de tratamiento, fecha de inicio y término y si se concluyó satisfactoriamente.

Indicar sintomatología actual del paciente.

CRITERIOS DE ACEPTACIÓN FLEMAS Muestra: expectoración. Esta debe ser mucopurulenta (el color varía de blanco opaco, verde-amarillentas o rojizas cuando son sanguinolentas). Podrán aceptarse muestras de saliva solo en caso de tratarse de un paciente en control de tratamiento. Cantidad: 3-5 ml. Recipiente: El envase para la muestra debe reunir las siguientes características:

a) Frasco estéril de boca ancha de aproximadamente 6 cm de diámetro, que facilite la recolección y permita al analista elegir la porción mucopurulenta de la muestra.

b) Tapa de rosca, para disminuir el riesgo de derramar la muestra durante el transporte y de producir aerosoles al abrirla en el laboratorio.

c) Etiquetado correctamente para que permita la identificación del envase.

d) Con capacidad de 50 a 60 ml aproximadamente para recolectar un volumen suficiente de muestra.

e) De pared lisa y transparente, para poder juzgar la calidad de la muestra sin abrir el envase.

f) Desechable para facilitar su eliminación.







Toma de muestra: debe llevarse a cabo en un área bien ventilada e iluminada con luz solar o al aire libre, evitando tomarla en lugares concurridos de espacios cerrados como baños; debido a que los bacilos pueden permanecer en el ambiente por un largo periodo de tiempo. Para obtener una muestra de calidad, se deben seguir los pasos mostrados en la Figura 1. Conservación: Las muestras deben mantenerse a temperatura de refrigeración entre 4-8ºC. Asegurar que los frascos se encuentren debidamente cerrados, introducirlos en bolsa plástica de forma individual para evitar derrames. Se deberán entregar al Laboratorio Estatal dentro de las 24 horas a partir de la toma de muestra. Transporte: en contenedores adecuados utilizando refrigerantes con el fin de evitar derrames y exposición a la luz solar. ORINA Muestra: se requieren de seis muestras obligatorias, previo aseo de los genitales, tomadas del segundo chorro de la primera micción de la mañana preferentemente de días consecutivos. Cantidad: recolectar como mínimo 50 ml de orina. Recipiente: frasco de plástico estéril, tapa de rosca, boca ancha, paredes lisas, transparente, desechable, capacidad de 100 ml como mínimo, ver figura No.2. Toma de muestra: En caso de que el paciente sea foráneo, deberá acudir al laboratorio para recolectar la muestra. Se le debe de informar al paciente como debe recolectar la muestra según se indica en la Figura 3. Conservación: las muestras de orina se deben de llevar de manera inmediata al laboratorio. LAVADO GÁSTRICO Muestra: se requieren de tres muestras seriadas recolectadas por la mañana cuando el paciente aún se encuentre en ayuno. Cantidad: recolectar como mínimo 3-5 ml. Recipiente: frasco de plástico estéril, tapa de rosca, boca ancha, paredes lisas, transparente, desechable, capacidad de 100 mililitros. Toma de muestra: la obtención se realiza por personal médico especializado. Conservación: se deben de llevar de manera inmediata al laboratorio. En caso de ser necesario neutralizar la muestra con bicarbonato de sodio 0.1g/ml. LÍQUIDO CEFALORRAQUÍDEO Muestra: se requiere de una muestra estéril. Cantidad: recolectar como mínimo 1-3 ml.







Recipiente: se requiere de un frasco estéril de 15 mililitros de capacidad y con tapa de rosca de cierre hermético. Toma de muestra: la obtención se realiza por personal médico especializado, en condiciones asépticas. Sin agregar anticoagulante. Conservación: se debe de llevar de manera inmediata al laboratorio, en condiciones de refrigeración. LÍQUIDO PLEURAL, ASCITIS, PERICARDICO, MÉDULA ÓSEA Y OTROS Muestra: se requiere de una muestra estéril. Cantidad: recolectar como mínimo 1-3 mililitros. Recipiente: se requiere de un envase estéril, se pueden recibir las muestras en jeringas. Toma de muestra: la obtención se realiza por personal médico especializado, en condiciones asépticas. Conservación: se deben de llevar de manera inmediata al laboratorio, en condiciones de refrigeración. BIOPSIAS Muestra: se requiere de una muestra estéril. Cantidad: las piezas deberán ser mayores a 1 gramo. Recipiente: se requiere de un frasco estéril de 100 mililitros de capacidad. Toma de muestra: la obtención se realiza por personal médico especializado, en condiciones asépticas. La pieza se deposita en solución salina fisiológica. Se debe evitar el uso de formol porque es letal para el bacilo. Conservación: se deben de llevar de manera inmediata al laboratorio, en condiciones de refrigeración.

DIAGNÓSTICO DE LEPRA POR BACILOSCOPIA Muestra: Las muestras para realizar los extendidos de lepra, se obtienen del lóbulo de la oreja, de una lesión cutánea y mucosa nasal, cuando el medico así lo determine. Cantidad: la necesaria para realizar un frotis de 5 a 7 milímetros de diámetro aproximadamente. Toma de muestra: La obtención de la muestra se realiza por personal médico, de enfermería y/o químicos capacitados. Figura No. 4). Elaboración del frotis: El orden en el que se depositan las muestras en el portaobjetos es importante, debido a que su posición nos indica el tipo de muestra que fue tomada y en base a esto el químico analista reportará el resultado.







La muestra de lóbulo de la oreja se deposita en el extremo cercano al rotulo, la de lesión cutánea se coloca en la parte central y en el caso de que tomará muestra de la mucosa nasal se deposita en el extremo opuesto al rotulo, como se indica en la figura No.4.

CONTROL DE CALIDAD DE TUBERCULOSIS Y LEPRA

Deberán enviar al Laboratorio Estatal de Salud Pública “Dr. Galo Soberón y Parra” para evaluar la aplicación de la técnica baciloscópica:

Para el diagnóstico y control de Tuberculosis el 100% de baciloscopias positivas y el 10% de baciloscopias negativas.

Para el diagnóstico y control de Lepra el 100% de baciloscopias positivas y 100% de baciloscopias negativas.

El informe mensual de baciloscopia de Tuberculosis, Lepra y el control de calidad deberán enviarlo de forma mensual dentro de los primeros cinco días siguientes al corte. Transporte de laminillas: Recomendamos atender las siguientes sugerencias antes de empaquetar las baciloscopias para él envió de control de calidad. Una vez concluida la lectura de la baciloscopia, se colocan con el extendido hacia abajo sobre un papel para quitar el exceso de aceite de inmersión, posteriormente se sumergen en xilol por 30 segundos y se dejan secar. Se ordenan según se relacionen en el formato actualizado TB-F-002 RELECTURA DE LAMINILLAS DE TUBERCULOSIS o el TB-F-13 RELECTURA DE LAMINILLAS DE LEPRA, las Baciloscopias se separan en grupos para envolverlas Baciloscopias de diagnóstico positivo o negativo y Baciloscopias de control positivo o negativo. Las baciloscopias se envuelven con papel estraza o de reciclaje en forma de acordeón y a su vez se empaquetan en una caja de tamaño adecuado, asegurándolas con algún material de reciclaje (cartón, papel, unicel, etc.) para evitar que estas se deslicen dentro de la caja. Por último envolver el paquete con papel estraza o de reciclaje y rotularlo.

CRITERIOS DE ACEPTACIÓN

Las laminillas de baciloscopias que se envíen para control de calidad deberán cumplir los siguientes requisitos:

La caja que contiene las laminillas de baciloscopias debe estar envuelta con papel, para asegurar la integridad de las mismas.

El paquete debe contener un rotulo visible y legible, con los siguientes datos:

Nombre de la unidad que envía: Jurisdicción Sanitaria: Periodo de supervisión (mes y año): Número de baciloscopias enviadas:







El paquete deberá estar acompañado por el formato actualizado TB-F-002 RELECTURA DE LAMINILLAS DE TUBERCULOSIS o el TB-F-13 RELECTURA DE LAMINILLAS DE LEPRA el cual debe ser llenado correctamente en su totalidad.

CRITERIOS DE RECHAZO

Laminillas de baciloscopias sueltas envueltas con gasa o solo con papel y sujetas con cinta adhesiva.

Paquetes sin envolver o con datos incompletos.

Paquetes que no vengan acompañados del formato actualizado TB-F-002 RELECTURA DE LAMINILLAS DE TUBERCULOSIS o el TB-F-13 RELECTURA DE LAMINILLAS DE LEPRA, según sea el caso.

Baciloscopias para control de calidad que no correspondan al mes de evaluación.







7.- ALGORITMO

Cumplen criterios No cumplen criterios

Cumplen criterios

Coordinación de Recepción de Muestras y Atención al Público

Muestras para diagnóstico y control de tuberculosis y lepra Laminillas para control de calidad de tuberculosis y lepra

Aplicación de criterios de

aceptación y rechazo de muestras

Laboratorio de Micobacterias

Aplicación de criterios de

aceptación y rechazo de

muestras

Se informa resultado

Se informa rechazo

Se rechaza

Se procesan







8.- ANEXOS

TOSER CON FUERZA Y DEPOSITAR LA MUESTRA

LAVARSE LA BOCA

RESPIRAR Y EXHALAR TRES VECES

Figura No.1. Procedimiento para la recolección de expectoración







Figura No.2. Identificación de la muestra

Figura No. 3. Toma de muestra de orina

Se requiere de un aseo genital previo a la toma de muestra, realizándolo de la siguiente manera:

1. Lavarse las manos perfectamente. 2. Los varones deben lavarse el pene retrayendo el prepucio para una

limpieza completa con agua y jabón. 3. Enseguida debe desechar el primer chorro de orina a la taza del baño y

captar el segundo chorro en el frasco recolector sin tocarlo con los genitales.

4. Cerrar perfectamente el envase.

(4) (3) (2) (1)







Figura No.4. Procedimiento para la obtención de muestra para el diagnóstico y control de lepra por baciloscopia

Explicar al paciente de forma clara y sencilla el procedimiento para la toma de la muestra. Utilizar el formato TB-F-012 SOLICITUD DE ESTUDIO BACILOSCOPICO PARA LEPRA, verificar

que los datos del paciente sean correctos. Utilizar un portaobjetos limpio (limpiar con gasa o torunda humedecida con alcohol y dejar secar). rotular con lápiz del No. 2 la parte esmerilada, escribiendo el primer nombre completo del paciente

seguido de las iníciales de los nombres subsecuentes (en caso de que el paciente tenga más de uno) y del apellido paterno y materno.

Del número de registro asignado por la Coordinación de Recepción de Muestras y Atención al Público, anotar los dígitos que aparecen después de las letras “MC”. Finalmente escribir las iníciales LESP (Laboratorio Estatal de Salud Pública) que indican el lugar donde se tomó la muestra ver Fig. 4. En caso de que la muestra sea tomada fuera del Laboratorio Estatal cada unidad de salud asignará el registro y la unidad que corresponda.

Colocar la laminilla, sobre una cartulina negra para visualizar mejor la muestra al momento de depositarla, asegurándose que el rotulo quede hacia arriba.

LÓBULO DE LA OREJA

Limpiar la parte inferior del lóbulo suavemente con una torunda de algodón impregnada con alcohol al 70% (se recomienda asear solo tres veces, de arriba hacia abajo).

Dejar secar. Abrir la envoltura de la hoja para bisturí. Con los dedos índice y pulgar presionar el borde inferior del lóbulo, aplicando presión hasta producir isquemia (que se observa con un cambio de coloración en la piel, como una zona blanquecina), si después de 30 a 40 segundos no hay isquemia es preferible soltar y volver a intentarlo.

Una vez que se logró la isquemia se debe mantener la presión con la misma intensidad, lo que garantizará tomar una muestra de linfa libre de sangre, con la hoja de bisturí hacer un corte de 5 mm de largo en el borde del lóbulo y de 2 mm de profundidad de la dermis.

Después del corte sin retirar la hoja para bisturí girarlo hacia la derecha hasta que quede horizontal. hacer un raspado desde este extremo hasta el principio del corte, varias veces para obtener tejido

SIN DEJAR DE PRESIONAR DURANTE TODO EL PROCESO.

Ejemplo del rotulado: Paciente: María Concepción Reyes Torralba Número de Registro: 35670MC2459 Unidad de salud: Laboratorio Estatal, Acapulco, Gro.

Mucosa Nasal

Lesión cutánea

Lóbulo de la oreja

María CRT

2459

LESP







Transferir la muestra a la laminilla colocándola en el extremo cercano al rotulado y extenderla en forma circular (cuidando que se deposite la muestra contenida en ambos lados de la hoja para bisturí), para facilitar la lectura del frotis se hace el extendido de 5-7 mm de diámetro aproximadamente.

Corroborar que la muestra sea suficiente en el frotis, en caso contrario, repetir el raspado para obtener la cantidad deseada.

Una vez hecho el frotis, soltar el lóbulo y colocar sobre la incisión un pequeño fragmento de algodón seco.

Descartar la hoja para bisturí en el contenedor rojo rígido de RPBI.

LESIÓN CUTÁNEA La muestra se toma de acuerdo al tipo de lesión, si el paciente presenta nódulos se tomará del centro y si presenta manchas o placas se tomará de la orilla de la lesión. Hacer el corte como se describió anteriormente. Transferir la muestra hacia el portaobjetos colocándola en la parte central y extenderla para hacer el frotis. Descartar la hoja para bisturí en RPBI.







Lesión cutánea nódulo/mancha

MUCOSA NASAL SE RECOMIENDA NO TOMAR ESTA MUESTRA DEBIDO A LO MOLESTO QUE RESULTA PARA EL PACIENTE Y AL RIESGO QUE EXISTE DE LASTIMARLO. Se indica al paciente que se limpie la nariz para no obtener moco nasal. Se frota con un hisopo la parte anterior y posterior del tabique nasal. Se recomienda que el algodón del hisopo esté bien compactado. Transferir la muestra al portaobjetos colocándola en el extremo opuesto al del número de identificación y extenderla en forma circular. Descartar el hisopo en bolsa roja de RPBI. Una vez concluida la toma de muestra:

la laminilla se coloca en una gradilla. Sí la muestra es tomada en otra Unidad de Salud y se va a transportar para su proceso al Laboratorio Estatal o a otro perteneciente a la Red Estatal de Laboratorios de Lepra, se debe preparar la laminilla para su envió, como se describe a continuación:

Dejar secar la laminilla en la gradilla, a temperatura ambiente mínimo por 15 minutos. fijar el frotis pasando la laminilla sobre la flama tres veces. envolver la laminilla en papel bond o de estraza, junto con un trozo de cartón grueso, un abate

lenguas u cualquier otro material que ayude a darle soporte a la laminilla. colocar una etiqueta que indique la unidad de salud, jurisdicción sanitaria, indicar si es para

diagnóstico o control de lepra y fecha de toma de la muestra. Posteriormente, se coloca la laminilla dentro de una bolsa plástica y se engrapa al formato

actualizado TB-F-012. SOLICITUD DE ESTUDIO BACILOSCOPICO PARA LEPRA.







8.1 CONTROL DE CAMBIOS GC-F-038

HOSPITAL GENERAL ACAPULCO

JS 07

DIAGNÓSTICO DE LEPRA

FECHA DE TOMA: 08/MAR/2016

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