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Bol. San. Veg. Plagas, 35: 147-169, 2009
Efecto de los tratamientos con piretroides sobre la entomofaunadel olivar en la provincia de Jaén
M. RUIZ TORRES, A. MONTIEL BUENO
Se ha estudiado el efecto de los piretroides más empleados en olivar (deltametrina,lambdacihalotrín y alfacipermetrina) sobre la entomofauna del cultivo. Para ello se rea-lizó una aplicación experimental contra la generación antófaga de Prays oleae en un oli-var homogéneo de campiña en la provincia de Jaén. La entomofauna se ha muestreadocon trampas de caída y trampas amarillas en cada parcela tratada y una parcela testigo,sin tratar. Las fechas de muestreo han sido, 28-30/5/04, Tratamiento 31/5/04, 1-3/6/04,8-10/6/04, 21-23/6/04 y 30-2/7/04.
La parcela con mayor descenso significativo de capturas a lo largo de todo el estudioes la del alfacipermetrina, seguida de dimetoato y lambdacihalotrín. En la parcela trata-da con deltametrina, la reducción significativa de capturas sólo se ha producido a partirde las tres semanas del tratamiento y sólo con la fracción de la comunidad muestreadacon las trampas cromotrópicas. Considerando los depredadores en conjunto, la parcelatratada con lambdacihalotrín es la que presenta más diferencias significativas respectode la testigo. Con respecto a los principales taxones de parásitos, la parcela tratada condeltametrina es la que presenta mayor número de diferencias significativas.
M. RUIZ TORRES, A. MONTIEL BUENO. Laboratorio de Producción y Sanidad Vegetal.Carretera de Córdoba s/n. Cerro de Los Lirios. 23005 JAÉN.
Palabras clave: Impacto, artrópodos, deltametrina, lambdacihalotrin, alfaciperme-trina.
INTRODUCCIÓN
En el momento de escribir el presente tra-bajo, existe una realidad contradictoria entorno al empleo de insecticidas piretroidesen olivar. Por un lado, en el sector hay unincremento sostenido del uso de las formula-ciones autorizadas de este tipo de pesticidas,al margen de la opinión y criterios de losespecialistas.
Por otro lado, en el ámbito de la Produc-ción Integrada existe disparidad de criterio.Ante la realidad que supone el reducidonúmero de insecticidas para emplear en elmanejo integrado de plagas, y dado que eldimetoato (materia activa más empleada)queda fuera del Anejo 1 de la Directiva
91/414 (85), se está valorando la posibilidadde incluir alguno de los insecticidas piretroi-des dentro de la gama de pesticidas incluidosen los programas de producción integrada,para determinadas plagas y con restriccionesde uso. La reglamentación referente a Pro-ducción Integrada es confusa al respecto,pues en la actualidad hay comunidades autó-nomas que permiten el uso de algunos insec-ticidas piretroides, y otras comunidadesautónomas no lo permiten. La posibilidad deque pueda recomendarse el uso de insectici-das piretroides en tratamientos masivos en elolivar está despertando el recelo de especia-listas, por el fuerte impacto que producensobre la entomofauna (MUELLER-BEILSCH-MIDT, 1990).
O T R O S T E M A S
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El efecto de los tratamientos insecticidaspiretroides sobre la entomofauna auxiliar(depredadores y parásitos de plagas) del oli-var ha sido abordado en diferentes trabajos(RODRÍGUEZ et al, 2003; RUANO et al., 2001;VARELA y GONZÁLEZ, 2000). RUIZ y MON-TIEL (2006) han estudiado la corresponden-cia entre la aplicación continuada de diferen-tes piretroides y la presencia de síntomas deacariosis en olivar.
Con el presente trabajo se pretende eva-luar el impacto de tres insecticidas piretroi-des (deltametrina, alfacipermetrina y lamb-dacihalotrín) y uno organofosforado (dime-toato) en el conjunto de la entomofauna delolivar. Para ello se ha escogido el modo detratamiento para el que están autorizadostodos los insecticidas, la aplicación totalterrestre contra la generación antófaga dePrays oleae. Estudios similares en olivar sehan realizado con el dimetoato en aplicacio-nes terrestres y aéreas (RUIZ y MONTIEL,2002), con la aplicación de Bacillus thurin-giensis var. Kurstaki (RUIZ y MONTIEL, 2005)y con el spinosad en tratamientos aéreos(RUIZ y MONTIEL, 2007).
MATERIAL Y MÉTODOS
El estudio del impacto de los tratamientospiretroides sobre la entomofauna del olivarse ha realizado en un olivar de campiña,situado en el paraje Hinojares, dentro del tér-mino municipal de Torredelcampo (Jaén).Dicha parcela tiene olivos de unos treintaaños, plantados al tresbolillo, en rombos de12 m de lado, de secano, con laboreo en lascalles y mantenimiento de suelos compactosbajo la copa del árbol mediante aplicación deherbicidas, lo que hace que haya hojarasca(10% de cobertura) sin apenas estrato herbá-ceo, el cual es escaso en las calles (cobertu-ra del 5-10%).
En el estado fenológico F1 (inicio de flora-ción), que es el momento recomendado(ALVARADO et al. 1999) para realizar el trata-miento contra la generación antófaga de Praysoleae, se llevó a cabo una aplicación experi-mental de insecticida, con pulverizador hidro-
neumático. Se delimitaron cinco parcelas con-tiguas, de una hectárea cada una. En cada par-cela se realizó el tratamiento con un insectici-da, que se asignó al azar, con una parcela tes-tigo al final. Aunque se ha buscado que todaslas parcelas sean homogéneas, había unpequeño gradiente de incremento de piedrasdesde la primera parcelas hasta la última.
Los insecticidas escogidos han sido lassustancias piretroides autorizadas y demayor uso por parte de los agricultores, asícomo el dimetoato, insecticida organofosfo-rado muy empleado habitualmente en olivar,que puede servir como referencia.
Cada árbol se mojó con 5 litros de caldo,que se dosificó con la máxima dosis reco-mendada por el fabricante, y que fue lasiguiente:
Dimetoato 40%, 150 cc/HlAlfacipermetrina, 15 cc/HlLambdacihalotrín, 80 gr/HlDeltametrín, 50 cc/HlLa fecha de tratamiento fue el 31/5/04.La evaluación del impacto sobre la comu-
nidad de artrópodos se ha realizado muestre-ando sobre la comunidad viva en el interiorde cada parcela de tratamiento. En otraspalabras, no se ha valorado qué era afectadopor el tratamiento, sino qué había antes ydespués del tratamiento.
Para muestrear la comunidad de artrópo-dos, se han escogido diez árboles consecuti-vos en el interior de cada parcela, en cadaárbol se ha situado una trampa de caída, con-sistente en un vaso de plástico blanco, de 7cm de diámetro y colocado a ras de suelo conun líquido atrayente compuesto por 25 cc deácido acético, 25 de ácido láctico y 15 cc deformaldehido al 10% en 1000 cc de cerveza(CHERIX y BOURNE, 1980; GONZÁLEZ MOLI-NÉ, 1987), y una placa amarilla pegajosaentre el follaje del árbol, a unos 170 cm dealtura en orientación S-SO. Siempre se hanempleado las mismas ubicaciones. Las tram-pas se mantenían cuarenta y ocho horas, traslo cual se retiraban, pasando las capturas delas trampas de caída al etanol-70º, y las pla-cas amarillas se congelaban envueltas en unfilm plástico transparente.
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Este sistema de muestreo se ha empleadoen anteriores estudios sobre entomofauna delolivar (RUIZ y MONTIEL, 2000, 2001).
La secuencia de muestreos ha sido comosigue:
Hi(0) del 28-30/5/04.Tratamiento: 31/5/04.Hi(1) del 1-3/6/04.Hi(2) del 8-10/6/04.Hi(3) del 21-23/6/04.Hi(4) del 30-2/7/04.Las capturas se han determinado a nivel
de Familia, o SuperFamilia en algunos casos.Teniendo en cuenta este grado de clasifica-ción, con muestreos previos que se llevarona cabo en abril de ese año, se concluyó quecon diez trampas por parcelas suponía unesfuerzo de muestreo más que suficiente.
Las familias se han agrupado en grupostróficos, diferenciando depredadores, parási-tos de artrópodos, detritívoros y fitófagos.
Siendo homogéneas entre sí las parcelas,los cambios que se detecten en la composi-ción cualitativa y cuantitativa de la comuni-dad muestreada en cada parcela, serían atri-buibles al efecto del insecticida. Este hechorealmente no es así, pues existen variablesque no se controlan, como es la distribuciónheterogénea de microhábitats y de recursos,que influyen en la entomofauna. No obstan-te, asumimos que, pese a estas variables nocontroladas, la aplicación diferenciada deinsecticidas es el mayor factor de cambioentre las parcelas de un olivar homogéneocomo el estudiado.
Los parámetros de la comunidad sobrelos que se han puesto de relieve las diferen-cias, son la riqueza (número de taxones) yla densidad (nº de capturas/trampa). Para lariqueza se ha llevado a cabo un test dehomogeneidad de la chi cuadrado (aplican-do la corrección de Yates). Considerandolos taxones comunes y los taxones exclusi-vos de cada parcela, a mayor valor de chicuadrado, para una p<0.01, más diferenteera la fracción de la entomocenosis mues-treada.
Las diferencias entre las densidades obte-nidas se han puesto de manifiesto mediante
ANOVAs previa transformación de los datosmediante (x+1)1/2.
RESULTADOS
El contenido de todas las trampas ha sidoanalizado. En todo el periodo de muestreo sehan colocado 210 trampas de caída y 210trampas cromotrópicas en las que se hancapturado 11102 y 27225 artrópodos respec-tivamente. Las capturas medias, tanto detaxones como las totales y las correspon-dientes a los grupos tróficos diferenciados(depredadores, parásitos, fitófagos y detrití-voros) se presentan en los Cuadros 1 y 2 paralas trampas de caída, y Cuadros 3 y 4 paralas trampas amarillas.
En la Figura 1 se muestran los valoresmedios del total de capturas en cada tipo detrampa para cada parcela de muestreo. Enella se aprecian cómo se establecen diferen-cias entre la parcela testigo y las de los dife-rentes insecticidas.
En la Figura 2 se muestran los valoresmedios de capturas para los taxones depre-dadores y parásitos.
Se ha llevado a cabo un primer análisisdel total de capturas y de las capturas dedepredadores y de parásitos (tanto paratrampas de caída como amarillas) en tresmaneras: primero, comparando dentro decada parcela, las capturas en T-1, con lasT+1.
Luego, se ha comprobado la correlaciónque pudiera existir entre todas las series decapturas de cada parcela, desde T+1 a T+30.
Por último, en cada momento de mues-treo, se han comparado las capturas de laparcela testigo con el resto de parcelas suje-tas a tratamiento insecticida, y dentro decada parcela, los resultados de ese momentocon el anterior.
Con todo esto se ha tenido una especie deinstantánea de la comunidad de artrópodosde cada parcela, en la que la principal fuentede variación detectada era la aplicación deun determinado insecticida (aunque no era laúnica variación, puesto que las parcelas noeran exactamente iguales entre sí).
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uadro 1. Capturas m
edias (nº individuos/trampa) en tram
pas de caída. TE
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arcela testigo. DI:
Parcela tratada con dim
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Parcela tratada con
alfacipermetrina. D
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Parcela tratada con deltam
etrina. LA
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arcela tratada con lambdacihalotrín. 0:
Muestreo el 28-30/5/04; 1:
Muestreo el 1-3/6/04;
2:8-10/6/04; 3:
21-23/6/04; 4:30-2/7/04.
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0,10,3
0,30,1
0,20,1
0,10,2
0,10,3
0,1
Blattidae
0,10,1
Em
biidae0,1
0,20,1
0,10,3
0,10,1
0,30,1
Crisopidae
0,10,1
Rafididae
0,1
Neuroptera ind.
0,10,1
0,20,5
0,10,1
0,10,4
0,2
Cicadelidae
0,10,1
0,1
Psyllidae0,2
Aphidae
0,10,2
0,30,2
0,60,4
0,1
Isidae0,1
0,1
Hom
optera ind.0,5
0,30,2
0,1
Psocoptera0,1
0,10,2
Nabidae
0,1
Tingidae
0,1
Miridae
0,10,1
Heteroptera ind.
0,10,1
0,10,1
0,2
Reduvidae
0,10,1
Fleotripidae0,2
0,1
Eolotripidae
0,10,2
0,30,9
0,30,2
0,20,1
0,1
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1
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M. RUIZ TORRES, A. MONTIEL BUENO152C
uadro 2.Capturas m
edias (nº individuos/trampa) en tram
pas de caída (Continuación). T
E:
Parcela testigo. D
I:P
arcela tratada con dimetoato. A
:P
arcelatratada con alfaciperm
etrina. DE
:P
arcela tratada con deltametrina. L
A:
Parcela tratada con lam
bdacihalotrín. 0:M
uestreo el 28-30/5/04;1:
Muestreo el 1-3/6/04; 2:
8-10/6/04; 3:21-23/6/04; 4:
30-2/7/04. Al final,se indican las capturas en el conjunto de taxones depredadores,parásitos,
fitófagos y detritívoros.
Caída
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Tenebrionidae14,9
11,14,1
8,321
15,216,3
9,49,7
1918,1
5,23,6
1,85,3
4,63,1
1,91,1
1,60,9
Scarabeidae0,1
0,1
Nitidulidae
1,80,6
10,8
0,21,3
0,61
0,40,3
0,60,7
0,80,4
0,30,5
2,31,7
1,31,2
0,7
Cucujidae
3,21,4
3,13
1,91,3
1,52,7
3,21,6
10,8
1,32,6
11,8
0,80,8
1,80,6
0,6
Estafilínidos
4,43,9
22,2
21,1
1,91,1
12
1,30,9
0,60,1
0,60,7
0,90,7
0,50,3
0,8
Anthicidae
0,70,1
0,20,6
10,2
0,10,1
0,60,7
0,40,1
Anobidae
0,40,2
0,1
Crisom
elidae0,1
Meliridae
0,10,1
0,1
Elateridae
0,1
Micetophagidae
0,1
Lucanidae
0,1
Cetonidae
0,1
Curculionidae
1,70,5
0,91,1
0,10,1
0,20,1
0,1
Buprestidae
0,10,1
0,1
Pselaphidae0,1
Coleópteros ind.
0,40,2
0,10,1
0,20,1
0,30,1
0,10,2
0,10,2
Betilidae
0,1
Braconidae
0,1
Formicidae
9,939,3
2,82,5
25,115
55,28,2
5,252,9
69,764,6
6,93
68,628,7
46,65,5
2,320,4
13,3
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0,10,1
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0,10,1
0,10,1
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70,
60,
20,
10,
60,
20,
20,
10,
40,
20,
20,
1
Col
émbo
los
5,4
0,8
0,6
1,3
1,7
0,8
0,4
0,7
0,9
0,1
0,8
0,3
3,7
3,2
2,7
4,3
0,9
17,4
10,4
8,5
20,2
Mir
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0,6
0,2
0,2
0,1
0,3
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0,2
0,1
0,1
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41,
91,
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51,
41,
61,
51,
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51,
41,
60,
90,
41,
60,
81,
42
0,8
0,3
1,2
0,7
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TAL
57,8
65,4
21,2
3163
,144
,885
,943
31,4
90,4
105,
278
,731
,423
,888
,348
,662
4130
,540
,643
,1
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reda
dore
s8,
87,
33,
85,
94,
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94,
84,
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1,9
22,
12,
33,
61,
61,
41,
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Pará
sito
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50,
30,
20,
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50,
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20,
50,
60,
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10,
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30
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10,
30,
40,
20
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,210
,312
,925
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1913
,814
,322
,219
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35,
34,
96,
96,
94,
13,
13,
42,
31,
7
Det
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oros
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3,5
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2,9
7,1
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5,7
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11,5
9,5
8,9
627
,420
,714
,624
,2
16 M_RUI.qxd 8/6/09 20:27 Página 153
M. RUIZ TORRES, A. MONTIEL BUENO154C
uadro 3.Capturas m
edias (nº individuos/trampa) en tram
pas amarillas. T
E:
Parcela testigo. D
I:P
arcela tratada con dimetoato. A
:P
arcela tratada conalfaciperm
etrina. DE
:P
arcela tratada con deltametrina. L
A:
Parcela tratada con lam
bdacihalotrín. 0:M
uestreo el 28-30/5/04; 1:M
uestreo el 1-3/6/04;2:
8-10/6/04; 3:21-23/6/04; 4:
30-2/7/04.
Trampas am
arillas0T
E1T
E1D
I1A
1DE
1LA
2TE
2DI
2A2D
E2L
A3T
E3D
I3A
3DE
3LA
4TE
4DI
4A4D
E4L
A
Psocoptera0,1
0,10,1
0,60,1
0,20,1
0,20,1
0,60,7
0,20,2
0,5
Crisopidae
2,95,5
2,52,7
33
41,9
2,33,7
2,74,6
5,26,7
10,97,7
1,50,7
2,42,4
2,5
Hem
erobidae0,1
0,1
Neuroptera ind.
0,1
Cixidae
0,40,1
0,10,1
0,10,4
0,50,2
0,31,7
1,61,3
2,40,8
1,82,9
3,42
2,8
Cicadelidae
7,78,2
5,54
3,29,1
4,77
6,14,3
3,62,2
1,72,4
2,91,5
1,81,1
12,6
Psyllidae0,4
0,20,3
0,42
0,70,1
0,10,1
0,10,1
0,40,2
0,20,2
0,10,2
0,1
Aphidae
2,21,4
21,5
211,7
16,710,9
1215,6
0,71
0,60,4
1,20,1
0,1
Isidae0,1
0,10,1
0,10,2
0,1
Aleirodidae
0,10,4
0,30,1
1,40,8
0,30,1
0,2
Coccidea
0,1
Hom
optera ind.0,2
Pirrocoridae0,1
0,10,1
0,1
Miridae
0,32,7
0,22,3
2,72
3,50,7
2,22,1
2,41,9
0,91,8
1,31,3
9,92,5
4,64,8
5,3
Heteroptera ind.
0,10,1
1,21
0,60,5
0,50,4
0,50,4
0,10,3
0,10,3
Reduvidae
0,20,1
0,1
Fleotripidae0,1
0,20,3
0,40,1
0,20,3
0,10,3
0,20,5
16 M_RUI.qxd 8/6/09 20:27 Página 154
BOL. SAN. VEG. PLAGAS, 35, 2009 155
Cua
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3.C
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0,4
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30,
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94,
95
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5,6
5,8
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2,9
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2,7
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17,3
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4,3
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30,
30,
30,
60,
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1
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1,3
0,8
0,6
0,1
1,6
0,5
0,9
0,3
0,3
0,3
0,3
0,2
Em
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0,1
0,1
0,1
0,1
Dip
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ind.
11,3
4,9
6,6
7,6
5,6
847
,723
,735
,630
,130
,420
,87,
113
,17,
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,14,
11,
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1
Sirf
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0,1
0,1
0,1
0,1
0,1
0,1
16 M_RUI.qxd 8/6/09 20:27 Página 155
M. RUIZ TORRES, A. MONTIEL BUENO156C
uadro 4.Capturas m
edias (nº individuos/trampa) en tram
pas amarillas (C
ontinuación). TE
:P
arcela testigo. DI:
Parcela tratada con dim
etoato.A
:P
arcela tratada con alfacipermetrina. D
E:
Parcela tratada con deltam
etrina. LA
:P
arcela tratada con lambdacihalotrín. 0:
Muestreo el 28-30/5/04;
1:M
uestreo el 1-3/6/04; 2:8-10/6/04; 3:
21-23/6/04; 4:30-2/7/04. A
l final,se indican las capturas en el conjunto de taxones depredadores,parásitos,fitófagos y detritívoros.
Trampas am
arillas0T
E1T
E1D
I1A
1DE
1LA
2TE
2DI
2A2D
E2L
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E3D
I3A
3DE
3LA
4TE
4DI
4A4D
E4L
A
Tripetidae
0,20,3
0,40,1
0,1
Carabidae
0,10,1
0,10,1
Ceram
bicidae0,1
0,1
Anthicidae
0,1
Curculionidae
0,20,2
2,10,5
0,30,1
0,10,1
Endom
ichidae0,9
0,20,3
0,10,8
1,30,9
0,40,8
Staphilinidae0,1
0,30,3
1,21,3
1,10,8
10,2
0,20,2
0,10,5
Crisom
elidae0,7
0,1
Pselaphidae0,1
Buprestidae
0,10,1
0,30,1
0,10,3
0,10,1
Coccinelidae
0,10,1
0,20,1
0,20,2
0,80,5
0,30,7
0,10,6
0,41,3
0,30,7
0,20,3
0,5
Scolitidae0,1
0,10,1
0,1
Coleoptera ind.
0,20,1
0,20,1
0,10,3
0,20,4
0,20,7
0,40,1
0,20,3
10,7
0,20,5
Icneumonidae
0,80,5
0,80,3
0,81,2
0,70,6
1,71
0,80,2
0,50,3
0,30,2
0,1
Braconidae
0,10,1
0,20,1
0,1
Betilidae
4,20,1
0,20,2
11,8
2,90,6
233,4
35
7,71,3
0,30,4
3,3
Formicidae
0,20,2
0,80,6
1,12,4
1,71,2
0,60,8
0,50,8
0,50,2
0,30,4
0,2
Calcidoidea
7,65
3,95,1
4,85
6,97
44
513,7
4,75,8
5,15
7,54,6
6,82,5
4,5
16 M_RUI.qxd 8/6/09 20:27 Página 156
BOL. SAN. VEG. PLAGAS, 35, 2009 157
Cua
dro
4.C
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0,2
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0,4
0,3
0,2
0,6
5
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0,1
0,1
0,2
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10,
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30,
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70,
71,
90,
60,
60,
52,
4
Tin
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10,
70,
60,
40,
61
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0,9
Mic
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0,1
0,1
Lep
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ind.
0,2
0,2
0,2
0,4
0,1
0,3
0,1
0,8
0,2
0,1
0,1
Ara
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0,5
0,8
0,6
0,5
0,3
11,
42,
32,
12,
31,
90,
20,
20,
30,
10,
40,
10,
1
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622
4,8
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6,8
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580
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,564
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,666
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36,3
74,4
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53,
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4,7
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Fitó
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26,8
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12,1
8,3
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Det
ritív
oros
18,1
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8,8
13,8
8,5
16,2
25,1
1512
,410
,918
,54,
712
,64,
64,
16,
84,
97
94,
39
16 M_RUI.qxd 8/6/09 20:27 Página 157
Comparación de resultados entre T-1y T+1
En las trampas de caída, cuando sehacen análisis de varianza entre las captu-ras totales, hay un fuerte descenso, estadís-ticamente significativo, en las parcelas tra-tadas con dimetoato y alfacipermetrinaentre T-1 y T+1. No es así en la parcela tes-
tigo y las tratadas con deltametrina y lamb-dacihalotrín.
Considerando la composición cualitativaentre las distintas parcelas, no hay diferen-cias significativas entre el momento previo altratamiento y el posterior al mismo, en nin-guna de las parcelas, salvo la tratada condimetoato.
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Figura 1. Capturas medias en las trampas de caída y cromotrópicas para cada momento de muestreo,dentro de cada parcela.
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Figura 2. Capturas medias de depredadores en trampas de caída, y de parásitos en trampas de caída y amarillas.Los taxones parásitos no han estado presentes en la mayor parte de las capturas en trampas de caída, por lo que no se
representan.
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Para las trampas amarillas hay diferenciassignificativas en todas las parcelas, si bien laparcela testigo tiene un nivel de significaciónmuy inferior al resto.
Considerando la composición cualitativa,no hay diferencias significativas entre elmomento previo y el posterior al tratamien-to, en ninguna parcela.
Correlación entre las capturas de cadaparcela
Si no existen diferencias en la composi-ción de la comunidad de cada parcela, debe-ría haber una correlación alta en las capturasdesde T+1 a T+30 entre todas las parcelas.
El hecho es que para las trampas de caída,la correlación (R de Spearman) entre testigocon dimetoato, con alfacipermetrina, condeltametrina y con lambdacihalotrín, es ine-xistente.
Para las trampas amarillas, la correlaciónentre testigo con dimetoato, con alfaciper-metrina, con deltametrina y con lambdaciha-lotrín es de 0.79, 0.72, 0.77 y 0.68 respecti-vamente, con niveles de significación muyaltos.
Comparación de resultados en cadamomento de muestreo
Momento de muestreo T+1Parcela con dimetoato. En trampas de
caída, hay una disminución de capturas esta-dísticamente significativas (ANOVA) conrespecto a la parcela testigo. Esta diferenciatambién se hace significativa con las captu-ras totales de las trampas amarillas.
No hay afinidad entre la composición dela entomofauna de la parcela tratada condimetoato y la testigo, al tener en cuenta lastrampas de caída. En cambio, entre los resul-tados de las trampas amarillas, sí hay unaafinidad del 95%.
No se encuentran diferencias significati-vas en trampas de caída y amarillas con laparcela testigo al considerar los diferentesgrupos tróficos (depredadores, parásitos,fitófagos y detritívoros).
Parcela con alfacipermetrina. En trampasde caída y en amarillas, hay una disminución
significativa de capturas totales con respectoa la testigo.
No hay afinidad entre la composición dela entomofauna de la parcela tratada conalfacipermetrina y la testigo, al tener encuenta las trampas de caída. En cambio,entre los resultados de las trampas amarillas,sí hay una afinidad del 99%.
Considerando los distintos grupos trófi-cos, no hay diferencias significativas entrampas de caída y amarillas con respecto ala testigo.
Parcela con deltametrina. En relación alas capturas totales de trampas de caída yamarillas, no existen diferencias significati-vas con respecto a la testigo.
La composición de la entomofauna tieneuna afinidad del 99% en las trampas decaída, y en las amarillas.
Considerando los taxones depredadores,no existen diferencias significativas en tram-pas de caída con la testigo. En trampas ama-rillas, si hay una disminución significativa.
Con los taxones fitófagos no hay diferen-cias significativas, y con los detritívoros seaprecia un incremento. Por último, los taxo-nes parásitos no manifiestan diferencias sig-nificativas con respecto a la testigo.
Parcela con lambdacihalotrin. Teniendoen cuenta las capturas totales de las trampasde caída, hay una disminución significativacon respecto a la testigo. No así con las cap-turas en trampas amarillas.
No hay afinidad en la composición de laentomofauna entre la parcela del lambda-cihalotrin y la testigo.
Con respecto a los taxones depredadores,hay una disminución significativa en las tram-pas de caída. En las trampas amarillas no.
Con los parásitos, detritívoros y fitófagosno hay diferencia significativa respecto de latestigo.
Momento de muestreo T+8Parcela con dimetoato. En trampas de
caída, se mantiene una fuerte disminucióncon respecto a la testigo. En trampas amari-llas, sin embargo, no se da esta disminuciónsignificativa.
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En la composición de la entomofauna,hay una afinidad del 99% en las trampas decaída y las amarillas no.
Con respecto a los taxones depredadores,parásitos y fitófagos, tampoco se encuentrandiferencias significativas en trampas decaída y amarillas respecto de la testigo. Conlos detritívoros hay un incremento significa-tivo para las trampas de caída, y una dismi-nución para las trampas amarillas, en la par-cela amarilla.
Parcela con alfacipermetrina. En trampasde caída, sigue dándose una fuerte disminu-ción de capturas totales con respecto a la tes-tigo. En trampas amarillas también se apre-cia esta disminución significativa.
En la composición de la entomofauna, hayuna afinidad del 99% en las trampas de caíday las amarillas no.
Teniendo en cuenta los depredadores, pará-sitos y fitófagos, no se encuentran diferenciassignificativas en las capturas de trampas decaída y amarillas con respecto a la testigo. Conlos detritívoros, hay una disminución signifi-cativa en las trampas amarillas.
Parcela con deltametrina. No hay diferen-cias significativas con la parcela testigo enrelación a las capturas totales de trampas decaída y amarillas. Lo mismo puede decirsede las capturas de depredadores, parásitos yfitófagos. En cambio, los detritívoros presen-tan una disminución significativa en lastrampas amarillas.
En la composición de la entomofauna,hay una afinidad del 95% en las trampas decaída y las amarillas no.
Parcela con lambdacihalotrin. No haydiferencias significativas con la parcela testi-go en relación a las capturas totales de tram-pas de caída y amarillas.
En la composición de la entomofauna,hay una afinidad del 99% en las trampas decaída y las amarillas no.
Considerando los taxones depredadores,parásitos y fitófagos, no se encuentran dife-rencias significativas con la testigo en lastrampas de caída y amarillas. Los detritívo-ros tienen un incremento significativo en lastrampas de caída.
Momento de muestreo T+21Parcela con dimetoato. En trampas de
caída y amarillas, las capturas totales siguenexperimentando disminuciones significati-vas con respecto a la testigo.
La composición de la entomofauna pre-senta una afinidad del 95% en las trampas decaída, y ninguna en las trampas amarillas.
Los taxones depredadores y fitófagos nomanifiestan diferencias significativas con latestigo en trampas de caída y amarillas.
Los parásitos, en cambio, presentan unagran disminución en trampas amarillas conrespecto a la testigo, y los detritivoros unincremento significativo en ambos tipos detrampas.
Parcela con alfacipermetrina. En trampasde caída y amarillas, las capturas totalessiguen experimentando disminuciones signi-ficativas con respecto a la testigo.
La composición de la entomofauna pre-senta una afinidad del 99% en las trampas decaída, y ninguna en las trampas amarillas.
Considerando los taxones depredadoresno se encuentran diferencias significativasrespecto de la testigo.
Los taxones parásitos y fitófagos presen-tan una gran disminución con respecto a latestigo, en trampas amarillas.
Los detritívoros tienen un incremento sig-nificativo en las trampas de caída.
Parcela con deltametrina. En trampas decaída no se encuentran diferencias significati-vas en las capturas totales con respecto a latestigo. En cambio, en las trampas amarillas, sise encuentran estas diferencias significativas.
La composición de la entomofauna pre-senta una afinidad del 95% en las trampas decaída, y del 95% en las trampas amarillas.
Teniendo en cuenta los taxones depreda-dores, no hay diferencia en las trampas decaída con la testigo. Sin embargo, en lastrampas amarillas se encuentra un incremen-to significativo.
Los detritívoros tienen un incremento sig-nificativo en las trampas amarillas.
Por último, los parásitos y fitófagos tienenuna disminución significativa en las trampasamarillas respecto de la testigo.
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Parcela con lambdacihalotrin. En trampasde caída y amarillas, las capturas totalessiguen experimentando disminuciones signi-ficativas con respecto a la testigo.
La composición de la entomofauna pre-senta una afinidad del 99% en las trampas decaída, y del 99% en las trampas amarillas.
Considerando los depredadores, hay unincremento en las trampas de caída y amari-llas respecto de la testigo.
Con los taxones parásitos hay una dismi-nución destacable en las capturas con tram-pas amarillas con respecto a la testigo.
No hay diferencias significativas con res-pecto de los fitófagos en los dos tipos detrampas, y los detritívoros tienen un incre-mento significativo en las trampas de caída.
Momento de muestreo T+30Parcela con dimetoato. A un mes del tra-
tamiento, no hay diferencias significativasentre las capturas totales de las trampas decaída y amarillas con respecto a la parcelatestigo.
No hay afinidad en la composición de laentomofauna de la parcela tratada condimetoato y la testigo de ambos tipos detrampas.
Los depredadores presentan una disminu-ción significativa en la parcela tratada condimetoato frente a la testigo, en las trampasde caída. En las trampas amarillas no.
Los fitófagos no varían en las trampas decaída, y disminuyen significativamente enlas trampas amarillas.
Los parásitos no varían en ninguno de losdos tipos de trampas, y los detritívorosaumentan en las trampas de caída.
Parcela con alfacipermetrina. Las captu-ras totales en trampas de caída mantienenuna disminución significativa con respecto ala testigo. Con las trampas amarillas no se daesta diferencia significativa.
Con respecto a la composición de la ento-mofauna, no hay afinidad en las trampas decaída, y una afinidad del 95% en las trampasamarillas.
Considerando los depredadores, hay dis-minución significativa en las trampas de
caída con respecto a la testigo. Con las tram-pas amarillas no.
Con los taxones parásitos no apreciamosdiferencias significativas con respecto a latestigo. Los fitófagos disminuyen las tram-pas amarillas. Los detritívoros aumentan sig-nificativamente en ambos tipos de trampas.
Parcela con deltametrina. En las capturastotales con trampas de caída no se encuen-tran diferencias significativas con respecto ala testigo. En las trampas amarillas, si hayuna disminución significativa con respecto ala testigo.
La afinidad de la composición de la ento-mofauna recogida con las trampas de caídaentre ambas parcelas (testigo y deltametrina)es del 95% y del 99% con las trampas ama-rillas.
Con respecto a los depredadores, en lastrampas de caída hay una disminución signi-ficativa con la testigo. No así con las trampasamarillas.
Considerando los parásitos no se encuen-tran diferencias significativas con respecto ala testigo en las trampas de caída, y en lasamarillas disminuyen significativamente.Los fitófagos disminuyen en las trampasamarillas y los detritívoros aumentan en lastrampas de caída.
Parcela con lambdacihalotrin. No haydiferencias significativas en las capturastotales de trampas de caída y amarillas conrespecto a la testigo.
Hay una afinidad del 95% entre la com-posición de la entomofauna de las trampasde caída, y ninguna entre la recogida en lastrampas amarillas.
Considerando los depredadores, hay unadisminución significativa en las trampas decaída. Los detritívoros aumentan en los dostipos de trampas, y los fitófagos disminuyenen las trampas de caída.
Por último, los taxones parásitos no pre-sentan diferencias significativas en las tram-pas amarillas con la testigo.
Taxones parásitosEn la Figura 3 se presentan las capturas de
los principales taxones parásitos, los cuales
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apenas aparecen en las trampas de caída. Porlo tanto, los análisis se refieren siempre atrampas amarillas.
Icneumonidae. Al comparar las capturasantes y después del tratamiento, se apreciandiferencias significativas sólo en la parcelade deltametrina. Posteriormente, en T+1,sigue manteniéndose una diferencia entre laparcela testigo y la tratada con deltametrina.En el resto de momentos de muestreo no seencuentra ninguna diferencia significativa.
Calcidoidea. Entre T-1 y T+1 hay diferen-cias en la parcela tratada con dimetoato. EnT+1, no hay diferencias de capturas entre laparcela testigo y el resto de las parcelas tra-tadas. En T+8, hay diferencias significativasentre testigo y deltametrina y alfacipermetri-na. En T+21, hay descensos significativos entodas las parcelas tratadas respecto de la par-cela testigo. Finalmente, en T+30, los des-censos se mantienen en la parcela tratadacon deltametrina.
Betilidae. Entre T-1 y T+1 hay disminu-ciones generalizadas en todas las parcelastratadas. En el momento de muestreo T+21,hay descensos significativos en las parcelastratadas con dimetoato y alfacipermetrinarespecto de la testigo.
Ceraphronidae. Comparando T-1 conT+1, se encuentran diferencias significativasen deltametrina. En T+1, hay diferencias sig-nificativas entre testigo y deltametrina. EnT+8 y T+21, no se encuentran diferenciassignificativas entre la parcela testigo y elresto. Finalmente, en T+30, aparecen fuertesdescensos en las parcelas tratadas con dime-toato, alacipermetrina y deltametrina conrespecto a la testigo.
Taxones depredadoresLas capturas de los principales taxones
depredadores se presentan en las Figuras 4. Crisopidae. La valoración se hace sobre
las capturas en trampas amarillas, puesto queen trampas de caída son insignificantes. Nose encuentran diferencias significativas com-parando T-1 con T+1. Sin embargo, en T+1,hay disminuciones significativas entre laparcela testigo y las tratadas con dimetoato y
alfacipermetrina. No vuelven a encontrarsediferencias significativas hasta T+21, entretestigo y deltametrina.
Staphilinidae. En trampas de caída expe-rimenta descensos significativos tras el trata-miento en todas las parcelas. Posteriormente,no se aprecia ninguna diferencia entre lasparcela testigo y el resto de parcelas tratadasen los siguientes momentos de muestreo. Entrampas amarillas, las capturas son insignifi-cantes.
Cucujidae. Las capturas en trampas ama-rillas son insignificantes. En trampas decaída, comparando T-1 con T+1, sólo haydiferencias en la parcela tratada con lambda-chalotrin. Posteriormente, en el resto demomentos de muestreo, no se encuentrandiferencias significativas entre la parcela tes-tigo y el resto de parcelas tratadas.
Asilidae. Las capturas en trampas de caídason insignificantes. En trampas amarillas,hay diferencias significativas entre T-1 y T+1en las parcelas tratadas con deltametrina ycon lambdacihalotrín. En los momentos pos-teriores, sólo hay una diferencia significativaentre la parcela testigo y deltametrina enT+1.
Empidoidea. Se han aglutinado en estasuperfamilia a los Empididae y Dolichopodi-dae. Las capturas en trampas de caída soninsignificantes. Comparando T-1 con T+1 seencuentran diferencias significativas en lasparcelas tratadas con alfacipermetrina, delta-metrina y lambdacihalotrín. Posteriormenteen T+1 y T+8, hay diferencias entre la par-cela testigo y la dimetoato y alfacipermetri-na, y en T+21 entre testigo y dimetoato ylambdacihalotrín.
Araneae. En trampas de caída, no haydiferencias al comparar T-1 con T+1 en nin-guna parcela. Posteriormente, tampoco haydiferencias significativas hasta T+21, entretestigo y parcela tratada con dimetoato, y enT+30, entre testigo y parcelas de dimetoato,alfacipermetrina y lambdacihalotrín. Entrampas amarillas tampoco se encuentrandiferencias entre las capturas en T-1 y T+1.En los momentos de muestreo posteriorestampoco aparecen diferencias significativas.
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Figura 3. Capturas de los principales taxones de parásitos y Formicidae en las trampas amarillas.
Se han valorado también las consecuen-cias en los Formicidae (Figura 3), comoFamilia de interés. Las capturas relevantes serealizan con las trampas de caída, encontran-do diferencias significativas entre T-1 y T+1en las parcelas alfacipermetrina y deltametri-na. Después, en T+1, hay fuertes descensossignificativos entre las parcelas testigo y elresto de parcelas tratadas. En T+8, siguenencontrándose diferencias entre la testigo ylas parcelas tratadas con dimetoato y alfaci-permetrina. En T+21, las diferencias se danentre testigo y dimetoato, alfacipermetrina ylambdacihalotrín, y en T+30, los descensos
significativos se extienden a todas las parce-las tratadas con respecto a la testigo.
DISCUSIÓN
Por la forma de muestreo, la informaciónque se recopila es sobre la comunidad viva.No conocemos qué artrópodos son los afec-tados por los tratamientos. Por lo tanto, elanálisis de lo que hay después de los trata-mientos arroja información sobre lo quequeda después de estas aplicaciones insecti-cidas. Sin embargo, conviene tener en cuen-ta que esta comunidad de artrópodos que
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queda se encuentra sujeta no sólo al impactodel tratamiento, sino al resto de condicionesambientales. Y aunque se ha procurado esco-ger un olivar homogéneo, siempre existenpequeñas diferencias en cuanto a microhábi-tats, que inducen diferencias en la composi-ción de la entomofauna no atribuibles alefecto de los insecticidas. HOLLAND et al.(2000) hacen una reflexión sobre la dificul-tad de analizar el impacto real de un insecti-cida en campo, por el carácter gregario de laspoblaciones y el tamaño de muestreo, porquepuede coincidir el efecto insecticida con ladeclinación natural de la especie, por la den-
sidad de la especie, por el tamaño del áreatratada, por el nivel taxonómico consideradoo por la presencia de zonas no tratadas cerca.TILMAN y MULROONEY (2000) abordan tam-bién la posibilidad de que un insecticida queen laboratorio es muy tóxico para una espe-cie, luego en el campo no tenga un fuerteimpacto negativo sobre dicha especie debidoal comportamiento de la misma. VARELA yGONZÁLEZ (1999) tratan el hecho de que enestudios de evaluación de impacto, puedenproducirse mayores capturas de algunostaxones en la zona tratada por un comporta-miento que les lleva a buscar espacios sin
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Figura 4. Capturas de los principales taxones de depredadores en las trampas amarillas.
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residuos del insecticida (como son las placasamarillas). Por lo tanto, los resultados hayque manejarlos con cierta cautela. No esta-mos en condiciones de afirmar que tal o cualinsecticida produce un determinado impactoen un grupo de insectos. En todo caso, sepueden poner de manifiesto las tendenciasde la comunidad de artrópodos tras el trata-miento, las cuales son consecuencia directa(pero no única) de la aplicación insecticida.
Conviene también tener en cuenta elhecho de que sólo se ha llevado el estudiodurante un año, con lo que no se tiene elefecto que pueden causar las diferencias cli-matológicas interanuales.
Por los resultados presentados, la parcelatratada con alfacipermetrina es la que parecetener mayores reducciones de capturas, condiferencias significativas hasta las tres o cua-tro semanas (según el tipo de trampa) conrespecto a la parcela testigo. El impacto de laalfacipermetrina ya se puso de manifiesto enolivar por RUANO et al. (2001, 2004). Enestudios de laboratorio también se ha com-probado el alto grado de toxicidad de estamateria activa para algunas especies auxilia-res (JACAS et al. 1992; PEKAR, 2002). Lesigue la parcela con dimetoato, con disminu-ciones en las capturas totales desde el princi-pio, que se mantienen hasta las tres semanas.
En la parcela tratada con deltametrinasólo se aprecian diferencias significativas, encuanto a las capturas totales, a las tres sema-nas del tratamiento. El impacto de este insec-ticida, sobre diversas especies de artrópodosno plaga, ha sido estudiado por diversosautores para varios cultivos. En maíz, WIK-TELIUS et al. (1999), encuentran un efectosimilar al lindano, mayor que el clorpirifos yel endosulfán, y BADJI et al. (2004) ponen demanifiesto el impacto sobre artrópodos desuelo, que sin embargo se mitiga cuando haysiembra directa del maíz. Lo mismo puededecirse en mijo ARAUJO et al. (2004). Entrigo, PULLEN et al. (1992), también docu-mentan el impacto de la de la deltametrinaen artrópodos terrestres. SCHULZE et al.(2005) estudian la comunidad de artrópodosdespués de tratamientos de deltametrina en
medios forestales, y encuentran alteracionessignificativas hasta las doce semanas poste-riores.
La parcela tratada con lambdacihalotrinpresenta un patrón intermedio al alfaciper-metrina y la deltametrina, y la correlaciónmás baja con la parcela testigo. En otros cul-tivos hay resultados dispares. WICK y FREIER
(2000) no encuentran alteraciones significa-tivas en la entomofauna de trigo después deun tratamiento con lambdacihalotrín. Sinembargo, LANGHOF et al. (2005), también encereal, documentan el impacto que producenlos residuos de deriva de las aplicaciones ensetos sobre depredadores y parásitos.
Considerando los depredadores en con-junto, la parcela tratada con lambda-cihalo-trín es la que presenta más diferencias signi-ficativas respecto de la testigo. Con respectoa los principales taxones de depredadores,considerados uno a uno, las parcelas dondese han encontrado más diferencias significa-tivas entre antes y después del tratamiento yposteriormente, con respecto a la testigo encada momento de muestreo, son, por ordendecreciente, las que han tenido la aplicaciónde lambdacihalotrín, dimetoato, alfaciper-metrina y finalmente, la deltametrina. Lasdiferencias significativas se encuentran,mayoritariamente hasta los ocho días poste-riores a la aplicación. El impacto de la delta-metrina sobre los depredadores en general osobre alguna especie en particular, ha sidopuesto de manifiesto por otros estudios. Enolivar, RODRÍGUEZ et al. (2003) describen elimpacto de la deltametrina sobre depredado-res y parásitos del livar. GRUNDY et al. (2000)ponen de manifiesto que los valores de toxi-cidad aguda y residual contra un depredador(Pristhesancus plagipennis), son menores endeltametrina que los del dimetoato. EL-MAGHRABY et al. (1994), llegan a la conclu-sión que la deltametrina es el más tóxicoinsecticida contra huevos y larvas de Chry-soperla carnea de entre un grupo de seismaterias activas (cipermetrina, fenpropath-rin, fenvalerato, methomyl y kelthane-S).SATO et al. (2001) documentan la disminu-ción de ácaros fitoseidos tras la aplicación de
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deltametrina en cítricos, y EVERTS et al.(1989) y JAGERS-AKKERHUIS Y VAN DER
VOET (1992), demuestran el impacto de ladeltametrina en arañas.
El efecto de las aplicaciones de lambda-cihalotrín sobre los depredadores también hasido estudiado. Son varios los estudios querealizan un análisis comparativo y llegan a laconclusión de que el lambdacihalotrín es elmás tóxico para especies depredadoras (BA
M’HAMED y CHEMSEDDINE, 2002; LIU y SEN-GONCA, 2002; TILMAN y MULROONEY, 2000;NOWACK et al.,2001; MUSSER y SHELTON,2003; GALVAN et al., 2005) incluyendo espe-cies de vertebrados (LAWLER et al., 2003).
Considerando los parásitos en su conjun-to, los resultados son diferentes que en elcaso de los depredadores. La parcela tratadacon lambdacihalotrin no presenta ningunadiferencia significativa con respecto a la tes-tigo, no así las demás parcelas tratadas, quemanifiestan diferencias a partir de T+21.Con respecto a los principales taxones deparásitos, considerados uno a uno, la parcelatratada con deltametrina es donde se encuen-tra el mayor número de diferencias significa-
tivas entre T-1 y T+1, y posteriormente a lolargo de los diferentes momentos de mues-treo con respecto a los valores de la testigo.Las parcelas tratadas con dimetoato y alfaci-permetrina presentan descensos significati-vos a los 8 y 21 días del tratamiento, y final-mente, en la parcela tratada con lambdaciha-lotrín, sólo se encuentra un descenso de cap-turas significativo en T+21. Esta situación enla que el lambdacihalotrín parece impactarmenos en las especies parásitas contrasta conlo encontrado en otros estudios (HASSEB etal.,2003. SUH et al., 2000; WILLIAMS III etal., 2003; XU et al., 2004) que afirman locontrario. Con respecto a la deltametrina, elfuerte impacto sobre los parásitos se encuen-tra corroborado por varios autores (RODRÍ-GUEZ et al., 2003; LONGLEY y JEPSON, 1996a,1996b; LONGLEY et al. 1997; SABER et al.2005). Se ha comprobado también cómoafectan los residuos de esta materia activasobre especies parásitas (DESNEUX et al.2005; YOUSSEF et al. 2005). No obstante,DESNEUX et al. (2004) no encuentran que ladeltametrina afecte a la actividad de dos bra-cónidos.
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ABSTRACT
RUIZ TORRES, M., A. MONTIEL BUENO. 2009. Effects of pirethoroids treatments onarthropods communities in olive grove of Jaen province (Spain). Bol. San. Veg. Plagas,35: 147-169.
We are study impact of more used pirethroids (deltamethrin, lambda cyhalothrin andalphacypermethrin) on olive orchards arthropods community. We have applicated a treat-ment again flower-eater generation of Prays oleae in one homogeneous olive orchard ofarable lands of Jaen province. Treatment are in 31/5/04, and sample in 28-30/5/04, 1-3/6/04, 8-10/6/04 and 30-2/7/04.
Alphacypermethrin area has more significant decreased arthropod population. Indeltamethrin area, captures has decreased at third week. Also, lambda cyhalothrin areahas more significant differences in depredate populations, and deltamethrin area in para-sitic populations.
Keywords: Impact, arthropods, deltamethrin, lambda cyhalothrin, alphacypermethrin.
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(Recepción: 28 julio 2008)(Aceptación: 23 octubre 2008)
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