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IDENTIFICACIÓN DE PROTOZOARIOS EN AGUAS DEL CEMENTERIO
CAMPOS DE CRISTO (Soacha - Cundinamarca)
UYABAN SANDOVAL ANDREA DEL PILAR
TRABAJO DE GRADO PARA OPTAR AL TITULO DE
LICENCIADA EN BIOLOGÍA
UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS
FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN
PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN BIOLOGÍA
2018
2
IDENTIFICACIÓN DE PROTOZOARIOS EN AGUAS DEL CEMENTERIO
CAMPOS DE CRISTO (Soacha - Cundinamarca)
UYABAN SANDOVAL ANDREA DEL PILAR
TRABAJO DE GRADO PARA OPTAR AL TITULO DE
LICENCIADA EN BIOLOGÍA
GUSTAVO GIRALDO QUINTERO
DIRECTOR
MODALIDAD INVESTIGACION INNOVACION
UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS
FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN
PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN BIOLOGÍA
2018
3
RESUMEN
Se determinaron 208 individuos, 23 géneros, 18 familias y 17 órdenes asociados a los canales
internos y adyacentes al cementerio Campos de Cristo del municipio de Soacha (Cundinamarca-
Colombia). Adicional a lo anterior el estudio presenta una descripción detallada y se destaca su
relación con otros organismos como algas y macroinvertebrados; el grupo predominante fue el de
los ciliados con 63,15%, seguidos por los flagelados euglenoides con 21,06% y las amoebas con
el 15,78%. Se resaltó la diferencia entre los muestreos realizados en días sin lluvia y días lluviosos
encontrando mayor riqueza y abundancia de especies para los primeros; los índices de Simpson y
Shannon indicaron una diversidad media para el área de estudio.
Palabras clave: Protozoos, Cementerio.
ABSTRACT
It determined 208 individuals, 23 genus, 18 families and 17 orders associated with the internal and
adjacent canals to the Campos de Cristo cemetery in the municipality of Soacha (Cundinamarca -
Colombia). In addition to the above, the study presents a detailed description and their relationship
with other organisms as algae and macroinvertebrates is highlighted; the predominant group was
the ciliates with 63.15%, followed by the euglenoid flagellates with 21.06% and the amoebas with
15.78%. The difference between the sampling carried out on days without rain and rainy days was
highlighted, finding greater richness and abundance of species for the former; The Simpson and
Shannon indices indicated a medium diversity for the study area.
Key words: Protozoans, Cemetery.
4
CONTENIDO
1. DESCRIPCIÓN DEL PROBLEMA..............................................................................................7
2. PREGUNTA PROBLEMA ...........................................................................................................8
3. JUSTIFICACIÓN .........................................................................................................................8
4. OBJETIVOS .................................................................................................................................9
4.1 General....................................................................................................................................9
4.2 Específicos ...............................................................................................................................9
5. INTRODUCCIÓN ...................................................................................................................... 10
6. MARCO REFERENCIAL .......................................................................................................... 11
6.1 Antecedentes.......................................................................................................................... 11
6.2 Generalidades de los Protozoos.............................................................................................. 13
6.3 Clasificación Taxonómica ...................................................................................................... 14
6.4 Cementerio ............................................................................................................................ 16
7. MARCO POLÍTICO .................................................................................................................. 17
7.1 Resolución Número 5194 De 2010 .......................................................................................... 17
7.2 Plan de Ordenamiento Territorial municipio de Soacha C/marca De 2000............................ 18
7.3 Proyecto de Ley N ° 126 de 2013 ............................................................................................ 18
8. METODOLOGÍA ...................................................................................................................... 18
8.1 Tipo de investigación ............................................................................................................. 18
8.2Área de estudio ....................................................................................................................... 19
8.2.1 Soacha Cundinamarca. .................................................................................................... 19
8.2.2 Cementerio Campos de Cristo........................................................................................... 20
8.3 Fase de campo ....................................................................................................................... 20
8.3.1 Tipo de Muestreo. ............................................................................................................ 20
8.3.2 Tipo de muestra. .............................................................................................................. 21
8.3.3 Tiempo del muestreo. ....................................................................................................... 21
8.3.4 Diario de campo. ............................................................................................................. 21
8.3.5 Recipientes. ..................................................................................................................... 21
8.3.6 Parámetros in situ. ........................................................................................................... 21
8.4 Fase de laboratorio ................................................................................................................ 22
5
8.4.1 Toma de la muestra. ......................................................................................................... 22
8.4.2 Reconocimiento del individuo. .......................................................................................... 22
8.4.3 Diario de laboratorio. ...................................................................................................... 22
8.5 Análisis .................................................................................................................................. 23
9. RESULTADOS Y DISCUSIÓN .................................................................................................. 26
9.1 Diversidad y abundancia de especies ..................................................................................... 26
9.2 Índice de Shannon, Simpson, Fisher y Prueba U Mann-Whitney .......................................... 30
9.3 Descripción de las especies..................................................................................................... 31
9.3.1 Raphidiophrys pallida ...................................................................................................... 31
9.3.2 Saccamoeba..................................................................................................................... 32
9.3.3 Cucurbitella mespiliformis ............................................................................................... 32
9.3.4 Euglena Viridis ................................................................................................................ 33
9.3.5 Petalomonas .................................................................................................................... 33
9.3.6 Phacus longicauda ........................................................................................................... 34
9.3.7 Trachelomona.................................................................................................................. 34
9.3.8 Hastatella radians............................................................................................................ 35
9.3.9 Spirostomun..................................................................................................................... 35
9.3.10 Litonotus ....................................................................................................................... 36
9.3.11 Metopus......................................................................................................................... 37
9.3.12 Paramecium aurelia ....................................................................................................... 37
9.3.13 Stylonichia ..................................................................................................................... 38
9.3.14 Vorticella....................................................................................................................... 38
9.3.15 Stentor........................................................................................................................... 39
9.3.16 Coleps hirtus.................................................................................................................. 40
9.3.17 Dididium nasutum .......................................................................................................... 40
9.3.18 Colpidium colpoda ......................................................................................................... 41
9.3.19 Tachysoma..................................................................................................................... 42
9.4 Consideraciones adicionales .................................................................................................. 42
10. CONCLUSIONES ..................................................................................................................... 44
11. RECOMENDACIONES............................................................................................................ 45
12. REFERENCIAS ........................................................................................................................ 46
13. ANEXOS ................................................................................................................................... 60
6
13.1 Tabla 3 Descripción de los principales filo .............................................................................. 60
7
1. DESCRIPCIÓN DEL PROBLEMA
El municipio de Soacha, ubicado entre el valle del Magdalena y los llanos orientales es drenado
por el rio Bogotá, cuenta con cuerpos de agua que según Rodríguez (2017) son relictos de un gran
lago que anegó hasta inicios del Holoceno; sin embargo, la creciente explosión demográfica ha
llegado casi al punto de eliminarlos y se ha obligado a crear fuentes artificiales para el
abastecimiento de agua potable en el municipio, a esto se suman las prácticas culturales como la
creación de cementerios, como es el caso del cementerio Campos de Cristo, un lugar que alberga
gran diversidad de microorganismos que no se encuentran documentados y cuya cercanía con el
embalse del muña y el rio Bogotá también merecen ser estudiadas con detenimiento.
Este, cuenta con canales que por Resolución 5194 (2010) deben evitar las inundaciones y ayudar
a mitigar el impacto por filtración de lixiviados, y aunque en la actualidad esta agua no es usada
para el consumo humano, sus condiciones permiten el desarrollo de redes tróficas cuya base son
los protozoos, una microfauna bioindicadora de la calidad del agua, consumidora de bacterias y
colonizadora de todos los ambientes.
En este sentido, el presente estudio se enfoca en los protozoarios presentes en dicho cementerio,
de estos se tienen pocos registros actualizados para la sabana de Bogotá y ninguno específico para
el municipio de Soacha, adicionalmente las guías con que se cuenta para realizar la identificaciones
de los morfotipos son producto de estudios realizados en América del Norte y Europa, por lo que
también es necesario empezar a utilizar la taxonomía más reciente y unificar los detalles esenciales
para reconocer cada protozoo.
8
2. PREGUNTA PROBLEMA
¿Qué protozoarios están presentes en el agua de los canales internos y adyacentes al
cementerio Campos de Cristo?
3. JUSTIFICACIÓN
En Colombia el estudio de protozoos es muy reducido y en muchos casos no detalla la
morfología de los organismos encontrados. Investigaciones limnologicas como la de Gonzales,
Aguirre & Estrada, (2010) y Torres, (2013) reflejan las interacciones generalmente de
copépodos y rotíferos excluyendo a los protozoos de vida libre; así mismo en biología medica
se enfocan únicamente en los perjuicios económicos y de salud provocados por protozoos
parásitos. También, en lugares como los cementerios, las investigaciones están basadas en la
necesidad de mitigar los riesgos por contaminación, esto dado por análisis de suelos que detallan
los lixiviados que se van filtrando y cultivos de bacterias que reflejan su proliferación y sin
embargo, frente al marco normativo llama la atención los pocos registros que existen respecto
al cuidado de las aguas subterráneas. Por lo anterior surgió la necesidad de determinar los
protozoos que se encuentran en el Cementerio Campos de Cristo, reconocer su existencia y
abundancia en dichos lugares y a la vez ser base para el desarrollo de futuras investigaciones.
9
4. OBJETIVOS
4.1 General
Identificar protozoarios en muestras de agua de los canales internos y adyacentes al cementerio
Campos de Cristo.
4.2 Específicos
Determinar taxonómicamente hasta el nivel máximo posible los individuos recolectados en los
canales.
Describir morfológicamente las especies de protozoos presentes en los canales del cementerio
Campos de Cristo
10
5. INTRODUCCIÓN
Los ecosistemas acuáticos mantienen una gran diversidad de organismos, pero los impactos
como la contaminación inducen a cambios en la estructura de las comunidades, afectando ciclos
de vida, crecimientos y condiciones reproductivas (Bartram y Ballance, 1996). Adicionalmente el
hecho de que se presente una progresiva explosión demográfica hace de los cuerpos de agua sitios
susceptibles de presentar mayores niveles de contaminación, al respecto la Organización Mundial
de la Salud, (2016) estima que el 24% de las enfermedades que ocurren en el mundo están
asociadas con factores ambientales, entre ellos la calidad del agua y las precarias condiciones
higiénicas.
Es por ello que se hace de vital relevancia monitorear el perfecto estado del recurso hídrico sin
importar si este no es destinado al consumo, para ello existen organismos que reflejan rasgos
fisiológicos y morfológicos que los hacen característicos a ciertas condiciones ambientales, según
Herbas et al (2006) pueden ser los protozoos, los cuales presentan una relevancia significativa en
su relación con el recurso hídrico, ya que sus múltiples formas de vida, reproducción y locomoción
los hacen participes de diferentes ambientes lo que genera gran diversidad taxonómica y ecológica
a la vez de una gran versatilidad adaptativa.
Los protozoos denominados en primer lugar como funcionalmente complejos pero en cuyo interior
realizan todas sus actividades metabólicas como digestión, respiración y reproducción son para
muchos autores quienes se encuentran como antecesores de otros organismos, a la vez son la base
de las redes tróficas, su taxonomía aún en la actualidad no se encuentra muy clara sin embargo
este documento basa su clasificación en Brusca y Brusca, (2005), junto con la confirmación en las
bases de datos como NCBI, UniProt, WORMS, y Enciclopedia de la Vida (consultadas en 2018).
11
El área de estudio se delimitó al cementerio Campos de Cristo del municipio de Soacha
Cundinamarca en los canales que se encuentran dentro y adyacentes a dicho cementerio; la colecta
de las muestras de tipo simple se realizó bajo recolecciones únicas en 5 puntos durante los meses
de Febrero, Marzo y Abril de 2018; y los análisis de abundancia y riqueza de especies fueron
realizados a través del programa PAST detallando específicamente las diferencias encontradas
entre colectas en días lluviosos y días sin lluvia, además el presente documento cuenta con una
descripción morfológica de 23 géneros de protozoos.
6. MARCO REFERENCIAL
6.1 Antecedentes
En cuanto a estudios sobre contaminación se resalta a Espinoza (2007) quien detectó coliformes
termotolerables y sustancias nitrogenadas en las aguas subterráneas provenientes de sepulturas
bajo suelo del camposanto “Parques Del Paraíso” (Lurín, Perú), Moya y Ospina (2006)
identificaron microorganismos patógenos como Salmonella spp, Clostridium spp tanto en
estanques como pozos, cañería y alcantarillado en el cementerio Jardines Del Recuerdo (Bogotá.
Colombia); Minota (2009), recomienda métodos de mitigación y prevención para la recuperación
progresiva de los suelos cercanos a los cementerios Jardines Del Recuerdo e Inmaculada (Bogotá,
Colombia) ya que sus valores de pH, nitrógeno, humedad y materia orgánica se perciben alterados.
Por su parte en transmisión de protozoarios parásitos por fuentes de agua Mora et al, (2010)
evaluaron la presencia de protozoarios en aguas superficiales de afluentes del Río Manzanares
(Montes, Venezuela) así como también muestras fecales de los habitantes de poblados aledaños,
12
encontrando en las aguas superficiales: Amoeba, Blastocystis sp., Endolimax sp., Chilomastix sp.
y Giardia sp mientras que Blastocystis hominis, Endolimax nana y Entaomeba coli fueron los de
mayor frecuencia en las muestras fecales; Solarte, Peña y Madera, (2006) presentan la necesidad
de desarrollar nuevos indicadores de calidad microbiológica que permitan ofrecer productos
verdaderamente seguros en el agua para uso humano y la importancia de que las entidades a cargo
conozcan los riesgos que generan microrganismos como Cryptosporidium sp y Giardia sp.( Cali,
Colombia.)
En limnología se destaca el estudio realizado por Torres (2013) sobre la dinámica de los lagos
Yahuarcaca y Zapatero con puntos estratégicos de inundación y su conexión con el rio amazonas,
se estudia la relación directa con la disponibilidad de nutrientes, el zooplancton asociado, las
redes tróficas y el flujo de energía que conecta a este ecosistema adicionalmente se presenta el
vínculo entre los parámetros fisicoquímicos como pH, temperatura y oxígeno disuelto y la
transformación que han tenido dichos ecosistemas como lo es la ausencia de copépodos
calanoidos, el empobrecimiento del zooplancton en comparación con el fitoplancton y se halla
como recurso alimenticio el componente microbiano del perifiton y del detrito.
Finalmente en diversidad de protozoos se encuentra para La Habana a Ymas y Prieto (2012)
quienes identificaron 49 especies de protozoos ciliados donde se destaca a Coleps, Colpoda,
Paramecium, Vorticella y Euplotes, en México la publicación realizada por Aladro, Reyes y
Olvera (2009) registró un total de 75 especies de ciliados de entre sésiles y de vida libre
clasificados taxonómicamente en base a Lynn y Small (2000), también, Mayén, Reyes y Aguilar,
13
(2014), realizan un estimado de la diversidad de ciliados, su taxonomía y ecología; En Brasil
Quinino (2012) encuentra 65 taxones, con mayor representación los ciliados seguidos por los
sarcodinos y los mastigophora, además realizó distribución geográfica así como un estudio de las
concepciones espontaneas de profesores y alumnos donde se destaca como principal problema el
hecho de que los profesores tienen formaciones académicas distintas, así como la indiferencia al
recurso hídrico y a los bioindicadores. En Perú Guillén (2012) realiza una lista taxonómica de los
protozoos presentes en los Pantanos De Villa; Guevara, Reinoso y Villa (2006) encuentran en
Tolima-Colombia, un registro de individuos dentro de los cuales el 62.33% fueron protozoos, cuya
mayor abundancia estuvo dada por Paramecium sp., Arcella sp. y Dileptus sp. Cabe resaltar
también la importancia de los estudios realizados por Foissner 1979- 2001, sobre nomenclatura y
taxonomía de Protozoos donde se actualizaron nombres que se encontraban como sinónimos y
especies mal caracterizadas.
6.2 Generalidades de los Protozoos
Tradicionalmente se dice que son protistas eucarióticos que se presentan como células aisladas
o en colonias, por su tamaño son predominantemente microscópicos; en 1675 su nombre fue
delimitado como animalucos por Leeuwenhoek, luego Wrisberg en 1764 los define dentro del
grupo de los infusorios, posteriormente Goldfuss en el siglo XVIII introduce el termino protozoo
el cual según Barker, (1948) deriva de las palabras griegas protos y zoon que significa “primero”
y “animal”.
Los protozoos son reconocidos por ser generalmente incoloros y móviles; obtienen su alimento al
ingerir otros organismos o partículas orgánicas, se encuentran en una variedad de habitas de agua
14
dulce y salada, gran cantidad de ellos son parásitos de otros animales. (Brock y Madigan, 1993).
En su mayoría son heterótrofos unicelulares y generalmente se reproducen asexualmente por
simple división celular, aunque algunos también tienen fases sexuales (Sánchez, 2000).
6.3 Clasificación Taxonómica
El reino Protista se establece como una unidad en 1993, y se reconoce la existencia de
ancestros, anteriores al desarrollo definitivo de los eucariotas (Cavalier, 1993). Se supone, de
acuerdo a las evidencias paleontológicas, que los protistas, proceden del Precámbrico y
constituyen un conjunto polifilético (Rodríguez et al, 2010).
Desde el punto de vista ecológico Barker, (1948) dividió a los protozoos en los de vida libre y los
que viven sobre o dentro de otros organismos este último ahora conocido como protozoos
parásitos, luego Ville (1980) los expone en la clase Sarcodina representada por los organismos
cuyo movimiento se da por seudópodos, los ciliata que en general presentan una forma definida y
cuya superficie se encuentra cubierta por cilios, los suctoria cuyo estadio juvenil presenta cilios
pero los adultos son sésiles y carecen de cilios, una cuarta clasificación está dada por los Sporozoa
como parásitos y último los flagellata.
Cavalier (1993) presenta la filogenia basada en análisis moleculares que permiten detallar en qué
lugar se encuentran los protozoarios frente a los demás organismos y para el cual distingue a los
protozoarios como un reino del que derivan Euglenozoa y Alveolata de este primero se distinguen
15
Kinetoplasta y Euglenoida del segundo Ciliphora, Dinozoa y Apicomplexa además incluye a
Mycetozoa , Percolozoa , Parabasalia, Entamoebia, Rhizopoda y Choanozoa.
Guillén (2002) recomienda seguir la clasificación dada por Levine et al (1980) donde a través de
microscopía electrónica se aceptan siete filo de Protozoa: Sarcomastigophora, Labrinteromorpha,
Apicomplexa, Microspora, Ascetospora, Myxospora Y Ciliophora.
En orden de antigüedad hasta alcanzar el estadio parasitario como endoparásitos Rodríguez et al
(2010) a partir de su revisión bibliográfica presenta dentro de los protozoos a los flagelados
pertenecientes al phylum Trichononadida que poseen aparato de Golgi asociado a raíces flagelares
en seguida el phylum Schizopyrenida dentro de los que se encuentra las especies de Naegleria,
luego el phylum Entamoebida estos especializados en la supresión de la fase ameboide y flagelada
con la consecuente ruta a Entamoeba histolytica, otros protozoos que posteriormente alcanzaron
la categoría de parásitos fueron los Apicomplexa, por su parte el phylum Ciliophora es considerado
evolutivamente de entre los últimos Sleigh (1989) plantea que proceden de los flagelados y que
posteriormente desarrollaron más organelos locomotores pero este grupo generalmente es
comensal y son muy pocas las especies conocidas como parasitas.
Por otra parte según Fenchel (2013) históricamente los protozoos pueden ser clasificados según
su medio de locomoción en el Phylum Sarcomastigophora representado por el Subphylum
Mastigophora los cuales utilizan flagelos como medio de locomoción y el Subphylum Sarcodina
que posee diferentes tipos de seudópodos, adicionalmente el Phylum Apicomplexa que se
16
encuentra incluido en el Reino Chromalveolata, dentro del superphylum Alveolata, y el phylum
Ciliophora el cual posee cilios.
Sin embargo se consideró la clasificación de Brusca y Brusca, (2005) para el desarrollo de este
documento (anexos- tabla 3). Adicionalmente los autores mencionan el filo Microsporida y el filo
Ascetospora como parásitos intracelulares cuya forma de las esporas permite la identificación de
las principales especies y su diferencia radica en que el primero posee filamento polar mientras
que el segundo no, el filo Coanoflagellata (presencia de un collar o corona formado por
microvellosidades recubiertas de moco alrededor de un flagelo), Criptomonádida (con células
biflageladas y superficie celular soportada por placas proteicas su endosimbionte siempre reducido
–nucleomorfo-), Opalina (cilios sin sistema de cinetias) y por último el filo Clorophyta (algas
verdes) cuya taxonomía fue corroborada con la base de datos Algaebase (2018).
6.4 Cementerio
Los cementerios han sido considerados importantes en la historia de la sociedad humana, partiendo
de la relación del hombre con su muerte y sus creencias religiosas se instauran como lugares
necesarios dentro de una cultura y es así como se entiende por cementerio al lugar destinado para
recibir y alojar cadáveres, restos óseos, restos humanos y cenizas; por resolución 5194 de 2010
en Colombia quedan excluidos de la anterior definición los cenizarios y osarios ubicados en
iglesias, capillas y monasterios. Y es en esta misma resolución donde según el artículo 5 el
Cementerio Campos de Cristo es considerado de sepultura bajo el nivel del suelo ya que los
17
entierros se realizan en suelo directo y no cuentan con bóvedas ni columnarios. (Imagen 1
panorámica del cementerio Campos de Cristo)
Imagen 1 panorámica del Cementerio Campos de Cristo.
7. MARCO POLÍTICO
7.1 Resolución Número 5194 De 2010
Disposición de residuos líquidos: Todo cementerio dispondrá de sistemas sanitarios adecuados
para la recolección, tratamiento y disposición de aguas residuales los cuales deben dar
cumplimiento a la normatividad vigente en el tema de vertimientos (Art 7).
Saneamiento: Todo cementerio debe contar con un plan de saneamiento dentro del cual se
establece los programas de limpieza y desinfección de áreas, desechos sólidos, residuos peligrosos
y control de vectores (Art 12).
Requisitos básicos: Ubicarse en los sitios destinados por el Plan de Ordenamiento Territorial -
POT-, Esquema de Ordenamiento Territorial –EOT- y Plan Básico de Ordenamiento Territorial –
PBOT del municipio o distrito, en todo caso alejados de industrias o actividades comerciales que
18
produzcan olores desagradables o cualquier otro tipo de contaminación. (Art 35) adicionalmente
contar con sistemas de desagüe y muros de protección cuando estén construidos en terrenos
potencialmente inundables. (Art 35)
7.2 Plan de Ordenamiento Territorial municipio de Soacha C/marca De 2000
La localización de los cementerios será en el área definida como rural, sobre suelos clasificados
como de uso institucional tipo 3, sin riesgos de carácter sanitario para el bienestar de la comunidad,
adicionalmente se exige una red perimetral de colectores de alcantarillado.
7.3 Proyecto de Ley N ° 126 de 2013
“Mediante el cual se fortalecen las medidas para la protección de las aguas subterráneas” agrega
al Numeral 9°, del Artículo 31 de la Ley 99 de 1993, dentro de las funciones de las Corporaciones
Autónomas Regionales, la exigencia de licencia ambiental para la construcción y operación de
cementerios. Sin embargo hasta la fecha aunque se ha expuesto en constantes plenarias aún no ha
sido reglamentada.
8. METODOLOGÍA
8.1 Tipo de investigación
Esta investigación es enmarcada como comparativa-descriptiva y desarrollada bajo un enfoque
cualitativo y cuantitativo.
19
8.2Área de estudio
8.2.1 Soacha Cundinamarca.
El municipio de Soacha se encuentra colindando al norte con Bojacá y Mosquera, al sur con
Sibate y Pasca, al este con las localidades de Bosa y Ciudad Bolivar (Bogotá) y al Oeste con
Granada y San Antonio del Tequendama, sus coordenadas geográficas están dadas a 4°35′N,
74°13′O ubicadas en el área central del país, sobre la Cordillera Oriental.
La temperatura promedio es de 12°C y su altitud media de 2565 msnm. (Sitio oficial municipio de
Soacha, consultado en febrero de 2018). En cuanto a su precipitación media anual se reporta para
2016, 698 mm, con una distribución de lluvias en dos periodos definidos, abril-junio y octubre–
diciembre. Se presenta una época con heladas en la sabana a finales de diciembre y comienzos de
enero. (IDEAM, 2018).
El suelo de este municipio regido en sus orígenes por los chibchas estaba destinado al cultivo
agrario, hoy en día ocupa el segundo lugar como municipio más poblado del departamento; en él
se encuentran ecosistemas estratégicos como lo son: Parque Nacional Natural Sumapaz al sur del
municipio, Salto del Tequendama, entrada a la reserva natural Parque Chicaque, al occidente el
humedal Tibanica, y áreas municipales protegidas declaradas por la CAR como los humedales de
Neuta, Tierrablanca y el cerro Manjui. (CAR, 2018).
Dichos ecosistemas están viéndose afectados por la ampliación de la frontera agrícola que lejos de
conservar los orígenes ancestrales y el cuidado de la tierra ahora son contaminados por
agrotóxicos, adicionalmente la explosión demográfica minimizó el cauce de rio Suacha, los
residuos sólidos del rio Bogotá y los malos olores que genera la represa del Muña también son
parte de las problemáticas ambientales que afronta la población del municipio.
20
8.2.2 Cementerio Campos de Cristo.
El cementerio Campos de Cristo del municipio de Soacha Cundinamarca, se encuentra ubicado
en la Autopista Sur sentido sur- norte Km 14 Soacha. (Imagen 2)
Zonificación del Cementerio.
Canales que se encuentran dentro del cementerio. Presentan pavimentación en concreto y
ladrillo, su caudal es lento, se encuentran atravesando transversalmente el cementerio inician en la
parte norte del cementerio y desembocan en el sur del cementerio dentro de los canales que se
encuentran en la periferia (Imagen 3C-F, 4A-B)
Canales que se encuentran adyacentes al cementerio. Se encuentran en la periferia del
cementerio al costado opuesto a la autopista Sur y al norte del cementerio, se limitan a tierra y no
presentan ningún tipo de arreglo (tubería ó pavimento) están muy cercanas a pastizales, existe
filtración directa a la tierra, su cauce es lento y presentan unión con los canales internos en la parte
norte. (Imagen 3A-B, 4C-D)
8.3 Fase de campo
8.3.1 Tipo de Muestreo.
Se elige un muestreo manual ya que los canales del cementerio tienen fácil acceso además que
se pueden observar los cambios en las características del agua en cuanto a sustancias flotantes,
color, olor, aumento o disminución de caudales, etc. (IDEAM, 2003). En muestras superficia les
la recolección se realizó introduciendo el frasco colector bajo la superficie siempre a la misma
profundidad (INVEMAR, 2003).
21
8.3.2 Tipo de muestra.
La muestra será simple o puntual, tomada en el sitio especifico una sola vez, asumiendo que
guarda la representatividad suficiente, los individuos serán escogidos al azar simple.
8.3.3 Tiempo del muestreo.
Las muestras serán recolectadas durante los meses de marzo, abril y mayo de 2018 bajo
recolecciones únicas en una hora específica para cada punto a partir de las 11:50 am.
8.3.4 Diario de campo.
Los datos obtenidos durante cada muestreo fueron consignados en el diario de campo donde se
indicó: Fecha de colecta, Hora, Punto de muestreo, Número de Frasco, pH, Temperatura, Datos
adicionales.
8.3.5 Recipientes.
Siendo pertinente que las muestras lleguen al laboratorio en excelente estado los frascos de
vidrio de capacidad 50 ml fueron esterilizados como lo indican los parámetros del IDEAM (2003)
y se mantuvieron completamente cerrados hasta el momento de la toma de la muestra, una vez
tomada la muestra se llevaron al laboratorio a una temperatura de 4°C.
8.3.6 Parámetros in situ.
La temperatura fue tomada directamente de la fuente de agua a 25 cm por debajo de la
superficie, con un termómetro digital que permite obtener el resultado en °C, el pH con tirillas y 3
repeticiones en cada sitio.
22
8.4 Fase de laboratorio
8.4.1 Toma de la muestra.
Debido a la escasez de individuos en los registros de premuestreo se utilizó como primera
técnica contar cada muestra del frasco con un barrido de lámina hasta llegar al número 100 del
individuo más común, una vez se llegó a este número se procedió con el siguiente frasco; pero con
la excesiva cantidad de tiempo utilizando esta metodología se propone: Tomar una alícuota de 10
gotas o 20 ml de la muestra de agua de cada frasco y realizar el conteo de cada género o especie
únicamente sobre esta cantidad.
8.4.2 Reconocimiento del individuo.
Para la caracterización del morfotipo se contó con un microscopio y la toma de videos que
permitieron detallar los movimientos e interacciones entre organismos, estos datos fueron
apuntados en el diario de laboratorio posteriormente se identificó en base a La Guía Ilustrada De
Protozoos de Streble et al, (1987), Foissner y Berger (1996) primera y segunda edición de la
sociedad de protozoologos (2000) y catálogos virtuales como Biodiversidad virtual (Guillén 2011-
2018); en cuanto a la taxonomía se corroboraron bases de datos como Algaebase, NCBI, UniProt,
WORMS, y Enciclopedia de la Vida.
8.4.3 Diario de laboratorio.
En el diario de laboratorio fueron registrados datos como: Fecha y hora de colecta, fecha y
hora de identificación, número de Frasco, punto de muestreo, número de fotografía, características
relevantes, identificación posible e identificación confirmada.
23
8.5 Análisis
Se realizó una matriz que permitió detallar el nombre de los organismos encontrados, su
ausencia y presencia en cada uno de los puntos, así como su abundancia, posteriormente se plasmó
el análisis de abundancia de Simpson, Shannon y la riqueza de Fisher, adicionalmente se encuentra
la descripción de cada género con aportes de autores y notas de lo observado en el laboratorio.
Imagen 2 Cementerio Campos de Cristo, Ubicación de los puntos de
colecta a nivel global.
1
2
3
4
5
24
A
Imagen 3, A punto de colecta n1 en día sin lluvia, B Punto de colecta n1en día lluvioso, C punto de colecta n2 en día sin lluvia, D punto de colecta n2 día lluvioso, estos son canales adyacentes al Cementerio permiten la entrada de agua a los canales internos, E punto de colecta n3 en día sin lluvia, F Punto de colecta n3 en
día lluvioso este es un canal interno.
B
D C
E F
25
A
C
B
D
Imagen 4, A Punto de colecta n4 día sin lluvia, B punto de colecta n4 día lluvioso, esta es una zona de
intercambio entre canal interno y adyacente al cementerio, C Punto de colecta n5 en día sin lluvia, D
Punto de colecta n5 en día lluvioso.
26
9. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
9.1 Diversidad y abundancia de especies
El total de individuos determinados fue 208, se reportan para el área de estudio 23 géneros, 18
familias y 17 órdenes; el grupo predominante fueron los ciliados con los 63,15% seguidos por los
flagelados euglenoides con 21,06% y las amoebas con el 15,78%.
El grafico 1 presenta en detalle la comparación del número de especies encontradas en cada
punto de colecta durante los seis muestreos evidenciando que el muestreo 1, 2 y 3 (12 de Feb, 26
de Feb y 12 de Mar) presentan mayor número de especies, lo cual en primer lugar está relacionado
con que estos días mantienen una variable común: sin lluvia; Cabrera et al (2010) manifiestan que
la lluvia diluye elementos importantes en un ambiente acuático, lo que hace a los organismos más
susceptibles, también para el caso de protozoos parásitos Arcay y Buzual, (1993) resaltan su
disminución en esta época; otros factores significativos que pueden modular el tamaño de las
poblaciones además de la lluvia son la temperatura y la luminosidad (Calderón, 2004)
Por su parte cabe resaltar en los muestreos 4, 5 y 6 (26 de Mar, 2 de Abr y 23 de Abr) al punto
de colecta n1 en el cual se presentó surgimiento de Trachelomonas que pudieron ser arrastradas
por la lluvia o resurgir de procesos tecados y al punto n3 como el menos representativo pues al
encontrarse en la parte central del cementerio no tiene una conexión directa con los puntos de
colecta adyacentes, mantiene mayor intervención antrópica y posiblemente lo encontrado el 1 de
abril se debió al arrastre de las lluvias.
27
La Vorticella encontrada en el muestreo 5 en forma de telotroca (larva nadadora) confirma
también que los días con lluvia son para los protozoos del área de estudio contraproducentes, ya
que cuando las condiciones no son aptas los ciliados sésiles liberan estas larvas con la capacidad
de anclarse en lugares más adecuados (Isac et al, 2000). También, algunas de las Euglenas
encontradas en los muestreos 4, 5 y 6 presentaban deformaciones.
Grafico 1 comparativo de la cantidad de especies encontradas en cada punto de colecta n1-n5 durante los seis muestreos correspondientes a los meses de Febrero, Marzo y Abril.
El grafico 2 detalla el total de individuos de cada especie en cada punto de colecta. Las especies
más abundantes respectivamente son: Paramecium aurelia para el muestreo 1, Litonotus lamella
para el muestreo 2, y Trachelomona volvocina para los demás muestreos; con excepción del
muestreo 6 Paramecium aurelia y Euglena viridis se encuentran presentes en todos los muestreos,
lo que probablemente se deba a su vida libre y a la abundancia de materia orgánica en
descomposición, también algunos Paramecium presentan mejoras en su ciclo de vida al asociarse
0 0 0
2
3
11 1 1
2
1 1
2
1
0 0
1 1
3
4
2 2
1 1
5
4
5
2 2 2
1 2 D E F E B 2 0 1 8 2 6 D E F E B 2 0 1 8 1 2 D E M A R 2 0 1 8 2 6 D E M A R 2 0 1 8 2 D E A B R 2 0 1 8 2 3 D E A B R I L 2 0 1 8
Nú
mero
De S
p.
Muestreos
Co mpa ra c ió n Ge ne ra l D e l N úme ro D e Es pe c ies En Ca da
Punto D e Co le c ta D urante Los S e is M ue streos
Punto de colecta n1 Punto de colecta n2 Punto de colecta n3 Punto de colecta n4 Punto de colecta n5
28
con algunas algas verdes, según Guillén, (2010) estas le proporcionan azucares y proteínas ,
Euglena por su parte posee grandes ventajas al ser fotosintética.
0
1
2
3
4
5
6
7
n1 n2 n3 n4 n5
Núm
ero
de
In
d
Punto de Colecta
Abundancia en el muestreo 1
12 Feb 2018
RaphidiophryspallidaEuglena viridis
Paramecium aurelia
Spirostomun minus
SpirostomunambiguumMetopus
Vorticella campanula
0
2
4
6
n1 n2 n3 n4 n5
Núm
ero
de
Ind
Punto de Colecta
Abundancia en el muestreo 2
26 de Feb 2018
Saccamoeba
ParameciumaureliaColeps hirtus
StylonichiapustulataDidinium nasutum
Euglena viridis
StylonichiamytilusLitonotus lamella
0
2
4
6
n1 n2 n3 n4 n5
Núm
ero
de
Ind
Punto de Colecta
Abundancia en el muestreo 3
12 de Mar 2018TrachelomonavolvocinaCucurbitellamespilimorfisSpirostomun minus
Tachysoma
Hastatella radians
Litonotus cygnus
Colpidium colpoda
Euglena viridis
0
10
20
30
n1 n2 n3 n4 n5
Núm
ero
de I
nd
Punto de Colecta
Abundancia en el muestreo 4
26 de Mar 2018
Trachelomona volvocina
Phacus longicauda
Paramecium aurelia
Cucurbitella mespilimorfis
Euglena viridis
Petalomonas
Stentor coeruleus
Stentor polymorphus
0
50
n1 n2 n3 n4 n5
Núm
ero
de
Ind
Punto de Colecta
Abundancia en el muestreo 5
2 de Abr 2018
TrachelomonavolvocinaPhacuslongicaudaPetalomonas
ParameciumaureliaEuglena viridis
Coleps hirtus0
10
20
30
n1 n2 n3 n4 n5
Núm
ero
de I
nd
Punto de Colecta
Abundancia en el muestreo 6
23 de Abr 2018
Trachelomonavolvocina
Cucurbitellamespilimorfis
Stentor coeruleus
Coleps hirtus
Grafico 2 Presenta en detalle la abundancia de las especies encontradas en cada muestreo
29
Con referencia a los puntos de colecta se resalta al punto 4 y 5 como los puntos con mayor
representación; estos, aunque son diferentes estructuralmente se encuentran estrechamente unidos,
en ellos se identificaron algas como: Chlorella sp (Beyerinck,1890), Closterium sp (Nitzsch ex
Ralfs, 1848), Navícula sp (Bory, 1822), Nitzschia sp (Hassall, 1845), Scenedesmus sp (Meyen,
1829), Spirogyra sp (Link, 1820) y Synedra sp (Ehrenberg, 1830). También se hallaron algunos
macroinvertebrados acuáticos como: Alona sp (Baird, 1843), Brachionus angularis (Gosse, 1851),
Lepadella sp (Vincent, 1826), Notommata sp (Ehrenberg, 1830), Physa sp (Draparnaud, 1801)
Tubifex sp (Lamarck, 1816), en gran proporción copépodos, anélido cf. Stylaria, larvas de
quironómidos y ácaros. Lo que denota una gran interacción de redes tróficas en estos 2 puntos de
colecta; donde los organismos zooplactonicos aumentan o disminuyen la biomasa y por
consiguiente hay alteraciones de Oxígeno, pH y nutrientes, también modifican el ensamblaje
fitoplanctónico al preferir especies fáciles de consumir como Nitzschia (Roldán y Ramírez, 2008);
así mismo rotíferos, cladóceros y copepodos se encuentran en constante fluctuación.
Para el caso específico de copépodos Suárez et al, (2005) proponen a Macrocyclops albidus
como un controlador eficaz de larvas de dípteros, Daphnia por su parte suele consumir en gran
proporción a Trachelomona (Eskinazi et al, 2002). Además Se observó abundante consumo de
Paramecium por parte de los rotíferos; Barrios et al (2013) exponen en su estudio a Paramecium
y rotíferos como controladores de parásitos en caracoles, los cuales en un futuro pueden ser
utilizados como controladores biológicos para la remoción de parásitos en el agua.
Otra razón que pudo tener influencia es la proliferación de Lemna minor que solo se observó en
abundancia durante los días sin lluvia; esta puede proporcionar nutrientes y refugio, además es
eficaz en la remoción de contaminantes tóxicos, retención de cromo, nitrógeno y fosfatos
30
(Malaver, 2013), también, según, Fernández et al (2016) su sistema radicular crea bio-peliculas
cuya área superficial permite el desarrollo de algas, bacterias, protozoos y aunque se requiere de
mayores estudios se cree que no limitaron la difusión de oxígeno ni el paso de la luz.
9.2 Índice de Shannon, Simpson, Fisher y Prueba U Mann-Whitney
El índice de Shannon (Tabla 1) indica alta equidad para los muestreos en días sin lluvia y por el
contrario para los lluviosos; la misma tendencia es observada en el índice de Simpson y la riqueza
de especies reflejada en el índice de Fisher. Se detalla en general que el área de estudio presenta
una diversidad media.
Índice
Muestreos
1,2,3 días
sin lluvia
Muestreos
4,5,6 días
lluviosos
Taxa_S 21 11
Individuals 76 132
Dominance_D 0,07825 0,6035
Simpson_1-D 0,9217 0,3965
Shannon_H 2,781 1,028
Fisher_alpha 9,597 2,853
Tabla 1 compilación de los diferentes índices de diversidad y abundancia calculados mediante el
programa PAST.
Así mismo el análisis estadístico (tabla 2) realizado mediante la prueba U Mann-Whitney
reflejó una varianza distinta entre los muestreos realizados en días lluviosos y días sin lluvia
Variable Valor
“U” calculado 359
Significancia 0.05
Valor de p 0.01
Tabla 2 resultados obtenidos test de Mann- Whitney
31
9.3 Descripción de las especies
Las siguientes especies habitan aguas estancadas con pH entre 6 y 7 y temperaturas entre 8°C y
12°C, asociadas en su gran mayoría con materia orgánica en descomposición, algas y plantas
acuáticas.
9.3.1 Raphidiophrys pallida
Filo: Heliozoa
Clase: Centroheliozoa
Orden: Centrohelida
Familia: Raphidiophryidae
Género: Raphidiophrys
Especie: Raphidiophys pallida (Cash, 1867)
El género Raphidiophys está representado por las comúnmente llamadas amebas sol contiene una
envoltura mucilaginosa con espículas que recubren los axopodios; autores como Khan et al, (2006)
lo proponen como un bioindicador eficaz para el estudio de intoxicación celular por metales.
Roksabro, (1931) menciona que las espículas de Raphidiophrys pallida son lenticulares y curvas;
para Guillén, (2011) se distingue al presentar un núcleo excéntrico y unos axopodios muy largos ;
en concordancia con Streble et al, (1987) se encontró en aguas tranquilas y solitaria y, contrario a
lo reportado para Perú como especie ubicua (Guillén, 2002), esta fue observada en tan solo un
punto de colecta y de muestreo, en día sin lluvia, con cercanía a Spirogyra y materia orgánica en
descomposición.
32
9.3.2 Saccamoeba
Filo: Amoebozoa
Clase: Tubulinea
Orden: Euamoebida
Familia: Hartmannellidae
Género: Saccamoeba (Frenzel, 1897)
Saccamoeba presenta un único núcleo central, su movimiento es lento y por expansión de su
citoplasma, Page, (1976) menciona que Saccamoeba es a veces policordal cuando cambia de
dirección, para Maciver, (2002) a nivel morfológico es muy parecida a Trichamoeba
especialmente por su segmento terminal (Uroid).
9.3.3 Cucurbitella mespiliformis
Filo: Sarcodina
Clase: Lobosa
Orden: Arcellinida
Familia: Difflugiidae
Género: Cucurbitella
Especie: Cucurbitella mespiliformis (Penard, 1902)
Es una ameba testada que presenta una forma regular-ovoide, núcleo grande vesicular, collar con
3-5 lóbulos y un único diafragma circular (Siemensma, 2016). Se encontró sobre Lemna minor
en aparente simbiosis con algas verdes Gavel et al (2018) consideran el género como indicador
de eutrofización.
33
9.3.4 Euglena Viridis
Filo: Euglenozoa
Clase: Euglenophyceae
Orden: Euglenida
Familia: Euglenaceae
Género: Euglena
Especie: Euglena Viridis (Ehrenberg, 1830)
Mancha ocular visible, extremo rombo donde se inserta el flagelo y el otro puntiagudo, lo que crea
una forma celular fusiforme; posee cloroplastos encintados (Cruz, 2012), organismo cubierto por
una película fina y presenta estriaciones oblicuas (Guillén, 2002) su nutrición se da tanto por
asimilación heterótrofa como por fotosíntesis o por los dos (Colman y Balkos, 2005) el
movimiento es lento y se generaliza como movimiento Euglenoide (Sánchez et al., 2004).
9.3.5 Petalomonas
Filo: Euglenozoa
Clase: Euglenophyceae
Orden: Petalomonadida
Familia: Scytomonadidae
Género: Petalomonas (Stein, 1859)
Es un flagelado euglénido carente de plastios (Kim et al, 2010), presenta forma fusiforme, con
quillas pronunciadas (Guiry, 2018) y un flagelo largo (sobrepasa la longitud del cuerpo), recto e
34
incoloro; para Guillén (2011) es rígido, presenta reservas de paramilo y una cubierta transparente,
su movimiento se da a través del extremo terminal del flagelo. Se encontró en presencia de
abundante materia orgánica en descomposición.
9.3.6 Phacus longicauda
Filo: Euglenozoa
Clase: Euglenophyceae
Orden: Euglenida
Familia: Phacaceae
Género: Phacus
Especie: Phacus longicauda (Dujardin, 1841)
Considerado como Euglenoide fotosintético (kim y Shin, 2014) es aplanado, estriaciones poco
visibles y una mancha ocular grande. Streble et al (1987) lo describen como ligeramente retorcido,
con una espina terminal de longitud igual a la del cuerpo, numerosos cloroplastos y flagelo con
banda espiralada de pelos; su movimiento se da por rotación.
9.3.7 Trachelomona
Filo: Euglenozoa
Clase: Euglenophyceae
Orden: Euglenida
Familia: Euglenaceae
Género: Trachelomona
35
Especie: Trachelomona volvocina (Ehrenberg, 1834)
Trachelomona es una euglenofícea loricada (De La Rosa y Sánchez, 1991) T. volvocina muestra
una forma esférica, lorica delgada y cristalina, Según Streble et al, (1987) está impregnada de
magnesio y con el tiempo adquiere un color pardo oscuro, se evidencia una mancha ocular central
con númerosos plastos internos; otros ejemplares observados presentan espinas diferenciadas y
cortas probablemente correspondan a T. Hispida. Registrada como indicador de agua moderada a
potentemente contaminada (Guiry, 2018)
9.3.8 Hastatella radians
Filo: Ciliophora
Clase Oligohymenophora
Orden Peritrichida
Familia: Hastatellidae
Género: Hastatella
Especie: Hastatella radians (Erlanger, 1890)
Forma invertida como una campana, con dos coronas de espinas (Strable et al, 1987), 2 a 4 anillos
largos, cilios en el peristoma en sentido antihorario alrededor de la región apical, (Colin et al,
1983) nada en círculos y lentamente (Kofold, 1673)
9.3.9 Spirostomun
Filo: Ciliophora
Clase: Heterotrichea
36
Familia: Spirostomidae
Género: Spirostomum
Especie: Spirostomum ambiguum (Ehrenberg, 1833)
Spirostomum minus (Roux, 1901)
El género Spirostomum es alargado y contráctil, cilios cortos y dispuestos longitudinalmente y un
macronúcleo en forma de collar, S. ambiguum presenta un surco peristomatico que suele llegar
más allá de la mitad del cuerpo, por el contrario para el surco de S. minus (Streble et al, 1987). Se
encontraron en aguas con sedimentos en descomposición y olores putrefactos y en concordancia
con Fernándes y da Silva (2013) presenta un movimiento lento.
9.3.10 Litonotus
Filo: Ciliophora
Clase: Litostomatea
Orden: pleurostomatida
Familia: Litonotidae
Género: Litonotus
Especie: Litonotus cygnus (Borror, 1972)
Litonotus lamella (Müller, 1773)
El género presenta una forma aplananda lateralmente, dos macronúcleos esféricos y cilios muy
vistosos solo sobre lado ventral (Guillén 2011), L. cygnus es lanceolado, tronco y cuello
37
extensibles y de mayor tamaño que el cuerpo, (Foissner et al., 1995) campo oral rodeada de cilios
largos, por el contrario L. lamella es ligeramente alargado con su cuello levemente curvado y
campo oral rodeada de cilios gruesos. Se les observa con desplazamiento lento y alimentándose de
pequeñas algas.
9.3.11 Metopus
Filo: Ciliophora
Orden: Armophorida
Familia: Metopidae
Género: Metopus (Claparède & Lachmann, 1858)
Tiene una leve curvatura, cilios cortos y densos, según Fenchel et al, (1995) presenta cilios de
mayor longitud en el campo oral y en el extremo posterior. Su movimiento es lento y en espiral,
se encontró en abundancia de plantas en descomposición.
9.3.12 Paramecium aurelia
Filo: Ciliophora
Clase: Oligohymenophorea
Orden: Peniculida
Familia: Parameciidae
Género: Paramecium
Especie: Paramecium. aurelia (Ehrenberg, 1833)
38
Forma elíptica, cilios abundantes en todo el organismo, con una visible depresión comúnmente
llamada surco oral, el ectoplasma se encuentra cubierto de triococistos (Wegener, 1963) que le
sirven como defensa, sus movimientos son rápidos.
9.3.13 Stylonichia
Filo: Ciliophora
Clase: Spirotrichea
Orden: Sporadotrichida
Familia: Oxytrichidae
Género: Stylonychia
Especie: Stylonychia mytilus (Ehrenberg, 1838)
Stylonychia pustulata (Müller, 1786)
Presenta una forma oval, cirros en el extremo posterior y dos membranas ondulantes en el lado
oral, S. mytilus tiene un contorno más ancho en uno de los extremos y sobresalen tres cirros grandes
en la parte posterior y S. pustulata presenta una forma más ancha y las hileras de los cirros nunca
se juntan, según Berger (2012) presenta resistencia a salinidad alta. Se encontró en detrito.
9.3.14 Vorticella
Filo: Ciliophora
Clase: Oligohymenophorea
Orden: Sessilida
39
Familia: Vorticellidae
Género: Vorticella
Especie: Vorticella campánula (Ehrenberg, 1838)
Vorticella convallaria (Levine, 1959)
Forma de campana invertida, extremo posterior angosto y con un tallo largo (pedúnculo) contráctil
con el que se aferra al sustrato (observada mayormente sobre Spirogyra), citostoma con abundantes
cilios, no colonial, V. campánula presenta un pedúnculo fino y un reborde peristomatico robusto
al contrario de V. convallaria que es grueso y que según Streble et al, (1987) es ligeramente
estrecha en la región del citostoma. . En la telotroca se puede observar una forma de capsula
cilíndrica con cilios en la parte aboral y una pequeña pero sobresaliente protuberancia.
9.3.15 Stentor
Filo: Ciliophora
Clase: Heterotrichea
Orden: Heterotrichida
Familia: Stentoridae
Género: Stentor
Especie: Stentor coeruleus (Ehrenberg, 1830)
Stentor polymorphus (Ehrenberg, 1830)
40
El género se distingue porque el campo peristomatico posee unas membranelas que forman un
círculo (Streble et al, 1987) los dos ejemplares observados no construyen una lorica y son
contráctiles. S. coeruleus presenta un núcleo celular en forma de collar; por su parte S.
polymorphus tiene gránulos corticales incoloros, un macronúcleo moniliforme con 6-12 nódulos,
y una bolsa oral conspicua (Fernándes et al, 2014).
9.3.16 Coleps hirtus
Filo: Ciliophora
Clase: Prostomatea
Orden: Prorodontida
Familia: Colepidae
Género: Coleps
Especie: Coleps hirtus (Nitzsch, 1827)
Cuerpo en forma de barril, con abundancia de cilios, y placas del ectoplasma ornamentadas,
macronúcleo globular y central (Warren, 2015), extremo posterior con un cilio alargado y la
abertura oral con cilios finos y largos, su movimiento es ondulatorio y rápido.
9.3.17 Dididium nasutum
Filo: Ciliophora
Clase: Litostomatea
Orden: Haptorida
41
Familia: Didiniidae
Género: Didinium
Especie: Didinium nasutum (Müller, 1773)
Forma de barril, el extremo posterior curvo y una trompa en forma de cono, posee dos coronas de
cilios, su macronúcleo es alargado y curvo (Leonova et al, 2006). Se le asocia generalmente como
predador exclusivo de Paramecium sin embargo Berger, (1979) y Quaíni, (2011) mencionan a
otros ciliados.
9.3.18 Colpidium colpoda
Filo: Ciliophora
Clase: Oligohymenophorea
Orden: Himenostomatida
Familia: Tetrahymenidae
Género: Colpidium
Especie: Colpidium colpoda (Losana, 1829)
Contorno alargado, cilios abundantes en el extremo posterior, el citostoma se sitúa a un costado,
se encontró en aguas con abundante materia orgánica en descomposición y bacterias de las que se
alimenta, generalmente se asocian como bioindicador de hábitats muy contaminados (Shahwani y
Horan, 1991).
42
9.3.19 Tachysoma
Filo: Ciliophora
Clase: Spirotrichea
Familia: Oxytrichidae
Género: Tachysoma (Stokes, 1887)
Cuerpo cilíndrico, con numerosos cirros largos en el extremo redondeado anterior y posterior, su
contorno según Guillén (2011) se encuentra rodeado de cerdas rígidas que posiblemente le sirven
para estabilizarse, su cara ventral es plana y la dorsal convexa (Aladro y Martínez, 1990)
9.4 Consideraciones adicionales
Se destacaron los siguientes estudios taxonómicos que identifican familias y géneros re-
descritos:
Burki et al (2009) menciona a Centrohelida relacionado con el clado SAR que comprende
stramenopilos, alveolatas y Rhizaria. Por su parte Zlatogursky, (2016) menciona a la familia
Raphidiophryidae como polifilética y se insiste en el estudio de la evolución de las cubiertas
celulares como ancestralmente orgánicas y como motivo de la ramificación de Acanthocystis y
Polyplacocystis. Según Amaral et al, (2000) se debería disolver la familia Hartmannellidae ya que
por algunos de sus SSUrDNA el género Hartmannella parece estar más relacionado con
Acanthamoeba. También aunque no se reportó para este estudio es importante mencionar a
Dileptus anser nombrado en Streble et al (1987 pg. 238) frecuentemente confundido con litonotus
y al que se le debe brindar especial cuidado ya que este presenta grandes cambios y confusiones
43
taxonómicas, Vďačný et al (2011) proponen su trasladado a otros géneros, como
Pseudomonilicaryon y Rimaleptus; luego Berger y Foissner (2014), presentan a Dileptus
margaritifer (Ehrenberg, 1833) (Dujardin, 1841), re-descrita por Foissner et al. (1995), como la
especie tipo de Dileptus que originalmente fue mal identificado.
44
10. CONCLUSIONES
Los canales externos del cementerio Campos de Cristo presentaron mayor riqueza de especies en
comparación con los internos, sin embargo se percibe que la variable de precipitación es la que
influye directamente en la presencia de los protozoos por lo que estos son más abundantes durante
los muestreos en días sin lluvia.
En los puntos de colecta número 4 y 5 se encontraron organismos que mostraron las redes tróficas
existentes en los canales, así mismo su riqueza fue más alta lo que probablemente se deba a la
conexión directa con los lugares externos al cementerio.
Frente a los estudios de riqueza de protozoos la metodología presente en este documento es
apropiada ya que teniendo en cuenta su fragilidad permite observar mayor número de individuos
en menor tiempo.
45
11. RECOMENDACIONES
Se sugiere incrementar los esfuerzos de colecta así como realizar el análisis de parámetros
fisicoquímicos, en cuanto a los canales es importante determinar si estos tienen conexión directa
con el rio Bogotá.
Es importante aumentar los estudios sobre protozoos de vida libre así como unificar la taxonomía
de tal manera que se evite su re-identificación.
46
12. REFERENCIAS
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Disponible en
https://books.google.com.co/books?id=AlrLZx6UHvUC&pg=PA139&dq=tachysoma&hl=es&sa
=X&ved=0ahUKEwjA0Z3m_ZfcAhWvs1kKHd6rBr4Q6AEIVTAG#v=onepage&q=tachysoma
&f=false
Aladro, Reyes y Olvera, 2009, Diversidad de los protozoos ciliados, Laboratorio de Protozoología,
Departamento de Biología Comparada, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de
México, Rev Diversidad biológica e inventarios, pag 61, disponible en
http://www.repsa.unam.mx/documentos/Aladro-Lubel_et_al_2009_protozoos.pdf
Amaral, Nerad, TA, O'Kelly, CJ, Peglar, MT, Gillevet, PM, Silberman, JD y Sogin, ML, 2000,
Una reevaluación molecular de las amebas Leptomyxid. Protista 151, 275-282.
Arcay y Bruzual, 1993, Cryptosporidium en Ríos de Venezuela, encuesta epidemiológica de una
población Humana y fauna en convivencia. Parasitol, disponible en
http://pesquisa.bvsalud.org/portal/resource/pt/lil-130710?lang=fr
Barker, R. J. (1948) The status of the Protozoa. Nature 161:548-551.
Barrios M, Barrios E, Marquez M, Hernández R, Quintana J, Ojeda O, (2013), Efecto de los
microorganismos acuáticos (rotífera y ciliata) sobre la emisión de cercarias de Schistosoma
mansoni, por Biomphalaria glabrata en el laboratorio, Salus vol.17 supl.1 Valencia, disponible en
http://www.scielo.org.ve/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1316-71382013000400006
47
Bartram, J. & Balance, R. (1996). (Ed.)Water Quality Monitoring: A Practical Guide to the Design
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13. ANEXOS
13.1 Tabla 3 Descripción de los principales filo
Tabla 3 detalla las principales características de los filos adaptados de Brusca y Brusca (2005), resalta locomoción, reproducción,
organelos especializados y sustancias de reserva
Filo
Flagelos
diferentes
(número)
Extensión
del
citoplasma
Cilios Axopodios Reticulopodios Deslizamiento AusentesCrestas
discoidales
Crestas
tubulares
Crestas
vesicularesVesicular Múltiples Hiperpoliploide Diploide
Permanentemente
condensado
Pleuromitosis
intranuclear
cerrada sin
centriolos
Pleuromitosis
extranuclear
cerrada sin
centriolos
Pleuromitosis
semiabierta
Ortomitosis
intranuclear
cerrada
Ortomitosis
abierta sin
centriolos
Si presenta(sin
detalle)No presenta
Fisíon
longitudinal
binaria
(simetrogénica)
Conjugación Gametica Mitosis MeiosisAutogami
a
Si
presenta
(sin
detalle)
Fisíon
longitudinal
binaria
(simetrogénica)
Fisión
binaria
transversal
Fisión
binaria
Fisión binaria
simetrogénica
Fisión
múltiple
Fisión
endopoligeniaGemación
Clorofila
a
Clorofila
b
clorofila
c1
Clorofila
c2
Ausente Almidón Aceite Laminaria Glucógeno AmilopectinaAusen
tes
Presen
tes
Euglenida x (2) x x x x x x x x x
Kinetoplastida x (2) x x (1) x x x x
Ciliophora x x x (macronucleo)
x
(micronú
cleo)
x
(micronúcleo) x x x x
Apicomplexa x x x (1) x x x x x x x
Dinoflagelata x (2) x x x x x x x x x x
Stramenopila x (2) x (cortas) x (1) x x x x x x x x x
Rizopoda x x x (1) x x x x x
Actinopoda x x x
x (exc
heliozoos)
x
(heliozoos
) x x x x
Granuloreticulosa x x x (1) x x x x x x
Diplomonadida x (8) x x (2)
x (sin
centriolos) x x x
Parabasilida x (4- miles) x x x x x x x
Mitocondría Locomoción Reservaplastos ó
plastidos División nuclearNúcleo Formas fotosintéticas Reproducción AsexualReproducción Sexual
61