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Liceo de Cariari
Proyecto de Biociencia
La influencia de tres sustratos sobre el crecimiento primario del follaje de la hortaliza
Capsicum annuum L. en La Argentina, Cariari, Limón
Estudiantes
Diayner Baltodano Zúñiga
Kendy Valverde Vargas
Tutor
MSc. Mauricio Pérez Gutiérrez
Año
2014
2
Resumen
El presente trabajo, tiene como objetivo investigar la influencia de tres sustratos sobre el
crecimiento primario del follaje (CCPF) de la hortaliza Capsicum annuum L. Debido a que
hoy en día los agricultores del pueblo de Campos Dos, Cariari han iniciado el cultivo de
este, sin embargo en ocasiones las condiciones de suelo no contribuyen en el proceso de
siembra y producción de dicho cultivo ya que la presencia de plagas y los componentes que
poseen los suelos no son los necesarios para el desarrollo de este.
Para llevar a cabo esta investigación, se utilizó un total de 90 plantas las cuales se
dividieron en tres grupos, uno de estos como grupo Control y los dos restantes se
emplearon como grupo tratamiento, los cuales fueron el grupo A tratado con la mezcla de
Tierra (T), Biocarbón (BC) y Piedra Pómez (PP) y el grupo B tratado con Tierra (T),
Cascarilla de Arroz (CA) y Fibra de coco (FC), con respecto al grupo Control se trató
únicamente con el sustrato de Tierra (T). De igual forma, es fundamental mencionar que
cada una de las 30 plantas de cada grupo en estudio fue seleccionada al azar por una
persona ajena al trabajo.
Por otro lado, las mediciones de cada planta se llevaron a cabo cada 4 días, con una cinta
métrica ±0,05 cm. Una vez recopilados los datos por medio de tablas y bases de datos en
hojas de cálculo Excel 2013, se sometió al análisis de la prueba Kruskal-Wallis con un
nivel de significancia alfa de 1%.
A partir del análisis de los datos obtenidos se llegó a la conclusión de que si existe una
influencia significativa del tipo sustrato sobre el CCPF, debido a que el grupo A el cual se
trató con sustrato de (T, BC, PP) fue el que presentó un mayor CCPF. Mientras que el
grupo Control y el grupo B difieren de este, pero ambos poseen medianas similares.
3
Tabla de contenido
Introducción .......................................................................................................................... 5
Justificación ........................................................................................................................... 7
Antecedentes ......................................................................................................................... 9
Pregunta .............................................................................................................................. 11
Objetivo general .................................................................................................................. 11
Objetivos específicos ........................................................................................................... 11
Hipótesis .............................................................................................................................. 12
Nula .................................................................................................................................. 12
Alternativa ....................................................................................................................... 12
Hipótesis estadística ........................................................................................................ 12
Variables .............................................................................................................................. 13
Variable dependiente ...................................................................................................... 13
Cambio de crecimiento primario. .............................................................................. 13
Variable independiente ................................................................................................... 13
Sustratos. ...................................................................................................................... 13
Variable controlada ........................................................................................................ 13
Agua. ............................................................................................................................. 13
Temperatura. ............................................................................................................... 14
Brillo solar. ................................................................................................................... 14
Humedad. ..................................................................................................................... 14
Suelo.............................................................................................................................. 14
Perspectiva teórica .............................................................................................................. 15
Distribución del cultivo de la planta Capsicum annuum L. a nivel geográfico .......... 15
Morfología y fisiología de la planta ............................................................................... 17
Problemas que afectan el crecimiento y desarrollo del Capsicum annuum L. .......... 20
Influencia de la aplicación de tres sustratos diferentes sobre el crecimiento vertical
del de la planta Capsicum annuum L. ........................................................................... 24
Materiales y Método ........................................................................................................... 30
Descripción del área de estudio ..................................................................................... 30
Trabajo de campo ........................................................................................................... 31
Método de control de variables ......................................................................................... 32
Variable dependiente ...................................................................................................... 32
4
Cambio de crecimiento primario. .................................................................................. 32
Variable independiente ...................................................................................................... 32
Sustratos. ......................................................................................................................... 32
Variables controladas ......................................................................................................... 32
Agua. ................................................................................................................................ 32
Temperatura. ................................................................................................................... 33
Brillo solar. ...................................................................................................................... 33
Humedad. ......................................................................................................................... 33
Suelo. ................................................................................................................................ 33
Germinación y cultivo de la plántula. ........................................................................... 34
Proceso de inoculación de suelo. .................................................................................... 34
Preparación de mezclas. ................................................................................................. 35
Trasplante de las plántulas. ........................................................................................... 35
Proceso de inoculación en los sustratos con TRICHO – AID WP 1,5 x 1010
conidios/gramos de producto. ........................................................................................ 36
Definición y selección de muestra .................................................................................. 37
Tratamiento estadístico .................................................................................................. 37
Resultados y análisis ........................................................................................................... 39
Discusión .............................................................................................................................. 49
Conclusión ........................................................................................................................... 53
Recomendaciones ................................................................................................................ 55
Referencias .......................................................................................................................... 56
Anexos .................................................................................................................................. 62
5
Introducción
La hortaliza Capsicum annuum L. es caracterizada por el gran interés que causa
para su cultivo y su producción a nivel mundial, ya que es cultivada en países tales como
los Estados Unidos, México, Venezuela y China. Del mismo modo, esta permite obtener
grandes ingresos económicos y opciones referidas al aspecto alimenticio, por esto es
catalogada como uno de los productos con mayor interés nutricional.
Del mismo modo, dicha planta presenta aspectos importantes con respecto a los
beneficios que esta posee, tal es caso de la Vitamina A y B. Además, es empleada para la
obtención de colorantes, la fabricación de tratamientos para la garganta y para problemas
respiratorios tales como el asma.
Sin embargo, es importante tener presente que tanto para el desarrollo de la planta
como para la cosecha del fruto se deben contar con las condiciones adecuadas, y
principalmente realizar el tratamiento con un sustrato que aporte los nutrimentos
esenciales. Este va a formar parte del desarrollo de la raíz para permitir absorción de agua
adecuada y por ende facilitar el paso de los nutrientes a nivel interno.
Por otro lado, el Capsicum annuum L. tal como se mencionó en el apartado anterior
puede ser cultivado en diferentes países pero, siempre y cuando las características
climáticas se adecuen a dicho cultivo debido a que la temperatura no puede ser muy alta ni
muy baja porque inhibe el proceso de crecimiento y producción de la planta. Por lo que se
recomienda que para que obtener buenos resultados a partir del cultivo de este las
temperaturas no excedan de los 30 ºC ni disminuyan de los 12 ºC.
6
Asimismo, debe quedar claro que para cada periodo de desarrollo de la planta esta
necesita de un grado de temperatura específico. Además, para obtener un buen resultado no
debe de quedar por fuera que se necesita de un sustrato el cual brinde los nutrientes
necesarios para el crecimiento y desarrollo tanto de las hojas como de los frutos.
La importancia de la presente investigación radica con el fin de buscar el tipo de
sustrato que mejor se adapta para un satisfactorio crecimiento y por ende una sobresaliente
producción de Capsicum annuum L. en el pueblo de La Argentina, Cariari, Limón.
7
Justificación
Costa Rica es conocida por su diversidad en aves, plantas y sistemas
hidrográficos. Esto la convierte en uno de los países más destacados. Una de las
instituciones encargadas de llevar a cabo este tipo de investigación es el INBio1. Donde se
menciona que “utilizando cifras conservadoras, se estima que aproximadamente un 10% de
las plantas de Costa Rica son endémicas (alrededor de unas 1200 especies), dato que podría
aumentar o reducirse conforme se exploran áreas poco estudiadas” (INBio, s. f., sección
Endemismo, párr.4). Igualmente otro de los entes que contribuyen en el área de
investigación, es la UCR2.
La planta Capsicum annuum L. presenta un gran interés comercial a nivel mundial
debido a que es cultivada en varios países, lo cual en ocasiones provee de beneficios a la
zona en la cual se cultiva. De la Rosa Partida (2001) menciona que “el cultivo del chile
tiene una gran importancia económica a nivel mundial. Sus frutos constituyen un
importante artículo de consumo, altamente apreciado por su color (…)” (p.16), por tanto un
mejoramiento en los métodos de cultivo contribuiría a tener una mejor producción de este y
por ende más ganancias económicas. De esta forma se evidencia la importancia que
presenta dicho cultivo en las áreas en cuales se suele cultivar.
Por otro lado, cabe mencionar que dicha hortaliza presenta aspectos importantes con
respecto a alimentación como tal. Uquiche, Villarroel y Cisneros (2002) indican que “los
pimentones son hortalizas de composición interesante, debido a que constituyen una
excelente fuente de pigmentos y nutrimentos (1), tales como la vitamina C y E, los cuales
ayudan a reducir el riesgo de enfermedades cancerígenas (2).” (Introducción, párr. 1), por
1 Instituto Nacional de Biodiversidad. 2 Universidad de Costa Rica.
8
lo que una buena producción de chile ayudaría a una mayor obtención de nutrimentos y
vitaminas necesarias para el ser humano. Con lo anterior se muestra la importancia del
Capsicum annuum L. para el ser humano.
Asimismo, se debe de mencionar que dicha hortaliza presenta características en
ciertas ocasiones las cuales puede ocasionar el deterioro de este. Por ejemplo “El deterioro
por flaccidez y marchitamiento son los principales problemas que reducen la vida útil de
los pimentones después de cosechados.” (Uquiche, Villarroel y Cisneros, 2002,
introducción, párr. 2), por tanto se interpreta que para dichos aspectos se debe de tener un
tratamiento adecuado. Con respecto a lo anterior se debe de buscar y emplear un método el
cual contribuya al mejoramiento y cuidado de este.
9
Antecedentes
A partir de la revisión de la literatura acerca de trabajos realizados con respecto al
Capsicum annuum L. se tiene que en el 2001, Delgado y Lara de la Universidad Autónoma
de Zacatecas publicaron su estudio acerca de la producción de chile (Capsicum annuum L)
con cubrimiento plástico del suelo y frecuencia de riego por goteo. En cual mencionan que
el Capsicum annuum L es uno de los cultivos más importantes para el área de Zacatecas.
Sin embargo; este necesita de un riego adecuado para su posterior producción.
Del mismo modo, en dicho estudio mencionan la importancia que este presenta para
México, por lo que Delgado y Lara (2001) indican que “el chile (Capsicum annuum L.),
después del jitomate, es el cultivo hortícola más importante desde el punto de vista
socioeconómico y alimenticio en México” (p.1). Por lo cual, se evidencia la importancia
económica que este puede llegar a generar si se trata en las condiciones adecuadas.
Además, dicho estudio contribuye al empleo de los sistemas de riegos adecuados
para la producción de Chile, ya que dentro del estudio el cual constaba de realizar tres
tratamientos con diferentes tipos de riego (riego diario, cada tres días, cada siete días y dos
condiciones de acolchonado) debido a que se trataba de un experimento factorial, se tuvo
como resultado que el riego diario y el riego cada tres días por lo cual esto permite fueron
los más eficientes por lo cual, para posteriores estudios o tratamientos es adecuado emplear
dicho métodos de riego para legar a obtener buenos resultados.
Durante las mismas consultadas realizadas se encontró otro documento titulado
Evaluación agronómica de siete cultivares de pimentón (Capsicum annuum L.) el cual fue
elaborado por Montaño y Cedeño en el 2002, el cual proviene de la Revista UDO Agrícola.
10
Dicho estudio se llevó a cabo en la Estación experimental hortícola de la Universidad de
Oriente, Jusepín, estado de Monagas.
De esta misma forma, Montaño y Cedeño (2002) señalan que el propósito de dicha
investigación fue “evaluar el comportamiento agronómico de siete cultivares de pimentón
(Capsicum annuum L.).” lo cual brinda información para mejorar el cultivo de este en caso
de querer cultivarlo para interés comercial, ya que dicho producto presenta características y
potencial de consumo importantes tales como la presencia de vitamina A y vitamina C los
cuales proporcionan beneficios al sistema inmunológico y producción de colágeno
correspondientemente.
Otras de las investigaciones con respecto a dicha hortaliza, consiste en un artículo
de la Revista Chapingo serie Horticultura que se realizó en México en el 2011, del
Departamento de Fitotecnia, de la Universidad Autónoma Chapingo. Dicho estudio se
focalizó en la Diversidad morfológica en colectas de chile guajillo (Capsicum annuum L.)
del centro-norte de México.
En dicho estudio de empleó un diseño experimental de bloques completo realizado
en la zona del Campo Experimental de la Universidad Autónoma Chapingo, en Chapingo
Estado de México, para ello se utilizó semilla las cuales fueron sometidas al proceso de
germinación para su posterior trasplante.
Cabe mencionar que en dicho estudio se muestra la importancia a nivel
gastronómico que presenta dicha hortaliza por lo que Moreno, Avendaño, Mora, Cadena,
Aguilar y Aguirre mencionan que este “… se usa principalmente para la elaboración de
pastas para moles que se incorporan en diferentes platillos regionales.” (p. 24) a partir de
esto se evidencia el aporte que posee dicho cultivo, por lo que un buen tratamiento
permitiría obtener buenos resultados de venta.
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Pregunta
¿Cuál es la influencia de tres sustratos sobre el crecimiento primario del follaje de la
hortaliza Capsicum annuum L.?
Objetivo general
Investigar la influencia de tres sustratos sobre el crecimiento primario del follaje de la
hortaliza Capsicum annuum L.
Objetivos específicos
Describir la distribución del cultivo de la planta Capsicum annuum L. a nivel
geográfico.
Describir la morfología y fisiología de la planta Capsicum annuum L.
Explicar los problemas que afectan el crecimiento y desarrollo de la planta
Capsicum annuum L.
Explicar la influencia de la aplicación de los tres sustratos diferentes sobre el
crecimiento vertical del de la planta Capsicum annuum L.
Determinar la existencia de diferencias estadísticamente significativas en el
crecimiento primario entre el grupo Control y los grupos tratamiento.
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Hipótesis
Nula
Las medianas del crecimiento primario del follaje de la planta Capsicum annuum L. son
iguales en todos los grupos.
Alternativa
Las medianas del crecimiento primario del follaje de la planta Capsicum annuum L. no
son iguales en todos los grupos.
Hipótesis estadística
H0: M1 =M2 = M3
H1: M1 ≠ M2 ≠ M3
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Variables
Variable dependiente
Cambio de crecimiento primario.
“Crecimiento a lo largo producido por los meristemos apicales” (Campbell, Mitchell
y Reece, 2001, p. 628)
Variable independiente
Sustratos.
“Un sustrato es todo material sólido distinto del suelo, ya sea natural o de síntesis,
residual, mineral u orgánico, que, colocado en un contenedor, en forma pura o en mezcla,
permite el anclaje del sistema radicular de la planta, desarrollando el papel de soporte para
la planta”. (Díaz, 2004, p.45)
Variable controlada
Agua.
El agua se define como “el líquido más abundante de la corteza y uno de los pocos
líquidos naturales.” (Sánchez, s.f., p.1)
14
Temperatura.
Domínguez, De pro Bueno y Gracía-Rodeja (1998) la definen como “una magnitud
intensiva, relacionada directamente con la energía cinética molecular media de las
partículas y, en consecuencia, con la agitación de las mismas” (p.464).
Brillo solar.
Gonzalo (1994) menciona como brillo solar “la cantidad de horas en que los rayos
de sol llegan a un lugar determinado durante el día” (p.207).
Humedad.
Se define como la unidad de “…grado de saturación del aire a cualquier temperatura
dada, se expresa en porciento (%) de saturación.” (Díaz y Barreneche, 2005, p.24)
Suelo.
Es definido como “el sitio donde viven y crecen las plantas y animales, los cuales
son altamente importantes en el mantenimiento de la vida humana” (Casanova, 2005, p. 15-
17 capítulo 1).
15
Perspectiva teórica
Distribución del cultivo de la planta Capsicum annuum L. a nivel geográfico
La planta Capsicum annuum L. se caracteriza por presentar un crecimiento
substancial bajo condiciones protegidas. Por esta razón, García (2008) hacen mención a que
“el pimiento es uno de los cultivos hortícolas bajo invernadero con mayor superficie
cultivada en nuestro país, localizándose casi la mitad de la producción en Almería, Alicante
y Murcia.” (p.7), considerando lo expuesto anteriormente se interpreta que dicho cultivo se
caracteriza por presentar un buen crecimiento en condiciones que rondan los 25 °C. Por lo
tanto para obtener un buen crecimiento y desarrollo de dicha planta las temperaturas no
deben de excederse en gran cantidad los 30 °C.
Asimismo, esta planta se destaca por ser cultivada en una variedad de zonas y países
los cuales poseen temperaturas aptas para el desarrollo de este. Por lo que Orellana,
Escobar, Morales de Borja, Méndez de Salazar, Cruz y Castellón (2003) mencionan que
“Actualmente se cultiva en la mayoría de los países tropicales y subtropicales del mundo,
siendo China, Estados Unidos y México los principales productores.” (p.8), de esta forma
se evidencia que realmente el cultivo es adaptable a las condiciones de distintos países,
siempre y cuando las temperaturas sean las óptimas para su desarrollo. Por lo tanto, se
obtiene que para el cultivo de esta planta el país donde se quiera cultivar no es significativo,
sino las condiciones ambientales a las cuales deberá de estar expuesto tanto para el
desarrollo del follaje como para la raíz.
16
Tal y como se ha venido hablando de los países más destacados con respecto al
cultivo de dicha planta se tiene que México es uno de los más destacados. Por lo que
COVECA (2011) menciona que este “destaca a nivel mundial por tener la mayor
variabilidad genética de Capsicum annuum, que ha dado origen a un gran número de
variedades o tipos de chiles, entre los que destacan el serrano, jalapeño, ancho, pasilla,
guajillo y de árbol.” (p.4) debido a esto se interpreta que no solo es de gran interés a nivel
de desarrollo y producción sino también de mejoramiento y variabilidad del producto. Por
tanto las condiciones que presenta México han contribuido al tratamiento de dicha planta y
por ende cada día buscar un mejoramiento para la producción de este.
En relación a lo mencionado, dicho cultivo necesita de condiciones adecuadas para
su crecimiento y desarrollo. Con respecto a esto Montes (2010) menciona que:
…para esta especie el periodo del cultivo de chile requiere una
temperatura media diaria de 24 °C, por debajo de 15 °C el
desarrollo de la planta es muy reducido y cuando la temperatura es
menor a los 8 a 10 ºC las plantas detienen su desarrollo. (p. 22)
Por lo que se puede interpretar que una temperatura muy baja reduciría el
crecimiento de este y provocaría un crecimiento muy lento. De este modo, para mantener
un crecimiento constante la temperatura debe de mantenerse dentro del rango adecuado
debido a que un aumento a una disminución de esta igualmente afectaría al cultivo.
Por otro lado, cabe mencionar que la siembra y la producción de este se puede dar
bajo diferentes métodos. Tal y como lo menciona Montes (2010) “C. annuum es la especie
más cultivada y se utiliza en diferentes sistemas de producción, tanto a cielo abierto, como
en agricultura protegida, para los cuales utiliza diferentes variedades mejoradas tanto en
17
tipos de chile como en su ambiente de plantación.” (p. 4), por tanto se interpreta que en
caso de no contar con las instalaciones adecuadas para el desarrollo de este, se puede
emplear el método a cielo abierto siempre y cuando las temperaturas sean favorables. De
este modo, el sistema y la oportunidad de cultivarlo es más abierto debido a que no posee
un sistema de producción determinado.
Morfología y fisiología de la planta
En lo que respecta a esta hortaliza se debe mencionar que forma parte de una gran
familia, de los cuales se pueden obtener un producto completo debido a que poseen la
capacidad de producir frutos con semillas. “El pimiento es una angiosperma perteneciente
a la familia Solanácea y su nombre científico más generalizado es Capsicum annuum,
Leonian.” (Ezziyyani, s. f., p.1), de este modo al formar parte de las plantas angiospermas
esta hortaliza también posee en sí misma las semillas, por lo que puede dar paso a nuevas
plántulas para la producción del mismo fruto. De esta manera se puede interpretar que la
estructura fisiológica del Capsicum Annum L. está bien completa.
Los nutrimentos que posee la hortaliza han sido absorbidos mediante el contacto de
la raíz con el sustrato correspondiente al cual fue sometida. Por lo que se puede mencionar
que “…el chile absorbe por las raíces la totalidad de los nutrimentos que la planta necesita
para su crecimiento; también, por ejemplo cuando se aplica un fertilizante foliar, el follaje
absorbe pequeñas cantidades de algunos nutrimentos.” (CATIE, 1993, p. 13), de esta
manera se evidencia la importacia de la relación raiz-sustrato dentro de la estructura de la
planta ya que esta tiene un papel fudamental. Por tanto, al existir una buena relación entre
el sustrato-raíz se puede conseguir una buena obtencion de nutrientes y un buen progreso de
crecimiento como tal.
18
Del mismo modo, cabe mencionar que esta hortaliza cuenta con características
específicas en relación a su aspecto radicular y vegetativo ya que, “…es una plana anual
herbácea, con sistema radicular pivotante y profundo que puede llegar hasta 70-120 cm,
provisto y reforzado de un número elevado de raíces adventicias. (García, 2008, p.5), por lo
que se entiende que en ocasiones las cosechas de Capsicum annum L. tienden a poseer
poca raíz dependiente del sustrato en cual esté cultivado. No obstante, esto causa que la
absorción de nutrientes de estas sea menor con respecto a las que poseen más raíz. Por lo
que el mantenimiento o la siembra de dicha planta en un sustrato adecuado conllevan a la
raíz pueda realizar de mejor manera su función de absorción de nutrientes para favorecer el
proceso de cosecha de pimientos más frondosos y dulces.
En lo que respecta a esta hortaliza, la transpiración cumple una función primordial
ya que no solo se muestra el hecho de que elimina el agua que no se utiliza dentro de la
misma sino que también “…la transpiración sirve para concentrar los nutrientes que la
planta toma por la raíz, como también es el factor esencial en la absorción del agua por el
xilema al tiempo que es fundamental en la distribución de los nutrientes en al [sic] planta.”
(Anguiano, 2010, p. 40). Lo cual evidencia que este proceso de transpiración también va a
influir en lo que corresponde a la buena distribución de nutrientes por el organismo vegetal
y también el buen funcionamiento fisiológico de la planta. Entonces, al haber un sustrato
con nutrientes necesarios y un buen funcionamiento fisiológico, la planta va a tener
condiciones óptimas que permiten un buen desarrollo de su plántula.
Por otro lado, con respecto al desarrollo y producción de flores estás se ubican en
las zonas intermedias de la planta y sin embargo se consideran abundantes, Vidal (2007)
indica que “están localizadas en los puntos donde se ramifica el tallo o axilas,
encontrándose en número de una a cinco por cada ramificación.” (p.19). Por lo tanto se
19
puede interpretar que la presencia de buenas condiciones tanto de suelo como de condición
atmosférica contribuye al desarrollo de estas. Así pues, es recomendable mantenerlas
expuestas con suelos adecuados para que estos brinden un mejor crecimiento durante la
primera etapa de absorción de nutrientes.
En relación a las hojas, debe quedar claro que presentan características que las
hacen verse de gran tamaño. Tal y como lo mencionar Vidal (2007) “se caracterizan por ser
enteras, lampiñas y lanceoladas, con un ápice muy pronunciado (acuminado) y un pecíolo
largo y poco aparente.” (p.18), por ejemplo un buen sustrato contribuye a que la planta
pueda mejora el aspecto de las hojas, tal es el caso del biocarbón el cual es requerido por la
planta durante su segundo periodo de crecimiento debido a la absorción de nitrógeno. De
este modo, se recomienda emplear un sustrato adecuado para el desarrollo de estas.
A través del proceso de crecimiento el fruto tiende un sufrir una serie de cambios
los cuales llegan a beneficiar las cosechas o bien influir de manera negativa. García (2008),
mencionan que “durante la maduración del fruto se producen cambios cuantitativos en su
composición asociados a cambios cualitativos de color, sabor, textura y olor.” (p.6), por lo
que interpreta que entre más nutrientes logre absorber la plántula sus cosechas tendrán
mejores resultados. De manera que, cultivarlas en un sustrato el cual favorezca la absorción
de nutrientes necesarios para dicha planta contribuiría en el mejoramiento fisiológico de
esta y por ende puede presentar un mejor aspecto.
20
Problemas que afectan el crecimiento y desarrollo del Capsicum annuum L.
En ocasiones la planta de Capsicum annuum L. presenta una variabilidad
considerable con respecto a su altura, esto depende de las condiciones a las cuales sea
expuesta. Por lo que Campos (2009) menciona que “La planta de chile dulce es una
herbácea perenne, de porte variable entre los 0.60 m y más de 2 m de altura, dependiendo
principalmente de la variedad, de las condiciones climáticas y del manejo.” (p.3), por
consiguiente se evidencia que conforme se presenten cambios climáticos, estos van a
provocar un efecto en el crecimiento de la planta como tal. Por lo que, lo recomendable
sería iniciar el tratamiento bajo condiciones estables y controladas para poder así inhibir la
variabilidad del crecimiento.
Además, las bajas condiciones climáticas no sólo son un factor que incide en el
crecimiento de esta hortaliza sino que también las altas temperaturas “…provocan el aborto
(caída) de botones florales y flores; sin embargo, las bajas temperaturas durante la noche
pueden compensar parcialmente las altas temperaturas del día.” (CATIE, 1993, pp. 15-16).
Con lo anterior se evidencia que a pesar de que las altas temperaturas van a tener
repercusiones negativas en la hortaliza, las bajas temperaturas de la noche en cierta medida
podrían compensar la condición climática del día. De esta manera se evidencia que en
zonas donde el clima es elevado durante el día también se pueden cosechar frutos de esta
planta.
En lo que respecta a uno de los problemas que afecta con mayor fuerza el desarrollo
de la planta está la tasa respiratoria la cual se puede ver afectada por factores como la
temperatura, por lo cual coincide directamente con la hortaliza a utilizar ya que esta
también es sensible a los cambios de temperatura. “Uno de los factores abióticos más
21
significativos entre los que afectan a la tasa respiratoria es la temperatura.” (Ribas, Flórez
y González, 2013, p.280), de esta manera la utilización de la hortaliza Capsicum annum L.
se vuelve un factor a favor. Ya que al tratar esta hortaliza se podrían notar los cambios de
liberación de CO2 con respecto a la temperatura a la que sea expuesta la misma.
De la misma forma, se debe hacer mención que no solo los factores abióticos
provocan daños en la planta. “Existen plagas invertebradas (insectos, ácaros, nematodos,
moluscos); organismos patógenos (hongos, bacterias, virus); así como las malezas y los
vertebrados (roedores, pájaros).” (Orellana, et al., 2003, p. 21), de manera que se debe de
mantener un sistema de cuidado no solo de factores ambientales sino también de plagas con
el fin de proveer seguridad a la planta y evitar con esto la perdida de esta. Por consiguiente,
es necesario emplear riegos o inoculaciones tanto al suelo como a la planta con el fin de
prevenir dichos problemas y obtener una mejor producción.
De modo similar, existen otros inconvenientes que pueden llegar a afectar el
crecimiento del Capsicum annuum L. Se considera que una de “las malezas más frecuentes
en el cultivo de chile dulce son: flor amarilla (Bidens pilosa), dormilona (Mimosa púdica),
pata de gallina (Eleusine índica), coyolillo (Cyperus rotundus) y zacate bermuda (Cynodon
dactylon).” (Orellana, et al., 2003, p. 21). Por lo tanto si no se tiene un control adecuado de
estas malas hierbas se estaría exponiendo el cultivo por lo cual podría acabar totalmente
con este. En consecuencia, la aplicación de tratamientos sobre los sustratos para inhibir
dichas hierbas sería la esencia para evitar la propagación de malezas, además el hecho de
desherbar la superficie cercana a las plántulas es de gran ventaja para que estas hierbas no
afecten el crecimiento de la hortaliza.
22
De igual forma, la falta de nutrientes puede ocasionar efectos parecidos a los
causados por los patógenos ya que ambos afectan tanto el crecimiento como el desarrollo
de la planta. Por este motivo “…cualquier factor que interfiera en la absorción radical,
induce el desarrollo anormal del cultivo y puede provocar síntomas similares a aquellos
causados por algunos patógenos; tal efecto puede resultar de deficiencias de nutrimentos en
el suelo.” (CATIE, 1993, pp. 13-14), lo cual evidencia que si en el sustrato donde se
encuentra la hortaliza hay carencias de nutrientes el desarrollo va a decrecer, por lo tanto
estas deficiencias impiden que el sistema radical actúen eficazmente con el fin de obtener
mejores resultados.
Igualmente, se deben tomar en cuenta factores que afectan el estrés hídrico de la
planta ya que interfieren en su producción. Por esta razón Orellana, et al., (2003)
mencionan que “para obtener rendimientos elevados, se necesita un suministro adecuado
de agua y suelos relativamente húmedos durante todo el período vegetativo.” (p. 19), de
esta manera queda en evidencia que el estrés hídrico va ser parte de los factores que afecten
el CCPF, por conseguirte para evitar el estrés hídrico de esta hortaliza es necesario el
suministro adecuado de agua y un sustrato que evite que la plántula se exponga a ambientes
secos.
23
El siguiente cuadro es tomado de un documento del CATIE3 el cual menciona los
aspectos que afectan al crecimiento del Capscium annuum L.
Cuadro 2. Factores bióticos y abióticos que pueden causar el estrés hídrico en el chile
dulce.
Fuente: Tomado de CATIE, 1993, p. 20.
3 Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza.
24
Influencia de la aplicación de tres sustratos diferentes sobre el crecimiento vertical del
de la planta Capsicum annuum L.
La hortaliza Capsicum annuum L. presenta gran versatilidad con respecto a los
tipos de suelo a los cuales se puede adaptar. En cuanto a esta variabilidad de aceptación de
suelos en la planta Anguiano (2010) señala que esta “…se adapta a diferentes tipos de
suelo, pero prefiere suelos profundos, de 30 a 60 centímetros de profundidad, de ser
posible, francos arenosos, franco limosos o franco arcillosos, con alto contenido de materia
orgánica y que sean bien drenados.” (p. 16). Esto muestra que a pesar de la buena
adaptación de la hortaliza a diferentes tipos de suelos, también posee ciertas características
específicas tales como el buen drenado. Así que, en caso de cultivar esta planta en
maceteros es necesario que estos no sean estrechos ya que van a ser un factor limitante en
el drenado y de igual forma si se utiliza un sustrato muy poroso.
Además, al momento de elegir el sustrato a utilizar para el cultivo de esta planta es
necesario saber cuáles son los nutrientes que se requieren tanto en mayor cantidad como en
menores. Con respecto a lo anterior en una investigación llevada a cabo en 1993, por el
CATIE se menciona que “los elementos que se requieren en cantidades mayores son el
nitrógeno, el fósforo y el potasio, y –en cantidades menores- el calcio, el magnesio, el
azufre, el hierro, el manganeso, el zinc, el boro y el cobre, en orden descendente de
cantidad.” (p. 15), así queda en evidencia que el elemento se requiere en mayor cantidad
para este cultivo es el nitrógeno y la que se requiere en menor medida el cobre. Por lo tanto,
el sustrato a utilizar en el mismo debe contenerlo en mayor medida para el buen desarrollo
de la planta.
25
Además, el fósforo va a ser un nutriente esencial en el desarrollo de la hortaliza
debido a que está presente tanto en el progreso radicular como en la última etapa de
crecimiento. Van (2001) explica que el fósforo “…estimula el desarrollo temprano de las
raíces y la floración, así como el crecimiento de las semillas y los frutos.” (cap. II), de esta
manera se puede interpretar que el sustrato que se debe utilizar para favorecer el desarrollo
de esta planta debe de proveer un alto contenido de fósforo. Así pues, al cultivar la hortaliza
en condiciones altas de este elemento su crecimiento y su desarrollo radicular se van a
potenciar en gran medida.
El requerimiento de los nutrientes va a variar conforme se desarrolla la planta ya
que cada uno de estos se encarga de ciertas características específicas. Con respecto a lo
anterior Rylski 1986, (citado en Azofeifa y Moreira, 2004) menciona que “El crecimiento
de la planta Capsicum annuum L. se divide en tres etapas, por lo que el requerimiento de
nutrientes depende de la etapa en la que se encuentre.”(p. 59), de esta manera se evidencia
que cada nutriente va a fortalecer partes concretas de la planta como la parte aérea y la
radicular dependiendo del nutriente encargado. Por lo tanto, en cada etapa del crecimiento
van a ver nutrientes esenciales para un sobresaliente desarrollo de la planta.
El desarrollo de una planta se inicia con su sistema radicular, por esto en esta
primera fase se va a necesitar de un nutriente que contribuya al mismo. En el 2009, Cabrera
descubrió mediante su proyecto acerca del consumo de agua y nutrientes en Chile
(Capsicum annuum) que los nutrientes de mayor consumo en esta hortaliza durante la etapa
I son el potasio, el nitrógeno y el calcio, en orden respectivo. (p. 12), de esta manera se
puede afirmar que el potasio va a contribuir con este desarrollo radicular al ser el nutriente
que más consume la planta en la primera etapa. Por lo tanto, se puede hacer mención a que
26
si el cultivo es tratado en un sustrato el cual cuente con grandes cantidades de potasio el
desarrollo del sistema radicular de la planta va a ser favorable.
La segunda etapa de crecimiento de esta hortaliza corresponde al desarrollo de la
plántula como tal. Rylski, 1986 (citado en Azofeifa y Moreira, 2004) señala que “La
segunda, una fase vegetativa o exponencial donde el crecimiento es rápido y el poder de
asimilación de la planta aumenta a medida que sus órganos se desarrollan.” (p. 59), por
esto se puede evidenciar que en esta parte del desarrollo la planta va a poseer un
crecimiento acelerado. De esta manera, si se cuenta con un sustrato que cuente con las
condiciones aptas para el buen desarrollo, en esta etapa se va a mostrar un rápido
crecimiento de los órganos de la hortaliza.
En lo que respecta al desarrollo de los órganos la planta va a necesitar tanto como
mayor número de nutrientes como también mayor cantidad de los mismos. Es por esto que
“…hay mayores exigencias nutricionales durante la etapa II que representa el crecimiento y
desarrollo vegetativo del cultivo.” (Cabrera, 2009, p. 12), así se demuestra que en la
segunda etapa hay mayor requerimiento de nutrientes al tener al cargo el desarrollo de los
órganos. De esta manera se puede indicar que si los elementos que contiene el sustrato
utilizado benefician esta etapa del desarrollo en la hortaliza se va a evidenciar un buen
crecimiento, esto con respecto a otra que esté cultivada en un sustrato que contenga pocas
cantidades los nutrientes necesarios en esta etapa.
La hortaliza en la última etapa de desarrollo va a detener el crecimiento acelerado de
sus órganos. “La tercera es una fase de estabilización, donde después del inicio de la
fructificación ocurre una disminución del crecimiento hasta estabilizarse.” Rylski 1986,
(citado en Azofeifa y Moreira, 2004, p. 59), de esta manera se evidencia que el
27
requerimiento de nutrientes en esta etapa también se a estabilizar, en donde lleva a que el
requerimiento de los mismos se vuelva constante. Así que, en esta etapa de desarrollo va a
haber menos exigencia de nutrientes ya que la planta ya ha extraído los necesarios para el
desarrollo de sus órganos.
El crecimiento de la planta Capsicum annuum L. se puede ver beneficiado por un
sustrato a base de biocarbón debido a que entre sus elementos principales están “El
nitrógeno, fósforo y potasio.” (Santander 2007, citado en Maza y Villa, 2011, p. 28). De
esta manera se puede mostrar que al ser el Biocarbono rico en nitrógeno podría potenciar el
crecimiento de esta hortaliza. Así que en el cultivo de esta hortaliza el biocarbón se vuelve
un elemento esencial para el desarrollo de la misma al poseer en altas cantidades de
nitrógeno.
El Biocarbono tiene diversas ventajas en los cultivos debido a sus características de
sus nutrientes y de su estructura. Con respecto a lo anterior Preston (2013) menciona que el
biocarbón “tiene el potencial de ayudar a mitigar el cambio climático, a través de la captura
de carbono.” (Preston, 2013, p. 304), de esta manera se puede destacar que los cultivos
tratados a base de este sustrato van a tener mayor rendimiento. Por lo tanto, el Biocarbono
puede demostrar su importancia en lugares que posean frecuentes cambios climáticos ya
que es de gran ayuda en el proceso de crecimiento de los cultivos.
A través de los años se han estado investigando los beneficios del uso del biocarbón.
Por esto, “recientes investigaciones sugieren que el sólido carbonizado (biocarbón) es
benéfico para la fertilidad del suelo en muchos contextos, e investigaciones recientes lo han
considerado como un método alternativo para la agricultura sustentable.” (Ibarrola-Evar-
Rear, 2013, p. 01). Así, se muestra la realidad de hoy con respecto al uso del biocarbón en
28
cultivos. De esta manera se sustenta la investigación ya que se pretende confirmar estas
enunciaciones mediante el trabajo de campo.
Además, existen otros sustratos que aportan gran cantidad de nutrientes a este
cultivo. Uno de estos es la fibra de coco ya que “posee un bajo contenido de N, Ca y Mg,
pero alto de K, P, Na y Cl.” (Patrón y Pineda, 2010, p. 19), al poseer altos contenidos de
potasio y de fósforo se puede interpretar que sería relevante su uso para la potenciación de
la primera etapa del crecimiento de Capsicum annuum L. Así, el sistema radicular de la
planta se va a desarrollar de la mejor manera al permitir un mejor anclaje de la planta al
sustrato y una buena absorción de agua y nutrientes.
La fibra de coco posee características que la hacen de un buen sustrato para plantas
que necesitan mantenerse húmedas. Entre estas características está que “el material es
liviano, poroso, y tiene una excelente capacidad de retención de humedad.” (Alvarado y
Solano, 2002, p. 29), así quedan en evidencia las características positivas de dicho sustrato.
Cabe mencionar que el aspecto de retención de humedad también puede volverse un factor
limitante ya que si este se encuentra acompañado de otro que posea sus mismas
características podría haber exceso de humedad en la planta de Capsicum annuum L.
Asimismo, la cascarilla de arroz también es un sustrato que puede beneficiar el
cultivo de esta hortaliza. Este sustrato “es un material rico en K y P, pero pobre en N.
Además posee grandes cantidades de Mn y B, es una fuente importante de Si.” (Patrón y
Pineda, 2010, p. 21), de esta manera queda evidenciado que al utilizar este sustrato se
estaría aportando al cultivo tanto la cantidad de potasio como la cantidad de fósforo. Por lo
tanto, al estar presentes estos elementos en el sustrato se estaría potenciando en la hortaliza
su capacidad de fortalecimiento del sistema radicular.
29
Existen sustratos que ayudan a establecer un buen drenaje para la hortaliza, como
por ejemplo la cascarilla de arroz. En el 2002, Alvarado y Solano afirman que “la
cascarilla es incorporada con facilidad en un medio para mejorar el drenaje.” (p. 26),
mediante esta afirmación se puede interpretar que la textura que este sustrato posee facilita
la capacidad de drenaje. Por esta razón, al utilizar este sustrato para el tratamiento de
Capsicum annuum L. se estaría asegurando que la planta va a tener condiciones necesarias
con respecto al sistema de drenaje.
La piedra pómez da beneficios a los cultivos de esta hortaliza por sus características
específicas. Tales como, “…la retención de humedad al presentar poros vesícula
interconectados de tamaño capilar que permiten el almacenamiento del agua y evitan que se
pierda rápidamente por evaporación.” (Segura 2003, citado en Gallegos, 2008, p. 28),
mediante esta afirmación se puede entender que al utilizar esta piedra en conjunto con un
sustrato que aporta los nutrientes necesarios para el desarrollo de su crecimiento en las tres
etapas va a ser favorable. De este modo el utilizar la piedra pómez es un factor positivo
para el tratamiento de dicha hortaliza.
30
Materiales y Método
Descripción del área de estudio
La zona Caribe es caracterizada por estar ubicada en la provincia de Limón la
cual posee altos grados de temperatura (29 ºC a 37 ºC). Sin embargo, cabe mencionar que
el lugar en el cual se llevó a cabo la presente investigación es catalogado como una zona
boscosa y montañosa de la provincia. Debido a esto en ocasiones aumenta la humedad del
área. Lo importante del caso es que estos aspectos climáticos, más la caracterización
geográfica contribuye al cultivo de ciertos productos para la economía como por ejemplo
hortalizas.
Con respecto al área de estudio posee una medida de 4 x 6 m, dicho terreno se
encuentra localizado en el pueblo la Argentina situado a 13 km del centro de Cariari. El
terreno se caracteriza por poseer una serie de nutrientes ricos para el cultivo de diferentes
plantas tanto ornamentales como no ornamentales, esto se evidencio a partir de un análisis
de suelo elaborado en la CORBANA4, ver anexo 5.
El terreno posee una elevación de 39 m.s.n.m localizado a W: 83, 40.626 y N: 25,
25.180, dichos datos fueron tomados con un GPS5. De igual forma, es importante
mencionar que los tres tratamientos diferentes estarán situados en un vivero el cual consta
de condiciones aptas tanto de día como de noche para el tratamiento de cultivos.
4 Corporación Bananera Nacional. 5 Garmin, map62S.
31
Trabajo de campo
Para el presente estudio se construyó un vivero el cual permitiera mantener las
plantas en adecuadas condiciones de temperatura, dicha estructura poseía 3 m de altura.
Además, este estaba rodeado de sarán color verde, y para el techo se empleó plástico para
invernadero. Debido al plástico y al sarán que protegían al vivero las temperaturas internas
de dicho lugar oscilaban entre el 30 ºC y los 42 ºC, por lo que se realizaron tapicheles de 1
x 4 m tanto al frente como en la parte trasera de este.
Asimismo, se realizaron tres tarimas con magnitudes de 20 x 4 m, las cuales fueron
colocadas a una altura de 50 cm del suelo para evitar que estas fueran afectadas por algun
animal.
32
Método de control de variables
Variable dependiente
Cambio de crecimiento primario.
El crecimiento primario se midió después del trasplante mediante una cinta métrica
(±0,05), esto cada cuatro días. Además, se colocó mediante el método de amarre, este
consistió en amarrar un mecate a 50 cm de cada hilera de plantas con el fin de amarrar un
hilo de cada una de ellas para darle soporte en el mecate. De esta manera, se aseguraría el
crecimiento vertical de cada una de las plántulas, véase anexos 6 y 7.
Variable independiente
Sustratos.
Los sustratos se controlaron mediante proporciones elaboradas de acuerdo a los
nutrientes de aporte en cada grupo. En este caso el grupo control tuvo solamente tierra. El
grupo A aportaría más nitrógeno al estar compuesto de tierra, bio-carbón y piedra quinta. El
grupo B fue más rico en fósforo ya que estaba constituido de tierra, cascarilla de arroz y
coco.
Variables controladas
Agua.
El agua se mantuvo controlada en dos etapas. En la primera etapa el agua
suministrada al día fue de 75 mL y en la segunda etapa se suministraron 90 mL de agua al
día. Se utilizó un recipiente de 100 mL para controlar estas cantidades.
33
Temperatura.
En el caso de la temperatura, se monitoreó con la ayuda de un termómetro de
mercurio (±/0,01). Esto únicamente se hizo para mantener el intervalo de temperatura al
cual se encuentran expuestas dichas plantas.
Brillo solar.
Se controló mediante la utilización de un plástico de vivero el cual se encuentra a 6
metros de altura de donde se ubican las plantas. Además un metro hacia abajo del plástico
se colocó un sarán de forma horizontal con el fin de reducir el impacto del brillo solar en
los cultivos.
Humedad.
Con respecto a la humedad, se aplicaron 75mL de agua una vez al día para cada
planta con el fin de no deshidratarla ni ahogarla, en caso de ser necesario ser hará dos veces
al día. De esta forma, se disminuye el error en cuanto a una influencia de la humedad con
respecto al crecimiento o pérdida de la planta.
Suelo.
El suelo se controló por medio de un estudio de nutrientes con el fin de saber que
nutrientes contiene en mayor cantidad, y así poder adaptar los sustratos adecuados para el
crecimiento del Capsicum annum L.
34
Germinación y cultivo de la plántula.
El trabajo consta de un total de 90 plantas de Capsicum annuum L. germinadas en
papel periódico húmedo para acelerar el proceso de crecimiento de la plántula. Una vez
germinadas las semillas fueron cultivadas en medio estañón plástico hasta que estas
llegaran al tamaño adecuado para el trasplante. Esto se realizó con el fin de tener un
crecimiento similar en todas las muestras y por ende conservar un rango de normalidad en
las pruebas estadística, véase los anexos 8 y 9.
Proceso de inoculación de suelo.
Durante el proceso de crecimiento de las plántulas se realizaron una serie de
inoculaciones al suelo con 25 ± 0,05 g de DEMOSAN 65% p/p y 8 ± 0,05 g de RAIZONE
94% sp por cada aplicación. Este método se utilizó con el fin de evitar que la plántula se
contagiara de algún hongo que estuviese presente en el terreno en el cual se cultivó para
asegurar un buen desarrollo del crecimiento raizal, siempre procurando que los productos
no tuvieran consecuencias secundarias para la plántula en su crecimiento como tal. Cabe
mencionar que para el presente estudio, en total se llevó a cabo 6 inoculaciones al suelo,
cuatro de estas aplicadas durante el periodo de crecimiento de la plántula y las dos restantes
una vez realizado el trasplante, tal y como se puede visualizar en el anexo 10.
35
Preparación de mezclas.
Se realizaron las mezclas respectivas para cada grupo según lo planeado, cada una
de ellas con sus pertinentes proporciones por ejemplo, en el caso de la mezcla del grupo A
las proporciones que se utilizan son las siguientes: 7 ± 0,1 kg de piedra pómez, 10 ± 0,1 kg
de tierra y por último el biocarbón con una masa de 13 ± 0,1 kg, para el grupo B se
emplearon 10 ± 0,1 kg de tierra, 5 ± 0,1 kg de cascarilla de arroz y 5 ± 0,1 kg de fibra de
coco y para el caso del grupo Control se utilizó 30 ± 0,1 kg de tierra, con el fin de
suministrar igualdad de proporciones para cada grupo, véase anexo 11.
Además, cada uno de los sustratos a utilizar debió de pasar por un método de
desnaturalización, el cual se aplicó con la idea de evitar algún contagio de ciertas bacterias
y de insectos que pueden llegar a afectar al cultivo. La desnaturalización del biocarbón se
realizó con 50 mL de cloro en 15 L de agua a 80 ± 0,1 °C durante 40 min en un recipiente
de hierro. Por otro lado, el proceso de desnaturalización de la cascarilla de arroz se realizó
en 5 L de agua a 80 ± 0,1 °C durante 40 min y para el caso de la fibra de coco no necesitó
proceso de desnaturalización ya que el producto fue procesado con anterioridad a su venta.
En el anexo 12 se muestra el proceso de desnaturalización del biocarbón .
Trasplante de las plántulas.
Una vez que las plántulas alcanzaron el crecimiento adecuado mayor que 4 cm y
menor que 12 cm, estas fueron trasplantadas de forma aleatoria a los sustratos en maceteros
número 14, los cuales brindaran las condiciones necesarias para obtener una raíz adecuada
36
para su crecimiento. Cabe mencionar que cada uno de estos maceteros poseía 1 kg de
sustrato por lo que se calculó la masa de los mismos con una romana6.
Además, el proceso de aleatoriedad se desarrolló con el fin de formar tres grupo, un
grupo testigo que serán los maceteros que poseen solo tierra, un grupo A el cual tendrá la
mezcla de tierra, Biocarbón y piedra pómez y para el grupo B se empleará el sustrato de
tierra, cascarilla de arroz y fibra de coco, véase anexos 13, 14 y 15.
Proceso de inoculación en los sustratos con TRICHO – AID WP 1,5 x 1010
conidios/gramos de producto.
Dicho proceso se realizó con el fin de inhibir la proliferación de hongos
fitopatógenos que por lo general colonizan el suelo y por ende los sustratos en los cuales se
encuentran las plantas.
Es importante mencionar que dicho producto contenía 100 g de TRICHO – AID WP
1,5 x 1010. Debido a esto se dividieron en 10 ±0,05 g ya que esto lo necesario para cada
aplicación. Al momento de tener los 10 g de producto se mezclaron con 10 L de agua de los
cuales se tomaron 100 mL para depositarlos en cada macetero.
La inoculación en los sustratos se realizó solo en una ocasión debido a que se
trabajó con la medición del CCPF durante un periodo de un mes. Además, este proceso se
puede observar en los anexos 16 y 17.
6 CRANE SCALE Cap.300 kg.
37
Definición y selección de muestra
Para el presente trabajo se empleó como unidad experimental la hortaliza Capsicum
annuum L.
Se llevó a cabo una selección de 90 plantas de Capsicum annuum L. de 4 a 12 ±0,05
cm de altura primaria, estas fueron seleccionadas por una persona ajena al estudio para
dividirlas en tres grupos de 30 cada uno de manera aleatoria y con sustratos diferentes.
Cada uno de los sustratos aplicados debió pasar por un proceso de desnaturalización, esto
para evitar el contagio de plagas que pueden estar intrínsecas en el sustrato. Una vez
cultivadas las plantas en maceteros7 se ubicaron a 10 cm de distancia entre ellas.
Tratamiento estadístico
Los datos del presente estudio fueron recopilados por medio de una base de
datos la cual fue elaborada en una hoja de cálculo de Excel 2013. Posteriormente, dichos
datos fueron tomados y para llevar a cabo el análisis con los paquetes estadísticos de:
SPSS8, PAST9 y XLSTAT.
Se realizó la prueba unilateral Kruskal-Wallis10 con un nivel de confianza de
99 % y un nivel de significancia del 1 % con el fin de realizar una comparación de
medianas de cada grupo. A lo que respecta la regla de decisión, se tomó como referencia
que si el p-valor computado es menor que el nivel de significación de 0,01, se debe
rechazar la hipótesis nula H0, y por ende aceptar la hipótesis alternativa Ha. Del mismo
7 Número 14. 8 Statistical Package for the Social Sciences, Versión 22. 9 Paleontogical Statistics software package for education and data analysis, Version 3.01. 10 Esta prueba se aplicó debido a que no se cumplió con el principio de normalidad y
homocedasticidad dentro de los datos.
38
modo, se realizó un análisis de comparaciones múltiples con la prueba bilateral Dunn11,
para evidenciar si existe diferencia entre los grupos.
La siguiente imagen representa el lugar en el cual se llevó a cabo dicho estudio.
Figura 1. Se muestra el vivero donde se llevó a cabo la investigación.
Nota: a) lugar en el cual se colocaron los maceteros.
11 García, Molina, Lozano y Herrera (s. f.) mencionan que “se utiliza cuando queremos
comparar un algoritmo de control frente a los demás.” (Sección, Sobre el uso de test no
paramétricos basados en el orden, párr. 10)
39
Resultados y análisis
La presente investigación sobre el crecimiento primario del follaje de la hortaliza
Capsicum annuum L. evidencia que el grupo A presentó un mayor crecimiento a partir del
tratamiento con el biocarbón. Por lo tanto el grupo Control y el grupo B presentaron un
menor crecimiento en relación al grupo A. No obstante, estos dos poseen medianas
similares con respecto al crecimiento. Por otro lado, con base las observaciones cualitativas
se obtuvieron como evidencia que el grupo A posee hojas flexibles, color verde oscuro y
una plántula de buen grosor. Con respecto al grupo B posee hojas amarillas firmes y un
grosor delgado y por ultimo a lo que se refiere el grupo Control presentó hojas de color
verde y un grosor mediano.
40
Tabla 1
Observación cualitativas presentes en la investigación durante el crecimiento del Capsicum
annuum L.
Seguidamente la Tabla 2, presenta los datos obtenidos dela ultima repetición y a la
vez la media y la mediana de cada grupo con base el CCPF.Tabla 1. Ob servación cualitativas presentes en la investigación d urante el crecimiento del Capsicu m annuu m L.
41
Tabla 2
Resultados obtenidos del CCPF del grupo Control y grupo tratamiento obtenidos a partir de
la medición del periodo de la octava semana de repeticiones.
Muestra Grupo Control (T)
±0,10b cm
Grupo A (T, BC y PP)
±0,10 cm
Grupo B (T, BC y FC)
±0,10 cm
1 14,30 13,30 8,50
2 12,50 16,00 7,00
3 8,90 16,00 12,00
4 13,30 18,60 10,90
5 18,70 18,80 14,00
6 17,00 16,50 12,30
7 8,00 16,20 12,20
8 14,50 15,80 9,20
9 13,20 15,80 11,00
10 13,00 18,20 10,90
11 11,50 16,30 8,70
12 13,30 19,00 7,40
13 10,80 18,00 6,70
14 8,00 13,70 12,30
15 5,00 13,70 10,60
16 14,20 21,20 9,20
17 13,00 20,00 10,40
18 7,00 15,90 9,30
19 12,00 13,50 13,70
20 13,50 19,70 14,50
21 13,60 14,90 11,70
22 12,00 13,20 10,10
23 13,60 16,10 10,60
24 11,70 18,00 11,40
25 9,30 19,80 12,90
26 13,50 22,30 7,00
27 7,80 16,70 11,20
28 13,90 25,60 7,50
29 19,00 13,30 14,30
30 8,20 27,30 7,50
Media
Mediana
12,14
13,00
17,45
16,40
10,50
10,75
Nota: Todos los datos fueron obtenidos a partir de la resta de las mediciones tomadas en la
semana sexta con respecto a la primera (medición base), véase Anexo 1, 2 y 3 para
evidenciar lo anterior.
a se debe de entender como la transformación de los datos reales para los tres grupos en
estudio ya que no presentaron normalidad.
b debido a la propagación de error se obtiene el ±0,10, a partir de la suma de las
incertidumbres de los datos iniciales (±0,05).T abla 2. Resultados obtenidos del CCPF del grupo Control y grupo tratamiento obtenidos a partir de la medición del periodo de la octava se mana de repeticiones
42
La Tabla 2 muestra que el grupo A posee la media más alta tanto en los datos reales
como en los transformados durante la última repetición con un 17,45 de CCPF. Por otro
lado se puede observar que el grupo Control posee un crecimiento cercano a este, mientras
que el grupo B se encuentra por debajo de ambos con una media de 1,01 de CCPF.
Las siguientes figuras representan de forma descriptiva los resultados obtenidos a
partir de las repeticiones llevadas a cabo en el presente estudio.
Figura 2. Diagramas de Box-Plot del cambio de crecimiento primario del follaje del
Capsicum annuum L.
La figura 2 muestra que el grupo Control presenta dos valores atípicos, el grupo A
muestra 8 mientras que el grupo B no presenta ninguno de estos. De la misma forma, se
puede observar que conforme pasan las semanas el grupo Control y el grupo A presenta una
43
mayor dispersión de los datos debido a que se puede observar que las cajas y bigotes son
más largos. Por otro lado, el grupo B presenta una mayor dispersión en los datos
recolectados durante la semana 5.
Se observa que la semana 2 del grupo Control posee una distribución simétrica
debido a que la mediana está relativamente en el centro de la caja. Además se puede
observar que la semana 3, 6 y 7 presentan una distribución sesgada a la derecha por lo tanto
presentan una asimetría positiva. Con respecto al grupo A este presenta una distribución
asimétrica positiva en los datos de la semana 3, mientras que el grupo B presenta una
distribución asimetría en la semana 1, 5 y 7.
Por lo tanto, se puede interpretar que entre los grupos estudio se presenta una gran
variabilidad de los datos recolectados por semana, además se debe de mencionar que a
partir de los datos obtenidos de los tres grupos en general, estos no presentan una
distribución normal y por ende presentan aspectos de asimetría tanto positiva como
negativa.
44
Figura 3. Histograma del Cambio de crecimiento primario del follaje del Capsicum
annuum L. de los tres grupos estudio.
En la figura 3 se puede observar que los tres grupos en estudio presentaron un
crecimiento constante y positivo conforme aumentaban las repeticiones. Asimismo, se
evidencia que el grupo B fue el que presentó un menor crecimiento aunque este tuvo
ventajas significativas ante el grupo A con respecto al crecimiento durante las primeras
semanas. Sin embargo, el grupo A de la semana 5 en adelante tomó una ventaja
significativa en relación a los dos grupos restantes con respecto al crecimiento primario del
follaje del Capsicum Annuum L.
Del mismo modo, es importante rescatar que el presente grafico está en términos de
la media aritmética de cada semana, es decir, cada barra representa la media alcanzada
durante cada semana, cada una de ellas con intervalos del 95% de confianza.
45
Tabla 3
Resultados obtenidos a partir de la prueba Kruskal-Wallis
Nota: Valores muy significativos **p<0,01.
Tabla 3. Resultados obtenidos a partir de la prueba Kruskal-Wallis
La Tabla 3 muestra que el p-valor obtenido a partir del análisis de dicha prueba es
menor que el nivel de significancia **p<0,01, lo cual muestra que no todas las medianas
son iguales por lo tanto se evidencia que si existen diferencias significativas en la mediana
de alguna de ellas.
En este caso, la Tabla 4 presenta los resultados estadísticos obtenidos a partir de la
aplicación del procedimiento Dunn12, el cual permitió realizar comparaciones múltiples
entre los grupos A, B y Control.
Tabla 4
Comparación y diferencias de las medianas obtenidas del CCPF de la hortaliza Capsicum
annuum L.
Nota:
a se debe de entender que los grupos que poseen la misma letra no presentan diferencias
en las medias.
12 Prueba Bilateral.
46
La Tabla 4 muestra la diferencia con base a la comparación de las medias obtenidas
tanto del grupo Control como los grupos tratamiento en relación al CCPF de la hortaliza
Capsicum annuum L. De igual forma, en dicha tabla se puede visualizar que el Grupo A fue
el que presentó mayor crecimiento a partir del tipo de sustrato empleado con respecto a los
dos grupos restantes.
Por otro lado, se observa que tanto el grupo Control como el grupo B presentan
medias relativamente cercanas por lo que no se visualizan diferencias entre ellos en la
columna de grupos.
Por otro lado, la Tabla 4 muestra los resultados obtenidos con respecto a p-valores los
cuales permiten establecer las diferencias de crecimiento primario del follaje entre los
grupos estudio.
Tabla 4. Co mpara ción y diferencias de las media nas obtenidas del CCPF de la hortaliza Capsicu m annuu m L.
Tabla 5
Contraste de los p-valores obtenidos del CCPF de la hortaliza Capsicum annuum L. tanto
del grupo Control como los grupos tratamiento.
Nota:
a debe de entenderse que los grupos que poseen el mismo p-valor no presentan diferencias
con respecto al CCPF.
Tabla 5. Co ntraste de los p-valores obtenidos del CCPF de la hortaliza Capsicum a nnuum L. tanto del grupo Control como los grupos tratamiento.
La Tabla 5 evidencia que el grupo A fue significativamente superior con respecto a
los resultados obtenidos tanto del grupo Control como del grupo B. Del mismo modo, se
muestra que el grupo Control y el grupo B poseen p-valores similares por tanto no existe
una diferencia significativa entre estos.
47
Figura 4. Comparación del crecimiento primario del follaje entre el grupo Control y
los tratamientos durante las semanas intermedias de repeticiones.
Nota: sem 1= semana 1, sem 2= semana 2, sem 3= semana 3, sem 4= semana 4, sem 5=
semana 5= sem 6= semana 6, sem 7= semana 7.
IC= debe de entenderse como el intervalo de confianza de un 95%.
En la figura 4 se observa que el crecimiento del grupo Control y los grupos
tratamiento siempre se mantuvieron positivos. Además, se puede observar que el grupo A
posee un crecimiento mayor durante las semanas 5, 6, 7 y 8. A lo que respecta el grupo B
presentó un crecimiento mayor durante las semanas 1, 2, 3 y 4. A lo que respecta el grupo
Control presentó un crecimiento mayor al grupo A en la semana 1 y la vez se puede
observar que presentó un crecimiento cercano al grupo A conforme aumentaban las
repeticiones. Figura 2. Comparación del crecimiento primario del follaje entre el grupo Control y los tratamientos durante las semanas intermedias de repeticiones.
El dato obtenido de un mayor crecimiento del grupo A desde la semana 5 se debe a
que la planta se encuentra durante su segundo periodo por lo tanto requiere de nutrientes
como el nitrógeno para el crecimiento aéreo y sus sistema de floración y fruto. Con
0,00
2,00
4,00
6,00
8,00
10,00
12,00
14,00
16,00
sem 1 sem 2 sem 3 sem 4 sem 5 sem 6 sem 7
Pro
me
dio
de
Cre
cim
ien
to (
cm)
IC
Grupo Control (T)
Grupo A (T, BC y P)
Grupo B (T, CA y FC)
48
respecto a los datos obtenidos desde la semana 1 hasta la semana 4 se debe a que dicha
planta se encuentra durante la primera etapa por lo que requiere de K.
Figura 5. Comparación de promedios obtenidos en el crecimiento primario del follaje
de los grupos durante la semana 8.
Nota:
IC= debe de entenderse como el intervalo de confianza de un 95%.
En la figura 5 se evidencia que el CCPF del grupo A es el más significativo con
respecto a al grupo B y grupo Control. Por lo tanto se observa el efecto que tuvo el sustrato
de biocarbón con respecto al CCPF. Además, se visualiza que el grupo Control estuvo
cercano a un 1,07 %, grupo A un 1,23 % y el grupo B aproximadamente a un 1,01 %.
Figura 3. Comp aración de promedios obtenidos en el crecimiento primario del follaje de los grupos durante la semana 8
0,00
5,00
10,00
15,00
20,00
25,00
Grupo Control (T) Grupo A (T, BC, PP) Grupo B (T, CA, FC)
Pro
me
dio
de
cre
cim
ien
to (
cm)
IC
49
Discusión
La información recopilada en la presente investigación acerca de los sustratos en los
cuales se presenta un mayor CCPF del Capscicum annuum L. Han sido de gran
importancia debido a que han contribuido con el análisis, desarrollo e interpretación de los
resultados obtenidos en el presente estudio. Asimismo, cabe mencionar que son pocos los
estudios relacionados con sustrato, ya que la mayoría de estos se han enfocado en el efecto
de distintas temperaturas en relación al tiempo de germinación de las semillas y producción
de frutos y floración.
A partir de los datos obtenidos del CCPF del Capsicum annuum L. Durante las
repeticiones intermedias se obtuvo una diferencia de crecimiento entre los grupos. Como
evidencia de dichos resultados se obtuvo que de la semana 1 a la 4 el grupo B presentó un
mayor crecimiento en relación a los dos restantes, sin embargo este disminuyó durante las
semanas 5 y 7, tal como se evidencia en las figuras 2 y 4. Por lo tanto se puede interpretar
que el sustrato del grupo B el cual fue de (T, CA, FC) presenta un aporte de nutrientes
importante para la primera etapa de crecimiento del Capsicum annuum L. Por tanto se
recomienda emplear un sustrato que provea fósforo y potasio para que fortalezca las
primeras etapas de crecimiento.
Asimismo, en los datos obtenidos con respecto al CCPF durante las semanas
intermedias el sustrato de Biocarbón tuvo un efecto significativo sobre el crecimiento del
Capsicum annuum L. Lo cual se evidencia a partir de los datos obtenidos de la semana 5 a
la 7 del grupo A, ya que obtuvo un crecimiento significativo con respecto a los dos
restantes, véase las figuras 2, 3 y 4. Por tanto se muestra que el Biocarbón es un recurso
necesario e importante para el desarrollo de la hortaliza además de inhibir los cambios de
50
clima a partir del almacenamiento de carbono. Por lo que es de gran importancia emplear
el sustrato a base de Biocarbón para fortalecer los procesos referidos al desarrollo de sus
órganos, ya que este aporta mayor fertilidad al sustrato.
Con respecto a los datos recopilados durante la última semana de repetición, se
evidenció que las plantas tratadas a base del sustrato que posee potasio y fosforo no
presentaron un crecimiento tan significativo. Un ejemplo claro fue el resultado de CCPF
obtenido del grupo B el cual se trató con el sustrato de (T, CA, FC), tal como se puede
evidenciar en la figura 5. A partir de esto, se entiende que dichos nutrientes no son los aptos
para producir un aumento con respecto al crecimiento durante el periodo de desarrollo ya
que esta planta absorbe por las raíces exclusivamente aquellos nutrientes necesarios para el
desarrollo radicular dependiendo de la etapa en la cual se encuentre. Por lo tanto, no se
recomienda emplear sustratos que contengan únicamente dichos nutrientes ya que no
contribuyen al desarrollo de esta planta durante la segunda etapa.
Con base a los últimos 30 datos recolectados durante la semana 8, se obtuvo un
CCPF significativo de las plantas tratadas con sustrato de (T, BC, PP). Tal como se puede
observar en la Tabla 2, el grupo A presenta una media de 17,45 ± 0,10 cm seguido del
grupo Control el cual es de 12,14 ± 0,10 cm mientras que el Grupo B presentó una media
baja de 10,50 ± 0,10 cm. Esto se debe al proceso que se lleva a cabo por medio de la
transpiración, ya que está le provee a la planta la capacidad de mantener los nutrientes
absorbidos por medio de la raíz y por ende contribuye al crecimiento. Por lo tanto el uso
del sustrato con Biocarbón permite un mejor crecimiento y desarrollo de los foliolos como
parte aérea.
51
A partir de la información plasmada en la literatura se menciona que uno de los
nutrientes necesarios para el desarrollo de la planta es el nitrógeno. Por lo tanto a partir del
análisis estadístico se evidencia que los grupos que no contenían un nitrógeno tan
concentrado dentro de su sustrato poseen medianas similares con base al crecimiento tal es
el caso del grupo Control y el grupo B, pero con respecto al grupo A presentó un mayor
crecimiento con respecto a los otros dos, tal como se observa en la Tabla 4. Por lo que se
puede interpretar que el Biocarbón realmente contribuye a mejorar el aspecto de las hojas a
partir de la absorción de este por medio del sistema radicular. Por consiguiente, es
necesario tomar en cuenta dicho aspecto para obtener un buen crecimiento de esta.
Del mismo modo, se obtuvo una diferencia con respecto a la apariencia del follaje
que presentaron las plantas durante el periodo de tratamiento. Como evidencia se obtuvo
que el grupo Control presentó un crecimiento relativamente lento, presentando así hojas
firmes y verdes. El grupo B, mostró hojas amarillas y un crecimiento lento de estas,
mientras que el grupo A presentó la apariencia de plántulas flexibles, hojas verde oscuro y
un crecimiento rápido, véase la Tabla 1. A lo que respectan las apariencias del grupo A se
entiende que esto se debe a que la piedra pómez retiene agua por lo tanto el sustrato va a
permanecer relativamente húmedo lo cual contribuye a tener un mejor resultado a nivel
foliar, situación que no sucede en los grupos restantes ya que estos presentan más drenaje y
en algunos casos exceso de humedad como en el grupo B. Así pues, se establece el buen
resultado que presenta dicho sustrato.
Por otro lado, a lo que respecta los resultados obtenidos en relación al CCPF de la
hortaliza Capsicum annuum L. del grupo B se debe a que la mezcla de dichos elementos
provocó gran retención de agua por lo tanto ocasionó exceso de humedad. Cabe destacar
que los elementos mezclados en dicho grupo fueron (T, CA, FC), esto se puede observar en
52
la Tabla 1. Por lo que al ser dichos elementos porosos van a tener mayor capacidad de
retención de agua. Debido a esto se evidenció que el sustrato de dicho grupo presentó
presencia de moho. A partir de esto no se recomienda realizar una mezcla que incorpore
dos elementos con gran de capacidad de retención de agua ya que provoca exceso de
humedad limitando así el crecimiento de dicha planta.
53
Conclusión
Los resultados obtenidos en la presente investigación evidencian que sí existe una
influencia significativa del tratamiento con tres sustrato distintos sobre el crecimiento
primario del follaje de la hortaliza Capsicum annuum L. A partir de esto se cumple con una
parte de la predicción en la que se esperaba que el grupo A presentara un mayor
crecimiento con respecto a los dos restantes. Sin embargo; la otra parte de la predicción no
se cumplió debido a que se esperaba que el grupo Control presentara un menor crecimiento
y que el grupo B obtuviera un crecimiento medio. No obstante, lo que se evidenció fue que
el grupo Control obtuvo un mayor crecimiento que el grupo B y por ende este último
decayó.
A partir de lo anterior, se logra evidenciar que sí existen diferencias con respecto a
las medianas de los grupos, por lo tanto se rechaza la hipótesis nula y se acepta la hipótesis
alternativa, la cual consistió en evidenciar que las medianas de crecimiento primario del
follaje de la hortaliza Capsicum annuum L. no son iguales en todos los grupos.
Del mismo modo, es importante dar a conocer que los objetivos planteados en dicha
investigación se lograron cumplir y principalmente el de determinar la existencia de
diferencias estadísticamente significativas en el crecimiento primario entre el grupo Control
y los grupos tratamiento, ya que se obtuvo una diferencias con respecto a las medianas de
crecimiento de los grupos.
La Tabla 2 aporta evidencia que el grupo A, tratado con (T, BC, PP) presentó un
mayor cambio de crecimiento primario del follaje, seguido del grupo Control y grupo B.
Por lo tanto, con esto se evidencia la predicción que se tenía y la relación con la hipótesis
planteada.
54
Con respecto a la Tabla 4, se muestra la existencia de una diferencia significativa en
las medianas de crecimiento, lo cual aporta evidencia para aceptar la hipótesis alternativa.
Debido a que los nutrientes tales como nitrógeno, fosforo y potasio contribuyen aún más al
formar parte del crecimiento, y del desarrollo temprano de los raíces.
55
Recomendaciones
Para futuras investigaciones se recomienda ampliar la cantidad de las muestras con
respecto a las plantas, ya que esto podría haber provocado la variabilidad de los datos
presentados en las figuras 2 y 3. De la misma forma, esto podría contribuir a evitar errores
aleatorios y por ende ayudaría a poseer una distribución normal de los datos.
Asimismo, se debería de evitar emplear mezclas con sustratos menos porosos ya que
esto evitaría tanto escape de agua.
Otra de las mejores sería el empleo de maceteros más grandes, ya que por medio de
esto se facilitaría el espacio a la raíz de la plantas y con esto permitirles un mejor desarrollo
de esta.
Además, a modo de mejora se podría realizar un análisis de nutrientes a los sustratos
empleados para cada grupo, con el fin de verificar la cantidad de nutrientes que estos
poseen.
Por otro lado, seria relevante ampliar la cantidad de sustratos para ver también la
calidad de frutos que se pueden obtener a partir de cada sustrato.
56
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62
Anexos
Anexo 1
Datos recolectados durante las seis repeticiones realizadas para el grupo A y a la vez el cambio de crecimiento primario para cada una
de ellas obtenido a partir del día de la medición real menos la medida base.
MBa
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10b
PM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
TM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
CM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
QM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SEXM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SEPM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
OCTM
(cm)
±0,05
6,00 0,70 6,70 0,20 6,20 4,60 10,60 5,10 11,10 10,00 16,00 10,50 16,50 13,10 19,10 14,30 20,30
9,50 1,60 11,10 1,80 11,30 2,50 12,00 4,00 13,50 6,00 15,50 8,00 17,50 8,60 18,10 12,50 22,00
6,00 1,60 7,60 3,30 9,30 3,70 9,70 4,10 10,10 5,00 11,00 6,10 12,10 7,10 13,10 8,90 14,90
6,00 0,70 6,70 2,20 8,20 3,80 9,80 6,10 12,10 6,90 12,90 9,10 15,10 10,80 16,80 13,30 19,30
6,50 2,50 9,00 3,40 9,90 5,40 11,90 6,10 12,60 8,20 14,70 11,70 18,20 12,50 19,00 18,70 25,20
5,10 1,10 6,20 1,60 6,70 2,60 7,70 5,10 10,20 5,80 10,90 9,20 14,30 12,40 17,50 17,00 22,10
8,00 0,30 8,30 1,80 9,80 2,90 10,90 3,80 11,80 4,00 12,00 4,50 12,50 5,50 13,50 8,00 16,00
6,50 1,30 7,80 1,60 8,10 2,50 9,00 4,60 11,10 7,60 14,10 9,50 16,00 12,00 18,50 14,50 21,00
4,30 2,60 6,90 3,20 7,50 4,50 8,80 6,20 10,50 7,20 11,50 10,00 14,30 12,00 16,30 13,20 17,50
7,00 0,20 7,20 2,20 9,20 3,30 10,30 5,50 12,50 6,00 13,00 7,50 14,50 9,30 16,30 13,00 20,00
4,00 1,40 5,40 2,10 6,10 3,00 7,00 4,30 8,30 5,70 9,70 8,00 12,00 9,20 13,20 11,50 15,50
7,80 0,70 8,50 1,30 9,10 1,80 9,60 3,50 11,30 4,80 12,60 8,70 16,50 9,70 17,50 13,30 21,10
8,00 0,70 8,70 1,50 9,50 1,90 9,90 4,00 12,00 6,20 14,20 7,10 15,10 8,00 16,00 10,80 18,80
5,00 1,00 6,00 2,90 7,90 3,10 8,10 5,00 10,00 5,70 10,70 6,30 11,30 7,50 12,50 8,00 13,00
6,00 1,00 7,00 2,10 8,10 3,30 9,30 3,90 9,90 4,50 10,50 6,00 12,00 7,30 13,30 5,00 11,00
6,80 1,70 8,50 3,30 10,10 3,90 10,70 5,40 12,20 7,80 14,60 10,20 17,00 12,40 19,20 14,20 21,00
6,00 0,30 6,30 2,00 8,00 3,20 9,20 4,70 10,70 7,10 13,10 7,50 13,50 9,50 15,50 13,00 19,00
6,00 0,20 6,20 1,00 7,00 1,30 7,30 2,80 8,80 3,50 9,50 4,50 10,50 4,90 10,90 7,00 13,00
5,00 0,60 5,60 1,70 6,70 2,70 7,70 5,20 10,20 6,60 11,60 10,40 15,40 11,00 16,00 12,00 17,00
6,50 0,00 6,50 1,20 7,70 1,20 7,70 3,90 10,40 6,00 12,50 7,50 14,00 10,00 16,50 13,50 20,00
7,00 0,20 7,20 1,00 8,00 2,00 9,00 3,30 10,30 7,20 14,20 7,50 14,50 10,20 17,20 13,60 20,60
5,00 0,80 5,80 2,20 7,20 2,70 7,70 5,50 10,50 6,50 11,50 8,20 13,20 9,00 14,00 12,00 17,00
6,00 1,20 7,20 2,50 8,50 3,60 9,60 5,50 11,50 7,50 13,50 9,20 15,20 9,80 15,80 13,60 19,60
63
Nota: MB= Medición Base, PM= Primera Medición, SM= Segunda Medición, TM= Tercera Medición, CM= Cuarta Medición, QM=
Quinta Medición, SEXM= Sexta Medición, SEPM= Séptima Medición, OCTM= Octava Medición y CCPF= Cambio de Crecimiento
Primario.
a medida tomada después de los 22 días de germinación.
b debido a la propagación de error se obtiene el ±0,10, a partir de la suma de las incertidumbre de los datos iniciales (±0,05).
MBa
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10b
PM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
TM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
CM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
QM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SEXM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SEPM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
OCTM
(cm)
±0,05
7,00 0,60 7,60 0,80 7,80 1,20 8,20 2,40 9,40 5,20 12,20 8,10 15,10 8,30 15,30 11,70 18,70
7,50 0,80 8,30 1,80 9,30 2,50 10,00 3,50 11,00 3,60 11,10 5,60 13,10 6,80 14,30 9,30 16,80
7,00 1,00 8,00 2,50 9,50 3,30 10,30 4,70 11,70 9,50 16,50 9,20 16,20 11,80 18,80 13,50 20,50
6,80 1,70 8,50 2,20 9,00 3,20 10,00 5,90 12,70 7,40 14,20 5,30 12,10 6,20 13,00 7,80 14,60
6,00 1,00 7,00 2,00 8,00 3,40 9,40 5,10 11,10 6,20 12,20 10,30 16,30 11,50 17,50 13,90 19,90
6,50 2,10 8,60 2,40 8,90 3,20 9,70 5,50 12,00 8,00 14,50 9,00 15,50 10,90 17,40 19,00 25,50
8,90 2,10 11,00 3,20 12,10 2,60 11,50 4,10 13,00 5,10 14,00 6,60 15,50 7,40 16,30 8,20 17,10
Anexo 1
Continuación
64
Anexo 2
Datos recolectados durante las seis repeticiones realizadas para el grupo B y a la vez el cambio de crecimiento primario para cada una
de ellas obtenido a partir del día de la medición real menos la medida base.
MBa
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10b
PM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
TM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
CM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
QM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SEXM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SEPM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
OCTM
(cm)
±0,05
8,80 0,30 9,10 0,80 9,60 3,10 11,90 3,20 12,00 6,20 15,00 9,30 18,10 10,20 19,00 13,30 22,10
4,00 2,70 6,70 4,00 8,00 4,30 8,30 6,00 10,00 8,60 12,60 10,00 14,00 11,50 15,50 16,00 20,00
7,00 0,50 7,50 2,20 9,20 2,70 9,70 3,70 10,70 7,50 14,50 7,60 14,60 11,00 18,00 16,00 23,00
7,40 1,10 8,50 2,10 9,50 4,50 11,90 4,90 12,30 9,10 16,50 9,90 17,30 14,70 22,10 18,60 26,00
7,00 0,80 7,80 2,20 9,20 3,10 10,10 5,00 12,00 7,50 14,50 10,40 17,40 13,10 20,10 18,80 25,80
6,50 1,10 7,60 1,90 8,40 4,00 10,50 4,90 11,40 9,00 15,50 13,10 19,60 14,70 21,20 16,50 23,00
6,80 0,70 7,50 2,20 9,00 3,10 9,90 4,90 11,70 7,20 14,00 9,30 16,10 11,80 18,60 16,20 23,00
9,50 0,70 10,20 3,20 12,70 4,30 13,80 5,00 14,50 7,00 16,50 11,00 20,50 13,70 23,20 15,80 25,30
5,60 0,80 6,40 2,40 8,00 2,80 8,40 4,70 10,30 9,70 15,30 11,20 16,80 13,50 19,10 15,80 21,40
7,80 1,70 9,50 2,70 10,50 3,20 11,00 4,50 12,30 6,80 14,60 10,10 17,90 11,30 19,10 18,20 26,00
5,50 0,90 6,40 1,60 7,10 2,50 8,00 4,30 9,80 7,50 13,00 9,40 14,90 11,00 16,50 16,30 21,80
9,00 1,30 10,30 2,50 11,50 3,00 12,00 3,60 12,60 5,30 14,30 7,50 16,50 12,00 21,00 19,00 28,00
8,50 0,30 8,80 2,90 11,40 3,60 12,10 4,00 12,50 7,60 16,10 8,50 17,00 10,70 19,20 18,00 26,50
5,50 1,50 7,00 2,30 7,80 3,10 8,60 3,50 9,00 4,60 10,10 6,50 12,00 8,90 14,40 13,70 19,20
9,50 1,00 10,50 2,80 12,30 4,40 13,90 4,60 14,10 5,60 15,10 7,50 17,00 10,50 20,00 13,70 23,20
6,80 0,90 7,70 3,10 9,90 4,70 11,50 8,70 15,50 9,20 16,00 10,50 17,30 15,50 22,30 21,20 28,00
10,00 2,00 12,00 2,50 12,50 5,50 15,50 6,80 16,80 9,00 19,00 11,50 21,50 15,10 25,10 20,00 30,00
10,60 0,70 11,30 2,40 13,00 6,20 16,80 6,60 17,20 10,60 21,20 11,90 22,50 13,90 24,50 15,90 26,50
8,80 0,60 9,40 2,20 11,00 4,20 13,00 5,00 13,80 7,60 16,40 9,70 18,50 10,30 19,10 13,50 22,30
7,40 2,10 9,50 2,60 10,00 4,60 12,00 5,10 12,50 8,60 16,00 9,60 17,00 13,20 20,60 19,70 27,10
7,40 0,10 7,50 0,90 8,30 1,70 9,10 4,10 11,50 4,70 12,10 8,30 15,70 11,60 19,00 14,90 22,30
6,00 1,00 7,00 3,20 9,20 3,60 9,60 3,90 9,90 6,00 12,00 8,00 14,00 10,50 16,50 13,20 19,20
7,00 0,20 7,20 1,30 8,30 3,80 10,80 5,90 12,90 9,00 16,00 10,00 17,00 11,20 18,20 16,10 23,10
6,00 0,50 6,50 2,70 8,70 3,10 9,10 7,60 13,60 9,00 15,00 11,00 17,00 14,50 20,50 18,00 24,00
6,00 0,20 6,20 2,50 8,50 3,80 9,80 6,00 12,00 8,30 14,30 11,40 17,40 14,00 20,00 19,80 25,80
5,70 1,80 7,50 2,70 8,40 3,80 9,50 5,50 11,20 9,00 14,70 11,40 17,10 17,80 23,50 22,30 28,00
65
Anexo 2
MBa
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10b
PM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
TM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
CM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
QM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SEPM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SEPM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
OCTM
(cm)
±0,05
4,50 1,60 6,10 3,00 7,50 4,00 8,50 8,60 13,10 10,10 14,60 11,50 16,00 13,50 18,00 16,70 21,20
8,40 0,60 9,00 2,90 11,30 4,10 12,50 5,60 14,00 9,10 17,50 14,60 23,00 19,60 28,00 25,60 34,00
8,30 1,10 9,40 2,00 10,30 3,80 12,10 4,30 12,60 4,80 13,10 7,70 16,00 9,30 17,60 13,30 21,60
6,70 1,10 7,80 2,30 9,00 4,10 10,80 8,00 14,70 12,80 19,50 13,30 20,00 18,80 25,50 27,30 34,00
Nota: MB= Medición Base, PM= Primera Medición, SM= Segunda Medición, TM= Tercera Medición, CM= Cuarta Medición, QM=
Quinta Medición, SEXM= Sexta Medición, SEPM= Séptima Medición, OCTM= Octava Medición y CCPF= Cambio de Crecimiento
Primario.
a medida tomada después de los 22 días de germinación.
b debido a la propagación de error se obtiene el ±0,10, a partir de la suma de las incertidumbre de los datos iniciales (±0,05).
Continuación
66
Anexo 3
Datos recolectados durante las seis repeticiones realizadas para el grupo Control y a la vez el cambio de crecimiento primario para
cada una de ellas obtenido a partir del día de la medición real menos la medida base.
MBa
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10b
PM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
TM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
CM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
QM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SEXM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SEPM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
OCTM
(cm)
±0,05
6,00 1,50 7,50 3,00 9,00 3,40 9,40 6,20 12,20 6,00 12,90 7,90 13,90 8,00 14,00 8,50 14,50
4,00 3,70 7,70 4,00 8,00 4,30 8,30 4,90 8,90 4,00 9,50 6,10 10,10 6,50 10,50 7,00 11,00
4,00 2,20 6,20 4,70 8,70 5,00 9,00 7,30 11,30 4,00 12,20 9,90 13,90 10,60 14,60 12,00 16,00
5,50 2,20 7,70 3,00 8,50 3,70 9,20 7,00 12,50 5,50 13,00 8,00 13,50 9,50 15,00 10,90 16,40
4,00 3,50 7,50 4,70 8,70 5,30 9,30 8,40 12,40 4,00 13,00 11,00 15,00 12,50 16,50 14,00 18,00
5,00 2,00 7,00 5,00 10,00 6,60 11,60 7,40 12,40 5,00 13,60 9,70 14,70 11,10 16,10 12,30 17,30
7,00 2,30 9,30 4,00 11,00 4,10 11,10 6,50 13,50 7,00 15,50 10,00 17,00 11,00 18,00 12,20 19,20
8,00 1,10 9,10 3,10 11,10 3,70 11,70 5,60 13,60 8,00 14,00 6,00 14,00 7,40 15,40 9,20 17,20
8,00 1,70 9,70 3,30 11,30 4,00 12,00 5,90 13,90 8,00 15,30 8,10 16,10 9,40 17,40 11,00 19,00
5,00 2,30 7,30 3,40 8,40 4,90 9,90 6,20 11,20 5,00 13,20 8,40 13,40 9,10 14,10 10,90 15,90
8,80 1,20 10,00 2,70 11,50 3,10 11,90 4,50 13,30 8,80 13,50 6,80 15,60 7,20 16,00 8,70 17,50
11,50 0,00 11,50 1,00 12,50 3,20 14,70 3,60 15,10 11,50 15,50 4,70 16,20 6,00 17,50 7,40 18,90
8,80 0,40 9,20 1,80 10,60 2,10 10,90 4,40 13,20 8,80 14,10 5,50 14,30 5,70 14,50 6,70 15,50
9,00 0,50 9,50 2,30 11,30 2,70 11,70 6,10 15,10 9,00 16,50 9,80 18,80 10,50 19,50 12,30 21,30
4,40 3,40 7,80 5,40 9,80 5,80 10,20 7,20 11,60 4,40 12,20 8,90 13,30 9,80 14,20 10,60 15,00
5,00 1,90 6,90 3,80 8,80 4,70 9,70 5,90 10,90 5,00 12,50 8,60 13,60 9,00 14,00 9,20 14,20
7,00 0,80 7,80 3,20 10,20 3,40 10,40 5,10 12,10 7,00 13,50 7,70 14,70 8,90 15,90 10,40 17,40
5,30 1,80 7,10 3,70 9,00 4,90 10,20 6,90 12,20 5,30 12,50 7,90 13,20 8,90 14,20 9,30 14,60
8,00 1,20 9,20 4,30 12,30 4,40 12,40 7,30 15,30 8,00 16,10 9,00 17,00 11,50 19,50 13,70 21,70
8,00 2,10 10,10 4,40 12,40 4,80 12,80 6,80 14,80 8,00 17,60 9,50 17,50 11,40 19,40 14,50 22,50
4,30 2,20 6,50 3,70 8,00 4,30 8,60 7,20 11,50 4,30 13,70 8,70 13,00 9,90 14,20 11,70 16,00
9,00 0,50 9,50 1,20 10,20 2,20 11,20 4,50 13,50 9,00 15,00 7,60 16,60 8,50 17,50 10,10 19,10
8,50 1,80 10,30 3,30 11,80 4,00 12,50 5,60 14,10 8,50 16,10 7,80 16,30 9,00 17,50 10,60 19,10
6,00 1,60 7,60 2,70 8,70 3,60 9,60 6,80 12,80 6,00 13,10 8,20 14,20 9,60 15,60 11,40 17,40
8,00 2,10 10,10 3,90 11,90 5,10 13,10 6,90 14,90 8,00 16,10 9,50 17,50 11,20 19,20 12,90 20,90
67
Anexo 3
MBa
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10b
PM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
TM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
CM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
QM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SEXM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
SEPM
(cm)
±0,05
CCPF
(cm)
±0,10
OCTM
(cm)
±0,05
5,00 1,30 6,30 2,50 7,50 4,10 9,10 5,10 10,10 5,00 11,00 6,30 11,30 10,50 15,50 7,00 12,00
5,30 2,30 7,60 3,60 8,90 4,70 10,00 7,20 12,50 5,30 13,10 8,90 14,20 9,90 15,20 11,20 16,50
8,00 1,20 9,20 2,50 10,50 4,00 12,00 5,60 13,60 8,00 14,00 6,20 14,20 7,00 15,00 7,50 15,50
7,80 2,30 10,10 4,30 12,10 5,50 13,30 9,30 17,10 7,80 18,10 10,90 18,70 12,20 20,00 14,30 22,10
6,50 1,10 7,60 1,60 8,10 2,70 9,20 3,70 10,20 6,50 11,10 5,50 12,00 6,50 13,00 7,50 14,00
Nota: MB= Medición Base, PM= Primera Medición, SM= Segunda Medición, TM= Tercera Medición, CM= Cuarta Medición, QM=
Quinta Medición, SEXM= Sexta Medición, SEPM= Séptima Medición, OCTM= Octava Medición y CCPF= Cambio de Crecimiento
Primario.
a medida tomada después de los 22 días de germinación.
b debido a la propagación de error se obtiene el ±0,10, a partir de la suma de las incertidumbre de los datos iniciales (±0,05).
Continuación
68
Anexo 4
Figura 1. Cronograma elaborado para la realización del proyecto.
69
Anexo 5
Figura 2. Muestra del análisis de suelo realizado en CORBANA.
70
Anexo 6
Figura 3. Proceso realizado para efectuar el método de amarre.
71
Anexo 7
Figura 4.Metódo de medición para el cambio del crecimiento primario
72
Anexo 8
Figura 5. Método seguido para acelerar el proceso de germinación en las semillas se
Caspisum annum L.
73
Anexo 9
Figura 6. Plántulas en estañón tratadas para ser trasplantadas.
74
Anexo 10
Figura 7. Inoculación al suelo con DEMOSAN 65% p/p y RAIZONE 94% sp.
75
Anexo 11
Figura 8. Preparación de la mezcla del grupo B (T, CA, FC).
76
Anexo 12
Figura 9. Proceso de desnaturalización del biocarbón realizado a 80 ± 0,1 °C.
77
Anexo 13
Figura 10. Plántulas trasplantas en el sustrato de (T, CA, FC).
78
Anexo 14
Figura 11. Plántulas trasplantas en el sustrato de (T, BC, PP).
79
Anexo 15
Figura 12. Plántulas trasplantas en el sustrato de (T).
80
Anexo 16
Figura 13. Preparación del TRICHO – AID WP 1,5 x 1010 conidios/gramos de
producto para ser utilizado en la inoculación del sustrato.
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Anexo 17
Figura14. Proceso de inoculación en los sustratos con TRICHO – AID WP 1,5 x 1010
conidios/gramos de producto.
