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Dispersión de Luz a Bajos Ángulos en Redes de Microtúbulos Ma. Guadalupe González-Asevedo 1 , Abraham de la Cruz-Martínez 1 , Luis F. Rojas 2 and Miguel Ángel Ojeda-López 1 1 Instituto de Física, Universidad Autónoma de San Luis Potosí, México, 2 Departamento de Física, CINVESTAV Resumen Se estudió la cinética de la formación de agregados paralelos de microfilamentos biológicos cargados, llamados microtúbulos (MTs), utilizando dispersión de luz a bajos ángulos y microscopía óptica de contraste por interferencia diferencial. En vitro, en presencia de cationes multivalentes, los MTs se agregan paralelamente formando redes de manojos, como función de la concentración del catión. Los resultados de dispersión sugieren una semejanza entre la estructura de los agregados de MTs y la de los polímeros sintéticos más pequeños. Figura 1. a) Estructura tridimensional de los MTs, b) estructura de tubulina a) b) Figure 4. a) Trancisión monitoreada con SALS de MTs dispersos y manojos de MTs. b) Intensidad contra concentración. Figura 2. a) esquema experimental b) foto de la dispersión de manojos de MTs en la CCD AGRADECIMIENTOS Agradecemos al Dr. J.L. Arauz-Lara por amablemente mostrar facilidades para realizar estos experimentos. También agradecemos CONACyT-Mexico su financiamiento a través de la beca de maestría. Este proyecto fue apoyado por CONACyT en el proyecto “Microestructura y Materiales Suaves” Ref. U47611-F, y de PIFI-2007. INTRODUCCIÓN Los Microtúbulos (MTs) son biofilamentos macromoleculares semirígidos, poseen la morfología de un cilindro hueco, con un diámetro de tan solo 25nm y longitudes que van desde unas cuantas micras a decenas de micras. Se forma a partir de la unión de miles de dímeros de una proteína conocida como tubulina (del orden de 1500 dímeros/micra), a través de un complejo proceso bioquímico denominado polimerización (Figura 1). La proteína tubulina es sintetizada por la mayoría de las células eucariotas y es particularmente abundante en las células del sistema nervioso, de donde se extrae para experimentos in vitro. En condiciones fisiológicas (en medio acuoso, pH~7 y T~37) la tubulina adquiere carga eléctrica negativa, así los MTs pueden ser considerados como macroiones negativos; partiendo de la estructura de aminoácidos de la tubulina, la carga superficial en un MT se estima del orden de -50e/nm 2 . Los MTs, son componentes esenciales del citoesqueleto celular, una red intrincada de microfilamentos que da soporte mecánico a las células entre otras funciones. Además los MTs participan en la división celular y en procesos de transporte de neuronas. En casi rodas estas funciones los MTs conforman arreglos supramoleculares asociándose con MAPs (Microtubule Associated Proteins) y con otros microfilamentos. Se conocen varios tipos de MAPs las cuales se adhieren a los MTs mediante interacciones electrostáticas atractivas entre el dominio (una secuencia en la proteína) y la pared proteica del MT. Experimentalmente los MTs son condensados añadiendo cationes multivalentes como espermidina +3 , espermina +4 . Nuestro propósito en este trabajo ha sido la transición de MTs sueltos a su estado de agregación usando dispersión estática de luz a bajos ángulos. En trabajos de dispersión de rayos-X a bajo ángulo se observo esta transición y se demostró que los MTs se empaquetan de manera hexagonal (Ref 1). Sin embargo, como la dispersión de luz envuelve longitudes de onda más grandes, se puede obtener información estructural a escalas de longitud más grandes, lo cual es importante para entender las redes de MTs y sus los agregados. MATERIALES Los MTs fueron polimerizados de la proteina tubulina (www.cytoskeleton.com) y estabilizados con 20M de taxol, al final de este proceso cierto porcentaje de tubulina permanece sin polimerizar. La proteina sin polimerizar es separada de la soluición de MTs centrifugando. A lo largo de los experimetos, la concentración de MTs fue fijada a 0.5mg/ml. cation-MT. Para inducir la agregación de MTs a manojo, un catión trivalenete (espermidina) fue añadido en pasos a partir de una solución altamente concentrada. Para el microscopio óptico, una pequeña cantidad de la muestra fue tomada y sellada dentro de un celda hecha con un porta objetos y un cubreobjeto, y analizada por microscopía óptica DIC, usando un objetivo de 60X-2X de inmersión en aceite acoplado a una video-cámara enaltecida de alta resolución (DAGE). Para SALS, la solución fue puesta dentro de una celda de cuarzo circular de 1cm de alto y de diametro y dispersada inmediatamente. RESULTADOS En la figura 3 imágenes representativas del microscopio óptico DIC de MTs sueltos (3a) y manojos de catión-MT (3b) son mostrados para ilustración. La transición de MTs sueltos a manojos toma lugar a una concentración critica de catión (espermidina 3+) en la solución. El punto critico a lo largo de la transición puede ser observada en experimentos de SALS. Por ejemplo, la figura 4a muestra la intensidad integrada I(q) para varias concentraciones (0-30 mM). La doble flecha vertical denota donde el punto critico aparece, al rededor de la concentración de 12-14mM de espermidina. Encontramos estos valores muy consistentes con las imágenes de las muestras tomadas con microscopía. En los datos de SALS se nota el salto en la intensidad, particularmente a pequeños valores de q, y un ligero cambio en la pendiente. Para un rodillo rígido o un cilindro el desarrollo teórico de I(q) en la aproximación de Rayleigh-Gans predice una pendiente de 1/q mientras que para un polímero parecido a un gusano la aproximación de Debye da una caída de 1/q 2 (Ref. 2). En nuestro caso vemos que los MTs siguen la última dependencia 1/q 2 cercana a la forma 1/q aun en el caso de MTs desagregados. Así, nuestros datos de SALS sugieren un paralelismo con la estructura de un polímero a escalas molecular de biopolímeros macroscópicos tal como MTs. En la figura 4b se puede apreciar el cambio de intensidad para distintos qs cuando los MTs están dispersos con respecto a los MTs agregados (entre C z = 12mM y 14mM). DESARR0LOLLO EXPERIMENTAL En un experimento de dispersión de luz un rayo de luz o radiación incidente golpea una muestra y es dispersado por su estructura microscópica. En experimentos de dispersión de estática de luz la intensidad de la luz dispersada es medida como una función del vector de dispersión, q, el cual esta relacionado con el ángulo de dispersión, θ, por la ecuación, Donde n es el índice de refracción del medio y λ i la longitud de onda de la luz incidente. El vector q esta relacionado a escalas de longitud por d ~ 1/q. En nuestro experimento λ i = 0.6328μm, así de la ec. (1) exploramos escalas de longitud del orden de 1-50 μm, valores de θ<15º son medidos. Para tal propósito un dispositivo fue montado en el la boratorio del Dr. Arauz-Lara (IF-UASLP) (fig. 3). Brevemente, consiste de una luz láser, un objectivo para colectar la luz, un “pinhole”, una lente para hacer los rayos de kuz paralelo, un diafragma para controlar el tamaño del rayo, un espejo para desviar el rayo 90º, el soporte de la muestra, la lente L 1 para colectar la luz dispersada, un “beam stop” es colocado en el foco de la lente L 1 para bloquear el rayo principal al detector, con la finalidad de obtener información a pequeños qs, la lente L 2 enfoca el rayo dispersado dentro de la cámara CCD de la cual la imagen de la luz dispersada es capturada en la computadora (Fig. 2a). Los “Pinholes” y las partículas de latex de tamaño conocido fueron usadas para calibrar el instrumento (datos no mostrados). Debido al limite de rango dinámico de la cámara CCD, los datos para los MTs fueron colectados en tres exposiciones, incrementando el tiempo de exposición, y las regiones no saturadas fueron reescalada y ensambladas dentro de una grafica de intensidad contra q. Por ejemplola Fig. 2b muestra la dispersión de una muestra donde la región central (q pequeño) esta saturada, esto fue hecho con el fin de conseguir suficiente señal en otras regiones (q más grande). Figura 3. a) Foto de los MTs individuales, b) manojos de MTs, usando microscopía óptica (DIC). (1) . 2 sin n θ λ = q i 0.1 1 0.1 1 10 100 ~ 1 /q 6 m M 8 m M 10 m M 12 m M 14 m M 16 m M 30 m M 1/q I(q ) [u .a .] q[ m -1 ] ~ 1 /q 2 Las siguientes graficas muestran el comportamiento desglosado de los MTS y los manojos a concentraciones distintas y se puede apreciar que las tres se ajustan al régimen de Guinier y como se aproximan a 1/q 2 como ya se menciono arriba. a) b ) a) b) a) a ) b) b) 5 10 15 20 25 30 1 10 100 q = 0.11344 (56 m) q = 0 .7 4 9 3 7 (8 .4 m) q = 1 .4 3 6 8 6 (4 .4 m) I(q ) [u .a ] C z [mM] 0.0 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 -2 -1 0 1 2 3 4 f(x) = l(q ) [0 m M] f(x) = e xp (3 .3 8 -3 0 .1 1 x) f(x) = 0 .6 /x ln (f(x)) x = q 2 0.0 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 -2 .0 -1 .5 -1 .0 -0 .5 0.0 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 3.0 3.5 4.0 4.5 5.0 5.5 f(x) = l(q ) [1 4 m M] f(x) = e xp (3 .7 4 - 1 0 .8 9 x) f(x) = 2 .8 /x ln (f(x)) x = q 2 0.0 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 3.0 -2 -1 0 1 2 3 4 5 6 7 f(x) = I(q ) [3 0 m M] f(x) = e xp (4 .9 1 -1 4 .6 5 x) f(x) = 5 .5 /x ln ( f(x)) x = q 2 REFERENCIAS 1.- Proceedings of the National Academy of Sciences, USA, Vol. 101, P. 16099 (2004). 2.- Neutrons, X-Rays and Light Scattering Methods Applied to Soft Condensed Matter, North Holland Delta Series, Elsevier Science 2002, Edited by P. Linder and Th. Zemb.

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DISPERSION DE LUZ

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  • Dispersin de Luz a Bajos ngulos en Redes de MicrotbulosMa. Guadalupe Gonzlez-Asevedo1, Abraham de la Cruz-Martnez1, Luis F. Rojas2 and Miguel ngel Ojeda-Lpez11Instituto de Fsica, Universidad Autnoma de San Luis Potos, Mxico, 2Departamento de Fsica, CINVESTAV Resumen Se estudi la cintica de la formacin de agregados paralelos de microfilamentos biolgicos cargados, llamados microtbulos (MTs), utilizando dispersin de luz a bajos ngulos y microscopa ptica de contraste por interferencia diferencial. En vitro, en presencia de cationes multivalentes, los MTs se agregan paralelamente formando redes de manojos, como funcin de la concentracin del catin. Los resultados de dispersin sugieren una semejanza entre la estructura de los agregados de MTs y la de los polmeros sintticos ms pequeos.Figura 1. a) Estructura tridimensional de los MTs, b) estructura de tubulina a) b) Figure 4. a) Trancisin monitoreada con SALS de MTs dispersos y manojos de MTs. b) Intensidad contra concentracin. Figura 2. a) esquema experimental b) foto de la dispersin de manojos de MTs en la CCD AGRADECIMIENTOSAgradecemos al Dr. J.L. Arauz-Lara por amablemente mostrar facilidades para realizar estos experimentos. Tambin agradecemos CONACyT-Mexico su financiamiento a travs de la beca de maestra. Este proyecto fue apoyado por CONACyT en el proyecto Microestructura y Materiales Suaves Ref. U47611-F, y de PIFI-2007. INTRODUCCIN

    Los Microtbulos (MTs) son biofilamentos macromoleculares semirgidos, poseen la morfologa de un cilindro hueco, con un dimetro de tan solo 25nm y longitudes que van desde unas cuantas micras a decenas de micras. Se forma a partir de la unin de miles de dmeros de una protena conocida como tubulina (del orden de 1500 dmeros/micra), a travs de un complejo proceso bioqumico denominado polimerizacin (Figura 1). La protena tubulina es sintetizada por la mayora de las clulas eucariotas y es particularmente abundante en las clulas del sistema nervioso, de donde se extrae para experimentos in vitro. En condiciones fisiolgicas (en medio acuoso, pH~7 y T~37) la tubulina adquiere carga elctrica negativa, as los MTs pueden ser considerados como macroiones negativos; partiendo de la estructura de aminocidos de la tubulina, la carga superficial en un MT se estima del orden de -50e/nm2 . Los MTs, son componentes esenciales del citoesqueleto celular, una red intrincada de microfilamentos que da soporte mecnico a las clulas entre otras funciones. Adems los MTs participan en la divisin celular y en procesos de transporte de neuronas. En casi rodas estas funciones los MTs conforman arreglos supramoleculares asocindose con MAPs (Microtubule Associated Proteins) y con otros microfilamentos. Se conocen varios tipos de MAPs las cuales se adhieren a los MTs mediante interacciones electrostticas atractivas entre el dominio (una secuencia en la protena) y la pared proteica del MT. Experimentalmente los MTs son condensados aadiendo cationes multivalentes como espermidina +3, espermina +4. Nuestro propsito en este trabajo ha sido la transicin de MTs sueltos a su estado de agregacin usando dispersin esttica de luz a bajos ngulos. En trabajos de dispersin de rayos-X a bajo ngulo se observo esta transicin y se demostr que los MTs se empaquetan de manera hexagonal (Ref 1). Sin embargo, como la dispersin de luz envuelve longitudes de onda ms grandes, se puede obtener informacin estructural a escalas de longitud ms grandes, lo cual es importante para entender las redes de MTs y sus los agregados.MATERIALES

    Los MTs fueron polimerizados de la proteina tubulina (www.cytoskeleton.com) y estabilizados con 20M de taxol, al final de este proceso cierto porcentaje de tubulina permanece sin polimerizar. La proteina sin polimerizar es separada de la soluicin de MTs centrifugando. A lo largo de los experimetos, la concentracin de MTs fue fijada a 0.5mg/ml. cation-MT. Para inducir la agregacin de MTs a manojo, un catin trivalenete (espermidina) fue aadido en pasos a partir de una solucin altamente concentrada. Para el microscopio ptico, una pequea cantidad de la muestra fue tomada y sellada dentro de un celda hecha con un porta objetos y un cubreobjeto, y analizada por microscopa ptica DIC, usando un objetivo de 60X-2X de inmersin en aceite acoplado a una video-cmara enaltecida de alta resolucin (DAGE). Para SALS, la solucin fue puesta dentro de una celda de cuarzo circular de 1cm de alto y de diametro y dispersada inmediatamente.RESULTADOSEn la figura 3 imgenes representativas del microscopio ptico DIC de MTs sueltos (3a) y manojos de catin-MT (3b) son mostrados para ilustracin. La transicin de MTs sueltos a manojos toma lugar a una concentracin critica de catin (espermidina 3+) en la solucin. El punto critico a lo largo de la transicin puede ser observada en experimentos de SALS. Por ejemplo, la figura 4a muestra la intensidad integrada I(q) para varias concentraciones (0-30 mM). La doble flecha vertical denota donde el punto critico aparece, al rededor de la concentracin de 12-14mM de espermidina. Encontramos estos valores muy consistentes con las imgenes de las muestras tomadas con microscopa. En los datos de SALS se nota el salto en la intensidad, particularmente a pequeos valores de q, y un ligero cambio en la pendiente. Para un rodillo rgido o un cilindro el desarrollo terico de I(q) en la aproximacin de Rayleigh-Gans predice una pendiente de 1/q mientras que para un polmero parecido a un gusano la aproximacin de Debye da una cada de 1/q2 (Ref. 2). En nuestro caso vemos que los MTs siguen la ltima dependencia 1/q2 cercana a la forma 1/q aun en el caso de MTs desagregados. As, nuestros datos de SALS sugieren un paralelismo con la estructura de un polmero a escalas molecular de biopolmeros macroscpicos tal como MTs. En la figura 4b se puede apreciar el cambio de intensidad para distintos qs cuando los MTs estn dispersos con respecto a los MTs agregados (entre Cz = 12mM y 14mM).DESARR0LOLLO EXPERIMENTAL

    En un experimento de dispersin de luz un rayo de luz o radiacin incidente golpea una muestra y es dispersado por su estructura microscpica. En experimentos de dispersin de esttica de luz la intensidad de la luz dispersada es medida como una funcin del vector de dispersin, q, el cual esta relacionado con el ngulo de dispersin, , por la ecuacin,Donde n es el ndice de refraccin del medio y i la longitud de onda de la luz incidente. El vector q esta relacionado a escalas de longitud por d ~ 1/q. En nuestro experimento i = 0.6328m, as de la ec. (1) exploramos escalas de longitud del orden de 1-50 m, valores de