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Cultivo de frijol (Phaseolus vulgaris L.) acondicionado con nanopartículas de TiO2: efecto en las comunidades microbianas de su rizósfera
e implicaciones socio-ambientales
M en C. Gabriela Medina Pérez
Yates, J. T., Jr. et al., J. Phys. Chem. B 2005, 109. 6061
1.Introducción
Antecedentes/Estado del arte
Medina-Pérez, G. et al., 2019. Nanotechnology in crop protection: Status and future trends. In Nano-BiopesticidesToday and Future Perspectives(pp. 17-45). Academic Press)
Fig 1. Aplicaciones de la nanotecnología en la agricultura
FBN
18,000 especies de leguminosas
El cultivo de frijol,
Importancia de las leguminosas
Proteínas
Carbohidratos
Vitaminas
Grasas
Fibra
N
1.06 millones de toneladas
(FIRA, 2016)
2. Antecedentes
1.06 millones de toneladas de frijol en 2016 (FIRA,2016)
Representa el 36% de la ingesta de proteínas
Fig 2. Distribución geográfica del cultivo de frijol en México. (Soto, 2003)
En 2012 se publicaron los “Lineamientos para regulaciones sobre nanotecnologías para impulsar la
competitividad y proteger al medio ambiente, la salud y la seguridad de los consumidores”.
NMX-R-10867-SCFI-2014 “Nanotecnologías-Caracterización de nanotubos de carbono de una capa(NTCUC)
mediante espectroscopia de fotoluminiscencia en el infrarrojo cercano (EFL-IRC)”
NMX-R-10929-SCFI-2014 “Nanotecnologías-Caracterización de muestras de nanotubos de carbono de
múltiples capas (NTCMC)”.
NMX-R-27687-SCFI-2014 “Nanotecnologías-Terminología y definiciones para nano-objetos-Nanopartícula,
nanofibra y nanoplaca”.
NMX-R-80004-1-SCFI-2014 “Nanotecnologías-Vocabulario-Parte 1: Conceptos básicos “
Legislación en México
NMX-R-80004-3-SCFI-2014 “Nanotecnologías-Vocabulario-Parte 3: Nano-objetos de carbono”
NMX-R.80004-5-SCFI-2015 “Nanotecnologías-Vocabulario-Parte 5: Interfaz nano/bio”
La necesidad de medir los efectos socio-ambientales de la aplicación de nanopartículas de titanio en cultivo de frijol.
González y Torres (2014), proponen
que la sustentabilidad agrícola está
en función de factores como las
técnicas de cultivo y los
componentes de dichas técnicas
que pueden ser sociales, naturales
y económicos.
3. Objetivo general
Determinar el efecto de nanopartículas de TiO2 sobre las comunidades
microbianas de la rizósfera de frijol común, cultivado en condiciones de
invernadero y sobre los indicadores de sustentabilidad de los sistemas de
producción agrícola.
3.1 Objetivos específicos
• Cultivar frijol común en un suelo agrícola acondicionado con nanopartículas de TiO2, bajo
condiciones de invernadero.
• Caracterizar el crecimiento y desarrollo del cultivo con base en sus etapas fenológicas.
• Evaluar las interacciones simbióticas frijol-rizobias y los componentes de rendimiento del cultivo.
• Extraer ADN de suelo de la rizosfera de frijol y analizar la diversidad y abundancia de sus
comunidades bacterianas.
• Diseñar un indicador que permita estimar las implicaciones socio-ambientales a partir de los
resultados experimentales publicados en revistas JCR
4. Hipótesis
Las NP’s de TiO2 afectan las comunidades microbianas de la rizosfera de frijol
común, sus componentes de rendimiento y los indicadores de sustentabilidad
de los sistemas de producción agrícola.
5. Justificación
El interés de empresas y del Estado en la nanotecnología agrícola está limitado por la
incertidumbre ante los efectos aún desconocidos, toda vez que se trata de la producción de
alimentos, una vía rápida para consumir nanomateriales.
Así mismo, la inclusión de productos de dimensiones nanométricas en el mercado de
agroquímicos e insumos agrícolas es una realidad que genera preocupación sobre el potencial
daño al medio ambiente y a la salud pública, aún a pesar de que algunos nanomateriales
incrementan significativamente el crecimiento y desarrollo de los cultivos, así como sus
componentes de rendimiento.
Por lo anterior, es necesario documentar y evaluar las aplicaciones nanotecnológicas que se
están comercializando en el sector agrícola mexicano, a fin de contribuir con el avance
tecnológico y el desarrollo sustentable.
6. Metodología
Se planteó un proyecto de investigación integrado por dos etapas:
1) Investigación experimental
Metodología cuantitativa mediante el establecimiento del cultivo de frijol acondicionado con TiO2-NPs en
condiciones de invernadero. Se midió la respuesta de las plantas cultivadas durante un periodo de 90
días, así como el comportamiento de las poblaciones de microorganismos del suelo rizosférico y no
rizosférico.
2) Construcción del indicador de sustentabilidad
Se construirá un indicador basado en la información estadística y experimental recabada en
publicaciones en JCR. Se utilizará la metodología ambiental Presión-Estado-Respuesta
Fig. 3. Micrografía de nanopartículas de TiO2 por TEM.
Fig. 4. Micrografía de nanopartículas de TiO2 por SEM.
6.1 Investigación experimental
6.1.2 Caracterización de las nanopartículas de dióxido de titanio
6.1.3 Características de las semillas
Cultivo: Frijol
Variedad: Pinto Saltillo
Color de la semilla: Crema claro con pintas café claro
Lugar de producción: Emiliano Zapata, Arteaga-Coahuila
Categoría: Básica
Ciclo de producción: PV-2014
Factor de calidad
Semilla pura 98%
Material inerte 2.0%
Germinación 85%
Humedad <12%
Sin tratamiento químico
6.1.2 Muestreo del suelo
P3
P1
P2
Fig. 5 Localización del sitio de muestreo de suelo.
Áreas de cultivo de rotación (alfalfa-maíz-
cebada) del Instituto de Ciencias
Agropecuarias de la Universidad Autónoma
del Estado de Hidalgo, en el estado de
Hidalgo, México; coordenadas: latitud norte
20 ° 04 '53' ', latitud oeste 98 ° 22' 07 'del
meridiano de Greenwich.
El suelo se muestreó en tres sitios
mediante el establecimiento de parcelas
(P1, P2 y P3).
Se muestreó la capa de 0 a 20 cm de
profundidad.
P3
Empacar las columnas
Suelo muestreado se seco en
invernadero y se tamizó en malla de
0.5 cm
Preincubación(5d, 50% CRA)
Análisis físico-
químicos
Adición y homogenización
de NPs
Ralear
(12d)
T1: Suelo + Pv + TiO2-0.15g kg-1 peso seco
T2: Suelo + Pv + TiO2-0.30g kg-1 peso seco
T3: Suelo + TiO2-0.15 kg-1 peso seco
T4: Suelo + TiO2-0.30 kg-1 peso seco
T5: Suelo + Pv
T6: Suelo
6.1.3 Diseño y montaje del experimento en el invernadero.
Parámetro Método
pH Potenciométrico Thomas, 1996
Conductividad electrolítica
(CE)Conductimétrico Rhoades et al., 1989
NO3, NO2 y NH4+ SKALAR Mulvaney, 1996
Textura Métodos de Bouyoucos Gee y Bauder, 1986
CRA Método gravimétrico
Humedad Método gravimétrico
Tabla 1. Técnicas de caracterización de suelo que se emplearon en esta investigación.
6.1. 4 Análisis fisicoquímicos de suelo
T1 T3T2 T4 T6
Día 0
Día 45
Día 90
× 9 × 9× 9 × 9 × 9
T5
× 9
Figura 6. Acomodo en el invernadero
Extracción por tres técnicas
Muestreo de suelo
de las columnas
Muestreo para extracción de
ADN
(Conservación a -20°C)
Análisis físico-químicos
Temperatura ambiente
Profundidad 0-15 cm
No rizosférico
Rizosférico
Muestreo de plantas
6.1.5 Toma de muestras y mediciones
Actividad fotosintetica (SPAD)
Biomasa (peso seco-peso húmedo)
Crecimiento de estructuras
Rendimientos
Concentración de titanio por ICP-MS
Microscopia de tejidos por SEM
Concentración de titanio ICP-MS
0.5 g de muestra de suelo
Eliminación de la materia orgánica con pirofosfato
Eliminación del exceso de pirofosfato
1. Método de lisis
(Valenzuela-Encinas et al. 2008)
2. Método de lisis enzimático
(Sambrook y Russell, 2001)
3. Método de lisis
(Winston y Hofman 1987)
Purificación y precipitación del DNA
Pool del DNA metagenómico
Verificaciónde la calidad del DNA
6.1.6 Obtención de ADN
Construcción de bibliotecas
del gen 16SrDNA
Secuenciación
(ILLUMINA)
6.1.7 Análisis bioinformático
Se usará el programa estadístico QIIME de acuerdo a un único código de barras (Caporaso et al.,
2010).
6.1.8 Análisis estadístico
Se realizará el análisis de varianza (ANOVA) y comparación de medias con Tukey (P <0.05) para
determinar si existen diferencias significativas entre los tratamientos en las mediciones fisicoquímicas
de suelo, plantas y abundancias microbianas (SPSS 20.0. IBM).
Se realizarán estimaciones, evaluando tres índices generales:
1) Calidad de suelo,
2) Calidad y rentabilidad del cultivo, respecto al valor económico,
3) Influencia de los cultivos de frijol, con y sin aplicación de nanopartículas, en la calidad
de vida de los agricultores
Universo de estudio: Zona productiva de frijol en Rio Grande, Estado de Zacatecas
Del 2000-2018
6. 2 Construcción del indicador de sustentabilidad
6.2.1 Selección de índices e indicadores
Fase 1. Comparación de las características
químicas, físicas y microbiológicas de suelo
con y sin adición de nanoparticulas de
dióxido de titanio
Fase 2. Estimación de los rendimientos de la
producción de frijol, mediante la integración
de los datos obtenidos en artículos JCR y
experimentalmente
Fase 3. Cambios en la calidad de vida de los
agricultores de la zona de estudio (Estado
de Zacatecas) mediante el uso de
indicadores seleccionados basados en la
estadística estatales proporcionadas por
INEGI.
a) Implementación de modelo estadístico
para ensayos experimentales
b) Obtención de resultados de los indicadores del
índice i) calidad de suelo. Construcción de matriz
de datos
c) Análisis estadisticos. Prueba de
Hipótesis.
a) Aplicación de los indicadores del
índice ii) Calidad y rentabilidad del
cultivo
Resultados cuantitativos y cualitativos
calificados y ponderados según rango
establecido (1,5 y 10)
a) Aplicación de entrevista
semiestructurada a pequeños
productores de frijol de la zona
seleccionada de estudio.
b) Aplicación de indicadores de el índice iii)
Calidad de vida.
Fase 4. Determinación de la sustentabilidad agrícola del cultivo de frijol acondicionado con nanoparticulas
Ponderación de los resultados estandarizados.
(Sarandón et al., 2014)
6.3.2 Determinación de la sustentabilidad agrícola de los cultivos de frijol
adicionados con nanoparticulas de titanio.
Estos indicadores se ponderarán asignando un factor de ponderación “C” (Cuadro 1, Tabla 2),
evaluándolos bajo los criterios de (i) reversibilidad y (ii) dependencia hacia otros indicadores (Sarandón
et al., 2014).
Tabla 2. Rangos porcentuales para la evaluación de la sustentabilidad
agrícola (Bell y Morse, 2008)
Porcentajes Observaciones
0 – 50Insustentable Declive de los indicadores de sustentabilidad a
través del tiempo.
51 – 85
Poco sustentable Los indicadores de sustentabilidad se mantienen
constantes a través del tiempo.
86 – 100Sustentable Incremento en los indicadores sustentabilidad a
través del tiempo.
7. Resultados investigación experimental
Figura 7. Micrografía por SEM de corte longitudinal de tallo de planta de frijol. a) control, b) TiO2-NP (0.30 g kg-1).
a b
Figura 8. Micrografía por SEM de corte longitudinal de raíz de planta de frijol. a) control, b) TiO2-NP (0.30 g kg-1).
a b
Figura 9. Micrografía por SEM de corte transversal de nódulo de raíz de plantas de frijol. a) control,
b) TiO2-NP (0.30 g kg-1).
a b
Figura 10. Micrografía por SEM de superficie externa de raíces secundarias de planta de frijol tratadas con TiO2-NP (0.30 g
kg-1. a) 170 ×; b) 9500 ×.
a
b
Figura 11. Micrografía por SEM de superficie externa de raíces secundarias de planta de frijol tratadas con TiO2-NP (0.30 g
kg-1). a) 75 ×; b) 2000 ×.
a
b
Tabla 3. Caracterización fisicoquímica de suelo utilizado en el experimento
pHE.C
(dS m-1)OM (%)
Nitrógeno total
(%)
Nitrógeno inorgánico
(mg.kg-1)
7.54 ± 0.20 0.53 ± 0.18 3.61 ± 0.18 0.18 ± 0.01 21.27 ± 11.47
P (mg.kg-1) K (mg.kg-1) Na (mg.kg-1) Ca (mg.kg-1) Mg (mg.kg-1)
Densidad
aparente
(g cm-3)
23.25 ± 7.4 506 ± 91.8 422.66 ± 55.1 3050 ± 63.5 1448 ± 40.6 1.29 ± 0.1
Arena (%) Limo (%) Arcilla (%) Textura Color
31.20 ± 1.4 41.96 ± 1.1 26.5 ± 2 FRANCO1 O YR 5/3 Café
Figura 12. ADN extraído y amplificaciones del fragmento 16SrDNA de ADN suelo de los diferentes tratamientos. a) DNA purificado en
columna b) amplificaciones del fragmento 16SrDNA sin anidación, c) amplificaciones del fragmento 16SrDNA con anidación
a
b c
Fig. 13. Abundancia relativa (%)
de los filos bacterianos y de los 50
géneros más abundantes en a)
suelo no modificado, b) suelo
modificado con 150 mg de TiO2
kg-1 suelo seco) 300 mg de TiO2
kg-1 suelo seco. Suelo no
cultivado con plantas de frijol
(Phaseolus vulgaris L.) en el día 0
(bulk-d0), el día 45 (bulk-d45) y
el día 90 (bulk-d90), suelo no
rizosférico en el día 0 (nrhi-d0),
día 45 (nrhi-d45) y día 90 (nrhi-
d90) y suelo de rizósfera de
plantas de frijol en el día 0 (rhi-
d0), día 45 (rhi-d45) y día 90 (rhi-
d90)
Fig. 14. Análisis de
componentes principales
(PCA) con la abundancia
relativa de los filos
bacterianos y en a) suelo no
cultivado con plantas de frijol
(Phaseolus vulgaris L.) o
suelo en masa, b) suelo no
rizosférico o c) rizosférico de
plantas de frijol. Suelo no
modificado ( ), suelo
modificado con 150 mg de
TiO2 kg-1 de suelo seco y ( )
y 300 mg de TiO2 kg-1 de
suelo seco ( ).
Fig. 15. Análisis de componentes
principales (PCA) con la abundancia
relativa de los 50 géneros
bacterianos más abundantes y en a)
suelo no cultivado con plantas de
frijol (Phaseolus vulgaris L.) o suelo
en masa, b) no rizósfico o c)
Rizosfera de suelo de frijol. Suelo no
modificado ( ), suelo modificado
con 150 mg de TiO2 kg-1 de suelo
seco y ( ) y 300 mg de TiO2 kg-1
de suelo seco ( ).
Conclusiones preliminares
Las NPs de TiO2 no modificaron significativamente la biomasa de las plantas de frijol común (número
de nódulos, peso seco de parte aérea o raíz, longitud de parte aérea o raíz y rendimiento), ni la
actividad fotosintética (unidades SPAD).
Las NPs de TiO2 se adsorbieron en la superficie de la raíz pero no causaron alteraciones estructurales
en el tejido.
Los tallos de plantas de frijol tratadas con NPs de TiO2 no presentan microorganismos endófitos.
El nivel de aplicación de nTiO2 no alteró la comunidad del phylum bacteriano en el suelo
no modificado, no rizosférico y rizosférico.
El tiempo de exposición tuvo un efecto significativo, en el suelo no rizosférico y rizosférico.
El suelo rizosférico se separó claramente del suelo no rizosférico y en masa considerando
los filos bacterianos, pero más aún considerando los 50 géneros bacterianos más
abundantes.
Estos hallazgos deben considerarse en relación con el uso, eliminación o aplicación de
TiO2 en suelos agrícolas, especialmente en estudios a largo plazo.
2015-2 2016-1 2016-2 2017-1 2017-2 2018-1 2018-2 2019-1
1 2 3 4 5 6 7 8
Actividadessep-
oct
nov-
dic
ene-
feb
mar-
abr
may-
jun
jul-
agos
sep-
oct
nov-
dic
ene-
feb
mar-
abr
may-
jun
jul-
agos
sep-
oct
nov-
dic
ene-
feb
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abr
may-
jun
jul-
agos
sep-
oct
nov-
dic
ene-
feb
mar-
abr
may-
jun
jul-
agos
Clases en diferentes
instituciones
Revisión bibliográfica
Preparación protocolo
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revisar proyecto
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Búsqueda de material
bibliográfico
Investigación y recopilación de
datos de campo
Análisis de información
recopilada
Reporte del análisis
Experimentación
Análisis de resultados
Análisis datos sociales
Elaboración de artículos
Redacción de tesis
Trabajo pendiente:
• Análisis de concentración de titanio en plantas de frijol y suelo.
• EDS, para asegurar las observaciones de microscopia.
• Extracción de DNA bacteriano de plantas y semillas de frijol (endófitos).
• Trabajo con la base de datos para la construcción del indicador
• Análisis del metaboloma
Medina-Pérez, G., Fernández-Luqueño, F., Vazquez-Nuñez, E., López-Valdez, F., Prieto-Mendez, J., Madariaga-Navarrete,
A., & Miranda-Arámbula, M. (2019). Remediating Polluted Soils Using Nanotechnologies: Environmental Benefits and
Risks. Polish Journal of Environmental Studies, 28(3).
Medina-Pérez, G., & Fernández-Luqueño, F. Nanotoxicidad: retos y oportunidades Nanotoxicity: Challenges and
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Medina-Pérez, G., Fernández-Luqueño, F., Trejo-Téllez, L. I., López-Valdez, F., & Pampillón-González, L. (2018). Growth
and development of common bean (Phaseolus
vulgaris L.) var. pinto Saltillo exposed to iron, titanium, and zinc oxide nanoparticles in an agricultural soil. Appl Ecol
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Book chapters
Gutiérrez-Ramírez, R., Fernández-Luqueño, F., Medina-Pérez, G., Pérez-Hernández, H., López-Valdez, F., Vázquez-
Núñez, E., ... & Inchauregi, V. U. (2018). Agronanobiotechnologies to Improve the Water Quality in Irrigation Systems. In
Agricultural Nanobiotechnology (pp. 141-157). Springer, Cham.
Fernández-Luqueño, F., Medina-Pérez, G., López-Valdez, F., Gutiérrez-Ramírez, R., Campos-Montiel, R. G., Vázquez-
Núñez, E., ... & Madariaga-Navarrete, A. (2018). Use of Agronanobiotechnology in the Agro-Food Industry to Preserve
Environmental Health and Improve the Welfare of Farmers. In Agricultural Nanobiotechnology (pp. 3-16). Springer,
Cham.
Medina-Pérez, G., Fernández-Luqueño, F., Campos-Montiel, R. G., López-Valdez, F., Vázquez-Núñez, E., Pérez-
Hernández, H., ... & Zavala-Cortés, A. (2018). Effects of Nanoparticles on Plants, Earthworms, and Microorganisms. In
Agricultural Nanobiotechnology (pp. 161-181). Springer, Cham.
Publicaciones en congreso
“Cultivo de frijol, maíz y girasol en suelo agrícola acondicionado con nanopartículas de TiO2 y ZnO”, Gabriela Medina-
Pérez, Fabián Fernández-Luqueño, Fernando López-Valdez, Oscar Enrique Del Razo-Rodríguez, Isaac Almaraz-Buendía
y Rafael Germán Campos-Montiel. International Symposium on AgroBio NanoTechnology, 2017, Saltillo Coahuila-
Mexico
Abundancia de hongos, bacterias, actinomicetos y lombrices en un suelo agrícola contaminado con nanopartículas
de TIO2, ZnO y α-Fe2O3”. Gabriela Medina-Pérez, Fabián Fernández-Luqueño, Fernando López-Valdez, Oscar Enrique
Del Razo-Rodríguez, Isaac AlmarazBuendía y Rafael Germán Campos-Montiel International Symposium on AgroBio
NanoTechnology, 2017 Saltillo Coahuila-Mexico
Resilience of the rhizosphere bacterial communities from common bean plants (Phaseolus vulgaris L.) grown in
agricultural soil contaminated with TiO2 nanoparticles
Gabriela Medina-Pérez1, 5, Yendy E. Navarro-Noya2, Fabián Fernández-Luqueño3*, Claudia L. Ibarra-Sánchez4, Jessica
N Barrera-Cabrera4, Luc Dendooven4 PROXIMO MAYO-2019, BIOVEG CUBA
«La metodología experimental en nanotecnología agrícola llevada a una política pública para la sustentabilidad en
México» 3er Coloquio de estudiantes de posgrado Gestión y políticas de Ciencia, Tecnología e Innovación. Zacatecas,
Zacatecas 25-26 abril, 2018
Medina-Pérez, G., Fernández-Luqueño, F., Campos-Montiel, R. G., Sánchez-López, K. B., Afanador-Barajas, L. N., & Prince,
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