PROGRAMA DE INOCUIDAD DE LOS ALIMENTOS - ispch.cl · PDF fileGráﬁ ca LOM AÑO 2010 LLibro 4788 ... Informe Residuos de Plaguicidas en Alimentos 2008.....41 Informe Residuos de Plaguicidas

PROGRAMA DE INOCUIDAD DE LOS ALIMENTOS: Reporte de estudios 2008-2009

PROYECTO CORFO INNOVA:“Fortalecimiento de la Función de Referencia del Instituto de Salud Pública de Chile para asegurar la calidad e inocuidad de los alimentos”. Agosto 2007 - Agosto 2010

Libro 4788 CORFO INNOVA.indb 1Libro 4788 CORFO INNOVA.indb 1 17/1/11 12:42:5617/1/11 12:42:56

COMITÉ EDITORIALMaría Cristina MartínezOrialis VillarroelBerbeli AstorgaViviana CachicasLuis RoaMarcelo SotoLorena DelgadoEmilia Raymond

COORDINACIÓN GENERALMaría Cristina Martínez

ISBN: 978-956-7770-09-0

RPI: 200.362

DISEÑOCarolina Salgado

IMPRESOGráfi ca LOM

AÑO 2010


ÍNDICEInforme Proyecto CORFO INNOVA “Fortalecimiento de la Función ➤

de Referencia del Instituto de Salud Pública de Chile para Asegurar la Calidad e Inocuidad de los Alimentos” ..........................................5

Programa de Evaluación Externa de la Calidad ➤ ...............................13

Informe Programa de Fortifi cación de Harinas 2008 ➤ ..........................21

Informe Programa de Fortifi cación de Harinas 2009 ➤ ..........................31

Informe Residuos de Plaguicidas en Alimentos 2008 ➤ ........................41

Informe Residuos de Plaguicidas en Alimentos 2009 ➤ ........................47

Informe Residuos Medicamentos Veterinarios en Alimentos 2008 ➤ ..........61

Informe Residuos Medicamentos Veterinarios en Alimentos 2009 ➤ ..........67

Informe Micotoxinas en Alimentos 2008-2009 ➤ ................................77

Programa Vigilancia Fenómenos Algales Nocivos 2008 ➤ ......................87

Programa Vigilancia Fenómenos Algales Nocivos 2009 ➤ ......................97

Informe Detección Norovirus en Agua 2010 ➤ ................................111Informe Presencia de Especies de Vibrio en Alimentos de ➤

Origen Marino en Chile 2009 .................................................117

Informe de Parásitos en Vegetales 2008-2009 ➤ .............................127



INFORME FINAL PROYECTOCORFO INNOVA“Fortalecimiento de la Función de Referencia del Instituto de Salud Pública de Chile para Asegurar la Calidad e Inocuidad de los Alimentos”



PROYECTO CORFO INNOVAReporte de estudios 2008-2009

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INFORME FINAL PROYECTO CORFO INNOVA

Desarrollo ProyectoAntecedentes Generales

La producción de alimentos inocuos y la calidad de éstos tienen una gran re-

levancia en el comercio internacional ali-mentario; la tendencia creciente de éste es exigir que los productores y exporta-dores puedan dar aseguramiento sobre la inocuidad del producto desde el lugar de origen, hasta el punto de consumo, y que adopten asimismo prácticas y programas para asegurar la calidad e inocuidad de los alimentos. En estos programas se incluye la realización de análisis de laboratorio que permiten la detección de sustancias tóxicas o patógenas en los alimentos.

En esta línea, las políticas nacionales deben estar orientadas a dar garantía, credibilidad y confi anza a los resultados que respaldan tanto las exportaciones de alimentos como el consumo interno de ellos. Por esta razón, adquiere una gran relevancia el fortalecimiento de la institu-ción pública que evalúa el desempeño de los laboratorios de alimentos en nuestro país. De acuerdo al Código Sanitario, es el Instituto de Salud Pública la institución que realiza la función de referencia de los laboratorios de análisis de alimentos.

El ISP, en su rol de referencia, es, por lo tanto, la institución que encabeza los la-boratorios de análisis de alimentos de la red nacional. Entre sus funciones realiza la supervisión, capacitación, transferencia tecnológica y evaluación del desempeño de éstos. Los laboratorios de análisis de alimentos, tanto públicos como privados, deben implementar un programa de ase-guramiento de la calidad de acuerdo a lo estipulado en la norma ISO/IEC 17025. Este sistema contribuye a mejorar la ca-pacidad y confi anza del laboratorio para

generar resultados creíbles científi camen-te y defendibles legalmente.

El Instituto de Salud Pública de Chile postuló en el concurso nacional para pro-yectos de innovación de interés público e innovación precompetitiva, adjudicándo-se, por primera vez, como entidad bene-fi ciaria responsable, el proyecto “Fortale-cimiento de la Función de Referencia del Instituto de Salud Pública de Chile para Asegurar la Calidad e Inocuidad de los Ali-mentos”

Este proyecto consideró como institu-ciones interesadas al Servicio Nacional de Pesca (SERNAPESCA) y al Instituto Na-cional de Normalización (INN). Ambas Ins-tituciones tuvieron un importante rol en el cumplimiento de los objetivos de este pro-yecto. La participación de ellas se dirigió específi camente a la colaboración técnica en las rondas de ensayos de intercompa-ración, formando los comités consultores de apoyo y en la difusión de las activida-des del proyecto.

El monto adjudicado del proyecto co-rrespondió a $340.000.000 y el tiempo de ejecución fue de tres años, agosto 2007- agosto 2010.

El objetivo general del proyecto fue for-talecer las capacidades de referencia del Instituto para asegurar con bases cientí-fi cas la calidad de las prestaciones de los laboratorios de análisis de alimentos. Los Objetivos Específi cos se describen a con-tinuación:

Transferencia tecnológica desde ins-1. titución experta internacional de pre-paración de Materiales de Referencia (MR) en alimentos.

Acondicionamiento de un laboratorio 2. de preparación de material de referen-cia.



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Preparación de MR en matrices ali-3. mentos con parámetros a defi nir de acuerdo a las demandas de las ins-tituciones asociadas, basados en las normativas nacionales.

Realizar programas voluntarios de se-4. guimiento del desempeño de laborato-rios de análisis de alimentos del país.

Establecer estrategias con los dife-5. rentes actores asociados al proceso, de manera de poder incorporar en el trabajo diario de los laboratorios y fi s-calizadores del Estado, un sistema de aseguramiento de la calidad.

Este proyecto fue desarrollado en dos etapas:

I Implementación del laboratorio para la preparación de materiales de referencia.

II Implementación de programa de ron-das de intercomparación.

El equipo de trabajo se conformó con las siguientes personas:

Director proyecto: BQ María Cristina Martínez

Director Alterno: QF Soraya Sandoval

Personal: MV Marisol AguileraIng Alim Karina GonzálezAQ Claudia NúñezIng Civil Enzo PantojaTécnico Rosario Montecinos

Colaboradores:Marcelo Soto, Laboratorio Residuo Pla-guicidasMariana Fernández, Encargada Gestión de CalidadFabiola Muñoz, Sección Gestión de Ca-lidad

Viviana Cachicas, Jefe Laboratorio Mi-crobiología AlimentosFabiola Rojas, Laboratorio Microbiolo-gía AlimentosAnyela Tricarico, Coordinadora de Ges-tión.



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Actividades de Ejecución del Proyecto Creación Sección Metrología de Ambiente y Alimentos

La primera acción realizada para la ejecución del proyecto fue la creación de la Sección de Metrología de Ambiente y Alimentos, dada la necesidad de contar con una unidad dedicada a implementar herramientas para la trazabilidad de las mediciones, en donde se canalizaron las actividades y acciones del proyecto. Esta sección depende directamente de la jefa-tura.

El principal objetivo de esta sección es apoyar a los Laboratorios Ambientales y Bromatológicos públicos y privados, en la satisfacción de sus necesidades metro-lógicas, a través de la elaboración y de-sarrollo de materiales de referencia y en-sayos de intercomparación, herramientas esenciales en el sistema de aseguramiento de calidad de las prestaciones analíticas ofrecidas, y mejorar así la inocuidad de los alimentos y la contaminación ambiental, para contribuir en el calidad de vida de la población y el desarrollo económico de la región.

Las principales funciones de esta uni-dad se mencionan a continuación:

Organizar, desarrollar y evaluar los en-• sayos de aptitud, químicos y microbio-lógicos en alimentos y otras matrices.

Elaborar materiales de referencia ma-• triciales.

Implementar sistema de calidad a los • procesos desarrollados.

Incorporarse a Red Nacional de Metro-• logía. Red de laboratorios designados encargada de diseminar y garantizar la trazabilidad de las mediciones, que se

realizan en Chile y lograr el reconoci-miento internacional de éstos.

Colaborar y coordinar con institucio-• nes públicas y privadas, laboratorios de la red y privados para desarrollar soluciones y respuestas a sus necesi-dades.

Otras tareas encomendadas por la Di-• rección del Instituto de Salud Pública de Chile.

Convenio de Colaboración con Organización Experta Internacional

Se fi rmó convenio con National Food Administration (NFA), institución que per-tenece al Ministerio de Agricultura de Sue-cia, que asesoró el área química, y LGC Standard del Reino Unido, institución pri-vada que asesoró el área microbiológica. Los objetivos planteados en el plan de tra-bajo fueron los siguientes:

Desarrollar sistema de calidad para la 1. organización de ensayos de intercom-paración en el área química y micro-biológica.

Desarrollar sistema de calidad para 2. la preparación, caracterización y aná-lisis de matrices de material de refe-rencia para química y microbiología (muestreo, preparación de material de referencia, test homogeneidad y esta-bilidad, análisis estadístico, validación, incertidumbre y trazabilidad).

Capacitación del personal del labora-3. torio en preparación de materiales de referencia y ensayos de intercompara-ción.

Preparación de la Sección Metrología 4. para la acreditación del programa de ensayos de intercomparación.



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El trabajo se realizó durante dos años de acuerdo al siguiente plan de trabajo:

Auditoría de diagnóstico.1.

Series de ensayo de Intercomparación 2. con NFA y LGC Standard.

Capacitación de profesionales del Ins-3. tituto de Salud Pública en NFA y LGC Standard.

Presentación de resultados en Chile.4.

Auditoría intermedia.5.

Dos ensayos de intercomparación en 6. conjunto.

Auditoría fi nal.7.

Capacitación Funcionarios

Durante el desarrollo del plan de traba-jo con los asesores internacionales se rea-lizaron capacitaciones a cuatro funciona-rios del Instituto de Salud Pública, durante tres semanas:

NFA Abril 2008Soraya Sandoval

Marcelo Soto

LGC Standard

Mayo 2008Marisol Aguilera

María Cristina Martínez

Los programas de capacitación en am-bas instituciones incluyeron los siguientes temas:

Desarrollar sistema de calidad para la • organización de ensayos de intercom-paración en el área química y micro-biológica.

Desarrollar sistema de calidad para • la preparación, caracterización y aná-lisis de matrices de material de refe-rencia para química y microbiología (muestreo, preparación de material de referencia, test homogeneidad y esta-

bilidad, análisis estadístico, validación, incertidumbre y trazabilidad).

Capacitación del personal del labora-• torio en preparación de materiales de referencia y ensayos de intercompara-ción.

Preparación de la Sección Metrología • para la acreditación del programa de ensayos de intercomparación.

Convenio Colaboración SAG- ISP

En mayo del año 2010 entra en vigencia convenio fi rmado entre Instituto de Salud Pública y el Servicio Agrícola Ganadero. En este convenio de colaboración mutua se estipula la colaboración, entre las insti-tuciones, en la programación de ensayos de intercomparación en el área de inocui-dad de los alimentos.

Convenio Colaboración INN-ISP

En agosto del año 2007 se fi rma con-venio entre Instituto Nacional de Norma-lización e Instituto de Salud Pública, en el cual se estipula que ambas instituciones colaborarán mutuamente en la generación de proyectos de interés público dirigidos a dar cuenta de las necesidades en las áreas de acreditación, normalización, metrología y capacitación.

Habilitación de Laboratorio

En el año 2009 se dispuso el reacondi-cionamiento de un laboratorio con aproxi-madamente 400 m2 habilitados para el funcionamiento de la Sección Metrología de Ambiente y Alimentos. Esta habilitación consideró los requisitos del sistema de ca-lidad. Estas dependencias se destinan a la elaboración de materiales de referencia, a la implementación de métodos validados



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para determinar los valores asignados. El costo de este trabajo fue de $78.500.000.

Los equipos adquiridos con fi nancia-miento Institucional y del proyecto son los siguientes:

Baño termorregulador•

Congeladores verticales•

Agitadores•

Homogeneizadores de 1 litro y 4 litros•

Computadores•

Contador de colonias computacional•

Gabinetes de almacenamiento de • reactivos

Gabinetes desecadores•

Refrigerador de laboratorio•

Cabina de seguridad biológica•

Balanzas•

Liofi lizador•

Campana extractora de gases•

Autoclave•

Placas calefactoras con agitación•

Resultados y ProductosRondas de Intercomparación (PEEC)

En el área química de alimentos se realizaron, entre los años 2007-2010, las siguien-tes rondas de intercomparación en trazas de metales en alimentos y macronutrientes en alimentos.

RONDAS ANALITOTOTAL LABORATORIOS CHILENOS

INSCRITOS

RONDA T15 TRAZA METALES EN ALIMENTO 6




RONDA N39 MACRONUTRIENTES EN ALIMENTO 18





PT-39-K96 MACRONUTRIENTES EN ALIMENTO 19

En el área de microbiología de alimentos se desarrollaron las siguientes rondas de intercomparación, en las cuales los laboratorios chilenos participaron con países euro-peos.



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RONDAS 2007-09

ANALITOTotal Lab. Chilenos inscritos por

ronda /Promedio lab. Chilenos que respondieron

Total resultados/total respuestas lab. Chilenos

Ronda 16F

Rto. Aerobios mesófilosEscherichia coli

ColiformesEnterobacteriaceae

33/32

260/50171/53223/55227/50

Ronda 23FMohos

Levaduras25/18

482/33483/36

Ronda 17FStaphylococcus coagulasa

Bacillus cereus32/21

547/33393/32

Ronda 16 D

Rto. Aerobios MesófilosEscherichia coli

ColiformesEnterobacteriaceae

43/43

280/65145/54164/56309/59

Materiales de Referencia Preparados

Los materiales de referencia para ensa-yo de aptitud elaborados son los siguien-tes:

Material de referencia para ensayos de 1. presencia /ausencia de Vibrio parahae-molyticus en matriz de mariscos para ensayos de aptitud.

Material de referencia de residuos de 2. plaguicidas en matriz de manzana.

Material de referencia para ensayo de 3. aptitud de metales en alimento infantil.

Comentario

La ejecución de este proyecto ha per-mitido fortalecer la función de referencia del Instituto de Salud Pública de Chile, ya que los productos generados en el área de Metrología Ambiental y de Alimentos for-marán parte de las prestaciones del ISP a los laboratorios de alimentos y ambienta-les; esto permitirá aumentar la cobertura y

frecuencia de las rondas de intercompara-ción y responder a las demandas naciona-les de acuerdo a la contingencia.

En el contexto nacional, los logros mencionados anteriormente serán una herramienta para el fortalecimiento de los sistemas de calidad implementados y en etapa de implementación, de los labora-torios que participan en el control de los alimentos destinados al consumo interno y a la exportación.

BQ María Cristina MartínezDirectora Proyecto CORFO INNOVA

06CN12IXM-43


PROGRAMA DE EVALUACIÓN EXTERNA DE LA CALIDAD (PEEC):Ensayos de Aptitud en el Área Ambiental y de Alimentos




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PROGRAMA DE EVALUACIÓN EXTERNA DE LA CALIDAD (PEEC):

Dentro de las actividades analíticas es siempre importante mantener la exce-

lencia; los laboratorios deben contar con un sistema de aseguramiento de la cali-dad de los servicios entregados. Como medio de control externo de la calidad se encuentra la participación en ensayos de intercomparación, conocidos como ensa-yos de aptitud.

El Instituto de Salud Pública, a través del Departamento de Salud Ambiental, realiza anualmente ensayos de intercom-paración dirigido a los laboratorios de en-sayo públicos y privados.

EL Programa de Evaluación Externa de la Calidad (PEEC) es un programa de ensayos de aptitud dirigido a los labora-torios de ensayo del área química y micro-biológica ambiental y de alimentos, siendo invitados a participar en éstos tanto para laboratorios públicos como privados.

En la actualidad este Departamento cuenta con 14 Subprogramas de Ensayos, seis del Área de Química de Alimentos, siete del Área de Química Ambiental y uno del Área de Microbiología de Alimentos. En este Programa de Rondas de Ensayos de Aptitud participan laboratorios privados (incluyendo universitarios), laboratorios del Servicio Agrícola Ganadero, Fuerzas Armadas, laboratorios de salud pública regionales y laboratorios extranjeros.

Estas evaluaciones permiten efectuar un diagnóstico de la situación de los la-boratorios bromatológicos y ambientales en las áreas de métodos analíticos y re-sultados, identifi car errores y proporcionar ayuda en su corrección, además de una herramienta más para la mejora continua, necesaria para dar credibilidad a los usua-rios y organismos de acreditación u otros.

Los informes de cada ronda PEEC son muchas veces requeridos por los organis-mos públicos (SAG, SERNAPESCA, SE-

REMI de Salud, etc.) y acreditadores (INN) para evaluar el desempeño de los labora-torios de ensayo.

En el año 2007, se crea la Sección Me-trología Ambiental y de Alimentos, que da inicio a la implementación del Sistema de Calidad para estos ensayos de aptitud, ba-sado en las Normas ISO/IEC 43:1997, ILAC G13: 2007 y Norma Chilena 2445:1999. A fi -nales del mismo año, se complementa este proceso bajo la asesoría técnica de dos or-ganismos internacionalmente reconocidos: LGC Standard del Reino Unido en el área de microbiología y Swedish National Food Administration (NFA) en el área química, organismo dependiente del Ministerio de Agricultura, Alimentación y Pesca de Sue-cia, quienes cumplieron en tres oportunida-des un rol de auditores externos durante el periodo 2008-2009.

En el año 2009 participaron un total de 105 laboratorios. Los participantes en cuanto al tipo de laboratorio se distribuye-ron de la siguiente manera:

Siendo principalmente laboratorios del sector público (34%) y privado (36%) a nivel nacional nuestros principales clien-tes. Los laboratorios extranjeros que par-ticiparon en estas rondas fueron de Perú,

PUBLICO34%

PRIVADO36%

ACADEMICO18%

EXTRANJERO12%



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Ecuador, Argentina, Brasil, Bolivia y Para-guay. El laboratorio de la División Química 2 de Swedish National Food Administra-tion (NFA) participó con un fi n de asesoría en el proceso en una de las rondas del año 2009.

La distribución de los laboratorios en cuanto a la participación en los subprogra-mas PEEC desarrollados, fue la siguiente: 30% participa exclusivamente en el área química ambiental y de los alimentos (QAA), un 27% participa exclusivamente en el área de Microbiología de los Alimen-

La distribución en el año 2009 en cuanto a la participación de laboratorios a nivel nacional fue:

tos y un 43% de los laboratorios participa-ron en ambas áreas.

PEEC-QAA y PEEC-MA

43%

PEEC-QAA30%

PEEC- MA27%

1

4

2 1 1

9

28

21

11

2

4

17

3

5

0

5

10

15

20

25

30

XV I II III IV V RM VI VII VIII IX XIV X XI XII Región

DISTRIBUCIÓN DE Nº LABORATORIOS PARTICIPANTES A NIVEL NACIONAL AÑO 2009



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En total se realizaron un total de 396 envíos de ensayos de aptitud en el año 2009, teniendo una cobertura de todo el territorio nacional.

Los subprogramas desarrollados en el periodo 2008-2009 fueron:

1) PEEC MA- Microbiología de Alimentos:

PROGRAMA SUBPROGRAMA DESCRIPCIÓN CÓDIGO AÑOS

Enumeración de microorganismos en

alimentos

Staphylococcus aureus y Re-cuento de Aerobios Mesófilos

Enumeración de Staphylococcus aureus y/o Bacillus cereus

MA0120082009

Enterobacteriaceae, Coliformes y Eschericha coli

Enumeración de Enterobacteriaceae, Coliformes y Eschericha coli liofilizado

MA0320082009

Detección de microor-ganismos en alimentos

Listeria spp Detección de Listeria spp liofilizado MA0420082009

Salmonella spp Detección de Salmonella spp liofilizado MA0520082009

2) PEEC QAA - Química Ambiental y de Alimentos:

PROGRAMA SUBPROGRAMA DESCRIPCIÓN CÓDIGO AÑOS

Macronutrientesen alimentos

Análisis proximal (Cenizas, Proteínas, Humedad y Lípidos), Sodio y Hierro.

Determinación de los analitos: Cenizas, Proteínas, Humedad, Lípidos, Sodio y /o Hierro en una matriz de alimento infantil o de regímenes especiales tipo cereal o lácteo.

SP420082009

Biotoxinasmarinas

Toxina paralizanteDeterminación de toxina paralizante en muestra de marisco liofilizado.

SP620082009

Toxina amnésicaDeterminación de ácido domoico en extracto de marisco.

SP1320082009

Aniones en aguasNitritos y flúor en Aguas

Determinación cuantitativa de flúor y nitritos en una matriz de agua.

SP820082009

Caracterizaciónde ResiduosPeligrosos (RESPEL)

Residuos peligrosos orgánicos

Determinación cuantitativa de compuestos orgánicos en una matriz de RESPEL de suelo.

SP1120082009

Residuos peligrosos inorgánicos

Determinación cuantitativa de metales en una matriz de RESPEL de suelo.

SP1220082009



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En las rondas de Ensayos de Aptitud PEEC del área de alimentos, los resultados obtenidos fueron:

SUBPROGRAMA AÑOSN º N º % % %

PARTICIPANTES RESPUESTAS SATISFACTORIO CUESTIONABLE INSATISFACTORIO

MA01- Enumeración Staphylococcus aureus

2008 32 27 100 0 0

MA01- Enumeración Sta-phylococcus coagulasa positivo o Bacillus cereus

2009 42 57 86 9 5

MA03- Enumeración Enterobacteriaceae

2009 63 66 84 5 11

MA03- Enumeración coliformes

2008 39 34 79 9 12

2009 63 68 77 2 21

MA03- Enumeración Escherichia coli

2008 39 33 79 12 9

2009 63 66 100 0 0

MA04-Detección Listeria spp.

2008 11 9 89 --- 11

2009 49 60 97 --- 3

MA05-Detección Salmo-nella spp.

2008 8 7 100 --- 0

2009 64 81 93 --- 7

SP4-Cenizas2008

2009-12009-2

364747

344343

9010091

303

706

SP4-Humedad2008

2009-12009-2

364747

344343

614649

182316

213135

SP4-Proteínas2008

2009-12009-2

364747

344343

646263

1153

253334

SP4-Lípidos2008

2009-12009-2

364747

344343

176162

141214

692724

SP4-Sodio2009-12009-2

4747

4343

6457

714

2929

SP4-Hierro2009-12009-2

4747

4343

4738

208

3354

SP6- Toxina paralizante20082009

1518

1517

7486

137

177

SP13 -Toxina amnésica20082009

911

610

8390

00

1710



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Se puede apreciar que en las rondas de análisis de macronutrientes en alimentos es donde se observa un menor porcentaje de resultados satisfactorios en los labora-torios participantes.

En general, sobre el 70% de los labo-ratorios obtuvieron un desempeño satis-factorio en las otras rondas desarrolladas durante el periodo 2008-2009.

Es importante que los laboratorios de ensayos utilicen las evaluaciones de los ensayos de aptitud con un fi n de mejo-rar su sistema de calidad, evaluando las posibles causas de error (métodos utiliza-dos, estado de validación de los métodos, errores analíticos, etc.). Un adecuado uso de la herramienta de ensayo de aptitud permite a los laboratorios trabajar en una mejora continua de su sistema de calidad y asegurar la confi abilidad de los resulta-dos reportados.

Como Laboratorio Nacional y de Re-ferencia, los resultados obtenidos en el PEEC permiten detectar el comportamien-to de los laboratorios año a año, y estable-cer las necesidades de fortalecimiento en cuanto a transferencias de metodologías analíticas y capacitaciones requeridas a nivel país, con el fi n de apoyar en el mejo-ramiento del desempeño de los laborato-rios nacionales de alimentos.

QF Soraya SandovalJefe Sección Metrología de Ambiente y

AlimentosInstituto de Salud Pública de Chile



INFORME PROGRAMA DE FORTIFICACIÓN DE HARINAS Subsecretaria de Salud Pública Ministerio de SaludInstituto de Salud Pública de Chile año 2008




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INFORME PROGRAMA DE FORTIFICACIÓN DE HARINAS

I. Antecedentes

Chile ha sido pionero en América Lati-1. na en llevar a cabo planes de interven-ción en Salud Pública con el objetivo de prevenir aquellas enfermedades ocasionadas por problemas nutricio-nales. El programa de fortifi cación de harinas del MINSAL tiene como meta verifi car el cumplimiento del artículo 350 del Reglamento Sanitario de los Alimentos D.S. 977/96, a través de la cuantifi cación de la adición de tiamina, ribofl avina, acido fólico y hierro, por parte de los molinos nacionales a lo largo del país y en harina de trigo de importación.

En un principio, esta evaluación estuvo 2. orientada a la determinación de hierro, tiamina, ribofl avina y niacina, nutrien-tes asociados a alteraciones neuroló-gicas1, cardiovasculares, disminución del impulso visual, anemia ferro priva y otras. Algunos estudios científi cos demuestran evidencias del efecto pro-tector del ácido fólico en la prevención de los defectos del tubo neural, ante lo cual se consideró la necesidad de incorporar el ácido fólico como un nu-triente más en la fortifi cación como medida de intervención de salud pú-blica.

En el año 2000 se aprobó la “Norma 3. Técnica sobre Fortifi cación de hari-na de trigo con Vitaminas y Minera-les” Resolución Exenta N° 543, que indica la obligatoriedad de adicionar ácido fólico. Esto signifi có desarrollar un método analítico en el Instituto de Salud Pública de Chile para efectuar

1 Olivares M, Walter T;Hertrampf E; Pizarro F. Anae-mia and iron defi ciency disease in children (rewiew) Br Med Bull 1999.,55(3):534-43.

la vigilancia de la fortifi cación de hari-na, en el Subdepartamento Alimentos y Nutrición, Laboratorio de Nutrientes, Aditivos y Contaminantes. En el ISP se realizan las determinaciones analíticas de tiamina2, ribofl avina3, acido fólico4 y hierro5. Las muestras son tomadas por las SEREMIS de Salud y la frecuencia de muestreo estipulada es de cuatro veces al año.

De acuerdo con los datos registrados 4. por el MINSAL, la producción de hari-na por Regiones en el año 2001 era: Región Metropolitana (13 molinos), con una producción de 60.639 tone-ladas; Región del Maule, 78.319 to-neladas; Región de O’Higgins, 11.689 toneladas; Región del Ñuble, 9.063 toneladas; Región del Bío-Bío, 21.124 toneladas. Además de las muestras de importación ingresadas a través de San Felipe-Los Andes, Antofagasta, Arica, Valparaíso y Punta Arenas.

En enero de 2008 se efectuó el taller 5. titulado “Evaluación del programa de fortifi cación de las harinas en Chile”, donde participaron representantes del MINSAL, INTA Universidad de Chi-le, un consultor de las OPS, Sr. Omar Dary, e ISP. El análisis estuvo centra-do en las técnicas analíticas utilizadas en la determinación de ácido fólico, ya que es el único nutriente de los men-cionados cuya ingesta tiene un nivel

2 Procedimiento para Determinar Tiamina en Alimen-tos., Método Fluorométrico-HPLC. ISP

3 Procedimiento para Determinar Ribofl avina En Ali-mentos., Método Fluorométrico-HPLC. ISP

4 Elolo S Osseyi, Randy L Wehling, Julie A Albrecht. Liquid chromatographic method for determining added folic acid in fortifi ed cereal products. Journal of Chromatography A, 826 (1998) 235-240.

5 Procedimiento para Determinar Hierro en Harinas y Alimentos. Método Espectrofotometría de Absor-ción Atómica/Llama., ISP.



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máximo tolerable (UL) que debe ser resguardado.

El Instituto de Salud Pública de Chile 6. es el Laboratorio Nacional de Referen-cia para la red de laboratorios del sec-tor salud y bajo ese rol es que desde el año 2000 ha capacitado a numerosos profesionales de los laboratorios am-bientales de las SEREMIS en el análisis de estos analitos (Región Metropolita-na, Viña del Mar, Antofagasta), además de profesionales de Perú, Paraguay y Bolivia. Cabe señalar que el Instituto de Salud Pública de Chile es el único de Latinoamérica que realiza el análisis de ácido fólico.

El presente informe registra los resul-7. tados de los análisis de las muestras de harinas recibidas en el ISP, que for-man parte del programa de vigilancia de fortifi cación de harinas de acuerdo con la norma técnica vigente.

II. Programa de Fortifi cación de Harinas MINSAL – ISP – SEREMIS1. Resultados del Programa de Vigilancia

1.1. Análisis realizados

Durante el año 2008 se realizaron, en el Laboratorio de Nutrientes, Aditivos y Con-taminantes del Instituto de Salud Pública de Chile, 972 análisis, correspondientes a 206 muestras de harina nacionales y 37 muestras de importación (procedentes de Argentina y Holanda). Los análisis se dis-tribuyeron en 243 análisis de tiamina, 243 de ribofl avina, 243 de ácido fólico y 243 de hierro (Tabla N°1). Se realizaron 243 análisis para cada uno de los analitos del programa.

1.2. Frecuencia de monitoreo

De acuerdo con lo estipulado en la Re-solución Exenta N° 543 (Norma Técnica), el muestreo consiste de una muestra de 250 gramos con una frecuencia de 4 ve-ces al año para cada molino. La frecuencia de muestreo que realizó cada SEREMI de Salud se observa en la Tabla N°2.

En cuanto al cumplimiento del progra-ma de frecuencia de monitoreo de las 22 ofi cinas regionales de las SEREMIS, sólo tres cumplieron con lo establecido de en-vío de muestras de cuatro veces al año por molino en su área jurisdiccional (Anto-fagasta, Coquimbo y Ñuble). Arica y Maule se registraron con tres envíos al año y con dos envíos al año Iquique y Rancagua; con un envío al año Atacama, Valparaíso, Concepción, Los Ángeles, Bío-Bío, Osor-no, Puerto Montt, Magallanes. La Región Metropolitana tuvo una frecuencia de mo-nitoreo de 13 veces al año; Aconcagua, envío 7 veces al año. Las ofi cinas de Viña del Mar, San Antonio, Arauco, Araucanía Sur, Valdivia no realizaron muestreo duran-te el año 2008.

1.3. Resultados tiamina, ribofl avina, ácido fólico y hierro en harinas

En la Tabla Nº3 se presentan los resulta-dos como porcentaje de conformidad para cada analito (tiamina, ribofl avina, ácido fó-lico y hierro), respecto al total de muestras nacionales y de importación analizadas.

Los resultados indican, de acuerdo con lo establecido en el Reglamento Sanita-rio de los Alimentos, que el porcentaje de conformidad del total de muestras anali-zadas para tiamina es 73%, ribofl avina 65%, acido fólico 10% y hierro 47%, res-pectivamente, correspondiendo el menor % de conformidad al ácido fólico, seguido del hierro.



25


En muestras de importación de Argen-tina y Holanda se destaca el bajo cumpli-miento de los niveles de ácido fólico; 2 de 37 muestras cumplen lo estipulado en la reglamentación chilena.

En la tabla N° 4 se observan los resulta-dos de porcentaje de conformidad de las muestras nacionales y de importación en-tre analitos. De las 206 muestras de pro-ducción nacional, sólo 4 cumplen con los 4 parámetros, correspondiente al 1,9 %.

La Tabla N° 5 presenta los resultados por las zonas en las cuales fueron toma-das las muestras, incorporando los rangos mínimos y máximos detectados por cada analito.

Se evidenció en 8 muestras analizadas una sobredosifi cación en alguno de los 4 parámetros analizados, lo que afecta la evaluación fi nal. Para cuatro muestras de las 8, los rangos en tiamina fl uctuaron de 152-25,7 mg/Kg, ribofl avina 22,2-1,9, áci-do fólico 11,1-2,8 y hierro 652-41 mg/Kg.

La variabilidad de los resultados obte-nidos puede deberse a las siguientes cau-sas: composición y proceso de mezclado de la premezcla; incorporación de la pre-mezcla en el molino; variaciones del apor-te natural de hierro y vitaminas; el proce-so de toma de muestra; interpretación del R.S.A; y el procesamiento analítico de la harina, lo que hace necesario un monito-reo más exhaustivo por parte de los equi-pos de inspectores en la toma de muestra y control de puntos críticos.

III. Conclusiones

Respecto de los análisis realizados y 1. los resultados obtenidos, es posible evidenciar que la mayoría de las ofi ci-nas de las SEREMIS de SALUD parti-cipan en el Programa de Fortifi cación

de Harinas, de acuerdo a la normativa vigente (Reglamento Sanitario de Ali-mentos D.S. 977/1996 artículo 350) a lo menos con un envío al año. Sólo 5 cumplen con la frecuencia de mues-treo (Tabla N°2). Como una mejora del programa se recomienda realizar ca-tastro anual de molinos por parte de las SEREMIS Regionales y SEREMI Metropolitana de su área jurisdiccional y enviar al ISP y MINSAL la informa-ción con el objetivo de realizar la con-solidación de datos a nivel nacional de los resultados.

Aunque la Subsecretaría de Salud 2. Pública instruyó a las SEREMIS de SALUD a través de la Circular N° 92 del 16.06.81, reiterada por la Circular 3H/16 del 29.01.87 año 2003, el cum-plimiento de la fi scalización de los molinos, de sus respectivas áreas ju-risdiccionales, no existe el catastro del número de molinos en funcionamiento en el país, por lo que la evaluación es sesgada y no permite conocer la co-bertura real de control. Para lograr una mayor cobertura y disminuir el sesgo en la evaluación, se requiere contar con una coordinación efi ciente de ISP-SEREMIS- MINSAL.

A pesar de ello, el Programa Nacional 3. de Fortifi cación es un programa exito-so, cuyos logros más importantes son una contribución al control de la ane-mia nutricional y a la reducción de de-fectos del tubo neural de 1,63 por mil recién nacidos a 1 por mil, en nueve maternidades de la Región Metropoli-tana, entre 1999-2000 y 2001-2002.

El ISP cuenta con la capacidad de 4. laboratorio para la determinación de Tiamina, Ribofl avina, Acido fólico y Hierro, respaldado por el sistema de calidad implementado y la participa-ción en ensayos de intercomparación que validan las metodologías.



26


Los análisis realizados demuestran 5. que todos los molinos muestreados fortifi can la harina, sin embargo el des-empeño de los molinos en el proceso de fortifi cación presenta una altísima variabilidad tanto intra como intermoli-nos, el que debe ser optimizado.

Los cuatro nutrientes analizados pre-6. sentan el mismo comportamiento respecto a la variabilidad. Queda en evidencia que no se cumple con las concentraciones máximas estableci-das, a excepción de cuatro muestras de producción nacional de un total de

206 analizadas para cada parámetro. Respecto de las muestras de importa-ción, ninguna cumplió con los 4 pará-metros.

También es necesario que las SERE-7. MIS de Salud mantengan actualizados los catastros de los molinos en fun-cionamiento y coordinar con el ISP la frecuencia y fechas de muestreo, con el propósito de dar respuesta oportuna a esta vigilancia. El ISP seguirá opti-mizando y desarrollando sus métodos analíticos para dar cumplimiento a este programa.

IV. Anexos

TABLA N°1Distribución mensual de muestras y análisis. Año 2008.

N° MUESTRAS B1 B2 Àcido Fólico Hierro N° ANALISIS

ENERO 12 12 12 12 12 48

FEBRERO 26 26 26 26 26 104

MARZO 7 7 7 7 7 28

ABRIL 9 9 9 9 9 36

MAYO 48 48 48 48 48 192

JUNIO 34 34 34 34 34 136

JULIO 10 10 10 10 10 40

AGOSTO 23 23 23 23 23 92

SEPTIEMBRE 13 13 13 13 13 52

OCTUBRE 26 26 26 26 26 104

NOVIEMBRE 3 3 3 3 3 12

DICIEMBRE 32 32 32 32 32 128

TOTAL 243 243 243 243 243 972

Fuente: Laboratorio de Nutrientes, Aditivos y Contaminantes. Instituto de Salud Pública de Chile.



27


TABLA N° 2Frecuencia mensual de muestras para análisis de tiamina, ribofl avina, ácido

fólico y hierro, ISP. Año 2008.

SEREMIS(Oficinas)

Ene Feb Mar Abr May Jun Jul Ago Sep Oct Nov DicFRECUENCIA

TOTAL DE ENVIOS

Cumple N° de

Muestras mínimo

Cumple Frecuencia

Envío (Mínimo 4

anual)

ARICA 01 01 01 3 NO NO

IQUIQUE 02 08 2 NO NO

ANTOFAGASTA 03 08 02 05 4 SI SI

ATACAMA 06 1 NO NO

COQUIMBO 02 02 02 02 4 SI SI

SAN ANTONIO

VIÑA DEL MAR

VALPARAÍSO 10 1 NO NO

ACONCAGUA 03 06 03 03 06 05 03 7 SI SI

RANCAGUA 12 20 2 NO NO

MAULE 06 08 15 3 NO NO

ARAUCO

CONCEPCIÓN 13 1 NO NO

LOS ÁNGELES 03 1 NO NO

BÍO-BÍO 03 1 NO NO

ÑUBLE 04 04 08 08 4 SI SI

ARAUCANÍA SUR

VALDIVIA

OSORNO 04 1 NO NO

PUERTO MONTT 05 1 NO NO

MAGALLANES 01 1 NO NO

METROPOLITANA 06 07 02 03 02 06 04 03 10 2 10 SI SI

Total 13 26 7 9 48 34 10 23 13 26 3 31 5 5




28


TABLA N° 3Porcentaje de conformidad6 muestras nacionales e importación por analitos. ISP.

Año 2008

Total MuestrasTiamina Riboflavina Acido Fólico Hierro

% Conforme % Conforme % Conforme % Conforme

Nacionales 206 73 % (151) 63 % (131) 11 % (23) 45 % (92)

Importación 37 76 % (28) 73 % (27) 5 % (2) 60 % (22)

TOTAL 243 73 % (179) 65 % (158) 10 % (25) 47 % (114)


TABLA N° 4 Porcentaje de conformidad de muestras nacionales e importadas entre analitos.

Año 2008

ANALITOTOTAL MUESTRAS

n=243NACIONALES

n=206IMPORTADAS

n=37

B1-B2-Ac. Fólico-Fe 1,6% (4) 1,9% (4) 0%

B1-B2 17,6% (43) 57,3% (118) 67,5% (25)

B1-Acido Fólico 6,6% (16) 6,8% (14) 5,4% (2)

B1- Fe 42% (102) 38,8% (80) 59,5% (22)

B2-Acido Fólico 7,8% (19) 8,3% (17) 5,4% (2)

B2 -Fe 40,3% (98) 38,3% (79) 51,4% (19)

Acido Fólico-Fe 2,5% (6) 2,9% (6) 0%

B1-B2-Acido Fólico 6,6% (16) 6,8% (14) 5,4% (2)

B1-B2-Fe 36,6% (89) 34% (70) 51,3% (19)

B2-Ac. Fólico-Fe 20,1% (5) 2,4% (5) 0%


6 Reglamento Sanitario de los Alimentos, Art 350 (MINSAL).



29


TAB

LA N

º 5

Pro

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82

60.

1 –

12.3

08

1.5

– 2.

17

10.

3 –

3.1

35

23 –

38

Coq

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26

5.7

– 10

.62

60.

5 –

1.8

71

0.0

– 2.

86

223

– 3

6

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so-

Acon

cagu

a39

2019

0.8

– 12

.521

180.

2 –

2.0

363

0.0

– 2.

422

177

– 59

Libe

rtado

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528

3.5

– 1

3.2

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0.6

– 2

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80.

7 –

3.2

258

7 –

39

Mau

le32

626

1.2

– 80

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230.

3 –

21.9

320

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– 8

.311

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– 10

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Bío

Bío

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Los

Ánge

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282.

0 –

13.5

1525

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– 2.

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70.

0 –

2.7

328

6 –

34

Los

Lago

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90

98.

3 –

60.1

36

1.1

– 11

.79

00.

7 –

11.1

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27 –

87

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829

1.8

– 15

2.0

1423

0.2

– 22

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30.

0 –

7.6

1423

9 –

652

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rtaci

ones

379

281.

1 –

30.9

1027

0.3

– 4.

335

20.

0 –

6.6

1522

12 –

257

TOTA

L24

364

179

-85

158

-21

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- 12

911

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INFORMEPROGRAMA DE FORTIFICACIÓN DE HARINAS Subsecretaria de Salud Pública Ministerio de SaludInstituto de Salud Pública de Chile año 2009




33


I. Antecedentes

Chile ha sido pionero en América Latina en llevar a cabo planes de intervención

en salud pública con el objetivo de preve-nir aquellas enfermedades ocasionadas por problemas nutricionales. El programa de fortifi cación de harinas del MINSAL tie-ne como meta verifi car el cumplimiento del artículo 350 del Reglamento Sanitario de los Alimentos D.S. 977/96, a través de la cuantifi cación de la adición de tiamina, ribofl avina, ácido fólico y hierro, por par-te de los molinos nacionales a lo largo del país y en harina de trigo de importación.

Los benefi cios de esta fortifi cación son ampliamente conocidos. Estos nutrientes están asociados a alteraciones neurológi-cas, cardiovasculares, disminución del im-pulso visual y su relación con el alcoholis-mo y anemia ferropriva. El ácido fólico tiene un efecto protector en la prevención de los defectos del tubo neural y también como protector frente al desarrollo de enfermeda-des coronarias. La defi ciencia de ácido fó-lico ocasiona síntesis incompleta del ácido desoxirribonucleico ADN, que guarda rela-ción con la división celular, el crecimiento y el metabolismo de aminoácidos nucleicos, infertilidad e incluso esterilidad, anomalías fetales, defectos del tubo neural y retraso mental en recién nacidos.

En enero de 2008 se efectuó un taller de “Evaluación del Programa de Fortifi cación de las Harinas en Chile”, donde participa-ron representantes del MINSAL, INTA, U. de Chile, Omar Dary (consultor OPS) e ISP. El análisis estuvo centrado en las técnicas analíticas utilizadas en la determinación de ácido fólico, ya que es el único nutriente de los mencionados cuya ingesta tiene un nivel máximo tolerable (UL) que debe ser resguardado. Ante la evidencia de los úl-timos antecedentes, el MINSAL consideró

modifi car los valores de ácido fólico en la harina de 2,0 a 2,4mg/Kg, a 1,8 mg/Kg. Sin embargo se aceptará que esté presente en un rango de 1,0 a 2,6 mg/Kg. Dicha con-sideración entrará en vigencia veinticuatro meses después de su publicación en el Diario Ofi cial.

La producción de harina en el país (da-tos del año 2001) se centraliza en la Región Metropolitana (13 molinos) con una pro-ducción de 60.639 toneladas, la Región del Maule 78.319 toneladas, O’Higgins 11.689 toneladas, Ñuble 9.063 toneladas, Concep-ción-Arauco 21.124 toneladas, además de muestras de importación ingresadas a tra-vés de San Felipe-Los Andes, Antofagasta, Arica, Valparaíso y Punta Arenas.

Para el presente año (2010) se realizará un monitoreo en conjunto con la SEREMI Región Metropolitana, MINSAL e ISP a tres molinos de Santiago que cuentan con tec-nología más avanzada en la molienda y for-tifi cación, con el propósito de controlar la variabilidad de la fortifi cación intra molino y entre molinos con el fi n de verifi car su ho-mogeneidad y aplicar criterios a futuro de aceptabilidad u otros.

El Instituto de Salud Pública es el labo-ratorio Nacional de Referencia para la red de laboratorios del sector salud, y bajo ese rol es que desde el año 2000 ha capacitado a numerosos profesionales de los laborato-rios ambientales de las SEREMIS en el aná-lisis de estos analitos (Región Metropolita-na, Viña del Mar, Antofagasta), además de profesionales de Perú, Paraguay y Bolivia. Cabe señalar que el Instituto de Salud Pú-blica de Chile es el único de Latinoamérica que realiza el análisis de ácido fólico.

En el año en curso se recibió la visita de la Q.B. Dora Inés Mazariegoz, Consultora para el Proyecto de Asistencia Técnica para la Evaluación de la Capacidad Analítica Ins-talada de Micronutrientes en Laboratorios



34


de la Región Andina, quien expresó que Chile es un país modelo en el programa de fortifi cación de harinas.

El ISP ha participado en rondas interla-boratorios (FAPAS) en determinaciones de hierro, obteniendo resultados satisfacto-rios. Actualmente se está presentando la Acreditación ante el INN para el año 2011 en micronutrientes.

II. Programa Fortifi cación de Harinas Minsal – Seremis – ISP1. Generalidades


Durante el año 2009 se realizaron en la Sección Química de Alimentos y Nutrición, Laboratorio de Nutrientes del Instituto de Salud Pública de Chile, 1.152 análisis, co-rrespondientes a 288 muestras de harina, incluyendo 19 muestras de importación (procedentes de Perú, Argentina y Holan-da). Los análisis se distribuyeron en 288 análisis de tiamina, 288 de ribofl avina, 288 de ácido fólico y 288 de hierro (Tabla N°1).

Cabe señalar que el monitoreo aumento en un 18,5%, equivalente a 45 muestras, respecto al año 2008, con un total de 180 análisis.


Respecto al cumplimiento de la fre-cuencia por parte de las Ofi cinas de las SEREMIS de Salud, de acuerdo con la re-solución Exenta N° 543 de 4 veces al año, sólo 2 Ofi cinas cumplieron: Antofagasta y Coquimbo. Cabe señalar que Concepción, Región Metropolitana y Ñuble superaron la frecuencia con envíos de 5, 6 y 7, respec-tivamente. Atacama, San Antonio, Viña de Mar, Arauco y Osorno no enviaron mues-tras en el año 2009 (Tabla N° 2).

2. Resultados generales

La tabla N° 1 muestra la distribución mensual de muestras y análisis durante el año 2009.

La tabla N° 2 (Anexo I) detalla la frecuen-cia mensual de muestras ingresadas para análisis y enviadas por las SEREMIS de Salud año 2009.

TABLA N° 1: Distribución mensual de muestras y análisis, año 2009.

MESNº MUESTRAS ANALI-

ZADASVITAMINA B1 VITAMINA B2 HIERRO

Nº TOTAL DE ANÁLISIS

Enero 32 32 32 32 32

Febrero 18 18 18 18 18

Marzo 3 3 3 3 3

Abril 26 26 26 26 26

Mayo 28 28 28 28 28

Junio 9 9 9 9 9

Julio 38 38 38 38 38

Agosto 23 23 23 23 23

Septiembre 26 26 26 26 26

Octubre 33 33 33 33 33

Noviembre 33 33 33 33 33

Diciembre 19 19 19 19 19

TOTAL 288 288 288 288 1152 Fuente: Laboratorio de Nutrientes, Aditivos y Contaminantes. Instituto de Salud Pública de Chile.



35


Del total de 288 muestra analizadas, el porcentaje de conformidad para tiami-na fue 78,8% (227 muestras) y ribofl avina 85,8% (247 muestras), representando el mejor porcentaje de cumplimiento. Para hierro 59,3% (171) y ácido fólico 17.0% (49 muestras). Tabla Nº 3.

Al comparar las 288 muestras del año 2009 con las 243 analizadas el 2008 se apreció un aumento en el porcentaje de conformidad para tiamina 5,4%, ribofl avi-na 20,8 %, hierro 6,1 % y 5,6% para ácido fólico.

TABLA N° 3: Porcentaje de conformidad por analito de muestras de harinas según procedencia.

CLASIFICACIÓN PROCEDENCIA

DE HARINAS

TOTAL MUESTRAS

TIAMINA RIBOFLAVINA ACIDO FÓLICO HIERRO

TOTAL MUESTRAS

% CON-FORME

TOTAL MUESTRAS

% CON-FORME

TOTAL MUESTRAS

% CON-FORME

TOTAL MUESTRAS

% CON-FORME

Producción Nacional

268 210 78,3% 229 85,4 % 42 15,7 % 156 58,2 %

Importación 19 17 89,5 % 17 89,5 % 7 36, 8 % 14 73,7 %

H 1 0 0 % 1 100 % 0 0 % 1 100 %

TOTAL 288 227 78,8 % 247 85,8 % 49 17,0 % 170 59,3 %


Las harinas de producción nacional presentan un cumplimiento de 78,3% para tiamina (límite mínimo permitido 6,3 mg/Kg), un 85,4% para ribofl avina (límite mí-nimo permitido 1,3 mg/Kg) y 58,2% para hierro (límite mínimo permitido 30 mg/Kg), siendo el ácido fólico el porcentaje menor de cumplimiento de 15,7% (rango permiti-do 2.0-2,4 mg/Kg).Tabla N° 3.

De las 19 muestras de importación (ori-gen Perú, Argentina y Holanda), tres cum-plen con los cuatro parámetros, el mejor cumplimiento lo obtuvo la tiamina y ribo-fl avina con un 89,5% seguido del hierro con un 73,7% y ácido fólico con 36,8%.

Lo anterior deja en evidencia que al te-ner límites con rangos establecidos para el ácido fólico, el porcentaje de cumplimiento se minoriza frente a los que sólo tienen un mínimo como requisito en la normativa.

La tabla N° 4 presenta el porcentaje de conformidad de muestras nacionales y de importación entre analitos. De las 288 muestras analizadas, sólo 30 (10,4%) cumplen con los cuatro parámetros, 27 muestras nacionales y tres importadas; mejorando la conformidad en un 6,4% comparado con el año 2008.



36


TABLA N° 4: Resultados muestras (n)/porcentaje de conformidad de nacionales e Importadas entre analitos.

ANALITO MUESTRAS NACIONALES MUESTRAS IMPORTADAS TOTAL MUESTRAS

B1 – B2 – Ácido Fólico – Fe 27 (10 ,0%) 3 (15,7%) 30 (10,4%)B1 – B2 196 (72,9%) 17 (89,5%) 213 (73,4%)B1 – Acido Fólico 35 (13,0%) 7 (36,8%) 42 (14,6%)B1 – Fe 129 (48,0%) 12 (63,2%) 141 (49%)B2 – Ácido Fólico 35 (13,0%) 7 (36,8%) 42 (14,6%)B2 – Fe 132 (49,1%) 12 (63,2%) 144 (50,0%)Acido Fólico – Fe 27 (10 ,0%) 3 (15,7%) 30 (10,4%)B1 – B2 – Acido Fólico 35 (13,0%) 7 (36,8%) 42 (4,6%)B1 – B2– Fe 126 (47,0%) 12 (63,2%) 138 (47,9%)B2 – Ácido Fólico-Fe 27 (10 ,0%) 3 (15,8%) 30 (10,4%)


3. Resultados regionales

A continuación se presentan las tablas N° 5, 6, 7 y 8 con los resultados de los rangos detectados por analitos en confor-midad al Reglamento Sanitario de los Ali-mentos D.S.977/2006 Art 350.

Los valores mínimos y máximos del to-tal de muestras analizadas fl uctuaron para tiamina de 1,3-60 mg/Kg, no consideran-do en este rango cuatro muestras con va-lores de 113,3 a 702,7 mg/Kg y los valores no conforme fl uctuaron entre 1,3 y 6,2 mg/Kg (Tabla N° 5).

Para ribofl avina los valores fl uctuaron entre 0,2-10,7 mg/Kg, no siendo consi-derados en este rango 2 valores (33,4 y 49,1mg/Kg). 59 muestras se detectaron bajo el límite mínimo de 1,3 mg/Kg (Tabla N° 6).

En ácido fólico, 176 muestras presen-taron valores inferiores a 1,9 mg/Kg inclu-yendo 43 muestras en que no se detectó

esta vitamina y 8 muestras estuvieron so-bre 2,4 mg/Kg (Tabla N° 7).

Para hierro, los rangos fl uctuaron entre 5-89 mg/Kg, no considerando 3 valores con concentraciones superiores a 247 mg/Kg. En132 muestras se detectó valores in-feriores a 29 mg/Kg (Tabla N° 8).

Se evidenció en 4 muestras analizadas una excesiva sobredosifi cación en alguno de los 4 parámetros analizados, por lo que no fueron considerados en los rangos de fl uctuación de los respectivos parámetros para la evaluación fi nal.

La variabilidad de los resultados evi-dencia las probables fuentes que infl uyen, tales como: la composición y calidad de la premezcla, la incorporación de la premez-cla en el molino, las variaciones del aporte natural de hierro y vitaminas, el proceso de muestreo para la vigilancia, entre otros, lo que hace necesario una mejora de los procesos productivos, un monitoreo más exhaustivo y control de puntos críticos.



37


TABLA Nº 5: Programa Fortifi cación de Harinas según analito y zona. Tiamina.

ZONA TOTAL MUESTRASMUESTRAS NO CONFORMES

MUESTRAS CONFORMES1

RANGO DETECTADO [mg/Kg ]

Arica-Parinacota 5 0 5 6,4 – 13,2Iquique 7 0 7 8,4 – 16,4Antofagasta 15 1 14 5,8 – 11,7Coquimbo 7 0 7 7,0 – 9,4Valparaíso 6 6 0 2,5 – 2,7 Aconcagua 20 3 17 3,5 – 13,6Libertador B. O’Higgins 20 5 15 4,6 – 13,3Maule 25 8 17 2,5 – 20,5Biobío / Concepción 66 0 66 6,3 – 157,6Biobío / Los Ángeles 3 0 3 8,4 – 11,8Biobío / Ñuble 49 20 29 1,5 – 58,3Araucanía Sur 19 9 10 1,3 – 12,3Los Ríos 2 0 2 10,2 – 10,3Los Lagos 15 5 10 3,4 – 12,5Magallanes-Aysén 3 2 1 4,4 - 9,2Metropolitana 26 3 23 8,4 – 60,0Importaciones 19 2 17 4,4 – 16,4

TOTAL 288 62 227


TABLA Nº 6: Programa Fortifi cación de Harinas según analito y zona. Ribofl avina.


MUESTRAS CONFORMES1

RANGO DETECTADO [mg/Kg ]

Arica-Parinacota 5 0 5 1,5 – 2,2Iquique 7 0 7 1,4 – 3,4Antofagasta 15 2 13 1,1 – 1,9Coquimbo 7 0 7 1,6 – 1,8Valparaíso 6 6 0 0,4 Aconcagua 20 5 15 0,7 – 2,9Libertador B. O’Higgins 20 4 16 1,1 – 2,5Maule 25 7 18 0,4 – 5,6Biobío / Concepción 66 1 65 1,2 – 4,9Biobío / Los Ángeles 3 0 3 2,1 – 3,0Biobío / Ñuble 49 19 30 0,4 – 2,5Araucanía Sur 19 9 10 0,5 – 2,1Los Ríos 2 0 2 1,7Los Lagos 15 1 14 1,2 – 2,0Magallanes-Aysén 3 1 2 1,1 -1,8Metropolitana 26(2)* 4 22 1,3-10,7(33,4-49,1)*Importaciones 19 2 17 1,1 – 3,4

TOTAL 288 59 229 Fuente: Laboratorio de Nutrientes, Aditivos y Contaminantes. Instituto de Salud Pública de Chile.

[1] Reglamento Sanitario de los Alimentos



38


TABLA Nº 7: Programa Fortifi cación de Harinas según analito y zona. Ácido fólico.

ZONA TOTAL MUESTRASMUESTRAS NO CONFORMESS

MUESTRAS CONFORMES1

RANGO DETECTADO [mg/Kg)]

Arica-Parinacota 5 2 3 1,7 – 2,9Iquique 7 6 1 1,1 -3,5Antofagasta 15 7 8 1,6 – 10,0Coquimbo 7 7 0 ND – 3,7Valparaíso 6 6 0 ND Aconcagua 20 20 0 ND - 3,6Libertador B. O’Higgins 20 18 2 0,7 – 3,8Maule 25 18 7 ND – 6,3Biobío / Concepción 66 57 9 ND – 11,7Biobío / Los Ángeles 3 2 1 1,1 -2,0Biobío / Ñuble 49 44 5 ND – 6,4Araucanía Sur 19 19 1 ND – 2,8Los Ríos 2 2 0 1,1 – 1,6Los Lagos 15 14 1 ND – 2,8Magallanes-Aysén 3 1 2 1,4 – 1,5Metropolitana 26 21 5 ND – 29,5Importaciones 19 12 7 1,1 – 10,0

TOTAL 288 243 45


TABLA Nº 8: Programa Fortifi cación de Harinas según analito y zona. Hierro.


MUESTRAS CONFORMES17

RANGO DETECTADO [mg/Kg]]

Arica-Parinacota 5 1 4 22-59Iquique 7 1 6 24-86Antofagasta 15 12 3 20-40Coquimbo 7 4 3 31 - 38Valparaíso 6 5 1 37 Aconcagua 20 10 10 21-41Libertador B. O’Higgins 20 8 12 30 - 55Maule 25 8 17 32 - 76Biobío / Concepción 66 26 40 31 - 81Biobío / Los Ángeles 3 0 3 33 - 89Biobío / Ñuble 49 33 16 30 - 54Araucanía Sur 19 16 3 30 - 45Los Ríos 2 0 2 42 - 44Los Lagos 15 0 15 31 - 48Magallanes-Aysén 3 0 3 35 - 45

Metropolitana 26 8 1831-77(247-599-

1028)*Importaciones 19 5 14 20 - 86

TOTAL 288 132 153 Fuente: Laboratorio de Nutrientes, Aditivos y Contaminantes. Instituto de Salud Pública de Chile.

[1] Reglamento Sanitario de los Alimentos



39


III. Conclusiones

La evaluación de los resultados fue rea-lizada con la normativa vigente (Reglamen-to Sanitario de Alimentos D.S.977/1996 artículo 350). Es posible evidenciar que la mayoría de las SEREMIS de Salud, a tra-vés de sus ofi cinas provinciales, están par-ticipando del Programa de Fortifi cación de Harinas, con a lo menos un envío al año. Sólo dos cumplieron con la frecuencia de muestreo de cuatro veces al año y otros cuatro enviaron entre cinco a siete. El res-to no envió muestras. (Tabla N°2).

Aunque la Subsecretaría de Salud ins-truyó a las SEREMIS a través de la Circular N° 92 del 16.06.81, reiterada por la Circu-lar 3H/16 del 29.01.87 sobre el cumpli-miento de la fi scalización a los molinos de sus respectivas áreas jurisdiccionales, aun no es posible por parte del MINSAL e ISP conocer el número de molinos en funcio-namiento en el país, por lo que la evalua-ción es sesgada y no permite conocer la cobertura real de control, desconociendo la internación total de harinas.

El mayor número de muestras analiza-das corresponde a Concepción, con un total de 66 (100%) muestras conforme con tiamina, 65 (98,5%) para ribofl avina, ácido fólico 9 (13,6%) y para hierro 40 (60,6%).

De las 49 muestras enviadas por Bío Bío - Ñuble resultaron conforme para tia-mina 29 (59,2%), ribofl avina 30 (59,1%), ácido fólico 5 (10,2%) y hierro 16 (32,6%) muestras.

La Región Metropolitana, donde se centra el mayor número de molinos, envió 26 muestras, de las cuales 23 (88,5%) es-tán conforme con tiamina, 22 (84,5%) con ribofl avina, con ácido fólico 5 (19,2%) y con hierro 18 (69,2% ).

De acuerdo a los resultados obtenidos y a la evaluación queda en evidencia que el mayor % de conformidad lo presen-tan tiamina, ribofl avina seguido de hierro, siendo el ácido fólico el de menor % de cumplimento y sin duda refl eja la exigen-cia de la normativa y la heterogeneidad de los micronutrientes cuando se compara la distribución entre ellos.

Los análisis realizados siguen eviden-ciando que todos los molinos muestrea-dos fortifi can la harina; sin embargo el desempeño de los molinos en el proceso de fortifi cación presenta una altísima va-riabilidad tanto intra como intermolinos, el que debe ser optimizado.

No se cumple con las concentraciones máximas establecidas, a excepción de 27 muestras de producción nacional de un total de 269 analizadas para cada paráme-tro, y de 19 muestras de importación, solo tres cumplen (Tabla N° 4).

ESTRATEGIA ISP- MINSAL-SEREMIS-MOLINOS

Se sugiere como medida de mejora continua seguir realizando el monitoreo a través de a lo menos cinco años segui-dos, dirigido a lo menos a tres molinos ya monitoreados, para continuar con el seguimiento y tendencia en el tema de la heterogeneidad a través de los resulta-dos analíticos y concluir en la determina-ción de un coefi ciente de variación para la aceptabilidad de los resultados más real, de acuerdo a las tecnologías industriales, para lo cual se requiere que las SEREMIS mantengan anualmente actualizados los catastros de los molinos respecto de su tecnología y funcionamiento, además de coordinar con el ISP la frecuencia y fechas de muestreo, con el propósito de dar res-puesta a lo sugerido.



40


Independientemente de lo anterior, se requiere que las SEREMIS de Salud coor-dinen de manera efectiva el monitoreo con el ISP para una respuesta oportuna a esta vigilancia.

El ISP seguirá mejorando y desarro-llando métodos analíticos para dar cum-plimiento a las demandas analíticas ne-cesarias por el bien de la salud de las personas.

IV. Anexo I

TABLA N° 2: Frecuencia mensual de muestras para análisis de Tiamina, Ribofl avina, Ácido fólico y Hierro. ISP.

SEREMIS(OFICINAS)

ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DICFRECUENCIA

TOTAL DE ENVÍOS

DE MUESTRAS

MÍNIMO

ENVÍO(MÍNIMO 4

ANUAL)

ARICA-PARINACOTA(1) 1 4 2 NO NO

IQUIQUE(2) 4 1 2 3 NO NO

ANTOFAGASTA(3) 3 3 3 6 4 SI SI

ATACAMA

COQUIMBO 2 2 2 1 4 SI SI

SAN ANTONIO

VIÑA DEL MAR

VALPARAÍSO 6 1 NO NO

ACONCAGUA 3 14 3 3 NO NO

RANCAGUA 4 7 9 3 NO NO

MAULE-TALCA 8 17 2 NO NO

BÍO-BÍO ARAUCO

BÍO-BÍO CONCEPCIÓN 14 12 10 15 15 5 SI SI

BÍO-BÍO LOS ÁNGELES 2 1 NO NO

ÑUBLE 8 10 7 5 9 5 5 7 SI SI

ARAUCANÍA SUR 7 12 2 NO NO

VALDIVIA 2 1 NO NO

OSORNO

PUERTO MONTT 5 5 5 3 NO NOMAGALLANES-AYSÉN(4) 1 2 2 NO NO

METROPOLITANA 5 6 3 9 2 1 6 SI SIIMPORTACIONES(1,2,3,4) 4 4 1 4 2 4 6 SI

TOTAL 32 18 3 26 28 9 38 23 26 33 33 19 5 6



INFORME ESTUDIO DE RESIDUOS DE PLAGUICIDAS EN ALIMENTOSSubsecretaria de Salud Pública Ministerio de SaludInstituto de Salud Pública de ChileSEREMI de Salud Región Metropolitanaaño 2008




43

INFORME ESTUDIO DE RESIDUOS DE PLAGUICIDAS EN ALIMENTOS

I. Antecedentes

Los plaguicidas son sustancias quími-cas utilizadas para controlar, prevenir o

destruir las plagas que afectan a los culti-vos agrícolas. La mayoría de estas sustan-cias son fabricadas por el hombre, por eso son llamados plaguicidas sintéticos.

El empleo de plaguicidas implica un peligro para los consumidores, debido a que tanto las propias sustancias como sus metabolitos y productos de degrada-ción o reacción pueden dejar residuos en los alimentos, que pueden tener efectos adversos para la salud pública, por lo que resulta esencial mantener el nivel de resi-duos de plaguicidas en los alimentos en niveles aceptables desde el punto de vista toxicológico.

Dada la calidad de nuestros suelos, amplios lugares de cultivos, heterogenei-dad de los productos producidos, es de suma importancia mantener un control de estas sustancias.

Es por ello, y gracias a las metodologías y tecnologías presentes en el Instituto de Salud Pública, que se ha desarrollado un programa de vigilancia para este tipo de residuos en alimentos de consumo interno (frutas y verduras), siendo el Laboratorio de Residuos de Plaguicidas, pertenecien-te al Departamento de Salud Ambiental, el encargado de llevar y realizar los análisis que den una visión general y reveladora de la situación actual de nuestros alimentos para consumo interno y externo.

II. Estudio de Residuos de Plaguicidas en Alimentos Minsal – ISP – SEREMI Salud Región Metropolitana.1. Generalidades

1.1. Muestreo

El estudio contempló el análisis de 100 muestras (originalmente el estudio estaba diseñado para 90 muestras) recolectadas en supermercados de la Región Metro-politana por la SEREMI de Salud Región Metropolitana, de acuerdo a las pautas y recomendaciones del Codex Alimentarius.

Las matrices estudiadas fueron las si-guientes: acelgas, betarragas, brócolis, cilantros, ciruelas, colifl ores, duraznos, espinacas, lechugas, limones, mandari-nas, manzanas, naranjas, papas, pepinos, peras, perejil, repollos, tomates, uvas, za-nahorias y zapallos italianos.

1.2. Métodos de Análisis

Para la realización de este estudio, se utilizaron los métodos ofi ciales de detec-ción de residuos de plaguicidas organo-fosforados, triazoles y piretroides en frutas y verduras, por cromatografía gaseosa con detector selectivo de masas del Laborato-rio de Residuos de Plaguicidas.

Los analitos estudiados fueron los si-guientes: Azinfos metilo, Triazophos, Tria-dimenol, Terbacil, Permetrina, Isoprothia-lone, Cifl utrin, Cypermetrina, Fenvalerato, Chlorpyrifos, Pirimifos metilo, Methida-thion, Diclorvos, Diazinon, Difeconazole, Tetraconazole, Ethion.



44


Para ello, la detección instrumental fue realizada en un Cromatógrafo Gaseoso, marca Agilent modelo 6890 con detec-tor de Captura de Electrones (GC-ECD) y Cromatógrafo Gaseoso, marca Agilent modelo 7890A con detector de Nitrógeno – Fósforo (GC-NPD).

Los resultados se expresan en ppm, equivalente a mg/Kg (miligramos de pla-guicida encontrado por kilogramo de muestra).

2. Resultados

En la Tabla Nº1 se presenta el total de muestras analizadas y los analitos detec-tados. En la Tabla Nº 2, el detalle de los analitos y rangos de concentraciones de-tectadas, todas bajo el límite máximo per-mitido por matriz de alimento analizada.

III. Conclusiones

De un total de 100 muestras analizadas, 1. el 14% de las muestras reveló la presencia de clorpirifos y el 6% de azinfos metilo.

Se encontraron 14 muestras de fru-2. tas y verduras con clorpirifos en concentraciones inferiores al límite máximo permitido en el Reglamen-to Sanitario de los Alimentos (LMP = 0.3 ppm). Los productos fueron betarraga (1), brócoli (1), espinaca (1), lechuga (1), limones (2), manda-rinas (1), manzanas (2), naranjas (6). Las concentraciones obtenidas se presentaron en el rango de 0.01 a 0.25 mg/Kg.

Se encontró azinfos-metilo en seis 3. muestras de peras (1), manzanas (4), acelga (1).

Las concentraciones obtenidas se 4. presentaron en el rango de 0.02 y 0.24 ppm. Concentraciones inferiores al LMP de 1 ppm (Res. 581/1999).

Respecto a las muestras positivas (to-5. das bajo el límite máximo permitido), se puede inferir que el 33% corres-ponde a matriz naranjas y un 26% a manzanas.

Ninguna de las muestras positivas so-6. brepasó los límites máximos permiti-dos.

IV. Anexos

TABLA N° 1. Resumen de muestras y analitos detectados. Año 2008.

N° Muestra N° AnálisisMuestras no detec-

tablesNiveles trazas1

Analitos detectados

Azinfos Metilo Clorpirifos

100 1700 74 6 6 14

Fuente: Laboratorio de Residuos de Plaguicidas. Instituto de Salud Pública de Chile.1

1 Nivel traza detectado <0.01



45


TABLA N° 2. Analitos detectados por matriz. Año 2008.

Matriz N° Muestra No Detectable Detectable Rango Detección Analito detectado

Acelgas 5 4 1 0,05 Azinphos methyl

Betarragas 5 4 1 <0,01 Clorpirifos

Brócolis 4 3 1 0,01 Clorpirifos

Cilantro 2 2 0 - -

Ciruelas 1 1 0 - -

Coliflores 1 1 0 - -

Durazno 1 0 1 <0,01 Clorpirifos

Espinacas 4 3 1 0,12 Clorpirifos

Lechugas 5 4 1 0,25 Clorpirifos

Limones 8 5 3 <0,01 - 0,25 Clorpirifos

Mandarinas 2 1 1 0,05 Clorpirifos

Manzanas 10 2 8<0,01-0,15 Clorpirifos

<0,01 - 0,15 Azinphos methyl

Naranjas 9 3 6 0,01 - 0,11 Clorpirifos

Papas 7 7 0 - -

Pepinos verdura 2 2 0 - -

Pepinos fruta 1 1 0 - -

Peras 7 6 1 0,24 Azinphos methyl

Perejil 1 1 0 - -

Repollos 3 3 0 - -

Tomates 7 6 1 <0,01 Clorpirifos

Uvas 1 1 0

Zanahorias 10 10 0

Zapallos italianos 4 4 0

TOTAL 100 74 26 2 - -


2 Se detectaron 6 analitos con niveles traza <0.01.



INFORME ESTUDIO DE RESIDUOS DE PLAGUICIDAS EN ALIMENTOSSubsecretaria de Salud Pública Ministerio de SaludInstituto de Salud Pública de ChileSEREMI de Salud Región MetropolitanaSEREMI de Salud O’Higginsaño 2009




49


I. Antecedentes

La necesidad de contar con información sobre contaminación de alimentos ac-

tualizada, adecuada y confi able es cada día más importante para nuestro país, tan-to de productos naturales como procesa-dos, que se producen, consumen, impor-tan o exportan.

Los plaguicidas son sustancias quími-cas utilizadas para controlar, prevenir o destruir las plagas que afectan a las plan-taciones agrícolas. La mayoría de estas sustancias son fabricadas por el hombre, por eso son llamados plaguicidas sintéti-cos.

El empleo de plaguicidas implica un peligro para los consumidores, debido a que tanto las propias sustancias como sus metabolitos y productos de degrada-ción o reacción pueden dejar residuos en los alimentos que podrían generar efectos adversos para la salud pública, por lo que resulta esencial mantener el nivel de resi-duos de plaguicidas en los alimentos en niveles aceptables desde el punto de vista toxicológico.

El Instituto de Salud Pública de Chile, como Laboratorio Nacional y de Referen-cia, tiene un rol importante en la vigilancia de estos residuos, estableciendo líneas base, actualizando información y apor-tando antecedentes científi camente váli-dos para realizar evaluaciones de riesgo, junto con apoyar la función fi scalizadora de los SEREMIS de Salud. Por otra parte, esta información es fundamental para la actualización del Reglamento Sanitario de los Alimentos, por parte del nivel central, lo cual implica modifi caciones, ampliacio-

nes y eventuales cancelaciones de límites máximos de residuos. Desde el mes de marzo de 2010, entró en vigencia la Reso-lución Exenta Nº 33 DE 2010, “Fija toleran-cias máximas de residuos de plaguicidas en alimentos y deja sin efecto la resolución exenta nº 581, de 1999, y sus modifi cacio-nes”.

El Instituto de Salud Pública desarrolló un programa de vigilancia para este tipo de residuos en alimentos de consumo interno (hortalizas) durante el año 2009, siendo las dependencias del Laboratorio de Residuos de Plaguicidas, pertenecien-te al Departamento de Salud Ambiental, el encargado de realizar los análisis que nos dan una visión general y reveladora de la situación actual de los alimentos para consumo interno.

II. Estudio de Residuos de Plaguicidas en Alimentos. Minsal – ISP – SEREMI RM – SEREMI O´Higgins1. Generalidades

1.1. Muestreo

El estudio contempló el análisis de 129 muestras de hortalizas, recolectadas en supermercados, ferias libres y huertos pertenecientes a la Región Metropolitana y Región de O´Higgins por parte de las SE-REMIS de Salud respectivas (Tabla Nº 1) de acuerdo con las pautas y recomenda-ciones establecidas en el Codex Alimen-tarius.

El muestreo fue realizado entre sep-tiembre y diciembre del año 2009, en 15 matrices de alimentos, como se detalla en Tabla Nº 2.



50


TABLA N° 1: Distribución procedencia de muestras por SEREMI de Salud

SEREMI DE SALUDPROCEDENCIA DE MUESTRAS

HUERTOS SUPERMERCADOS FERIAS LIBRES TOTAL

METROPOLITANA 0 49 0 49

LIB. BDO. O’HIGGINS 47 0 33 80

TOTAL MUESTRAS 47 49 33 129

Fuente: Laboratorio de Residuos de Plaguicidas. Instituto de Salud Pública de Chile.

TABLA N° 2: Distribución procedencia de muestras por matriz de alimento

MATRIZ DE ALIMENTOSEREMI DE SALUD

TOTAL MUESTRAS ANALIZADASMETROPOLITANA LIB. BDO. O’HIGGINS

ACELGAS 5 14 19BETARRAGAS 0 6 6BRÓCOLIS 5 3 8CILANTROS 6 3 9COLIFLORES 4 3 7ESPÁRRAGOS 0 5 5ESPINACAS 5 0 5LECHUGAS 5 9 14PAPAS 5 0 5PEPINOS 0 4 4PEREJIL 4 8 12REPOLLOS 5 5 10TOMATES 5 0 5ZANAHORIAS 0 14 14ZAPALLOS ITALIANOS 0 6 6

TOTAL 49 80 129


1.2. Método de Análisis

Para la realización de este estudio, se utilizaron los métodos ofi ciales del Labo-ratorio de Residuos de Plaguicidas, cuyas referencias bibliográfi cas son las siguien-tes:

Multiresidue Method for the Determina-• tion of 251 pesticides in fruits and ve-getable by Gas Cromatography/ mass spectrometry and liquid chromatogra-phy with fl uorescence detection. Fillon

J, Sauvé F, Selwin J. Journal AOAC int, vol. 83, 698 – 713 (2000).

Applicability of GC, GC/MS and Liquid • Chromatography with Tandem Mass Spectrometry to Screening for 140 pesticides in Agricultural Products. Hi-rahara Y, Kimura M, Inoue T, Uchikawa S, Otani S, Hidedeaki H, Susuki S and Uchida Y. Journal of the Food Hygienic Society of Japan, vol. 47; N°5; page. 225-231 (2006) Modifi cado.



51


En Tabla Nº 3 (Anexo) presenta los ana-litos estudiados de acuerdo a su clasifi -cación química, aplicación y si presentan registro de autorización por parte del Ser-vicio Agrícola y Ganadero (SAG).

Para la detección instrumental, se utili-zó un Cromatógrafo Gaseoso, marca Agi-lent modelo 6890, con detector de Captu-ra de Electrones (GC-ECD); Cromatógrafo Gaseoso, marca Agilent modelo 7890A con detector de Nitrógeno – Fósforo (GC-NPD); Cromatógrafo gaseoso con detec-tor selectivo de masas (GC-MS), marca Agilent modelo 6890 y Cromatografía li-quida acoplada a detector selectivo de masas/masas (LC-MS/MS), marca Applied Biosystems, modelo 3200QTrap.

Los resultados se expresan en mg/Kg (miligramos de plaguicida encontrado por kilogramo de muestra), de acuerdo a la le-gislación vigente.

Para la identifi cación y la cuantifi cación de algunos analitos presentes en el estu-dio, se consideraron las siguientes excep-ciones:

Endosulfan: suma de isómeros (En-• dosulfan I, Endosulfan II, Endosul-fan sulfato).

Clordano: suma de isómeros (Alfa • Clordano, Gamma Clordano).

Heptacloro: suma de isómeros • (Heptacloro, Heptacloro Epóxido).

Aldrín y Dieldrín: suma de ambos • calculada en forma de Dieldrín.

2. Resultados

2.1. Muestras con presencia de residuos de plaguicidas

De acuerdo con los resultados obteni-dos, se detectaron 43 (33,3%) muestras de hortalizas, de las 129 analizadas, con presencia de residuos de plaguicidas. De éstas, 16 provienen de supermercados de la Región Metropolitana y 27 muestras provienen de ferias libres y huertos de la Región de O´Higgins, como se detalla en Tabla N° 4.

TABLA N° 4: Muestras con niveles de residuos de plaguicidas detectados

MUESTRAS SEREMI DE SALUD

TOTAL PORCENTUAL (n=129)METROPOLITANA LIB. BDO. O’HIGGINS

DETECTABLE 161 27 2 33,3 %

NO DETECTABLE 33 53 66,6 %


1 Se detecta presencia de plaguicidas en 16 muestras procedentes de Supermercados de la Región Metro-politana.

2 Se detecta presencia de plaguicidas en 7 muestras procedentes de ferias libres y 20 muestras procedentes de huertos de la Región Lib. Bdo. O’Higgins.



52


Se detectó la presencia de 11 analitos en las diferentes muestras provenientes de la Región Metropolitana y Lib. Bdo.

O’Higgins, como se detalla en Tabla Nº 5. En tres muestras de las 129 analizadas, se detectó la presencia de más de un residuo de plaguicida.

TABLA N° 5: Analitos detectados según origen.

MUESTRASSEREMI DE SALUD

TOTALMETROPOLITANA LIB. BDO. O’HIGGINS

Azinfos metilo 2 3 5

Clorpirifos 4 9 13

Fenitrotion 1 0 1

Fosmet 0 6 6

Imidacloprid 1 0 1

Malation 2 3 5

Metomilo 1 0 1

Permetrina 2 0 2

Simazina 4 5 9

Tetraconazol 0 2 2

Triadimenol 0 1 1

TOTAL 17 29 46


De las 15 matrices analizadas no se de-tectó residuos de plaguicidas en pepinos, tomates ni betarragas; sí se detectó pre-sencia de residuos de plaguicidas en acel-gas, brócolis, cilantro, colifl ores, espárra-gos, espinacas; lechugas, papas, perejil, repollo, zanahorias y zapallos italianos.

La distribución de residuos de plagui-cidas detectados con respecto a la ma-triz analizada se observa en la Tabla N° 6 (Anexo). Se destaca el analito clorpirifos, con 13 pesquisas de las 43 muestras ana-lizadas, representando un 30,2 % del uni-verso de analitos totales detectados.



53


TABLA N° 6: Residuos de Plaguicidas detectados por matriz de alimento.

ANALITOS

MATRIZ DE ALIMENTO

TOTALANALITOS

DETECTADOS

Acel

ga

Bróc

oli

Cila

ntro

Col

iflor

Espá

rrago

Espi

naca

Lech

ugas

Papa

s

Pere

jil

Rep

ollo

Zana

horia

Zapa

lloIta

liano

Azinfos metilo

- - - - 2 1 1 - - 1 - - 5

Clorpirifos 2 - 2 - - - 2 1 5 - 1 - 13

Fenitrotion - - - - - - - - 1 - - - 1

Fosmet - - 1 2 - - 1 - - 1 1 - 6

Imidacloprid - - - - - - 1 - - - - - 1

Malation - - - - 2 - 1 - - 1 - 1 5

Metomilo - - - - - - 1 - - - - - 1

Permetrina 1 - 1 - - - - - - - - - 2

Simazina - 5 - 1 - - - - - 2 - 1 9

Tetraconazol - 2 - - - - - - - - - - 2

Triadimenol - 1 - - - - - - - - - - 1

TOTAL 3 8 4 3 4 1 7 1 6 5 2 2 46


2.2. Muestras que sobrepasan los Límites Máximos Permitidos

La evaluación de conformidad y no con-formidad de las muestras con presencia de plaguicidas, se realizó considerando los Límites Máximos Residuales (LMR) es-tablecidos en la “Resolución Nº 581/99”, vigente hasta febrero del año 2010, que corresponde al período de toma de las muestras de este estudio, y la “Resolución Nº 33/2010” actualmente vigente. Esta úl-tima resolución corresponde a la actuali-zación de la anterior, por lo que se estimó conveniente evaluar los resultados obteni-dos con ambas resoluciones.

Además, en aquellos casos en que los LMR no estén determinados en la legisla-ción vigente, se consideraron los LMR es-tablecidos en el Codex Alimentarius, y si

éste no lo contempla, se comparó con la Legislación Europea “Regulación (EC) Nº 396/2005”.

De acuerdo con la Resolución 581/99 o en su defecto, Codex Alimentarius y Legis-lación Europea, se observa que de las 129 muestras analizadas, 18 (14%) se encuen-tran sobre los LMR establecidos, resultan-do 7 muestras “No conforme” provenientes de la Región Metropolitana y 11 de la Re-gión Lib. B. O´Higgins ( ver tabla N° 7).

Por otro lado, al aplicar la Resolución 33/2010 (actualmente vigente) y siguiendo los mismos criterios expuestos anterior-mente, se observa que las muestras que resultan “No conforme” se elevan de 18 a 20 (16%), resultando 9 muestras “No con-forme” provenientes de la Región Metro-politana y 11 de la Región de O´Higgins (ver tabla N° 7).



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TABLA N° 7: Conformidad porcentual muestras detectadas con residuos de plaguicidas respecto a Resoluciones Nº 581/99 y Nº 33/2010

SEREMI DE SALUDRESOLUCIÓN 581/ 1999 RESOLUCIÓN 33/ 2010

CONFORME NO CONFORME CONFORME NO CONFORME

METROPOLITANA 42 7 40 9

LIB. BDO. O’HIGGINS 69 11 69 11

TOTAL 111 18 109 20

TOTAL PORCENTUAL (n=129) 86 % 14 % 84 % 16 %


En Tabla N° 8 se presentan los analitos, los rangos de concentración y las matri-ces de las muestras detectadas con resi-duos de plaguicidas que no cumplen con las Resoluciones Nº 581/99, Nº 33/2010 (8

muestras por Resolución Nº 581/99 y 9 muestras por Resolución Nº 33/2010) y por defecto Codex Alimentarius y Legisla-ción Europea.

TABLA N° 8: Rango de concentración de plaguicidas detectado según matriz.

MATRIZ ANALITORANGO CONCENTRACIÓN

DETECTADO [mg / Kg]LMR3 [mg / Kg]

REPOLLO Azinfos metil 0,67 0,5 (RSA)4

PEREJIL Clorpirifos etil

(0,07 – 0,09)

0,05 (UE) 5

CILANTRO Clorpirifos etil 0,05 (UE)

ACELGA Clorpirifos etil 0,05 (RSA)

PEREJIL Fenitrotion 0,07 0,05 (UE)

COLIFLOR Fosmet

(0,08 – 0,15)

0,05 (RSA)

LECHUGA Fosmet 0,05 (RSA)

REPOLLO Fosmet 0,05 (RSA)

ZANAHORIA Fosmet 0,05 (RSA)

LECHUGA Malatión(0,03 – 0,07)

0,02 (RSA)

ZAPALLO ITALIANO Malatión 0,02 (RSA)

ACELGA Permetrina(0,09 – 0,10)

0,05 (RSA)

CILANTRO Permetrina 0,05 (UE)

BRÓCOLIS Simazina (0,15– 0,17) 0,10 (UE)

BRÓCOLIS Tetraconazol (0,03 – 0,05) 0,02 (UE)

LECHUGA Metomilo 0,27 0,2 (RSA)


3 LMR: Límite Máximo Residual.4 RSA : Reglamento Sanitario de los Alimentos, MINSAL (contiene Resolución 33/ 2010).5 UE: Comunidad Europea.



55


TABLA Nº 9: Detalle de las muestras analizadas y comparadas con Resolución Nº 581/99 y Nº 33/2010.

MATRIZ

RESOLUCIÓN Nº 581/1999 RESOLUCIÓN Nº 33/2010

TOTAL MUESTRAS

ANALIZADAS

Región Metropoli-tana

Región O´Higgins Región Metropolitana Región O´Higgins

ConformeNo

conformeConforme

No Conforme

ConformeNo

ConformeConforme

No Conforme

ACELGA 4 1 13 1 4 1 13 1 19BETARRAGA 0 0 6 0 0 0 6 0 6BRÓCOLIS 4 1 1 2 4 1 1 2 8CILANTRO 5 1 3 0 5 1 3 0 9COLIFLOR 4 0 2 1 4 0 2 1 7ESPÁRRAGO 0 0 5 0 0 0 5 0 5ESPINACA 5 0 0 0 5 0 0 0 5LECHUGA 4 1 8 1 3 2 8 1 14PAPAS 5 0 0 0 5 0 0 0 5PEPINOS 0 0 4 0 0 0 4 0 4PEREJIL 2 2 5 3 2 2 5 3 12REPOLLO 4 1 4 1 3 2 4 1 10TOMATE 5 0 0 0 5 0 0 0 5ZANAHORIA 0 0 13 1 0 0 13 1 14ZAPALLO ITALIANO

0 0 5 1 0 0 5 1 6

TOTAL 42 7 69 11 40 9 69 11 129


En el gráfi co a continuación se compara el número de matrices que sobrepasan los LMR de acuerdo a la Resolución Nº 581/99 y la Resolución Nº 33/2010.

GRÁFICO Nº 1.


Número de matrices que sobrepasan los LMR de acuerdo a la Resolución Nº 581/99 y la Resolución Nº 33/2010.

0 1 2 3 4 5 6

Acelga

Brócoli

Cilantro

Coliflor

Lechuga

Perejil

Repollo

Zanahoria

Zapallo

Número

Res. Nº 33/2010

Res. Nº 581/99



56


III. Conclusiones

De un total de 129 muestras de hortali-zas analizadas, 18 (14%) sobrepasaron los límites establecidos según la Resolución 581/99, Codex Alimentarius y Legislación Europea de valores de residuos de plagui-cidas. En relación a la Resolución 33/2010, 20 (16%) muestras superaron los límites máximos permitidos.

Los analitos detectados que sobrepa-saron los LMR fueron los siguientes: azin-fos metilo, clorpirifos, fenitrotion, fosmet, imidacloprid, malation, metomilo, perme-trina, simazina, tetraconazol y triadimenol, por el contrario, el imidacloprid y triadime-nol no sobrepasaron el LMR por ambas resoluciones.

Un total de tres muestras (dos de bró-colis y una de cilantro) del total de mues-tras analizadas reveló poseer más de un residuo de plaguicidas. Clorpirifos etil fue el analito que se detectó con mayor fre-cuencia en este estudio. Cabe destacar que este analito está presente en el ma-yor número de productos con autorización SAG.

Respecto de las 43 muestras de horta-lizas que presentaron residuos de plagui-cidas, el 46,5% corresponden a predios particulares (huertos), el 37,2% a super-mercados y el 16,2% a ferias. Además, ninguna de las muestras analizadas de pe-pinos, tomates y betarragas presentaron residuos de los plaguicidas estudiados.

En relación al analito metomilo, sólo sobrepasó el LMR establecido en la Re-solución Nº 33/2010 de 0.2 mg/Kg, detec-tándose concentraciones de 0.27 mg/Kg, con lo que se puede apreciar directamente

el efecto de la aplicación de la nueva Re-solución vigente.

Sólo cinco muestras de perejil sobrepa-saron el LMP de 0.05 mg/Kg para el caso de clorpirifos y 0.01 mg/Kg para fenitrotion de acuerdo a lo que menciona la Legisla-ción Europea. Cabe mencionar que para estas matrices, la normativa chilena no presenta valores máximos residuales.

No se encontraron residuos de plagui-cidas organoclorados que hayan sobre-pasado los límites máximos de residuos extraños (LMRE).

IV. Referencias

Resolución exenta Nº 33 de 2010 “Fija • tolerancias máximas de residuos de plaguicidas en alimentos y deja sin efecto la resolución exenta Nº 581, de 1999, y sus modifi caciones”. Ministe-rio de Salud Pública.

Residuos de plaguicidas en los ali-• mentos y piensos de acuerdo a la 41ª Reunión del Comité del Codex Alimen-tarius y aprobada en la sesión 32a de 2009. Codex Alimentarius.

Regulation (EC) N• o 396/2005 “On max-imum residue levels of pesticides in or on food and feed of plant and animal origin and amending Council Directive 91/414/EEC”, Legislación Europea.

Directrices Sobre Buenas Prácticas en • el Análisis de Residuos de Plaguicidas (CAC/GL 40-1993).

Comisión del • Codex Alimentarius: Manual de procedimiento - Décima edición.



57


V. Glosario

Analito: La sustancia química buscada o determinada en una muestra.

Porción analítica: Una cantidad represen-tativa de material extraído de la muestra analítica, de tamaño adecuado para medir la concentración del residuo.

Muestra analítica: El material preparado para el análisis a partir de la muestra de la-boratorio, separando la parte del producto que ha de analizarse y luego mezclándo-la, triturándola, picándola fi namente, etc., para extraer porciones analíticas con un error de muestreo mínimo.

Matriz: Material o componente muestrea-do para estudios analíticos, excluido el analito.

Método: La serie de procedimientos apli-cados desde la recepción de una muestra para su análisis hasta la producción del resultado fi nal.

Método para Residuos Múltiples (MRM): Método idóneo para identifi car y cuantifi -car una gama de analitos, por lo general en diversas matrices diferentes.

Residuos de plaguicida: cualquier sus-tancia especifi cada presente en alimen-tos, productos agrícolas o alimentos para animales como consecuencia del uso de un plaguicida. El término incluye cualquier derivado de un plaguicida, como produc-tos de conversión, metabolitos y produc-tos de reacción, y las impurezas conside-radas de importancia toxicológica.

Plaguicida: cualquier sustancia destinada a prevenir, destruir, atraer, repeler o com-batir cualquier plaga, incluidas las especies indeseadas de plantas o animales, durante la producción, almacenamiento, transpor-te, distribución y elaboración de alimen-

tos, productos agrícolas o alimentos para animales, o que pueda administrarse a los animales para combatir ectoparásitos. El término incluye las sustancias destinadas a utilizarse como reguladores del creci-miento de las plantas, defoliantes, dese-cantes, agentes para reducir la densidad de fruta o inhibidores de la germinación, y las sustancias aplicadas a los cultivos antes o después de la cosecha para pro-teger el producto contra la deterioración durante el almacenamiento y transporte. El término no incluye normalmente los fertilizantes, nutrientes de origen vegetal o animal, aditivos alimentarios ni medica-mentos para animales.

Límite Máximo de Residuos (LMR): es la concentración máxima de residuos de un plaguicida (expresada en mg/Kg) permi-tida en productos alimentarios para con-sumo humano, en la superfi cie o su par-te interna, según corresponda. Los LMR se basan en datos de Buenas Prácticas Agrícolas (BPA) y tienen por objeto lograr que los alimentos derivados de productos básicos que se ajustan a los respectivos LMR sean toxicológicamente aceptables.



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AnexoTABLA N° 3: Clasifi cación química de plaguicidas estudiados y aplicación.

GRUPO QUÍMICO ANALITO (PLAGUICIDA) APLICACIÓNAutorización SAG

(sitio Web)

ORGANOFOSFORADOS

Azinfos metilo Insecticida 4 (1619-1223-1233-1550)

Clorpirifos etil Insecticida

20 (1707-1728-1616-1653-1544-1556-1572-1613-1110-1128-1129-1135-1244-1409-1465-1492-1496-1521-1529-

1530)Clorpirifos metil Insecticida 1 (1305)

Diclorvos Insecticida / acaricida **

Diazinon Insecticida 5 (1096-1513-1591-1663-1681)

Etion Insecticida **

Etil Paratión Insecticida Prohibido Res. 312 (1999)

Etrimfos Insecticida / acaricida **

Fenamifos Insecticida / nematicida 1 (1632)

Fenitrotion Insecticida 1 (1358)

Fosfamidón Insecticida / acaricida **

Fosmet Insecticida / acaricida 1 (1581)

Malatión Insecticida / acaricida 1 (1586)

Metacrifós Insecticida / acaricida **

Metidatión Insecticida / acaricida 2 (1044-1718)

Ometoato Insecticida / acaricida * Dimetoato

Pirimifos metil Insecticida 1 (1002)

Triazofos Insecticida **

ORGANOCLORADOS

Aldrin* Insecticida Prohibido Res. 2003 (1988)

Clordano* Insecticida Prohibido Res. 2142 (1987)

Dieldrin* Insecticida Prohibido Res. 2142 (1987)

Endosulfan* Insecticida / acaricida 1 (1153)

Endrín Insecticida / acaricida **

Heptacloro* Insecticida Prohibido Res. 2142 (1987)

Hexaclorobenceno Fungicida Prohibido Res. 90 (2002)

Lindano Insecticida Prohibido Res. 2180 (1998)

Metoxicloro Insecticida **

pp DDE Insecticida **

Ciflutrin Insecticida 6 (1770-1466-1635-1639-1710)

Fenvalerato Insecticida / acaricida 2 (1013-1526)

Lambda Cyhalothrin Insecticida 1 (5844)

Permetrina Insecticida 3 (1319-1339-1388)



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TRIAZOL

Difenoconazol Fungicida 4 ( 1343-2382-2383-2497)

Tetraconazol Fungicida 1 ( 2689)

Triadimenol Fungicida **

TRIAZINAAtrazina Herbicida

10 (3473-3430-3444-3558-3460-3467-3052-3088-3164-3252)

Simazina Herbicida **

CARBAMATO

Carbaril Insecticida 5 ( 1302-1498-1555-1702-1708)

Methomilo (Methomyl) Insecticida7 ( 1482-1448-1083-1538-1711-

1716-1739)

Pirimicarb Insecticida 2 ( 1004-1517)

NEONICOTINOIDE Imidacloprid Insecticida

29 (1662-1692-1559-1624-1614-1636-1407-1455-1547-1709-1714-1729-1731-1695-1696-1735-1736-1724-1725-1738-1740-1745-1746-1748-1752-

1760-1764-1769-1777)

URACILO Terbacil Herbicida 1 (3333)

BENZIMIDAZOLE Tiabendazol Fungicida 1 (2480)

FTALAMIDA Captan Fungicida9 ( 2363-2359-2041-2014-2312-

2475-2568-2612-2613)

PHOSPHOROTHIOLATE Isoprothiolane Fungicida **

*Corresponde a la suma de ometoato y dimetoato expresado como este último.**No aparece en Base da datos oficial publicada en el sitio web del SAG www.sag.gob.cl



INFORME ESTUDIO DE RESIDUOS DE MEDICAMENTOS VETERINARIOS EN ALIMENTOSSubsecretaria de Salud Pública Ministerio de SaludInstituto de Salud Pública de ChileSEREMI de Salud Región MetropolitanaSEREMI de Salud O’Higgins año 2008




63

INFORME ESTUDIO DE RESIDUOS DE MEDICAMENTOS VETERINARIOS EN ALIMENTOS

I. Antecedentes

El desarrollo de las actividades agro-pecuarias, con miras a transformar al

país en potencia agroalimentaria, conlleva una serie de actividades ligadas a dicho desarrollo, como por ejemplo el uso de agentes conocidos como medicamentos de uso veterinario.

La presencia de medicamentos de uso veterinario a nivel de residuos puede traer como consecuencia una serie de riesgos para la salud humana, como por ejemplo efectos teratogénicos, mutagénicos, re-sistencia bacteriana, etc.

El fenómeno de la resistencia bacteria-na es creciente y se caracteriza por una refractariedad total o parcial de los mi-croorganismos al efecto antibiótico. Las causas de la aparición de dicho fenómeno son variadas: dentro de ellas se encuentra el uso y duración inadecuada de los trata-mientos con antimicrobianos.

La cromatografía líquida acoplada a de-tección de espectrometría de masas-ma-sas (LC-MSMS) es una de las herramien-tas analíticas usadas para la detección y cuantifi cación de medicamentos de uso veterinario a nivel de residuos; tal técnica permite alcanzar límites de detección muy bajos y la confi rmación inequívoca del me-dicamento detectado.

En el presente estudio, se analizaron residuos de medicamentos veterinarios en muestras de tejido animal destinadas al consumo humano. En la detección y confi rmación se usaron criterios recomen-dados en la Comunidad Europea, que el Instituto de Salud Pública de Chile adoptó como herramientas analíticas acorde con los más altos estándares de calidad en la detección de residuos de medicamentos veterinarios en matrices de alimentos.

II. Objetivos

1.1. Objetivo General

Analizar residuos de medicamentos • veterinarios en tejido animal.

1.2. Objetivos específi cos

Analizar residuos antibióticos en tejido • animal.

Analizar residuos hormonas en tejido • animal.

Analizar residuos antifúngicos en teji-• do animal.

Analizar residuos antiparasitarios en • tejido animal.

III. Estudio Residuos Medica-mentos Veterinarios en Ali-mentos – ISP1.1. Muestreo

El estudio comprendió el análisis de 70 muestras, el muestreo fue realizado por la SEREMI de Salud de la Región Metropoli-tana y la SEREMI de Salud de la Región de O’Higgins. Las especies animales mues-treadas comprendieron: porcino, bovino, pollo y salmón. Las muestras fueron ob-tenidas de supermercados y mataderos. Una vez obtenidas las muestras, fueron enviadas al Laboratorio de Residuos de Medicamentos Veterinarios del Departa-mento de Salud Ambiental del Instituto de Salud Pública de Chile.

1.2. Métodos de análisis y criterios de confi rmación

Los métodos de análisis usados son cromatografía líquida acoplada a detec-



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ción de espectrometría de masas-masas (LC-MSMS). Para la cuantifi cación y con-fi rmación se usaron los siguientes criterios: dos fragmentos característicos por cada analito estudiado, el tiempo de retención, el tiempo de retención relativo, la señal-ruido y la razón entre el fragmento menos abundante/fragmento mayoritario. El cum-plimiento de dichos criterios asegura una identifi cación inequívoca de la identidad de los analitos estudiados. Una vez detec-tada una muestra positiva, se procede a repetir el análisis en duplicado; el resulta-do fi nal es informado como promedio de las tres determinaciones realizadas.

1.3. Medicamentos Analizados

El estudio comprendió el análisis de un amplio espectro de medicamentos vete-rinarios, tanto de uso permitido como de uso prohibido en el tratamiento de anima-les destinados al consumo humano. En la Tabla Nº 1 se detallan los medicamentos analizados.

1.4. Resultados

De todos los análisis realizados sólo se encontró un 8,5% de muestras positivas

(seis muestras de pollo) a enrofl oxacino a nivel de residuos. Las concentraciones encontradas fl uctuaron entre 5,1 a 8,7 μg/Kg. Estas muestras eran provenientes de la SEREMI de Salud de la Región Metro-politana. Cabe destacar que los niveles encontrados están muy por debajo del li-mite máximo de residuos permitido para este tipo de medicamento.

El resto de los análisis realizados resultó negativo a todos los medicamentos moni-toreados. En la Tabla Nº 2 se resumen los análisis y los analitos ensayados.

IV. Conclusiones

En las matrices correspondientes a: cerdo, bovino y salmón no se encontraron niveles residuales de ninguno de los me-dicamentos monitoreados. En cambio, en algunas de las muestras de pollo se en-contraron niveles residuales de enrofl oxa-cino en un nivel 10 veces inferior al límite máximo de residuos permitido en Chile para este medicamento.



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V. Anexos

TABLA N° 1. Medicamentos veterinarios analizados. AÑO 2008.

GRUPO TERAPÉUTICO MEDICAMENTO USO

Anfenicoles Cloranfenicol Prohibido, MPLR 0.3 μg/Kg

QuinolonasEnrofloxacino,ciprofloxacino, flumequina, ácido

oxolinico, ácido nalidixico, difloxacino, sarafloxacino, norfloxacino, danofloxacino

PermitidoLímite dependiente del analito y especie.

Tetraciclinas Oxitetraciclina, tetraciclina, clortetraciclinaPermitido

Límite dependiente del analito y especie.

Hormonas Zeranol, taleranol, trembolona Prohibido, MPLR 2 μg/Kg

Antiparasitarios Nicarbacina Permitido, 200 μg/Kg

SulfonamidasSulfametoxazole, sulfatiazol, sulfadiazina, sulfaclor-

piridazinaPermitido

Límite dependiente del analito y especie.

Nitrofuranos AMOZ, SEM, AHD y AOZ Prohibido, MPLR 2 μg/Kg

FungicidasVerde malaquita, verde leucomalaquita y cristal

violetaProhibido, MPLR 2 μg/Kg

MPLR Minimum Performance Limit Residues. Fuente: Laboratorio de Residuos de Medicamentos Veterinarios. Instituto de Salud Pública de Chile.

TABLA N° 2. Resultados de análisis y analitos ensayados. Año 2008.

ANALITOSMUESTRAS

ANALIZADAS TOTAL ANALITO/

MUESTRA

N° MUESTRAS POSITIVAS MAYOR VALOR

DETECTADOTOTAL DE ANÁLISIS

REALIZADOS<LMP >LMP

Quinolonas 70 9 6 -Enrofloxacino: 8.7

ug/Kg(LMP: 100 ug/Kg )

630

Tetraciclinas 0 3 - - - 0

Cloranfenicol 70 1 - - - 70

Sulfas 1 4 - - - 4

Nitrofuranos 1 4 - - - 4

Fungicidas 0 3 - - - 0

Hormonas 32 3 - - - 96

Nicarbazina 19 1 - - - 19

TOTAL 816

LMP: Límite Máximo Permitido Fuente: Laboratorio de Residuos de Medicamentos Veterinarios. Instituto de Salud Pública de Chile..



INFORME ESTUDIO DE RESIDUOS DE MEDICAMENTOS VETERINARIOS EN ALIMENTOSSubsecretaria de Salud Pública Ministerio de SaludInstituto de Salud Pública de ChileSEREMI de Salud Región MetropolitanaSEREMI de Salud O’Higgins año 2009




69


I. Antecedentes

Desde la ejecución del proyecto “Forta-lecimiento del Programa de Inocuidad

de los Alimentos” en el año 2006 hasta la fecha, se ha estudiado y caracterizado la presencia de residuos de medicamentos veterinarios en alimentos de origen animal destinados al consumo humano. Tal pro-yecto involucró al Instituto de Salud Pú-blica de Chile, Ministerio de Salud, JICA (Japan International Cooperation Agency) y SEREMIS. El proyecto se extendió por tres años, proporcionando equipamiento de punta y capacitaciones específi cas en algunas metodologías de análisis de resi-duos de medicamentos veterinarios

Consecuente con esta línea de investi-gación aplicada, el Laboratorio de Residuos de Medicamentos Veterinarios se acreditó el año 2009 en dos metodologías analíticas que comprendieron cuatro analitos, y en el año 2010 se ampliará esta acreditación a 17 nuevos analitos. Tal acreditación bajo la norma ISO 17025 permite emitir resultados con la debida confi abilidad analítica y ser reconocidos válidos a nivel mundial.

Actualmente el laboratorio de residuos de medicamentos veterinarios tiene im-plementados cuarenta analitos que com-prenden diversos grupos terapéuticos, tales como: antibióticos, beta-agonistas, antiparasitarios, hormonas y colorantes triarilmetanos. Los ensayos se realizan en tejido animal, tales como músculo, cora-zón, riñón e hígado de diversas especies, que comprenden: porcino, bovino, pollo, pescado, camarón y conejo.

La detección de niveles residuales de medicamentos en alimentos cobra una vital importancia en la salud pública. Tal exposición crónica puede ejercer diver-sos efectos nocivos en la salud humana,

dichos efectos pueden generar alergias, efectos teratogénicos, efectos mutagéni-cos y resistencia bacteriana.

El fenómeno de la resistencia bacte-riana es reciente y está caracterizado por una refractariedad total y parcial de los microorganismos al efecto antibiótico. Las causas de la aparición de dicho fenómeno son variadas; dentro de ellas se encuentra el uso y duración inadecuada de los trata-mientos con antimicrobianos.

Desde este punto de vista, se hace ne-cesario estudiar la presencia de residuos de medicamentos veterinarios en alimen-tos. La exposición crónica a niveles resi-duales puede generar una serie de efec-tos en la salud pública de la población, en especial de grupos vulnerables como los niños y adultos mayores.

A continuación se presentan los re-sultados del programa de residuos de medicamentos veterinarios en alimentos desarrollado en el año 2009, realizado en conjunto entre el MINSAL, SEREMI de la Región Metropolitana, SEREMI de la Re-gión de O´Higgins y el Instituto de Salud Pública de Chile.

Estudio de Residuos de Me-dicamentos Veterinarios en Alimentos – Minsal – Ins-tituto de Salud Pública de Chile – Seremi RM – Seremi O´Higgins1. Generalidades

1.1. Muestreo

El estudio contempló el análisis de 120 muestras de cuatro especies animales co-rrespondientes a porcinos, bovinos, pollos y salmón. En la Tabla N° 1 se observa la distribución de especies por cada uno de



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los SEREMIs involucrados. Las muestras de porcinos, bovinos y pollos fueron to-madas en mataderos y faenadoras. En el caso de las muestras de salmón fueron to-madas en faenadoras, expendios, terminal pesquero, envasadoras y procesadoras, pertenecientes a la Región Metropolitana y

Región de O´Higgins por las SEREMIS de Salud respectivas, de acuerdo con las pau-tas y recomendaciones establecidas en el Codex Alimentarius. Las muestras fueron tomadas entre septiembre y diciembre del año 2009; la procedencia de las muestras queda refl ejada en la Tabla N° 2.

TABLA N° 1 Distribución de muestras por especie

EspecieSEREMI DE SALUD

TOTAL MUESTRASANALIZADASRM

REGIÓNLIB. B. O´HIGGINS

Porcino 15 15 30

Bovino 15 13 28

Pollos 15 16 31

Salmón 16 15 31

TOTAL MUESTRAS 61 59 120

Fuente: Laboratorio de Residuos de Medicamentos Veterinarios. Instituto de Salud Pública de Chile.

TABLA N° 2 Distribución de muestras según origen de toma de muestras

Especie Mataderos Faenadoras ExpendioTerminal Pesquero

EnvasadoraProcesadora

Total

Porcino 15 15 0 0 0 30

Bovino 15 13 0 0 0 28

Pollos 2 29 0 0 0 31

Salmón 0 15 7 6 3 31

TOTAL 32 72 7 6 3 120

Fuente: Laboratorio de Residuos de Medicamentos Veterinarios. Instituto de Salud Pública de Chile.

1.2. Métodos de Análisis

Para la realización de este estudio, se utilizaron los métodos validados por el La-boratorio de Residuos de Medicamentos Veterinarios, cuyas referencias bibliográfi -cas son las siguientes:

Determination of chloramphenicol • residues in shrimps tissues by liquid

chromatography–mass spectrometry. P. Muñoz,, M. Ramos, A. Aranda, I. Ro-driguez, R. Diaz, J. Blanca. Journal of Chromatography B 791 (2003) 31-38.

Simultaneous determination of residual • hormonal chemicals in meat, kidney, live tissues and milk by liquid chroma-tography-tandem mass spectrometry. B. Shao, R. Zhao, J. Meng, Y. Xue, G.



71


Wu, J. Hu, X. Tu. Analityca Chimica Acta 548 (2003) 41-50.

Multiresidues determination of triaryl-• methane and phenothiazine dyes in fi sh tissues by LC-MS/MS. J Tarbin, D. Chan, G. Stubbings, M. Sharman, G. Analytica Chimica Acta 625 (2008) 188-194

Validation of a liquid chromatography–• tandem mass spectrometric method for the quantifi cation of eight quinolones in bovine muscle, milk and aquacultured products. N. Van Hoof, K. De Wasch, L. Okerman, W. Reybroeck, S. Poelmans, H. Noppe, H. De Brabander. Analytica Chimica Acta 529 (2005) 265-272.B 791 (2003) 31-38.

Effi cient HPLC method for the deter-• mination of nicarbazin, as dinitrocar-banilide in broler liver. E, Capurro, M. Danaher, A. Anastasio, ML, Cortesi, M, O´keeffe. Journal of Chromatography B 822 (2005) 154-159.

Para la detección instrumental, se utilizó Cromatógrafo liquido Agilent 1200 acopla-do; un detector selectivo de masas/masas (LC-MS/MS), marca Applied Biosystems, modelo 3200 QTrap, equipado con bom-ba cuaternaria; Desgasifi cador por vacío; muestreador automático con control de temperatura; termostatizador de columna y Detector DAD.

Los resultados se expresan en μg/Kg (microgramos de medicamento encontra-do por kilogramo de muestra), de acuerdo con la legislación vigente.

Para la cuantifi cación y confi rmación de los residuos de medicamentos de uso ve-terinario se utilizaron criterios establecidos en la Decisión de la Comisión (2002/657/CE). “Funcionamiento de los métodos ana-líticos e interpretación de los resultados” de la Comunidad Europea. Para cada ana-lito fueron monitoreadas dos transiciones, una con fi nes de cuantifi cación y otra con fi nes de confi rmación, cumpliendo con los cuatro puntos de identifi cación exigidos con este propósito. Los criterios de con-fi rmación para las metodologías analíticas realizadas por LC-MS-MS fueron:

Tiempo de retención analito: El tiempo 1. de retención entre el analito y el control no debió superar un ± 2.5%.

Tiempo de relativo: El cuociente entre 2. el tiempo de retención del analito y el estándar interno no debió superar un ± 2.5%.

Ratios: El cuociente entre la transición 3. minoritaria y la mayoritaria debió estar comprendido entre las tolerancias esta-blecidas según su intensidad relativa.

Señal ruido: Igual o superior a tres en 4. la transición minoritaria.

Luego, una muestra analizada resulta ser positiva si supera el límite de detec-ción y cumple con los cuatro criterios de confi rmación en forma simultánea. Los lí-mites de detección y método instrumental utilizado se observan en la Tabla N° 3.



72


TABLA N° 3 Límites de detección y métodos instrumentales

ANALITO LIMITE DE DETECCIÓN (μg/Kg) MÉTODO

Cloranfenicol 0.05 LC-MSMS

Enrofloxacino 2.5 LC-MSMS

Ciprofloxacino 2.5 LC-MSMS

Ácido oxolínico 2.5 LC-MSMS

Flumequina 2.5 LC-MSMS

Difloxacino 2.5 LC-MSMS

Danofloxacino 2.5 LC-MSMS

Sarafloxacino 2.5 LC-MSMS

Ácido Nalidíxico 2.5 LC-MSMS

Norfloxacino 2.5 LC-MSMS

Marbofloxacino 2.5 LC-MSMS

Trembolona 0.05 LC-MSMS

-Zeranol 0.2 LC-MSMS

-Zeranol 0.2 LC-MSMS

Nicarbazina 20 LC-DAD

Cristal violeta 0.1 LC-MSMS

Verde malaquita 0.1 LC-MSMS

Verde leucomalaquita 0.1 LC-MSMS

2. Resultados

2.1 Muestras con Residuos de Medica-mentos Veterinarios Detectados.

Con respecto al cumplimento del Re-glamento Sanitario de los Alimentos Decreto Supremo Nº 977/96 Artículo 280 podemos mencionar que siete muestras resultaron no conformes (5,8 %) (Tabla N°4). Es importante destacar que en estas muestras se detectaron residuos de medi-camentos veterinarios que se encuentran prohibidos como cloranfenicol (6 mues-tras) y verde malaquita (1 muestra). El clo-ranfenicol fue detectado en un intervalo de

concentraciones entre 0,14-0,29 ppb en muestras de cerdo y bovino; verde mala-quita fue detectado a una concentración de 0,27 ppb en una muestra de salmón.

Además se detectó en tres muestras de salmón la presencia de otro agente de uso prohibido, cristal violeta, el cual está le-gislado internacionalmente en normativas como el Codex Alimentarius.

De acuerdo con los resultados obteni-dos, se detectaron 29 (24,2 %) muestras de tejido animal, de las 120 analizadas, con presencia de residuos de medicamen-tos de uso veterinario. De éstas, 16 provie-nen de la Región Metropolitana y 27 de la Región de O´Higgins. Tabla N°4.



73


TABLA N° 4 Cantidad de muestras con niveles de residuos de medicamentos detectados

MUESTRAS REGIÓN METROPOLITANAREGIÓN

LIB. B. O´HIGGINSTOTAL

(%)

CONFORMES - - 113 (94.2)

NO CONFORMES - - 7 (5.8)

DETECTABLES 16 13 29 (24.2)

NO DETECTABLES 45 46 91 (75.8)


Se detectaron 11 tipos de residuos de medicamentos de uso veterinario. Los analitos detectados son: nicarbacina, fl u-mequina, cristal violeta, ácido oxolínico, ácido nalidíxico, verde malaquita, cloran-fenicol, norfl oxacino, ciprofl oxacino, enro-fl oxacino y sarafl oxacino. En nueve mues-tras se encontró más de un residuo, que corresponden a 7 muestras de bovino y 2 de salmón. El grupo terapéutico de las

quinolonas fue detectado en un 74,4%, cloranfenicol en un 14%, colorantes triarylmetanos en un 9,3% y nicarbazina en un 2,3% de las muestras positivas. No se detectaron muestras con presencia de hormonas tales como trembolona, -Zera-nol y -Zeranol, ni con presencia de verde leocomalaquita, difl oxacino, danofl oxaci-no y marbofl oxaxino (Tabla N° 5)

Tabla N° 5 Analitos detectados según origen

ANALITO REGIÓN METROPOLITANA REGIÓN LIB. B. O´HIGGINS TOTAL

Nicarbazina 0 1 1

Cristal violeta 3 0 3

Flumequina 1 0 1

Ácido oxolínico 5 9 14

Ácido nalidíxico 3 0 3

Verde malaquita 1 0 1

Cloranfenicol 4 2 6

Norfloxacino 4 1 5

Ciprofloxacino 2 2 4

Enrofloxacino 1 2 3

Sarafloxacino 1 1 2

TOTAL 25 18 43

Fuente: Laboratorio de Residuos de Medicamentos. Instituto de Salud Pública de Chile.

El análisis del porcentaje de muestras detectadas con respecto a la especie re-veló que las muestras de bovino presenta-ron un 56%, seguido de muestras de cerdo con un 20%, salmón con un 18 y fi nalmen-

te las muestras de pollo con un 6%. En el grafi co Nº 1 se observa la distribución por especies de las muestras detectadas y no detectadas respecto al total de muestras analizadas. Este resultado es atribuible al



74


lugar de toma de las muestras de las es-pecies estudiadas. Los porcentajes más altos de detecciones corresponden a las muestras de bovino y cerdo. Tales mues-tras fueron tomadas en mataderos, donde el procesamiento y lavados son menores

a los efectuados en las faenadoras, don-de se realizan en forma mas exhaustiva, previos al envasado y comercialización. En este ultimo lugar fueron tomadas las muestras de pollo y cerdo que tuvieron los menores porcentajes de detecciones.

GRÁFICO N°1: Muestras detectadas según especie

Como se dijo en párrafos anteriores, se detectó la presencia de 11 analitos en las muestras, de los cuales solo 6 se en-cuentran reglamentados en la legislación vigente. Los medicamentos que fueron detectados y no se encuentran reglamen-tados son los siguientes: cristal violeta, ácido nalidíxico, norfl oxacino, sarafl oxa-cino y ciprofl oxacino. Nuestra legislación tiene actualmente reglamentados 60 me-dicamentos de uso veterinario en diversas especies y tejidos. Cabe destacar que fue detectada la presencia de ácido oxolínico en 14 muestras de bovino, cerdo y salmón. Este analito posee un límite máximo de re-siduos de 100 μg/Kg en el Reglamento Sa-

nitario de los Alimentos Decreto Supremo Nº 977/96, pero el alcance de este límite es solo para músculo con piel de peces, no haciéndose extensible a otras especies ni matrices. Esta situación también ocurre con fl umequina.

Si bien un 94,2 % de las muestras ana-lizadas están conformes con nuestra le-gislación, se detectaron niveles residuales de algunos antibióticos, siendo estos ni-veles de vital importancia en los análisis de riesgos respecto a los posibles efectos crónicos en la salud, con especial énfasis en los grupos mas vulnerables de nuestra población.

cerdopollo

salmónbovino

detectadas

no detectadas

Total

0

5

10

15

20

25

30

35

Distribución de muestras detectadas por especie

detectadas

no detectadas

Total



75


III. Conclusiones

Un 5,8% de las muestras analizadas 1. no están conforme con el “Reglamen-to Sanitario de los Alimentos Decreto Supremo Nº 977/96 Artículo 280”.

De un total de 120 muestras analiza-2. das de tejido de bovino, porcino, pollo y salmón, el 24,2% reveló la presencia de residuos de medicamentos,

Se detectaron 11 tipos de residuos de 3. medicamentos de uso veterinario; los analitos detectados son: nicarbacina, fl umequina, cristal violeta, ácido oxolí-nico, ácido nalidíxico, verde malaquita, cloranfenicol, norfl oxacino, ciprofl oxa-cino, enrofl oxacino y sarafl oxacino.

No se detectó la presencia de hormo-4. nas en muestras de cerdo y bovino.

Un total de 9 muestras (7,5%) reveló 5. poseer más de un residuo de medica-mento.

Las muestras detectadas de bovino 6. fueron un 56%, seguido de muestras de cerdo con un 20 %, salmón con un 18% y fi nalmente las muestras de po-llo con un 6%.

En las muestras no conformes se de-7. tectó la presencia de compuestos de uso prohibido, como cloranfenicol y verde malaquita.

IV. Proyecciones

Durante el año 2010 se ejecutó un pro-grama en conjunto con el MINSAL y SE-REMIS de Región Metropolitana y Región de O´Higgins que comprenderá el análisis de 100 muestras (25 de bovino, 25 de por-cino, 25 de pollo y 25 de salmón).

Se ampliará el número de analitos de 18 analizados durante el 2009 a 35 durante el 2010, considerando dos nuevos grupos terapéuticos (tetraciclinas y sulfonamidas) comprendiendo un total de 2.375 análi-sis.

V. Recomendaciones

En conjunto con el MINSAL, revisar y actualizar los límites de residuos de me-dicamentos veterinarios contenidos en el artículo 280 del Reglamento Sanitario de los Alimentos.

Ampliar el monitoreo a otras matrices como leche consumidas principalmente por niños y adultos.

Estudiar la presencia de otros grupos terapéuticos, tales como macrólidos, ce-falosporinas aminoglicósidos y beta-ago-nistas.



INFORME MONITOREO DE MICOTOXINAS EN ALIMENTOSSubsecretaria de Salud Pública Ministerio de SaludInstituto de Salud Pública de Chileaños 2008 - 2009




79

INFORME MONITOREO DE MICOTOXINAS EN ALIMENTOS

I. Antecedentes

La inserción internacional de Chile a un mundo globalizado requiere garantizar

la inocuidad de los alimentos producidos en el país y los provenientes del exterior, con el fi n de asegurar la protección de la salud de las personas y los derechos de los consumidores, además de favorecer el desarrollo competitivo y exportador de la industria agroalimentaria.

Las micotoxinas son un grupo de com-puestos químicos producidos por hongos toxigénicos, principalmente de los géneros Aspergillus, Fusarium y Penicillium, que se encuentran en forma natural en diversos cultivos agrícolas, principalmente duran-te la precosecha y almacenamiento bajo condiciones favorables al crecimiento fún-gico. Las micotoxinas más conocidas son: afl atoxinas, zearalenona, ocratoxina, patulina, fumonisinas, deoxinivalenol (DON) y toxina T2, y sus efectos incluyen principalmente carcinogenicidad, inmuno-supresión y disrupciones endocrinas. La principal vía de exposición es oral a través del consumo de alimentos contaminados.

El Instituto de Salud Pública, en su fun-ción de Laboratorio Nacional y de Referen-cia, tiene un rol importante en la vigilancia de estos contaminantes. Actualmente, cuenta con capacidad analítica, que utiliza equipamiento de última generación, para

la detección de 6 grupos de micotoxinas en matrices de alimentos (afl atoxinas to-tales, zearalenona, ocratoxina A, patu-lina, deoxinivalenol (DON) y toxina T2). Cabe mencionar que hasta el año 2007 sólo se era posible realizar la detección de Ocratoxina A, Afl atoxinas totales, Zearale-nona y Patulina.

La implementación de estas metodo-logías permitirá la actualización del Re-glamento Sanitario de los Alimentos por parte del nivel central, incorporando las micotoxinas y actualizando sus límites máximos permitidos. Del mismo modo se constituye en una herramienta para la función fi scalizadora de los SEREMIs de Salud.

El Reglamento Sanitario de los Alimen-tos DS 977/96 establece los límites máxi-mos permitidos para afl atoxinas totales, afl atoxina M1 y zearalenona. Los límites máximos permitidos de las micotoxinas no incorporadas en la legislación vigente co-rresponden a los establecidos en el Codex alimentarius y Unión Europea (Tabla Nº1).

En este informe se presentan los datos obtenidos en los años 2008 y 2009, en el Laboratorio de Toxinas Marinas y Mico-toxinas del Instituto de Salud Pública, du-rante el desarrollo del programa de vigi-lancia para este tipo de contaminantes en alimentos de consumo interno, de diverso origen.



80


TABLA Nº1: Límites máximos permitidos para micotoxinas en alimentos según normativa nacional e internacional

Micotoxina LMP Normativa

Aflatoxina totales 5 ppbReglamento Sanitario de los Alimentos

DS 977/96

Aflatoxina M1 0.05 ppbReglamento Sanitario de los Alimentos

DS 977/96

Zearalenona 200 ppbReglamento Sanitario de los Alimentos

DS 977/96

Patulina50 ppb

Codex alimentarius.

Nivalenol No cuenta con legislación

Toxina T2 No cuenta con legislación

Ocratoxina A 5 ppb Codex alimentarius

Deoxinivalenol 750 ppb Unión Europea

Fuente: Reglamento Sanitario de Los Alimentos DS 977/96; Codex alimentarius; Unión Europea. Nota: LMP: Límite Máximo Permitido.

II. Monitoreo de Micotoxinas en Alimentos. Minsal – ISP1. Generalidades

1.1. Muestreo

El monitoreo contempló un total de 326 análisis, en 156 muestras, recolectadas en supermercados y locales comerciales de la Región Metropolitana y Región de

O’Higgins, por las Secretarias Regionales Ministeriales respectivas durante los años 2008 y 2009. Las matrices analizadas fue-ron frutos secos (almendras, higos, maní, nueces, maní tipo japonés, pasas y pis-tachos), jugos de frutas (manzana, arán-dano, ciruela, durazno, frambuesa, kiwi, mora y uva), y trigo, maíz y arroz, junto con sus derivados como cereales para el desayuno y harinas. Tabla Nº 2.



81


TABLA N° 2: Distribución de muestra por matriz

MATRIZ DE ALIMENTOS MATRIZ DE ALIMENTOS MATRIZ DE ALIMENTOS

FRUTOS SECOS JUGOS DE FRUTA CEREALES Y DERIVADOS

FrutosMuestras

analizadasJugos concentrados

Muestras analizadas

CerealesMuestras

analizadas

Almendras 5 Manzana 13 Arroz 14Higos 2 Arándano 1 Trigo 6Maní 14 Ciruela 6 Maíz 3

Maní tipo japonés 3 Durazno 3 Harina de trigo 10Nueces 2 Frambuesa 3 Salvado de trigo 1

Pasas 19 Kiwi 3Cereales para el

desayuno35

Pistachos 2 Mora 3Uva 8

TOTAL 47 TOTAL 40 TOTAL 69

Fuente: Laboratorio de Toxinas Marinas y Micotoxinas. Instituto de Salud Pública de Chile.

1.2. Método de Análisis

Para la realización de este estudio se utilizaron los métodos ofi ciales del Labo-ratorio de Toxinas Marinas y Micotoxinas, cuyas referencias bibliográfi cas son las si-guientes:

Afl atoxin and Ochratoxin A contamina-• tion of retail food and intake of these mycotoxins in Japan. Kumagai et.al. Food Additives and Contaminants Vol. 25 nº9 , September 2008, 1101-1106.

49.2.19A Method “AOAC Offi cial Me-• thod 994.08 Afl atoxins in Corn, Al-monds, Brazil nuts, Peanuts, and Pis-tachio nuts” Multifunctional Column (Mycosep) Method.

A rapid multiresidual determination of • type A and type B trichothecenes in wheat fl our by HPLC-ESI-MS. Food Additives and Contaminants, March 2005, 22(3): 251-258

Japanese Offi cial Analytical Method for • Patuline (Notifi cation Nº 369, Ministry of Health, Labour and Welfare, 2003).

Los analitos estudiados correspondie-ron a Afl atoxinas totales (Suma de afl a-toxinas B1, B2, G1 y G2), Zearalenona, Ocratoxina A, Patulina, Deoxinivalenol, Ni-valenol y Toxina T2. La cantidad de análisis realizados por micotoxinas y las matrices en que éstas fueron pesquisadas puede verse en las Tablas Nº 3 y Nº 4 respecti-vamente.

TABLA N° 3: Cantidad de análisis por micotoxinas

MICOTOXINA NÚMERO DE ANÁLISIS

Aflatoxinas totales 79Patulina 40

Deoxinivalenol 24Nivalenol 24Toxina T2 34

Zearalenona 37Ocratoxina A 88

Fuente: Laboratorio de Toxinas Marinas y Micotoxi-nas. Instituto de Salud Pública de Chile.



82


TABLA N° 4: Muestras analizadas y analitos pesquisados.

MATRIZ DE ALIMENTO Nº DE MUESTRAS NÚMERO DE ANÁLISIS

Frutos secos 47Aflatoxinas totales

Ocratoxina AJugo Fruta concentrado 40 Patulina

Cereales (maíz, trigo, arroz y derivados)

69

Aflatoxinas totalesDeoxinivalenol

NivalenolOcratoxina AZearalenona

Toxina T2


Para la detección instrumental de afl a-toxinas, zearalenona y ocratoxina A se utilizó un Cromatógrafo líquido, marca Agilent modelo 1200 con detector de fl uo-rescencia (HPLC/FLD). Para la detección instrumental de Deoxinivalenol, Nivalenol y Patulina se utilizó un cromatógrafo líqui-do marca Agilent modelo 1100 con detec-tor Ultravioleta y arreglo de diodos (HPLC/UV/DAD). Para la detección instrumental de Toxina T2 y confi rmación de las mues-tras positivas sobre los valores normados por la reglamentación Chilena o en su de-fecto por la reglamentación internacional, se utilizó Cromatografía líquida acoplada a detector selectivo de masas/masas (LC-

MS/MS), marca Applied Biosystems, mo-delo 3200 QTrap.

Los resultados se expresan en ppb, (partes por billón) que equivalen a μg/Kg (microgramos de micotoxina encontrada por kilogramo de muestra), de acuerdo a la legislación vigente Tabla Nº1.

2. Resultados

De acuerdo a los resultados obtenidos, del total de análisis realizados (326) 35 de-tectaron presencia de alguna micotoxina, lo que corresponde al 10,7%. Las mues-tras que superan los Límites Máximos Per-mitidos fueron 3 (Tabla N° 5).

TABLA N° 5: Resumen de resultados de muestras con detección de micotoxinas por matriz

MICOTOXINANº MUESTRAS CON

MICOTOXINAS DETEC-TADAS

Nº DE MUES-TRAS > LMP*

MATRIZRANGO DETECTADO

[ppb]]

Ocratoxina A

4 (19) 0 Pasas 0,04 – 3,4

3 (14) 0 Arroz 0,2 – 0,7

3 (10) 0 Harinas de trigo 0,02 – 0,3

9 (35) 0 Cereal para el desayuno 0,2 – 0,7

1 (1) 1 Salvado de trigo 8,1

Aflatoxinas totales 1 (3) 1 Maní japonés 33,0



83


Patulina 9 (13) 1Jugo de manzana concen-

trado6,4 – 175,6

Zearalenona

1 (10) 0 Harina de trigo 4,8

1 (3) 0 Maíz 86,1

2 (6) 0 Trigo 11,9 – 13,1

Deoxinivalenol 1 (10) 0 Cereal para el desayuno 94,0

LMP*: Límite máximo permitido por la legislación vigente. Fuente: Laboratorio de Toxinas Marinas y Micotoxinas. Instituto de Salud Pública de Chile.

En el caso de las afl atoxinas, del total de análisis realizados (79), uno de ellos resultó detectable y superó el Límite Máximo Permitido por la reglamenta-ción Chilena (33 ppb maní tipo japonés de importación). Para Patulina, de las 40 muestras de jugos de frutas, en 9 se de-tectó presencia, siendo una sola muestra superior al límite permitido por el Codex Alimentarius (50 ppb Jugo de Manzana). De las 34 muestras analizadas para T2, to-das resultaron no detectables. De un total de 24 muestras analizadas para detección de Nivalenol y Deoxinivalenol, solo una muestra resultó con Deoxinivalenol detec-table, no superando el límite permitido, de acuerdo a la Unión Europea (750 ppb). Se detectó Zearalenona en 4 muestras; nin-guna superó los LMP por el Reglamento Chileno. De las 88 muestras analizadas

para Ocratoxina, 20 muestras detecta-ron presencia; solo una superó el valor permitido por el Codex Alimentarius (5 ppb).

Los Gráfi cos N° 1, N° 2 y Nº 3 (Anexo I) expresan las proporciones de muestras con micotoxinas detectadas según gru-pos de alimentos, divididos en frutos se-cos, jugos de frutas y maíz, arroz, trigo y productos derivados, respectivamente.

Con respecto a las micotoxinas detec-tadas en frutos secos y arroz, maíz, trigo y productos derivados, éstas pueden obser-varse desglosadas en la tabla Nº 6 y Nº 7, respectivamente. No se realiza el desglo-se para las 9 muestras positivas del grupo jugos de frutas por pesquisarse sólo una micotoxina (Patulina).

TABLA N° 6: Micotoxinas detectadas de acuerdo a la matriz analizada en frutos secos

MATRIZ DE ALIMENTO AFLATOXINAS TOTALES OCRATOXINA A TOTAL DETECTADOS

Maní No Detectable - -Maní tipo japonés 1 - 1

Almendras No Detectable - -Nueces No Detectable - -Higos No Detectable - -Pasas No Detectable 4 4

Pistachos No Detectable - -

TOTAL 1 4 5




84


TABLA N° 7: Micotoxinas detectadas de acuerdo a la matriz analizada en cerea-les (maíz, arroz, trigo y productos derivados)

Matriz de Alimento

Aflatoxinas Totales

Ocratoxina A Deoxinivalenoll Nivalenoll Zearalenona Toxina T2Total

Detectadas

ArrozNo

Detectable3

No Detectable

No Detectable

No Detectable

No Detectable

3

Trigo No

DetectableNo

DetectableNo

DetectableNo

Detectable2

No Detectable

2

Maíz No

DetectableNo

DetectableNo

DetectableNo

Detectable1

No Detectable

1

Harina de trigo - 3No

DetectableNo

Detectable1

No Detectable

4

Salvado de trigoNo

Detectable1

No Detectable

No Detectable

No Detectable

No Detectable

1

Cereales para el desayuno

No Detectable

9 1No

DetectableNo

DetectableNo

Detectable10

TOTAL 0 16 1 0 4 0 21


Un resumen de los resultados en el to-tal de análisis realizados se presenta en el Gráfi co Nº 4 (Anexo I), en donde se ob-serva que un 89,3% de los análisis reali-zados presentó resultados no detectables a micotoxinas, un 9,8% presentó valores inferiores a los permitidos por la reglamen-tación nacional e internacional, y sólo un 0.9% presentó valores superiores a los permitidos por el reglamento Sanitario o en su defecto por el Codex Alimentarius.

III. Conclusiones

De un total de 326 análisis realizados, tres (0,9%) presentaron valores sobre los lí-mites establecidos por el Reglamento Sani-tario de los Alimentos (Afl atoxina) y Codex Alimentarius (Patulina y Ocratoxina A).

De los 326 análisis realizados, 35 de-tectaron presencia de micotoxinas; de éstas tres superaron los valores máximos permitidos por el Reglamento Sanitario de los Alimentos (1), Codex Alimentarius (2) y la Unión Europea (0).

Las micotoxinas detectadas fueron Afl atoxinas totales, Ocratoxina A, Zeara-lenona, Patulina, y Deoxinivalenol. No se detectó Nivalenol ni Toxina T2 en ninguna de las muestras analizadas.

Dos muestras revelaron poseer más de una micotoxina. En una muestra de Harina de Trigo se detectó Ocratoxina y Zeara-lenona. En una muestra de cereal para el desayuno se detectó Ocratoxina y Deoxi-nivalenol.

Las micotoxinas Ocratoxina A y Patuli-na no cuentan con un valor permitido en la legislación chilena; ambas micotoxinas se detectaron en 20 y 9 muestras analizadas, respectivamente. Esto refl eja la necesidad de incorporar nuevas micotoxinas al Re-glamento Sanitario de los Alimentos.

Se requiere realizar un muestreo aleato-rio más amplio para confi rmar la tendencia observada en este monitoreo, en relación a la presencia de micotoxinas en alimen-tos de consumo interno en Chile.



85


IV. Anexo I

GRÁFICO Nº 1: Resultado porcentual de análisis de micotoxinas periodo 2008-2009 en frutos secos analizados.

GRÁFICO Nº 2: Resultado porcentual de análisis de micotoxinas periodo 2008-2009 en jugos de frutas analizados.

8,2%

2,0%

89,8%

LMP: Límite Máximo Permitido

Bajo LMPSobre LMP

Negativas89,8%

2,5%

89,8%77,5%

20,0%

77,5%


Bajo LMPSobre LMP

Negativas



86


GRÁFICO Nº 3: Resultado porcentual de análisis de micotoxinas periodo 2008-2009 en cereales (maíz, arroz, trigo y productos derivados).

0,4%

89,8%91,1%

8,4%



Bajo LMPSobre LMP

Negativas91,1%

< LMP> LMP

No detectable

0,9%

89,8%89,3%

9,8%

GRÁFICO Nº 4: Resultado porcentual de análisis de micotoxinas periodo 2008-2009.


INFORME PROGRAMA DE VIGILANCIA DE FENÓMENOS ALGALES NOCIVOS (FAN) EN CHILEMINSAL – SEREMIS de Salud Instituto de Salud Pública de Chileaño 2008




89

INFORME PROGRAMA DE VIGILANCIA DE FENÓMENOS ALGALES NOCIVOS (FAN) EN CHILE

I. Antecedentes

El actual Programa Nacional de Vigi-1. lancia de Fenómenos Algales Noci-vos (FAN), establecido por el Minis-terio de Salud a partir del año 1995 (Ord.4B/6518) con el nombre de Pro-grama Nacional de Vigilancia de la Ma-rea Roja, tiene por objetivo la vigilancia ambiental de la toxina paralizante, la toxina diarreica y la toxina amnésica, productoras de este fenómeno. Este programa contempla el envío de dos muestras mensuales de moluscos bi-valvos por parte de las SEREMIS que posean litoral marino.

En un principio, la pesquisa estaba di-2. rigida a las toxinas paralizantes. Pos-teriormente y debido a la aparición de toxina amnésica el año 2000, se con-sideró oportuno incorporar, a partir del segundo semestre del 2001, el moni-toreo obligatorio de esta toxina en el sistema de vigilancia (Ord.9B/3557 de 2001).

A partir de Abril de 2005, el Ord. N° 3. B32/1302 establece que las SEREMIS, excepto aquellas con capacidad de Laboratorio propio, deberán remitir al Instituto de Salud Pública (ISP), quin-cenalmente, al menos 1 muestra para el análisis de toxina paralizante (VPM), toxina amnésica (VAM) y toxina diarrei-ca (VDM).

El Instituto de Salud Pública comple-4. mentariamente desarrolló el Progra-ma de Sanidad de Moluscos Bivalvos, convenio entre EE.UU. y Chile desde el año 1989. Este Programa, a partir de septiembre del 2002, se realiza en laboratorios privados, permaneciendo este Instituto como Laboratorio de Re-ferencia.

El Instituto de Salud Pública realiza 5. desde 1996 el Programa de Evaluación Externa de la Calidad (PEEC) para los laboratorios del país que analizan toxi-na paralizante. Además desde el año 2006 se incorporó a este Programa el análisis de toxina amnésica.

En noviembre de 2007 el Instituto de 6. Salud Pública participó en el Taller de Marea Roja, organizado por el MINSAL y efectuado en Puerto Varas. En este taller se acordó utilizar para el análi-sis de toxinas diarreicas el Standard Operating Procedure for Detection of Okadaic acid, Dinophysistoxins and Pectenotoxins by Mouse Bioessay. (Basado en el método de Yasumoto et al., 1984), versión 4.0 (abril 2007), La-boratorio de Referencia de la Comuni-dad Europea.

Durante el año 2008, el Instituto de 7. Salud Pública y el MINSAL, a través del Laboratorio de Toxinas Marinas, entregó capacitación a profesionales representantes de la SEREMI de Ma-gallanes, Aysén, Los Lagos, Coquim-bo y Antofagasta, además del CERAM, laboratorio reconocido por esta Insti-tución, en las metodologías ofi ciales adoptadas por el ISP para la determi-nación de Toxina Diarreica y Amnésica. La realización de este entrenamiento, junto con la adquisición de los insumos y equipamientos necesarios efectuado por el MINSAL, permitió concretar la transferencia tecnológica en los distin-tos laboratorios de la red participantes de curso, y de esta forma mejorar los tiempos de respuesta en la entrega de resultados.

En Noviembre del 2008, la SEREMI 8. de la Región de Aysén organizó el Se-minario de Marea Roja, efectuado en Coyhaique. En este seminario los re-presentantes de las distintas SEREMIS



90


presentaron su situación actual con respecto a la presencia de toxinas marinas en su litoral y el Instituto de Salud Pública presentó los resultados recopilados por el laboratorio de Toxi-nas Marinas durante el año 2008. En este seminario además se destacó, a través de una serie de presentaciones, la particular situación de la Patagonia con respecto a la presencia de toxinas marinas en sus costas, puesto que en esta región del país es un problema endémico.

Finalmente, se debe destacar la impor-9. tante labor que cumple el Bioterio del Instituto de Salud Pública al disponer de ratones CF-1 para que esta vigilan-cia pueda realizarse a nivel nacional. El año 2008 se entregaron 126.029 rato-nes. Esta cifra incluye los ratones soli-citados tanto por las SEREMIS, el ISP como también por los Laboratorios privados que realizan estos análisis.

II. Programa de marea roja MINSAL – ISP – SEREMIS1. Resultados del Programa de Vigilancia del Instituto de Salud Pública


Durante el año 2008 se realizaron en el Laboratorio de Toxinas Marinas del Institu-to de Salud Pública de Chile 958 análisis (730 muestras) de moluscos bivalvos. Es-tos análisis se distribuyeron en 140 toxi-na diarreica (VDM), 200 toxina paralizante (VPM) y 618 toxina amnésica (VAM). En el gráfi co Nº1 se observa la distribución por-centual de análisis durante los meses del año 2008.


En cuanto al cumplimiento del Progra-ma de monitoreo por parte de las SEREMIS

de Salud, sólo algunas cumplieron y/o su-peraron el número de muestras estipuladas (mínimo 24 anuales). Ninguna SEREMI de Salud cumplió con la frecuencia estable-cida en el documento de referencia (dos muestras cada mes) para analizar toxinas paralizante, diarreica y amnésica. El total de 730 muestras de moluscos bivalvos analizadas se distribuyeron a lo largo de los 12 meses del año en un rango que varió de 16 a 175 muestras mensuales, agosto y febrero, respectivamente (Tabla Nº1).

Las SEREMIS de Atacama, Coquim-bo, Los Lagos y Magallanes cuentan con capacidad analítica y sólo enviaron mues-tras para confi rmación o por inconvenien-tes presentados en su laboratorio, previo acuerdo con el Laboratorio de Toxinas Marinas del Instituto de Salud Pública. Por lo tanto, el cumplimiento del programa, en estos casos, depende de las estadísticas de cada SEREMI en particular.

1.3. Resultados VAM, VDM y VPM

En relación a los resultados de VAM, de las 618 muestras analizadas once fueron positivas; de éstas, ocho muestras pre-sentaron niveles menores a los permitidos (20 μg/g), procedentes de Concepción y Coquimbo. En tres muestras se detecta-ron niveles por sobre lo permitido, todas procedentes de la zona de Pan de Azúcar SEREMI Atacama (Tabla N°2).

De las 140 muestras analizadas para la detección de VDM en el Laboratorio de Toxinas Marinas del ISP, 14 fueron posi-tivas a la presencia de esta toxina, todas procedentes de Concepción y Magallanes, (Tabla N°3).

De las 200 muestras analizadas para la detección de VPM, ninguna resultó posi-tiva.

ENEROFebrero

MarzoAbril Mayo Junio Julio

Agosto Octubre



91


GRÁFICO 1: Distribución porcentual de resultados detectados de VDM, VPM y VAM durante los meses del año 2008.

ENEROFebrero

MarzoAbril Mayo Junio Julio

Agosto Octubre

16

6 9 10 12

30 31

23

1318

2623

17 1522

6

23

9

2532 33

3037 39

67

79

69

84

6561

44 45

53 52

37 39

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

MesesVDM VPM VAM

Ener

o

Febr

ero

Marzo

Abril

Mayo

Junio

Julio

Agos

to

Septi

embr

e

Octubr

e

Noviem

bre

Diciem

bre

Fuente: Laboratorio de Toxinas Marinas. Instituto de Salud Pública de Chile.

TABLA N° 1Frecuencia mensual de muestras recibidas en Laboratorio de Biotoxinas Marinas

del Instituto de Salud Pública de Chile, para análisis de toxinas marinas. Año 2008.

SEREMIS(Oficinas)

Ene Feb Mar Abr May Jun Jul Ago Sep Oct Nov Dic TOTALCumple N°

de muestras (mínimo 24))

Cumple frecuencia

envío (mínimo 2 mensual)

ARICA 04 04 04 02 04 18 NO NO

IQUIQUE 12 12 06 09 06 06 08 06 65 SÍ NO

ANTOFAGASTA 11 08 19 * *

ATACAMA 03 03 07 02 06 05 15 41 SÍ NO

COQUIMBO 03 06 04 03 04 20 * *

VALPARAÍSO 01 10 07 01 03 01 03 04 06 36 SÍ NO

OHIGGINS 02 06 02 02 02 02 01 01 18 NO NO

MAULE 02 02 04 08 NO NO

CONCEPCIÓN 17 03 03 07 08 03 03 03 12 05 64 SÍ NO

ARAUCANÍA 10 05 04 19 NO NO

LOS LAGOS 71 132 49 84 29 12 377 * *

LOS RÍOS 02 03 02 07 NO NO

MAGALLANES 25 13 38 * *

TOTAL mensual 96 175 79 132 52 20 29 16 18 27 35 51 730 - -




92


TABLA N° 2Resultados de toxina amnésica detectada en muestras enviadas desde regiones,

distribuida según fecha, origen y tipo de muestra, año 2008.

FECHA ORIGEN SEREMI DE SALUD RECURSO Concentración μg/g

Agosto 2008 Tongoy Coquimbo Machas 2,1

Agosto 2008 Tongoy Coquimbo Ostiones 0,6

Noviembre 2008 Tomé Concepción Navajuelas 2.0

Noviembre 2008 Dichato Concepción Navajuelas 2.2

Noviembre 2008 Tomé Concepción Almejas 7.5

Noviembre 2008 Penco Concepción Navajuelas 1.6

Diciembre 2008 Pan de Azúcar Atacama Cholgas 198.5

Diciembre 2008 Calderilla Atacama Ostiones 2.7

Diciembre 2008 Pan de Azúcar Atacama Cholgas 112,2

Diciembre 2008 Caleta Obispo Atacama Almejas 3.9

Diciembre 2008 Punta Chango Atacama Cholgas 23.2


TABLA N° 3Resultados de toxina diarreica detectada en muestras enviadas desde regiones,

distribuida según fecha, origen y tipo de muestra, año 2008

FECHA ORIGEN SEREMI DE SALUD RECURSO RESULTADO

Enero 2008 Angelmó Concepción Cholgas Positivo ( bioensayo)

Enero 2008 Puerto Montt Concepción Cholgas Positivo (bioensayo)

Enero 2008 Coronel Concepción Traquillas Positivo ( bioensayo)

Abril 2008 Bahía Yendegaia Magallanes Choritos 3.93 μg OAeq/g hp (HPLC)

Abril 2008 Estero Las Montañas Magallanes Cholgas 1.90 μg OAeq/g hp (HPLC)

Abril 2008 Isla Larga Magallanes Cholgas 3.15 μg OAeq/g hp (HPLC)

Abril 2008 Puerto Edén Magallanes Cholgas 2.34 μg OAeq/g hp (HPLC)

Mayo 2008 Muelle Lota Concepción Cholgas Positivo (bioensayo)

Junio 2008 Muelle Lota Concepción Cholgas Positivo (bioensayo)

Junio 2008 Caleta Maule Concepción Traquillas Positivo (bioensayo)

Junio 2008 Caleta Lo Rojas Concepción Traquillas Positivo (bioensayo)

Julio 2008 Agua Fresca Magallanes Choritos 0.25 μg OAeq/g hp (HPLC)

Julio 2008 Río Seco Magallanes Choritos 1.78 μg OAeq/g hp (HPLC)

Noviembre 2008 Tomé Concepción Navajuelas Positivo ( bioensayo)




93


2. Resultados Programas de Vigilancia Regionales

Los resultados presentados a continua-ción fueron realizados y proporcionados por las SEREMIS de Salud que cuentan con laboratorios y que tienen implemen-tado el análisis de detección de toxinas marinas: Coquimbo (VPM, VDM y VAM), Valparaíso (VPM, VDM), Los Lagos (VPM, VDM y VAM), Aysén (VPM, VDM y VAM) y Magallanes (VPM y VDM). El resumen de estos resultados se observa en la Tabla N°5.

2.1. SEREMI Antofagasta

Desde fi nes del año 1997 esta región mantiene un Programa de Vigilancia de biotoxinas. En el año 2008 no se detec-taron muestras positivas para ninguna de las toxinas analizadas.

2.2. SEREMI de Salud Coquimbo

Esta Región comenzó su propio progra-ma de monitoreo el año 2005 al implemen-tar los tres análisis de toxinas: VPM, VDM y VAM. Sin embargo, a raíz del traslado de sus dependencias debió enviar las mues-tras al laboratorio de Toxinas Marinas du-rante ciertos meses del año. En febrero y en agosto se detectaron muestras positi-vas para VAM en ostiones de Tongoy con una concentración de 4 μg/g y 2,6 μg/g de molusco respectivamente. Las concen-traciones encontradas fueron bajo el nivel aceptado por el Reglamento Sanitarios de los Alimentos (20 μg/g).

2.3. SEREMI de Salud Valparaíso

Esta Región dispone de un equipo HPLC, por lo que implementó la detección de toxina amnésica. Las muestras para toxinas paralizante y diarreica las remitió al ISP. No se encontraron muestras positi-vas para ninguna de las tres toxinas.

2.4. SEREMI de Salud Los Lagos

En el litoral bajo vigilancia de la SEREMI Los Lagos en el Laboratorio Puerto Montt se detectó por primera vez la presencia del fenómeno de marea roja por toxina para-lizante, el año 2003, abarcando una gran parte de la isla de Chiloé. Simultáneamen-te se detectó la presencia de Alexandrium catenella en la zona.

Esta SEREMI cuenta con un Labora-torio Regional ubicado en Puerto Montt y dos laboratorios satélites, en las ciudades de Castro y Quellón. Desde el año 2005 el Laboratorio de Puerto Montt se hizo cargo de la vigilancia que efectuaba el Laborato-rio de Osorno por corresponder a la mis-ma SEREMI.

En el año 2008 se analizaron un total de 15.026 muestras para toxinas marinas. La concentración más alta encontrada de toxina paralizante fue 111 μg/100g en el Laboratorio satélite de Quellón. No se de-tectó toxina amnésica en la región. Estos resultados muestran una baja notable en los niveles de las toxinas en la región res-pecto del año 2007. Los resultados se ob-servan en la Tabla N° 5.

2.5. SEREMI de Salud Aysén

El fenómeno de marea roja en esta re-gión se caracterizó por la presencia con-comitante de toxina diarreica y paralizante de los mariscos, comprometiendo un alto porcentaje del litoral regional. De acuerdo a lo informado, en la Región se efectuaron 36 monitoreos, analizándose un total de 4.795 muestras, correspondientes a 3.999 VPM y 1.396 VDM. Los datos se observan en la Tabla N°4.

Las concentraciones mayores de VPM detectadas en el año 2008 se observan en la Tabla N° 5. No se detectó presencia de



94


biotoxinas marinas en el sector de Puerto Raúl Marín Balmaceda.

Durante el año 2008, en la Región de Aysén se registraron 6 casos notifi cados de intoxicación por biotoxinas marinas, todas producidas por consumo de maris-cos de zonas prohibidas.

2.6. SEREMI de Salud Magallanes

En esta región se mantienen niveles estables de toxina paralizante con una concentración máxima, de acuerdo a lo informado, de 4.794 μg/100g de marisco, observándose una disminución respecto del año 2007 (6.048 μg/100g).

TABLA N° 4Resultados de toxinas marinas (VPM, VDM y VAM) de muestras analizadas en

laboratorio de las SEREMIS de Salud regionales. Año 2008

SEREMI ZonaVPM VDM VAM

Máximo Valor DetectadoTotal

>80 μg/100g

<80 μg/100g

Total Positivas Total>20 μg/g

<20 μg/g

ANTOFAGASTA ANTOFAGASTA 27 0 0 27 0 19 0 0

COQUIMBO COQUIMBO 53 0 0 49 0 53 0 3 VAM = 4.0 μg/g

VALPARAÍSO VIÑA DEL MAR 21 0 0 - 21 0 0

LOS LAGOS

OSORNO 10 0 0 10 0 10 0 0

PUERTO MONTT 1.903 0 10 679 23 551 0 0VPM = 60 μg/100g

CASTRO 1.357 0 90 - - - - -VPM = 50 μg/100g

QUELLÓN 10.506 49 961 - - - - -VPM = 111 μg/100g

AYSÉN AYSÉN 3.399302

(8.89%)540

(15.9%)1.396

526 (37.7%)

- - -VPM = 2.072

μg/100g

MAGALLANES PUNTA ARENAS 3.255678

(20.8%)203

(6.2%)480

306 (63.8%)

- - -VPM = 4.794

μg/100g

TOTALES 20.531 2.641 662

Fuente: Laboratorio de Toxinas Marinas. Instituto de Salud Pública de Chile, SEREMI SALUD Los Lagos, Ay-sén, Valparaíso, Antofagasta y Magallanes.

TABLA N° 5Concentraciones máximas de toxina paralizante detectadas en litoral de

SEREMI de Salud Aysén. Año 2008

AREA SECTOR FECHA RECURSOCONCENTRACIÓN(μg STX eq./100g)

Melinka Puerto Barrientos 22/08/2008 Culengue 710

Caleta Tortel Isla Alert-Roca Lobo 02/01/2008 Cholga 47

Litoral Norte Isla San Andrés 25/03/2008 Cholga 2.072

Litoral Sur Colonia Grande 28/02/2008 Cholga 1.221

Fuente: Laboratorio SEREMI Aysén.



95


3. Producción y abastecimiento de Ratones CF-1

La Tabla N° 6 muestra la cantidad de ratones de la cepa CF-1 entregados por el Bioterio del Instituto de Salud Públi-

ca para fi nes de la vigilancia de la marea roja en el país. El año 2008 se entregaron 126.029 ratones. Esta cifra incluye los ra-tones solicitados tanto por las SEREMIS el ISP como también por los Laboratorios privados que realizan estos análisis.

TABLA N° 6Ratones CF-1 entregados por Bioterio del Instituto de Salud Pública

para análisis de Toxinas MarinasAÑO 2008.

LABORATORIOS N° DE RATONES ENTREGADOS

Antofagasta 150

Puerto Montt 46.950

Aysén 18.000

Magallanes 12.900

Coquimbo 2.550

ISP 2.369

Laboratorios privados de marea roja 43.110

TOTAL 126.029

Fuente: Bioterio Instituto de Salud Pública de Chile

4. Resultados del Programa Evaluación Externa de la Calidad (PEEC)

Dentro del Programa de Evaluación Ex-terna de la Calidad (PEEC) se realizaron 2 rondas de ensayos de aptitud de toxi-nas marinas, la primera correspondiente a toxina paralizante, en la cual participaron los siguientes laboratorios: Laboratorios del Ambiente de Antofagasta, Coquim-bo, Puerto Montt, Castro, Quellón, Aysén, Punta Arenas y Porvenir; un laborato-

rio privado reconocido (Laboratorio CE-RAM de Universidad Austral sede Puerto Montt), otros tres laboratorios privados y dos extranjeros. Se recibieron el 100% de respuestas de los 15 laboratorios adscri-tos.

En lo que respecta a la segunda ron-da, esta correspondió a toxina amnésica. Participaron en esta ronda un total de nue-ve laboratorios: cuatro de ellos del sector salud, tres privados y dos extranjeros. Se recibieron seis respuestas de nueve adscri-tos, solo uno de los cuales obtuvo resulta-do insatisfactorio.



96


III. Conclusiones

La mayoría de las SEREMIS están 1. participando del Programa de Vigilan-cia de la Marea Roja, Ord.4B/6518 de 1995 y Ord.9B/3557 de 2001, aunque algunas lo hicieron esporádicamente (Tabla N°2).

Se mantiene la toxicidad por toxina pa-2. ralizante en gran parte de la región sur austral del país, desde el extremo sur de la X Región. Se aprecia una disminu-ción de las concentraciones máximas encontradas respecto del año 2007 en todas las regiones del sur de Chile (X Región, XI Región y XII Región).

Se encontró toxina amnésica en dis-3. tintas localidades del país. Las con-centraciones variaron desde 0,6 hasta 198,5 μg/g (Tabla N° 3), siendo alta-mente destacable el fl orecimiento pro-ducido en la zona correspondiente a la SEREMI de Atacama, ya que superó los valores encontrados en esa misma región durante el año 2006 (158 μg/g). Otra situación destacable, si bien los valores encontrados son muy inferio-res al límite establecido, es la presen-cia de toxina amnésica en la zona bajo custodia de la SEREMI de Concep-ción, puesto que no se tenían antece-dentes previos de toxina amnésica en la región.

Todos los Laboratorios Regionales del 4. Ambiente obtuvieron resultados satis-factorios en la evaluación de calidad anual tanto del análisis de toxina para-lizante como del análisis de toxina am-nésica realizado por el ISP (PEEC).

El Sector Salud durante el año 2008 5. realizó un total de 24.784 análisis co-rrespondientes al Programa de Vigilan-cia de la Marea Roja en el país, lo que representa una leve disminución de 0,9 % respecto del año 2007 (25.020 análisis).

Es necesario que las SEREMIS man-6. tengan la vigilancia durante el 2009 respetando a la frecuencia de mues-treo cada 15 días, es decir, al menos 2 muestras mensuales para las tres toxinas detectadas en el país, con el objeto de pesquisar eventuales fl ore-cimientos de pequeña magnitud, que con menor frecuencia son difíciles de detectar.

Durante el año 2008 se notifi caron 7. en el país 6 personas intoxicadas por consumo de mariscos contaminados con toxina paralizante, ninguno de ellos con resultado fatal. Todos los casos se presentaron en la Región de Aysén derivados de la estación y con-sumo de mariscos desde zonas bajo prohibición de extracción, establecida por la SEREMI de Salud de la Región de Aysén.


INFORME PROGRAMA DE VIGILANCIA DE FENÓMENOS ALGALES NOCIVOS (FAN) EN CHILEMINSAL – SEREMIS de SaludInstituto de Salud Pública de Chileaño 2009




99


I. Antecedentes

El actual Programa Nacional de Vigi-lancia de Fenómenos Algales Noci-

vos (FAN), establecido por el Ministerio de Salud a partir del año 1995 (Ord.4B/6518) con el nombre de Programa Nacional de Vigilancia de la Marea Roja, tiene por ob-jetivo la vigilancia ambiental de la toxina paralizante, la toxina diarreica y la toxina amnésica, productoras de este fenómeno. Este programa contempla el envío de dos muestras mensuales de moluscos bival-vos por parte de las SEREMIS de Salud que posean litoral marino.

En un principio, la pesquisa estaba diri-gida a las toxinas paralizantes. Posterior-mente y debido a la aparición de toxina amnésica el año 2000, se consideró opor-tuno incorporar, a partir del segundo se-mestre del 2001, el monitoreo obligatorio de esta toxina en el sistema de vigilancia (Ord.9B/3557 de 2001).

A partir de Abril de 2005, el Ord. N° B32/1302 establece que las SEREMIS, excepto aquellas con capacidad de Labo-ratorio propio, deberán remitir al Instituto de Salud Pública (ISP), quincenalmente, al menos una muestra para el análisis de toxina paralizante (VPM), toxina amnésica (VAM) y toxina diarreica (VDM).

El Instituto de Salud Pública comple-mentariamente desarrolló el Programa de Sanidad de Moluscos Bivalvos, convenio entre EE.UU. y Chile desde el año 1989. Este Programa, a partir de septiembre del 2002, se realiza en laboratorios privados, permaneciendo el Instituto de Salud Pú-blica de Chile como el Laboratorio de Re-ferencia.

El Instituto de Salud Pública realiza desde 1996 el Programa de Evaluación Externa de la Calidad (PEEC) para los la-

boratorios del país que analizan la toxina paralizante (VPM). Además desde el año 2006 se incorporó a este Programa el aná-lisis de la toxina amnésica (VAM).

Durante el año 2009 el Laboratorio de Toxinas Marinas del Instituto de Salud Pú-blica culminó su proceso de acreditación bajo la Norma Chilena NCh 17.025, acre-ditando las tres metodologías ofi ciales uti-lizadas para la determinación de toxinas marinas: Determinación de toxina parali-zante y de toxina diarreica por bioensayo y Determinación de toxina amnésica por HPLC.

Con la creación de la Agencia Chile-na de Inocuidad Alimentaria (ACHIPIA), actualmente el Programa Nacional de Vi-gilancia de Fenómenos Algales Nocivos (FAN) forma parte del Programa Nacional Integrado de Marea Roja, cuya coordina-ción general está a cargo de la ACHIPIA. El objetivo de este Programa es controlar que los alimentos de origen marino, desti-nados al consumo nacional y al mercado de exportación, no contengan biotoxinas marinas en niveles considerados de ries-go para la salud humana, a través de la acción integrada de las instituciones con competencias en la materia, tomando en cuenta el desarrollo productivo del país e incorporando los determinantes sociales.

El Programa Nacional Integrado de Ma-rea Roja tiene cobertura nacional y está conformado por el conjunto de acciones desarrolladas por la Subsecretaría de Salud Pública y SERNAPESCA, que han concordado en sus programas de control actividades complementarias, coordina-das y de reconocimiento mutuo. Ambas instituciones han acordado, a través de un convenio, realizar el control de las ma-reas rojas en el país de forma coordina-da y en colaboración, reconociendo los respectivos resultados de análisis de la-boratorio y los programas de control. En



100


este programa integrado, la Subsecreta-ría de Salud Pública está a cargo de las áreas de producción o extracción desti-nadas a consumo nacional a lo largo del país, y SERNAPESCA de la vigilancia de las áreas de extracción y producción de moluscos bivalvos que están destinados a la exportación. Los Servicios comparten la información del monitoreo de las áreas y toman acciones de acuerdo a sus respec-tivas competencias, en caso de cualquier situación de riesgo o que contravenga la regulación. La normativa y los estándares de trabajo se encuentran armonizados en-tre las instituciones y está en construcción un sistema de información de los datos que genera el Programa, al que tendrán acceso las dos instituciones.

El Instituto de Salud Pública durante el año 2009 realizó labores de reconocimien-to de los laboratorios de toxinas marinas de la Universidad de Chile, con sedes en Castro y Santiago, quienes prestan ser-vicios a SERNAPESCA. El proceso de reconocimiento de estos laboratorios se encuentra en su última etapa, con lo cual se sumarían al laboratorio CERAM ya re-conocido como laboratorio de Salud Pú-blica.

En el ámbito internacional, la Unión Europea (UE) se encuentra evaluando los límites regulatorios actualmente vigentes para ácido okadaico, azaspirácidos, saxi-toxinas y ácido domoico, de acuerdo a un nuevo estudio de evaluación de ries-gos. El estudio fue realizado por la Euro-pean Food Safety Authority (EFSA). En él se concluye que los límites regulatorios para VPM deberían reducirse de 80 a 17 μg/100g para las toxinas lipofílicas AO y AZP (componentes del VDM) debería re-ducirse el límite máximo de160 a 40 μg/Kg y para VAM, de 20 a 4,5 μg/g. Asimismo la UE está revisando nuevas metodologías que puedan ser incorporadas para deter-minar con mayor sensibilidad y especifi ci-

dad la presencia de toxinas, considerando además que con el bioensayo no podrían ser detectados los nuevos límites máxi-mos indicados.

Esta situación está siendo abordada por el Instituto de Salud Pública como parte de sus compromisos en el marco del Programa Nacional Integrado de Ma-rea Roja descrito anteriormente. Durante el año 2009 la encargada del laboratorio de toxinas marinas realizó un entrena-miento en el Laboratorio de referencia de la Unión Europea para Toxinas Marinas, en Vigo, España, en metodologías analíticas para la determinación de toxinas marinas donde esta situación fue discutida, entre-gando lineamientos sobre metodologías alternativas al bioensayo.

Se debe destacar la importante labor que cumple el Bioterio del Instituto de Sa-lud Pública al disponer de ratones CF-1 para que esta vigilancia pueda realizarse a nivel nacional. El año 2009 se entrega-ron 152.188 ratones. Esta cifra incluye los ratones solicitados tanto por las SERE-MIS de Salud el ISP como también por los Laboratorios privados que realizan estos análisis.

II. Programa de Marea Roja MINSAL – ISP – SEREMIS 1. Resultados del Programa de Vigilancia del Instituto de Salud Pública


Durante el año 2009 se realizaron en el Laboratorio de Toxinas Marinas del Institu-to de Salud Pública de Chile 788 análisis (460 muestras) de moluscos bivalvos. Es-tos análisis se distribuyeron en 192 VDM; 259 VPM y 337 VAM. La distribución por-centual de análisis mensual año 2009, se observa en el gráfi co Nº 1.



101


GRÁFICO Nº1: Distribución mensual de análisis de VDM, VPM y VAM realizados en el Laboratorio de Toxinas Marinas del Instituto de Salud Pública, año 2009.

Ener

o

Febr

ero

Marzo

Abril

Mayo

Junio

Julio

Agos

to

Septi

embr

e

Octubr

e

Noviem

bre

Diciem

bre

0

20

40

60

80

100

120

60

31

29

29

29

32 35

25

26

23

16

15

26 23 20

20

2029

33

30

12

22

17

18

18 18

13 13

19

1515

10

6

14

8

19

MesesVDM VPM VAM

Fuente: Laboratorio de Toxinas Marinas del Instituto de Salud Pública de Chile


En cuanto al cumplimiento del Progra-ma de monitoreo por parte de las SERE-MIS de Salud, este puede observarse en la tabla Nº 1. Las ofi cinas de Arica, Iqui-que, Atacama, Viña del Mar y Concepción cumplieron y/o superaron el número de muestras estipuladas (mínimo 24 anua-les), y sólo la SEREMI de Salud Atacama cumplió a cabalidad con la frecuencia es-tablecida en el documento de referencia (2 muestras cada mes) para análisis de toxi-nas paralizante, diarreica y amnésica. Las otras SEREMIS de Salud cumplieron par-

cialmente el Programa, principalmente en lo que respecta a la frecuencia. El total de 460 muestras de moluscos bivalvos ana-lizadas se distribuyeron a lo largo del año en un rango que varió de 20 a 70 muestras mensuales, en los meses de mayo y ene-ro, respectivamente.

Las SEREMIS de Salud de Antofagasta, Coquimbo, Los Lagos, Aysén y Magalla-nes cuentan con capacidad analítica para realizar la pesquisa de toxinas marinas, por lo que la recepción de muestras pro-venientes de estas ofi cinas es menor com-parada con el resto de las regiones.



102


TABLA Nº1: Frecuencia mensual de muestreo para análisis de toxinas marinas en las SEREMIS de Salud, año 2009

SEREMI de Salud

Ene Feb Mar Abr May Jun Jul Ago Sep Oct Nov Dic TOTALCumple Nº

de muestras (mínimo 24)

Cumple frecuencia

envío (mínimo 2 mensual)

METROPOLITANO 1 4 5 ** **

ARICA 4 4 4 2 6 4 4 4 2 6 4 44 SÍ NO

TARAPACÁ (Iquique)

12 3 9 12 3 9 12 18 12 90 SÍ NO

ANTOFAGASTA 4 12 5 6 4 31 * *

ATACAMA 25 7 6 3 9 18 6 9 8 8 14 17 130 SÍ SÍ

COQUIMBO 3 2 5 * *

VALPARAÍSO (Viña del Mar)

1 5 5 7 2 2 2 5 4 2 4 2 36 SÍ NO

O’HIGGINS (Rancagua)

2 2 1 2 1 1 2 2 13 NO NO

MAULE 2 3 1 3 9 NO NO

BÍO-BÍO (Concepción)

15 17 4 8 2 1 2 1 2 21 73 SÍ NO

ÑUBLE 2 2 NO NO

ARAUCANÍA (Araucanía Sur)

3 3 NO NO

LOS RÍOS (Valdivia)

2 1 2 1 1 1 1 5 NO NO

LOS LAGOS 3 2 5 * *

AYSÉN 0 * *

MAGALLANES 0 * *

TOTAL MENSUAL 70 44 40 29 20 36 35 24 27 31 43 61 460 - -

Fuente: Laboratorio de Toxinas Marinas. Instituto de Salud Pública de Chile. (*) Los reportes correspondientes a estas SEREMIS de Salud se presentan en los Resultados de los Programas

Regionales. (**) SEREMIS de Salud que cuentan con laboratorios de análisis.



103


1.3. Resultados VPM, VDM y VAM

a) Toxina Paralizante (VPM):

Con respecto a la pesquisa de VPM, de los 259 análisis realizados, dos muestras resultaron positivas, ambas provenientes

de la SEREMI de Salud Viña del Mar. Nin-guna de las muestras superó el valor per-mitido por el Reglamento Sanitario de los Alimentos (80 μg/100g). Los antecedentes de las muestras pueden observarse en la tabla Nº 2.

TABLA Nº 2: Resultados de Toxina Paralizante (VPM) detectada en SEREMI Salud Valparaíso, año 2009.

FECHA ORIGEN RECURSO Concentración μg SXTeq /100g molusco

Jun-09Puesto de venta de pescados y mariscos,

ZapallarAlmejas 55

Jul-09 Distribuidora de pescados y mariscos, Placilla Almejas 37

Fuente: Laboratorio Toxinas Marinas Instituto de Salud Pública de Chile.

b) Toxina Diarreica (VDM):

Relativo a los resultados de VDM, de los 192 análisis realizados, 12 muestras resul-

taron positivas, todas provenientes de la SEREMI de Salud Bío-Bío. La información de estas muestras puede observarse en la tabla Nº 3.

TABLA Nº 3: Resultados de Toxina Diarreica (VDM) detectada en SEREMI Salud Bío-Bío, año 2009.

FECHA ORIGEN RECURSO Resultado

Ene-09 Tres Pinos. Tomé Cholgas positivo

Ene-09 Punta de Parra. Tomé Machas positivo

Ene-09 Bellavista. Tomé Almejas positivo

Ene-09 Caleta Pesquera. Muelle Lota Cholgas positivo

Feb-09 Punta Parra. Tomé Cholgas positivo

Feb-09 Tumbes. Terminal Pesquero Talcahuano Almejas positivo

Feb-09 Caleta Pesquera Maule. Lota Cholgas positivo

Feb-09 El Planchón. Tomé Cholgas positivo

Feb-09 Bellavista. Tomé Almejas positivo

Dic-09 Muelle Lota Cholgas positivo

Dic-09 Maule Traquilla positivo

Dic-09 Coronel Traquilla positivo

Fuente: Laboratorio Toxinas Marinas Instituto de Salud Pública de Chile.

c) Toxina Amnésica (VAM):

En relación a los resultados de VAM, de las 337 muestras analizadas por el Labora-torio de Toxinas Marinas del ISP, 34 fueron positivas, y de éstas, 7 muestras presen-taron valores superiores al permitido por

el Reglamento Sanitario de los Alimentos (20 μg/g). Todas ellas pertenecientes a la SEREMI de Salud Atacama. Los lugares afectados por toxina amnésica pesqui-sados por el Instituto de Salud Pública se observan en la Tabla Nº 4.



104


TABLA Nº 4: Resultados detección de Toxina Amnésica (VAM) por tipo de muestra origen y región. Año 2009.

FECHA ORIGEN SEREMI de Salud RECURSOConcentración μg/g Ácido Do-

moicoEne-09 Pan de Azúcar Atacama Cholgas 8,3

Ene-09 Ensenada Virgen Antofagasta Ostiones 0,6

Ene-09 Playa Brava Atacama Ostiones 1,0

Ene-09 Calderilla Atacama Ostiones 0,6

Ene-09 Pan de Azúcar Atacama Cholgas 7,1

Ene-09 Caleta Flamenco Atacama Cholgas 2,0

Abr-09 Caldereta Atacama Ostiónes 4,2

May-09 Pan de Azúcar Atacama Cholgas 2,5

May-09 Pan de Azúcar Atacama Cholgas 53,5

Jun-09 Pan de Azúcar Atacama Cholgas 148,5






Ago-09 Calderilla Atacama Ostiones 0,9

Oct-09 Pan de Azúcar Atacama Cholgas 11,5

Nov-09 Punta Lagarto Atacama Ostiones 20,3

Nov-09 Ramada Atacama Almejas 11,7

Nov-09 Bahía Inglesa Atacama Ostiones 0,9



Dic-09 Punta Ester Atacama Ostiones 22,2

Dic-09 El Morro Atacama Ostiones 9,7


Dic-09 Punta Lagarto Atacama Ostiones 3,7

Dic-09 Punta Lagarto Norte Atacama Ostiones 1,8


Dic-09 Playa Ramada Atacama Almejas 0,8

Dic-09 Playa Ramada Atacama Almejas 0,8Dic-09 Punta Lagarto Atacama Ostiones 1,0

Dic-09 Pan de Azúcar Atacama Cholgas 9,1

Dic-09 Obispito Atacama Almejas 1,5

Dic-09 Obispito Atacama Almejas 1,2




105


2. Resultados Programas de Vigilancia Regionales

Los resultados presentados a continua-ción fueron realizados y proporcionados por las SEREMIS de Salud que cuentan con laboratorios de análisis de toxinas marinas: Antofagasta (VPM, VDM), Co-quimbo (VPM, VDM y VAM), Los Lagos (VPM, VDM y VAM), Aysén (VPM, VDM y VAM) y Magallanes (VPM y VDM). La Tabla Nº 5 resume las actividades realizadas por las SEREMIS de Salud con capacidad de Laboratorio durante el 2009.

2.1. SEREMI de Salud Antofagasta

Desde fi nes del año 1997 esta región mantiene un Programa de Vigilancia de Biotoxinas. En el año 2009, esta SEREMI de Salud envió al Laboratorio de Toxinas Marinas del Instituto de Salud Pública 31 muestras para el análisis de toxina amné-sica, no siendo en todas ellas detectables para ácido domoico. Los análisis de toxi-na paralizante y diarreica realizados por el laboratorio de Antofagasta también entre-garon resultados no detectables para las dos toxinas pesquisadas. Los sectores muestreados correspondieron a Caleta Jorgillo (12 muestras), Puntilla (6), Caleta Buena (9), Huáscar (2) y Llacolén (2). Esta región cumplió con la cantidad y de mues-tras que establece el programa.

2.2. SEREMI de Salud Coquimbo

Esta Región comenzó su propio progra-ma de monitoreo el año 2005 al implemen-tar los tres análisis de toxinas: VPM, VDM y VAM. Durante el año 2009 este labora-torio realizó 152 análisis, correspondiendo 56 a VAM, 49 para VDM y 49 para VPM, cumpliendo con la cantidad y frecuencia de análisis de muestras que establece el programa. Los sectores muestreados co-rrespondieron a la Bahía de Coquimbo, Bahía de Tongoy, Caleta Peñuelas, Caleta

Hornos y Caleta Punta Choros. De las 56 muestras analizadas para VAM, 18 mues-tras resultaron positivas, provenientes de todos los sectores anteriormente mencio-nados con la excepción de Caleta Hornos. Todas las muestras positivas resultaron con un valor inferior al límite permitido por el Reglamento Sanitario de Alimentos (20 μg/g). Todas las muestras analizadas para VPM y VDM tuvieron resultados no detec-tables.

2.3. SEREMI de Salud Los Lagos

En el litoral bajo vigilancia de la SEREMI de Salud Los Lagos durante el año 2009, se realizó un total de 17.426 análisis, co-rrespondiendo el 94% al análisis de toxina paralizante (16.336 VPM- 557 VDM – 533 VAM). El 100% de análisis realizados por la región está conformado por la informa-ción entregada por el Laboratorio de Puer-to Montt (14,3%) y sus laboratorios saté-lites de Osorno (0,1%), Castro (35,3%) y Quellón (50,4%). En términos regionales, del total de muestras analizadas para la pesquisa de VPM (16336), el 5,6% entregó resultados positivos para la presencia de VPM, y 0,6% superiores al RSA.

En términos particulares, se observa una mayor cantidad de muestras positivas (8,8% del total analizado por el laboratorio) en el sector controlado por el laboratorio Satélite de Quellón, y el mayor porcenta-je de análisis con resultados superiores al límite permitido por el RSA a los entrega-dos por el laboratorio de Puerto Montt (1,3 % del total analizado por el laboratorio). Si bien el porcentaje observado de mues-tras superiores al RSA es pequeño, las cantidades encontradas son notablemen-te superiores a las permitidas por nuestra reglamentación, presentándose un ran-go de 1419 a 8641 μg SXTeq /100g entre los valores mayores de cada sector. Con respecto a lo encontrado para VDM, del total de análisis realizados a nivel regional



106


(557), siete muestras presentaron resulta-dos positivos, todas ellas realizadas por el laboratorio de Puerto Montt, esto repre-senta el 1,3% de los análisis realizados. En relación a los resultados encontrados para VAM, del total de análisis realizados a nivel regional, 45 muestras resultaron po-sitivas para esta toxina, con 18 muestras con hasta 5 μg/g de ácido domoico, 10 muestras entre 5-10 μg/g, ocho muestras entre 10 y 15 μg/g, 5 muestras entre 15 y 20 μg/g y cuatro muestras con valores superiores a los permitidos por el RSA, todas ellas provenientes de los sectores monitorizados por el laboratorio con sede en Puerto Montt. Las muestras superiores al RSA representan el 0,8% de los análisis realizados para esta toxina. De los valo-res encontrados, el mayor correspondió a 26,6 μg/g de ácido domoico.

2.4. SEREMI de Salud Aysén

El fenómeno de la marea roja en esta región es monitorizado en 112 estaciones que corresponden a lo muestreado por la Municipalidad de Los Cisnes (16 estacio-nes), IFOP (61), IFOP Repla (22), Sindica-tos de Pescadores (8), el comité de marea roja de Melinka (1) y la Municipalidad de Tortel (4). Durante el año 2009, fueron rea-lizados por esta región 3.123 análisis, de los cuales 1759 correspondieron a VPM, 1151 a VDM, y 213 a VAM. Del total de

muestras analizadas para la pesquisa de VPM (1759), 1316 muestras resultaron po-sitivas para esta toxina (74,8%), y de ellas 1058 resultaron superiores al límite permi-tido por el RSA (60,1%). El máximo nivel de VPM detectado durante el 2009 fue de 21.541 μg SXTeq/100g, en el recurso Chol-gas, en la zona del Canal de Chacabuco durante el mes de Febrero. Para VDM, del total de muestras analizadas (1151), 671 muestras entregaron resultados positivos, correspondiendo al 58,3% del total ana-lizado para esta toxina. Respecto de los resultados de VAM, todos ellos arrojaron resultados no detectables.

Durante el año 2009, en la Región de Aysén, se registraron 23 casos notifi cados de intoxicación por toxina paralizante, con dos fallecidos.

2.5. SEREMI de Salud Magallanes

En esta región durante el año 2009 se realizaron 3.678 análisis, divididos en 3213 análisis de VPM y 465 de VDM. Del total de análisis realizados para la pesquisa de VPM, 274 muestras resultaron superiores al límite permitido por el RSA, correspondien-do a un porcentaje del 8,5%. El mayor va-lor encontrado en esta región fue de 10.541 μg SXTeq/100g. Con respecto a los análisis para VDM, se encontraron 269 muestras positivas, 57,8% del total pesquisado.

.



107


TABLA Nº 5: Análisis de Toxinas Marinas realizados por las SEREMIS de Salud Antofagasta, Coquimbo, Los Lagos, Aysén y Magallanes. Año 2009

SEREMI ZONA

VPM VAM VDMMáximo Valor

Detectado≥ 80 μg/100g

< 80 μg/100g

ND 1 Total Análisis

≥ 20 μg/g

< 20 μg/g

ND 1

Total Análi-

sisPositivo

Total Análisis

ANTOFAGASTA ANTOFAGASTA 0 0 27 27 0 0 31 31 0 27 -

COQUIMBO COQUIMBO 0 1 48 49 0 18 38 56 1 49 VAM 5,2 μg/g

LOS LAGOS

OSORNO 0 0 5 5 0 0 3 3 0 7 -

PTO. MONTT 18 37 1357 1412 4 41 485 530 7 550VPM

1419 μg/100g

VAM26.6 μg/g

CASTRO 8 78 6059 6145 0 0 0 0 0 0 VPM8641

μg/100g

QUELLÓN 69 699 8006 8774 0 0 0 0 0 0 VPM6640

μg/100g

AYSÉN AYSÉN 1058 258 443 1759 0 0 213 213 671 1151 VPM21541

μg/100g

MAGALLANES PTA. ARENAS 274 290 2649 3213 0 0 0 0 269 465 VPM10541

μg/100g

TOTAL 1427 1363 18594 21384 4 59 770 833 498 2249

Fuente: SEREMI de Salud Antofagasta, Coquimbo, Los Lagos, Aysén y Magallanes.

3. Producción y abastecimiento de Ratones CF-1

Durante el año 2009, el Bioterio del Ins-tituto de Salud Pública entregó 152.188 ratones de la cepa CF-1 para fi nes de vigi-

lancia de toxinas marinas en el país. Esta cifra incluye los ratones solicitados tanto por las SEREMIS de Salud, como también por el ISP y laboratorios privados que rea-lizan estos análisis. Estos antecedentes pueden observarse en la Tabla Nº 6.

TABLA Nº 6: Ratones CF-1 entregados por Bioterio del Instituto de Salud Pública para Bioensayo de Toxinas Marinas. Año 2009

LABORATORIONº DE RATONES ENTREGADOS

(Unidades)SEREMI de Salud Los Lagos 59.050SEREMI de Salud Magallanes 15.900SEREMI de Salud Antofagasta 180

SEREMI de Salud Aysén 29.100SEREMI de Salud Coquimbo 2.200

ISP 2.048Laboratorios de Marea Roja 43.710

TOTAL 152.188

Fuente: Bioterio Instituto de Salud Pública de Chile1.

1 ND: No Detectable.



108


4. Resultados del Programa de Evaluación Externa de la Calidad (PEEC)

Dentro del Programa de Evaluación Ex-terna de la Calidad (PEEC) se realizaron 2 rondas de ensayos de aptitud de toxi-nas marinas, la primera correspondiente a toxina paralizante, en la cual participaron los siguientes laboratorios: Laboratorios del Ambiente de Antofagasta, Coquim-bo, Puerto Montt, Castro, Quellón, Aysén, Punta Arenas, Puerto Natales y Porvenir; un laboratorio privado reconocido (La-boratorio CERAM de Universidad Austral Sede Puerto Montt), otros cuatro labora-torios privados y dos extranjeros. En el año 2009 se sumó a los participantes la Sección de Química de Alimentos del Ins-tituto de Salud Pública de Chile. De los 18 participantes, un laboratorio no envió los resultados dentro del plazo establecido, lo que se expresa en un 94% de respuesta general para este programa.

Con respecto al plan piloto para esta toxina a partir de material liofi lizado, se deben realizar ajustes al respecto los que serán llevados a la práctica en el PEEC 2010. La evaluación de desempeño de los laboratorios sólo se realizó a la muestra PEEC y no a la muestra piloto en estudio. El 86% de los laboratorios participantes presentaron resultados satisfactorios.

En lo que respecta a la segunda ronda, ésta correspondió a toxina amnésica. En el año 2009, participaron un total de once laboratorios, cinco de ellos del sector sa-lud, cuatro privados y dos extranjeros. De los once laboratorios adscritos, un solo laboratorio no envió los resultados dentro del plazo establecido, lo que se expresa en un 91% de respuesta en general. Un solo laboratorio tuvo una evaluación insa-tisfactoria.

III. Conclusiones

La mayoría de las SEREMIS de Salud están participando del Programa Nacio-nal de Vigilancia de Fenómenos Algales Nocivos (FAN), Ord.4B/6518 de 1995 y Ord.9B/3557 de 2001, cumpliendo parcial-mente en términos de frecuencia y número de muestras, como se puede apreciar en la Tabla N° 1.

Desde el extremo sur de la Región de Los Lagos, se observa un notable aumen-to de las concentraciones máximas en-contradas de toxina paralizante, hasta en un orden de magnitud, respecto del año 2008. En el gráfi co Nº 2 se presentan los niveles de Toxina Paralizante detectados durante los años 2008 y 2009.

Se observó la presencia concomitante de Toxina Paralizante y Diarreica en las re-giones de Aysén y Magallanes, y además un considerable aumento del porcentaje de muestras positivas para Toxina Parali-zante superiores al límite permitido por el RSA en la Región de Aysén con respecto al 2008 (8,9% v/s 60,1%).

Se encontró toxina amnésica en las Regiones de Atacama, Antofagasta, Co-quimbo y Los Lagos. Las concentraciones estuvieron en el rango de 0,6 a 148,5 μg/g de ácido domoico. Este máximo es similar al alcanzado en el 2008 (198,5 μg/g) por la misma zona, Pan de Azúcar.

Es necesario destacar la problemática que se observa en la Región de Atacama con respecto a los brotes de Toxina Amné-sica y a la eventual disminución del límite permitido para VAM de 20 a 4,5 μg/g. Du-rante el año 2009, del total de muestras analizadas para VAM, el 21,2 % arrojó re-sultados sobre el límite permitido, lo que implicó el cierre de las zonas afectadas. Si el límite hubiese sido el sugerido por



109


la EFSA, este valor ascendería al doble, 45,4%, lo que se traduciría en un mayor número de cierres y por un periodo de tiempo también mayor. Situaciones simi-lares se presentan en las Regiones de Los Lagos y Valparaíso.

Se destaca también la presencia de VDM en Concepción, ya que ésta, nueva-mente, coincide con el brote presentado en enero de 2008 y febrero de 2007.

El Sector Salud durante el año 2009 realizó un total de 25.354 análisis, corres-pondientes al Programa de Vigilancia de la Marea Roja en el país, lo que represen-ta un aumento del 2,3 % (24.784 análisis) respecto del año 2008.

Es necesario que las SEREMIS de Sa-lud mantengan la vigilancia durante el

2010, aumentando la frecuencia de mues-treo cada 15 días, de al menos dos mues-tras, para las tres toxinas detectadas en el país, con el objeto de pesquisar even-tuales fl orecimientos de pequeña magni-tud que con menor frecuencia son difíciles de detectar. Más aún ahora, que existe la posibilidad de que los límites establecidos disminuyan, por lo que se debe tener un mayor control de su presencia.

Es importante que se aborde el tema del estudio de metodologías alternativas al bioensayo, debido a la situación inter-nacional que apunta a la disminución de los niveles permitidos de las toxinas mo-nitoreadas en nuestro país, los que en el caso de la toxina paralizante y diarreica serían inferiores al límite que permite de-tectar el bioensayo.

IV. Anexo

GRÁFICO 2: Comparación de hallazgos máximos para VPM entre los años 2008 y 2009, en la Región Austral de Chile

1112072

4794

8641

21541

10541

0

5000

10000

15000

20000

25000

X Región XI Región XII Región

Región

Cantidad máxima encontrada 2008 Cantidad máxima encontrada 2009




ESTUDIO DETECCIÓN DE NOROVIRUS EN MUESTRAS DE AGUA DE ANTOFAGASTA CHILEInstituto de Salud Pública de Chile año 2010




113

ESTUDIO DETECCIÓN DE NOROVIRUS EN MUESTRAS DE AGUA DE ANTOFAGASTA CHILE

I. Antecedentes

La investigación epidemiológica del bro-te de gastroenteritis aguda ocurrido en

la Región de Antofagasta, en el cual se no-tifi caron 31.036 casos de enfermos, pos-tula que el origen del brote está asociado al consumo de verduras y hortalizas rega-das con aguas insufi cientemente tratadas para riego (1).

Uno de los agentes patógenos aislados de las muestras clínicas analizadas co-rresponde a norovirus, por lo que es ne-cesario determinar la fuente ambiental de contaminación.

El Instituto de Salud Pública de Chile, con la asesoría del Food and Drug Admi-nistration de Estados Unidos (FDA) analizó muestras de aguas, de distintas fuentes, procedentes de la ciudad de Antofagasta para la detección de presencia de norovi-rus. Además, se realizó la secuenciación de los virus aislados para determinar la re-lación entre los aislados clínicos y los ais-lados ambientales.

La asesoría en terreno fue realizada por tres expertos del US - FDA, quienes cola-boraron en la detección de norovirus des-de muestras de agua y en la metodología de toma de muestra.

II. Estudio Detección Norovirus en Muestras de Agua 1. Toma de Muestras

Se realizó el procedimiento de toma de muestras en Antofagasta los días lunes 26 y martes 27 de abril, en conjunto con los expertos del FDA, funcionarios del ISP y gracias a las facilidades prestadas por la SEREMI de Salud de Antofagasta.

Se tomaron cuatro muestras de aguas en las dos plantas de abastecimiento de agua potable y dos muestras en la planta de tratamiento de aguas servidas (Tabla Nº1).

Las plantas mencionadas correspon-den a:

Planta Antofagasta Salar del Carmen, • abatimiento de arsénico (dos mues-tras).

Planta Bonilla desaladora (dos mues-• tras).

Planta Bayesa S.A. tratamiento aguas • servidas (dos muestras).

La toma de muestra se realizó fi ltrando 20 litros mediante la técnica de ultracentri-fugación, según lo descrito por Polaczyk et al. (2).

Además, se incorporaron en la detec-ción de norovirus cuatro muestras envia-das al ISP con anterioridad desde Antofa-gasta, las cuales corresponden a:

Agua de mar, una muestra.•

Domicilios particulares, tres muestras.•

2. Detección de Norovirus

En total, se analizaron 10 muestras de agua, provenientes de distintas fuentes, para la detección de norovirus. Las mues-tras fueron sometidas a extracción de las partículas virales realizando ultrafi ltración y ultracentrifugación y posterior detección molecular, utilizando el método descrito por Burkhard III et al. (3). La detección se realizó utilizando PCR para los genogru-pos I y II.

Las muestras positivas a la presencia de norovirus fueron sometidas a secuen-ciación molecular según protocolo de la Sección Genética Molecular, del Instituto



114


de Salud Pública de Chile (4), con el obje-to de establecer la relación entre los virus aislados en las muestras clínicas y los ais-lados de muestras de agua.

Los productos de PCR fueron purifi ca-dos y secuenciados en ambas direcciones en secuenciador automático ABI PRISM 3130. Las secuencias obtenidas fueron editadas y comparadas con base de da-tos GENBANK.

3. Resultados

Se detectó presencia de norovirus en • cinco de las 10 muestras analizadas.

Las muestras de agua que correspon-• den a los afl uentes de las dos plantas de abastecimiento de agua potable (Salar del Carmen y Bonilla) resultaron positivas a norovirus, incluyendo el agua de mar.

Las muestras de agua que correspon-• den a los efl uentes de las plantas de abastecimiento (aguas para distribu-ción de la población) resultaron con ausencia de norovirus.

Las dos muestras de la planta de tra-• tamiento de aguas servidas, afl uente y efl uente resultaron con presencia de norovirus (Norovirus Genogrupo II Va-riante A).

Todas las muestras de agua tomadas • en domicilios particulares de la ciudad de Antofagasta resultaron con ausen-cia de norovirus.

El análisis genético de estos cinco No-• rovirus demostró que corresponden a Genogrupo II (94-98% de similitud) con tres variantes (A, B y C).

La variante A identifi cada en agua tra-• tada para riego, corresponde a la va-riante predominante identifi cada en el brote en la población de la ciudad. En agua de mar se encontró Norovirus Genogrupo II variante B, que fue iden-tifi cada en una sola muestra de depo-sición en Antofagasta.

En la Tabla Nº 1 se presentan los resul-tados por cada muestra analizada.

III. Comentarios

Estos resultados de laboratorio permi-ten establecer una relación entre el bro-te en la población, el agua de una de las plantas de tratamiento de aguas servidas para riego de Antofagasta y el agua de mar, confi gurándose así una recirculación del agente que habría contribuido a la magnitud del brote en la comunidad.

Las plantas de tratamiento de aguas servidas deben cumplir con la reglamenta-ción vigente (Dectreto 90/ Decreto MINSAL 609) para que los procesos de abatimien-to de aguas servidas al menos disminuyan las sustancias tóxicas y microorganismos patógenos que pudieran estar presentes en los efl uentes.



115


TABLA N° 1: Resultados de detección de Norovirus en muestras de aguas proce-dentes de Antofagasta, Chile

LUGAR TOMADE MUESTRA

IDENTIFICACIÓN MUESTRAFECHA TOMA DE MUESTRA

PRESENCIANOROVIRUS

GENOGRUPO(% DE SIMILITUD

NOROVIRUS).VARIANTE

Planta Salar del Carmen,

abatimiento de arsénico

A1Filtración para abatimiento arséni-

co planta antigua. 27 Abril PRESENCIA No tipificable

A2Efluente, agua potable “La

Cachimba” (Salvador Allende con Sicilia).

28 Abril AUSENCIA -

Planta Bonilla(desaladora)

A4Mezcla agua mar desalada 20% y

agua cordillera 80%27 Abril PRESENCIA G2 94% C

A3Efluente después de desalación

27 Abril AUSENCIA -

Planta Bayesa S.A.tratamiento aguas

servidas

A6-2Afluente.

28 Abril PRESENCIA G2 96% A

A6Efluente.

28 Abril PRESENCIA G2 94% A

Agua de MarA8

Agua de mar Antofagasta. Afluen-te, entrada planta desaladora.

6 Abril PRESENCIA G2 98% B

Domicilios particu-lares

A7Agua potable de domicilio parti-cular (sur) Calle Reumen 01754

Villa Coviefi

6 Abril AUSENCIA -

A9Agua potable domicilio particular

(norte). Pasaje Silicio 8080.6 Abril AUSENCIA -

A11Agua potable domicilio particular

(centro ciudad) Av. Argentina Torre Edmundo Perez Zujovic.

25 Marzo AUSENCIA -

Fuente: Laboratorio Microbiología de Alimentos. Instituto de Salud Pública de Chile.

IV. Referencias

Informe Final de la Investigación en te-1. rreno del Equipo de Respuesta Rápida Ministerio de Salud de Chile. 10 Mayo 2010.

Amy L. Polaczyk et al. Ultrafi ltration-2. based techiques for rapid and simul-taneuous concentration of multiple microbe classes from 100 L tap water

samples. Journal of Microbiological Methods 73 (2008) 92-99.

William Burkhardt III et al. A real time 3. RT-PCR Protocol for the simultaneous Detection of Norovirus and Enterovi-rus. Laboratory Bulletin Nº 4369.

Beuret C et al. Norwalk-like sequences 4. in mineral waters: one-year monitor-ing of three brans. (2002) Appl Environ Microbiol 68 (4): 1925-31.



116


V. Anexo

1. Equipo de Trabajo

US Food and Drug Administration (FDA).

William Burkhardt Ph.D., Chief Mi-• crobial Hazards Science Branch.

Roberto Marrero-Ortiz, Research • Microbiologist.

Gary Hartman, Microbiologist.•

Sección Microbiología Alimentos, Instituto de Salud Pública de Chile.

Viviana Cachicas, Bioquímica, Jefe • Sección Microbiología de Alimen-tos

Monica Jara •

Pilar Orellana•

Ximena Palma•

Luis Donoso•

SEREMI de Salud Región Metropo-litana.

Leonardo Farías•

Alumnos tesistas•

Nicolás Ferreira•

Diego Belmar•


INFORME PRESENCIA DE ESPECIES DE VIBRIO EN ALIMENTOS DE ORIGEN MARINO EN CHILE FAO-USP, FDA-USACentro I-Mar Universidad de Los LagosInstituto de Salud Pública de Chile año 2009




119

INFORME PRESENCIA DE ESPECIES DE VIBRIO EN ALIMENTOS DE ORIGEN MARINO EN CHILE

I. Antecedentes

Vibrio se encuentra frecuentemente en los ambientes marinos y estuarios.

En el mundo varias especies son agentes etiológicos de diarrea en humanos. Chile ha registrados brotes de intoxicación ali-mentaria por presencia de Vibrio parahae-molyticus (Vp) en mariscos crudos o mal cocidos especialmente en verano. Desde el año 1998 en la Región de Antofagasta y desde el 2004 en la Región de Los Lagos.

Con el objetivo de caracterizar los ries-gos a que la población está expuesta, se realizaron los siguientes estudios:

Caracterización de mariscos en zonas 1. de expendio de la Región de Los La-gos por presencia de Vp asociando la exposición, presencia de factores de virulencia y su relación con registro de casos clínicos.

Detección de otras especies de 2. Vibrios descritas en brotes de intoxicación mundial, mediante Macroarreglo Mo-lecular.

Simulación de Cálculo de Riesgo se-3. gún los datos epidemiológicos en con-diciones ambientales extremas.

Detección de especie, género y viru-4. lencia de panel mundial de 80 cepas de Vibrios por métodos moleculares.

Formación de red latinoamericana de 5. base de datos, para la Evaluación de Riesgo Microbiológico de especies de Vibrio, VIBRIOSLATINNET.

II. Objetivos1.1. Objetivo General

Caracterizar el riesgo por presencia de • patógenos asociados especialmente a Vibrio parahaemolyticus.

1.2. Objetivos específi cos

1.2.1.• Determinar la concentración de Vibrio parahaemolyticus en diferentes especies de mariscos de consumo na-cional y exportación en lugares de ex-pendio de la Región de Los Lagos en periodo enero a junio 2009 y asociarlo a los casos clínicos.

1.2.2.• Determinar presencia de facto-res de virulencia de Vibrio parahaemo-lyticus en enriquecidos de muestras de alimento.

1.2.3.• Identifi car presencia de otras es-pecies de Vibrio patógenas eventual-mente causantes de brotes de intoxi-cación alimentaria.

1.2.4.• Simulación retrospectiva del riesgo de intoxicación considerando condiciones extremas ambientales y epidemiológicas.

1.2.5.• Evaluación de la especifi cidad de metodología molecular en panel mundial de cepas.

1.2.6.• Formación de Red Latinoame-ricana para registro de datos ambien-tales que identifi quen la cantidad y virulencia de Vibrios en las diferentes matrices alimentarias de los países que tienen el riesgo.

III. Estudios

A continuación se presentan los estu-dios realizados para la caracterización del riesgo de la población, cada uno con sus respectivos resultados.

1.1. Caracterización de mariscos en las zonas de expendio

El estudio de evaluación de la exposición comprendió el análisis de 35 muestras por



120


duplicado. El muestreo fue realizado por el Centro I-mar de la Universidad de los Lagos y analizado en el Instituto de Salud Pública de Chile y en Gulf Coast Seafood Laboratory del FDA-USA. Las matrices ali-mentarias estudiadas fueron especies de bivalvos consumidos en Chile y de interés de exportación como choritos (Mytilus chi-lensis), almejas (Protothaca taca), choros (Choromytilus) y cholgas (Aulacomya ater). Las muestras fueron obtenidas en dos ferias de expendio de Puerto Montt. Una vez obtenidas éstas fueron enfriadas en-tre 5-10ºC a enviadas al ISP. Las muestras fueron evaluadas por PCR en tiempo real en el formato del NMP entre 10 y 0,001g desde enriquecidos congelados a -70ºC.

Resultados

De los análisis realizados se detectó V. parahaemolyticus totales en un 93% de las muestras (65/70), en el rango entre < 0,03 a 1100/g. Un 26% de las muestras (18/70) presentó Vp toxigénico (tdh) en el rango entre 0,03 y 120/g. Ninguna muestra fue positiva para los genes asociados a toxici-dad trh. El Gráfi co 1 muestra la presencia de Vp totales y virulentos por especie al-tamente consumida en Chile y el Gráfi co 2, por periodo de muestreo. El gráfi co 3 muestra la proporción entre la cantidad de Vp por gramo de alimento y el número de intoxicados en Puerto Montt en una frac-ción del muestreo.

1.2. Presencia de otras especies de Vibrio descritas en brotes de intoxicación.

Mundialmente, V. parahaemolyticus y vulnifi cus son las especies de mayor im-portancia asociadas a intoxicación por ingesta de bivalvos. Sin embargo, existen otras como V. cholerae, V. hollisae, V. dam-selae, V. alginolyticus, V. harvey, V. fl uvialis, V. fursissii, V. metschnikovii and V. mimicus que también han causado enfermedad en

el hombre. Se evaluaron enriquecidos en forma de pool de las muestras con ma-yor diversidad bacteriana mediante Ma-croarreglos Moleculares. Se utilizaron son-das biotinizadas de ADN que amplifi can genes conservados (RpoB y Ftsz) de las diferentes especies previa amplifi cación por PCR. Para verifi car la especifi cidad del arreglo, se utilizó ADN genómico de las si-guientes especies: V. parahaemolyticus (3.9 x 108 ufc), V. cholerae ( 3.9 x 108ufc) y V. alginolyticus (2.3 x 108ufc). Para eva-luar la sensibilidad de detección, se utilizó pooles de ADN genómico en concentra-ciones de 102 y 10 3 ufc.

Resultados

Se obtuvo especifi cidad del 100 % para las tres especies evaluadas en forma de pool. La sensibilidad fue de un DNA genó-mico proveniente 102 ufc para V parahae-molyticus y alginolyticus y 103 ufc para V. cholerae.

En relación a otras especies presentes en los bivalvos no descritas en brotes de intoxicación en Chile, mostraron presen-cia principalmente V. alginolíticus (52,3%), V. parahaemolyticus (9.52%), V. cholerae (4.76%) y V. mimicus (4.75%). Los resulta-dos se muestran en el Gráfi co IV.

1.3. Modelo de Riesgo

Se realizó la simulación utilizando el esquema básico de Evaluación de Ries-go Microbiológico de acuerdo al Codex Alimentarius, referencias de las ERM de Vibrio spp publicadas por la FAO/OMS y referencia de ERM de Vp ostras crudas del FDA (USA).

El valor de la exposición y riesgo fue calculado según lo observado los días de mayor número de intoxicados. Los días correspondieron al 12 y 13 de febrero del 2005 con 675 casos. Se utilizó la máxima temperatura externa de la cosecha el día



121


11 de febrero, correspondiendo a 30,2°C (Estación meteorológica 857990(SCTE). La patogenicidad estimada fue 0,69 y la severidad 0,95 x10-6.

Resultados

El riesgo estimado considerando los días mas calurosos y el año que tuvo ma-yor número de intoxicados es de 0,20 por plato en Puerto Montt considerando una porción de 120 g y utilizando la curva Do-sis respuesta del FDA.

1.4. Estudio piloto colaborativo para detección de especifi cidad de panel de cepas mundiales por PCR

Se realizaron dos estudios: El año 2008 se evaluó un panel de 40 cepas y enrique-cidos en un estudio colaborativo piloto in-ternacional coordinado por FDA-USA con 11 laboratorios mundiales. Se detectó Vi-brio parahaemolyticus totales mediante los genes tl, toxR y R72H y Vibrio parahaemo-lyticus patogénico con los genes tdh y trh. Ocho de los 10 laboratorios utilizaron PCR tradicional, dos PCR en tiempo real y uno ensayo LAMP.

El año 2009 se realizó el segundo estu-dio donde cada laboratorio evaluó y anali-zó en forma independiente un panel de 82 cepas principamente V. parahaemolyticus, cholerae, vulnifi cus, algylolyticus, fl uvialis, mimicus, hollisae, fi scheri, metschnikov y cincinnatiensis. Las cepas correspondie-ron a extractos no viables de cepas pato-génicas y no patogénicas de origen clínico y ambiental y enriquecidos de alimentos. En el caso de Chile, la metodología utili-zada fue el sistema de screnning molecu-lar comercial para V. parahaemolyticus, V. cholerae y V. vulnifi cus (Bax Dupont®) y Real Time PCR con sondas para los genes tdh y trh.

Resultados

En el primer estudio para Vibrios tota-les con los 11 laboratorios, se detectaron 0,9% de Falsos positivos (11/1160) en cultivos puros o mezclas de cultivo. No se observaron Falsos negativos. Para la de-tección de virulencia, se observó un 13% de Falsos negativos (13/99) en mezclas de cultivo puros, especialmente en relación al factor de virulencia trh. Este estudio mos-tró que la metodología de PCR tradicional era menos confi able que el Real Time PCR y LAMP.

En el segundo estudio evaluado en forma independiente en cada laboratorio mostró que de las 82 cepas analizadas por el sistema comercial hubo un 0% de Fal-sos negativos, 6,1% Falsos positivos y un 93,8 % de correlación con las muestras. En relación a la virulencia, hubo un 4,8% de Falsos negativos y un 31,7 % de Falsos positivos para el gen tdh. En relación al gen trh hubo un 6% de Falsos negativos y un 10 % Falsos positivos.

1.5. VIBRIOSLATINNET: Para la evaluación de Riesgo Microbiológico

La evaluación de riesgo cuantitativa aplicada a la Microbiología de Alimentos, es reconocida mundialmente como una herramienta multidisciplinaria útil para el manejo de los patógenos presentes en los alimentos y la elaboración de estándares internaciones que faciliten el comercio transfronterizo y aseguren la inocuidad de los alimentos.

Se generó una base de datos de inves-tigación científi ca e informes epidemiológi-cos por presencia de V. cholerae, V. vulnifi -cus y V. parahaemolyticus en ecosistemas marinos y sus productos en países de La-tinamérica y el Caribe. Esta base de datos incluye datos generales por presencia de estos patógenos en matrices alimentarias



122


asociados a variables durante la cosecha/postcosecha y consumo. Esta información está centralizada en la Universidad de Sao Paulo, Brasil, y es el comienzo de una ins-tancia de colaboración latinoamericana que permitirá armonizar la metodología, defi nir las variables necesarias para una gestión de riesgo efectiva. También esta red permitirá estimular la notifi cación de los casos clínicos de los países. Esta in-formación permitirá facilitar la toma de de-cisiones de los gobiernos para aumentar el nivel de protección.

IV. Conclusiones

La población chilena tiene muy arraiga-do la costumbre de consumir bivalvos cru-dos o levemente cocidos, especialmente en la zona costera en época de vacacio-nes, que coincide con la presencia en ma-yores cantidades de especies de Vibrio de riesgo e inocuas para el ecosistema, pero de riesgo para los seres humanos.

Debido al gran número de intoxicados desde el año 2004 y al avance tecnológi-co, hemos evaluado la presencia de Vp totales y Vp toxigénico en diferentes es-pecies de bivalvos en un formato micro-biológico-molecular. En todas las matrices evaluadas se encontró Vp y Vp toxigénico, excepto en los meses de invierno, donde solo se encontró Vp totales. La concentra-ción de Vp totales fue predominantemente baja a pesar de los meses verano y aún más baja en relación a la virulencia ( <100 /g). Todas las especies de bivalvos pre-sentaron Vibrio parahaemolyticus en can-tidades similares.

El estudio de especies de riesgo dife-rentes a Vp por macroarreglo señaló pre-sencia predominante de principalmente

de V. alginolyticus, y ausencia de Vibrios de mayor riesgo como V. vulnifi cus. Este estudio se recomienda repetir cada año para visualizar el posible cambio de fl ora nativa eventualmente difícil de visualizar en los agares selectivos utilizados en los programa de vigilancia.

La simulación de modelo de riesgo de-sarrollado por el proyecto FAO USP PR 32361 permitió visualizar la probabilidad de infección de un individuo que consu-me una porción normal de mariscos en las condiciones ambientales extremas (20%). Estas condiciones pueden anualmente re-petirse y este ejercicio permite a los ges-tores de salud aumentar las comunicación del riesgo cuando corresponde y en lo po-sible tomar medidas de mitigación.

La participación en los estudios cola-borativos internacionales pilotos, permite visualizar las limitaciones y ventajas de tecnologías de punta utilizadas mundial-mente. El amplio panel de cepas utilizadas junto a los resultados del Macroarreglo, permiten considerar que no hay otras ce-pas de riesgo del género Vibrio muy di-ferentes a las visualizadas en los agares selectivos normalmente utilizados (V. al-ginolyticus y V. cholera/V. mimicus) y que dependerá de la presencia de estas cepas en aislados clínicos la alerta de vigilancia.

Finalmente, la formación de una red latinoamericana es una primera aproxima-ción de colaboración entre los países con intereses, hábitos alimentarios comunes e interés por el comercio transfronterizo, que permitirá compartir los datos y expe-riencias científi co-técnicas para proteger la salud de la población mediante el forta-lecimiento de la vigilancia para asegurar la inocuidad de los alimentos.



123


V. Referencias

Belmar D., Ferreira N., Heredia J., Aran-• da C., Cachicas V. (2009) Presencia de Vibrio parahaemolyticus en espé-cies de bivalvos de consumo nacional en sitios de expendio de la X Región, Chile, durante el período estival 2009. XXXI Congreso Chileno de Microbiolo-gía. Diciembre 1-4 Santa Cruz. Chile.

Belmar D., Ferreira N.,Osorio G., Cachi-• cas V. 2009. Array-based detection of Vibrio spp related to human outbreaks caused by raw shellfi sh consumption. Vibrios Conference. 04-06 Noviembre. Universidad Federal de Rio de Janeiro (UFRJ) Brazil.

Depaola A., Cachicas V., Cornelius A., • Croci L., Espejo R.,Hervio-Heath D., Karunasager I., Kudo Y., Krantz J., Liu J., Martinez-Urtaza J., Rangdale R., Sfrredini E., Jones J.(2009) Evaluation if international PCR method perfor-mance for detection of Vibrio paraha-emolyticus. 7 International Conference on Molluscan Shellfi sh Safety. June 14-19, 2009. Nantes France.

DePaola A., Jones J., Krantz J., Bo-• wers J., Aranda C., Belmar D., Ferreira N., Cachicas V. 2009 Survey od Total and pathogenic Vibrio parahaemolyti-cus in market bivalves molluscs in Chi-le. 2009. Vibrios Conference. 04-06 November. Federal University of Rio de Janeiro (UFRJ) Brazil.

Ferreira N., Belmar D., Cachicas V., • 2009. Detección de Vibrios spp aso-ciado a intoxicaciones alimentarias mediante Macroarreglo Molecular. XXXI Congreso Chileno de Microbiolo-gía. Diciembre 1-4 Santa Cruz. Chile.

Jones J., Hara-Kudo Y., Croci L., Su-• ffredini E., Karunasager I., Martinez –Urtaza J., Rangdale R., Espejo R., Cornelius A., Cachicas V., DePaola A. Evaluation of International PCR Me-thod Performance for Detection of Vi-brio parahaemolyticus 2008. 122 nd AOAC Annual Meeting September 21. Dallas Texas. USA.

Lupin H., Cachicas V., Costarrica L., • Rivera I., 2008. Evaluación de Riesgo Microbiológico (ERM) por presencia de Vibrio parahaemolyticus en bivalvos en Chile. XXX Congreso Chileno de Microbiologia. Diciembre 2-4 Concepción Chile.

Rivera I., Landgraf M., Cachicas V., • Costagliola M., Gonzalez MI., Quiñonez-Ramirez E., Lizarraga-Partida M., Orozco R., Gil A., Lupin H., DePaola A., Colwell R., Costarrica ML. 2009 VIBRIOSLATINNET for Microbial risk assessment.Vibrio. 2009 . Conference. 04-06 November. Universidad Federal Rio de Janeiro (UFRJ) Brazil.

FAO USP PR 38361: Proyecto para • generar una base de datos sobre V. cholerae, V. vulnifi cus y V. parahaemo-lyticus en ecosistema marino y sus pro-ductos en los países de Latinamerica y el Caribe. Abril 2008-Marzo 2009.



124


Anexos

GRÁFICO N° 1Número de muestras con presencia de Vp totales y virulentos en especies de

bivalvos consumidos en Chile verano 2009.

y = 0,5071x + 1,4123

R 2 = 0,6839

0

0,5

1

1,5

2

2,5

3

-1 -0,5 0 0,5 1 1,5

mean log10(tlh/g) in shellfish

GRÁFICO N° 2Número de Muestras con Vp Totales y Vp toxigénico en periodo de muestreo

GRÁFICO N° 3Nº de casos clínicos versus Concentración de Vp en Bivalvos



125


GRÁFICO N° 4Presencia de Vibrios en bivalvos descritos mundialmente en brotes de

intoxicación alimentaria por Macroarreglo Molecular.

Detección Vibrios en muestras de origen ambiental

0

2000

4000

6000

8000

10000

12000

14000

16000

29-dic-08 12-ene-09 29-ene-09 09-feb-09 17-feb-09 12-mar-09 27-mar-09

Fecha

V alginolyticus

V mimicus

V parahaemolyticus

V cholerae

.

.

.

.



INFORME DE PARÁSITOS EN VEGETALES años 2008-2009




129

Informe de Parásitos en Vegetales

Los alimentos pueden alterarse en toda la cadena alimentaria, desde la pro-

ducción primaria hasta el consumidor fi nal por causas de origen físico, químico y bio-lógico. Entre estos últimos tenemos a los parásitos, los cuales son muy resistentes a las diversas condiciones ambientales, a los desinfectantes y además la mayo-ría son zoonóticos. La inocuidad de los alimentos generalmente está orientada a detectar contaminantes físicos, químicos y microbiológicos, pero no incluyen el es-tudio de contaminación por parásitos. La importancia de la detección de parásitos en vegetales no sólo radica en la seguri-dad del consumo interno de la población, sino que también en las exportaciones.

A partir del año 2001 comenzó el fun-cionamiento del Laboratorio de Parasito-logía Ambiental con el fi n de implementar metodologías orientadas a detectar pará-sitos en diferentes matrices, comenzando por la detección de parásitos en pescado,

posteriormente Trichinella spiralis en car-ne de cerdo, luego detección de parásitos en vegetales, continuando con parásitos en aire y agua en equipos de aire acondi-cionado, parásitos en suelo y en moluscos bivalvos.

En conjunto con el Laboratorio Am-biental del SEREMI de Salud de la Región Metropolitana, desde el 2002 se están pro-cesando vegetales de predios agrícolas proporcionados por ellos. También se han analizado muestras de ferias libres, de su-permercados y del Casino de la Institución. La metodología empleada corresponde a “Concentración de Helmintos y Protozoos en vegetales” del Bacteriological Analyti-cal Manual (BAM) 2001, de la Food Drugs Administration. El procesamiento se reali-zó con modifi caciones.

Se presentan los resultados de los análisis realizados durante los años 2008-2009.

TABLA 1Resultados de los análisis de vegetales años 2008-2009

RESULTADO AÑO 2008 AÑO 2009Positivo 24 (6,5 %) 10 (3.1%)Negativo 346 (93,5 %) 315 (96,9%)

TOTAL MUESTRAS 370 325

Fuente: Laboratorio de Parasitología Ambiental-ISP.

TABLA 2Especies de vegetales analizadas en los años 2008-2009

VEGETAL AÑO 2008 AÑO 2009 TOTAL MUESTRASLechuga 114 118 232Acelga 67 68 135

Zanahoria 65 48 113Betarraga 91 28 119

Perejil 8 14 22Berro 11 8 19

Espinacas -- 17 17Cilantro -- 14 14Rúcula 9 -- 9

Rabanitos 5 -- 5Frutillas -- 10 10

TOTAL MUESTRAS 370 325 695




130


TABLA 3Parásitos y comensales encontrados en los vegetales año 2008

VegetalAscaris lumbri-

coidesHymenolepis

nanaGiardia

intestinalisBlastocystis

hominisEntamoeba

coliEndolimax

nanaChilomastix

mesniliLechuga 2 1 1 1 3 1 -Acelga - - - - 1 - -

Zanahoria - - - - - 1 -Betarraga - - - 1 1 2 1

Perejil - - - - 1 - -Berro - - - - 1 1 -

Rúcula - - - - - 1 -


TABLA 4Parásitos y comensales encontrados en los vegetales año 2009

VegetalAscaris lumbri-

coidesGiardia intes-

tinalisEntamoeba histolytica/

disparEntamoeba

coliEndolimax

nanaChilomastix

mesniliLechuga 1 1 - 3 - 1Acelga - - 1 1 - -

Zanahoria - - - - - -Betarraga - - - - - -

Perejil - - - - 1 -Berro - - - - - -

Cilantro - - - - - -Espinacas 1 - - - - -


TABLA 5Larvas y artrópodos encontrados en los vegetales año 2008

VEGETALLARVAS DE INSECTOS Y ESTADOS JUVENILES RABDITOIDES

DE NEMÁTODOSÁCAROS FITOPARÁSITOS

Lechuga 19 11Acelga 4 13

Zanahoria 3 -Betarraga 6 3

Perejil 1 1Berro 1 1

Rúcula - 1




131


TABLA 6 Larvas y Artrópodos encontrados en los vegetales año 2009

VEGETALLARVAS DE INSECTOS Y ESTADOS JUVENILES RABDITOI-

DES DE NEMÁTODOSACAROS FITOPARÁSITOS

Lechuga 23 42Acelga 7 5

Zanahoria - 1Betarraga 2 -

Perejil 9 5Berro 5 5

Cilantro 4 4Espinacas 8 3


Los resultados obtenidos en estos ve-getales indican poca contaminación por enteroparásitos; aún así se puede obser-var que fueron encontrados los protozoos parásitos Entamoeba histolytica/dispar, Giardia intestinales y Blastocystis homi-nis y los helmintos Ascaris lumbricoides e Hymenolepis nana, los comensales Enta-moeba coli, Endolimax nana y Chilomastix mesnili indican contaminación fecal. La im-

portancia de la detección de parásitos en vegetales no sólo radica en la seguridad del consumo interno de la población, sino que también en las exportaciones. En los programas de educación a la población no debe olvidarse el rol que juegan los pará-sitos, por lo cual es importante mantener un sistema de vigilancia y tener presentes estos agentes en los programas de inocui-dad alimentaria.



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