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Pruebas de sensibilidad a los fármacos antituberculosos. ¿Es necesaria su actualización? M. Soledad Jiménez Lab. de Micobacterias Centro Nacional de Microbiología

Pruebas de sensibilidad a los fármacos antituberculosos. ¿Es

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Page 1: Pruebas de sensibilidad a los fármacos antituberculosos. ¿Es

Pruebas de sensibilidad a los fármacos

antituberculosos. ¿Es necesaria su actualización?

M. Soledad Jiménez

Lab. de Micobacterias

Centro Nacional de Microbiología

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Concepto de Antibiograma

�Ligado a la resistencia bacteriana

�Diferenciar cepas sensibles de resistentes

�Instaurar una terapia eficaz

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Características del método ideal para el estudio de sensibilidad

�Rápido�Sencillo�Sin riesgo biológico�Reproducible en diferentes laboratorios�100% Sensible�100% Específico

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Problemas técnicos

�Crecimiento excesivamente lento

�Anarquía de las colonias

�Alteración de la actividad antimicrobiana

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TASAS DE MUTACIÓN.

1/106 x 1/108 x 1/103 = 1/1017H + R + Z

1/106 x 1/108 = 1/1014H + R

1/103Pirazinamida (Z)

1/108 Etambutol 1/107Rifampicina (R)

1/106 Estreptomicina 1/106 Isoniacida (H)

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Métodos validados por la OMS (1963)

�Método de las concentraciones críticas

�Método de la relación de resistencias

�Método de las proporciones múltiples

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Método de las concentraciones absolutas (Meissner)

�Preparación del inóculo � 1 mg/ml 1/50 3mm∅ 2.000-10.000

�Determinación de la concentración crítica

Crecimiento superior a 20 colonias en CC

CEPA RESISTENTE

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Método de la relación de resistencias (Mitchison)

�Preparación del inóculo� 1 mg/ml 3mm ∅

�CMI (cepas problema y patrón)� Menor concentración en la que crecen

menos de 20 colonias

CMI cepa problemaCMI cepa H37RV

= 2

CEPA RESISTENTE

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Método de las proporciones múltiples (Canetti)

SSSR

0 0 0 00 021 2 40/48-5

0 00 04 0∞∞∞∞ ∞∞∞∞∞∞∞∞-3

RMP

20 40

EMB

1,5 2

SM

4 8

INH

0,2 1Cont.

Propor/Concent. Críticas

INH 1% 0,2mcg/ml

SM 1% 2 mcg/ml

EMB 1% 5 mcg/ml

RMP 1% 1 mcg/ml

Lectura del antibiograma

44

21Nº de colonias ccMedia del control

X 100 > 1% X 100 = 47,7%

CEPA RESISTENTE

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Inconvenientes de los métodos convencionales

� Necesitan el crecimiento de la bacteria

TIEMPO

� Imposibilidad del estudio de sensibilidad a Pirazinamida

OTRO MÉTODO

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Sistemas de lectura automática

�Método de las proporciones

Control 1/100 crecimiento igual 1%

�Medios líquidos RAPIDEZ

�Antibiograma frente a Pirazinamida

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Inconvenientes de estos sistemas

�No existe una correlación del 100% con el Método de Referencia

�El sistema radiométrico con una concordancia muy próxima al 100%

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Métodos moleculares

� Conocimiento de las bases moleculares � Rapidez� Evitan el manejo de bacteria viva� 100% específicos

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Inconvenientes de los métodos moleculares

� Falta de sensibilidad

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Datos de sensibilidad

61,5%

63,4%

95,0%

50,0%

78,5%

embBEtambutol

10,5%rrs

39,5%rpsLEstreptomicina

pncAPirazinamida

rpoβRifampicina

24,8%mabA-inhA

53,7%katGIsoniazida

SensibilidadGenFármaco

Datos del Laboratorio de Micobacterias del Centro Nacional de Microbiología.

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Recomendaciones para la realización del antibiograma

�� Estudio de sensibilidad de 10 Estudio de sensibilidad de 10 cepas/semanacepas/semana

Am. Rev. Respir. Dis. 128:213. 1983

� Control de calidadRecomendaciones de la OMS

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Características del método ideal para el estudio de sensibilidad

�Rápido�Sencillo�Sin riesgo biológico�Reproducible en diferentes laboratorios�100% Sensible�100% Específica

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¿Que se propone?

� Nuevo sistema

� Utilizar adecuadamente las técnicas disponibles

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Esquema para el estudio de sensibilidad

Estudio fenotípico con sistemas automáticos

SENSIBLE RESISTENTE

Estudio moleculares

SIN MUTACIÓN CON MUTACIÓN

Estudio Fenotípico Método de Referencia

SENSIBLE RESISTENTE