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Universidad Autónoma de San Luis Potosí
Facultad de Ingeniería
Área Agroindustrial
Taller Integrador III
Presenta:
María Fernanda Milán Salazar
Asesor:
Claudia Álvarez Salas
- INTRODUCCIÓN
-ANTECEDENTES
- JUSTIFICACIÓN
- OBJETIVOS
- MÉTODOLOGÍA
- RESULTADOS
- CRONOGRAMA
- BIBLIOGRAFÍA
CONTENIDO:
Biodiversidad de México
Climas
Tipos de suelos
Topografía
Estructuras
geológicas
Selvas Altas
(Regiones muy húmedas)
Zonas Desérticas
(Regiones frígidas)
Biodiversidad de México
10 000 km2
Litorales Zonas Áridas Zonas Semiáridas
Hábitats salinos y yesosos
• Chihuahua
• Sonora
• Coahuila
• Zacatecas
• San Luis Potosí
• Estado de México
• Puebla
• Distrito Federal
Desarrollo de HALÓFITAS
Halófitas
Plantas que crecen y completan su ciclo de vida en suelos
salinos de manera constante y específica
En México se han encontrado cerca de 850 especies de 79 familias de angiospermas que crecen en suelos
salinos principalmente bajo altas concentraciones de NaCl
Plantas anuales o perenes
(Waisel, 1972)
El reto de la autosuficiencia alimentaria a través de especies vegetales tolerantes a la sal
En las últimas décadas la producción de
alimentos procedentes del sector agrícola ha
aumentado rápidamente.
La población mundial está aumentando aún
más rápido.
La perdida de fertilidad de los suelos por las
malas prácticas agrícolas
El contar con bastas regiones con climas
extremos donde la producción de alimentos esmuy difícil
DÉFICIT EN LA PRODUCCIÓN DE ALIMENTOS
Alternativas de especies vegetales no explotadas (Galvani, 2007)
El reto de la autosuficiencia alimentaria a través de especies vegetales tolerantes a la sal
La explotación de plantas halófitas que se producen de forma silvestre representan una alternativa para la producción de alimentos y otros usos
ALTERNATIVAS DE APROVECHAMIENTO DE HALÓFITAS
Alimentación Almidón, proteínas, grasas, vitaminas
Pienso Almidón, proteínas, minerales
Madera Leña, construcción, muebles, cajas.
Productos químicos Productos químicos industriales,
productos farmacéuticos, plásticos
Paisaje externo Borde de carreteras, áreas de vivienda,
césped.
Ornamental Plantas para macetas, jardinería
Secuestradores de CO2 Biorremediadores, forestación.
Materia prima industrial Fibra, la biomasa, la ceniza.
Protección ambiental Las costas, la fijación de dunas, la
prevención de la erosión.(Lieth, 2008)
Halófitas
Familia Amaranthaceae
100 Géneros con 1000-1400 especies
Géneros de importancia por su uso industrial, hortícola, medicinal y forrajero .
Beta, Atriplex,Chenopodium, Salsola, Kochia y Suaeda
Beta vulgarisvar. Scharifera
Beta vulgarisvar. Cicla L.
Saueda spp.
Chenopodiumquinoa
(Ferren y Shenck, 2008)
Suaeda spp.• 110 Especies de las cuales
en México se encuentran 12
distribuidas en 20 estados
del país.
• 12 especies existentes en
México 4 son las que se
consumen y se conocen con
el nombre de romerillo o
romeritos.
• México es el único país donde
se cultiva el romerito y la
especie utilizada con esta
finalidad es la Suaeda edulis.
• D.F. en 2012 se sembraron
685 ha producción de 5 200
toneladas
(Noguez y cols, 2013)
La existencia de grandes extensiones de litorales, zonasdesérticas y semidesérticas , ofrecen una amplia gama derecursos bióticos con un enorme potencial deaprovechamiento. Si embargo la mayoría de estos recursosse han estudiando con fines taxonómicos y agronómicos.Sin embargo es el conducir investigaciones de mayorcobertura con el fin de caracterizar de forma integral todosestos recursos para descubrir sus diferentes potenciales deuso, como es el caso de la especie Suaeda spp.
Realizar la caracterización fisicoquímica de la plantasilvestre Suaeda spp. recolectada en el municipio deRio Verde, para determinar su valor nutrimental yfuncional y así proyectar alternativas deaprovechamiento de este recurso biótico.
Objetivo General
Caracterización fisicoquímica de la planta silvestreSuaeda spp. recolectada en el municipio de Rio Verde.
Evaluación de viabilidad de la planta para elconsumo humano.
Establecer una relación entre la composición de laplanta y las condiciones de producción.
Objetivos Específicos
Plantas de Suaeda spp. recolectada en el municipio de Rio Verde
Materiales
Plantas de Suaeda edulis adquirida en el mercado local
MétodosCARACTERIZACIÓN FISICOQUÍMICA DE
LA PLANTA.
• Método Gravimétrico 925.09
Determinación de Humedad
• Método Gravimétrico 923.03
Determinación de Cenizas
• Método Soxhlet 963.39
Determinación de Extracto Etéreo
• Procedimiento MicroKjeldahl 920.87
Determinación de Proteína
• Método Enzimático-Gravimétrico 991.43
Fibra dietaría total
• Método de Lane y Eynon
Contenido de Carbohidratos totales y Reductores
Tamizaje Fitoquímico.
Metodología para este proceso fue reportada por (Payo, Sandovaly Peña, 2002) en la monografía "Productos Naturales y su Empleoen la Medicina" , empleándose pruebas o técnicas simples, rápidasy selectivas para un determinado compuesto; se le realizaran acada extracto aquellos ensayos específicos para los metabolitossecundarios que de acuerdo a su solubilidad podran haber sidoextraídos en cada solvente.
• Preparación de Maceraciones acuosas• Metanol•Cloroformo• Etanol• Material vegetal de Suaeda Mexicana y Suaeda Edulis.
Taxonomía de Suaeda spp.
Reino: Plantae
División: Magnoliophyta
Clase: Magnoliopsida
Orden: Caryophyllales
Familia: Amaranthaceae
Subfamilia: Chenopodioideae
Género: Suaeda
Especie: Mexicana
Dr. José García Peréz.
Análisis Fisicoquímicos
87.8
1.475.29
81.1
1.46
10.63
Humedad Extracto étereo Cenizas0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
Porcentaje (%)
Control Muestra
ANALISIS CONTROL MUESTRA
HUMEDAD 87.82± 0.09 81.09 ± 2.49
EXTRACTO ETEREO
1.48 ± 0.10 1.47 ± 0.07
CENIZAS 5.29 ± 0.14 10.63 ± 0.16
Tamizaje Fitoquímico.ID
EN
TIF
ICA
CIÓ
N D
E G
RA
SA
S.
SUAEDA MEXICANA SUAEDA EDULIS
EXTRACTO ORGANICO ACUOSO ORGANICO ACUOSO
PRUEBA M H C I D M H C I D
Identificación de Grasas ++ ++ ++ ++
La identificación de grasas serealizo con el colorante deSudan III el cual tiñe las grasaselectivamente de color rojo.
Tamizaje Fitoquímico.ID
EN
TIF
ICA
CIÓ
N D
E C
AR
BO
HID
RA
TO
S.
SUAEDA MEXICANA SUAEDA EDULISEXTRACTO ORGANICO ACUOSO ORGANICO ACUOSO
METABOLITO M H C I D M H C I DReacción de Fehling ( Azucares reductores)
+
Reacción de Ácido Mucico.(Presencia de lactosa u otro oligosacarido que contenga galactosa)
++ ++
Reacción de Seliwanoff (Identificacion de cetosas)Prueba de Orcinol (identificacion de pentosas)
La reacción de Fehling identifica Azucares Reductores(monosacáridos y algunos disacáridos como la lactosa, maltosa ,celobiosa y gentobiosa) se oxidan en presencia de sulfato cúpricoen un medio alcalino, formado oxido cuproso .
Reacción de Ácido Múcico este ensayo permite la identificación de la galactosa o de los azúcares que la contienen. El ácido nítrico oxida tanto al grupo aldehído como al alcohólico primario de cualquier azúcar para originar ácidos dicarboxílicos que han recibido el nombre general de ácidos sacáricos. El ácido múcico o galactárico es el menos soluble en agua acidificada de todos los ácidos sacáricos. .
Tamizaje Fitoquímico.ID
EN
TIF
ICA
CIÓ
N D
E F
LA
VO
NO
IDE
S.
SUAEDA MEXICANA SUAEDA EDULIS
EXTRACTO ORGANICO ACUOSO ORGANICO ACUOSO
METABOLITO M H C I D M H C I D
Caracterización de Heterósidos Flavonicos NaOH 10% (Presencia de Flavonas y flavonoles)
+ +
Caracterización de Heterósidos Flavonicos KOH 10% (Presencia de Flavonas y flavonoles)
+ + +
Caracterización de Heterósidos Flavonicos Hidroxido de amonio 10%
Caracterización de Heterósidos FlavonicosCloruro Férrico 10% (Presencia de chalconas)
+ + + +
Reacciones de coloración Reacción de Shinoda- Magnesio Metálico (Presencia de Flavonas)
+ + + + + +
Reacciones de coloración Reacción de Shinoda - Zinc Metálico (Presencia de Flavonoles)
Reacción con Ácido Sulfúrico (Presencia de Flavonas)
+ +
Reacción de Dimroth (Presencia de 5-hidroxiflavonas)- Ácido bórico 10% y Anhidrodo Acético.
Reacción para Leucoantocianidinas (Flavandiol-3,4) (Presencia de Catequinas)
+ + +
Identificación de Antiocianinas. ++ + + ++
Tamizaje Fitoquímico.ID
EN
TIF
ICA
CIÓ
N D
E T
AN
INO
S.
SUAEDA MEXICANA SUAEDA EDULIS
EXTRACTO ORGANICO ACUOSO ORGANICO ACUOSO
METABOLITO M H C I D M H C I D
Ensayo de la Gelatina (Presencia de Taninos)
+
Ensayo de la Fenazona (Presencia de Taninos)
+ + + +
Caracterizacion de Taninos Hidrolizables Galicos
+ + + +
Precipitación con reactivo de Stiansny(Presencia de Taninos Catéquicos)
+ + + + +
Reacción de oxidación de taninos catéquicos
+ + +
Ensayo de Ácido Clorogénico (Presencia de Ácido Fenólico)
+ + + + + + +
- Ensayo de Gelatina los taninos son precipitantes de proteínas y debido a la naturaleza protéica de la gelatina, es precipitada por ellos.
-Caracterización de os taninos hidrolizables (galitaninos y elagitaninos) se colorean de azul-negro y los taninos condensados (catéquicos) dan color verde con sales férricas.
- Reactivo de Stiansny los taninos catéquicos o condensados se oxidan en polifenoles rojos por calentamiento con ácido clorhídrico.
-El ácido clorogénico produce una coloración verde cuando se trata con una solución acuosa de amoniaco y se expone al oxígeno atmosférico.
En las tablas se muestran los resultados del Tamizaje Fitoquímico realizado a los extractos orgánico y acuoso donde se muestra la alta variabilidad de compuestos presentes en la Suaeda Mexicana; se destacan entre estos flavonoides, azúcares reductores, grasas y taninos.Se confirmó la presencia de flavonoides que es el principio activo al cual se le atribuye la propiedad antioxidante.
Conclusión.
Análisis Estadístico
Se utilizará el software STATISTIC versión 6.0. Losresultados de cada análisis realizado seránexpresados como la media ±desviación estándarde tres determinaciones y sometidos a un análisisde varianza (ANOVA) con posterior comparaciónde medias según el caso.
Actividad a realizar Mes
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23Revisión bibliográficaRedacción del protocolo
Cotización de reactivos y equipos
Compra de reactivos y equipos
Pruebas preliminares para el manejo de las técnicas de extracción
Presentación Taller Integrador I
Caracterización Fisicoquímica
Redacción de artículo de divulgación Análisis estadístico de los datos obtenidos
Presentacion Taller Integrador II
Caracterización Taxonomica Análisis fitoquimicos
Estudio de la viabilidad de la planta para consumo humano
Realización de Cartel para presentación en Jóvenes. Investigadores en el Bicentenario
Presentación Taller Integrador III
Finalización etapa experimental
Redacción de artículo científico
Redacción de Tesis
•Jithesh M.N,Prashanth S.R., Sivaprakash K.R and Parida A.K.. (Diciembre 2006). Antioxidative response mechanisms in halophytes: their role in stress defence. IndianAcademy of sciences, 85, 3. •Roland Albert. (28 Mayo 1975). Salt Regulation in Halophytes. Oecologia (berl) , 21, 57-71.•O´Leary J.W, Glenn E.P. and Watson M.C.. (1985). Agricultural production of halophytesirrigated with seawather. Plant and Soil, 89, 311-321.•Lima Morelli L., Prado M. A., (2012) “Extraction optimization for antioxidant phenoliccompounds in red grape jam using ultrasound with a response surface methodology” Ultrasonics Sonochemistry 19, 1144–11.•Hall J.L., Harvey D. M.R., and Flowers T.J.., (1978) “Evidence for the CytoplasmicLocalization of Betaine in Leaf Cells of Suaeda maritime” School of Biological Science, 140, 59-62 •Khan M.A., and Duke N.C. (2001), “Halophytes – A resource for the future”, Wellands ecology and Management, 6, 455-456•Rabbimov, Bekchanov B., and Mukinov T., (2011), “Chemical Composition and Palatability of Some Species of Halophytes”, 1,2, 100-104.•Hassan M., (2006), “Halophytes as cash crops for animal feeds in arid and semi-arid regions”, Biosaline Agriculture and Salinily Tolarance in Plants , 117- 127.•Guvensen A., Gork G. and Ozturk M., (2006), “An overview of the Halophytes in turkey”, Sabkha Ecosystems,2, 9-30.