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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
CARRERA DE ODONTOLOGÍA
“EFECTO INHIBITORIO DEL EXTRACTO DE NONI Y JENGIBRE FRENTE A
Cándida albicans y Streptococcus mutans. ESTUDIO IN VITRO”
Informe final presentado como requisito previo a la obtención del Título de:
ODONTÓLOGA
AUTOR: Herrera Brito Eva Noemí
TUTOR: B.F. Ma. Fernanda Caicedo Breedy M.Sc
Quito, Octubre 2017
ii
© DERECHOS DE AUTOR
Yo, Eva Noemí Herrera Brito en calidad de autora del trabajo de investigación: “EFECTO
INHIBITORIO DEL EXTRACTO DE NONI Y JENGIBRE FRENTE A Cándida albi-
cans y Streptococcus mutans. ESTUDIO IN VITRO”, autorizo a la Universidad Central del
Ecuador a hacer uso de todos los contenidos que me/nos pertenecen o parte de los que con-
tiene esta obra, con fines estrictamente académicos o de investigación.
Los derechos que como autora me corresponden, con excepción de la presente autorización,
seguirán vigentes a mi/nuestro favor, de conformidad con lo establecido en los artículos 5,
6, 8; 19 y demás pertinentes de la Ley de Propiedad Intelectual y su Reglamento.
También, autorizo a la Universidad Central del Ecuador a realizar la digitalización y publi-
cación de este trabajo de investigación en el repositorio virtual, de conformidad a lo dis-
puesto en el Art. 144 de la Ley Orgánica de Educación Superior.
Firma:
-----------------------------------------------------
Eva Noemí Herrera Brito
c.c.n° 050250458-2
iii
APROBACIÓN DEL TRABAJO DE TITULACIÓN POR PARTE DE TUTOR
Yo, María Fernanda Caicedo Breedy, en calidad de tutor del trabajo de titulación “EFEC-
TO INHIBITORIO DEL EXTRACTO DE NONI Y JENGIBRE FRENTE A Cándida albi-
cans y Streptococcus mutans. ESTUDIO IN VITRO”, elaborado por la estudiante Eva
Noemí Herrera Brito, estudiante de la Carrera de Odontología, Facultad de Odontología de
la Universidad Central del Ecuador, considero que el mismo reúne los requisitos y méritos
necesarios en el campo metodológico, en el campo epistemológico y ha superado el control
anti plagio, para ser sometido a la evaluación por parte del jurado examinador que se de-
signe, por lo que lo APRUEBO, a fin de que el trabajo investigativo sea habilitado para
continuar con el proceso de titulación determinado por la Universidad Central del Ecuador.
En la ciudad de Quito a los 15 días del mes de julio del año 2017.
--------------------------------------------------
B.F. María Fernanda Caicedo Breedy MSc.
DOCENTE - TUTOR
c.c.n° 0602384083
iv
APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL/TRIBUNAL
El tribunal constituido por: Dr. Juan Alberto Viteri Moya; Dr. José Israel Ochoa Astudillo.
Luego de aceptar la presentación oral del trabajo de titulación previo a la obtención del
título de Odontóloga General presentado, por la señorita Eva Noemí Herrera Brito.
Con el título:
“EFECTO INHIBITORIO DEL EXTRACTO DE NONI Y JENGIBRE FRENTE A
Cándida albicans y Streptococcus mutans. ESTUDIO IN VITRO”.
Emite el siguiente veredicto:
Fecha:
Para la constancia de lo actuado firman
Nombre Apellido Calificación Firma
Presidente: Dr. Juan Alberto Viteri Moya ……………. ………
Vocal: Dr. José Israel Ochoa Astudillo ……………. ……….
v
DEDICATORIA
En primera instancia dedico a Dios por ser mi tutor en la vida, por brindarme paciencia y
sabiduría para lograr este reto.
A mi madre Targelia, el tesoro más preciado de mi vida, la fuente de mi inspiración, mi
guía y mi ejemplo a seguir, quien ha estado en todo momento de manera incondicional.
A mi hermana Patricia, por ser como un padre que ha estado siempre pendiente en todo a
pesar de la distancia.
A mis hermanos Wilson y Gerardo, que con cada palabra de aliento estuvieron apoyándome
durante mi carrera universitaria.
Mi cuñado Fabián y sobrinos: Dylan, Evelyn y Melany
vi
AGRADECIMIENTO
Agradezco de manera muy especial la colaboración a mi tutora: Dra. María Fernanda Cai-
cedo Breedy, por su confianza, paciencia y sus importantes aportes para la realización de
este trabajo de investigación.
A la Licenciada Yolanda Andrade quien me guió y colaboró en la elaboración de las prue-
bas diagnósticas de los cultivos bacterianos en el Laboratorio Microbiológico de la Facultad
de Odontología de la Universidad Central del Ecuador
Al docente de la Facultad de Ciencias Químicas de la Universidad Central del Ecuador, Dr.
Darwin Roldan por ayudarme en este proyecto tras la elaboración del extracto de jengibre,
y noni.
A mi Alma Mater “Universidad Central del Ecuador” en especial mi querida facultad quien
la llevo en mi corazón.
vii
CONTENIDO
© DERECHOS DE AUTOR .................................................................................................. ii
APROBACIÓN DEL TRABAJO DE TITULACIÓN POR PARTE DE TUTOR ............... iii
APROBACIÓN DE LA PRESENTACION ORAL/TRIBUNAL ........................................ iv
DEDICATORIA ..................................................................................................................... v
AGRADECIMIENTO ........................................................................................................... vi
CONTENIDO ....................................................................................................................... vii
LISTA DE TABLAS .............................................................................................................. x
LISTA DE FIGURAS ........................................................................................................... xi
LISTA DE GRÁFICO .......................................................................................................... xii
LISTA DE ANEXOS .......................................................................................................... xiii
RESUMEN .......................................................................................................................... xiv
ABSTRACT ......................................................................................................................... xv
CAPÍTULO I .......................................................................................................................... 1
MARCO TEÓRICO ............................................................................................................... 1
1. FLORA ORAL ................................................................................................................... 1
1.1 DEFINICIÓN ................................................................................................................ 1
1.2 STREPTOCOCCUS MUTANS ................................................................................... 1
1.2.1 Características generales: ....................................................................................... 1
1.2.3 Streptococcus mutans y su relación con la caries .................................................. 2
1.3 CÁNDIDA ALBICANS ............................................................................................... 2
1.3.1 Características generales ........................................................................................ 2
1.3.2 La Cándida y su relación en la cavidad bucal ........................................................ 2
2. FITOTERAPIA .................................................................................................................. 3
viii
2.1 NONI (MORINDA CITROFILIA) .............................................................................. 3
2.1.1 Origen ..................................................................................................................... 3
2.1.2 Taxonomía .............................................................................................................. 4
2.1.3 Propiedades Químicas ............................................................................................ 4
2.1.4 Propiedades biológicas del noni ............................................................................. 6
Actividad antihelmíntica ..................................................................................................... 6
2.1.5 Uso del noni en odontología .................................................................................. 8
2.2 JENGIBRE: (ZINGIBER OFFICINALE) .................................................................... 9
2.2.1 Origen ..................................................................................................................... 9
2.2.2 Descripción de la planta ....................................................................................... 10
2.2.3 Propiedades químicas: .......................................................................................... 10
2.2.4 Propiedades terapéuticas del jengibre .................................................................. 10
2.2.5 Actividad antibacteriana:...................................................................................... 11
2.2.6 Uso del jengibre en odontología........................................................................... 11
CAPÍTULO II ....................................................................................................................... 13
PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ............................................................................. 13
2.1 Planteamiento del problema: ...................................................................................... 13
2.2 Objetivos ..................................................................................................................... 14
2.2.1 Objetivo General .................................................................................................. 14
2.2.2 Objetivos Específicos ........................................................................................... 14
2.3 Hipótesis ..................................................................................................................... 14
CAPITULO III ..................................................................................................................... 15
3.1 Metodología ................................................................................................................ 15
3.1.1 Tipo de la Investigación ....................................................................................... 15
3.1.2 Población de estudio y muestra ............................................................................ 15
ix
3.2 Criterios de inclusión y exclusión ............................................................................... 16
3.2.1 Criterios de inclusión ........................................................................................... 16
3.2.2 Criterios de exclusión ........................................................................................... 16
3.3 Variables ..................................................................................................................... 16
3.3.1 Conceptualización de las variables ...................................................................... 16
3.4 Operacionalización de las variables ............................................................................ 17
3.5 Procedimientos y técnicas ........................................................................................... 17
3.5.1 Materiales y métodos ........................................................................................... 17
CAPITULO IV ..................................................................................................................... 31
ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS ........................................... 31
4.1 Resultados ................................................................................................................... 31
Tabla 2. Resultados de halos en inhibición sobre Cándida albicans ................................ 31
4.2 Análisis de resultados ................................................................................................. 32
a. CÁNDIDA ALBICANS ........................................................................................ 33
b. STREPTOCOCCUS MUTANS ............................................................................ 37
CAPITULO V ...................................................................................................................... 43
DISCUSIÓN ......................................................................................................................... 43
CAPITULO VI ..................................................................................................................... 45
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ................................................................... 45
CONCLUSIONES ............................................................................................................ 45
RECOMENDACIONES ................................................................................................... 46
BIBLIOGRAFÍA .................................................................................................................. 47
ANEXOS .............................................................................................................................. 50
x
LISTA DE TABLAS
Tabla 1. Resultados de halos en inhibición sobre Streptococcus mutans ............................. 31
Tabla 2. Media de Cándida albicans en mm ......................................................................... 34
Tabla 3. Comparación estadística para inhibición de Cándida albicans............................... 34
Tabla 4. Media Streptococcus mutans en mm ...................................................................... 38
Tabla 5. Comparaciones Streptococcus mutans en mm ....................................................... 39
xi
LISTA DE FIGURAS
Figura 1. Jengibre lavado...................................................................................................... 18
Figura 2. Jengibre picado...................................................................................................... 18
Figura 3. Noni ....................................................................................................................... 19
Figura 4. Jengibre licuado .................................................................................................... 19
Figura 5. Noni licuado .......................................................................................................... 19
Figura 6. Agitador automático .............................................................................................. 20
Figura 7. Filtración de los extractos ..................................................................................... 20
Figura 8. Evaporización de los extracto ............................................................................... 21
Figura 9. Concentraciones de los extractos .......................................................................... 21
Figura 10. Activación cepa S. mutans .................................................................................. 23
Figura 11. Activación de la cepa S. mutans ......................................................................... 23
Figura 12. Cepa C.albicans ................................................................................................... 24
Figura 13. Incubadora de bacterias ....................................................................................... 24
Figura 14. Dextrosa Sabouraud y Agar Hinton .................................................................. 25
Figura 15. Siembra de la C.albicans ..................................................................................... 25
Figura 16. Siembra de S.mutans ........................................................................................... 25
Figura 17. Colocación de discos en C.albicans .................................................................... 27
Figura 18. Colocación de discos en S. mutans ..................................................................... 27
Figura 19. Cajas Petri en la incubadora ................................................................................ 27
Figura 20. Cajas en la jarra de Gaspack ............................................................................... 27
Figura 21. Halos de Inhibición de la Cándida albicans ........................................................ 28
Figura 22. Halo de inhibición para el S mutans ................................................................... 29
Figura 23. Cajas en autoclave ............................................................................................... 29
Figura 24. Almacenamiento temporal .................................................................................. 30
xii
LISTA DE GRÁFICO
Gráfico 1. Media de Cándida albicans.................................................................................. 33
Gráfico 2. Efectividad antimicrobiana según la escala de Duraffourd ................................. 36
Gráfico 3. Media de Sreptococcus Mutans ........................................................................... 37
Gráfico 4. Efectividad antimicrobiana según la escala de Duraffourd ................................ 41
Gráfico 5. Comparación de media de las bacterias .............................................................. 42
xiii
LISTA DE ANEXOS
ANEXO 1: RENUNCIA A TRABAJO ESTADISTICO ..................................................... 50
ANEXO 2: SOLICITUD USO DE LABORATORIO MICROBIOLOGÍA ....................... 51
ANEXO 3: SOLICITUD USO DE LABORATORIO QUÍMICA ...................................... 52
ANEXO 4: MANEJO DE DESECHOS ............................................................................... 53
ANEXO 5. CERTIFICADO DEL SUBCOMITÉ DE ÉTICA DE LA UNIVERSIDAD
CENTRAL DEL ECUADOR ............................................................................................... 54
ANEXO 6. CERTIFICADO DEL SISTEMA ANTIPLAGIO URKUND .......................... 55
ANEXO 7. ABSTRACT ..................................................................................................... 56
xiv
TEMA: Efecto inhibitorio del extracto de noni y jengibre frente a Cándida albicans y
Streptococcus mutans. Estudio in vitro
Autor: Eva Noemí Herrera Brito
Tutor: Dra. María Fernanda Caicedo Breedy
RESUMEN
En la cavidad oral se puede encontrar un sinnúmero de microorganismos, entre estos pode-
mos mencionar al Streptococcus mutans y a la Cándida albicans, reconociendo que estos
microorganismos son unos de los principales agentes etiológicos tanto de la caries dental
como de la candidiasis oral. Objetivo: Evaluar y comparar la efectividad antimicrobiana de
los extractos hidroalcohólicos de jengibre y noni al 0.62% y 2.5% sobre cepas de S. mu-
tans y C. albicans. Materiales y métodos: fueron sembrados en un total de 24 cultivos en
cajas Petri (muestras) divididas en 12 para el S. mutans y 12 para la C. albicans, en cada
cultivo se colocó 5 discos de papel filtro, los 4 discos impregnados con el antimicrobiano
respectivo y con las diluciones de solución de jengibre y noni a dos concentraciones distin-
tas cada una y el quinto disco embebido con el control positivo (clorhexidina al 0.12%)
luego fueron incubadas por 48 horas a 37ºC; al cabo de este periodo se procedió a medir los
halos de inhibición producidos. Resultados: Los datos obtenidos fueron analizados estadís-
ticamente con la prueba T student. Los extractos del noni presentan mayor efectividad so-
bre cepas de Cándida albicans obteniendo un halo de inhibición un promedio de 11mm
(0.62%) y 15 mm (2.5%). Mientras tanto frente a cepas de Streptococcus mutans dieron
como resultados halos de 10mm (0.62%) y 10.21mm (2.5%). Los extractos del jengibre
frente cepas de Cándida albicans no tiene mayor efecto inhibitorio presentando halos de
inhibición muy bajos 0.67mm (0.62%) y 1.83 mm (2.5%); a diferencia frente a cepas de
Streptococcus mutans que se presentó mayor efectividad con halos de inhibición de 5.86
mm (0.62%) y 11.64 mm (2.5%). Conclusión: Al comparar los dos extractos a las mismas
concentraciones se concluye que el Noni es mucho más eficiente presentando un efecto
antimicrobiano mayor en relación con el extracto de jengibre esto en cuanto a cepas de
Streptococcus mutans y Cándida albicans.
PALABRAS CLAVES: CÁNDIDA ALBICANS / JENGIBRE (ZINGIBER OFFICINA-
TE) / NONI (MORINDA CITROFILIA) / STREPTOCOCCUS MUTANS.
xv
Subject: Inhibitory effect of noni and ginger extract against Candida albicans and Strepto-
coccus mutans. In vitro study
Author: Eva Noemi Herrera Brito
Tutor: Dra. Maria Fernanda Caicedo Breedy
ABSTRACT
In the oral cavity can be found a number of microorganisms, among them we can mention
Streptococcus mutans and Candida albicans, recognizing that these microorganisms are
one of the main etiological agents of both dental caries and oral candidiasis, Objetive:
Evaluate and compare the antimicrobial effectiveness of the hydroalcoholic extracts of gin-
ger and noni at 0.62% and 2.5% on strains of S. mutans and C. albicans: These microorgan-
isms were planted in a total of 24 Petri dishes (samples) divided into 12 for S. mutans and
12 for C. albicans, Materials y method: There were placed 5 discs of filter paper. 4 discs
impregnated with the respective antimicrobial and dilutions of ginger and noni solution
were placed in each culture; two different concentrations each and the fifth disk imbibed
with the positive control (0.12% chlorhexidine); afterward there were then incubated for 48
hours at 37 ° C; at the end of this period the inhibition halos produced were measured. Re-
sults: Obtained were statistically analyzed with the student T test, based on that it was con-
cluded that the greatest inhibitory effect against Candida albicans occurs with 2.5% noni,
15.83 mm halo, being even higher than Positive control (chlorhexidine 0.12%). While for
Streptococcus mutans the greatest effect was presented with 2.5% ginger extract with an
inhibition halo of 11.64 mm lower than the control substance (chlorhexidine 0.12%). Con-
clusion: The results allowed to verify the hypothesis of the investigation and that the ex-
tract of Noni demonstrated to have a greater antimicrobial activity to the extract of Ginger
against a Candida albicans to the same concentration, nevertheless, on Streptococcus mu-
tans was the extract of Ginger that originated major Effectiveness in relation to the extract
of not at the same concentration.
KEY WORDS: CANDIDA ALBICANS / GINGER (ZINGIBER OFFICINALE) / NONI
(MORINDA CITRIFOLIA) / STREPTOCOCCUS MUTANS.
1
CAPÍTULO I
MARCO TEÓRICO
1. FLORA ORAL
1.1 DEFINICIÓN
Leeuwuenhoek (1) manifiesta que la flora oral está compuesta por una diversidad de poblacio-
nes microbianas, aproximadamente de unas 350 especies cultivables diferentes y gran cantidad
de anaerobios estos conviven con el huésped en estado normal sin causarle enfermedad.
Según Philip. (2) (p 6)
‘La microflora es beneficiosa para el huésped y contribuye al desarrollo normal de la
fisiología y las defensas del huésped en animales y humanos. Los componentes de esta
microflora puede actuar como patógenos oportunistas cuando se desequilibra el hábitat
o cuando los microorganismo se encuentran en sitios inaccesibles a ellos.’
1.2 STREPTOCOCCUS MUTANS
1.2.1 Características generales:
Negroni (3) menciona que los Streptococcus son microorganismos difundidos en la naturaleza,
algunos son miembros de la flora humana normal, y otros se asocian con enfermedades como
es la caries dental. En 1924 estos microorganismos fueron descritos por Clarke, son de forma
esférica y están agrupados en cadenas de longitud variable, cada uno de los elementos aisla-
damente presentan un diámetro que oscila entre 0,6 y 1 a 2um.
Ojeda et al (4) manifiesta que S. mutans es un microorganismo acidogénico, acidófilo y aci-
dúrico, en consecuencia puede disminuir el pH de 7 a 4,2 en aproximadamente 24 horas. Tam-
2
bién es capaz de elaborar polisacáridos que le permiten lograr su adhesión a las superficies del
diente.
1.2.3 Streptococcus mutans y su relación con la caries
Según Lamont et al (5) la caries dental es una enfermedad infecto-contagiosa, multifactorial y
universal de la dentición humana, caracterizada por interacciones complejas entre microorga-
nismos orales específicos, siendo el principal el Streptococcus mutans.
Ojeda et al (4) menciona que la Caries dental es eventualmente la enfermedad más prevalente
del ser humano. En donde se describe como un proceso dinámico de desmineralización y re-
mineralización, resultado del metabolismo bacteriano sobre la superficie dentaria, que al
transcurrir puede producir una pérdida neta de minerales y posiblemente, resultará la presencia
de una cavidad.
1.3 CÁNDIDA ALBICANS
1.3.1 Características generales
Varios autores (6,7,8) manifiestan que C. albicans suele presentarse como una célula de aspecto
ovalado a manera de levadura que mide entre 2 y 4 micrómetros, grampositivas, con paredes
finas; aunque se han evidenciado su presencia en tejidos infectados con forma de filamentos
de dimensiones variables, extremos redondeados.
1.3.2 La Cándida y su relación en la cavidad bucal
La gran mayoría de las candidiasis orales son generadas por levaduras del género Cándida,
especialmente por Cándida albicans. Se considera que el 0.4% de pacientes que acuden a una
consulta dental presentan síntomas de infección por C. albicans. Se debe considerar que gran
parte de las candidiasis orales no manifiestan síntomas y por ello es muy probable que la pre-
valencia de esta enfermedad sea bastante mayor (6).
3
Philip (2) manifiesta que a la fecha la incidencia de la enfermedad está incrementando en los
países desarrollados, potenciado por algunos factores como el uso generalizado de prótesis
dentales, la xerostomía, las múltiples terapias con antibióticos, inmunosupresores, antineoplá-
sicos, etc., e incluso la mayor supervivencia de los pacientes con inmunodeficiencias como es
el caso de paciente con VIH.
2. FITOTERAPIA
Salvador (9) (p15) menciona:
‘La fitoterapia, etimológicamente “terapéutica con plantas”, se define como la ciencia
que estudia la utilización de los productos de origen vegetal con finalidad terapéutica,
ya sea para prevenir, para atenuar o para curar un estado patológico.’
2.1 NONI (MORINDA CITROFILIA)
2.1.1 Origen
Palioto et al (10) menciona que el Noni (Morinda Citrofilia) especie que se origina en el Sudes-
te de Asia como es en Polinesia, India, Australia, Caribe, y en ciertos países de Centro y sur
América.
Según Lainez et al (11) el noni empezó a intensificarse en nuestro país estos últimos cinco años
debido a la gran demanda por parte de los centros naturistas, es una planta que no necesita
ningún tipo de fertilizantes ni de sustancias inorgánicas; se recomienda el uso de forma na-
tural para así aprovechar todos los beneficios que presenta la planta.
La producción aún sigue siendo escasa en Ecuador en relación con países Asiáticos. Después
de 7-8 meses de siembra se comienza a ver los primeros resultados, su máxima producción
alcanza al quinto año, una de la razones para que exista desinterés en el cultivo de la planta
se debe a que el fruto es muy perecible por lo que dura máximo ocho días sin refrigeración y
por ende presenta inconvenientes en su exportación. Los sitios con mayor frecuencia donde
se encuentra esta fruta son en lugares donde presenta una temperatura sobre los 18°C, como es
4
Guayaquil, Milagro, Oriente donde el producto se le ingiere principalmente en jugos y té; y en
la región sierra sobre todo Quito el noni se vende únicamente bajo pedido (11).
2.1.2 Taxonomía
Según Quito y Torres (12) la clasificación del noni es la siguiente:
Reino: Plantae
Filo: Magnoliophyta
Clase: Magnoliopsida
Orden: Rubiales
Familia: Rubiaceae
Género:Morinda
Especie: Citrofilia
Ulloa et al (13) menciona que el noni es un arbusto de tamaño aproximado de 3-10 m de altu-
ra, con grandes hojas elípticas de color verde brillante de 5-17cm de largo y de 10-40cm de
ancho. Sus flores tubulares blancas y su distintivo fruto de forma ovoide que varía de verde a
amarillo hasta casi blanco al momento de su recolección. Este fruto puede llegar a medir de
(3-10cm de largo y de 3-6 cm de ancho) cubierta por unas pequeñas protuberancias, presenta
una semilla que son triangulares y de color castaño rojizo.
El fruto cuando se encuentra maduro emite un fuerte olor a rancio muy semejante al acido
butírico; la pulpa es amarga y jugosa de color amarillo opaco o blanco y de aspecto gelatinoso
(13).
2.1.3 Propiedades Químicas
Según Barani et al (14) y Ulloa et al (13) Los componentes identificados en la planta Morinda
Citrofilia son:
Compuestos fenólicos: Los más frecuentes son: antraquinonas (damnacanthal, morindone,
morindin etc), aucubino, asperuloside y escopoletina. alizarina, acubina, nor-damnacantal,
rubiadina
5
Compuestos alcaloides: Xeronina.
Ácidos orgánicos: Como el ácido caproico y caprílico.
Ulloa et al (13) mencionan que según dependiendo la parte de la planta que se analice varía su
composición química. La fruta contiene 90% de agua y los componentes mayoritarios de la
materia seca son sólidos solubles, fibra dietética y proteínas. La materia seca del jugo contie-
ne
Contenido proteico en 11%.
Aminoácidos como: acido aspártico, el ácido glutámico e isoleucina
Contenido mineral: Potasio, Azufre, Calcio, Fosforo y Selenio
Compuestos fenólicos: damnacantal, escopoletina, morindona, alizarina, acubina, nor-
damnacantal, rubiadina.
También se han identificado aproximadamente 51compuestos del aroma en la fruta madu-
ra de noni, incluyendo ácidos orgánicos, alcoholes, esteres, cetonas y lactonas.
Por otro lado, Pushpa et al (15) el noni está compuesto de:
Vitaminas: Posee un contenido de vitamina C elevado, seguidos por vitaminas A, B1 a
B12, C, D, E, ácido fólico, pantoténico Ácido, biotina.
Minerales oligoelementos: Calcio, cromo, Cobre, Cobalto, Boro, Magnesio, Hierro, Selenio,
Manganeso, Molibdeno, Potasio, Yodo, Zinc, Fósforo.
Hierba y extractos botánicos: Incluyen hierba de alfalfa, polen de abeja, Extracto de Gingko
Biloba, Hierba de cola de caballo, Mora India, extracto de semilla de uva.
Productos bioactivos: Cafeína, efedrina, L-carnitina, creatina, licopeno.
Los resultados de un estudio previo realizado por Barani et al (14) indican que noni contiene
componentes solubles en agua que interfieren con la conversión morfológica de C. albicans, es
decir, de una levadura celular a una forma filamentosa por lo tanto podría tener importantes
efectos terapéuticos contra todas las infecciones por candida.
6
2.1.4 Propiedades biológicas del noni
Actividad antimicrobiana
Torres et al (16) y Ulloa et al (13) mencionan que los componentes fenólicos como la antraqui-
nona, acubina, alizarina y escopoletina presentes en diferentes partes del noni, han demostrado
combatir cepas de Staphylococcus aureus, Bacillus subtilus, Echerichia coli, Salmonella y
Shigella.
Así mismo la escopoletina interviene en la inhibición de la bacteria Helicobacter pylori, ayu-
dando en el tratamiento de pacientes que presentan ulcera gástrica. Estudios anteriores de-
muestran que el extracto de las hojas del noni eliminó al 89% de cepas de Mycobacterium
tuberculosis demostrando ser casi tan eficaz como la Rifampicina que inhibió un 97 % de la
bacteria y a la misma concentración (16).
Según Barani (14) a concentraciones menores de 0.1% el extracto de noni es efectivo para Cán-
dida albicans mientras que Cruz (17) en su estudio demuestra que 32 microlitros de extracto de
noni presenta efecto inhibitorio en S. mutans con un halo de 2 cm.
Actividad antihelmíntica
El extracto etanólico de hojas tiernas de la planta de noni ayudan en la eliminación del Áscaris
lumbricoides en tan solo 24 horas (16).
Actividad antinflamatoria
Estudios han demostrado que el jugo de noni presenta acción sobre los procesos inflamatorios
actuando sobre la enzima ciclooxigenasa, de esta manera, consiguiendo resultados similares a
los medicamentos tradicionales no esteroides como la aspirina. (13).
Actividad analgésica
Al jugo del Noni se le atribuye propiedades analgésicas y sedativas, se menciona que su efica-
cia analgésica es un 75% sin presentar efectos colaterales ni adictivos en comparación con la
morfina (16).
7
Uso tópico
Se aplica como crema hidratante para reducir los signos de envejecimiento, de forma directa
se usa para aliviar heridas, llagas y quemaduras, en infecciones se aplica una mezcla de hojas
y frutas (15).
Actividad anticarcinogénica y antitumoral
Pushpa et al (15) mencionan que en ensayos clínicos realizados por la Universidad de Hawai,
se encontró que la antraquinona encontrada en el noni, interviene en el cambio de las células
cancerosas a la normalidad.
Los componentes del jugo del noni como ácido glucurónico, galactosa, arabinosa y ramnosa
han demostrado presentar efectos estimuladores de sustancias como es la citocina la cual per-
mite minimizar el ciclo celular de las células tumorales, incrementa la respuesta de células a
otras células inmunizadas que luchan contra el crecimiento del tumor y ejercen una actividad
macrófaga haciendo un papel importante en la muerte del tumor (13).
Según Torres et al (16) menciona que la Asociación Americana para la Investigación del Cán-
cer reportó que el jugo del fruto de noni combinado con otros agentes quimioterapéuticos me-
jora los efectos curativos y el tiempo de supervivencia de enfermos con cáncer.
Actividad inmunológica
Estudios realizados por Hokama en la Escuela de Medicina de la Universidad de Chicago,
Illinois Institute of Technology y la Unión Europea, reportan que el timo de los animales tra-
tados con jugo de noni se encontraban muy desarrollados, pesando 1.7 veces más en relación
con los animales de control, concluyendo que el jugo del noni puede mejorar la función del
sistema inmunitario al estimular el crecimiento del timo (16).
8
2.1.5 Uso del noni en odontología
Disminuye el dolor postoperatorio:
Cornejo (18) estudió en un total de 58 pacientes el uso de la sustancia activa del noni, demos-
trando que al ser ingerida a dosis de 30 g presenta efecto analgésico post exodoncia simple a
las dos horas; por lo que se recomienda en pacientes sistémicamente comprometidos y en
pacientes que presenten algún tipo de alergia a los analgésicos comunes. Se puede hacer uso
en polvo, donde se mezcla con Glicol como vehículo y se aplica en el sitio donde presenta la
hinchazón y de esa manera alivia el dolor o también se puede ingerir el extracto fluido con
agua caliente.
Irrigante Endodóntico
Pushpa (15) y Kumaram et al (19) mencionan que una concentración del 6% de este jugo puede
suprimir bacterias como la Enterecoccus faecalis que está presente en el conducto radicular.
Estudios realizados corroboran que la eficacia Morinda Citrofilia fue similar a un hipoclorito
de sodio en conjugación con EDTA y a un gluconato de clorhexidina, llegando hacer una po-
sible alternativa al uso como irrigante intracanal.
Periodontitis, Gingivitis y Halitosis
Se ha demostrado que el consumo de jugo de noni dos veces al día, alivia significativamente la
inflamación gingival y por ende evita una enfermedad periodontal (15).
Tratamiento de la úlcera aftosa
Debido a sus propiedades anti-inflamatorio y anti-oxidante la utilización de Morinda Citrofilia
en forma de polvo ayuda a reducir los síntomas sobre las ulceras (15).
Tratamiento en candidiasis oral
Barani (14) en su estudio demuestra que el extracto de Morinda Citrofilia (noni) manifiesta
efectos anti-fúngico frente Cándida albicans; el efecto varía según su concentración, en la in-
9
vestigación se realizó adicionalmente un ensayo para conocer la toxicidad de la fruta, los re-
sultados demostraron que hasta 750 ml de zumo de fruta tomada por día es bien tolerada y sin
presentar efectos tóxicos. Por lo tanto se puede usar como producto terapéutico, realizando
preparaciones de Morinda citrofilia en pacientes que presenta candidiasis oral.
2.1.6 Interacciones terapéuticas
Según Pushpa et al (15) las complicaciones que podría presentar el consumo de noni:
Trastornos renales: No se deben usar los productos de noni en pacientes que presenta
problemas renales debidos que crea retención de iones de potasio y por ende retención de
agua que aumenta la carga en los riñones.
Medicamentos: Pacientes que toman medicamentos como la cumarina y warfarina deben
abstenerse de tomar estos productos debidos que puede existir un sinergismo de medica-
mentos.
2.2 JENGIBRE: (ZINGIBER OFFICINALE)
Según Anjan (20) el jengibre presenta las siguientes características generales:
Familia: ZINGIBERÁCEAE
Color: Marrón amarillento o marro claro
Aspectos: Presenta una superficie externa estrías longitudinales y transversales
Olor: Aromático
Sabor: Picante
La planta llega a tener 90 cm de altura, con largas hojas de 20 cm.
2.2.1 Origen
Según Zambrano (21) el jengibre (Zingiber officinale) es originario de zonas tropicales y sub-
tropicales del mundo como es: Asia, La India, y China, Australia y Jamaica. Sin embargo, es
posible encontrar una extensa variabilidad genética primordialmente en la China e India; en
nuestro país podemos encontrar de manera destacada en la provincia de Manabí.
10
2.2.2 Descripción de la planta
Según Berdonces (22) el jengibre es una planta herbácea, con un rizoma perenne, nudoso y
tuberoso, su corteza de color amarillo ceniciento con rugosidades transversales.
Tallo: El tallo llega a medir aproximadamente 1m de altura, de color rojizo, oblicuos, erectos,
redondos.
Hojas: Sus hojas salen del rizoma, son lanceoladas, estrechas, lineales y agudas, miden de 6-
10 cm de longitud y 2cm de ancho.
Flores: Las flores del jengibre son únicos irregulares, fragantes, pequeñas y de color amarillo
verdoso, se agrupan en espigas terminales que salen del tallo floral. El fruto es una cápsula.
2.2.3 Propiedades químicas:
Según Lete et al (23) el rizoma del jengibre presenta compuestos fenólicos volátiles y no volá-
tiles como se describen a continuación:
Compuestos fenólicos volátiles, son aceites esenciales predominando el zingiberol lo que
le confiere el aroma característico de esta planta, y compone del 1-3% del peso del jen-
gibre
Compuestos fenólicos no volátiles o conocidas como sustancias picantes: Gingeroles, sho-
gaols, paradols, zingerones.
Los gingeroles y shogaols son los componentes activos y se les atribuye la mayor actividad
farmacológica del jengibre. El olor característico y el sabor jengibre son causados por la mez-
cla de zingerone, shogaols y gingerol.
Según Salvador (9) el rizoma también contiene diarilheptanoides: difenilheptenonas, dife-
nilheptanonoles, figenilheptanodioles. Otros componentes son: almidón (aproximadamente un
50%), diterpenos, acido 6-gingesulfonico y monoacil digalactosil gliceroles.
2.2.4 Propiedades terapéuticas del jengibre
El jengibre presenta propiedades de antinflamatorio gracias a los gingeroles que son potentes
inhibidores del metabolismo del ácido araquidónico tanto por la vía de la cicloxigenasa como
de la lipoxigenasa (9). Un estudio realizado por Mohammad (24) evidencia que el consumo de
11
jengibre durante 10 semanas reduce los índices inflamatorios que contribuyen a la arteroscle-
rosis en las mujeres con sobrepeso.
Además de tener propiedades de antioxidante y antiglucemiante, contribuye a la pérdida de
peso, favorece la recuperación de enfermedades reumáticas, previene cáncer de piel y colon,
así como enfermedades respiratorias y cardiovasculares (20). Menciona Del Villar Ruiz et al (25)
que en muchos países utilizan el té de jengibre como un remedio para tratar los resfriados y
aliviar los dolores menstruales.
Zambrano (21) también menciona que el jengibre se utiliza como estimulante gastrointestinal.
Según Garcia (9) los gingeroles y sogaoles presentan efectos locales sobre el tracto gastointes-
tinal disminuyendo el mareo, vomito.
2.2.5 Actividad antibacteriana:
Arash (26) en su estudio evaluó los efectos de diferentes concentraciones de extracto de jengi-
bre obteniendo como resultado efecto antibacteriano significativo sobre S. mutans y S. sangui-
nis.
Según Anjan (20) una concentración de 1.25% de extracto de jengibre en etanol muestra efectos
inhibitorios contra Streptococcus mutans, y si su concentración aumenta al 10 % presenta
efecto inhibotorio en contra de Cándida albicans.
2.2.6 Uso del jengibre en odontología
Efectos antihemorrágicos
Según Guerrero (27) la utilización de enjuagues bucales a base de jengibre presentan el efecto
de disminución de hemorragias en piezas dentales en pacientes que son sometidos a cirugías
periodontales menores.
12
Efectos analgésicos
Menciona Arash et al (26) que los rizomas del jengibre por su contenido de gingeroles y Sho-
gaols muestra efectos analgésicos en el tratamiento de patologías orales.
Irrigante endodóntico
Un estudio in vitro realizado por Souza (28) mediante una preparación mecánica en la cual se
utilizó un 20% extracto de glicólico de jengibre como irrigante, dando como resultado la dis-
minución significativa de Echerichia coli, Enterecoccus faecalis y la eliminación de Cándida
albicans un 79.16%; la información de este estudio corrobora que a partir del 10% el jengibre
presenta buenos resultados frente a Cándida (20).
2.2.7 Interacciones terapéuticas
Según Arash et al (26) se debe considerar algunas precauciones relacionadas al consumo del
jengibre; así la Administración Americana de Alimentos y Medicamentos en la Revista Inter-
nacional de Odontología menciona que si se consume en cantidades racionales el jengibre no
tiene efectos secundarios; sin embargo puede producir interferencia con algunos medicamen-
tos como es la warfarina, y en paciente que presenta cálculos biliares está contraindicado ya
que aumenta la producción de bilis. En pacientes con ulcera estomacal y en pacientes con en-
fermedad intestinal inflamatoria muestran reacciones alérgicas, quemaduras en el estómago,
hinchazón y náusea al momento que se consume en grandes cantidades, además puede influir
en la presión arterial y arritmia.
13
CAPÍTULO II
PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
2.1 Planteamiento del problema:
Varios autores (4,29,30) mencionan que según la organización mundial de la salud (OMS),
una de las principales causas de morbilidad dental es la caries; siendo el Streptococcus mutans
uno de los microrganismos más importantes de esta patología caracterizándose como coloni-
zadores de placa dentobacteriana que rodea a los dientes. De la misma manera, la cavidad oral
es un ambiente favorable para la colonización de infecciones fúngicas oportunistas como es la
presencia de Cándida albicans siendo el principal agente etiológico de la candidiasis oral.
Por otro lado, Salvador (9) indica que la medicina natural es considerada actualmente como
una de las mejores alternativas de tratamiento; ya sea como un medio preventivo o curativo de
un estado patológico presentando menos efectos secundarios que los fármacos sintéticos.
Según Barani et al (14), Anjan (20) el noni y jengibre son considerados como agentes antimicro-
bianos. En este contexto, esta investigación evaluará la efectividad de estos dos productos na-
turales en dos diferentes concentraciones para determinar su eficacia frente a microorganismos
de flora oral: Streptococcus mutans y Cándida albicans.
Debido a la problemática indicada surge la siguiente pregunta de investigación:
¿El Noni y Jengibre tienen igual efecto antimicrobiano en el control de los microorganismos
Streptococcus mutans y Cándida albicans en la cavidad bucal?
14
2.2 Objetivos
2.2.1 Objetivo General
Evaluar comparativamente el efecto inhibitorio del extracto de Noni (Morinda Citrofilia) y
Jengibre (Zingiber Officinate) sobre cepas de Streptococcus mutans y Cándida albicans a dife-
rentes concentraciones.
2.2.2 Objetivos Específicos
Determinar el poder inhibitorio del extracto de Noni a diferentes concentraciones 0.62%
y 2.5% frente cepas de Streptococcus Mutans y Cándida Albicans
Determinar el poder inhibitorio del extracto de Jengibre a diferentes concentraciones
0.62% y 2.5% frente cepas de Streptococcus Mutans y Cándida Albicans
Establecer diferencias de inhibición entre el extracto de Noni y Jengibre en las distintas
concentraciones frente a Streptococcus mutans y Cándida albicans.
2.3 Hipótesis
(HI) El extracto de Noni tiene una actividad antimicrobiana mayor al extracto de Jengibre
frente a Streptococcus mutans y Cándida albicans a la misma concentración.
(HO) El extracto de Noni no tiene una actividad antimicrobiana mayor al extracto de Jen-
gibre frente a Streptococcus mutans y Cándida albicans a la misma concentración.
15
CAPITULO III
3.1 Metodología
3.1.1 Tipo de la Investigación
De acuerdo a las características de investigación y de los objetivos planteados se determina un
estudio de tipo experimental “in vitro”, cuantitativo y descriptivo.
Mediante este estudio se tratará de verificar grado de inhibición que producen las sustancias en
estudio en relación a su concentración y a los microorganismos evaluados.
3.1.2 Población de estudio y muestra
Población: Consta de un número infinito de cepas de Streptococcus mutans y Cándida albi-
cans.
Tamaño y selección de la muestra: Para el cálculo de la muestra se utilizó el muestreo no
probabilístico por conveniencia ya que los elementos elegidos son a juicio del investigador, en
consecuencia no aplica la aleatorización equitativa de la muestra, ya que son seleccionadas de
manera ordenada o secuencial y no al azar.
Se tomó el inoculo de cada cepa: Streptococcus mutans y la Cándida albicans bajo la asesoría
de la profesional técnica del Laboratorio de microbiología de la Facultad de Odontología de la
Universidad Central del Ecuador, para obtener un total de 24 muestras divididas de la siguien-
te manera:
12 cultivos para evaluar efecto inhibitorio de los extractos de noni y jengibre al 0.62%
y 2.5% cada uno sobre el Streptococcus mutans, utilizando como control positivo la
clorhexidina al 0.12%.
12 cultivos para evaluar efecto inhibitorio de los extractos de noni y jengibre al 0.62%
y 2.5% cada uno, sobre la Cándida albicans, utilizando como control positivo la clor-
hexidina al 0.12%.
16
3.2 Criterios de inclusión y exclusión
3.2.1 Criterios de inclusión
Microorganismos libres de contacto con soluciones antimicrobianas.
Cepas puras de Streptococcus mutans y Cándida albicans.
Extractos de jengibre y noni a diferentes concentraciones (0.62% y 2.5%)
3.2.2 Criterios de exclusión
Cultivos manipulados sin protocolos adecuados
Cajas Petri defectuosas
3.3 Variables
3.3.1 Conceptualización de las variables
Variable independiente
Extracto de Noni (Morinda Citrofilia) a 0.62 % y 2.5%: sustancia obtenida por extracción
de una parte de una materia prima (noni) usando 100 ml de solución hidroalcohólica (9).
Extracto de Jengibre (Zingiber Officinate) a 0.62 % y 2.5%: Sustancia obtenida por ex-
tracción de una parte de una materia prima (jengibre) usando 100 ml de solución hidroal-
cohólica (9).
Variable dependiente
Inhibición de Streptococcus mutans: Representa la sensibilidad del microorganismo frente
al antimicrobiano (jengibre y noni) (31).
Inhibición de Cándida albicans: Representa la sensibilidad del microorganismo frente al
antimicrobiano (jengibre y noni) (31).
Variable de control:
Gluconato de clorhexidina al 0.12%: Es un antiséptico de gran potencia lo que le permite
la adhesión a nivel bucal sobre dientes, tejidos blandos y bacterias (32)
17
3.4 Operacionalización de las variables
Tabla 1. Operacionalización de las variables
VARIABLE DEFINICIÓN
OPERACIONAL TIPO
CLASIFICA-
CIÓN
INDICADOR
CATEGÓRICO
ESCALAS DE
MEDICIÓN
EXTRACTO
DE NONI
Materia obtenida me-
diante la extracción del
fruto del Noni (9)
Independiente Cuantitativa
Concentración del Extracto de
Noni
0,62 %
2,5 %
Nominal
1
2
EXTRACTO
DE JENGI-
BRE
Sustancia derivada de la
extracción del Jengibre (9)
Independiente Cuantitativa
Concentración del Extracto de
Jengibre
0,62 %
2,5 %
Nominal
1
2
GLUCONATO
DE CLOR-
HEXIDINA
Fármaco antibacteriano,
antiséptico que será
utilizado como control
positivo (33)
Independiente Cuantitativa Concentración
0,12%
Nominal
1
INHIBICIÓN
DE CANDIDA
ALBICANS
Sensibilidad del micro-
organismo frente al
antimicrobiano (31).
Dependiente Cuantitativa
Diámetro de halo de inhibi-
ción en milímetros (mm)
Nula (-) hasta 8mm
Sensible (+) 9-14mm
Muy sensible (++) 15-19mm
Sumamente sensible (+++)
mayor de 20mm
Ordinal
INHIBICIÓN
STREPTOCO-
CCUS MU-
TANS
Sensibilidad del micro-
organismo frente al
antimicrobiano (31).
Dependiente Cuantitativa
Diámetro de halo de inhibi-
ción en milímetros (mm)
Nula (-) hasta 8mm
Sensible (+) 9-14mm
Muy sensible (++) 15-19mm
Sumamente sensible (+++)
mayor de 20mm
Ordinal
Fuente: elaborado por la investigadora
3.5 Procedimientos y técnicas
3.5.1 Materiales y métodos
3.5.1.1 Elaboración de los extractos de jengibre y noni.
Se realizó en el laboratorio de Química Analítica de la Facultad de Ciencias Químicas de la
Universidad Central del Ecuador. Los materiales y reactivos utilizados fueron:
Refrigerante de Liebig
Codo de destilación
18
Cabezal de destilación
Probeta de 50 ml
Balón de 250 ml
Balón de 500 ml
Agua destilada
Embudo de decantación o separación de 250 ml.
Pinzas
Soportes universales
Embudo de gravitación
Alcohol potable 70%,
Vaselina
Muestra de JENGIBRE (Zingiber Officinale).
Muestra de NONI (Morinda Citrofilia)
Procedimiento
Se utilizó un kilogramo de rizoma de jengibre adquirido en el mercado de Santa Clara (Quito-
Ecuador), se eliminaron las raíces en mal estado, se lavó con abundante agua y una vez limpio
se desintegró en trozos finos tal como se muestra en las figuras 1 y 2.
Figura 1. Jengibre lavado
Fuente: Autor
Figura 2. Jengibre picado
Fuente: Autor
19
De la misma manera, se adquirió 2 kilogramos de noni en el mercado de Santa Clara (Quito-
Ecuador) se seleccionaron los frutos que se encontraban en buen estado, especialmente los que
eran de color blanco translúcido ya que según Barani (14) la propiedad antimicrobiana del noni
aumenta a medida que la fruta madura, tal como se muestra en la figura 3.
Figura 3. Noni
Fuente: Autor
Luego se desinfectó las frutas con solución desinfectante compuesta por 60 % de alcohol po-
table y 40 % de agua, para proceder con el despulpado de las frutas y obtención del extracto de
principios activos mediante licuado y maceración en solución hidroalcóholica durante 4 días
con agitación continúa en el agitador automático y a temperatura ambiente, según las figuras
4, 5 y 6.
Figura 4. Jengibre licuado
Fuente: Autor Figura 5. Noni licuado
Fuente: Autor
20
Pasado este tiempo se procedió a la filtración a través de papel filtro de tamaño de poro de 50
micrómetros, según se observa en la figura 7.
Figura 7. Filtración de los extractos
Fuente: Autor
El siguiente paso fue la evaporación de la solución, colocando el filtrado durante 12 horas a
50ºC en una estufa de evaporación, según la figura 8.
Figura 6. Agitador automático
Fuente: Autor
21
Figura 8. Evaporización de los extracto
Fuente: Autor
Finalmente se realizó el envasado del extracto en recipientes herméticos en frasco ámbar para
posterior irradiación con luz ultravioleta por 60 minutos para eliminación de posibles microor-
ganismos contaminantes en el extracto hidroalcohólico obtenido (Figura 9).
Figura 9. Concentraciones de los extractos
Fuente: Autor
22
Para alcanzar las concentraciones de estudio (0,62 % y 2, 5 %) se realizan las siguientes dilu-
ciones:
Para la primera concentración 0.62% se toman 1,25 ml de extracto concentrado y se lleva
a 100 ml con solución hidroalcohólica
Para la segunda concentración de 2.5 % se toman 5 ml del extracto concentrado y se lleva
a 100 ml con solución hidroalcohólica.
Modo y tiempo de almacenamiento:
Posteriormente los extractos fueron conservados herméticamente en frasco ámbar ya que son
sustancias que son alteradas por la acción de la luz del sol; sometidos a una refrigeración de
4-8 ºC para su posterior utilización en el momento de realizar las pruebas de sensibilidad
donde trascurrió un periodo de 24 horas a partir de su conservación. Durante la práctica se
trabajó a una temperatura fresca de 8 -15 ºC, libre de contacto humedad y lejos de radiaciones
directas del sol.
3.5.1.2 Ensayo microbiológico
Se realizó en el Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología de la Universidad
Central del Ecuador. Los materiales y reactivos utilizados fueron:
Jarra de anaerobiosis Gaspak
Sobres generadores de anaerobiosis (anaerogen 2.5 L)
Estufa
Incubadora
Muestra biológica cepas de Streptococcus Mutans ATCC® 35668™
Muestra biológica de cepas de Cándida Albicans
Cajas Petri de 90x15mm # 24
12 medios de cultivo de Agar sangre
12 medios de cultivo de Agar Sabouraud
Micropipeta desechables
Pinzas
23
Mechero
Guantes
Mascarillas
Discos de papel filtro de 6 mm
Asas bacteriológicas
Hisopos estériles
Discos de Papel Absorbente
Obtención y Activación del Streptococcus mutans
La cepa liofilizada de Streptococcus mutans ATCC® 35668™ fue obtenida en la empresa
Medibac, fue conservada en temperaturas bajas (2-8ºC). Las cepas fueron activadas en sus
condiciones óptimas de incubación durante 48 horas a 35±2ºC y atmosfera de 5% de CO2 en el
laboratorio clínico de la Facultad de Ciencias Químicas de la Universidad Central establecién-
dose hasta obtener turbidez de 0.5 MacFarland (1.5 × 108 UFC/ ml)., según las figuras 10 y 11.
Figura 10. Activación cepa S. mutans
Fuente: Autor
Figura 11. Activación de la cepa S. mutans
Fuente: Autor
24
Obtención y Activación de Cándida albicans
La cepa de levadura fue donada con exclusivo uso experimental por parte del laboratorio de
Microbiología de la Facultad de Odontología de la Universidad Central. Para reactivar la Cán-
dida albicans se utilizó caldo de Dextrosa Sabouraud, en el cual se dejó incubar en un pe-
riodo de 48 horas a una temperatura de 37ºC para su posterior sembrado, estableciéndose su
viabilidad según la turbidez obtenida de 0.5 MacFarland (1.5 × 108 UFC/ ml).
Figura 12. Cepa C.albicans
Fuente: Autor
Figura 13. Incubadora de bacterias
Fuente: Autor
Preparación e inoculación en los medios de cultivo
Se preparó dos medios de cultivo, 12 cajas Petri con agar Mueller Hinton suplementado con el
5% de sangre para el Streptococcus mutans y 12 cajas Petri con Dextrosa Sabouraud agar para
la Cándida albicans., obteniendo un total de 24 cajas (Figura 14)
25
Se colocaron las 24 cajas Petri en la cámara de flujo laminar donde se procedió a sembrar con
la técnica del hisopado de superficie completa, se utilizó un hisopo estéril para los microrga-
nismos en estudio y sembrar distribuyendo en toda la superficie en tres direcciones por agota-
miento, según la figura 15 y 16.
Figura 15. Siembra de la C.albicans
Fuente: Autor
Figura 16. Siembra de S.mutans
Fuente: Autor
Figura 14. Dextrosa Sabouraud y Agar Hinton
Fuente: Autor
26
Aplicación de los discos a las placas inoculadas
Se aplicó el método de difusión en disco (Kirby - Bauer), en la cual con una pinza estéril colo-
camos 5 discos de papel filtro en cada caja Petri, según la siguiente descripción aplicada a
ambos microorganismos investigados (Figuras 17 y 18).
Disco impregnado con extracto de Noni al 0.62%
Disco impregnado con extracto de Noni al 2.5%
Disco impregnado con extracto de Jengibre al 0.62%
Disco impregnado con extracto de Jengibre al 2.5%
Disco impregnado con Gluconato de Clorhexidina al 0.12%.
27
Figura 17. Colocación de discos en C.albicans
Fuente: Autor
Figura 18. Colocación de discos en S. mutans
Fuente: Autor
Para la incubación se colocó las 12 cajas inoculadas con S. mutans en la jarra Gaspack para
dar una incubación en condiciones anaeróbicas de 35± 2ºC y CO2 al 5%. Mientras que las 12
cajas de inoculadas con C. albicans se hizo la incubación a una temperatura de 35± 2ºC por 48
horas (Figuras 19 y 20).
Figura 19. Cajas Petri en la incubadora
Fuente: Autor Figura 20. Cajas en la jarra de Gaspack
Fuente: Autor
28
Lectura e interpretación de los resultados:
Transcurrido el periodo de incubación se procedió a realizar la medición de los halos de inhi-
bición alrededor de los discos, aplicando la técnica de observación directa con la ayuda de una
regla flexible milimetrada, la longitud de esta esta zona es proporcional a la actividad inhibito-
ria de las diferentes concentraciones de los extractos de noni, jengibre y de la clorhexidina, se
utilizó como referente una escala de sensibilidad definida por Duraffourd (Figura 21 y 22)
Nula (-) si fue inferior o igual a 8mm
Sensible (Sensible =+) de 9-14mm
Muy sensible (muy sensible ++) de 15-19mm
Sumamente sensible (S.S = +++) si fue igual o superior a de 20mm
Figura 21. Halos de Inhibición de la Cándida albicans
Fuente: Autor
29
Eliminación de los desechos:
Finalizada la lectura de resultados se procede a la recolección interna de desechos, colocando
las 24 cajas Petri en la autoclave para esterilizar, luego se colocó en fundas para desechos in-
fecciosos señalizando que es un desecho altamente contaminante, finalmente se procedió al
almacenamiento temporal para su posterior disposición final.
Figura 22. Halo de inhibición para el S mutans
Fuente: Autor
Figura 23. Cajas en autoclave
Fuente: Autor
30
Figura 24. Almacenamiento temporal
Fuente: Autor
31
CAPITULO IV
ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS
4.1 Resultados
Tabla 1. Resultados de halos en inhibición sobre Streptococcus mutans
Repeticiones
Halo de inhibición en milímetros (mm)
JENGIBRE
0.62%
JENGIBRE
2.5%
NONI
0.62%
NONI
2.5%
CLORHEXIDINA
0.12%
1 5 13 9 11 15
2 6 11 10 9 16
3 7 13 11 11 15
4 5 11 10 10 17
5 6 12 10 9 16
6 5 13 9 11 15
7 6 12 10 11 16
8 7 13 11 9 16
9 5 11 10 10 17
10 7 12 9 11 17
11 7 11 10 10 17
12 6 10 10 10 16
Fuente: Investigación
Elaboración: La autora
Tabla 2. Resultados de halos en inhibición sobre Cándida albicans
Repeticiones
Halo de inhibición en milímetros (mm)
JENGIBRE
0.62%
JENGIBRE
2.5%
NONI
0.62%
NONI
2.5%
CLORHEXIDINA
0.12%
1 2 2 11 16 12
2 0 3 12 15 14
3 0 0 10 15 12
4 0 2 11 17 13
5 2 3 12 14 15
6 0 2 12 17 14
7 0 3 12 17 14
8 0 2 11 15 15
9 2 0 10 16 12
10 0 0 11 16 13
11 2 2 12 15 13
12 0 3 12 17 15
Fuente: Investigación
Elaboración: La autora
32
4.2 Análisis de resultados
Una vez obtenido los datos de la medición de los halos de inhibición se procedió a registrar la
información en un archivo de Excel, para luego ser analizados mediante un programa estadís-
tico informático SPSS, para determinar si existen diferencias significativas entre las diferentes
sustancias estudiadas y los microorganismos en análisis. Se aplicaron pruebas paramétricas
como es la prueba de TStudent. También se analizaron según los criterios de Duraffourd.
33
a. CÁNDIDA ALBICANS
Análisis de medias
Al analizar la media de los halos de inhibición en milímetros de ambos extractos en relación al
control positivo de clorhexidina al 0.12% frente a cándida albicans, se tiene que la Clorexidina
al 0,12% como patrón de comparación tiene un promedio de 13,50 mm, el extracto de Noni al
0,62% presenta una media de halo de inhibición de 11,33 mm siendo la sustancia y concentra-
ción más cercana al patrón aunque inferior; el extracto de noni al 2,5% tiene una media de un
halo inhibitorio de 15,83 mm superando la media del patrón; por otro lado, el extracto de jen-
gibre al 2,5% presenta una media de halo de inhibición de 1.83 mm y por último el extracto
de jengibre en su concentración al 0,62% con un promedio de halo de 0,67 mm; es decir, muy
alejado de la media de la sustancia control utilizada como patrón (gráfico 1)
Gráfico 1. Media de Cándida albicans
Fuente: Investigación
Elaboración: La autora
Análisis T student
Para aceptar o no la hipótesis se compara los valores obtenidos en los dos extractos a diferen-
tes concentraciones, mediante T-student, el análisis se realiza en pares. Las hipótesis a demos-
trar en base al nivel de significación son:
jengibre
0,62%
jengibre
(mm)2,5%
Noni mm
(0,62%)
Noni (mm)
2,5%
Clorexidina
(mm) 0,12%
0,6
7
1,8
3
11
,33
15
,83
13
,50
Media Cándida albicans en mm
34
HI: si es superior a 0,05 se acepta que los halos de inhibición de Cándida albicans obtenidos
en las muestras son significativamente distintos.
Ho: si es inferior a 0,05 se acepta que los halos de inhibición Cándida albicans obtenidos en
las muestras NO son significativamente distintos.
La tabla 2 refiere la estadística descriptiva del Jengibre y el Noni en las dos concentraciones
estudiadas en relación a la inhibición de Cándida albicans.
Tabla 2. Media de Cándida albicans en mm
Comparaciones Cándida
albicans en mm Media N Desviación estándar Media de error estándar
Jengibre (mm) 0,62% ,6667 12 ,98473 ,28427
Jengibre (mm)2,5% 1,8333 12 1,19342 ,34451
Noni mm (0,62%) 11,3333 12 ,77850 ,22473
Noni (mm) 2,5% 15,8333 12 1,02986 ,29729
Fuente: Investigación
Elaboración: Luis Yumi
En la tabla 3 se muestra el resultado del análisis estadístico T student en pares para las medi-
ciones de halos de inhibición obtenidos en Cándida albicans.
Tabla 3. Comparación estadística para inhibición de Cándida albicans Comparaciones Cándida albicans en mm T gl Sig. (bilateral) Hipótesis
Jengibre (mm) 0,62% - Jengibre (mm)2,5% -2,548 11 ,027 Rechazo HO
Noni mm (0,62%) - Noni (mm) 2,5% -12,539 11 ,000 Rechazo HO
Jengibre (mm) 0,62% - Noni mm (0,62%) -28,365 11 ,000 Rechazo HO
Jengibre (mm)2,5% - Noni (mm) 2,5% -31,545 11 ,000 Rechazo HO
Jengibre (mm) 0,62% - Noni (mm) 2,5% -30,965 11 ,000 Rechazo HO
Jengibre (mm) 2,5% - Noni mm (0,62%) -48,812 11 ,000 Rechazo HO
Fuente: Investigación
Elaboración: Luis Yumi
El análisis de T student permite interpretar los resultados de la siguiente manera:
Par jengibre al 0,62% y al 2,5%: se observa que tienen un valor de significancia de 0,027
que al ser menor a 0,05 (95% de confiabilidad), se acepta H1, es decir, las medias de ha-
los de inhibición de ambas concentraciones son significativamente distintas.
35
Par Noni al 0,62% y al 2,5%: se observa que tienen un valor de significancia de 0,000 que
al ser menor a 0,05 (95% de confiabilidad), se acepta H1, es decir, las medias de halos de
inhibición de ambas concentraciones son significativamente distintas.
Par jengibre al 0,62% y noni al 0,62%: se observa que tienen un valor de significancia de
0,000 que al ser menor a 0,05 (95% de confiabilidad), se acepta H1, es decir, las medias
de halos de inhibición de ambas concentraciones son significativamente distintas.
Par jengibre al 2,5% y noni al 2,5%: se observa que tienen un valor de significancia de
0,000 que al ser menor a 0,05 (95% de confiabilidad), se acepta H1, es decir, las medias
de halos de inhibición de ambas concentraciones son significativamente distintas.
Par jengibre al 0,62% y noni al 2,5%: se observa que tienen un valor de significancia de
0,000 que al ser menor a 0,05 (95% de confiabilidad), se acepta H1, es decir, las medias
de halos de inhibición de ambas concentraciones son significativamente distintas.
Par jengibre al 2.5% y noni al 0,62%: se observa que tienen un valor de significancia de
0,000 que al ser menor a 0,05 (95% de confiabilidad), se acepta H1, es decir, las medias
de halos de inhibición de ambas concentraciones son significativamente distintas.
Análisis según la escala de Duraffourd
Nula (-) si fue inferior o igual a 8mm
Sensible (Sensible =+) de 9-14mm
Muy sensible (muy sensible =++) de 15-19mm
Sumamente sensible (S.S = +++) si fue igual o superior a de 20mm
En el análisis cualitativo según las pautas de Duraffourd se observa que el grado de sensibili-
dad de las sustancias empleadas en relación a la escala de referencia manifiesta lo siguiente:
Noni al 0.62% al tener un promedio de halos de inhibición de 11,33 mm se ubica como
“Sensible” (+).
Noni al 2.5% obtuvo un efecto inhibitorio promedio de 15,83 mm ubicándose como “Muy
sensible” (++).
Jengibre obtiene un promedio de 0,67mm para la concentración de 0.62% y el promedio
de 1,833mm para la de 2.5% ubicándose con un efecto nulo (-).
36
Clorhexidina al 0.12% presenta un promedio de 13,50 mm que lo define como “Sensible”
(+).
Gráfico 2. Efectividad antimicrobiana según la escala de Duraffourd para C. albicans
Fuente: Investigación
Elaboración: La autora
0123456789
101112131415161718192021
NONI 0.62% NONI 2.5% JENGIBRE 0.62% JENGIBRE 2.5% CLORHEXIDINA
Análisis de sensibilidad Cándida albicans
ÁREA NULA
ÁREA SENSI-BLE
ÁREA MUY SENSIBLE
ÁREA SUMAMENTE SENSIBLE
37
b. STREPTOCOCCUS MUTANS
Análisis de medias
Al analizar las medias de los halos de inhibición en milímetros de ambos extractos en relación
al control positivo de clorhexidina al 0.12% frente a Streptococcus mutans se tiene que la Clo-
rexidina al 0,12% como patrón de comparación tiene un promedio de 16,00 mm, el extracto de
Noni al 0,62% presenta una media de halo de inhibición de 10,00 mm siendo inferior al con-
trol positivo; el extracto de noni al 2,5% tiene un media de un halo inhibitorio de 10,21 mm no
superando la media del patrón; por otro lado, el extracto de jengibre al 2.5% presenta una me-
dia de halo de inhibición de 11,64 mm de inhibición y por último el extracto de jengibre en su
concentración al 0,62% con un promedio de halo de 5,86 mm, es decir, muy alejado de la me-
dia de la sustancia control utilizada como patrón (gráfico 3)
Gráfico 3. Media de Sreptococcus Mutans
Fuente: Investigación
Elaboración: La autora
jengibre0,62%
jengibre(mm)2,5%
Noni mm(0,62%)
Noni (mm)2,5%
Clorexidina(mm) 0,12%
5,86
11,64
10,00 10,21
16,00
Media Streptococcus Mutans
38
Análisis T student
Para aceptar o no la hipótesis se compara los valores obtenidos en los dos extractos a diferen-
tes concentraciones, mediante T-student, el análisis se realiza en pares. Las hipótesis a demos-
trar en base al nivel de significación son:
H1: si es superior a 0,05 se acepta que los halos de inhibición de Streptocuccus mutans obte-
nidos en las muestras son significativamente distintos.
Ho: si es inferior a 0,05 se acepta que los halos de inhibición Streptocuccus mutans obtenidos
en las muestras NO son significativamente distintos.
La tabla 4 refiere la estadística descriptiva del Jengibre y el Noni en las dos concentraciones
estudiadas en relación a la inhibición de Streptocuccus mutans.
Tabla 4. Media Streptococcus mutans en mm
Media Streptococcus Mutans Media N Desviación estándar Media de error
estándar
Jengibre (mm) 0,62% 5,7500 12 ,86603 ,25000
Jengibre (mm)2,5% 11,8333 12 1,02986 ,29729
Noni mm (0,62%) 10,0000 12 ,73855 ,21320
Noni (mm) 2,5% 10,2500 12 ,86603 ,25000
Fuente: Investigación
Elaboración: Luis Yumi
En la tabla 5 se muestra el resultado del análisis estadístico T student en pares para las medi-
ciones de halos de inhibición obtenidos en Streptocuccus mutans.
39
Tabla 5. Comparaciones Streptococcus mutans en mm
Comparaciones Streptococcus
Mutans en mm T gl
Sig. (bilate-
ral) HO
Jengibre (mm) 0,62% - jengibre
(mm)2,5% -21,154 11 ,000 Rechazo HO
Noni mm (0,62%) - Noni (mm) 2,5% -,672 11 ,515 Mantengo HO
Jengibre (mm) 0,62% - Noni mm (0,62%) -15,252 11 ,000 Rechazo HO
Jengibre (mm)2,5% - Noni (mm) 2,5% 4,710 11 ,001 Rechazo HO
Jengibre (mm) 0,62% - Noni (mm) 2,5% -11,861 11 ,000 Rechazo HO
Jengibre (mm)2,5% - Noni mm (0,62%) 4,750 11 ,001 Rechazo HO
Fuente: Investigación
Elaboración: Luis Yumi
El análisis de T student permite interpretar los resultados de la siguiente manera:
Par jengibre al 0,62% y al 2,5%: se observa que tienen un valor de significancia de 0,000
que al ser menor a 0,05 (95% de confiabilidad), se acepta H1, es decir, las medias de ha-
los de inhibición de ambas concentraciones son significativamente distintas.
Par Noni al 0,62% y al 2,5%: se observa que tienen un valor de significancia de 0,515 que
al ser mayor a 0,05 (95% de confiabilidad), se acepta H0, es decir, las medias de halos de
inhibición de ambas concentraciones NO son significativamente distintas.
Par jengibre al 0,62% y noni al 0,62%: se observa que tienen un valor de significancia de
0,000 que al ser menor a 0,05 (95% de confiabilidad), se acepta H1, es decir, las medias
de halos de inhibición de ambas concentraciones son significativamente distintas.
Par jengibre al 2,5% y noni al 2,5%: se observa que tienen un valor de significancia de
0,001 que al ser menor a 0,05 (95% de confiabilidad), se acepta H1, es decir, las medias
de halos de inhibición de ambas concentraciones son significativamente distintas.
Par jengibre al 0,62% y noni al 2,5%: se observa que tienen un valor de significancia de
0,000 que al ser menor a 0,05 (95% de confiabilidad), se acepta H1, es decir, las medias
de halos de inhibición de ambas concentraciones son significativamente distintas.
40
Par jengibre al 2.5% y noni al 0,62%: se observa que tienen un valor de significancia de
0,001 que al ser menor a 0,05 (95% de confiabilidad), se acepta H1, es decir, las medias
de halos de inhibición de ambas concentraciones son significativamente distintas.
Análisis según la escala de Duraffourd
Nula (-) si fue inferior o igual a 8mm
Sensible (Sensible =+) de 9-14mm
Muy sensible (muy sensible ++) de 15-19mm
Sumamente sensible (S.S = +++) si fue igual o superior a de 20mm
En el análisis cualitativo según las pautas de Duraffourd se observa que el grado de sensibili-
dad de las sustancias empleadas en relación a la escala de referencia manifiesta lo siguiente:
Noni al 0.62% al tener un promedio de halos de inhibición de 10,00 mm y el noni al 2.5%
con promedio de 10,21 se ubican como “Sensibles” (+),
Jengibre para la concentración de 0.62% muestra un promedio de 5,86 resultando con un
efecto “Nulo” (-)
Jengibre al 2,5% con el promedio de 11,64 mm se ubica como “Sensible” (+),
Clorhexidina al 0.12% presenta un promedio de 16,00 mm que lo define como “Muy sen-
sible” (++).
41
Gráfico 4. Efectividad antimicrobiana según la escala de Duraffourd para S. mutans
Fuente: Investigación
Elaboración: La autora
Comparación de las medias según el tipo de microorganismo
En el gráfico 5 se observa que en el caso de Cándida albicans el noni resulta ser efectivo en su
poder inhibitorio, en la concentración de 2,5% se observa que el microorganismo es muy sen-
sible, incluso más que con la clorhexidina utilizada como patrón. Sin embargo, el extracto de
jengibre en ambas concentraciones presenta un poder inhibitorio nulo.
Para el Streptococcus mutans se encuentra que este microorganismo es sensible al noni en
ambas concentraciones en estudio; en el caso del jengibre no presenta sensibilidad a la con-
centración del 0,62%, mientras que es sensible a la de 2,5%. Para ambas sustancias la sensibi-
lidad es inferior a la presentada frente a la clorexidina al 0.12 % que resulta ser muy sensible.
0123456789
101112131415161718192021
NONI 0.62% NONI 2.5% JENGIBRE 0.62% JENGIBRE 2.5% CLORHEXIDINA
Análisis de sensibilidad Streptococcus mutans
ÁREA NULA
ÁREA SENSI-BLE
ÁREA MUY SENSIBLE
ÁREA SUMAMENTE SENSIBLE
42
Gráfico 5. Comparación de media de las bacterias
Fuente: Investigación
Elaboración: La autora
5,86
11,64
10,00
10,21
16,00
0,67
1,83
11,33
15,83
13,50
jengibre 0,62%
jengibre (mm)2,5%
Noni mm (0,62%)
Noni (mm) 2,5%
Clorexidina (mm) 0,12%
Medias Streptococcus Mutans vs Cándida albicans
Media Cándida albicans Media Streptococcus Mutans
43
CAPITULO V
DISCUSIÓN
.
Barani(14) en su estudio demuestra que el extracto de Morinda Citrofilia (noni) manifiesta efec-
tos anti-fúngicos frente Cándida albicans, cuyo efecto varía según su concentración. Indica
que a concentraciones menores de 0.1% el extracto de noni es efectivo para Cándida albicans.
Los resultados del presente estudio sustentan estos datos al encontrar que el extracto de Noni
al 0.62% tiene un promedio de halos de inhibición en Cándida albicans de 11,33 mm lo cual lo
ubica como “Sensible” (+), mientras que a la mayor concentración estudiada de 2.5% se obtu-
vo un efecto inhibitorio promedio de 15,83 mm de halo con lo cual se manifiesta que la C.
albicans es “Muy sensible” (++); incluso más que con la Clorhexidina al 0.12% que presenta
un promedio de halo de inhibición de13,50 mm.
Por otro lado, Cruz (17) en su estudio demuestra que 32 microlitros de extracto de noni presenta
efecto inhibitorio en S. mutans con un halo de 2 cm; la investigación reflejó que ambas con-
centraciones de extracto de Noni de 0.62% y 2.5% producen igual sensibilidad (+) en S. mu-
tans con un promedio de halos de inhibición de 10,00 mm y 10,21 respectivamente.
Según Anjan (20) una concentración de 1.25% de extracto de jengibre en etanol muestra efec-
tos inhibitorios contra Streptococcus mutans; estos datos coinciden con los resultados obteni-
dos para el extracto de jengibre analizado ya que para la concentración de 0.62% muestra un
promedio de 5,86 mm de halo resultando con un efecto “Nulo” (-) sobre la bacteria, pero con-
centrado al 2,5% presenta el promedio de halo de 11,64 mm que permite concluir que S. mu-
tans es “Sensible” (+); aunque menos que el efecto inhibitorio del control positivo de Clor-
hexidina al 0.12% con un promedio de 16,00 mm al cual la bacteria es “Muy sensible” (++).
De la misma manera, el estudio de Anjan (20) indica que si la concentración del extracto de
jengibre aumenta al 10 % presenta efecto inhibotorio en contra de Cándida albicans, lo cual es
consecuente con los resultados obtenidos ya que la investigación reflejó que los extractos de
44
jengibre concentrados al 0.62% y 2.5% obtienen un promedio de 0,67 y 1,83 mm respectiva-
mente, lo cual evidencia un efecto inhibidor nulo (-).
El estudio evidencia que en el caso de Cándida albicans el noni resulta ser efectivo en su po-
der inhibitorio, en la concentración de 2,5% se observa que el microorganismo es muy sensi-
ble, incluso más que con la clorhexidina utilizada como patrón. Sin embargo, el extracto de
jengibre en ambas concentraciones presenta un poder inhibitorio nulo.
Para el Streptococcus mutans se encuentra que este microorganismo es sensible al noni en
ambas concentraciones en estudio; en el caso del jengibre no presenta sensibilidad a la con-
centración del 0,62%, mientras que es sensible a la de 2,5%. Para ambas sustancias la sensibi-
lidad es inferior a la presentada frente a la clorexidina al 0.12 % que resulta ser muy sensible.
Esto comprueba la hipótesis de investigación, es decir, el extracto de Noni tiene una actividad
antimicrobiana mayor al extracto de Jengibre tanto frente a Streptococcus mutans como a
Cándida albicans a la misma concentración.
45
CAPITULO VI
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
CONCLUSIONES
Se determinó la eficacia del efecto inhibitorio en las distintas concentraciones de los ex-
tractos de noni (Morinda Citrofilia) y jengibre (Zingiber Officinate) sobre cepas de Strep-
tococcus mutans y Cándida albicans.
Los extractos hidroalcohólicos del noni al 0.62 % y 2.5% presenta mayor efectividad so-
bre cepas de Cándida albicans obteniendo un halo de inhibición un promedio de 11mm
(0.62) % y 15 mm (2.5%). Mientras tanto las mismas concentraciones del noni frente a
cepas de Streptococcus mutans dieron como resultados halos de inhibición de 10mm
(0.62%) y 10.21mm (0.25%) siendo estadísticamente similares entre sí, y de esta manera
se concluye que el extracto de noni es eficaz para las dos bacterias en estudio.
Los extractos hidroalcohólicos del jengibre en sus dos concentraciones frente cepas de
Cándida albicans no tiene mayor significancia presentando halos de inhibición muy bajos
con un promedio de 0.67mm (0.62%) y 1.83 mm (2.5%); a diferencias que las mismas
concentraciones del jengibre frente a cepas de Streptococcus mutans presentó mayor efec-
tividad con halos de inhibición de 5.86 mm (0.62%) y 11.64 mm (2.5%). Concluyendo
que el extracto de jengibre presenta efecto antibacteriano solo en cepas de S. mutans y a la
mayor concentración
Al comparar los dos extractos a las mismas concentraciones se concluye que el extracto
de Noni (Morinda citrofilia) es mucho más eficiente presentando un efecto antimicrobiano
mayor en relación con el extracto de jengibre (Zingiber Officinate) esto en cuanto a cepas
de Streptococcus mutans y Cándida albicans.
46
RECOMENDACIONES
Debido a sus beneficios sobre el uso de productos naturales se recomienda informar a los
pacientes la utilización de las mismas como coadyuvante en los tratamientos Odontológi-
cos, y de esta manera ayudaremos a la disminución de la utilización de químicos que son
altamente tóxicos.
Se sugiere orientar nuevos proyectos donde estos extractos sea combinado con sustancias
que mejoren su sabor y de esta manera sea aplicado en pacientes debido a que el noni y
jengibre presenta múltiples beneficios y no presenta contraindicaciones significativas, pa-
ra realizar ensayos clínicos.
Se recomienda analizar el efecto inhibitorio de los extractos (noni y jengibre) como agen-
te antimicrobiano frente a otras bacterias causantes de otras patologías orales.
Por su efecto antimicrobiano se recomienda elaborar colutorios a base de las plantas utili-
zadas en el presente estudio y aplicar tratamientos en pacientes con patología orales.
47
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50
ANEXOS
ANEXO 1: RENUNCIA A TRABAJO ESTADISTICO
51
ANEXO 2: SOLICITUD USO DE LABORATORIO MICROBIOLOGÍA
52
ANEXO 3: SOLICITUD USO DE LABORATORIO QUÍMICA
53
ANEXO 4: MANEJO DE DESECHOS
54
ANEXO 5. CERTIFICADO DEL SUBCOMITÉ DE ÉTICA DE LA UNI-
VERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
55
ANEXO 6. CERTIFICADO DEL SISTEMA ANTIPLAGIO URKUND
56
ANEXO 7. ABSTRACT
FORMATO PARA EXPEDIENTE DEL ESTUDIANTE
AUTORIZACIÓN DE PUBLICACIÓN EN EL REPOSITORIO INSTITUCIONAL
La información de este recuadro es para el control del registro. Favor no modificarla
CODIGO: sib-uce.
Fecha de entrega: Día: 29 Mes: 09 Año: 2017
INFORMACIÓN DE AUTOR (ES)
Nombres y apellidos: Eva Noemí Herrera Brito C.I. o pasaporte: 0502504582
Email: [email protected] Año Nacimiento: 1987
Nombres y apellidos: C.I. o pasaporte:
Email : Año Nacimiento
Nombres y apellidos C.I. o pasaporte:
Email: Año Nacimiento
INFORMACIÓN INSTITUCIONAL
Nombre de la Facultad: Odontología
Carrera: Odontología
Título a optar: Odontólogo
Pregrado: * Especialización: Maestría: Doctorado: Institucional: Otro:
Tutor (es): Dra. María Fernanda Caicedo Breedy
INFORMACIÓN Y CATEGORÍA DEL DOCUMENTO. Marque con X (uno o varios) Artículo de Revista Revista Académica / Científica
Capítulo de Libro Tesis (Maestría y Doctorado)
Libro Trabajo de grado (Pregrado y Especialización) *
Memoria de Evento Otro
Ponencia Cual?
Producción Docente
Título y subtítulo del documento:
DINÁMICA DE INVESTIGACIÓN (Definida por cada Facultad. Consultar con su Tutor)
Grupo de Investigación: Microbiología
Línea de Investigación: Microbiología
Área: Microbiología
Tema: Efecto Inhibitorio del extracto de noni y jengibre frente a Cándida albicans y Streptococcus mutans
AUTORIZACIÓN DE PUBLICACIÓN EN EL REPOSITORIO DIGITAL
Por medio de este formato manifiesto (manifestamos) mi (nuestra) voluntad de autorizar a la Universidad Central del Ecuador, la publicación en texto completo, de manera gratuita y por tiempo indefinido en el Repositorio Digital de la Universidad Central del Ecuador, así como en índices, buscadores, redes de repositorios y Biblioteca Digital su difusión, el documento académico-investigativo objeto de la presente autorización, con fines estrictamente educativos, científicos y culturales, en los términos establecidos. En virtud del reconocimiento y protección a los Derechos de Autor consagrados en la Ley de Propiedad Intelectual en el Ecuador, de lo señalado en la Declaración de Berlín sobre el Acceso Abierto al Conocimiento en las Ciencias y Humanidades, así como del uso de Licencias de Creative Cammons, indico mi decisión respecto a publicar mi (nuestro) trabajo en el Repositorio Institucional de Acceso Libre Nacional e Internacional, de la Universidad Central del Ecuador. Como autor (autores) manifiesto (manifestamos) que el presente documento académico-investigativo es original y se realizó sin violar o usurpar derechos de autor de terceros, por lo tanto, la obra es de mi (nuestra) exclusiva autoría y poseo (poseemos) la titularidad sobre la misma. La Universidad de Central del Ecuador, no será responsable de ninguna utilización indebida del documento por parte de terceros, será exclusivamente mi (nuestra) responsabilidad atender personalmente cualquier reclamación que pueda presentarse a la Universidad. Autorizo (autorizamos) al Repositorio Institucional de la Universidad Central del Ecuador, convertir el documento al formato que el repositorio lo requiera (impreso, digital, electrónico o cualquier otro conocido o por conocer) con fines de preservación documental; académico y de investigación. Esta autorización no implica renuncia a la facultad que tengo (tenemos) de publicar posteriormente la obra, en forma total o parcial, por lo cual podré (mos), dando aviso por escrito a la Biblioteca de la Universidad Central del Ecuador, con no menos de un mes de antelación, solicitar que el documento deje de estar disponible para el público en el Repositorio Institucional de la Universidad de Central del Ecuador, así mismo, cuando se requiera por razones legales y/o reglas del editor de una revista.
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0502504582
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Entiendo los términos en los que el autor acepta la publicación en texto completo, en especial aquellos en los que asume la autoría del
documento y que excluye a la Universidad Central del Ecuador o a mi persona por cualquier reclamo o litigio de terceros, haciéndose
responsable de los efectos que ello conlleva. He leído íntegramente el texto completo y evaluado este documento en su componente
académico e investigativo; utilicé mecanismos de detección antiplagio y/o buscadores comerciales en línea que permiten detectar indicios de
fraude académico; según los conocimientos adquiridos en mi área de especialidad profesional certifico un alto nivel de confiabilidad de
autoridad, que cumple con los requisitos de calidad exigidos por la Universidad Central del Ecuador para efectos de visibilidad y prestigio
nacional e internacional y por lo tanto avalo la calidad de este trabajo y su inclusión en texto completo y referencial en la Colección de Trabajos
de Titulación.
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