UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE …Dejo constancia de mi eterna gratitud a la Facultad de Ciencias Agrícolas, en especial a los docentes que intervinieron en la realización

UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE CIENCIAS AGRÍCOLAS

CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA

EVALUACIÓN DEL EFECTO DE TRES BIOESTIMULANTES EN EL

CULTIVO DE ROSA (Rosa sp.) DE LA VARIEDAD FREEDOM

CAYAMBE, PICHINCHA

Trabajo de titulación presentado como requisito previo a la obtención del Título de

Ingeniero Agrónomo

Autor: Rivera Mosquera Alexis José

Tutor: Carlos María Nieto Cabrera

Quito, Septiembre 2017

DERECHOS DE AUTOR

Yo Alexis José Rivera Mosquera en calidad de autor del trabajo de investigación: EVALUACIÓNDEL EFECTO DE TRES BIOESTIMULANTES EN EL CULTIVO DE ROSA (Rosa sp.J DELA VARIEDAD FREEDOM CAYAMBE, PICHINCHA autorizo a la Universidad Central delEcuador a hacer uso del contenido total o parcial que me pertenece, con fines estrictamenteacadémicos o de investigación.

Los derechos que corno autor me corresponde, con excepción de la presente autorización, seguiránvigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los artículos 5, 6, 8; 19 y demáspertinentes de la Ley de Propiedad Intelectual y su Reglamento.

También, autorizo a la Universidad Central del Ecuador realizar la digitalización y publicación deeste trabajo de investigación en el repositorio virtual, de conformidad a lo dispuesto en el Art. 144de la Ley Orgánica de Educación Superior.

ALEXIS JOSÉ RIVERA MOSQUERACC. 1723519607

u

Quito, 14 de abril de 2017

DoctorJosé Vásquez, Ph.D.DIRECTOR DE LA CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICAFACULTAD DE CIENCIAS AGRÍCOLASPresente

De mi consideración:

La empresa FalconFarms de Ecuador S.A./Flores de la Montaña S.A., certifica que el señorALEXIS JOSÉ RIVERA MOSQUERA, portador de la cédula de identidad 172351960, egresadode la Facultad de Ciencias Agrícolas de la Universidad Central del Ecuador, desarrollo su tesis detitulación "EVALUACIÓN DEL EFECTO DE TRES BIOESTIMULANTES EN ELCULTIVO DE ROSA (Rosa sp.; DE LA VARIEDAD FREEDOM CAYAMBE,PICHINCHA", el mismo que puede ser publicado por medios escritos o digitales, como requisitoprevio para la obtención del título de Ingeniero Agrónomo.

Atentamente,

Ing. Roberto MonteroDIRECTOR DEPRODUCCIÓN FalconFarmsde Ecuador S.A./Flores de la Montaña S.A

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APROBACIÓN DEL TUTORDEL TRABAJO DE TITULACIÓN

Yo Carlos María Nieto Cabrera en mi calidad de tutor del trabajo de titulación, modalidad Proyectode Investigación, elaborado por ALEXIS JOSÉ RIVERA MOSQUERA; cuyo título es:EVALUACIÓN DEL EFECTO DE TRES BIOESTIMULANTES EN EL CULTIVO DEROSA (Rosa sp.) DE LA VARIEDAD FREEDOM CAYAMBE, PICHINCHA, previo a laobtención de Grado de Ingeniero Agrónomo; considero que el mismo reúne los requisitos y méritosnecesarios en el campo metodológico y epistemológico, para ser sometido a la evaluación por partedel tribunal examinador que se designe, por lo que APRUEBO, a fin de que el trabajo seahabilitado para continuar con el proceso de titulación determinado por la Universidad Central delEcuador.

En la ciudad de Quito, a los 12 días del mes junio de 2017

Carjos María Nieto Cabrera, LA., Ph.D.DOCENTE-TUTORC.C. 0300431632

V^CUJI

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EVALUACIÓN DEL EFECTO DE TRES BIOESTIMULANTES EN EL CULTIVODE ROSA (Rosa sp.) DE LA VARIEDAD FREEDOM CAYAMBE, PICHINCHA

APROBADO POR:

Carlos Nieto, LA., Ph.D.TUTOR

Dr. Galo JachoPRESIDENTE DEL TRIBUNAL

Ing. Agr. Jorge Caicedo, M.Sc.PRIMER VOCAL DEL TRIBUNAL

Ing. Agr. Valdano Tafur, M.Sc.SEGUNDO VOCAL DEL TRIBUNAL

2017

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DEDICATORIA A Dios, que me otorgó la oportunidad de estar aquí, a mis padres, Liliana y José, por el amor y el apoyo incondicional que siempre me han transmitido, y además que con su ejemplo, dedicación y esfuerzo supieron guiarme en todo momento sin importar los desafíos que se presentan en la vida. A mis hermanos, Fabricio y Kevin a quienes los aprecio mucho y valoro. Alexis

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AGRADECIMIENTO Dejo constancia de mi eterna gratitud a la Facultad de Ciencias Agrícolas, en especial a los docentes que intervinieron en la realización de este trabajo.

A la Empresa Florícola FalconFarms de Ecuador S.A./Flores de la Montaña S.A., al Ing. Francisco López por el soporte institucional y por las facilidades otorgadas para realizar la presente investigación, gracias por brindarme la oportunidad de obtener nuevos conocimientos.

A los ingenieros Santiago Vargas, Roberto Montero, Cristina Arboleda y Carmen Martínez como técnicos de la empresa por brindarme, su tiempo, capacitación y esfuerzo para poder conocer más sobre el manejo de este cultivo; los mismos que me ayudaron con el aporte de sus conocimientos y sugerencias para la cristalización del presente trabajo.

A los supervisores y en general a todos los trabajadores de la empresa FalconFarms de Ecuador S.A./Flores de la Montaña S.A. que de una u otra manera contribuyeron a la culminación de esta investigación. A la Ing. Andrea Jácome, al Ing. Jorge Caicedo y al Dr. Carlos Nieto por sus asesorías y cooperaciones para llegar a un feliz término en esta investigación. A mis padres por la dedicación, ejemplo y por la lucha que han realizado diariamente para brindarme lo mejor durante mi vida, y a mis hermanos por su apoyo y comprensión. A la música que es y será mi amiga y compañera fiel, al compartir tantas experiencias, desvelos, triunfos y anécdotas, gracias por estar conmigo en mis alegrías porque fueron dobles, y en mis tristezas porque las hizo menos tristes. Alexis

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ÍNDICE DE CONTENIDO

CAPÍTULOS PÁG.

1. INTRODUCCIÓN .......................................................................................................... 1

OBJETIVOS .......................................................................................................................... 3

HIPÓTESIS ........................................................................................................................... 4

2. REVISIÓN DE LITERATURA .................................................................................... 5

2.1. FALCONFARMS DE ECUADOR S.A. ........................................................................ 5

2.1.1. Información de la Empresa .......................................................................................... 5

2.1.2. Ubicación ..................................................................................................................... 5

2.1.3. Compromiso social ...................................................................................................... 5

2.1.4. Compromiso ambiental................................................................................................ 5

2.1.4.1. B.A.S.C. .................................................................................................................... 6

2.1.4.2. Rainforest Forest Alliance ........................................................................................ 6

2.1.5. Misión .......................................................................................................................... 6

2.1.6. Visión .......................................................................................................................... 7

2.1.7. Política integral ............................................................................................................ 7

2.1.8. Protección corporativa ................................................................................................. 7

2.2. Bioestimulantes .............................................................................................................. 7

2.2.1. Formulaciones de los bioestimulantes ......................................................................... 8

2.2.1.1. Formulaciones a base de aminoácidos ..................................................................... 8

2.2.1.2. Formulaciones a base de aminoácidos con reguladores de crecimiento .................. 9

2.2.1.2.1. Auxinas ................................................................................................................ 10

2.1.1.2.2. Citoquininas ......................................................................................................... 11

2.1.1.2.3. Giberelinas ........................................................................................................... 12

2.1.1.2.4. Ácido abscísico .................................................................................................... 13

2.1.1.2.5. Etileno .................................................................................................................. 13

2.1.1.2.6. Otros reguladores de crecimiento ........................................................................ 14

2.2.1.3. Formulaciones a base de aminoácidos con nutrimentos ......................................... 14

2.2.1.4. Formulaciones a base de aminoácidos con vitaminas ............................................ 15

2.2.1.5. Formulaciones combinadas .................................................................................... 15

2.2.1.6. Formulaciones con carbohidratos ........................................................................... 15

2.2.1.7. Formulaciones húmicas .......................................................................................... 16

2.2.1.8. Formulaciones a partir de algas .............................................................................. 17

2.2.2. Síntesis de los bioestimulantes .................................................................................. 17

2.2.3. Modo de acción de los bioestimulantes ..................................................................... 17

2.2.3.1. Ahorro energético ................................................................................................... 18

ix

CAPÍTULOS PÁG.

2.2.3.2. Suplemento de aminoácidos de alto consumo ........................................................ 18

2.2.3.3. Formación de sustancias biológicamente activas ................................................... 18

2.2.3.4. Producción de antioxidantes ................................................................................... 18

2.2.3.5. Efecto regulador sobre el metabolismo de los microelementos ............................. 19

2.2.3.6. Incremento de polifenoles ...................................................................................... 19

2.2.3.7. Regulación fisiológica bajo condiciones de estrés hídrico ..................................... 19

2.2.4. Compatibilidad de los bioestimulantes con otros compuestos .................................. 19

2.2.5. Modo de aplicación de los bioestimulantes ............................................................... 20

2.2.6. Absorción de los bioestimulantes .............................................................................. 20

2.2.7. Advertencias y precauciones para el uso y aplicación de los bioestimulantes .......... 21

2.2.8. Características de los bioestimulantes utilizados ...................................................... 21

2.2.8.1. HTP-B1 ................................................................................................................... 21

2.2.8.1.1. Descripción .......................................................................................................... 21

2.2.8.1.2. Composición ........................................................................................................ 21

2.2.8.1.3. Propiedades físico-químicas ................................................................................ 22

2.2.8.2. GRAND-ROSE ...................................................................................................... 23

2.2.8.2.1. Descripción .......................................................................................................... 23

2.2.8.2.2. Composición ........................................................................................................ 23

2.2.8.2.3. Beneficios del producto ....................................................................................... 24

2.2.8.2.4. Períodos de carencia ............................................................................................ 24

2.2.8.2.5. Compatibilidad .................................................................................................... 24

2.2.8.3. BIO-SOLAR ........................................................................................................... 24

2.2.8.3.1. Descripción .......................................................................................................... 24

2.2.8.3.2. Composición ........................................................................................................ 24

2.2.8.3.3. Beneficios del producto ....................................................................................... 25

2.2.8.3.4. Compatibilidad .................................................................................................... 25

2.3. Cultivo de rosas ............................................................................................................ 26

2.3.1. Origen ........................................................................................................................ 26

2.3.2. Cruzamientos de las rosas.......................................................................................... 26

2.3.3. Clasificación de los rosales ....................................................................................... 29

2.3.3.1. Clasificación American Rose Society .................................................................... 29

2.3.3.2. Tipos de rosal ......................................................................................................... 29

2.3.4. La rosa en el Ecuador ................................................................................................ 30

2.3.5. Taxonomía y Morfología ........................................................................................... 30

2.3.6. Características Botánicas ........................................................................................... 31

x

CAPÍTULOS PÁG.

2.3.6.1. Raíz ......................................................................................................................... 31

2.3.6.2. Tallo ........................................................................................................................ 31

2.3.6.3. Hojas ....................................................................................................................... 31

2.3.6.4. Flores ...................................................................................................................... 31

2.3.6.5. Fruto ....................................................................................................................... 31

2.3.6.6. Semilla .................................................................................................................... 32

2.3.7. Tipo de plantas .......................................................................................................... 32

2.3.7.1. Plantas formadas ..................................................................................................... 32

2.3.7.2. Plantines ................................................................................................................. 32

2.3.7.3. Plantas de ojo dormido ........................................................................................... 32

2.3.7.4. Injertos en finca ...................................................................................................... 32

2.3.8. Tipos de injertos ........................................................................................................ 32

2.3.8.1. Injerto por vareta injerto inglés .............................................................................. 32

2.3.8.2. Injerto de yema ....................................................................................................... 33

2.3.9. Labores culturales ...................................................................................................... 33

2.3.9.1. Manejo de plantas nuevas (agobio) ........................................................................ 33

2.3.9.2. Formación tradicional con agobio .......................................................................... 34

2.3.9.3. Otras labores ........................................................................................................... 34

2.3.9.3.1. Podas .................................................................................................................... 35

2.3.9.3.2. Desyeme .............................................................................................................. 35

2.3.9.3.3. Escobillado de camas .......................................................................................... 35

2.3.9.3.4. Picada de caminos ............................................................................................... 35

2.3.10. Consideraciones técnicas en el manejo de la rosa ................................................... 36

2.3.10.1. Manejo de plantas en producción ......................................................................... 36

2.3.10.2. Uso racional de la tijera de podar ......................................................................... 36

2.3.10.3. Marcar y/o pintar zona de corte en camas piloto .................................................. 36

2.3.10.4. Poda para San Valentín......................................................................................... 36

2.3.10.5. Patrones ................................................................................................................ 37

2.3.10.6. Grados/Día ............................................................................................................ 37

2.3.11. Factores de productividad y factores que afectan a la productividad ...................... 37

2.4. Condiciones del cultivo ................................................................................................ 41

2.4.1. Temperatura ............................................................................................................... 41

2.4.1.1. Umbrales de desarrollo ........................................................................................... 41

2.4.1.1.1. Grado día ............................................................................................................. 42

2.4.2. Luminosidad .............................................................................................................. 44

xi

CAPÍTULOS PÁG.

2.4.3. Humedad Relativa ..................................................................................................... 44

2.4.4. Anhídrido carbónico .................................................................................................. 45

2.4.5. Altitud ........................................................................................................................ 45

2.4.6. Nubosidad .................................................................................................................. 45

2.4.7. Suelo .......................................................................................................................... 45

2.4.8. Requerimiento nutricional y fertilización .................................................................. 45

2.4.9. Riego .......................................................................................................................... 46

2.5. Aspectos fisiológicos de la rosa.................................................................................... 55

2.5.1. Órganos de almacenamiento ...................................................................................... 55

2.5.2. Azúcares reductores y almidón.................................................................................. 55

2.5.3. Absorción de nutrientes ............................................................................................. 55

2.5.4. Movimiento del agua dentro del sistema suelo-planta-atmósfera ............................. 56

2.5.5. Compatibilidad química ............................................................................................ 56

2.5.6. Flujo en masa ............................................................................................................. 57

2.5.7. El color en las rosas ................................................................................................... 58

2.5.7.1. Flavonoides ............................................................................................................. 58

2.5.7.1.1. Antocianinas ........................................................................................................ 59

2.6. Rosa variedad freedom ................................................................................................. 60

2.6.1. Aspectos agronómicos ............................................................................................... 60

2.6.2. Manejo de freedom .................................................................................................... 62

2.6.3. Fenología de la rosa Rosa sp. de la variedad freedom............................................... 64

2.6.3.1. Período Vegetativo ................................................................................................. 64

2.6.3.2. Período Reproductivo ............................................................................................. 64

2.7. Puntos de corte ............................................................................................................. 65

2.7.1. Tipos de mercado....................................................................................................... 66

2.7.1.1. Mercado ruso .......................................................................................................... 66

2.7.1.2. Mercado europeo .................................................................................................... 66

2.7.1.3. Mercado americano ................................................................................................ 66

2.8. Árbol de problemas del botón floral ............................................................................. 68

3. MATERIALES Y MÉTODOS ..................................................................................... 69

3.1. Ubicación ...................................................................................................................... 69

3.2. Características meteorológicas ..................................................................................... 69

3.3. Materiales ..................................................................................................................... 69

3.3.1. Plantas de rosas de la variedad freedom .................................................................... 69

3.3.2. Terreno....................................................................................................................... 69

xii

CAPÍTULOS PÁG.

3.3.2.1. Dimensiones del terreno y densidad ....................................................................... 70

3.3.2.2. Productos bioestimulantes ...................................................................................... 72

3.3.2.3. Materiales de recolección y procesamiento de datos.............................................. 72

3.3.2.4. Materiales de campo ............................................................................................... 72

3.4. Metodología .................................................................................................................. 72

3.4.1. Diseño experimental y tratamientos .......................................................................... 72

3.4.2. Variables y métodos de evaluación ........................................................................... 75

3.4.2.1. Longitud del botón floral ........................................................................................ 75

3.4.2.2. Diámetro del botón floral ....................................................................................... 75

3.4.2.3. Intensidad de color.................................................................................................. 75

3.4.2.4. Número de días a la cosecha................................................................................... 76

3.4.2.5. Análisis financiero .................................................................................................. 76

4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ................................................................................... 77

4.1. Normalidad y varianzas constantes .............................................................................. 77

4.2. Longitud del botón floral .............................................................................................. 78

4.2.1. Longitud del botón floral en la primera semana después de la aplicación ................ 78

4.2.2. Longitud del botón floral en la segunda semana después de la aplicación ............... 79

4.2.3. Longitud del botón floral en la tercera semana después de la aplicación

(cosecha) .............................................................................................................................. 81

4.3. Diámetro del botón floral ............................................................................................. 83

4.3.1. Diámetro del botón floral en la primera semana después de la aplicación................ 83

4.3.1.1. Prueba de Dunnett al 5 % ....................................................................................... 84

4.3.2. Diámetro del botón floral en la cosecha .................................................................... 84

4.3.2.2. Prueba de Tukey al 5 % .......................................................................................... 85

4.4. Intensidad de color........................................................................................................ 86

4.4.1. Prueba de Kruskal Wallis al 5 % ............................................................................... 86

4.5. Número de días a la cosecha desde la aplicación ......................................................... 87

4.5.1. Prueba de Tukey al 5 % ............................................................................................. 88

4.6. Análisis financiero ........................................................................................................ 89

5. CONCLUSIONES ......................................................................................................... 97

6. RECOMENDACIONES ............................................................................................... 99

7. RESUMEN ................................................................................................................... 100

ABSTRACT ..................................................................................................................... 102

8. REFERENCIAS .......................................................................................................... 104

9. FOTOGRAFÍAS .......................................................................................................... 107

10. ANEXOS .................................................................................................................... 117

xiii

ÍNDICE DE CUADROS

CUADROS PÁG.

1. Sitio de síntesis de los diferentes reguladores de crecimiento ....................................... 9 2. Actividades fisiológicas relacionadas a reguladores de crecimiento ........................... 14 3. Composición Porcentual de HTP-B1 ........................................................................... 22 4. Propiedades físico- químicas de HTP-B1 .................................................................... 22

5. Sustancias fitorreguladoras ........................................................................................... 23 6. Ingredientes activos de BIO-SOLAR ........................................................................... 25 7. Taxonomía convencional del género Rosa dividido en subgéneros y secciones e

indicando su nivel de ploidía ........................................................................................ 28 8. Taxonomía de la Rosa Rosa sp. .................................................................................... 31

9. Pinch de basales ............................................................................................................ 34 10. Temperaturas registradas el día 2 de noviembre del 2015 ........................................... 43

11. Valores de interpretación de extracto celular de plantas de Rosa ................................ 46

12. Cronograma sobre la preparación, manejo de riego y fertilización de rosas San

Valentín 2016- Actividades 1 y 2 ................................................................................. 47 13. Cronograma sobre la preparación, manejo de riego y fertilización de rosas San

Valentín 2016- Actividad 3 .......................................................................................... 48 14. Cronograma sobre la preparación, manejo de riego y fertilización de rosas San

Valentín 2016- Actividades 4 y 5 ................................................................................. 49


Valentín 2016- Actividad 6 .......................................................................................... 50


Valentín 2016- Actividades 7 y 8 ................................................................................. 51 17. Cronograma sobre la preparación, manejo de riego y fertilización de rosas San

Valentín 2016- Actividad 9 .......................................................................................... 52


Valentín 2016- Actividades 10 y 11 ............................................................................. 53 19. Cronograma sobre la preparación, manejo de riego y fertilización de rosas San

Valentín 2016- Actividad 12 ........................................................................................ 54

20. Compatibilidad química de la mezcla de fertilizantes .................................................. 57 21. Aspectos agronómicos del cultivo de Rosa de la variedad freedom ............................ 61 22. Duración del período Reproductivo de la Rosa de la variedad freedom ...................... 65 23. Dimensiones del terreno y densidad del área de estudio .............................................. 70 24. Tratamientos del ensayo ............................................................................................... 73

25. Registro de aplicación de bioestimulantes ................................................................... 74 26. Prueba de normalidad y varianzas constantes para las variables en la evaluación

del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad

Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016 ........................................................................... 77 27. Análisis de la varianza (ANOVA) para la variable “Longitud del botón floral en

la primera semana después de la aplicación” para la evaluación del efecto de tres

bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom.

Cayambe, Pichincha, 2016 ........................................................................................... 78 28. Prueba de diferenciación de medias de Tukey al 5 % para la variable “Longitud

del botón floral en la primera semana después de la aplicación” para la

evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de

la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016 ........................................................ 79

xiv

CUADROS PÁG.

29. Análisis de varianza (ANOVA) para la variable “Longitud del botón floral en la

segunda semana después de la aplicación” para la evaluación del efecto de tres



del botón floral en la segunda semana después de la aplicación” para la


la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016 ........................................................ 81 31. Análisis de varianza (ANOVA)para la variable “Longitud del botón floral en la

tercera semana después de la aplicación (cosecha)” para la evaluación del efecto

de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom.


del botón floral en la tercera semana después de la aplicación (cosecha)” para la


la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016 ........................................................ 83

33. Análisis de varianza (ANOVA) para la variable “Diámetro del botón floral en la

primera semana después de la aplicación” para la evaluación del efecto de tres


Cayambe, Pichincha, 2016 ........................................................................................... 83 34. Prueba de Dunnett al 5 % “Diámetro del botón floral en la primera semana

después de la aplicación” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en

el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016 ...... 84

35. Análisis de varianza (ANOVA) para la variable “Diámetro del botón floral en la

cosecha” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de

rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016 ........................... 85

36. Prueba de diferenciación de medias de Tukey al 5 % para la variable “Diámetro

del botón floral en la cosecha” para la evaluación del efecto de tres


Cayambe, Pichincha, 2016 ........................................................................................... 85

37. Prueba de “Kruskal Wallis” al 5 % para la variable “intensidad del color” para la


la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016 ........................................................ 87 38. Análisis de varianza (ANOVA) para la variable “Número de días a la cosecha

desde la aplicación” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el

cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016 .......... 88 39. Prueba de diferenciación de medias de Tukey al 5 % para la variable “Número

de días a la cosecha desde la aplicación” para la evaluación del efecto de tres



40. Estructuración de los costos variables para cada tratamiento en la evaluación de

la aplicación de bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad

Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016 ........................................................................... 90 41. Estructuración de los costos fijos para cada tratamiento en la evaluación de la

aplicación de bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad

Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016 ........................................................................... 91 42. Costo de producción, ingreso y utilidad neta/tallo exportable de cada tratamiento

en relación a la longitud del botón floral en cosecha ................................................... 92

xv

CUADROS PÁG.

43. Costo de producción, ingreso y utilidad neta/tallo exportable de cada tratamiento

en relación al diámetro del botón floral en cosecha ..................................................... 92 44. Costo de producción, ingreso y utilidad neta/tallo exportable de cada tratamiento

en relación a la intensidad de color .............................................................................. 92 45. Costo de producción, ingreso y utilidad neta/tallo exportable de cada tratamiento

en relación al número de días a la cosecha desde la primera aplicación ...................... 93 46. Promedio de costos de producción, ingreso y utilidad neta/tallo exportable de

cada tratamiento en base a la longitud y diámetro del botón floral en cosecha,

intensidad de color (22 %) y número de días a la cosecha desde la primera

aplicación ...................................................................................................................... 93

47. Análisis financiero de tratamientos para la evaluación del efecto de tres



48. Costo total de producción, Ingreso bruto, Utilidad neta, Porcentaje de ganancia;

y Relación Beneficio/Costo de tratamientos para la evaluación del efecto de tres


Cayambe, Pichincha, 2016 en 327.92 m2 por un período de un ciclo de

producción de 85 días ................................................................................................... 95

49. Costo total de producción, Ingreso bruto, Utilidad neta, Porcentaje de ganancia;

y Relación Beneficio/Costo de tratamientos para la evaluación del efecto de tres


Cayambe, Pichincha, 2016 para una hectárea por un período de un ciclo de

producción de 85 días ................................................................................................... 96

xvi

ÍNDICE DE FIGURAS

FIGURAS PÁG.

1. Simplificación de los procesos de síntesis de aminoácidos, proteínas y enzimas .......... 8 2. Mecanismo de acción de las auxinas ............................................................................ 10

3. Ecuación de la fotosíntesis ........................................................................................... 15 4. Clasificación de los rosales ......................................................................................... 29 5. Tipos de rosales según su presentación y formación.................................................... 30 6. Factores de productividad de las flores ........................................................................ 37 7. Factores de productividad de las flores según los basales ............................................ 38

8. Factores de productividad de las flores según las duplicaciones ................................. 38 9. Factores de productividad de las flores según el ciclo ................................................. 39 10. Factores que afectan a la productividad de las flores ................................................... 40 11. Estructura y núcleo del flavonoide ............................................................................... 58

12. Flavonoides: antocianinas. Aglicones: antocianidina, pelargonidina, delfinidina y

leuco-delfinidina ........................................................................................................... 59 13. Manejo de freedom en relación a podas ....................................................................... 62

14. Ubicación de las yemas en el tallo ............................................................................... 64 15. Etapas fenológicas del período reproductivo de la Rosa sp. de la variedad

Freedom ........................................................................................................................ 64 16. Puntos de corte para Rosa............................................................................................. 66

17. Botón floral europeo ........................................................................ 62

18. Botón floral americano .......................................................................................... 67 19. Botón floral ruso ........................................................................................................... 67

20. Árbol de problemas sobre el botón floral ..................................................................... 68 21. Esquema de distribución del ensayo en el área de estudio ........................................... 71

22. Tablas de colores "R" para la determinación de la intensidad del color ...................... 75

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ÍNDICE DE FOTOGRAFÍAS

FOTOGRAFÍAS PÁG.

1. Identificación de la investigación ............................................................................... 107 2. Primera aplicación del bioestimulante BIO-SOLAR (T3) con bomba móvil

portátil, tipo de lanza recta ......................................................................................... 107 3. Primera medición de longitud y diámetro luego de la aplicación del

bioestimulante BIO-SOLAR (T3) semana 1 .............................................................. 108 4. Cosecha de flores aplicadas bioestimulante BIO-SOLAR (T3) ................................. 109 5. Mediciones de longitud y diámetro de las flores cosechadas que fueron

aplicadas el bioestimulante BIO-SOLAR (T3) .......................................................... 109 6. Testigo SIN BIOESTIMULANTE (T4) ..................................................................... 110 7. Plantas que fueron aplicadas bioestimulante BIO-SOLAR (T3) listas para

cosechar, tercera semana después de la primera aplicación ....................................... 110

8. Plantas testigo SIN BIOESTIMULANTE (T4), segunda semana ............................. 111 9. Testigo SIN BIOESTIMULANTE (T4). Segunda aplicación de bioestimulante

BIO-SOLAR T3 mediante bomba de mochila ........................................................... 111

10. Segunda semana, plantas testigo sin bioestimulante .................................................. 112 11. Plantas en estado garbanzo listas para aplicar bioestimulante HTP-B1 (T1) ............. 112

12. Aplicación de bioestimulante HTP-B1 (T1)............................................................... 113 13. Primera semana plantas aplicadas bioestimulante HTP-B1 (T1) ............................... 113

14. Tercera semana testigos TESTIGO ABSOLUTO (T4) ............................................. 114 15. Plantas en estado garbanzo listas para aplicar bioestimulante GRAND-ROSE

(T2) ............................................................................................................................. 114

16. Aplicación de bioestimulante GRAND-ROSE (T2) .................................................. 115 17. Flor de dos semanas después de la primera aplicación del bioestimulante HTP-

B1 (T1) ....................................................................................................................... 115 18. Mediciones de longitud y diámetro a las plantas que fueron aplicadas el

bioestimulante GRAND-ROSE (T2) .......................................................................... 116 19. Determinación de la intensidad de color .................................................................... 116

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ÍNDICE DE ANEXOS

ANEXOS PÁG.

1. Registro de aplicación de plaguicidas del mes de Diciembre 2015 ........................... 117 2. Registro de aplicación de plaguicidas del mes de Enero 2016 ................................... 118 3. Registro de aplicación de plaguicidas del mes de Enero 2016 ................................... 119 4. Registro de aplicación de plaguicidas del mes de Febrero 2016 ................................ 120 5. Registro de aplicación de bioestimulantes ................................................................. 121

6. Rosales silvestres ........................................................................................................ 122 7. Rosales antiguos ......................................................................................................... 122 8. Rosales modernos ....................................................................................................... 122 9. Rosales sarmentosos ................................................................................................... 123 10. Mutaciones de híbrido de Té ...................................................................................... 123

11. Rosales arbustivos o de parque .................................................................................. 123

12. Rosales de macizo ...................................................................................................... 124

13. Rosales miniatura ....................................................................................................... 124 14. Plantines de rosa listas para el transplante ................................................................. 124 15. Temperaturas, humedades relativas y puntos de rocío registradas el día 2 de

noviembre del 2015 .................................................................................................... 125

16. Grados día correspondiente al bloque 33 Rosa sp. cv Freedom ................................. 126 17. Formato del monitoreo fertirriego de la finca ............................................................ 129

18. Formato del monitoreo y control del fertiriego de la finca ........................................ 130 19. Propuesta de la fertilización foliar pico de San Valentín 2016 .................................. 131 20. Formato de la lista semanal de chequeo de operación del fertirriego ........................ 132

21. Programa de Fertilización de FalconFarms de Ecuador S.A. ..................................... 134 22. Aporte de cada fuente ................................................................................................. 135

23. Programa de fertilización de FalconFarms de Ecuador S.A. por áreas ...................... 136 24. Presupuesto de fertilización de Flores de la Montaña S.A. ........................................ 137

25. Registro de temperaturas del cuarto de evaluaciones en el mes de Diciembre

2015 ............................................................................................................................ 138

26. Registro de temperaturas del cuarto de evaluaciones en el mes de Enero 2016 ........ 139

27. Registro de temperaturas del cuarto de evaluaciones en el mes de Febrero 2016 ..... 140

xix

TEMA: Evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la

variedad Freedom Cayambe, Pichincha

Autor: Alexis José Rivera Mosquera


RESUMEN

El presente trabajo tuvo como objetivo evaluar el efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de

rosa (Rosa sp.) de la variedad freedom. Los tratamientos fueron: HTP-B1 (T1), GRAND-ROSE

(T2), BIO-SOLAR (T3), y el TESTIGO ABSOLUTO (T4); se aplicó un diseño completamente al

azar con ocho repeticiones para cada tratamiento. De los resultados, se determinó que el

tratamiento HTP-B1, fue el mejor en función del rendimiento por hectárea, tamaño de botón floral

e intensidad de color. La conclusión principal fue que, con este tratamiento se obtuvo una

diferencia de 6.51 días del ciclo productivo y una relación beneficio/costo de 1.46.

PALABRAS CLAVE: TRATAMIENTO HTP-B1. / RENDIMIENTO POR HECTÁREA. /

TAMAÑO DEL BOTÓN FLORAL. / INTENSIDAD DE COLOR. / RELACIÓN

BENEFICIO/COSTO. /

xx

THEME: Evaluation of the effect of three biostimulants on the cultivation of rose (Rosa

sp.) Of the variety Freedom Cayambe, Pichincha

Autor: Alexis José Rivera Mosquera


SUMMARY

The present work had as objective to evaluate the effect of three biostimulants in the cultivation of

rose (Rosa sp.) Of the variety freedom. The treatments were: HTP-B1 (T1), GRAND-ROSE (T2),

BIO-SOLAR (T3), and ABSOLUTE WITNESS (T4); A completely randomized design with eight

replicates was applied for each treatment. From the results, it was determined that the HTP-B1

treatment was the best in terms of yield per hectare, floral bud size and color intensity. The main

conclusion was that with this treatment a difference of 6.51 days of the productive cycle was

obtained and a benefit / cost ratio of 1.46.

KEY WORDS: HTP-B1 TREATMENT. / PERFORMANCE PER HECTAREA. / FLORAL

BUTTON SIZE. / COLOR INTENSITY. / BENEFIT / COST RELATIONSHIP. /

Quito, 18 de Julio de 2017

CERTIFICACIÓN

En calidad de tutor de trabajo de graduación cuyo título es "EVALUACIÓN DEL EFECTO DETRES BIOESTIMULANTES EN EL CULTIVO DE ROSA (ROSA sp.) DE LA VARIEDADFREEDOM CAYAMBE, PICHINCHA" presentado por el señor Alexis José Rivera Mosquera,previo a obtención del Título de ingeniero Agrónomo, certifico haber revisado y corregido elABSTRACT para el Trabajo de grado, aprobado por el mismo, después de realizadas lasobservaciones por los miembros del tribunal, por lo que apruebo el mismo, para el empastado final.

'Carlos Nieto J.A., Ph.D.TUTOR

XXI

1

1. INTRODUCCIÓN

Hace más de 20 años se inició el sector florícola con fines de exportación, actualmente existen unas 5 000 hectáreas dedicados a cultivo de flores de los cuales 74.8 % son de flores permanentes y 25.2 % flores transitorias, lo que ha representado un significativo crecimiento en la región Sierra. La producción se concentra en las provincias de Pichincha, considerada como zona dedicada al cultivo con 66 % del total de la producción, seguida de Cotopaxi con el 12.1 %, Azuay 5.8 %, Imbabura 5 %, y el resto de provincias como Carchi, Chimborazo, Cañar, Loja con 6.6 %. En lo que respecta a la Costa, el cultivo de flores tropicales se concentra en Guayas con el 4.4 %. La floricultura en el Ecuador constituye una de las actividades que más rubros genera por ingresos de exportaciones no tradicionales, generando cerca de 76 758 empleos directos. A nivel mundial, Ecuador se ha situado dentro de los principales exportadores de flores, ocupando el tercer lugar en las exportaciones mundiales de este producto (Proecuador, 2015). El desarrollo del sector florícola ha permitido la creación de más plazas laborales; el número de personas ocupadas en el sector mencionado ha sido estable con respecto a otros años, pues entre puestos directos e indirectos existen 120 000 plazas ocupadas especialmente en las zonas de Cayambe, Tabacundo (Pichincha), Cotopaxi y Azuay (INEC, 2015). La situación geográfica del país permite contar con micro climas y una luminosidad que proporciona características únicas a las flores, obteniendo prestigio y reconocimiento en el mercado internacional, por su calidad en tamaño y color, siendo los principales compradores Estados Unidos, Holanda, Alemania, Rusia, Italia, Canadá y en menor cantidad países como Francia, Suiza, España, Argentina, etc. El uso de bioestimulantes es una alternativa innovadora para un mayor crecimiento del botón de la rosa ecuatoriana, incrementando la calidad de la misma (Ramírez, 2009). El proceso de aplicación de los bioestimulantes permitirá a los productores de flores conseguir la incitación del crecimiento de sus botones, para obtener botones florales grandes, logrando así, el continuo posicionamiento del sector florícola en los principales mercados internacionales. Un aporte que les posibilitará a los empresarios de flores conseguir mayores ingresos en sus cultivos de exportación y de buena calidad. Según el mercado, se maneja el punto de corte o apertura de la flor, siendo Rusia y Japón los países que prefieren los puntos de corte más abiertos cuyas características son tallos de 70 - 90 cm y los botones florales de 6 cm ó más (González, 2012). En muchos cultivos, la participación de las flores de botón pequeño es alta, lo que genera un debilitamiento económico de las empresas. Además, las rosas de este tamaño tienen una menor aceptación en el mercado norteamericano, incluso no son exportadas en algunos períodos del año (Proecuador, 2015). La oferta actual de variedades de color rojo ha permitido contar con una alta aceptación en el mercado pese a ser de botón mediano, la propuesta de esta investigación se basa en el uso de bioestimulantes aplicados en los botones florales en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom, lo cual representará un potencial promisorio en los mercados actuales.

2

El presente estudio pretende ofrecer una alternativa para el desarrollo del botón de rosas de exportación de la variedad Freedom, mediante el empleo de bioestimulantes, ya que hasta la presente fecha en la compañía FalconFarms de Ecuador S.A./Flores de la Montaña S.A. no existe conocimiento acerca de la utilización de los bioestimulantes aplicados al botón floral. Además, las empresas que producen rosas de exportación precisan optimizar los factores costo y tiempo para mejorar la rentabilidad, por lo cual es fundamental fomentar el conocimiento mediante investigaciones que mejore el beneficio de las empresas.

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OBJETIVOS

Objetivo General

Evaluar el efecto de tres Bioestimulantes en el botón floral para el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom, en la zona de Cayambe, Pichincha.

Objetivos Específicos

Determinar el mejor bioestimulante para mejorar el tamaño y la coloración del botón

floral en la variedad Freedom.

Fijar en qué etapa son efectivos los bioestimulantes de acuerdo al estado fenológico para

el cultivo de rosas de la variedad Freedom.

Realizar el análisis financiero de los tratamientos en estudio.

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HIPÓTESIS

Ho: Ninguno de los bioestimulantes aporta mayor influencia sobre el tamaño y coloración del botón floral en la variedad Freedom. Ha: Al menos uno de los bioestimulantes aporta mayor influencia sobre el tamaño y coloración del botón floral en la variedad Freedom.

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2. REVISIÓN DE LITERATURA 2.1. FALCONFARMS DE ECUADOR S.A. 2.1.1. Información de la Empresa FalconFarms de Ecuador S.A. es la nueva compañía fusionada por dos empresas: Grupo Flores de la Montaña S.A. y FalconFarms, esta es un grupo de productores de flores formada en 1990 con el nombre de Flores de la Montaña S.A. cuyo propósito es fue de producir y exportar flores ecuatorianas de la más alta calidad en el mundo. Están comprometidos en producir flores con la más alta calidad y servicio y en la actualidad la empresa tiene cinco grandes plantaciones de flores con más de 46 Ha de tierra dedicadas a la producción de rosas (FalconFarms de Ecuador S.A./Flores de la Montaña S.A., 2016). La misma fuente señala que, la fusión de estas dos empresas desarrolla una actividad común, uniendo sus patrimonios; lo que permite el crecimiento como una compañía posicionándose en el mercado como la primera empresa de exportación de flores, llegando a ser la mejor a nivel nacional y brindando oportunidad de trabajo a la comunidad. 2.1.2. Ubicación País: Ecuador Provincia: Pichincha Ciudad: Quito Latitud: 0°1’ 28”N Longitud: 78°8’36”O Altitud: 2 774 Msnm 2.1.3. Compromiso social Dentro de las plantaciones de la empresa hay más de 900 trabajadores, los cuales poseen beneficios sociales, médicos y otros gratuitos, además de los requeridos por la ley. Estos beneficios contribuyen al bienestar general de los trabajadores. Como grupo, participan y son líderes en varias organizaciones cuya finalidad es ayudar en el crecimiento y desarrollo de las localidades de Cayambe y el Quinche, las cuales son donde se encuentran las plantaciones de la empresa. 2.1.4. Compromiso ambiental FalconFarms de Ecuador S.A. es un Grupo que respeta las políticas ambientales y es parte del Programa Medioambiental "La Flor del Ecuador", que está dirigido por la Asociación Ecuatoriana de Exportadores de Flores "Expoflores". Además, la empresa participa en el negocio y la lucha contra el contrabando e ingreso de drogas a la flor de exportación "B.A.S.C." para poner en práctica medidas de seguridad, que garantiza la correcta entrega de sus envíos, y está asociada con la certificación ambiental y social RAINFOREST, el cual pone las mejores condiciones sociales y ambientales de actividades agrícolas.

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2.1.4.1. B.A.S.C. B.A.S.C. (Business For Secure Commerce), Alianza Empresarial para un comercio seguro como organización y sistema de gestión, agrupa a más de 600 empresas de amplios sectores productivos del país, que a través de capacitaciones, homologaciones y auditorías, además de todos los otros servicios que ofrece a sus afiliados, B.A.S.C. agrega valor a la seguridad del comercio mundial. Talleres, cines, foros, desayunos de trabajo, sensibilización personalizada, seminarios, giras de trabajo nacionales e internacionales, visita de instalaciones, alianzas estratégicas con autoridades públicas, entre otras tantas actividades; hacen que las operaciones de exportación de FalconFarms de Ecuador S.A. sean más confiables. Con el proceso de globalización, las organizaciones de los distintos países del mundo han fortalecido la comunicación e interdependencia, mediante la unión de mercados, sociedades y culturas, a través de una serie de transformaciones sociales, económicas y políticas; sin embargo, existen amenazas, lo que ha permitido que las organizaciones estén al margen de la ley, por lo que las fronteras ya no son ningún obstáculo a delitos. En medio de esta vorágine mundial de intercambio de información, datos, desplazamiento de carga y personas; el comercio global se ve seriamente amenazado y tiene la necesidad y obligación de proteger sus operaciones de las garras de la delincuencia. 2.1.4.2. Rainforest Forest Alliance Rainforest Alliance es una organización no gubernamental internacional que trabaja para conservar la biodiversidad y asegurar medios de vida sostenibles, mediante las transformaciones de prácticas de uso del suelo, prácticas empresariales, y el comportamiento de los consumidores. FalconFarms de Ecuador S.A. ha obtenido el sello Rainforest Allience Certified por dar pasos para:

Mantener el sistema de gestión social y ambiental

Conservar los sistemas naturales

Proteger la vida silvestre

Conservar los recursos hídricos

Asegurar el bienestar de los trabajadores y sus familias facilitando el acceso a la

educación y la atención en salud

Vincularse en relaciones comunitarias

Lograr un equilibrio responsable en el manejo integrado de plagas, manejo y conservación

del suelo, y en el manejo integrado de desechos

2.1.5. Misión Producir y comercializar flores de corte de exportación para satisfacer los requerimientos de sus clientes, garantizando la consistencia en la calidad de sus productos y servicio superior; asegurando costos de operación competitivos, bienestar y desarrollo integral de su gente, responsabilidad social y ambiental; para garantizar la rentabilidad sostenible del grupo (FalconFarms de Ecuador S.A./Flores de la Montaña S.A., 2016).

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2.1.6. Visión FalconFarms de Ecuador S.A./Flores de la Montaña S.A. será reconocida por:

Sus altos niveles de productividad rentable logrados

Ser el mejor aliado de clientes y proveedores

Ser una buena opción laboral del sector

Su responsabilidad social y ambiental (FalconFarms de Ecuador S.A./Flores de la Montaña

S.A., 2016).

2.1.7. Política integral La misma fuente indica que, la compañía FalconFarms de Ecuador S.A., está comprometida a mejorar continuamente sus operaciones de cultivo y comercialización de flores con: 1) productividad; 2) calidad; 3) rentabilidad; y 4) solidez organizacional. En búsqueda de la constante satisfacción de los clientes. La Florícola identifica y controla los riesgos asociados con su actividad, busca fomentar el desarrollo y bienestar de los empleados y demás partes interesadas. Protege el ambiente previniendo y mitigando los impactos que pueden causar sus procesos; y además cumple con la legislación y otros requisitos aplicables al negocio. 2.1.8. Protección corporativa FalconFarms de Ecuador S.A. está comprometida a desarrollar actividades contra el terrorismo, evitar el lavado de dinero y activos; el contrabando de mercancías y armas; y especialmente la contaminación de su carga con narcóticos o cualquier sustancia ilícita. Todo directivo o empleado de la compañía, se compromete a colaborar con las autoridades respectivas en todos los casos que en estas lo requieran (FalconFarms de Ecuador S.A./Flores de la Montaña S.A., 2016). 2.2. Bioestimulantes Los bioestimulantes son aquellos productos capaces de incrementar el desarrollo, la producción y crecimiento de los vegetales, incluyendo hormonas, aminoácidos, vitaminas, enzimas y elementos minerales, y son los más conocidos y de uso común en la agricultura (Bietti & Orlando, 2003). Guerrero (2006), en su investigación manifiesta que los bioestimulantes en general, son substancias orgánicas derivadas en su mayoría de materiales vegetales (extractos), algas marinas entre otros, lo que garantiza una elevada concentración de aminoácidos útiles y una relación equilibrada de nutrientes acorde con las necesidades de la planta. Según Saborío (2002), el término bioestimulante se refiere a sustancias que, a pesar de no ser un nutrimento, un pesticida o un regulador de crecimiento, al ser aplicados en cantidades pequeñas generan un impacto positivo en la germinación, el desarrollo, el crecimiento vegetativo, la floración, el cuajado y/o el desarrollo de los frutos. Esta definición resulta poco específica y ello ha conducido a que en el mercado el término bioestimulante se utilice para describir una amplia gama de productos, que van desde extractos de plantas hasta extractos animales, además combinaciones de estos con productos de reconocida función, tales como nutrimentos, vitaminas o reguladores de crecimiento.

8

2.2.1. Formulaciones de los bioestimulantes Existen diversos tipos de formulación de bioestimulantes, unos químicamente bien definidos como los compuestos por aminoácidos, polisacáridos, oligopéptidos o polipéptidos; los complejos en cuanto a su composición química, como los extractos de algas y ácidos húmicos, los cuales contienen los elementos ya mencionados, pero en combinaciones diferentes y en algunos casos con sus concentraciones reportadas en rangos y no con valores exactos (Saborío, 2002). La concentración en los bioestimulantes casi siempre es baja (menos de 0,02% o 200 ppm de cada hormona en un litro), así como también la de los demás componentes de la formulación. Los tipos de reguladores de crecimiento contenidas y las cantidades de cada una de ellas dependen del origen de la extracción (algas, semillas, raíces, etc) y su procesamiento (Bietti & Orlando, 2003). 2.2.1.1. Formulaciones a base de aminoácidos Estos bioestimulantes poseen aminoácidos en diferentes composiciones: libres, en cadenas cortas (1-10 aminoácidos) oligopéptidos, o en cadenas largas (mayor de 10 aminoácidos) polipéptidos (Saborío, 2012). Las plantas sintetizan los aminoácidos a través de reacciones enzimáticas por medio de procesos de aminación y transaminación. El primero de ellos es producido por sales de amonio absorbidas del suelo y ácidos orgánicos, producto de la fotosíntesis. La transaminación permite, además, producir nuevos aminoácidos a partir de otros preexistentes (Latorre, 2011). Saborío (2002), indica que la síntesis de proteínas por la planta se realiza a partir de los aminoácidos sintetizados, siendo indispensable la presencia de todos y cada uno de ellos (Figura 1). Figura 1. Simplificación de los procesos de síntesis de aminoácidos, proteínas y enzimas

Fuente: Saborío, 2002 Debido a que en su formulación los bioestimulantes contienen aminoácidos libres los cuales tienen un bajo peso molecular son transportados y absorbidos rápidamente por la planta, aprovechando la síntesis de proteínas, ahorrando gran cantidad de energía que se concentra en el incremento de la producción. Los aminoácidos por ser los componentes básicos de las proteínas intervienen en la formación de los tejidos de soporte, membranas de las células para llevar acabo numerosos y vitales procesos internos de las plantas como son crecimiento, fructificación, floración entre otros (Guerrero, 2006).

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2.2.1.2. Formulaciones a base de aminoácidos con reguladores de crecimiento Los reguladores de crecimiento de plantas son compuestos orgánicos, diferentes de los nutrimentos que en pequeñas cantidades promueven, inhiben o modifican uno o varios procesos fisiológicos en las plantas (Saborío, 2002). Latorre (2011), expresa que el término “reguladores de crecimiento” “fitorreguladores” incluye sustancias presentes en la naturaleza o compuestos sintéticos que actúan a muy bajas concentraciones, regulando el crecimiento, desarrollo o metabolismo del vegetal; y determinan respuestas a nivel de crecimiento, metabolismo o desarrollo en la planta. Existen diferentes sitios donde ocurre la síntesis de los reguladores de crecimiento (Cuadro 1). Cuadro 1. Sitio de síntesis de los diferentes reguladores de crecimiento

Regulador de Crecimiento Sitio de Síntesis

Auxinas Polen, meristemas, primordios foliares, Hojas jóvenes

Semillas y frutos en expansión

Giberelinas Semillas en desarrollo; y brotes en activo crecimiento

Citoquininas

Raíces, frutos; y tejidos seminales

Etileno

Todos los tejidos según etapa de desarrollo

Ácido abscísico

Hojas (cloroplastos y plastidios)

Brasinosteroides

Polen, hojas, flores, semillas, brotes

Salicicatos

Hojas, estructuras reproductivas

Jasmonatos Meristema apical

Hojas jóvenes

Frutos inmaduros

Meristema radical

Fuente: Saborío, 2002

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2.2.1.2.1. Auxinas Saborío (2002), explica que fueron descubiertas por Frits Went en 1926, y posteriormente en 1934 la auxina es purificada, y debido a su efecto en el crecimiento es conocida como la “hormona del crecimiento”; y por más de 25 años figura como la única hormona vegetal, que a partir de la cual se explicaban todos los procesos de crecimiento celular. Wil (2012), expresa que la síntesis de las auxinas se concentra en el meristema apical y hojas jóvenes; y su transporte es siempre de las partes superiores a las inferiores (dirección basípeta). Este tipo de movimiento tiene una influencia directa en el crecimiento y diferenciación de la planta; lo cual se denomina como el “mecanismo de acción de las auxinas” (Figura 2). Figura 2. Mecanismo de acción de las auxinas

Fuente: Wil, 2012 Las máximas concentraciones de auxinas se encuentran en los ápices en crecimiento, es decir, en la punta del coleóptilo, en las yemas y en los ápices en crecimiento de las hojas y de las raíces (Rojas & Ramírez, 1987; Jensen & Salisbury, 1994). Las auxinas son de origen natural y otras se producen sintéticamente. Entre las auxinas el ácido indolacético (AIA) es el principal compuesto de producción natural, pero las más utilizadas son el ácido indolbutírico (AIB) y ácido diclorofenoxiacético (2,4-D), que son obtenidas sintéticamente, pero muy similares al AIA y no existen en forma natural en las plantas (Salisbury & Ross, 1994). El precursor de las auxinas es el aminoácido triptofano. La auxina más común es el ácido índole acético, pero existen una serie de auxinas sintéticas con mayor actividad y estabilidad. Entre ellas están: ácido índole butírico (IBA), el 2,4 D (que es usado como herbicida a altas concentraciones), el ácido naftalene acético (ANA), el dicamba, el tordón o picloram y el 2,4,5 T (ácido 2,4,5 Triclorofenoxiacético) (Saborío, 2002).

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Saborío (2002); y Wil (2012), indican que las auxinas están involucradas en los siguientes diversos procesos fisiológicos:

Crecimiento

Respuesta a la luz y a la gravedad (tropismos)

Dominancia apical

Senescencia

Diferenciación de xilema y floema

Diferenciación del xilema secundario

Diferenciación de yemas axilares y raíces,

Crecimiento de tallos y frutos,

Regeneración de tejido vascular

La inducción de raíces adventicias

Estimulación en la formación de raíces adventicias

Inhibición de la abscisión o caída de frutos

Incitación a la floración en algunas especies

Respuesta a la síntesis de etileno

Estimulación en el cuaje y la maduración de frutos

2.1.1.2.2. Citoquininas En 1892 Wiesner sugirió que debía existir una sustancia que regulara la división celular en plantas, pero fue hasta 1955 que Miller logró aislar una sustancia a partir de tejido animal que inducía la división celular en presencia de auxinas, la kinetina. En 1964 Lethan aisló la primera citoquinina de plantas, la zeatina (Saborío, 2002). Según se les dio el nombre de citoquininas debido a que provocan la citocinesis: división de la célula (formación de una nueva pared celular), siendo la división del núcleo simultánea o previa a ella (Jensen & Salisbury, 1994). La acumulación de citoquininas en el pecíolo implica que las hojas maduras pueden suministrar citoquininas a las hojas jóvenes y a otros tejidos jóvenes a través del floema, siempre que, por supuesto, esas hojas puedan sintetizar citoquininas o recibirlas de las raíces (Salisbury & Ross, 1994). En general los niveles de citoquininas son máximos en órganos jóvenes (semillas, frutos y hojas) y en las puntas de las raíces. Parece lógico que se sinteticen en esos órganos, pero la mayoría de los casos no podemos desechar la posibilidad de su transporte desde otro lugar (Rojas & Ramírez, 1987; Salisbury & Ross, 1994). Las auxinas y las citoquininas son indispensables para iniciar crecimiento en tallos y raíces, no siendo necesarias las aplicaciones externas porque las producciones endógenas rara vez son limitantes (Salisbury & Ross, 1994).

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Tal y como se muestró en el Cuadro 1, los sitios de síntesis de las citoquininas, son las semillas en desarrollo, los brotes en crecimiento y las raíces. Su biosíntesis ocurre a partir de la adenosina monofosfato y el isopentenil pirofosfato. La zeatina es la citoquinina con mayor actividad, pero existen otras citoquininas naturales como la adenina, la kihidrozeatina, la dimetilaliladenina (DMAA), la metiltiozeatina y otras de origen sintético como la kinetina, la benziladenina (BA), la tetrahidropiranilbenziladenina (PBA) y la difenilurea (Saborío, 2012). Saborío (2002); y Wil (2012), indican que las citoquininas están involucradas en una serie grande de actividades fisiológicas en las plantas:

Estimulación en la división celular y crecimiento

Formación de órganos

Alargamiento celular

Retraso en la degradación de la clorofila

Desarrollo de cloroplastos

Retraso de la senescencia y translocación de nutrimentos

Inhibición del desarrollo de raíces laterales

Rompimiento de la latencia de yemas axilares

Estimulación en la organogénesis en los callos celulares

Retraso en la senescencia o envejecimiento de órganos vegetales

Incitación en la expansión celular en los cotiledones y hojas

2.1.1.2.3. Giberelinas Al mismo tiempo que Frits Went descubría las auxinas (1926) los patólogos vegetales japoneses estaban a punto de descubrir el segundo grupo importante de hormonas vegetales; las giberelinas (Jensen & Salisbury, 1994). Las giberelinas son diterpenoides ácidos derivados del hidrocarburo deterpenoide tetracíclico ent-kaureno. Este es originado a partir de la acetil coenzima A la cual forma primero el mey. La mayoría de las giberelinas poseen 20 átomos de carbono de su precursor. Los demás han perdido el átomo de carbono número 20. Las nomemclatura de las giberelinas en GA1, GA2, ... Gan, donde el subíndice solo indica el orden de su descubrimiento. Actualmente existen más de 80 siendo GA1, GA3, GA4; y GA7 los más comunes (Saborío, 2002). Las giberelinas son sintetizadas en semillas en desarrollo y en brotes en activo crecimiento; y viajan rápidamente en todas direcciones a través de la planta: en el xilema y el floema, o a lo largo del parénquima cortical o de otros tejidos parenquimatosos. (Jensen & Salisbury, 1994). Su actuación es sobre el ARN descomprimiendo genes que en algunos casos se han identificado. A diferencia de las auxinas la acción estimulante del crecimiento se manifiesta en un rango muy amplio de concentraciones lo cual parece indicar que el número de receptores es muy grande o bien hay una continua síntesis de ellos (Rojas & Ramírez, 1987). El efecto más sorprendente de rociar giberelinas en las plantas es la estimulación del crecimiento. Los tallos de las plantas asperjadas se vuelven generalmente mucho más largos que lo normal siendo más importante en plantas jóvenes (Kossuth, 1987).

13

Saborío (2002); y Wil (2012), señalan que las principales funciones de las giberelinas son:

Participar en los procesos fisiológicos de actividad en: crecimiento del tallo, floración,

germinación, dormancia, expresión sexual, senescencia, amarre y crecimiento de los

frutos; y la partenocarpia.

Existe una interacción directa entre las citoquininas y las giberelinas, ambos comparten la

isopentenilpirofosfato como intermediario en su biosíntesis.

Entre las aplicaciones prácticas de las giberelinas se encuentra la inducción de la

germinación de semillas; y la sustitución de la necesidad de fotoperíodo o vernalización.

Interrumpen el periodo de latencia en las semillas, haciéndolas germinar y movilizan las

reservas en azucares

Inducen la brotación de yemas

Estimulan la síntesis de (RNA mensajero)

2.1.1.2.4. Ácido abscísico Saborío (2002), manifiesta que el ABA se encuentra presente en todas las plantas vasculares. Ha sido detectado en la mayoría de los órganos de las plantas. Es sintetizado en todas las células que contienen cloroplastos o amiloplastos. Se transporta por el xilema y el floema; y en contraste con las auxinas, las citoquininas y las giberelinas, el ABA y el etileno actúan como inhibidores del crecimiento e inhibidores de procesos metabólicos. Para Saborío (2002); y Wil (2012) las funciones del ácido abscísico son:

Inducir la dormancia de yemas y semillas

Inhibir el crecimiento inducido por auxinas

Inhibir la división celular

El ABA está asociado con el cierre estomático bajo condiciones de estrés, lo que permite a

la planta mantener su control hídrico

Intervención y asociación procesos de absición y senescencia

Participa en el antagonismo de giberelinas

2.1.1.2.5. Etileno En 1934 Gane identifica al etileno como un producto natural de las plantas, pero fue hasta 1954, con el advenimiento de la cromatografía de gases, que se logró de mostrar y cuantificar la actividad del etileno (Saborío, 2002). El etileno es el compuesto inorgánico insaturado más sencillo (C2H4). Es un gas en condiciones fisiológicas de temperatura y presión, producto natural del metabolismo vegetal que influye sobre el crecimiento de las plantas en cantidades muy pequeñas. Su movimiento es pasivo y la distribución es sistémica y rápida, pues esta ocurre a través de los espacios intercelulares y demás el etileno es soluble en agua y lípidos (Latorre, 2011). Según Saborío (2002), el etileno es sintetizado en todos los órganos de la planta, pero en mayor grado en tejidos senescentes y frutos inmaduros, este proceso ocurre a partir del aminoácido metionina; y las reacciones que lo generan han sido ampliamente estudiadas, lo que ha permitido la manipulación de su acumulación.

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Saborío (2002); y Wil (2012), indican que la actividad fisiológica del etileno está relacionada con:

Maduración de los frutos

Abscisión

Senescencia (envejecimiento)

Caída de hojas

Epinastia (crecimiento más fuerte en la superficie superior que en la inferior)

Apertura del gancho de germinación

Rotura de la dormancia en semillas

Promoción del crecimiento

Inducción de la formación de raíces por geotropismo positivo (hacia la base)

Inducción/inhibición de la floración dependiendo del cultivo

Inducción de la senescencia

2.1.1.2.6. Otros reguladores de crecimiento Saborío (2012), presenta las funciones fisiológicas que cumplen otros reguladores de crecimiento (Cuadro 2). Cuadro 2. Actividades fisiológicas relacionadas a reguladores de crecimiento

Regulador de crecimiento

Actividad

Brasinosteroides

Germinación Incremento a la resistencia al frío

Resistencia a los ataques de plagas y patógenos Resistencia a daños por herbicidas

Aumento de producción

Salicilatos

Inducción de floración Resistencia al ataque de plagas y patógenos

Jasmanatos

Aumento en la respuesta a estímulos externos: heridas, elicitores, fuerzas mecánicas, estrés osmótico

Poliaminas

División celular Envejecimiento

Fuente: Saborío, 2002 2.2.1.3. Formulaciones a base de aminoácidos con nutrimentos Los bioestimulantes también pueden incluir micro-nutrimentos o fertilizantes de nitrógeno, fósforo y potasio. Típicamente, el nivel de NPK en bioestimulantes es bajo, por lo que las plantas requieren de aplicaciones de fertilizantes tradicionales (Saborío, 2012; fabricante Annquímica, 2015).

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2.2.1.4. Formulaciones a base de aminoácidos con vitaminas Según Latorre (2011), las vitaminas son compuestos orgánicos que en concentraciones bajas, tienen funciones catalizadoras y reguladoras en el metabolismo de la célula. Debe notarse que, a diferencia de los animales, las plantas tienen la habilidad de sintetizar vitaminas. Por lo anterior, Saborío (2002) señala que los bioestimulantes también pueden contener varios paquetes de vitaminas. 2.2.1.5. Formulaciones combinadas Otras formulaciones incluyen combinaciones de las formas expuestas anteriormente. 2.2.1.6. Formulaciones con carbohidratos Los hidratos de carbono son compuestos que contienen además de carbono, hidrógeno y oxígeno en proporción de 2 a 1. Este nombre también se usa para algunos de sus derivados en los que la definición dada no se cumple estrictamente. Estos compuestos son de importancia fundamental en la biósfera y se elaboran durante la fotosíntesis (Figura 3). Por fotosíntesis las plantas verdes y las algas pueden usar la energía solar para sintetizar hidratos de carbono a partir de dióxido de carbono atmosférico que, en algunos casos, son consumidas por el hombre y los animales para su alimento (Latorre, 2011). Figura 3. Ecuación de la fotosíntesis

ΔG = 2.88 x 106 J Es decir, ΔG = 4.8x105 J por mol de C fijado En la ecuación, ΔG indica un valor positivo de energía libre por cada mol de C fijado Fuente: Latorre, 2011

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Para Vázquez (2003), las funciones de los carbohidratos se pueden generalizar en:

Energéticas (glucógeno en animales y almidón en vegetales, bacterias y hongos)

La glucosa es uno de los carbohidratos más sencillos comunes y abundantes; representa a

la molécula combustible que satisface las demandas energéticas de la mayoría de los

organismos

De reserva, los carbohidratos se almacenan en forma de almidón en los vegetales

(gramíneas, leguminosas y tubérculos) y de glucógeno en los animales. Ambos

polisacáridos pueden ser degradados a glucosa.

Compuestos estructurales (como la celulosa en vegetales, bacterias y hongos y la quitina

en artrópodos), los carbohidratos estructurales forman parte de las paredes celulares en

los vegetales y les permiten soportar cambios en la presión osmótica entre los

espacios intra y extracelulares. Esta, es una de las sustancias naturales más abundantes

en el planeta. En las grandes plantas y en los árboles, la celulosa, estructura fibrosa

construida de glucosa, cumple la doble función de carga y soporte. La celulosa es de

origen vegetal principalmente, sin embargo algunos invertebrados tienen celulosa en sus

cubiertas protectoras. El polisacárido estructural más abundante en los animales es la

quitina.

En los procariontes forma la pared celular construida de azúcares complejos como

los péptidoglicanos y ácidos teicoicos. A las propiedades de esta estructura se le atribuyen

muchas de las características de virulencia y antigenicidad. En algunos animales como los

insectos los carbohidratos forman la quitina, el ácido condroitín sulfúrico y el

ácidohialurónico, macromoléculas de sostén del aparato muscular.

Precursores, los carbohidratos son precursores de ciertos lípidos, proteínas y dos factores

vitamínicos, el ácido ascórbico (vitamina C) y el inositol.

Señales de reconocimiento (como la matriz extracelular), los carbohidratos intervienen en

complejos procesos de reconocimiento celular, en la aglutinación, coagulación y

reconocimiento de hormonas.

Ciertos bioestimulantes en su composición están formulados a base de carbohidratos, gracias a estos ingredientes activos se logra proveer a la planta del primer producto estable de la fotosíntesis, glucosa y glucosa-6-fosfato, con el cual la planta genera una serie de reacciones bioquímicas mejorando el metabolismo vegetal tal como señalan los fabricantes HTP, 2015 y Annquímica, 2015. 2.2.1.7. Formulaciones húmicas Las sustancias húmicas son compuestos de naturaleza polimérica derivados de la lignina y celulosa, formados por cadenas de propanil benceno con cadenas alifáticas laterales en las que hay grupos reactivos carboxílicos, quinónicos, oxihidrilos, etc. y se componen de ácidos húmicos y ácidos fúlvicos que se separan en fabricación gracias a su diferencia de solubilidad en medio ácido o alcalino (Padilla, 2011).

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Los bioestimulantes a base de ácidos húmicos son formulaciones líquidas de sustancias húmicas que se emplean habitualmente mediante el agua de riego o en pulverización foliar para incrementar la absorción y asimilación de los nutrimentos minerales, de tal forma que actúan sobre el cultivo incrementando el vigor, rendimiento y calidad de la producción. Al ser aplicado al suelo mejora sustancialmente las características agronómicas de este, como: textura y estructura, porosidad; y permeabilidad (Saborío, 2002). 2.2.1.8. Formulaciones a partir de algas En 1979, dos biólogos marinos y un ingeniero mecánico descubrieron niveles altos de bioestimulantes presentes en las células del alga marina fresca, Ecklonia maxima. En la actualidad existen varios tipos de algas a partir de las cuales se obtiene bioestimulantes, entre ellas el alga marina noruega (Ascophyllum), la cual se recoge fuera de las costas de Inglaterra, Irlanda, Noruega, Gulfweed (Sargassum), una planta del mar flotante que se siega fuera de la costa de Carolina del Norte; y Kelp (Macrcystis gigante) encontrada en el noroeste del Pacífico de Estados Unidos (Horneman, 2002). Para Saborío (2002), el alga marina contiene 60 o más minerales y algunos reguladores de crecimiento de plantas. No es, sin embargo, un fertilizante completo. Tiene una cantidad regular de nitrógeno y potasio, pero es muy bajo en fósforo. 2.2.2. Síntesis de los bioestimulantes Saborío (2002) indica que, los productos a base de aminoácidos que existen en el mercado nutricional proceden principalmente de:

Síntesis química

Fermentación bacteriana

Hidrólisis ácida

Hidrólisis enzimática

Doble hidrólisis enzimática

Digestión alcalina

Congelamiento

Estallido celular mecánico 2.2.3. Modo de acción de los bioestimulantes Pese al correcto manejo agronómico del cultivo de rosas en las fincas, no es posible obtener botones de mayor tamaño y de diferentes colores que aquellos definidos para cada variedad; por tanto, para lograr colores más intensos y mejorar la calidad de la flor, se necesita utilizar algunos productos para estimular el crecimiento de la planta, aumentar el color en el botón floral, y así, lograr la armonía tallo - botón (Espinosa, 2013). Saborío (2002), manifiesta que el efecto de los bioestimulantes va a depender de su composición y de su diversidad; si se excluye el efecto de componentes de acción conocida como los reguladores de crecimiento (auxinas, citoquininas, etileno, etc.) el modo de acción de los bioestimulantes puede explicarse de diferentes maneras:

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2.2.3.1. Ahorro energético Al aplicar bioestimulantes formulados a base de aminoácidos se suple a la planta con estos bloques estructurales (aminoácidos). Esto favorece el proceso de producción de proteínas con lo que se produce un ahorro de energía que la planta puede dirigir hacia otros procesos tales como floración, cuajado y producción de frutos. Este ahorro de energía tiene un valor especial cuando estos productos son aplicados en un momento en el cual el cultivo está debilitado por alguna condición extrema como un estrés hídrico, una helada, ataque de una plaga, un transplante, el transporte de una localidad a otra, enfermedades y/o efectos fitotóxicos tales como la aplicación indebida de productos fitosanitarios, etc. (Saborío, 2002). 2.2.3.2. Suplemento de aminoácidos de alto consumo Latorre (2001), expresa que en los momentos iniciales de la emergencia y primer crecimiento es cuando la planta necesita mayor aporte de nitrógeno, que es necesario para la formación de porifirinas, las mismas que son los pilares estructurales de la clorofila y los citocromos. La síntesis de porifirinas precisa de glicina. La glicina es un aminoácido que se encuentra presente en distintas formulaciones de bioestimulantes; así como también otro importante aminoácido incluido en la formulación de estos productos, es el ácido glutámico. Esta sustancia, a través del proceso de transaminación, produce una larga serie de aminoácidos en los que interviene en algún lugar de su proceso biosintético (Saborío, 2002). 2.2.3.3. Formación de sustancias biológicamente activas La respuesta de la planta a la aplicación de los aminoácidos se ha asociado a la formación de sustancias biológicamente activas, las cuales actúan vigorizando y estimulando la vegetación, por lo que resultan de gran interés en los períodos críticos de los cultivos, o en aquellos cultivos de producción altamente intensiva (invernaderos, cultivos hidropónicos, etc.). Aunque la naturaleza de estas sustancias no es conocida, se ha demostrado que estimulan la formación de clorofila, de ácido indolacético (AIA), la producción de vitaminas y la síntesis de numerosos sistemas enzimáticos (Latorre, 2011). La acción combinada de los efectos bioestimulantes y hormonal suele traducirse en estímulos sobre la floración, el cuajado de los frutos, adelanto en la maduración y mejora del tamaño, coloración, riqueza en azúcares y vitaminas. Por lo que, las transformaciones de aminoácidos en nuevos aminoácidos, así como otras reacciones bioquímicas, son reguladas por hormonas y principalmente por las enzimas que juegan el papel de catalizadores biológicos. Los bioestimulantes a base de aminoácidos parecen afectar de algún modo positivo alguno de estos mecanismos (Saborío, 2002). 2.2.3.4. Producción de antioxidantes Saborío (2002), ejemplifica que en una investigación las plantas sometidas bajo condiciones de estrés redujeron su metabolismo, debido a un aumento de sustancias oxidantes. Los antioxidantes pueden evitar niveles tóxicos de estas sustancias, pero una planta no siempre puede producir suficientes antioxidantes para ser beneficioso. Se ha encontrado que tras aplicaciones de extracto del alga marina se refuerza el número de antioxidantes, con lo cual se mejora el metabolismo de la planta (Maneveldt & Frans, 2003).

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En los bioestimulantes orgánicos, los componentes más activos son las vitaminas de estrés. El ascorbato es la sustancia más activa, seguida por hidrolizado de caseína. Además de actuar como un antioxidante, el ascorbato parece que promueve la formación del xilema (Saborío, 2002). 2.2.3.5. Efecto regulador sobre el metabolismo de los microelementos Los aminoácidos pueden formar quelatos con diferentes microelementos (hierro, cobre, zinc y manganeso especialmente), favoreciendo su transporte y penetración en el interior de los tejidos vegetales (Padilla, 2011). Esta cualidad de introducir moléculas al interior de los tejidos vegetales se aprovecha actualmente para mejorar la eficacia de diversos productos fitosanitarios sistémicos o penetrantes como herbicidas, fitorreguladores etc., permitiendo reducir incluso sus dosis de aplicación; un ejemplo evidente de lo señalado es el uso de bioestimulantes que contienen ácido ascórbico, pues este actúa como antioxidante promoviendo la formación del xilema; y además favorecen la captación de nutrimentos al actuar como bombas de microelementos (Saborío, 2002). Sin embargo, el mismo autor advierte que en algunos casos esta característica de los bioestimulantes puede tener efectos negativos, ya que existe una incompatibilidad biológica entre productos a base de aminoácidos y compuestos cúpricos, debido a que los aminoácidos forman uniones con el cobre y al penetrar en los tejidos vegetales produce fitotoxicidad. 2.2.3.6. Incremento de polifenoles

Se sugiere que las plantas tratadas con bioestimulantes son más resistentes a los insectos, posiblemente porque ellas son más vigorosas, y pueden producir más de los compuestos defensivos (los cuales son energéticamente caros) como los polifenoles (Jiménez, 2009).

2.2.3.7. Regulación fisiológica bajo condiciones de estrés hídrico Saborío (2002), aclara que la adición de bioestimulantes a plantas estresadas, permite la recuperación de la planta a valores normales en variables metabólicas, estructurales y fisiológicas, independiente del genotipo; lo que sugiere que los bioestimulantes pueden interferir en el metabolismo dañado de las plantas como un compuesto no específico con un potencial múltiple para aliviar el estrés, ya que es posible que dichos productos actúen en estructuras celulares y moleculares, por ejemplo un efecto de protección en enzimas cuaternarias/estructura de isoenzimas o un efecto en los estomas o la resistencia cuticular. 2.2.4. Compatibilidad de los bioestimulantes con otros compuestos Entre los principales propósitos de utilizar los bioestimulantes en los cultivos de altos rendimientos son: suplir los requerimientos nutricionales en épocas críticas (caso micronutrientes esenciales); acortar o retardar ciclos en la planta e inducir etapas específicas fenológicas, además, de contrarrestar condiciones de stress en la planta; y aportar energéticamente en etapas productivas o nutrición foliar con fines de sanidad vegetal (Saborío, 2002).

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Los bioestimulantes actúan en la incitación de determinadas expresiones metabólicas y/o fisiológicas de las plantas, tales como el desarrollo de diferentes órganos (raíces, frutos, etc.), promoviendo la fotosíntesis y reduciendo los daños causados por stress (fitosanitarios, enfermedades, frío, calor, toxicidad, sequías, etc.), eliminando así las limitaciones del crecimiento y el rendimiento, de igual manera potenciando la defensa natural de las plantas antes y después del ataque de patógenos (Guerrero, 2006). Por lo mencionado anteriormente, el mismo autor añade que, los bioestimulantes inhiben la germinación de las esporas de los hongos, reducen la penetración del patógeno en el interior del tejido vegetal, mejorando así el estado nutricional y el equilibrio hormonal de la planta; facilitando la síntesis biológica de hormonas como las auxinas, giberelinas y citoquininas. Ciertos bioestimulantes pueden usarse en mezcla con insecticidas, fungicidas u otros fertilizantes solubles, pero antes es recomendable comprobar su compatibilidad con el otro producto, es decir, que se debe tener cuidado que este no precipite, caso contrario no es recomendable realizar la mezcla (Espinosa, 2013). 2.2.5. Modo de aplicación de los bioestimulantes La mayoría de los bioestimulantes se aplican sin dilución, directamente al follaje y/o al botón floral, aunque en ciertos casos también pueden ser aplicados al suelo ya sea por fertirrigación o en drench. Los bioestimulantes se recomiendan utilizar en las etapas de crecimiento del vegetal para un mejor aprovechamiento de sus compuestos (Espinosa, 2013). Saborío (2002), expresa que los bioestimulantes son utilizados en pulverizaciones foliares o a través de los sistemas de riego (tradicional, localizado, etc.). Con frecuencia los aminoácidos también se emplean mezclándolos con productos fitosanitarios (insecticidas, fungicidas, herbicidas) para potenciar la acción de los mismos. El mismo autor aclara que, aun cuando son nutrimentos, no es este aspecto el que justifica su utilización sino el efecto activador que producen sobre el metabolismo del vegetal. Por ello, resulta aconsejable, en la mayoría de los casos, que sean aplicados junto con un abono mineral adecuado al cultivo y a su estado fenológico. Algunos formulados, además de micronutrientes, contienen cantidades respetables de nitrógeno, fósforo y potasio. Los fabricantes de los bioestimulantes garantizan la composición y calidad del producto y no se responsabilizan por el uso imprudente, excesivo o indebido por parte del consumidor; ya que es de esperar un efecto positivo de la aplicación de bioestimulantes antes de aquellos momentos en los cuales las plantas realizan un mayor uso de nutrimentos y foto-asimilados, necesarios para la formación y desarrollo de órganos. En estos momentos las plantas se encuentran más propensas a sufrir desbalances metabólicos, y por ende a ser más susceptibles al ataque de enfermedades y plagas. 2.2.6. Absorción de los bioestimulantes En general, estos productos se caracterizan por ser, en mayor o menor medida, directamente asimilables por las plantas, no dependiendo su absorción de la función clorofílica; es decir, pasan a través de la epidermis al haz vascular desde el cual y con un consumo mínimo de energía, entran a formar parte de las células en lugares de activo crecimiento (Saborío, 2002).

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2.2.7. Advertencias y precauciones para el uso y aplicación de los bioestimulantes Los fabricantes indican las siguientes advertencias y precauciones que se deben tomar en cuenta al utilizar bioestimulantes:

No comer, beber o fumar durante las aplicaciones

Evitar el contacto con la piel, usar guantes de caucho, máscara y lentes protectores

Lavarse bien las partes expuestas con agua y jabón después de la aplicación

Guardar el producto en un lugar fresco y protegido de la luz

Almacenar en lugar seco, fresco y bien ventilado, evitando su exposición al sol

No dejar el producto al alcance de los niños

Utilizar el equipo adecuado como guantes de caucho, esponjas y mascarillas, y overol o ropa vieja

Si el producto entra en contacto con ojos y piel lavar el área afectada con abundante agua

2.2.8. Características de los bioestimulantes utilizados

Los productos que fueron utilizados para esta investigación fueron:

HTP-B1

GRAND-ROSE

BIO-SOLAR Según los fabricantes de los bioestimulantes utilizados en esta investigación indican que estos presentan compatibilidad con la mayoría de los plaguicidas como es el caso de BIO-SOLAR; sin embargo, para los bioestimulantes HTP-B1 y GRAND-ROSE los fabricantes recomiendan no mezclar con ningún plaguicida, por cuanto las aplicaciones son directas como productos puros. En FalconFarms de Ecuador S.A. en el período de realización del ensayo se ejecutó un programa de manejo integrado de plagas y enfermedades (MIPE) (Anexos 1-5). 2.2.8.1. HTP-B1 2.2.8.1.1. Descripción El fabricante HTP 2015, explica que HTP-B1 es un bioestimulante que se produce y se lo obtiene de manera natural, mediante un proceso biológico, que ayuda con el incremento del crecimiento en el botón floral, acortando el ciclo de 3 a 4 días dependiendo la variedad, además mejora la pigmentación del pétalo.

2.2.8.1.2. Composición

A continuación, en los Cuadros 3 y 4 se muestra la composición porcentual y las propiedades físico-químicas del bioestimulante HTP-B1 respectivamente.

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Cuadro 3. Composición Porcentual de HTP-B1

Carbohidratos: Glucosa, Manosa, Fructosa,

Xilosa, Galactosa, Otros

4.73 %

Aminoácidos: Alanina, Glicina, Leucina,

Valina, Treonina Cisteína, Metionina, Otros

0.52 %

Vitaminas: A, B1, B2, B5, B6, PP, C

0.0018 %

Fitohormonas: Giberelinas y Citoquininas

0.0014 %

Fuente: HTP, 2015 2.2.8.1.3. Propiedades físico-químicas

Cuadro 4. Propiedades físico- químicas de HTP-B1

Aspecto

Líquido transparente

Olor

Sin olor

pH

5.5 +/-0.2

Densidad 20 ºC

1.1 g/cm3

Estabilidad

12 meses

Fuente: Distribuidor y fabricante HTP, 2015

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2.2.8.2. GRAND-ROSE

2.2.8.2.1. Descripción Según el fabricante Ascora 2015, GRAND-ROSE es un bioestimulante agrandador del botón floral que está compuesto por fitorreguladores (2.1 g/L). 2.2.8.2.2. Composición El fabricante indica que, GRAND-ROSE consta de fitorreguladores en su composición; por otro lado, Latorre (2011) manifiesta que, los fitorreguladores son todas las sustancias que afectan el crecimiento de las plantas, pudiendo ser reguladores naturales o sintéticos; los primeros son elaborados por las plantas y los segundos son producidos en los laboratorios. En el Cuadro 16 se presenta las sustancias que son consideradas como fitorreguladoras. Cuadro 5. Sustancias fitorreguladoras

F I T O R R E G U L A D O R E S

Auxinas

Giberelinas

Citocininas

Ácido abscísico

Etileno

Brassinosteroides

Salicilatos

Jasmonatos

Otros compuestos

Vitaminas

Fuente: Latorre, 2011

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2.2.8.2.3. Beneficios del producto

Estimula el crecimiento del botón floral, logrando la armonía tallo - botón

Intensifica el color en el botón floral

Aumenta la longitud del pedúnculo sin causar deformación.

Alarga la vida en florero

Aumenta el tamaño del botón 2.2.8.2.4. Períodos de carencia Al ser un producto de baja toxicidad no tiene restricción. 2.2.8.2.5. Compatibilidad El fabricante indica que, GRAND-ROSE no se debe mezclar el producto con ningún plaguicida, por cuanto la aplicación es directa como producto puro. 2.2.8.3. BIO-SOLAR 2.2.8.3.1. Descripción El distribuidor Annquímica 2015, señala que BIO-SOLAR es un bioestimulante compuesto de extractos botánicos, que actúa como bioenergizante del metabolismo vegetal y también como promotor del contenido energético en hojas, flores, frutos y hortalizas, también actúa como inductor del color y palatabilidad de flores y frutos, gracias a sus ingredientes activos como se aprecian en el Cuadro 6. 2.2.8.3.2. Composición El fabricante-formulador de BIO-SOLAR indica que, BIOSOLAR en su composición se encuentran los siguientes ingredientes activos (Cuadro 6).

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Cuadro 6. Ingredientes activos de BIO-SOLAR

Fuente: Distribuidor y fabricante Annquímica, 2015 2.2.8.3.3. Beneficios del producto La empresa Annquímica (2015), señala que los beneficios que ofrece BIO-SOLAR son:

Provee a la planta del primer producto estable de la fotosíntesis, glucosa y glucosa-6-fosfato con el cual la planta genera una serie de reacciones bioquímicas mejorando el metabolismo vegetal.

Las aplicaciones de BIOSOLAR dentro de un programa nutricional para el cultivo de rosas, se manifiesta en diferentes beneficios de acuerdo al estado fenológico:

Regula y uniformiza cosecha en condiciones ambientales adversas como: días fríos, nublados, pocas horas luz, deltas de temperatura entre día y noche.

Evita ennegrecimiento del botón rojo causado por rayos U.V.

Fija color del botón

Mejora tamaño y textura del botón 2.2.8.3.4. Compatibilidad Es compatible con la mayoría de los plaguicidas, sin embargo se recomienda hacer una prueba previa de compatibilidad.

Carbohidratos

440 g/L

Mono-di-tri polisacáridos

Aminoácidos

40 g/L

Alanina, Arginina, Ácido Aspártico, Citrulina, Cisteína, Glicina, Ácido

Glutámico, Histidina, Isoleucina, Leucina, Lisina, Ornitina,

Metionina, Fenilalinina, Prolina, Serina Treonina, Triptofáno Triosina

Valina

Macroelementos

90 g/L

Calcio (CaO)

Oligoelementos

5 g/L

Boro, Zinc, Cobalto, Manganeso quelatados con sacáridos

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2.3. Cultivo de rosas 2.3.1. Origen Según Ferrer (1991), manifiesta que a finales del siglo XVII las variedades europeas de rosas fueron cruzadas con rosas procedentes de China (R. chinensis x R. gigantea) que aportaron características diferentes como colores vivos, follaje brillante y floración continua. De manera que la mejora durante la última mitad del siglo XIX, consiguió variedades que florecían 2 - 3 veces al año, más compactas y resistentes que las rosas de China, llamadas híbridos perpetuos. Posteriormente, se desarrolló otra clase de rosas de Té con perfume y con muy buenas características en la flor (Salvador & Ferrer,1991). Los mismos autores afirman que los cruces entre híbridos perpetuos y las rosas de té dieron lugar a los híbridos de té (Rosa x híbrida). En el último siglo los cruces con R. foetida, Rosa multiflora y Rosa chinensis mínima han generado nuevas clases como Poliantas, Floribundas y Miniatura; siendo los híbridos de té y floribundas las cultivadas comercialmente para el mercado de la flor cortada y la jardinería. La rosa se supone originaria de China e India sabemos qué hace más de 4 000 años, las rosas constituían la parte más importante del jardín del emperador chino, en Peqín, y posteriormente se difundió en Persia y Egipto; desde Arabia los jardineros andalusíes la introdujeron en Europa Occidental. En los siglos X y XV los árabes crearon en Andalucía huertos y jardines que eran verdaderas obras de arte. La rosa silvestre, como el escaramujo y la R. Canina, sin embargo, ya existía desde mucho antes en la cuenca mediterránea (Ferrer,1991). De tal modo que, desde la antigüedad el cultivo del rosal estaba muy difundido tanto por sus usos ornamentales como por su valor medicinal y aromático. Los primeros datos de su utilización ornamental se remontan a Creta en el siglo XVII a.C., siendo un ícono para babilónicos sirios y romanos; sin embargo, tras el derrumbamiento de Roma, fue en los jardines de los monasterios donde se conservó la rosa en Europa. Concomitantemente con lo anterior, Salvador & Ferrer (1991), mantienen que cuando las delegaciones de ingleses, tales como Banks y sus otros acompañantes jardineros, a finales del siglo XVIII, trajeron nuevas variedades de rosa desconocidas para ellos, es entonces cuando prolifera la realización de cruzamientos (hibridaciones) entre rosas consiguiendo así nuevas variedades. 2.3.2. Cruzamientos de las rosas

La Rosa x híbrida es la descripción usada para denominar a los cultivares de rosas obtenidos a lo largo de cientos de años a través de complejos cruces. Se consideran rosales modernos los obtenidos a partir de 1867, fecha en que J.B. Guillot creó “La France”, procedente de un híbrido perpetuo y de una rosa de té. Según Salvador & Ferrer (1991), aclaran que los cruces de las rosas de té y los híbridos perpetuos a mediados del siglo XIX, dieron lugar a los híbridos de té, que son los cultivares más comunes hoy en día junto a los rosales floribundas. Las rosas silvestres producen polen altamente viable, aunque puede variar en función de diversos factores, mientras que en las rosas modernas el polen tiene una baja viabilidad asociada al nivel de ploidia, la misma que puede ser comprobada in vitro (Gudin et al, 1991).

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Salvador & Ferrer (1991), señalan que los cruzamientos entre individuos con diferente nivel de ploidia, generalmente especies silvestres 2x con rosas cultivadas 4x son poco exitosas y dan una descendencia que es estéril. Por lo que es justificable realizar cruzamientos, ya que la hibridación entre genotipos tetraploides se logra obtener como resultado una buena fertilidad y un mayor vigor. Ramírez (2009), afirma que las primeras rosas cultivadas eran de floración estival, hasta que posteriores trabajos de selección y mejora realizados en oriente sobre algunas especies, fundamentalmente Rosa gigantea y Rosa chinensis dieron como resultado la “rosa de té” de carácter refloreciente. Esta rosa fue introducida en occidente en el año 1973 sirviendo de base a numerosos híbridos creados desde esta fecha. A continuación, se muestra la taxonomía convencional del género Rosa (Cuadro 7).

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Cuadro 7. Taxonomía convencional del género Rosa dividido en subgéneros y secciones e indicando su nivel de ploidía

Grupo taxonómico Número de

especies en el grupo

Nivel de ploidía (x)

Especies representativas de cada sección

Subgénero Hesperhodos

2

2

R. stellata Wooton

Subgénero Hulthemia

2

2

R. persica Michx. Ex Juss

Subgénero Platyrhodon

3

2

R. roxburghii. Tratt

Subgénero Rosa (Eurosa)

Sección Banksiae

4

2, 4

R. banksiae; R. cymosa

Sección Bracteatae

1

2

R. bracteata; R. clinophyla

Sección Caninae

41

4, 5, 6

R. canina; R. rubiginosa: R.

corymbifera

Sección Carolinae

7

2, 4, 6

R. carolina; foliosa

Sección Indicae

(chinensis)

5

2, 3 ,4

R. chinensis (=R. indica); R.

gigantea; R. odorata

Sección Cinnamomeae

53

2, 4, 6, 8

R. rugosa: R. nuktana; R. acicularis; R. blanda

Sección Rosa (Gallicanae)

9

3 ,4 ,5, 6

R. gallica; R.centifolia; R.

damascena; R. alba

Sección Laevigatae

1

2

R. laevigata

Sección Pimpinellifoliae

21

2, 4

R. serícea; R. foetida; R. xanthina; R.hugonis; R

spinosissima

Sección Synstylae

36

2, 3, 4, 5, 6

R.moschata; R.multiflora; R. sempervivens; R. wichuraiana:

R. setigera; R. phoenicia

Fuente: Ferrer, 1991 Elaborado por: El Autor

29

Aproximadamente 200 especies botánicas de rosas son nativas del hemisferio norte, aunque no se conoce la cantidad real debido a la existencia de poblaciones híbridas en estado silvestre, ya que las hibridaciones realizadas a lo largo del tiempo han creado gran confusión en la clasificación taxonómica. La mayoría de especies silvestres son diploides, mientras que las rosas modernas son tetraploides (Ramírez, 2009). 2.3.3. Clasificación de los rosales

2.3.3.1. Clasificación American Rose Society

Para la American Rose Society la clasificación de los rosales se resume en un esquema que se presenta a continuación en la Figura 4. Figura 4. Clasificación de los rosales

Fuente: American Rose Society, 2016 Actualmente, las variedades comerciales de rosa son híbridos de especies desaparecidas. Para la flor cortada se utilizan los tipos de té hibrida y en menor medida los floribunda. Los primeros presentan largos tallos y atractivas flores dispuestas individualmente o con algunos capullos laterales, de tamaño mediano o grande y numerosos pétalos que forman un cono central visible (Ramírez, 2009). 2.3.3.2. Tipos de rosal Por su parte, Ferrer (1991), presenta los tipos funcionales u hortícolas de los rosales en cuanto a la presentación y formación en el siguiente esquema (Figura 5).

30

Figura5. Tipos de rosales según su presentación y formación

Fuente: Ferrer, 1991 2.3.4. La rosa en el Ecuador Las rosas se encuentran entre los cultivos ornamentales más importantes desde el punto de vista económico; sin embargo, desde que se iniciaron los cultivos con miras a la exportación, el crecimiento del sector ha sido permanente (González, 2012). Ecuador se caracteriza por poseer una estrategia comercial única como floricultores: un alto número de productores y fincas son medianas que producen más de 400 variedades (más del doble de nuestros competidores). Los productores ecuatorianos buscan estar a la vanguardia de la tendencia y moda de los distintos mercados en cuanto a colores y formas (variedades), de esta manera podemos incursionar en vender flor a todos los destinos, actualmente 110 países, y a todos los gustos. 2.3.5. Taxonomía y Morfología La clasificación de la familia Rosaceae es muy variada y diversa en taxones subfamiliares, y ha cambiado mucho con el tiempo y según los diferentes criterios de los autores, sin embargo, se cree que existen 3 000 variedades, que corresponde a la siguiente clasificación taxonómica de la rosa (Cuadro 8) (IPNI, 2016).

31

Cuadro 8. Taxonomía de la Rosa Rosa sp.

Taxonomía de la Rosa Rosa sp.

Reino Vegetal

Sub-reino Fanerógama

División Antofita

Sub-división Angiosperma

Clase Dicotiledónea

Sub clase Arquiclamídeas

Orden Rosales

Familia Rosaceae

Tribu Rosoideas

Género Rosa

Especie Rosa híbrida

Nombre científico Rosa sp.

Nombre común Rosa

Fuente: The International Plant Names Index, 2016 2.3.6. Características Botánicas Según González (2012), la rosa tiene las siguientes características botánicas: 2.3.6.1. Raíz

Pivotante que alcanza una profundidad de 1 - 2 m, cumpliendo las funciones de sostén y anclaje. La raíz es el órgano de la planta que típicamente está debajo del suelo. El definir la raíz señalando únicamente donde se encuentre este órgano de la planta puede llevar a problemas por lo que es más conveniente el definir a la raíz como la parte de la planta que no tiene hojas y que al no tener hojas tampoco tiene nudos. 2.3.6.2. Tallo Leñoso y de conformación sencilla, que brota de una yema lateral, la que produce hojas, espinas y en determinado tiempo la punta se convierte en flor. 2.3.6.3. Hojas Opuestas y alternadas de 3 - 5 foliolos, variable en su forma e insertadas a lo largo del tallo en espinas. Las rosas tienen follaje caduco, hojas compuestas, alternadas, estipuladas y de borde aserrado. 2.3.6.4. Flores Grandes, vistosas, el pedúnculo está del tallo, tienen un número variable de pétalos con 5 sépalos y numerosos estambres. 2.3.6.5. Fruto Formado por un ovario fertilizado llamado cinorrodón. Es carnoso, de color rojo o amarillo al madurar.

32

2.3.6.6. Semilla

Haploide de n=7, es decir que las formas sexuales tienen siete cromosomas y las vegetales 2n=14. 2.3.7. Tipo de plantas Según Espinosa (2013), indica que dependiendo de la capacidad adquisitiva del productor se tiene diferentes métodos de plantación para rosas de corte como son 1) Plantas formadas, 2) Plantines, 3) Plantas de ojo dormido; e 4) Injertos en finca. 2.3.7.1. Plantas formadas Se encuentran en diferentes edades clasificadas en:

Plantas de seis meses

Plantas de un año

Plantas de un año y medio

2.3.7.2. Plantines Son plantas de 3 - 5 semanas de edad, su característica es que son enraizadas y vienen con la raíz desnuda, lista para su plantación. 2.3.7.3. Plantas de ojo dormido Son aquellas plantas que, luego de haber sido injertadas y una vez que hayan brotado, se las rompe con el objetivo de que la planta acumule reservas en su raíz, esto ayudará a formar un brote con fuerza en sus basales que permita almacenarla en cuartos fríos de una manera más fácil para su próxima plantación (Espinosa, 2013). Cuando el injerto se efectúa antes de la llegada de temporada fría y pasada la cálida, la yema no brota hasta el siguiente período templado, permaneciendo en latencia durante la época fría, por ello recibe el nombre de ojo dormido. Estas plantas son injertadas y enraizadas en el vivero y se planta en el invernadero antes de su brotación, es decir que es una planta que no terminó su crecimiento; y por lo tanto, desde el momento en que llegó al invernadero todos los riesgos pasan al comprador (Darquea, 2013). 2.3.7.4. Injertos en finca Es el método de mayor uso por parte del productor el cual consiste en sembrar el patrón y luego de 8 - 12 semanas se procede a injertar en la misma finca. Existen dos tipos de injerto usadas en finca, los cuáles son: “Injertos de vareta e injerto de yema, aunque este último es el más empleado a nivel comercial” (Martínez, 2010). 2.3.8. Tipos de injertos 2.3.8.1. Injerto por vareta injerto inglés Es poco usual este método de propagación en una explotación comercial de flor de corte, ya que requiere demasiado tiempo.

33

2.3.8.2. Injerto de yema Espinosa (2013), esclarece que, este tipo de injerto es usado comúnmente el patrón de rosa Manetti pero también se pueden encontrar otros patrones como son: Rosa odorata, Rosa multiflora inermes, y en zonas frías se usa la Rosa canina. El material para los patrones se obtiene de plantas que han sido tratadas con calor para la eliminación de virus y otras enfermedades. 2.3.9. Labores culturales En la empresa FalconFarms de Ecuador S.A. las labores culturales consisten en dos principales actividades:

Manejo de plantas nuevas (Agobio)

Formación tradicional con Agobio

2.3.9.1. Manejo de plantas nuevas (agobio) Para criterios de agobio en la empresa se considera la presencia de hormonas que deben ser translocadas (cambio de localización) a la base para la emisión de basales, especialmente giberelinas (arriba), auxinas (abajo) y citoquininas (raíz). Tanto la calidad de plantas como la calidad de la siembra deben ser consideradas para realizar un buen trabajo en el momento, pues esto tiene valor durante los próximos 10 años. Para lo cual se debe considerar los siguientes aspectos:

La unidad de manejo de plantas es la cama para todos los trabajos a considerar criterio de

uniformidad.

En cuanto a la siembra, se debe seleccionar una planta de acuerdo al calibre y sembrar lo

más uniforme posible (pequeñas con pequeñas y grandes con grandes). Manteniendo

siempre el criterio de uniformidad.

Especializar una persona que distribuya el material a sembrar a lo largo de la cama (con

criterio formado).

34

2.3.9.2. Formación tradicional con agobio Para esta actividad se toman en cuenta las siguientes labores:

Para la siembra se procede a seleccionar plantas pequeñas - grandes

Aplicar técnica ojo de águila, el cual consiste en realizar la resiembra todos los días,

viendo que está diferente y se va cambiando previa selección de una cama donante.

Dejar por dos o tres semanas de libre crecimiento (Debe verse follaje verde rojo).

Realizar el despunte, luego de la semana 2 ó 3 se despunta la cama en todos los estados

con el objeto de llenar de follaje, se debe tomar en cuenta que el botón se quita con todo

el pedúnculo y desde estado arroz en adelante, si hay escobillas también despuntar.

Crear follaje frondoso (volumen).

Realizar agobio a cero, se debe mantener mínimo un año según las condiciones

fitosanitarias.

Dejar libre el crecimiento de basales, los basales deben escobillar verde - rojo.

Descabezar todos los basales hasta estado arroz. La cama debe presentar un mínimo del

80 % de un estado para descabezar.

Realizar desyeme día por medio mínimo por cuatro semanas (lunes, miércoles, viernes,

domingo, martes, jueves, sábado y lunes) las yemas mínimo deben ser de una pulgada, ya

que más grande se considera como atraso.

Realizar pinch de basales, teniendo en cuenta el concepto de calibre de basales no por

altura, sí por grosor de basal para garantizar la duplicación.

El Pinch de Basales se muestra a continuación en el Cuadro 9. Cuadro 9. Pinch de basales

Pinch de Basales

Basal calibre Realizar corte en

3 Tercera o cuarta yema

4 Cuarta yema

5 Quinta yema

6 Sexta yema

Fuente: FalconFarms de Ecuador S.A., 2016 2.3.9.3. Otras labores Yong (2004), indica otras labores que son de gran importancia y básicas a tomarse en cuenta, para el buen manejo de rosas

Podas

Desyeme

Escobillado de camas

Picada de caminos

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2.3.9.3.1. Podas Para Hoog (2001), en el manejo de las podas de la rosa existen diferentes técnicas como: 1) la poda en verde; 2) cosecha en picos; y 3) forzado. 2.3.9.3.1.1. La poda en verde Se la realiza en plantas que no están en período reproductivo; esta técnica se practica sobre todo en los cultivos en suelo y, en particular, en aquellas variedades que son difíciles de calentar de forma continua. 2.3.9.3.1.2. Cosecha en picos Con este sistema, las rosas se podan en el lugar donde se han cortado las flores y, en función de la rutina de manejo del cultivo, esta práctica se hace varias veces a la semana. Por lo anterior, Espinoza (2013), concuerda que para este tipo de técnica de poda se realiza la eliminación de los tallos enfermos, brotes ciegos (no producen flor), esta limpieza se la efectúa una vez por semana. También se eliminan los botones deformados (cuello de ganso) actividad que se la realiza una vez por semana durante la cosecha. 2.3.9.3.1.3. Forzado

Es un proceso en el que se poda primero y luego se suministra calor; lo anterior requiere fertilización y humedecimiento del suelo, inmediatamente después de podar. Por todo lo anterior referente a las podas, Yong (2004), señala que la altura a la que se pode el tallo parece afectar el crecimiento del vástago formado a continuación. Al variar la altura de la poda, por lo que también varían la posición, la edad de la yema que ha de brotar y el número de hojas que queda sobre el tallo. Las diferencias en el tamaño final del tallo recién formado parecen deberse en gran parte a diferencias de asimilación, resultantes, a su vez, de las diferencias de masa foliar. Por esta razón este autor sugiere que, se debe dar a las plantas la posibilidad de un periodo de descanso antes de podar, entre cuatro y seis semanas, dependiendo de la variedad. 2.3.9.3.2. Desyeme Esta labor se la realiza dos veces por semana, y consiste en la eliminación de brotes secundarios del tallo floral permitiendo que éste se desarrolle vigorosamente. 2.3.9.3.3. Escobillado de camas Se la realiza cada quince días, con el objeto de dar una buena aireación al suelo, impidiendo la compactación del mismo. 2.3.9.3.4. Picada de caminos Esta labor se la efectúa cada dos meses, con el objeto de evitar el encharcamiento de agua, que ocasiona enfermedades fungosas como mildiú velloso Peronospora sparsa (Espinoza, 2013).

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2.3.10. Consideraciones técnicas en el manejo de la rosa En la empresa FalconFarms de Ecuador S.A. el personal técnico, considera los siguientes aspectos de mayor fundamento en el manejo del cultivo de la rosa; que los ha dividido en:

Manejo de plantas en producción

Uso racional de la tijera de podar

Marcar y/o pintar la zona de corte en camas piloto

Poda para San Valentín

Patrones

Grados - Día 2.3.10.1. Manejo de plantas en producción

Se debe tomar en cuenta los tallos con características de no exportables como cortos,

torcidos, delgados, etc.

Si el follaje es verde y de acuerdo al calibre de tallo se pueden ejecutar las acciones como:

1) la programación, misma que consiste en determinar si tiene el follaje verde y cumple el

calibre del tallo, 2) el despunte y el desyeme; y 3) el agobio, que se lo realiza siempre y

cuando este quede expuesto a la luz (agobio lo obvio).

2.3.10.2. Uso racional de la tijera de podar Únicamente se debe utilizar cuando:1) Se va a cosechar un tallo de exportación, 2) cuando se va a programar un tallo de exportación; y 3) cuando se va a programar una escobilla. 2.3.10.3. Marcar y/o pintar zona de corte en camas piloto Al momento de finalizar el corte en las camas de prueba piloto, se procede a su respectivo señalamiento o marcaje; esto se lo hace de modo experimental, en cuyas camas se trata de aplicar una hipótesis a una situación práctica concreta para comprobar su efectividad. Como, por ejemplo, en la empresa FalconFarms de Ecuador S.A. un prototipo piloto plantea una solución en la supervisión y el control de la fertirrigación, examinando las variables: flujo de nutrientes, humedad del suelo artificial y temperatura interior del invernadero, las cuales serán integradas apropiadamente para el desarrollo adecuado de las plantas de rosa, obteniendo al final un ambiente recomendable. 2.3.10.4. Poda para San Valentín

Realizar conteo de potencial de poda usar técnica 10% del 10%

Ejecutar pinch y el conteo por parte del supervisor, se debe anotar el dato en cada cama

(solo pinch)

Realizar rectificación de acuerdo al dato potencial si es necesario

Realizar el primer conteo de cortes portadores, muestreo de metros lineales

Para próximas podas en lo posible utilizar tinta para marcar cortes

Considerar cosecha de los 5 días antes y 5 después del día de la poda dentro del conteo

37

2.3.10.5. Patrones Eliminar patrones hasta de 10 cm (de más longitud se considera como atraso). 2.3.10.6. Grados/Día Las variaciones de grados/día acumulados entre bloques no deben ser mas allá de 30 °C (Ver capítulo 1.4. Condiciones del cultivo, y Cuadro 4; Anexos 10 y 11). 2.3.11. Factores de productividad y factores que afectan a la productividad Además, en la empresa para desarrollar un excelente manejo de plantas para conseguir una buena calidad y productividad de flores, se toman en cuenta los factores de productividad y los factores que afectan a la misma, que en las figuras 6-10 se resumen a continuación. Figura 6. Factores de productividad de las flores

Fuente: FalconFarms de Ecuador S.A., 2016 Elaborado por: El Autor

38

Figura 7. Factores de productividad de las flores según los basales


Figura 8. Factores de productividad de las flores según las duplicaciones


39

Figura 9. Factores de productividad de las flores según el ciclo


40

Figura 10. Factores que afectan a la productividad de las flores

Fuente: Falcon Farms de Ecuador S.A., 2016 Elaborado por: El Autor

41

2.4. Condiciones del cultivo El conjunto de los aspectos constitutivos del microclima del invernadero y las condiciones del suelo requeridas para la plantación de rosa; son las que determinan si se puede cumplir con los requisitos óptimos de productividad (Salvador & Ferrer, 1991). La productividad está estrechamente relacionada con los componentes climáticos como son: 2.4.1. Temperatura Hoog (2001), señala que la velocidad con que se desarrolla el botón hasta convertirse en vástago está influenciada por la temperatura, por lo que el promedio de ésta es el factor más significativo. La temperatura influye poco sobre la iniciación floral, aunque afecta el número de sépalos y el porcentaje de flores malformadas. Concomitantemente con lo anterior, el mismo autor sostiene que la temperatura promedio de producción y la estrategia de manejo de la temperatura influyen sobre el desarrollo de las plantas de rosa, aunque con frecuencia este efecto se combina con aquellos producidos por otros factores, tales como la luz, la humedad relativa y el CO2. La temperatura afecta a todos los procesos metabólicos de la planta, siendo los de mayor interés, la fotosíntesis y la respiración celular. En el caso de la rosa el pico de la temperatura para la fotosíntesis es de alrededor de 26 ºC y para la respiración celular de 32 ºC. Para la mayoría de los cultivares de rosa, las temperaturas óptimas de crecimiento son de 17 ºC a 25 ºC, con una mínima de 15 ºC durante la noche y una máxima de 28 ºC durante el día (Espinosa, 2013). Si la temperatura está por debajo del rango óptimo, se tiene menos brotación, el crecimiento es lento, el número de flores disminuye y, por tanto, se tendrá menos flores al año. En algunas variedades el botón será excesivamente grande y no guardará relación con la longitud del tallo. Por el contrario, si la temperatura supera el rango óptimo, aumenta el número de brotación y se tiene más cosechas anuales; sin embargo, la calidad obtenida no es buena y el tamaño del botón disminuye (Rodríguez & Flórez, 2006). 2.4.1.1. Umbrales de desarrollo Según Rodríguez & Flórez (2006), añaden que los umbrales de desarrollo inferior y superior son dos parámetros para considerar, cuando se refieren al efecto de la temperatura en el desarrollo de las plantas. El umbral de desarrollo inferior es la temperatura por debajo de la que una especie detiene su desarrollo y el umbral de desarrollo superior, la temperatura en que la tasa de desarrollo comienza a decrecer. Dichos umbrales son únicos para cada organismo; estos valores también son conocidos como temperaturas cardinales; estos autores además señalan en su estudio, que el umbral inferior de desarrollo para rosa está alrededor de los 5 °C. Cáceres et al. (2003), aclara que, la temperatura controla la tasa de desarrollo de muchos organismos que requieren la acumulación de cierta cantidad de calor para pasar de un estadio a otro en su ciclo de vida. La medida de este calor acumulado se conoce como tiempo fisiológico, el cual es frecuentemente expresado en unidades llamadas grados-día. Por ejemplo, si la rosa tiene un umbral de desarrollo inferior de 5 ºC y la temperatura permanece en 6 ºC durante 24 horas, se habrá acumulado un grado-día.

42

2.4.1.1.1. Grado día Para Hoyos et al. (2012), la temperatura tiene gran influencia sobre los cultivos y es clave en la determinación de la fecha de siembra, cosecha y las variables de producción. Los grados-día o unidades térmicas son uno de los índices más comúnmente utilizados para estimar el desarrollo de las plantas y para predecir la fecha de cosecha. De acuerdo con Rodríguez & Flórez (2006), un modelo fenológico permite predecir el tiempo en que ocurrirá un evento en el desarrollo de un organismo, y el calor acumulado en este proceso se conoce como tiempo fisiológico o grados-día de crecimiento; ya que debido a las variaciones del clima, las fechas calendario no son una buena base para la toma de decisiones de manejo del cultivo de la rosa, por lo que se ha venido implementando en los cultivos de flores el uso de curvas de crecimiento y de la técnica de grados-día, con el fin de predecir con más exactitud el desarrollo de los estadios fenológicos de las plantas y, en consecuencia, el momento del corte de la flor. Para la cuantificación de la suma térmica total o acumulación de grados-día a lo largo de todo su ciclo se considera la suma entre la temperatura máxima y mínima diaria dividida en 2 y restando la resultante, de la temperatura base, para cada uno de los días transcurridos durante el ciclo de los mismos, así:

( )

Donde:

T° máxima: Temperatura máxima diaria del aire

T° mínima: Temperatura mínima diaria del aire

T° base: Temperatura en que el proceso de interés no progresa. La temperatura base

varía entre especies y posiblemente entre variedades; de igual manera, puede variar

entre estadios de desarrollo o de acuerdo al proceso que se considere (Rodríguez &

Flórez, 2006).

Por ejemplo, en la empresa FalconFarms de Ecuador S.A./Flores de la Montaña en el bloque 33, el cual es el lugar donde está ubicado el área de estudio con las plantas de rosa de la variedad freedom, la fecha de pinch para Valentín fue realizada el día lunes 2 de noviembre del 2015; las temperaturas para ese día que se muestran en el Cuadro 10 fueron las siguientes:

43

Cuadro 10. Temperaturas registradas el día 2 de noviembre del 2015

NÚMERO DE MARCACIONES HORA TEMPERATURA °C

NÚMERO DE MARCACIONES HORA TEMPERATURA °C

1 12h29 11.276

2 12h59 11.154

3 01h29 11.130

4 01h59 10.837

5 02h29 10.495

6 02h59 10.568

7 03h29 9.955

8 03h59 9.068

9 04h29 9.192

10 04h59 9.241

11 05h29 8.721

12 05h59 8.721

13 06h29 8.622

14 06h59 10.250

15 07h29 13.404

16 07h59 16.514

17 08h29 18.037

18 08h59 20.201

19 09h29 24.031

20 09h59 27.019

21 10h29 27.536

22 10h59 26.481

23 11h29 27.560

24 11h59 26.946

25 12h29 29.747

26 12h59 29.973

27 13h29 31.008

28 13h59 30.831

29 14h29 25.798

30 14h59 27.216

31 15h29 25.506

32 15h59 20.916

33 16h29 17.775

34 16h59 15.918

35 17h29 14.723

36 17h59 14.053

37 18h29 13.572

38 18h59 12.850

39 19h29 12.053

40 19h59 12.222

41 20h29 12.416

42 20h59 12.343

43 21h29 12.295

44 21h59 12.028

45 22h29 11.543

46 22h59 10.617

47 23h29 9.759

48 23h59 9.216

Fuente: Base de datos FalconFarms de Ecuador S.A., 2015-2016

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El número de marcaciones registrados en el DATALOGGER para un día es de 48, el marcaje de la temperatura es cada media hora empezando desde las 12h29; la temperatura base es de 8.665 °C. La temperatura máxima para este día fue de 31.008 °C y la temperatura mínima de 8.622 °C, reemplazando en la fórmula se obtiene que:

( )

Grados/día = 11.15 Por lo tanto, los grados/día resultaron de 11.15 para la fecha que se realizó el pinch, el cual fue el lunes 2 de noviembre del 2015; además se puede determinar el número de días del ciclo productivo mediante la siguiente relación:

Número de días del ciclo productivo = 87 días Por lo señalado, el número de días del ciclo productivo es de 87, ya que la acumulación de los Grado/día se considera desde el día del pinch (Anexos 10 y 11). 2.4.2. Luminosidad La luz influye positivamente sobre el periodo de tiempo que requiere un tallo floral para su desarrollo, siendo este un factor imprescindible en la brotación de yemas y el crecimiento de los tallos. La radiación solar óptima para una buena producción se ubica entre 5 - 6 horas/día (Hoyos et al, 2012). Los mismos autores acotan que, a menos luz, disminuye el número de brotes y el crecimiento del tallo es lento. En épocas de poca luminosidad, tiende a producir un gran número de ciegos (tallos sin flor) con el fin de tener mayor área para la fotosíntesis. Además de la disminución de la producción, debido a la falta de carbohidratos y/o al exceso de nitrógeno. Una característica importante de la luminosidad es su efecto en la transpiración, al intervenir en la apertura de los estomas, facilitando el intercambio de gases dados por la fotosíntesis y la respiración celular. A mayor luz existe mayor temperatura y consecuentemente mayor transpiración (Salvador & Ferrer, 1991). 2.4.3. Humedad Relativa La humedad favorece la actividad y posterior brotación de yemas. Un calor húmedo acelera la floración, en comparación con un calor seco. La humedad debe mantenerse alrededor de 60 - 70 % en el interior del invernadero (Ferrer, 1991).

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Si la humedad relativa no supera el 60 % y la temperatura es alta, los tallos se vuelven más delgados y los brotes más pequeños, y el ambiente se hace propicio para la incidencia de plagas como pulgones y ácaros. En cambio, cuando la humedad excede el 80 % favorece la presencia de enfermedades fungosas (Agrios, 2002). Padilla (2011), señala que, en condiciones de humedad, temperatura y mediante la enzima ureasa, el nitrógeno ureico (orgánico) se transforma rápidamente en nitrógeno amoniacal, que, con el tiempo la acción del clima y los microorganismos pasa a forma nítrica, lo que será fácilmente absorbible por las plantas; mineral de gran importancia para la estimulación de botones florales. 2.4.4. Anhídrido carbónico La concentración más apropiada de CO2 en el cultivo de rosas es de 800 ppm, un adecuado suministro incrementa la producción y calidad de la planta (Ferrer, 1991). En rosa se han alcanzado respuestas positivas a incrementos de hasta 1 000 ppm para aumentar la producción. También se ha determinado que la absorción de CO2 se reduce cuando su concentración es demasiado alta (por el cierre de estomas). Algunos autores indican que el CO2

puede ser tóxico para las plantas cuando se incrementa hasta 10 veces la concentración normal (3 000 ppm) (González, 2012). 2.4.5. Altitud Para un excelente desarrollo y crecimiento del cultivo de rosas, la altitud óptima va desde 2 500 - 2 900 Msnm La altitud está relacionado con el cultivo de flores debido a que, las temperaturas bajas le vuelven al fósforo menos móvil de ahí que las acumulaciones del fósforo las encontramos en las zonas bajas del suelo, a medida que subimos en altitud la disponibilidad de fósforo es más baja, lo que ocasionaría una deficiencia de este elemento y las rosas luzcan raquíticas, enfermas y que se produzcan botones florales de muy baja calidad (Padilla, 2011). 2.4.6. Nubosidad Determina en gran medida, la luminosidad disponible. Una nubosidad equivalente a 5 horas es lo ideal para la producción de la rosa (Salvador & Ferrer, 1991). 2.4.7. Suelo El tipo de suelo apropiado para el cultivo es el de Franco-Arcilloso, Franco-Arenoso o Franco-Areno-Arcilloso. Para todos estos se debe realizar su respectiva enmienda, así para los suelos livianos se aconseja incorporar cascarillas de café y materia orgánica; para suelos pesados se agrega cascarilla de arroz, pomina o cascajo. En cada caso sus cantidades estarán de acuerdo al análisis de suelo (González, 2012). 2.4.8. Requerimiento nutricional y fertilización

Solo 13 de los 16 elementos químicos conocidos hasta hoy para el desarrollo del rosal, son derivados del suelo, y son absorbidos por las raíces, aunque en pequeñas cantidades pueden ser absorbidos por las hojas. La carestía de solo uno de ellos puede limitar seriamente la salud y los rendimientos del cultivo (Espinosa, 2013).

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En investigaciones realizadas en el país sobre la cantidad de nutrientes necesarios para el cultivo de rosas, si el consumo de agua es de 5 mm/día, la recomendación diaria es la siguiente: Nitrógeno 144.31 ppm, Fósforo 20.33 ppm, Potasio 177.02 ppm, Calcio 67.44 ppm, Magnesio 29.78 ppm, Azufre 9.82 ppm, Hierro 1.01 ppm, Boro 0.60 ppm, Manganeso 0.29 ppm, Zinc 0.17 ppm, Cobre 0.06 ppm (González, 2012). Para Ferrer (1991), los tres elementos de mucha importancia para el cultivo de rosas son el nitrógeno, potasio y el calcio; el nitrógeno, por ser un nutriente que tiene importante influencia sobre los procesos de crecimiento y formación de las flores, cuya máxima absorción de este elemento sucede cuando ya se ha formado el botón floral y se está terminado el ciclo, y no cuando se produce la elongación rápida del tallo; en cuanto al potasio y al calcio tienen un papel importante sobre la calidad de la flor. Según González (2012), las funciones que cumplen los elementos minerales dentro de la planta se pueden agrupar en cuatro grupos:

Constitución de estructuras orgánicas (C, H, S, N, O, P, Ca)

Activación de reacciones enzimáticas (Ca, Mg, Zn, Cu, Fe, N)

Almacenamiento y transferencia de energía (P)

Transporte de cargas y osmoregulación (K, Cl)

Para tener una idea de los valores de interpretación del extracto celular de rosa, Padilla (2011), presenta los valores mínimos, promedios y máximos en medida de concentración mg/kg o ppm; conductividad eléctrica; y pH que en el Cuadro 11 se muestra a continuación.

Cuadro 11. Valores de interpretación de extracto celular de plantas de Rosa

Fuente: Padilla, 2011 2.4.9. Riego

En cuanto al requerimiento hídrico Arévalo et al. (2013), indican en su investigación que el rango óptimo del coeficiente de cultivo (Kc) para la variedad freedom oscila entre el 0.58 - 1.78; este coeficiente permite describir las variaciones de la cantidad de agua que las plantas extraen del suelo a medida que se van desarrollando. Sin embargo, otros autores recomiendan manejar rangos de Kc entre 0.8 - 1.0, para un buen manejo racional del riego en rosa (Rosen Tantau, 2012). En los Cuadros 12 - 19, se muestra de manera detallada el cronograma de la preparación, manejo del riego y la fertilización de rosas en la Empresa FalconFarms de Ecuador S.A. para San Valentín 2016. Además, en los Anexos 16 - 18 se muestra el programa de fertilización que maneja la empresa; en los cuales se evidencia el aporte de cada fuente de fertilizante en cada área de la finca.

47

Cuadro 12. Cronograma sobre la preparación, manejo de riego y fertilización de rosas San Valentín 2016- Actividades 1 y 2

ACTIVIDAD ¿QUIÉN

COORDINA?

¿QUIÉN

EJECUTA?

38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 1 2 3 4

1. Los análisis de suelos y foliar se

tomarán en semanas 38 y se enviarán

al laboratorio para realizar el análisis

del comportamiento nutricional suelo

y foliar para los ajustes en la

fórmula de fertilización.

JAP, Jefe

Mirfe

Supervisor

Riego,

Casetero

2. La planta se está programando con

un porcentaje de activaciones para el

pico de San Valentín; monitorear los

nitratos en suelos y mantenerlos en

250 - 500 ppm de NO3 ó 45 - 113 de

N-NO3 para que al momento de la

poda tengamos buenas reservas en la

planta para una buena formación de

brotes.

JAP, Jefe

Mirfe

Supervisor

Riego,

Casetero

Fuente: FalconFarms de Ecuador S.A., 2016

48

Cuadro 13. Cronograma sobre la preparación, manejo de riego y fertilización de rosas San Valentín 2016- Actividad 3

ACTIVIDAD ¿QUIÉN

COORDINA?

¿QUIÉN

EJECUTA?

38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 1 2 3 4

3. Para mejorar el desarrollo de

raíces y brotación ejecutar refuerzos

de P, N-NH4, y Zn en semanas 43 -

48 con urea y fosfato; vía fertirriego

una vez por semana a una dosis de

0.46 g/L, de quelato de Zinc, 0.015

g/L lo que equivale a 90 ppm de P y

78 ppm de N-NH4, 2 ppm Zn. Ya que

la función del fósforo, es transmitir

la información genética a las yemas

a activar; y el Zinc activa la actividad

enzimática y la síntesis del

triptófano, promoviendo la función

hormonal en la planta. Esta

aplicación reemplaza el riego del

día.

JAP, Jefe

Mirfe

Supervisor

Riego,

Casetero


49


ACTIVIDAD ¿QUIÉN

COORDINA?

¿QUIÉN

EJECUTA?

38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 1 2 3 4

4. Programar refuerzos de

fertilización sólida a los bloques

que estén por debajo del nivel de

análisis de suelos, y con la revisión

de acuerdo al diagnóstico previo

de las plantas en campo.

JAP, Jefe

Mirfe

Supervisor

Riego,

Casetero

5. El manejo de la humedad se

ejecuta por bloque de acuerdo al

programa de pinch de cada

bloque.

JAP, Jefe

Mirfe

Supervisor

Riego,

Casetero


50


ACTIVIDAD ¿QUIÉN

COORDINA?

¿QUIÉN

EJECUTA?

38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 1 2 3 4

6. Aplicar riego fertilizado con

fórmula completa si el bloque tiene

una conductividad eléctrica entre 0.8

- 2.0 y los N-NO3 se encuentran entre

45 - 113; si los niveles están por

encima de estos rangos fertilizar con

fórmula al 50 % donde la planta para

activar su emisión de raíces, la

presión osmótica debe estar baja, y la

necesidad de nitrógeno que requiere

es baja ya que depende más de la

fuente vertedera, que está en el

follaje que tenga la planta; y la

reserva de nutrientes para su

brotación. Para lo cual, se requiere

llevar el monitoreo y control

fertiriego de la Finca. Ver Anexos 12 y

13.

JAP, Jefe

Mirfe

Supervisor

Riego,

Casetero


51


ACTIVIDAD ¿QUIÉN

COORDINA?

¿QUIÉN

EJECUTA?

38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 1 2 3 4

7. En la última semana de la activación aplicar vía gotero Radifarm 20 g, por cama aplicado en el volumen de riego para ese día 90 L. Esta aplicación es con el fin de estimular el crecimiento en las raíces. Esta aplicación se reemplaza por el riego del día. Aplicar 5 g de Ecoterra y 100 g de Melaza cama cacho (riego complementario).

JAP, Jefe

Mirfe

Supervisor

Riego,

Casetero

8. Programar y ejecutar la fertilización

foliar y el fertirriego después de la poda

de acuerdo a la etapa fenológica del

cultivo, reforzando los elementos que

muestren las deficiencias en los análisis

de suelos y foliares. Para esto, tener en

cuenta la propuesta y el presupuesto

de la fertilización. Ver Anexos 14 y 19.

JAP, Jefe

Mirfe

Supervisor

Riego,

Casetero


52


ACTIVIDAD ¿QUIÉN

COORDINA?

¿QUIÉN

EJECUTA?

38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 1 2 3 4

9. Una vez la que planta se encuentre

llegando a formación al punto palmiche

o penacho hasta botón mostrando color,

los nitratos se monitorearán semana a

semana entre 250 - 500 ppm de NO3 ó 45

- 113 N-NO3. Ya que la rosa tiene un

ritmo de absorción discontinuo acosta de

reservas y de la absorción, dependiendo

de las podas y del corte de la flor, para

mantener este nivel se debe subir la

fórmula de fertilización entre el 20 - 25

%. Tener en cuenta el monitoreo del

fertirriego de la finca (últimas 4

semanas) y la lista semanal de chequeo

de operación del fertirriego. Ver Anexos

12, 13; y 15.

JAP, Jefe

Mirfe

Supervisor

Riego,

Casetero


53


ACTIVIDAD ¿QUIÉN

COORDINA?

¿QUIÉN

EJECUTA?

38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 1 2 3 4

10. Determinación de la lámina y la

frecuencia de riego con la evaporación,

monitoreo organoléptico y la toma de

decisión de riego según el estado

fenológico del cultivo. La definición es del

Jefe de área. Para ello, tener en cuenta los

datos del monitoreo de la humedad y la

lista de chequeo de operación del

fertiiriego. Ver Anexos 12 y 15.

JAP, Jefe

Mirfe

Supervisor

Riego,

Casetero

11. Tener datos de evaporación,

precipitación, láminas históricas de riego

ejecutadas, temperaturas máximas y

mínimas y llevar datos semanales para

definir el manejo del microclima semana a

semana para San Valentín del 2016.

JAP, Jefe

Mirfe

Supervisor

Riego,

Casetero


54


ACTIVIDAD ¿QUIÉN

COORDINA?

¿QUIÉN

EJECUTA?

38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 1 2 3 4

12. Horarios de riego de acuerdo al

pronóstico de heladas (10 % de

probabilidad). Revisar Instructivo de

preparación para eventos de heladas en

finca.

JAP, Jefe

Corfe Zona

Supervisor

Riego,

Casetero


55

2.5. Aspectos fisiológicos de la rosa 2.5.1. Órganos de almacenamiento El rosal es una planta leñosa-caducifolia que produce sus ciclos vegetativos a través de mecanismos reguladores de sus reservas hidrocarbonadas que se trasladan y almacenan a distintos órganos según las órdenes hormonales, a lo largo de los distintos momentos de su actividad vegetativa (Ferrer, 1991).

Yemas hinchadas

Brotes jóvenes de 5 cm

Botón floral como un guisante

Flor principal abierta

Flor principal Mustia (pasada)

Según Salvador & Ferrer (1991), manifiestan que el contenido de materia seca es mayor y permanente en las partes viejas de la planta, la madera más joven de un año alcanza un contenido similar al de los tejidos viejos. Para Latorre (2011), en la fisiología del rosal hay una fase de catabolismo (proceso de transformación de liberación de energía) en donde los tejidos en desarrollo reciben glúcidos de cadena corta a expensa de las reservas acumuladas en el ciclo anterior en los órganos permanentes (partes bajas de la planta). 2.5.2. Azúcares reductores y almidón Las raíces frenan su crecimiento hasta que la flor está abierta por completo, mientras que los azucares solubles reductores aumentan fuertemente al final del ciclo y en particular en las hojas de los tallos con flores ya abiertas. Los chupones se componen de azúcares reductores, mientras que los almidones se acumulan al principio de la brotación en las raíces gruesas alrededor del 80 % (Ferrer, 1991). Los azúcares reductores son producidos a partir de la fase de síntesis, localizados en las partes verdes de la planta; mientras que la formación del almidón, comienza en el momento de la aparición del botón hasta el punto de flor formada; y luego el almidón formado en las hojas nuevas migra hacia los órganos de reserva (Salvador & Ferrer, 1991). 2.5.3. Absorción de nutrientes Padilla (2011), indica que en el momento que brotan las yemas prácticamente no hay absorción. Esta es muy débil hasta que es visible el botón floral y el tallo alcanza su tamaño definitivo. El crecimiento en longitud del tallo se lleva a cabo gracias a la reserva de las plantas, y no de la absorción radicular; cuando el tallo y las hojas se desarrollan hay una absorción importante a la reconstrucción de las reservas del rosal. Según Salvador & Ferrer (1991), aclaran que cuando se corta la flor, la absorción se reduce de nuevo hasta la aparición de los tallos siguientes; y hay por lo tanto un ritmo discontinuo de funcionamiento a costa de reservas y absorción, debido a las podas y corte de la flor.

56

El nitrato (NO3-) es la forma más abundante de nitrógeno en el suelo; en condiciones naturales,

los nitratos son la principal fuente de nitrógeno para las plantas; por lo que su máxima absorción en la rosa ocurre antes del corte, y muy débilmente luego de una poda o recolección (Latorre, 2011). 2.5.4. Movimiento del agua dentro del sistema suelo-planta-atmósfera El movimiento del agua dentro del sistema suelo-planta-atmosfera, obedece a diferencias de potencial de humedad entre los componentes de este sistema. El potencial de humedad en la atmósfera es creado por el comportamiento instantáneo de la humedad relativa. Cuando la humedad relativa es baja (medio día) se produce un potencial atmosférico más negativo y aumenta la demanda de transpiración del cultivo (Arévalo et al, 2012). Si la conductividad hidráulica del suelo y de la planta es alta, el agua fluye dentro del sistema para suplir la demanda de transpiración, pero si es baja, la rata de flujo (volumen de fluido en movimiento) es baja y la planta tiende a ceder agua de sus tejidos perdiendo su turgidez y originando el punto de marchitez temporal. Una planta que pierde turgidez disminuye o anula su actividad fotosintética; y por lo tanto, deja de producir materia verde afectándose negativamente los rendimientos (Amézquita, 1999). 2.5.5. Compatibilidad química Padilla (2011), sugiere que para la preparación de la solución madre es necesario conocer la compatibilidad o incompatibilidad de fertilizantes a usar para no provocar reacciones químicas que al final pueden arrojar resultados diferentes a los esperados o planeados para nutrir el cultivo. Así mismo, es necesario conocer sobre antagonismos y sinergismos nutritivos y sobre la acidez o basicidad de la solución resultante. La incompatibilidad más importante, se produce cuando la mezcla de fertilizantes origina precipitaciones en la solución madre. Con el fin de prevenir situaciones desagradables y soluciones ineficaces se presenta en el Cuadro 20, el cual muestra las compatibilidades e incompatibilidades de los fertilizantes más comunes.

57

Cuadro 20. Compatibilidad química de la mezcla de fertilizantes

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

I

C

C

C

C

C

C

C

C

C

1. Urea

C

L

L

C

C

C

C

C

C

2. Sulfato amónico C C C C C C C I

3. Superfosfato triple

C L C C C C I

4. Superfosfato simple

L C C C C I

5. Fosfato diamónico

C C C C I

6. Fosfato manoamónico

C C C I

7. Cloruro Potasio C C C

8. Sulfato potásico C I

9. Nitrato potásico C

10. Nitrato cálcico

I = Incompatible C = Compatible L = Compatibilidad limitada

Fuente: Amézquita, 1999 Para prevenir riesgos de incompatibilidad no deben mezclarse sales que aporten calcio (Ca) con aquellas que aporten sulfatos (SO4

-) o fosfatos (HPO4-). Por ejemplo, si es necesario aplicar CaNO3,

fertilizante de alta solubilidad, éste no se puede mezclar con un fertilizante fosforado, e inclusive conviene tomar como precaución aplicar el fosforado dos días después de CaNO3 (Amézquita, 1999). 2.5.6. Flujo en masa Padilla (2011) explica que, mediante el proceso de flujo en masa los iones (elementos nutritivos en forma iónica) se desplazan de un sitio a otro donde son absorbidos por la raíz por diferencia de potenciales hídricos. Cuando una raíz activa está absorbiendo agua (solución) para transpirarla, obedeciendo a la demanda hídrica creada por la atmósfera, alrededor del área de influencia de la raíz se produce una disminución con el contenido de agua en ese volumen de suelo, disminuyéndose el potencial hídrico. Como en este volumen el suelo quedará más seco, el agua de los lugares circunvecinos más húmedos (de mayor potencial hídrico) tenderá a moverse en la dirección; húmedo seco para tratar de equilibrar la diferencia entre potenciales. A medida que el agua se mueve arrastra consigo todos 0los elementos nutritivos que en ella se encuentran disueltos los cuales serán tomados por las plantas (Amézquita, 1999).

58

Las cantidades de nutrientes tomados por la planta por flujo en masa, está relacionado con el uso consuntivo de ésta y con la concentración de nutrientes en la solución (factor intensidad) y son afectadas negativamente por la disminución en la conductividad hidráulica a medida que el suelo va secándose por evapotranspiración (Arévalo et al, 2012). Un suelo productivo para el cultivo de rosas, debe entonces contener un buen volumen de mesoporos y una buena conductividad hidráulica; ya que la nutrición depende mucho de este factor, aún a contenidos de humedad cercanos a punto de marchitez temporal para que el flujo de masa sea lo más constante posible (Amézquita, 1999). 2.5.7. El color en las rosas La clase de pigmentos responsables de la coloración en rosas son las antocianinas, las mismas que pertenecen al grupo de los flavonoides, los cuales se caracterizan por ser un grupo numeroso y ampliamente distribuido en el reino vegetal; solubles en agua, encontrándose principalmente en los vacuolos, aunque algunos existen en los cromoplastos y cloroplastos (Ferrer, 1991). 2.5.7.1. Flavonoides Son glicósidos fenólicos, que tienen como estructura C6 – C3 – C6; dos anillos aromáticos unidos por un cromano de tres carbones (Figura 11) que generalmente forma un ciclo pirano. El anillo A y el oxígeno, provienen vía de los policétidos suministrados de la vía acetil CoA, mientras que B y los otros tres carbones se originan vía del ácido shikímico. Las antocianinas son, pues, derivadas del 2-fenil benzopirilio (Latorre, 2011). Figura 11. Estructura y núcleo del flavonoide Fuente: Latorre, 2011 Por lo anterior, el mismo autor acota que se han identificado en los vegetales más de 4 000 flavonoides que contribuyen a dar coloración a: hojas, flores, frutos; anaranjado, rojo, azules, púrpuras, amarillo brillante, púrpura azulado pálido, verde pálido, varias tonalidades, aunque existen algunos incoloros. Entre los diferentes flavonoides, las antocianinas son responsables de definir el color característico de la variedad freedom, el cual es rojo puro (Rosen Tantau, 2012).

59

2.5.7.1.1. Antocianinas Las antocianinas (gr. antos, flor cianos, azul), son compuestos ampliamente dispersos e importantes en las plantas cuya gran variedad de colores especialmente en las flores, depende del pH del vacuolo; en general son rojas en medio ácido, azul o violeta en medio básico. Aunque en este proceso de coloración, intervienen también otros factores como la co-pigmentación con otros glicósidos: flavonas, taninos hidrolizables, etc., igualmente en el desarrollo de color existe el proceso de quelación (Latorre, 2011). El mismo autor indica que, químicamente las antocianinas son glicósidos derivados de la glucosa, galactosa, arabinosa, y algunos otros mono y disacáridos, siendo el aglicon (gr. sin dulce), las antocianidinas. En ocasiones las antocianidinas pueden estar unidas a un ácido orgánico por ejemplo el ácido para-hidroxi benzoico. Existen antocianinas incoloras llamadas leuco-antocianinas, las cuales, al hidrolizarse, liberan aglicones coloreados. Los aglicones más comunes son las cianidina, pelargonidina y la delfinidina (Figura 12). Figura 12. Flavonoides: antocianinas. Aglicones: antocianidina, pelargonidina, delfinidina y leuco-delfinidina

R = H = cianidina

R = glucosa = antocianina (cianidina 3 - glucósido)

Magenta, carmesí

Pelargonidina

Rojo, anaranjado, escarlata

Delfinidina

Azul, violeta, púrpura azulado claro

Leuco delfinidina

(flavan 3 - dioles)

Fuente: Latorre, 2011

60

2.6. Rosa variedad freedom Las plantas de la variedad freedom son robustas y resistentes a enfermedades, especialmente a mildiú velloso. Presentan flores rojas de botón grande, seleccionadas para el cultivo en ambientes frescos con alta intensidad de luz, especialmente en Sur y Centroamérica. Las flores tienen una larga vida en florero y se transportan muy bien (Rodríguez & Flóres, 2006). Con un buen manejo del cultivo se, puede alcanzar una productividad aproximada de 1.2 tallos por planta por mes; esta variedad ha tenido buena acogida en el mercado norteamericano, sobre todo en épocas de venta mayores, como es San Valentín y el día de las madres, también su gran acogida y gran venta es porque tiene un color rojizo intenso, y una textura muy suave, lo que hace que freedom esté entre las variedades más comerciales y apreciadas por el mercado (Rosen Tantau, 2012). 2.6.1. Aspectos agronómicos Para Bastidas et al. (2000), indican que, las rosas de la variedad Freedom son consideradas como modernas (híbridos de té) que por lo general son triploides o tetraploides, altamente vigorosas, que presentan usualmente una flor única por tallo y cumplen con ciertas características como: tallo largo entre 50 y 90 cm, follaje verde brillante, flores de apertura lenta, colores vivos, buena conservación en florero, resistencia a plagas y enfermedades, altos rendimientos por metro cuadrado y la posibilidad de ser cultivadas a temperaturas no muy elevadas. Esto permite que sean utilizadas en programas extensivos de flor de corte bajo invernadero. Los aspectos agronómicos de la variedad freedom se detalla a continuación en el Cuadro 21.

61

Cuadro 21. Aspectos agronómicos del cultivo de Rosa de la variedad freedom

Cultivo: Rosa

Variedad: Freedom

Tipo

Híbrido de T

Color del botón

Rojo Puro

Color del follaje

Verde obscuro

brillante

Largo de tallos

70 - 90 cm

Productividad

110 tallos/m2/año

Índice promedio/planta/mes

1.2 - 1.3

Vida en florero

13- 15 días

Tamaño de botón

5 - 7 cm

Número de pétalos

30 – 35

Duración promedio total del período vegetativo

42 días

Duración promedio del período reproductivo (estados

fenológicos)

43 días

Duración total promedio del ciclo

85 días

Fuente: Rosen Tantau, 2012 Elaborado por: El Autor

62

2.6.2. Manejo de freedom La variedad Freedom se maneja con podas selectivas, cortando tallos “ciegos” (tallos sin flor) y tallos de cortes recientes o de cosechas anteriores, manteniendo aquellos tallos que iban para cosecha entre diciembre y enero, para mantener así la producción (Rodríguez & Flórez, 2006). En FalconFarms de Ecuador S.A., de acuerdo a los sucesos que ocurren en los diferentes eventos para el manejo de freedom se aplican las fuentes para nutrir a la planta y a la vez se establecen los cortes máximos y mínimos para la poda; que a continuación se resumen en la Figura 13. Figura 13. Manejo de freedom en relación a podas

Evento: Poda Semanas: 0; y 43 - 46 Suceso: Baja absorción de nutrientes Aplicar: -N-No3 (56 - 113) -Fósforo Función: Formación raíces

Evento: Brotación Semanas: 1- 3; y 45 – 46 - 47 Suceso: Baja absorción de nutrientes Aplicar: -N-No3 (56 -113) -Citoxime -Citoquininas -Auxinas -Giberelinas -Fósforo Función: Formación raíces -Potasio -Calcio - Magnesio

63

(cont.).

Evento: Formación de hojas y Botón floral Semanas: 4,5; y 48,49 Suceso: Absorción normal de N-No3

(113) Aplicar: -Magnesio -Hierro - Manganeso -Boro -Calcio

Evento: Floración Semanas: 6 - 9, 50 - 52; y 1 Suceso: Absorción normal N-No3 (113) Aplicar: -Magnesio -Hierro -Manganeso -Boro - 25 % más de la fórmula

Evento: Crecimiento Botón Floral Semanas: 2,3,10 y 11 Aplicar: -Calcio -Boro -Fosfato Monopotásico


64

2.6.3. Fenología de la rosa Rosa sp. de la variedad freedom Arévalo et al. (2003), indican que el ciclo de un tallo floral de rosa de la variedad Freedom es de 85 días, la mitad de este período es de crecimiento vegetativo y el otro reproductivo. Durante este ciclo se presentan diversos estadios de desarrollo que van, desde una yema axilar que brota siendo la base estructural de la planta y de la producción de flores, hasta un tallo listo para cosechar. Las yemas ubicadas en las hojas superiores de un tallo con frecuencia parecen ser más generativas, mientras que las yemas inferiores son vegetativas (Figura 14). Figura 14. Ubicación de las yemas en el tallo

1) Tallo principal 2) Tallo secundario 3) Yema principal 4) Yema secundaria 5) Nudo 6) Entrenudo

Fuente: Darquea, 2013 2.6.3.1. Período Vegetativo Concomitantemente con lo anterior, esta fuente sostiene que el periodo vegetativo se subdivide en inducción del brote y desarrollo del tallo floral, presentando un color rojizo característico; la duración del período vegetativo es de 36 - 42 días. 2.6.3.2. Período Reproductivo Cáceres et al. (2003), señalan que este período se inicia con la inducción del primordio floral, que coincide con una variación del color del tallo y hojas de rojo a verde, seguido de los estadios fenológicos (Figura 15). Figura 15. Etapas fenológicas del período reproductivo de la Rosa sp. de la variedad Freedom


65

Por lo anterior, los mismos autores acotan que, los estadios fenológicos o etapas fenológicas se diferencian por el diámetro del botón floral, iniciando con el estadio “palmiche” o “penacho“ el cual es la inducción del primordio floral, seguido del estadio “arroz” con diámetro menor a 4 mm, “arveja” que comprende entre 5 a 7 mm, “garbanzo” de 8 a 12 mm, “raya color” indica el momento cuando se separan ligeramente los sépalos por efecto del crecimiento del botón dejando ver el color de los pétalos y tiene un diámetro entre 18 a 29 mm y el “corte” logrando para el último estadio un diámetro mayor a 30 mm, momento en que la flor llega a un punto de apertura comercial, más no fisiológica. El rango de duración del período reproductivo en FalconFarms de Ecuador S.A. esta entre 43 - 49 días (Cuadro 22). Cuadro 22. Duración del período Reproductivo de la Rosa de la variedad freedom

De estado fenológico “penacho” para “arroz”

7 - 8 días

De estado fenológico “arroz” para “arveja”

7 días

De estado fenológico “arveja” para “garbanzo”

3 - 4 días

De estado fenológico “garbanzo” para “bola”

5 - 6 días

De estado fenológico “bola” para “raya color”

7 días

De estado fenológico “raya color” para “sépalos sueltos”

7 días

De estado fenológico “sépalos sueltos” para “flor-cosecha”

7 - 10 días

Duración total del período reproductivo

43 - 49 días

Fuente: FalconFarms de Ecuador S.A., 2015 Elaborado por: El Autor 2.7. Puntos de corte

González (2012), sostiene que, la determinación del grado de apertura de la flor al momento de la cosecha, debe darse luego de tomar algunas consideraciones importantes como son: donde se encuentra el cliente y sus preferencias, duración del almacenamiento, la fecha de exportación, canales utilizados y la época del año. Gamboa (1989), expresa que, el punto de corte difiere de acuerdo con la variedad por ejemplo en algunas variedades deben estar separados todos los sépalos y en otras, además de tener los sépalos separados, debe existir una separación de los pétalos extremos.

66

La misma fuente anterior indica que, cuando las flores son cortadas muy maduras muestran mayor sensibilidad al etileno, por lo que son más propensas a sufrir daños durante el transporte y su vida se reducirá en florero. Como ya se indicó en el capítulo anterior, para Cáceres et al. (2003), el punto de corte es el momento en que la flor llega a un punto de apertura comercial, más no fisiológica; por ello, en la cosecha es muy importante el punto de corte o apertura floral; en rosas esto se mide contabilizando el número o porcentaje de pétalos abiertos o semi-abiertos que contenga el tallo y se establece principalmente de acuerdo a la demanda del consumidor final de producto, por ejemplo cuando la flor debe hacer un largo viaje, el punto de corte debe ser ajustado para que la duración de la flor sea mayor. 2.7.1. Tipos de mercado Nuevamente, según el mercado, se maneja el punto de corte o apertura de la flor. El tener una flor con punto de corte más abierto no significa que tenga menor vida de florero, ya que la vida de florero se cuenta desde que la flor se corta de la planta. Si la flor se corta cerrada, y se abre una vez cortada, entonces sí va a tener una menor vida de florero (González, 2012). 2.7.1.1. Mercado ruso Para este mercado la flor es destinada a Rusia y Japón; como se visualiza en las Figuras 16 (5) y 19, el punto de corte es más abierto. Prefieren tallos bien largos (de 70 a 90 cm) y los botones más grandes (6 cm ó más). Figura 16. Puntos de corte para Rosa

Fuente: González, 2012 2.7.1.2. Mercado europeo El mercado europeo prefiere el punto de corte cerrado, como se visualiza en las Figuras 16 (2) y 17. Llevan desde 40 a 60 cm principalmente. 2.7.1.3. Mercado americano

Este mercado comprende a Estados Unidos y a la región del Medio Oriente (Arabia Saudita, Bareín, Emiratos Árabes Unidos, Irak, Israel, Jordania, Kuwait, Líbano, Omán, Territorios Palestinos, Catar, Siria, Yemen, Chipre, Egipto, Irán y, Turquía). Como se visualiza en las Figuras 16 (3) y 18, el punto de corte es intermedio. Llevan desde 40 a 60 cm principalmente.

67

Figura 17. Botón floral europeo Figura 18. Botón floral americano

Fuente: Ramírez, 2009 Fuente: Ramírez, 2009 Figura 19. Botón floral ruso

Fuente: Ramírez, 2009

68

2.8. Árbol de problemas del botón floral Figura 20. Árbol de problemas sobre el botón floral

Elaborado por: El Autor

69

3. MATERIALES Y MÉTODOS

3.1. Ubicación Esta investigación, se realizó en la Empresa FalconFarms de Ecuador S.A., ubicada en:

País: Ecuador

Provincia: Pichincha

Cantón: Cayambe

Altitud: 2 774 Msnm

Latitud: 0°1’ 28”N

Longitud: 78°8’36”O

3.2. Características meteorológicas

Temperatura promedio anual: 15.5 °C

Humedad relativa: 80 %

Temperatura ambiente máxima: 29 °C

Temperatura ambiente mínima: 2 ºC

Precipitación promedio anual: 1 250 mm

3.3. Materiales 3.3.1. Plantas de rosas de la variedad freedom

Edad: 10 años

Fecha del pinch para valentín: lunes 2 de noviembre del 2015.

Estado fenológico general (antes de la aplicación): Arroz

Altura de plantas promedio: 2.20 m

3.3.2. Terreno El área neta del ensayo fue de 1 639.73 m2, siendo el área/cama de 40.99 m2, el número de camas evaluadas fueron de 40 de estas, las cuatro primeras camas y las cuatro últimas del lugar determinado para el ensayo fueron consideradas como bordes, por lo cual se utilizaron en la investigación 32 camas del cultivo de rosas de la variedad Freedom (Cuadro 23; Figura 21).

70

3.3.2.1. Dimensiones del terreno y densidad Cuadro 23. Dimensiones del terreno y densidad del área de estudio


71

Figura 21. Esquema de distribución del ensayo en el área de estudio

Elaborado por: El autor

72

3.3.2.2. Productos bioestimulantes

HTP-B1

GRAND ROSE

BIO-SOLAR

3.3.2.3. Materiales de recolección y procesamiento de datos

Libro de campo

Calculadora

Computadora

Cámara fotográfica

Materiales de escritorio

Programas Microsoft Word y Excel 2010

InfoStat Estudiantil

Software SPSS Statistics 20

Tabla de colores "R"

Calibrador “pie de rey”

Etiquetas para marcaje 3.3.2.4. Materiales de campo

Guantes de caucho

Esponjas

Mascarillas

Bomba de mochila para aspersión foliar de capacidad de 8 L

Bomba portátil para aspersión foliar de capacidad de 1 000 L

Tijeras de podar 3.4. Metodología 3.4.1. Diseño experimental y tratamientos Se aplicó el modelo estadístico mediante un diseño completamente al azar con ocho repeticiones u observaciones para cada uno de los tratamientos, tomando en cuenta que el número total de camas fueron de 40 (8 camas como efectos bordes), por lo que el número a evaluar de camas fueron de 32, se evaluó el 10 % del número total de plantas de cada cama, es decir se evaluó un mínimo de 30 plantas por cada cama, por lo tanto, el número total de plantas evaluadas fueron de 1 024 plantas (32 plantas/cama). Las plantas evaluadas fueron marcadas para su reconocimiento. Se establecieron cuatro tratamientos conformados por, tres bioestimulantes y un testigo, los cuales se indican a continuación en el Cuadro 24; y en el Cuadro 25 se muestra el registro detallado de aplicación de los tratamientos respectivamente.

73

Cuadro 24. Tratamientos del ensayo

TRATAMIENTO PRODUCTO DÓSIS APLICACIONES MODO DE APLICACIÓN

T1

HTP-B1

15.126 L/Ha

12.198 L/Ha

Dos aplicaciones

- Primera

aplicación: De forma tópica

o manual

Manualmente utilizando

guantes de caucho y esponja, directamente,

desde el pedúnculo floral hasta el botón en estado

fenológico garbanzo. En las primeras horas de la

mañana o en las últimas horas de la tarde

2.927 L/Ha

- Segunda aplicación: Mediante bomba de mochila de

capacidad de 8 L

En dilución con una dosis de

1.5 mL/Litro de agua (8 L agua/cama) mediante

Aspersión Foliar con bomba. En las primeras horas de la

mañana o en las últimas horas de la tarde

T2

GRAND-

ROSE

10.978 L/Ha

Una aplicación de forma tópica o manual

Manualmente en estado fenológico garbanzo

utilizando guantes de caucho y esponja,

directamente, desde el pedúnculo floral hasta el

botón en estado fenológico garbanzo. En las primeras

horas de la mañana o en las últimas horas de la tarde

T3 BIO-SOLAR

1.301 L/Ha/ocasión

Tres aplicaciones

Por aspersión, mediante

bomba

En dilución con una dosis de

2 mL/Litro de agua (8 L agua/cama) mediante

Aspersión foliar con bomba, En estado fenológico garbanzo. En las primeras horas de la mañana o en las últimas horas de la tarde

T4

Testigo

absoluto

Sin bioestimulante


74

Cuadro 25. Registro de aplicación de bioestimulantes FINCA: Flores de la Montaña CULTIVO: Rosa sp.cv Freedom BLOQUE: 33

SEMANA

FECHA

(aa-mm-dd)

PRODUCTO

(S) APLICADO

(S)

Volume

n aplicad

o mL/aplicación/cama

# CAMAS

Volumen aplicado L/ cama

APLICACIÓN

IMPLEMENTO

DIRECCIÓN

T (°C)

HR (%)

pH

MEZCLA

HORA INICIO

HORA FINAL

L A N Z A

A G U I L Ó N

BOMBA MANUAL

ESPONJA

BOTÓN FLORAL

FOLLAJE

O T R O

51 15-12-19 BIO-SOLAR 16 8 0.016 Primera X X 12 41 5 06h30 06h45

52 15-12-22 BIO-SOLAR 16 8 0.016 Segunda X X 15 40 5 06h30 06h45

1 15-12-29 BIO-SOLAR 16 8 0.016 Tercera X X 17 40 5 06h30 06h45

Volumen total utilizado/tratamiento para una ocasión: 0.128 L Volumen total utilizado/tratamiento para segunda ocasión: 0.128 L Volumen total utilizado/tratamiento para tercera ocasión: 0.128 L

Volumen total utilizado para tres ocasiones: 0.384 L

2 16-01-05 HTP-B1 50 8 0.05 Primera X X 20 41 5 11h30 12h30

52 16-01-12 HTP-B1 1.5 8 0.0015 Segunda X X 20 41 5 11h30 12h30

Volumen total utilizado/tratamiento para una ocasión (forma tópica o manual): 0.4 L Volumen total utilizado/tratamiento para segunda ocasión (aspersión): 0.096 L

Volumen total utilizado para dos ocasiones (manual y aspersión): 0.496 L

1 16-01-19 GRAND-ROSE

45 8 0.045 Primera X X

11 43 5 07h10 08h10

Volumen total utilizado/tratamiento para una ocasión: 0.36 L Volumen total utilizado para una ocasión: 0.36 L


75

3.4.2. Variables y métodos de evaluación 3.4.2.1. Longitud del botón floral Las mediciones de longitud fueron realizadas en centímetros utilizando un calibrador “pie de rey”, a partir de la primera aplicación de cada tratamiento en estado fenológico de garbanzo, es decir se comenzó a tomar los datos a la primera semana de haber aplicado cada bioestimulante; esta evaluación se efectuó semanalmente, para la determinación de la efectividad, para cada uno de los tratamientos en estudio. Además, estas mediciones fueron tomadas antes y después de la cosecha, de los botones florales en cada una de las plantas seleccionadas. Para antes de la cosecha se procedió a medir desde la base del botón hasta el ápice de los sépalos aun no desarrollados, y para la medición después de la cosecha se tomaron los datos desde la base del botón hasta la constricción de los pétalos. 3.4.2.2. Diámetro del botón floral Esta evaluación se la realizó dos veces, una en etapa garbanzo, la cual se medió desde la parte central de los botones de las plantas seleccionadas; utilizando un calibrador “pie de rey” y se expresó en centímetros, y la otra medición se la realizó al momento de la cosecha, desde la parte central de los botones de las plantas seleccionadas utilizando un calibrador “pie de rey” (Espinosa, 2013). 3.4.2.3. Intensidad de color Esta medición se la realizó comparando la intensidad de color que toma cada uno de los tratamientos mediante el uso de, una tabla de colores "R colors", esta técnica muestra colores R de una manera que tiene la intención de ayudar a la búsqueda de los colores por su nombre, o por el índice de los mismos; este método de determinación de colores es utilizado por ingenieros y científicos a nivel mundial, tal como se muestra a continuación en la Figura 22. Figura 22. Tablas de colores "R" para la determinación de la intensidad del color

Fuente: Tablas de colores "R", 2005

76

3.4.2.4. Número de días a la cosecha Se contabilizó el número de días a la cosecha a partir de la primera aplicación de cada tratamiento hasta la etapa de cosecha, para la determinación de la durabilidad del ciclo productivo desde estado fenológico garbanzo hasta su respectiva cosecha de flor. 3.4.2.5. Análisis financiero Se realizó el análisis financiero en base a los costos de producción, mediante la determinación de los costos variables y los costos fijos; para cada uno de los tratamientos en estudio. Para los costos variables se tomaron en cuenta el volumen aplicado de cada bioestimulante para la superficie de 327.92 m2, y para una hectárea respectivamente; mientras que para los costos fijos se tomó en cuenta los materiales, mano de obra, forma y número de aplicaciones efectuadas. Y además se determinó la utilidad neta de cada tratamiento, el porcentaje de ganancia de cada tratamiento frente al testigo absoluto; y además la relación beneficio/costo, en función del precio en el mercado de cada tratamiento. Por recomendación de la empresa las variables tomadas en cuenta para este análisis fueron: 1) la longitud del botón floral en cosecha, 2) el diámetro del botón floral en cosecha, 3) la intensidad de color; y 4) número de días a la cosecha desde la primera aplicación, en cuanto al área se consideró para 327.92 m2 (tratamiento) y una hectárea (10 000 m2) por un período de un ciclo de producción de 85 días respectivamente.

77

4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 4.1. Normalidad y varianzas constantes En la prueba de “Shapiro-Wilks”, (Cuadro 26) detectó normalidad de los residuos en todas las variables evaluadas; mientras que, en la prueba de “Levene” para varianzas constantes (mismo Cuadro) la variable “diámetro del botón floral a la primera semana después de la aplicación” resultó tener varianzas heterogéneas,; por lo que se decidió realizar la prueba de “Dunnett”, para la determinación de diferencias estadísticas. Cuadro 26. Prueba de normalidad y varianzas constantes para las variables en la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016

Variables

Shapiro-Wilks

Levene

Normalidad 1

Varianzas

constantes 2

Longitud del botón a la

primera semana después de la

aplicación

0.119

0.0993

Diámetro del botón a la

primera semana después de la

aplicación

0.9095

0.0049

Longitud del botón a la segunda

semana después de la aplicación

0.883

0.1090

Longitud del botón a la

tercera semana después de la

aplicación

0.3878

0.6471

Diámetro del

botón a la Cosecha

0.355

0.0581

Número de días a la cosecha

0.5627

0.2348

1: p-valor mayor a 0.05 indica normalidad de los residuos; 2: p-valor mayor a 0.05 indica varianzas constantes

78

4.2. Longitud del botón floral 4.2.1. Longitud del botón floral en la primera semana después de la aplicación El ANOVA para la variable “longitud del botón a la primera semana después de la aplicación”, (Cuadro 27) el p-valor detectó diferencias altamente significativas para bioestimulantes, para el contraste ortogonal del TESTIGO ABSOLUTO versus los bioestimulantes. De acuerdo con lo que señala Saborío (2002), con respecto a la composición de bioestimulantes, el tratamiento HTP-B1, debido a las vitaminas y fitohormonas que lo componen, presentó una mayor longitud del botón floral a diferencia del TESTIGO ABSOLUTO, debido a la intervención de los procesos biológicos ocasionados por dicho bioestimulante desde el inicio. Por su lado el tratamiento BIO-SOLAR la longitud del botón floral resultó superior con relación al TESTIGO ABSOLUTO, probablemente gracias a los ingredientes activos presentes como: carbohidratos, aminoácidos, calcio (CaO), y oligoelementos quelatados, los cuales fueron los responsables de mejorar el metabolismo celular; mientras que el tratamiento GRAND-ROSE también mostró superioridad de la longitud del botón floral con respecto al TESTIGO ABSOLUTO, esto se debe gracias a la efectividad ocasionado por la intervención de fitorreguladores. Cuadro 27. Análisis de la varianza (ANOVA) para la variable “Longitud del botón floral en la primera semana después de la aplicación” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016

F.V. SC gl CM F p-valor

Bioestimulantes 5.01 3 1.67 66.01 < 0.0001

Testigo vs b1 b2 b3 2.58 1 2.58 102.17 <0.0001

Error 0.71 28 0.03

Total 5.72 31

Coeficiente de variación (%)

3.44

*p-valor mayor a 0.05 indica diferencias significativas La prueba de Tukey al 5 % para la variable “longitud del botón floral en la primera semana después de la aplicación”, (Cuadro 28) identificó cuatro rangos de significación estadística para bioestimulantes, ubicándose en el primer rango con la mejor respuesta el tratamiento HTP-B1, con una longitud de botón floral de 5.14 cm, mientras que en el último rango se ubicó el tratamiento TESTIGO ABSOLUTO con una longitud del botón floral de 4.13 cm. Los bioestimulantes que en su formulación contienen aminoácidos tienen un bajo peso molecular, que son transportados y absorbidos rápidamente por la planta, aprovechando la síntesis de proteínas y ahorrando gran cantidad de energía que se concentra en el incremento de la producción (Guerrero, 2006). De acuerdo con los fabricantes HTP (2015) y Annquímica (2015), tanto el bioestimulante HTP-B1 como el BIO-SOLAR contienen aminoácidos en su composición; en el caso de HTP-B1 la concentración de estos compuestos es menor a la concentración presente en BIO-SOLAR; sin embargo, se observa una mayor respuesta con la aplicación de HTP-B1, lo cual es un indicador de que los aminoácidos actúan de manera más eficiente si se encuentran a bajas concentraciones en el producto.

79

Según Latorre (2011), las vitaminas son compuestos orgánicos que, en concentraciones bajas, tienen funciones catalizadoras y reguladoras en el metabolismo de la célula, en el cual las plantas tienen la habilidad de sintetizarlas. Las vitaminas que constan en la composición del bioestimulante HTP-B1 son: 1) A, 2) B1,3) B2, 4) B5, 5) B6, 6) PP o B3; y 7) C, las mismas que fueron esenciales para mejorar el metabolismo celular desde la primera semana de haber aplicado el bioestimulante. La empresa HTP (2015), explica en cuanto a la composición del bioestimulante HTP-B1, que en bajas concentraciones están presentes giberelinas y citoquininas con respecto a las cuales, Grill & Himmelbach (1998), describen sus funciones, afirmando que ambas fitohormonas son mediadores del programa de desarrollo endógeno, con la función de potenciar el metabolismo; y además sirven para integrar las señales extracelulares para regular y optimizar el crecimiento y desarrollo de las plantas, a diferencia de BIO-SOLAR que no las contiene. En relación al bioestimulante GRAND-ROSE, el fabricante Ascora (2015) señala que el producto posee en su composición fitorreguladores, que se encuentran en una mayor concentración que en el bioestimulante HTP-B1 y por lo tanto dicho bioestimulante es menos efectivo, a diferencia del biostimulante HTP-B1 que consiguió la pronta respuesta desde la primera semana luego de su aplicación. Cuadro 28. Prueba de diferenciación de medias de Tukey al 5 % para la variable “Longitud del botón floral en la primera semana después de la aplicación” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016

Bioestimulantes Medias Rangos de significación

HTP-B1 5.14 A*

GRAND-ROSE 4.84 B

BIO-SOLAR 4.37 C

TESTIGO SIN BIOESTIMULANTE

4.13 D

*Medias con una letra común no son significativamente diferentes (p > 0.05) 4.2.2. Longitud del botón floral en la segunda semana después de la aplicación El ANOVA para la variable “longitud del botón a la segunda semana después de la aplicación”, (Cuadro 29) detectó diferencias altamente significativas para bioestimulantes, y para la comparación ortogonal del TESTIGO ABSOLUTO versus los bioestimulantes. En esta semana la efectividad de los bioestimulantes mostró similitud en la estimulación sobre la longitud del botón floral, ya que los tres bioestimulantes actuaron de manera equiparada a diferencia del TESTIGO ABSOLUTO, el cual presentó una menor longitud del botón floral; esto debido a la acción de los diferentes ingredientes activos que se encuentran en cada bioestimulante.

80

Tal como se indicó, Saborío (2002), con respecto a la composición de bioestimulantes, el tratamiento HTP-B1, debido a las vitaminas y fitohormonas, para esta semana siguió presentando una mayor longitud del botón floral a diferencia del TESTIGO ABSOLUTO, probablemente debido a la intervención de los procesos biológicos ocasionados por dicho bioestimulante, en cuanto al tratamiento BIO-SOLAR la longitud del botón floral resultó superior con relación al TESTIGO ABSOLUTO, gracias a los ingredientes activos presentes como: carbohidratos, aminoácidos, calcio (CaO), y oligoelementos quelatados, los cuales fueron los responsables de mejorar el metabolismo celular; mientras que el tratamiento GRAND-ROSE también mostró superioridad de la longitud del botón floral con respecto al TESTIGO ABSOLUTO, esto se debe gracias a la efectividad ocasionado por la intervención de fitorreguladores. Cuadro 29. Análisis de varianza (ANOVA) para la variable “Longitud del botón floral en la segunda semana después de la aplicación” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016

F.V. SC Gl CM F p-valor


Testigo vs b1 b2 b3 1.16 1 0.04 171.03 <0.0001

Error 7.08 28 7.08

Total 8.28 31


3.44

*p-valor menor a 0.05 indica diferencias significativas La prueba de Tukey al 5 % para la variable “longitud del botón floral en la segunda semana después de la aplicación”, (Cuadro 30) identificó dos rangos de significación estadística para bioestimulantes, ubicándose en el primer rango con la mejor respuesta los tratamientos HTP-B1, BIO-SOLAR, y GRAND-ROSE con longitudes del botón floral de 6.30 cm, 6.29 cm, y 6.20 cm respectivamente, lo que indica que a partir de esta semana la acción de los tres bioestimulantes se comenzaron a equiparar; mientras que en el último rango se ubicó el tratamiento TESTIGO ABSOLUTO con una longitud del botón floral de 5.18 cm. En la composición de HTP-B1 y BIO-SOLAR se encuentran presentes carbohidratos que proveen a la planta de glucosa y glucosa-6-fosfato, productos esenciales para una fotosíntesis estable, además de aminoácidos, los cuales son responsables para que la planta mejore su metabolismo, tal como indican los fabricantes HTP (2015) y Annquímica (2015). Además de acuerdo con Vázquez (2003), los carbohidratos son precursores de ciertos factores vitamínicos como el ácido ascórbico (vitamina C) que forma parte del bioestimulante HTP-B1 y el inositol; el mismo autor afirma que los carbohidratos intervienen en los procesos de reconocimiento celular, en la aglutinación, coagulación y reconocimiento de hormonas como las citoquininas y giberelinas, las mismas que están presentes en la formulación de HTP-B1, razones por las cuales este bioestimulante manifiesta su respuesta de manera inmediata; a diferencia de BIO-SOLAR que en su composición no contienen fitohormonas, lo que justifica su respuesta tardía en esta variable.

81

Espinosa (2013), señala que los bioestimulantes que en su composición presentan fitorreguladores; estimulan el metabolismo general de la planta, incrementando sus procesos fisiológicos normales sin provocar la estimulación exagerada de determinada función específica, en este caso para la influencia del incremento de la longitud del botón floral, ya que de acuerdo con la empresa Ascora (2015), la composición concentrada de GRAND-ROSE consiste de fitorreguladores, lo que justifica la respuesta paulatina de este producto en la segunda semana después de su aplicación. Cuadro 30. Prueba de diferenciación de medias de Tukey al 5 % para la variable “Longitud del botón floral en la segunda semana después de la aplicación” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016


HTP-B1 6.30 A*

GRAND-ROSE 6.29 A*

BIO-SOLAR 6.20 A*


5.18 B

*Medias con una letra común no son significativamente diferentes (p > 0.05) 4.2.3. Longitud del botón floral en la tercera semana después de la aplicación (cosecha) El ANOVA para la variable “longitud del botón floral a la tercera semana después de la aplicación (cosecha)”, (Cuadro 31) detectó diferencias altamente significativas para los bioestimulantes, mientras que en la comparación ortogonal entre el TESTIGO ABSOLUTO versus los bioestimulantes no hubo diferencias estadísticas significativas. Conforme a lo que señalan Espinosa (2013) y la empresa Ascora (2015), pese a tener una mayor concentración de fitorreguladores en la composición de GRAND-ROSE, muestra una menor longitud del botón floral en esta semana, a diferencia de BIO-SOLAR, HTP-B1 e incluso que el TESTIGO ABSOLUTO; debido al incremento de procesos fisiológicos que presenta la acción de dicho bioestimulante a partir de la segunda semana después de la aplicación; mientras que al momento de la cosecha el bioestimulante no provocó la estimulación significativa en la longitud, ocasionando así un valor inferior, en comparación con los demás tratamientos. Cuadro 31. Análisis de varianza (ANOVA)para la variable “Longitud del botón floral en la tercera semana después de la aplicación (cosecha)” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016



Testigo vs b1 b2 b3 0.08 1 0.08 3.44 0.0741

Error 0.65 28 0.02

Total 1.84 31


2.29

*p-valor menor a 0.05 indica diferencias significativas

82

La prueba de Tukey al 5 % para la variable “longitud del botón floral en la tercera semana después de la aplicación (cosecha)”, (Cuadro 32) identificó dos rangos de significación estadística para bioestimulantes, ubicándose en el primer rango con la mejor respuesta los tratamientos HTP-B1 y BIO-SOLAR con longitudes del botón floral de 6.87 cm y 6.77 cm respectivamente, mientras que en el último rango se ubicaron los tratamientos TESTIGO ABSOLUTO y GRAND-ROSE con longitudes del botón floral de 6.55 cm y 6.37 cm respectivamente. La respuesta de BIO-SOLAR logró ser superior frente a los demás tratamientos, conforme a como lo indica la empresa Annquímica (2015), dado que este bioestimulante actúa como bioenergizante de la fotosíntesis y del metabolismo, promoviendo el contenido energético, lo cual genera una mejora en la formación del complejo azúcar-boro y la migración de este complejo hacia los botones florales, los cuales son los órganos donde lo utilizan o donde se pueden acumular dicho complejo. Por otro lado, HTP-B1 para esta semana mostró una respuesta tardía a diferencia de BIO-SOLAR, ya que como lo señalan los fabricantes HTP (2015), y Annquímica (2015) al carecer el bioestimulante HTP-B1 de ingredientes activos como el calcio (CaO), y oligoelementos como: boro, zinc, cobalto manganeso y quelatados; hay una menor respuesta frente a BIO-SOLAR, que en su composición si los posee. Concomitantemente con lo anterior, Padilla (2011) explica la importancia de los ingredientes activos presentes en la composición de BIO-SOLAR: Uno de los elementos de mucha importancia para el cultivo de rosas es el calcio; por ser un nutriente considerado como influyente sobre los procesos de crecimiento, formación (botón floral) y calidad de las flores, mediante la activación de reacciones enzimáticas. Una vez dentro de la planta, dicho elemento funciona en varias formas, de las cuales se destacan las siguientes funciones:

Forma compuestos que son parte de las paredes celulares, esto fortalece la estructura de

la planta

Contribuye a la activación de varios sistemas de enzimas

Ayuda a neutralizar los ácidos orgánicos en la planta

Constituye parte de cada célula

Mejora el vigor general de la planta

Es responsable de la elongación y división normal de las células

Influye en la síntesis de proteínas

El boro contribuye a la formación y crecimiento del botón floral, gracias a la influencia que tiene en la translocación de azúcares, además, este micronutriente actúa de manera estructural, ya que forma complejos con los carbohidratos. Entre el mecanismo de acción que destaca el boro es la de intervenir en procesos relacionados en el cultivo de rosas tales como:

Absorción iónica

Transporte de carbohidratos

Síntesis de lignina, celulosa, ácidos nucleicos y proteínas

Actividad enzimática

El zinc está relacionado con varios procesos, de los cuales los de mayor relevancia son: incitar a la actividad enzimática, este microelemento participa en la producción de ciertos aminoácidos e

83

influye en la síntesis del triptófano; lo cual promueve la función hormonal en la planta, y por lo tanto esto conlleva al estímulo del crecimiento y desarrollo del botón floral. El cobalto participa como constituyente y activador de la vitamina B 12 y derivados, influyendo de tal manera en la regulación hormonal lo que genera el incremento en el tamaño del botón floral; y además este microelemento interviene en los procesos de fijación biológica del nitrógeno, siendo este de gran influencia sobre los procesos de crecimiento y formación de las flores. En cuanto al manganeso es considerado como un microelemento constituyente y activador enzimático, ya que posee la facultad de ayudar en el fraccionamiento de la molécula de agua para el proceso fotosintético. Cuadro 32. Prueba de diferenciación de medias de Tukey al 5 % para la variable “Longitud del botón floral en la tercera semana después de la aplicación (cosecha)” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016


BIO-SOLAR 6.87 A*

HTP-B1 6.77 A*


6.55 B

GRAND-ROSE 6.37 B

*Medias con una letra común no son significativamente diferentes (p > 0.05) 4.3. Diámetro del botón floral 4.3.1. Diámetro del botón floral en la primera semana después de la aplicación El ANOVA para la variable “longitud del botón a la primera semana después de la aplicación”, (Cuadro 33) el p-valor detectó diferencias altamente significativas para bioestimulantes, para el contraste ortogonal del TESTIGO ABSOLUTO versus los bioestimulantes. Cuadro 33. Análisis de varianza (ANOVA) para la variable “Diámetro del botón floral en la primera semana después de la aplicación” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016



Testigo vs b1 b2 b3 3.91 1 3.91 302.69 < 0.0001

Error 0.36 28 0.01

Total 5.53 31


5.18

*p-valor menor a 0.05 indica diferencias significativas

84

4.3.1.1. Prueba de Dunnett al 5 % En vista de que la variable “diámetro del botón floral a la primera semana” no presentó varianzas constantes, por lo que es heterogénea, se realizó la prueba de “Dunnett” al 5 %, (Cuadro 34) en la que todas las comparaciones resultaron tener diferencias altamente significativas, con excepción de la comparación entre HTP-B1 y GRAND-ROSE que resultaron no significativas. Corroborando lo que señala Saborío (2002), con respecto a la composición de bioestimulantes, HTP-B1, debido a las vitaminas y fitohormonas, presentó una respuesta breve debido a la intervención desde el inicio de procesos biológicos, mientras que GRAND-ROSE obtuvo un nivel bajo de efectividad ocasionado por la intervención paulatina de los fitorreguladores. Para la variable “diámetro del botón a la primera semana después de la aplicación”, (Cuadro 34) detectó diferencias altamente significativas para bioestimulantes, y para el contraste ortogonal del TESTIGO ABSOLUTO versus los bioestimulantes, ya que las medias de los tratamientos son estadísticamente diferentes a la media del testigo absoluto. Acorde con lo que menciona Saborío (2002), con relación a la composición de bioestimulantes, el tratamiento HTP-B1, debido a las vitaminas y fitohormonas, presentó un mayor diámetro del botón floral a diferencia del TESTIGO ABSOLUTO, debido a la intervención de procesos biológicos ocasionados por dicho bioestimulante, en cuanto al tratamiento BIO-SOLAR el diámetro del botón floral resultó superior con relación al TESTIGO ABSOLUTO, gracias a los ingredientes activos presentes como: carbohidratos, aminoácidos, calcio (CaO), y oligoelementos quelatados, los cuales fueron los responsables de mejorar el metabolismo celular; mientras que el tratamiento GRAND-ROSE también mostró superioridad del diámetro del botón floral con respecto al TESTIGO ABSOLUTO, esto se debe gracias a la efectividad ocasionado por la intervención de fitorreguladores. Cuadro 34. Prueba de Dunnett al 5 % “Diámetro del botón floral en la primera semana después de la aplicación” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016


HTP-B1 2.57 A*

GRAND-ROSE 2.55 A*

BIO-SOLAR 2.07 B


1.59 C

*Medias con una letra común no son significativamente diferentes (p > 0.05) 4.3.2. Diámetro del botón floral en la cosecha El ANOVA para la variable “diámetro del botón floral en la cosecha”, (Cuadro 35), detectó diferencias estadísticas para los bioestimulantes, mientras que en la comparación ortogonal entre el TESTIGO ABSOLUTO versus los bioestimulantes no hubo diferencias estadísticas.

85

Espinosa (2013) y la empresa Ascora (2015) señalan que, debido a que en la composición de GRAND-ROSE se encuentran fitorreguladores a una mayor concentración que HTP-B1, muestra un menor diámetro del botón floral al momento de la cosecha, a diferencia de BIO-SOLAR, HTP-B1 e incluso que el TESTIGO ABSOLUTO; debido al incremento de procesos fisiológicos que presenta la acción de dicho bioestimulante a partir de la segunda semana después de la aplicación; mientras que al momento de la cosecha el bioestimulante no provocó la estimulación significativa en el diámetro, ocasionando así un valor inferior, en comparación con los demás tratamientos. Cuadro 35. Análisis de varianza (ANOVA) para la variable “Diámetro del botón floral en la

cosecha” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de

la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016


Bioestimulantes 0.60 3 0.20 5.09 0.0062 *

Testigo vs b1 b2 b3 0.04 1 0.04 0.93 0.3422

Error 1.10 28 0.04

Total 1.71 31


5.45

*p-valor menor a 0.05 indica diferencias significativas 4.3.2.2. Prueba de Tukey al 5 % La prueba de Tukey al 5 % para la variable “diámetro del botón floral en la cosecha”, (Cuadro 36) identificó dos rangos de significación estadística para bioestimulantes, ubicándose en el primer rango con la mejor respuesta los tratamientos BIO-SOLAR, HTP-B1 y TESTIGO ABSOLUTO con diámetros del botón floral de 3.74 cm, 3.72 cm y 3.70 cm respectivamente, mientras que en el último rango se ubicó GRAND-ROSE con un diámetro del botón floral de 3.41 cm. Los fabricantes HTP (2015) y Annquímica (2015), explican que en la composición de HTP-B1 y BIO-SOLAR se encuentran presentes carbohidratos que provocan una alta carga iónica, los cuales proveen a la planta de glucosa y glucosa-6-fosfato, productos esenciales para una fotosíntesis estable, además de aminoácidos, los cuales son responsables para que la planta mejore su metabolismo, por lo cual ambos bioestimulantes mostraron valores superiores en cuanto al diámetro del botón floral al momento de la cosecha; mientras que el TESTIGO ABSOLUTO presentó dominancia sobre GRAND-ROSE, ya que en esta semana este bioestimulante careció de la influencia del estímulo para incitar el aumento en el diámetro del botón floral. Cuadro 36. Prueba de diferenciación de medias de Tukey al 5 % para la variable “Diámetro del botón floral en la cosecha” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016


BIO-SOLAR 3.74 A*

HTP-B1 3.72 A*


3.70 A*

GRAND-ROSE 3.41 B

*Medias con una letra común no son significativamente diferentes (p > 0.05)

86

4.4. Intensidad de color 4.4.1. Prueba de Kruskal Wallis al 5 % Para la variable “intensidad de color”, (Cuadro 37) la prueba de Kruskal Wallis al 5 % el p-valor resultó menor a 0.0001, lo que indica que existen diferencias altamente significativas para los bioestimulantes, en la “Prueba” para la variable “Intensidad de color”, (mismo Cuadro), identificó dos rangos de significación estadística para bioestimulantes, ubicándose en el primer rango con la mejor respuesta los tratamientos HTP-B1, GRAND-ROSE y BIO-SOLAR con valores de intensidad del color de 4.00, 4.00 y 3.50 respectivamente, mientras que en el último rango se ubicó el TESTIGO ABSOLUTO con una intensidad de color de 2; sin embrago, los tratamientos HTP-B1 y GRAND-ROSE mostraron valores más altos, los cuales son los que más contribuyeron a mejorar y uniformizar la intensidad del color “rojo puro” característico de la variedad freedom. Habiendo resultado HTP-B1 estar en el rango de significación, hubo un mejor efecto en el uso de este bioestimulante, ya que de acuerdo con Espinosa (2013), al existir mayor cantidad aminoácidos tales como: la alanina, glicina, leucina, valina, treonina, cisteína, metionina; y otros aminoácidos; conjuntamente con giberelinas y citoquininas, genera una mejor calidad de pigmentos en la coloración del botón floral, siempre y cuando las condiciones de su entorno externo (contenido hídrico de la planta, la cantidad de luz que recibe, el pH del suelo en el que crece, etc.), sean beneficiosas. La clase de pigmentos responsables de la coloración en rosas son las antocianinas, las mismas que pertenecen al grupo de los flavonoides, los cuales son glicósidos fenólicos, que se caracterizan por ser un grupo numeroso y ampliamente distribuido en el reino vegetal; solubles en agua, encontrándose principalmente en los vacuolos, aunque algunos existen en los cromoplastos y cloroplastos (Ferrer, 1991). De acuerdo con Latorre (2011), las antocianinas, son compuestos ampliamente dispersos e importantes en las plantas cuya gran variedad de colores especialmente en las flores, depende del pH del vacuolo; ya que, si la solución vacuolar es ácida, el color es rojo, aunque en este proceso de coloración, intervienen también otros factores como la co-pigmentación con otros glicósidos: flavonas, taninos hidrolizables, etc., igualmente en el desarrollo de color existe el proceso de quelación. El mismo autor indica que, químicamente las antocianinas son glicósidos derivados de glucosa, galactosa, arabinosa, y algunos otros monosacáridos como la manosa, fructosa y xilosa carbohidratos presentes en la composición de HTP-B1; tal como lo señala la empresa HTP (2015), siendo el aglicon (gr. sin dulce), las antocianidinas. Existen antocianinas incoloras llamadas leuco-antocianinas, las cuales, al hidrolizarse, liberan aglicones coloreados. Los aglicones más comunes son las cianidina, pelargonidina y la delfinidina. Rosen Tantau (2012), señala que, la pelargonidina es el aglicon responsable de definir el color característico de la variedad Freedom, el cual es “rojo puro” En cuanto al proceso de quelación, otro factor de importancia que influye en el desarrollo del color, gracias a la eliminación de iones metálicos cuyos propósito es la de mejorar el metabolismo celular; de acuerdo con el fabricante HTP (2015), en la composición del bioestimulante HTP-B1 se encuentran aminoácidos como la glicina que actúa como agente quelante, evitando así la toxicidad de los metales pesados, contribuyendo a mejorar la absorción y transporte de micronutrientes; cumpliendo el papel de precursor o activador de fitohormonas y sustancias de crecimiento como las citoquininas y giberelinas, las cuales están presentes en este bioestimulante; además otras sustancias que actúan como quelantes son las vitaminas como: 1) A, 2) B1,3) B2, 4) B5, 5) B6, 6) PP o B3; y 7) C, las mismas que se hallan en la composición de dicho bioestimulante, a diferencia de BIO-SOLAR que no las contiene.

87

Por otro lado, GRAND-ROSE también mostró nivel de significancia al igual que HTP-B1, lo que indica que este bioestimulante también tuvo la mejor respuesta para intensificar el color en el botón floral; tal como lo indica la empresa Ascora (2015) y Espinosa (2013), este resultado se debe a que GRAND-ROSE posee en su composición una mayor concentración de fitorreguladores, que están relacionados a los pigmentos que dan la coloración de los pétalos, que son sintetizados en forma variable, acorde a sus necesidades de cada momento y a las circunstancias del entorno; además teniendo en cuenta que la aplicación de este bioestimulante evita el ennegrecimiento del botón rojo causado por rayos U.V. Cuadro 37. Prueba de “Kruskal Wallis” al 5 % para la variable “intensidad del color” para la

evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad

Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016

Variable Tratamientos Medias Rangos de significación

Coloración

HTP-B1 4.00 A*

GRAND-ROSE 4.00 A*

BIO-SOLAR 3.50 A*

TESTIGO ABSOLUTO

2.00 B

* p-valor <0.0001; H = 19.64 4.5. Número de días a la cosecha desde la aplicación Para la variable “número de días a la cosecha desde la aplicación”, (Cuadro 38) detectó diferencias altamente significativas para los bioestimulantes, y para la comparación ortogonal entre el TESTIGO ABSOLUTO versus los bioestimulantes. Tal como señalan Espinosa (2013) y los diferentes fabricantes de cada producto en estudio (2015), a partir de la aplicación de bioestimulantes; HTP-B1 fue el que mostró un mayor adelanto en el ciclo de producción, debido a que en su composición se encuentran vitaminas y fitohormonas, gracias a la intervención de los procesos biológicos ocasionados por dicho bioestimulante desde el inicio, en cuanto al tratamiento GRAND-ROSE el adelanto en el ciclo también fue evidente, gracias a la interacción de los fitorreguladores; mientras que el tratamiento BIO-SOLAR también mostró superioridad en el adelanto del ciclo, esto ocasionado por la acción de: carbohidratos, aminoácidos, calcio (CaO), y oligoelementos quelatados, los cuales fueron los responsables de mejorar el metabolismo celular. Conforme a lo explicado, la efectividad de los tres bioestimulantes mostró similitud en la estimulación en el adelanto del ciclo de producción, ya que los tres bioestimulantes actuaron de manera equiparada desde la aplicación de cada producto a diferencia del TESTIGO ABSOLUTO, el cual presentó un mayor retraso en el ciclo; esto debido a la acción de los diferentes ingredientes activos que se encuentran presentes en cada bioestimulante.

88

Cuadro 38. Análisis de varianza (ANOVA) para la variable “Número de días a la cosecha desde la aplicación” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016


Bioestimulantes 260.67 3 86.89 249.84 <0.0001

Testigo vs b1 b2 b3 115.87 1 115.87 333.19 <0.0001

Error 9.74 28 0.35

Total 270.40 31


3.23

*p-valor menor a 0.05 indica diferencias significativas 4.5.1. Prueba de Tukey al 5 % La prueba de Tukey al 5 % para la variable “número de días a la cosecha desde la aplicación”, (Cuadro 39) identificó tres rangos de significación estadística para bioestimulantes, ubicándose en el primer rango con la mejor respuesta los tratamientos HTP-B1 y GRAND-ROSE con valores de 15.02 días y 15.80 días respectivamente, mientras que en el último rango se ubicó el TESTIGO ABSOLUTO con valores de 21.53 días, ya que el TESTIGO ABSOLUTO fue el tratamiento que mostró ser más tardío; mientras que HTP-B1 y GRAND-ROSE fueron los tratamientos que mostraron precocidad en el ciclo desde la primera aplicación de los bioestimulantes, hasta la respectiva cosecha de la flor. Conforme a la empresa HTP (2015), afirma que HTP-B1 actúa acortando el ciclo de 5 a 6 días para variedades de ciclo intermedio, como es freedom; ya que de acuerdo con Saborío (2002) y Latorre (2011), al estar la composición de este bioestimulante formulado con aminoácidos existe una mejora en cuanto a la absorción y transporte de micronutrientes; además estos aminoácidos hacen que las citoquininas y giberelinas presentes en el producto actúen de manera eficiente en regular el crecimiento celular y por lo tanto, en el adelanto del ciclo de producción, a diferencia de BIO-SOLAR que no contiene dentro de su composición esta clase de fitohormonas. En cuanto a GRAND-ROSE también fue el que más contribuyó en el adelanto del ciclo de producción, esta respuesta se debe gracias a la y única y mayor concentración de fitorreguladores presentes en este bioestimulante a los que Wil (2012) y la empresa Ascora (2015), señalan como los responsables de estar involucrados en una serie grande de actividades fisiológicas en rosas, entre las que se destacan: la estimulación pronta en la división celular y crecimiento; y la formación acelerada de órganos, a diferencia de BIO-SOLAR que en su composición carece de fitorreguladores. Cuadro 39. Prueba de diferenciación de medias de Tukey al 5 % para la variable “Número de días a la cosecha desde la aplicación” para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016


HTP-B1 15.02 A*

GRAND-ROSE 15.80 A*

BIO-SOLAR 20.58 B


21.53 C

*Medias con una letra común no son significativamente diferentes (p > 0.05)

89

4.6. Análisis financiero El análisis de costos variables y fijos respectivamente, Cuadros 40 y 41, en la evaluación de la aplicación de bioestimulantes BIO-SOLAR obtuvo el costo unitario más alto de US$ 14.80/litro, y US$ 31.42/litro respectivamente con respecto a los demás tratamientos, por consiguiente, tanto para el área del tratamiento (27.92 m2) y como para una hectárea (10 000 m2) este tratamiento presentó valores superiores en el costo total del bioestimulante.

90

Cuadro 40. Estructuración de los costos variables para cada tratamiento en la evaluación de la aplicación de bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016

COSTOS VARIABLES

Concepto Volumen aplicado mL/aplicación/ca

ma

Número de aplicaciones

Volumen total

aplicado mL/cama (40.99 m

2)

Camas Volumen aplicado litro/ cama

Volumen Aplicado litro/tratamiento

(327.92 m2)

Costo Unitario

litro/ US$

Costo total

US$/tratamiento

Costo Total

US$/ha

Tratamiento T1

(T1) BIOESTIMULANTE

HTP-B1

50.012 2 50.012 8 0.062

0.496

7.65

3.79

115.58 Primera

aplicación 50 8 0.05

Segunda aplicación

0.012 8 0.012

Tratamiento 2

(T2) BIOESTIMULANTE

GRAND-ROSE

45 1 45 8 0.045 0.36 11.91 4.29 130.82

Tratamiento 3

(T3) BIOESTIMULANTE

BIO-SOLAR

48 3 48 8 0.048 0.384 14.80 5.68 173.21

Tratamiento 4

(T4) TESTIGO SIN

BIOESTIMULANTE

0 0 0 8 0 0 0 0 0

*El área de ensayo para cada tratamiento fue de 327.92 m

2

*Área cama 40.99 m2

91

Cuadro 41. Estructuración de los costos fijos para cada tratamiento en la evaluación de la aplicación de bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016

COSTOS FIJOS

Actividades Unidad Cantidad Valor

unitario US$

Subtotal US$

(T1) BIOESTIMULANTE HTP-B1

19.95

Materiales

10

Esponjas para la aplicación Plancha de esponja 2 1.5 3

Tijeras de podar Tijeras 1 4 4

Guantes de caucho Guantes caucho 8 ½ 2 1.5 3

Mano de Obra

9.95

Aplicación manual hora jornal 1.5 1.53 2.30

Aplicación bomba hora jornal 4 1.53 6.12

Cosecha hora jornal 1 1.53 1.53

(T2) BIOESTIMULANTE

GRAND- ROSE

13.83

Materiales

10.00

Esponjas para la aplicación Plancha de esponja 2 1.5 3.00


Guantes de caucho Guantes de caucho 8 ½ 2 1.5 3.00

Mano de obra

3.83

Aplicación manual hora jornal 1.5 1.53 2.30

Cosecha hora jornal 1 1.53 1.53

(T3) BIOESTIMULANTE BIO-SOLAR

31.42

Materiales

23

Bomba de mochila de 8 L Bomba 1 16 16


Mascarillas Mascarilla 2 1.5 3

Mano de Obra

8.42

Primera aplicación bomba portátil

hora jornal 0.5 1.53 0.77

Segunda aplicación bomba mochila

hora jornal 2 1.53 3.06

Tercera aplicación bomba mochila

hora jornal 2 1.53 3.06

Cosecha 1 1.53 1.53

*El área de ensayo para cada tratamiento fue de 327.92 m2

92

Según FalconFarms S.A./Flores de la Montaña S.A., para la determinación del ingreso, costo de producción, y utilidad neta de cada tallo exportable, en cuanto al tamaño; se tomó en cuenta las variables longitud y diámetro del botón floral en cosecha, Cuadros 42 y 43, en la variable longitud del botón floral en cosecha se obtuvo que por cada centímetro más de longitud con respecto al TESTIGO ABSOLUTO, lo que genera US$0.034 de ingreso/ tallo exportable, y US$0.01 de ganancia/ tallo exportable; mientras que en el diámetro del botón floral en cosecha, Cuadro 42, los valores de ingreso, costo de producción, y utilidad neta de cada tallo exportable son similares, ya que no hubo diferencias significativas en esta variable. Cuadro 42. Costo de producción, ingreso y utilidad neta/tallo exportable de cada tratamiento en relación a la longitud del botón floral en cosecha

Tratamiento Producto Ingreso/ tallo US$

Costo de producción US$/tallo

Utilidad Neta US$

T3 BIO-SOLAR 0.252 0.179 0.073

T1 HTP-B1 0.248 0.176 0.072

T4 TESTIGO (SIN BIOESTIMULANTE)

0.24 0.17 0.07

T2 GRAND-ROSE 0.233 0.165 0.068

Cuadro 43. Costo de producción, ingreso y utilidad neta/tallo exportable de cada tratamiento en relación al diámetro del botón floral en cosecha



Utilidad Neta US$

T1 HTP-B1 0.24 0.17 0.07

T2 GRAND-ROSE 0.223 0.158 0.065

T3 BIO-SOLAR 0.243 0.172 0.071


0.24 0.17 0.07

Según la empresa FalconFarms S.A./Flores de la Montaña S.A., Cuadro 44, los tratamientos HTP-B1 y GRAND-ROSE fueron los que más influyeron en la intensidad del color en el botón floral, por lo cual según la empresa se obtuvo una ganancia del 22 % más con respecto al TESTIGO ABSOLUTO. Cuadro 44. Costo de producción, ingreso y utilidad neta/tallo exportable de cada tratamiento en relación a la intensidad de color



Utilidad Neta US$

T1 HTP-B1 0.291 0.206 0.085

T2 GRAND-ROSE 0.291 0.206 0.085

T3 BIO-SOLAR 0.281 0.199 0.082


0.24 0.17 0.07

93

En cuanto al número de días a la cosecha desde la primera aplicación, Cuadro 45, habiendo resultado HTP-B1 el tratamiento de mostrar mayor precocidad fue el tratamiento que generó una mayor utilidad, ya que, según la empresa, a mayor precocidad en el ciclo de producción habrá más ganancia a diferencia del TESTIGO ABSOLUTO, que mostró ser el tratamiento más tardío. Cuadro 45. Costo de producción, ingreso y utilidad neta/tallo exportable de cada tratamiento en relación al número de días a la cosecha desde la primera aplicación



Utilidad Neta US$

T1 HTP-B1 0.259 0.151 0.108

T2 GRAND-ROSE 0.25 0.152 0.098

T3 BIO-SOLAR 0.258 0.179 0.079


0.24 0.17 0.07

Cuadro 46. Promedio de costos de producción, ingreso y utilidad neta/tallo exportable de cada tratamiento en base a la longitud y diámetro del botón floral en cosecha, intensidad de color (22 %) y número de días a la cosecha desde la primera aplicación


Costo Variable US$/tallo

Utilidad Neta US$

T1 HTP-B1 0.259 0.175 0.084

T2 GRAND-ROSE 0.25 0.171 0.079

T3 BIO-SOLAR 0.258 0.182 0.076


0.24 0.17 0.07

Tal como se muestra en el análisis financiero de tratamientos para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes, Cuadro 48, en 327.92 m2 (área/tratamiento) por un período de ciclo de producción de 85 días la utilidad neta que presentó mejor respuesta fue HTP-B1 con US$ 680.042, dado a que generó un mejor precio unitario de US$ 0.259/tallo (Cuadro 47); y el tratamiento que obtuvo menor utilidad neta fue el TESTIGO ABSOLUTO (Cuadro 48), con US$ 586.484, con un precio de venta de US$ 0.24/tallo (Cuadro 47). Por otro lado, en una hectárea por el mismo período de ciclo de producción, la utilidad neta que presentó mejor respuesta fue HTP-B1 con US$ 20 738.04, Cuadro 49, dado a que generó un mejor precio unitario de US$ 0.259 /tallo (Cuadro 47); y el tratamiento que obtuvo menor utilidad neta fue T4 el TESTIGO ABSOLUTO US$ con 17 885, y el precio de venta de US$ 0.24/tallo (Cuadro 49 y 47). Mientras que en 327.92 m2 como en una hectárea (10 000 m2), por el mismo período de ciclo de producción de 85 días respectivamente, el mayor porcentaje de ganancia se obtuvo con HTP-B1, que presentó 15.952 % más frente al TESTIGO ABSOLUTO, Cuadros 48 y 49, debido a que los botones florales de cada uno de los tallos cosechados, obtuvieron las mejores características de calidad para ser vendidos en el mercado extranjero.

94

Por otro lado, en el análisis de la relación beneficio / costo, Cuadros 48 y 49; tanto en 327.92 m2 como en una hectárea (10 000 m2), por un período de ciclo de producción de 85 días respectivamente, la mayor relación Beneficio / Costo fue de 1.46 en el tratamiento HTP-B1, es decir que por cada dólar invertido se obtiene US$ 0.46 de ganancia; mientras que, la menor relación Beneficio / Costo se obtuvo con el tratamiento BIO-SOLAR con 1.38, lo que quiere decir que por cada dólar invertido se alcanza una ganancia de US$ 0.38.

95

Cuadro 47. Análisis financiero de tratamientos para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016

Tratamiento

Producto

Producción tallos/

327.92 m2 (85 días)

Producción tallos/ 1 Ha (85 días)

Costo de Producción

(US$/ tallo)

Costo Total de Bioestimulante

(327.92 m2)

Costo Total de Bioestimulante

(1 Ha)

Precio de Venta

(US$/tallo)

T1 HTP-B1 8 378.356 255 500 0.175 23.74 723.96 0.259

T2

GRAND-ROSE 8 378.356 255 500 0.171 18.12 552.57 0.25

T3

BIO-SOLAR 8 378.356 255 500 0.182 37.10 1 131.37 0.258


8 378.356 255 500 0.17 0 0 0.24

Cuadro 48. Costo total de producción, Ingreso bruto, Utilidad neta, Porcentaje de ganancia; y Relación Beneficio/Costo de tratamientos para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016 en 327.92 m2 por un período de un ciclo de producción de 85 días

Tratamiento

Producto

Costo total de

producción (US$)

Ingreso bruto

(US$)

Utilidad neta

(US$)

Porcentaje de ganancia frente al testigo

absoluto

Relación

Beneficio/Costo

T1 HTP-B1 1 489.9523 2 169.994 680.042 15.952 % 1.46

T2

GRAND-ROSE 1 450.819 2 094.589 643.77 9.768 % 1.44

T3

BIO-SOLAR 1 561.961 2 161.616 599.655 2.246 % 1.38


1 424.321 2 010.805 586.484 1.41

96

Cuadro 49. Costo total de producción, Ingreso bruto, Utilidad neta, Porcentaje de ganancia; y Relación Beneficio/Costo de tratamientos para la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de rosa (Rosa sp.) de la variedad Freedom. Cayambe, Pichincha, 2016 para una hectárea por un período de un ciclo de producción de 85 días

Tratamiento

Producto

Costo Total de Producción

(US$)

Ingreso bruto (US$)

Utilidad Neta (US$)

Porcentaje de Ganancia frente al

testigo absoluto

Relación Beneficio/Costo

T1 HTP-B1 45 436.46 66 174.5 20 738.04 15.952 % 1.46

T2

GRAND-ROSE 44 243.07 63 875 19 631.93 9.768 % 1.44

T3

BIO-SOLAR 47 632.37 65 919 18 286.63 2.246 % 1.38


43 435 61 320 17 885 1.41

97

5. CONCLUSIONES 5.1. El uso de los tratamientos HTP-B1 y BIO-SOLAR fueron los bioestimulantes que resultaron estar directamente relacionados con el funcionamiento normal de todos los tejidos y órganos de la planta; ya que ambos tratamientos presentaron múltiples ventajas como, permanecer almacenados en los puntos de crecimiento, otorgando turgencia a las células y mejorando las funciones estomáticas, que son utilizadas por la planta de forma gradual según sus necesidades fisiológicas, en este caso para logar el incremento del tamaño del botón floral.

5.2. En la primera semana a partir de la aplicación del bioestimulante HTP-B1 se observó una mayor longitud del botón floral de la variedad freedom con relación a los otros tratamientos, presentando una media de 5.14 cm; mientras que los bioestimulantes GRAND-ROSE, BIO-SOLAR, y el TESTIGO ABSOLUTO presentaron medias de 4.84 cm, 4.37 cm y 4.13 cm, respectivamente; lo que quiere decir que el mejor tratamiento fue HTP-B1 gracias a la respuesta inmediata desde la primera semana después de haber aplicado; ya que este bioestimulante en su composición porcentual consta mayormente de carbohidratos como la glucosa; además de estar combinados con formulaciones a base de aminoácidos, vitaminas; y fitohormonas como giberelinas y citoquininas, lo que genera un incremento del crecimiento en el botón floral mediante procesos biológicos.

5.3. En la tercera semana a partir de la aplicación de los bioestimulantes BIO-SOLAR y HTP-B1, se destacaron las longitudes del botón floral de la variedad freedom estos tratamientos, siendo las medias de 6.87 cm y 6.77 cm, respectivamente. En contraste, el TESTIGO ABSOLUTO y el bioestimulante GRAND-ROSE, tuvieron medias inferiores al resto de tratamientos, las cuales fueron de 6.55 cm y 6.37 cm, respectivamente. 5.4. En el momento de la cosecha de la flor se observó un similar diámetro del botón floral de la variedad freedom tras la aplicación de los bioestimulantes BIO-SOLAR, HTP-B1, y la medición del TESTIGO ABSOLUTO, obteniéndose medias de 3.74 cm, 3.72 cm y 3.70 cm, respectivamente. En cambio, el bioestimulante GRAND-ROSE presentó una media inferior al resto de tratamientos que fue de 3.41 cm.

5.5. En cuanto a la intensidad del color los tratamientos HTP-B1 y GRAND-ROSE mostraron valores de 4.00 siendo ambos bioestimulantes, los los que más contribuyeron a mejorar y uniformizar la intensidad del color “rojo puro” característico de la variedad freedom; esto debido a que en la composición de HTP-B1, al existir mayor cantidad aminoácidos tales como: la alanina, glicina, leucina, valina, treonina, cisteína, metionina; conjuntamente con giberelinas y citoquininas, genera una mejor calidad de pigmentos en la coloración del botón floral, mientras que en la composición de GRAND-ROSE consta de fitorreguladores , ingredientes activos que contribuyeron a la mejora de la intensidad del color de los botones florales.

5.6. Con respecto al número de días a la cosecha desde la primera aplicación de los bioestimulantes, se determinó que el TESTIGO ABSOLUTO fue el tratamiento que mostró ser más tardío con una media de 21.53 días; mientras que con el bioestimulante BIO-SOLAR se cosechó en una media de tiempo de 20.58 días y los bioestimulantes GRAND-ROSE y HTP-B1, fueron los tratamientos que mostraron precocidad en el ciclo de producción desde la primera aplicación de bioestimulantes, hasta la respectiva cosecha de la flor, presentando medias similares de 15.80 días y 15.02 días respectivamente.

98

5.7. El tratamiento HTP-B1 fue el más efectivo durante el estado fenológico de “bola” a “rayando color” (primera semana) en cuanto a la longitud y diámetro del botón floral en la variedad freedom. Adicionalmente, se determinó que durante la fase “raya color” a “sépalos sueltos” (segunda semana) el mismo tratamiento obtuvo el mejor efecto en la longitud del botón floral y que también este tratamiento fue más efectivo en la fase de “sépalos sueltos” a “flor-cosecha” (tercera semana) en cuanto a la longitud y diámetro del botón floral en la cosecha. 5.8. Por un período de ciclo de producción de 85 días respectivamente, la mayor relación Beneficio / Costo fue de 1.46 en el tratamiento T1 (HTP-B1), es decir que por cada dólar invertido se obtiene 0.46 US$ de ganancia; mientras que, la menor relación Beneficio/Costo se obtuvo con el tratamiento T3 (BIO-SOLAR) con 1.38, lo que quiere decir que por cada dólar invertido se alcanza una ganancia de 0.38 US$.

99

6. RECOMENDACIONES

6.1. El tratamiento HTP-B1 fue el mejor bioestimulante en función del rendimiento por hectárea, tamaño del botón floral e intensidad de color, precocidad en el ciclo productivo, y además presentó una relación Beneficio/Costo de 1.46; por lo que se recomienda poner énfasis en el uso de este bioestimulante.

6.2. Realizar esta investigación en otras variedades comerciales como: escimo, miracle, júpiter, donna y konffeti; ya que estas variedades al igual que la variedad freedom son altamente comerciales de botón pequeño presentes en la finca.

6.3. Siendo el mejor tratamiento HTP-B1 se recomienda realizar una nueva investigación con la finalidad de determinar una dosis adecuada en la aplicación del producto que a la vez genere una alta rentabilidad para la empresa. 6.4. Tal como lo señala Proecuador (2015), alrededor del 62 % de las 630 fincas existentes en el país son pequeñas y medianas empresas, que en promedio tienen entre tres y cuatro hectáreas; la implementación de un programa de aplicación de bioestimulantes para dichas fincas generará mayores ingresos y por lo tanto rentabilidad para estas empresas.

100

7. RESUMEN En la provincia de Pichincha, cantón Cayambe, empresa FalcomFarms S.A. se llevó a cabo la evaluación del efecto de tres bioestimulantes en el cultivo de Rosa (Rosa sp.) de la variedad freedom, siendo la aplicación de estos una alternativa para el desarrollo del botón de rosas de exportación. Los tratamientos fueron HTP-B1 (T1), GRAND-ROSE (T2), BIO-SOLAR (T3), y el TESTIGO ABSOLUTO (T4); se aplicó el modelo estadístico mediante un diseño completamente al azar con ocho repeticiones u observaciones para cada uno de los tratamientos, tomando en cuenta que el número total de camas fueron de 40 (8 camas como efectos bordes), por lo que el número a evaluar de camas fueron de 32, se evaluó el 10 % del número total de plantas de cada cama, es decir se evaluó un mínimo de 30 plantas por cada cama, por lo tanto, el número total de plantas evaluadas fueron de 1 024 plantas (32 plantas/cama). Las variables evaluadas fueron: longitud y diámetro (tamaño del botón) del botón floral, intensidad de color, número de días a la cosecha, y análisis financiero. Los principales resultados determinaron que: De acuerdo con el análisis de conglomerados para las variables numéricas de los tratamientos, se determinó que el TESTIGO ABSOLUTO fue el tratamiento que tuvo menor respuesta durante el experimento, que el bioestimulante GRAND-ROSE el cual presentó una mayor respuesta a diferencia del tratamiento anterior; mientras que los tratamientos BIO-SOLAR y HTP-B1 fueron los más efectivos y básicamente tuvieron igual efecto durante el transcurso del experimento. El uso de los tratamientos HTP-B1 y BIO-SOLAR fueron los bioestimulantes que resultaron estar directamente relacionados con el funcionamiento normal de todos los tejidos y órganos de la planta; ya que ambos tratamientos presentaron múltiples ventajas como, permanecer almacenados en los puntos de crecimiento, otorgando turgencia a las células y mejorando las funciones estomáticas, que son utilizadas por la planta de forma gradual según sus necesidades fisiológicas, en este caso para logar el incremento del tamaño del botón floral, a continuación se muestra las conclusiones que tuvieron que ver con la longitud y el diámetro a partir de la primera semana de la aplicación de los bioestimulantes; en la primera semana a partir de la aplicación del bioestimulante HTP-B1 se observó una mayor longitud del botón floral de la variedad freedom con relación a los otros tratamientos, presentando una media de 5.14 cm; mientras que los bioestimulantes GRAND-ROSE, BIO-SOLAR, y el TESTIGO ABSOLUTO presentaron medias de 4.84 cm, 4.37 cm y 4.13 cm, respectivamente; lo que quiere decir que el mejor tratamiento fue HTP-B1 gracias a la respuesta inmediata desde la primera semana después de haber aplicado; ya que este bioestimulante en su composición porcentual consta mayormente de carbohidratos como la glucosa; además de estar combinados con formulaciones a base de aminoácidos, vitaminas; y fitohormonas como giberelinas y citoquininas, lo que genera un incremento del crecimiento en el botón floral mediante procesos biológicos. En la primera semana a partir de aplicación de los bioestimulantes HTP-B1 y GRAND-ROSE, se observó mayores diámetros del botón floral de la variedad freedom, siendo estos de 2.57 cm y 2.55 cm, respectivamente; mientras que tras la aplicación del bioestimulante BIO-SOLAR y la medición del TESTIGO ABSOLUTO dieron como resultado diámetros de 2.07 cm y 1.59 cm, respectivamente; en la segunda semana a partir de aplicación de los bioestimulantes HTP-B1, GRAND-ROSE, y BIO-SOLAR se observó una similar longitud del botón floral de la variedad freedom entre estos tratamientos, siendo las medias de 6.30 cm, 6.29 cm y 6.20 cm, respectivamente.Por otro lado, el TESTIGO ABSOLUTO presentó una media inferior al resto de tratamientos que fue de 5.18 cm. En la tercera semana a partir de la aplicación de los bioestimulantes BIO-SOLAR y HTP-B1, se destacaron las longitudes del botón floral de la variedad freedom estos tratamientos, siendo las medias de 6.87 cm y 6.77 cm, respectivamente. En contraste, el TESTIGO ABSOLUTO y el bioestimulante GRAND-ROSE, tuvieron medias inferiores al resto de tratamientos, las cuales fueron de 6.55 cm y 6.37 cm, respectivamente. En el momento de la cosecha de la flor se observó un similar diámetro del botón floral de la variedad freedom tras la aplicación de los bioestimulantes BIO-SOLAR, HTP-B1, y la medición del TESTIGO ABSOLUTO, obteniéndose medias de 3.74 cm, 3.72 cm y 3.70 cm, respectivamente.

101

En cambio, el bioestimulante GRAND-ROSE presentó una media inferior al resto de tratamientos que fue de 3.41 cm. En cuanto a la intensidad del color los tratamientos HTP-B1 y GRAND-ROSE mostraron valores de 4.00 siendo ambos bioestimulantes, los los que más contribuyeron a mejorar y uniformizar la intensidad del color “rojo puro” característico de la variedad freedom; esto debido a que en la composición de HTP-B1, al existir mayor cantidad aminoácidos tales como: la alanina, glicina, leucina, valina, treonina, cisteína, metionina; conjuntamente con giberelinas y citoquininas, genera una mejor calidad de pigmentos en la coloración del botón floral, mientras que en la composición de GRAND-ROSE consta de fitorreguladores , ingredientes activos que contribuyeron a la mejora de la intensidad del color de los botones florales; con respecto al número de días a la cosecha desde la primera aplicación de los bioestimulantes, se determinó que el TESTIGO ABSOLUTO se demoró mayor cantidad de tiempo con una media de 21.53 días, en comparación con los otros tratamientos; mientras que con el bioestimulante BIO-SOLAR se cosechó en una media de tiempo de 20.58 días y los bioestimulantes GRAND-ROSE y HTP-B1, se adelantaron presentando medias similares de 15.80 días y 15.02 días, respectivamente. El tratamiento HTP-B1 fue el más efectivo durante el estado fenológico de “bola” a “rayando color” (primera semana) en cuanto a la longitud y diámetro del botón floral en la variedad freedom. Adicionalmente, se determinó que durante la fase “raya color” a “sépalos sueltos” (segunda semana) el mismo tratamiento obtuvo el mejor efecto en la longitud del botón floral y que también, este tratamiento fue más efectivo en la fase de “sépalos sueltos” a “flor-cosecha” (tercera semana) en cuanto a la longitud y diámetro del botón floral en la cosecha. Financieramente el mejor tratamiento fue HTP-B1 tanto en 327.92 m2 como en una hectárea, por un período de ciclo de producción de 85 días, presentando una relación beneficio/costo de 1.456, es decir que por cada dólar invertido se obtiene 0.46 US$ de ganancia.

102

ABSTRACT

In the province of Pichincha, canton Cayambe, company FalcomFarms S.A. The evaluation of the effect of three biostimulants on the cultivation of Rosa (Rosa sp.) Of the variety freedom was carried out, being the application of these an alternative for the development of the rose export button. Treatments were HTP-B1 (T1), GRAND-ROSE (T2), BIO-SOLAR (T3), and ABSOLUTE WITNESS (T4); We applied the statistical model using a completely randomized design with eight replicates or observations for each of the treatments, taking into account that the total number of beds were 40 (8 beds as edge effects), so the number to be evaluated Of beds were 32, 10 % of the total number of plants of each bed was evaluated, ie a minimum of 30 plants per bed was evaluated, therefore, the total number of plants evaluated were 1,024 plants (32 Plants / bed). The variables evaluated were: length and diameter (button size) of the floral bud, color intensity, number of days at harvest, and financial analysis. The main results determined that: According to the cluster analysis for the numerical variables of the treatments, it was determined that ABSOLUTE WITNESS was the treatment that had less response during the experiment, than the biostimulant GRAND-ROSE which presented a greater response Unlike the previous treatment; While the BIO-SOLAR and HTP-B1 treatments were the most effective and basically had the same effect during the course of the experiment. The use of HTP-B1 and BIO-SOLAR treatments were biostimulants that were found to be directly related to the normal functioning of all tissues and organs of the plant; Since both treatments presented multiple advantages such as, to remain stored at the points of growth, giving turgidity to the cells and improving the stomatal functions, which are used by the plant gradually according to their physiological needs, in this case to increase the Size of the floral bud, the following shows the conclusions that had to do with the length and diameter from the first week of the application of biostimulants; In the first week after application of the biostimulant HTP-B1, a larger length of the floral bud of the freedom variety was observed in relation to the other treatments, presenting a mean of 5.14 cm; While the biostimulants GRAND-ROSE, BIO-SOLAR, and ABSOLUTE WITNESS presented averages of 4.84 cm, 4.37 cm and 4.13 cm, respectively; Which means that the best treatment was HTP-B1 thanks to the immediate response from the first week after having applied; Since this biostimulant in its percentage composition consists mainly of carbohydrates like glucose; In addition to being combined with formulations based on amino acids, vitamins; And phytohormones such as gibberellins and cytokinins, which generates an increase in growth in the floral bud by biological processes. In the first week after aplpliacation of the bioestimulants HTP-B1 and GRAND-ROSE, larger diameters of the floral bud of the freedom variety were observed, being these of 2.57 cm and 2.55 cm, respectively; While after the application of the biostimulant BIO-SOLAR and the measurement of the ABSOLUTE WITNESS resulted in diameters of 2.07 cm and 1.59 cm, respectively; In the second week after application of the biostimulants HTP-B1, GRAND-ROSE, and BIO-SOLAR a similar length of the floral button of the freedom variety was observed between these treatments, being the averages of 6.30 cm, 6.29 cm and 6.20 cm, respectively. On the other hand, ABSOLUTE WITNESS presented a mean lower than the rest of treatments that was 5.18 cm. In the third week after application of BIO-SOLAR and HTP-B1 biostimulants, the lengths of the floral bud of the freedom variety were highlighted, with the averages of 6.87 cm and 6.77 cm, respectively. In contrast, the ABSOLUTE WITNESS and the GRAND-ROSE biostimulant had lower means than the other treatments, which were 6.55 cm and 6.37 cm, respectively. At the time of the flower harvest, a similar diameter of the floral bud of the freedom variety was observed after the application of the biostimulants BIO-SOLAR, HTP-B1, and the ABSOLUTE WITNESS measurement, obtaining averages of 3.74 cm, 3.72 cm And 3.70 cm, respectively. In contrast, the biostimulant GRAND-ROSE presented a mean inferior to the rest of treatments that was of 3.41 cm.

103

Regarding the color intensity, the HTP-B1 and GRAND-ROSE treatments showed values of 4.00 being both biostimulants, which contributed the most to improve and standardize the intensity of the "pure red" color characteristic of the freedom variety; This is due to the fact that in the composition of HTP-B1, there are more amino acids such as: alamine, glycine, leucine, valine, threonine, cysteine, methionine; Together with gibberellins and cytokinins, generates a better quality of pigment in the coloring of the floral bud, whereas in the GRAND-ROSE composition it consists of phytorregulators, active ingredients that contributed to the improvement of the color intensity of the floral buds; With respect to the number of days at harvest from the first application of the biostimulants, it was determined that the ABSOLUTE WITNESS was delayed more time with an average of 21.53 days, compared to the other treatments; While the BIO-SOLAR biostimulant was harvested at a mean time of 20.58 days and the GRAND-ROSE and HTP-B1 biostimulants were advanced with similar averages of 15.80 days and 15.02 days, respectively. HTP-B1 treatment was the most effective during the phenological state of "ball" to "color striking" (first week) in terms of the length and diameter of the floral bud in the variety freedom. Additionally, it was determined that during the "strip color" phase to "loose sepals" (second week) the same treatment had the best effect on the length of the floral bud and that this treatment was also more effective in the phase of "loose sepals "To" flower-harvest "(third week) in terms of the length and diameter of the floral bud at harvest. Financially the best treatment was HTP-B1 in both 327.92 m2 and one hectare, for a period of production cycle of 85 days, presenting a profit / cost ratio of 1.456, ie for each dollar invested, we obtain 0.46 US $ gain.

104

8. REFERENCIAS Agrios, G. (2002). Fitopatología: Principales Plagas y Enfermedades en el cultivo de Rosa. (2 edición). México: Limusa. American Rose Society. (2016). Clasificación de los rosales, disponible en URL: http://www.rose.org/ [consulta 02 de mayo de 2017] Amézquita, E. (1999). Requerimientos de agua y nutrición de cultivo de flores. In. III Congreso Nacional de Suelos . Colombia: CIAT. Arévalo, J., Vélez, J., & Camacho, J. (2013). Uso eficiente del agua para el cultivo de rosa cv. Freedom bajo invernadero. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental. 17(8): 811-817 Bietti, S., & Orlando, J. (2003). Nutricion vegetal: Insumos para cultivos: Bioestimulantes/Correctores, disponible en URL: www.triavet.com.ar [consulta 02 de mayo de 2017] Cáceres, L., & Nieto, C. (2003). Efecto del ácido giberélico (GA3) sobre el desarrollo del botón floral en tres variedades de rosa (Rosa sp.). Trabajo de grado presentado como requisito parcial para optar al título de Ing. Agr. Colombia: Universidad Nacional de Colombia, Facultad de Agronomía. Darquea Espinosa, J. (2013). Evaluación del comportamiento de injertos en rosas, de la variedad Freedom, realizadas con yemas ubicadas a diferentes alturas del tallo. Pedro Moncayo – Ecuador 2012. Trabajo de grado presentado como requisito parcial para optar al título de Ing. Agrop. Ecuador: Universidad Politécnica Salesiana, Carrera de Ingeniería Agropecuaria. Distribuidor y fabricante Annquímica. (2015). Bioestimulante BIO-SOLAR. Cayambe, Ecuador: Autor. Distribuidor y fabricante Ascora. (2015). Bioestimulante GRAND-ROSE. (Fabricante), Cayambe, Ecuador: Autor. Distribuidor y fabricante HTP. (2015). Bioestimulante HTP-B1. (Fabricante), Cayambe, Ecuador: Autor. Espinosa Bonilla, P. (2013). Efecto de dos bioestimulantes en el cultivo de Rosa (Rosae sp.) Variedades Charlotte y Konffeti. Trabajo de grado presentado como requisito parcial para optar al título de Ing. Agr. Ecuador: Universidad Central del Ecuador, Facultad de Agronomía. FalconFarms de Ecuador S.A./Flores de la Montaña S.A. (2016). Boletín informativo de la empresa. Ferrer, F. (1991). Cultivo de rosas: Taxonomía convencional; Tipos de rosal. Revista de la Asociación española de la rosa Rosa, Rosae. XXXVI Concurso Internacional Rosas nuevas, Madrid, España: s.n. Gamboa, L. (1989). El cultivo de la rosa de corte. Escuela de Fitotecnia, Programa de Comunicación Agrícola-1989. San José, Costa Rica: Editorial Universitaria.

http://www.rose.org/

http://www.triavet.com.ar/

105

González Arboleda, A. (2012). Determinación de la concentración óptima de ácido giberélico para el crecimiento del botón de tres variedades de rosa (rosa sp.) En la finca Rose Success Cía. Ltda. Latacunga – Ecuador. Trabajo de grado presentado como requisito parcial para optar al título de Ing. Bioquímico. Ecuador: Universidad Técnica de Ambato, Facultad de Ciencia e Ingeniería en Alimentos. Gudin, S., Arene, L., & Bulard, C. (1991). Influence of season on rose pollen quality Sexual Plant Reproduction. Guerrero Chapi, A. (2006). Efecto de tres bioestimulantes comerciales en el crecimiento de los tallos de Proteas, Leucadendron sp cv. Safari Sunset. Trabajo de grado presentado como requisito parcial para optar al título de Ing. Agrop. Ecuador: Universidad Técnica del Norte, Facultad de Ingeniería en Ciencias Agropecuarias y Ambientales. Hoog, J. (2001). Handbook for modern greenhouse rose cultivation. Appl. Plant Res. Schutrps, J. (2012). Guía del Cultivo de la rosa. Preesman Besloten Vennootschap. Horneman, J. (2002). The Sea Plant Handbook, disponible en URL: http://www.surialink.com [consulta 02 de mayo de 2017]

Hoyos, D., Morales, J., Chavarría, H., Montoya, A., Correa, G., & Jaramillo, S. (2012). Acumulación de Grados-Día en un Modelo de Producción. Revista Facultad Nacional de Agronomía, 65: 6389-6398 Instituto de Promoción de Exportaciones e Inversiones PROECUADOR. (2015). Desarrollo del sector florícola en el Ecuador en el mercado de Estados Unidos, disponible en URL: http://www.proecuador.gob.ec/ [consulta 02 de mayo de 2017] Instituto Nacional de Estadística y Censos INEC. (2015). Desarrollo del sector florícola en el Ecuador, disponible en URL: http://www.inec.gob.ec/ [consulta 02 de mayo de 2017] Jensen, W., & Salisbury, F. (1994). Botánica, México: McGRAW-HILL. Jiménez Martínez, E. (2009). Entomología: Insectos perjudiciales y Ácaros perjudiciales en la Agricultura. Nicaragua: Dirección de Investigación Extensión y Posgrado. Kossuth, S. (1987). Hormonal control of tree growth. US: Martinus Nij Hoff Publishers. Dordrecht. Latorre Arboleda, F. (2011). La vida de las plantas: Los fitorreguladores. Quito, Ecuador: Editorial Universitaria. Maneveldt, G., & Frans, R. (2003). Of Sea-fan Kelp and Bladder Kelp, disponible en URL: http//www.botany.uwc.ac.za. [consulta 02 de mayo de 2017] Martínez Inojosa, D. (2010). Evaluar la efectividad de la hormona Proyem a tres dosis para el basaleo en el rosal (Rosa sp) en tres variedades (Freedom, Forever Young, Sexy Red) Pujilí-Cotopaxi: Labores culturales. Trabajo de grado presentado como requisito parcial para optar al título de Ing. Agr. Quito: Universidad Técnica de Cotopaxi, Facultad de Agronomía. Nybom, H., Wolf, K., & Kahl, G. (2005). DNA fingerprinting in plants, methods, and applications. (2): 472

http://www.surialink.com/

http://www.proecuador.gob.ec/

http://www.inec.gob.ec/

106

Padilla, W., (2011). Nutrimento de plantas: Nutrición vegetal en el cultivo de rosas. Quito, Ecuador: Clínica Agrícola. Ramírez Torres, G. (2009). Influencia de dos fitorreguladores de crecimiento y dos colores de malla spider, en la producción de tres variedades de Rosa, Bajo invernadero. Trabajo de grado presentado como requisito parcial para optar al título de Ing. Agr. Ecuador: Escuela Superior Politécnica de Chimborazo, Facultad de Agronomía. Rojas, M., & Ramírez, J. (1987). Control hormonal del desarrollo de las plantas. México: Editorial Limusa. Rodríguez, W. & Flórez, J. (2006, 11). Comportamiento fenológico de tres variedades de rosas rojas en función de la acumulación de la temperatura. Agronomía Colombiana, 24: 247-257 Rosen Tantau. (2012). Catálogo de Colección de rosas de corte: Freedom, disponible en URL: http://www.rosen-tantau.com/ [consulta 02 de mayo de 2017] Salvador, P., & Ferrer, F. (1991). El Rosal: Historia y origen del rosal; Labores culturales. Madrid, España: Mundi-Prensa. Saborío Pozuelo, F. (2002). Bioestimulantes en fertilización foliar: Fertilización foliar: Principios y aplicaciones. Costa Rica: Centro de Investigaciones Agronómicas. Salisbury, F., & Ross. C. (1994). Fisiología Vegetal. México: Grupo Editorial Interamericana. The International Plant Names Index IPNI. (2016). Taxonomía de la Rosa, disponible en URL: http://www.ipni.org/ [consulta 02 de mayo de 2017] Vázquez, E. (2003). Funciones de los carbohidratos. Instituto de Química, UNAM, disponible en URL: http://laguna.fmedic.unam.mx/~evazquez/0403/quimica%20de%20los%20carbohidratos2.html [consulta 02 de mayo de 2017] Velasteguí, R. (1997). Formulaciones naturales y sustancias orgánicas y minerales para control sanitario. Quito, Ecuador: s.n. Wil. (2012). Reguladores de crecimiento, disponible en URL: http://agropecuarios.net/reguladores-del-crecimiento.html [consulta 02 de mayo de 2017] Yong, Ania. (2004). Técnicas de Formación y Manejo del Rosal. Cultivos Tropicales, 25: 53-56

http://www.rosen-tantau.com/

http://www.ipni.org/

http://laguna.fmedic.unam.mx/~evazquez/0403/quimica%20de%20los%20carbohidratos2.html

http://agropecuarios.net/reguladores-del-crecimiento.html

107

9. FOTOGRAFÍAS

Fotografía 1. Identificación de la investigación

Fotografía 2. Primera aplicación del bioestimulante BIO-SOLAR (T3) con bomba móvil portátil, tipo de lanza recta

108

Fotografía 3. Primera medición de longitud y diámetro luego de la aplicación del bioestimulante BIO-SOLAR (T3) semana 1

109

Fotografía. 4. Cosecha de flores aplicadas bioestimulante BIO-SOLAR (T3)

Fotografía 5. Mediciones de longitud y diámetro de las flores cosechadas que fueron aplicadas el bioestimulante BIO-SOLAR (T3)

.

110

Fotografía 6. Testigo SIN BIOESTIMULANTE (T4)

Fotografía 7. Plantas que fueron aplicadas bioestimulante BIO-SOLAR (T3) listas para cosechar, tercera semana después de la primera aplicación

111

Fotografía 8. Plantas testigo SIN BIOESTIMULANTE (T4), segunda semana

Fotografía 9. Testigo SIN BIOESTIMULANTE (T4). Segunda aplicación de bioestimulante BIO-SOLAR T3 mediante bomba de mochila

112

Fotografía 10. Segunda semana, plantas testigo sin bioestimulante

Fotografía 11. Plantas en estado garbanzo listas para aplicar bioestimulante HTP-B1 (T1)

113

Fotografía 12. Aplicación de bioestimulante HTP-B1 (T1)

Fotografía 13. Primera semana plantas aplicadas bioestimulante HTP-B1 (T1)

114

Fotografía 14. Tercera semana testigos TESTIGO ABSOLUTO (T4)

Fotografía 15. Plantas en estado garbanzo listas para aplicar bioestimulante GRAND-ROSE (T2)

115

Fotografía 16. Aplicación de bioestimulante GRAND-ROSE (T2)

Fotografía 17. Flor de dos semanas después de la primera aplicación del bioestimulante HTP-B1 (T1)

116

Fotografía 18. Mediciones de longitud y diámetro a las plantas que fueron aplicadas el bioestimulante GRAND-ROSE (T2)

Fotografía 19. Determinación de la intensidad de color

117

10. ANEXOS

ANEXO 1. Registro de aplicación de plaguicidas del mes de Diciembre 2015

FINCA: Flores de la Montaña CULTIVO: Rosa sp.cv Freedom MES: Diciembre 2015 BLOQUE: 33

SEMANA

FECHA

(aa-mm-dd)

PRODUCTO

(S) APLICADO (S)

BLANCO

BIOLÓGICO

DOSIS/LITRO (gr

o cc)

# CAMAS

VOL DE

MEZCLA (L)

VOL POR CAMA (L)

IMPLEMENTO

DIRECCIÓN

T

(°C)

HR (%)

pH

MEZCLA

HORA INICIO

HORA FINAL

L A N Z A

A G U I L O N

O T R O

F L O R

FOLLAJE

O TR O

51 15-12-15 Sulfolac Oidio 1.5 40 1 000 3 X X 12 41 5 07h30 08h30

51 15-12-15 Teldor Fiprogent

Botrytis Trips

1.0 0.3

40 1 000 3 X X 19 40 5 11h50 12h20

51 15-12-17 Kanemite Ácaros 0.5 40

1 000 10 X X 17 40 5 06h45 09h00

52 22-12-15 Sunset Oidio 1.0 40 1 000 8 X X 20 41 5 11h30 12h30

52 15-12-23 Melaza Foliar 1.0 40 1 000 8 X X 20 41 5 11h30 12h30

1 15-12-29 Nimrod Oidio 1.5 40 1 000 8 X X 11 43 5 07h10 08h10

1 15-12-31 Adjuvant Ácaros 0.8 40 1 000 8 X X 10 41 5 07h30 08h30



118

ANEXO 2. Registro de aplicación de plaguicidas del mes de Enero 2016

FINCA: Flores de la Montaña CULTIVO: Rosa sp. cv Freedom MES: Enero primera parte 2016 BLOQUE: 33

SEMANA

FECHA (aa-mm-dd)

PRODUCTO

(S) APLICADO (S)

BLANCO

BIOLÓGICO

DOSIS/LITRO (gr

o cc)

# CAMAS

VOL DE

MEZCLA (L)

VOL POR CAMA (L)

IMPLEMENTO

DIRECCIÓN

T

(°C)

HR (%)

pH

MEZCLA

HORA INICIO

HORA FINAL

L A N Z A

A G U I L O N

O T R O

F L O R

FOLLAJE

O TR O

2 16-01-05 Prosper Oidio 0.35 40 1 000 8 X X 19 42 5 08h00 09h00

2 16-01-07 Teldor Galil

Botrytis Trips

1.0 0.3

40 1 000 4 X X 21 40 5 13h40 14h00

2 16-01-09 Nimrod Oidio 1.5 40 1 000 8 X X 8 43 5 06h30 07h30

3 16-01-11 Starmite Ácaros 0.35 40 1 000 8 X X 7 44 5 06h40 08h00

3 16-01-13 Teldor Confidor

Botrytis Trips

1.0 0.3

40 1 000 4 X X 21 41 5 10h45 11h15

3 16-01-14 Infinito Mildiú Velloso

1.0 40 1 000 8 X X 22 40 5 14h30 15h30

3 16-01-16 Carborax Confidor

Botrytis Trips

0.8 0.3

40 1 000 4 X X 20 40 5 11h00 11h30

4 16-01-19 Dodetox Oidio 1.5 40 1 000 8 X X 19 40 5 16h15 17h20

4 16-01-20 Swich Triclan

Botrytis Trips

0.6 0.6

40 1 000 4 X X 7 42 5 06h00 06h30


119

ANEXO 3. Registro de aplicación de plaguicidas del mes de Enero 2016

FINCA: Flores de la Montaña CULTIVO: Rosa sp. cv Freedom MES: Enero segunda parte 2016 BLOQUE: 33

SEMANA

FECHA

(aa-mm-dd)

PRODUCTO

(S) APLICADO (S)

BLANCO

BIOLÓGICO

DOSIS/LITRO (gr

o cc)

# CAMAS

VOL DE

MEZCLA (L)

VOL POR CAMA (L)

IMPLEMENTO

DIRECCIÓN

T

(°C)

HR (%)

pH

MEZCLA

HORA INICIO

HORA FINAL

L A N Z A

A G U I L O N

O T R O

F L O R

FOLLAJE

O TR O

4 16-01-21 Adjuvant Ácaros 0.5 40 1 000 10 X X 6 42 5 05h40 07h30

4 16-01-23 Scala Fiprogent

Botrytis Trips

1.2 0.3

40 1 000 4 X X 7 42 5 05h40 06h10

4 16-01-24 Dodetox Oidio 1.5 40 1 000 8 X X 7 43 5 07h10 08h30

5 16-01-27 Nimrod Previcur

Oidio Mildiu Velloso

1.5 1.5

40 1 000 8 X X 7 43 5 05h40 06h40

5 16-01-29 Nisorum Ácaros 0.5 40 1 000 10 X X 7 42 5 07h10 08h30

5 16-01-31 Swich Actara

Botrytis Trips

0.6 0.3

40 1 000 4 X X 7 42 5 06h10 06h40


120

ANEXO 4. Registro de aplicación de plaguicidas del mes de Febrero 2016

FINCA: Flores de la Montaña CULTIVO: Rosa sp. cv Freedom MES: Febrero 2016 BLOQUE: 33 SEMANA

FECHA

(aa-mm-dd)

PRODUCTO

(S) APLICADO (S)

BLANCO

BIOLÓGICO

DOSIS/LITRO (gr

o cc)

# CAMAS

VOL DE MEZCLA

(L)

VOL POR CAMA (L)

IMPLEMENTO

DIRECCIÓN

T

(°C)

HR (%)

pH

MEZCLA

HORA INICIO

HORA FINAL

L A N Z A

A G U I L O N

O T R O

F L O R

FOLLAJE

O TR O

6 16-02-02 Prosper Oidio 0.35 40 1 000 8 X X 20 40 5 10h00 11h00

6 16-02-04 Acarofin Ácaros 0.8 40 1 000 10 X X 17 40 5 08h00 09h00

6 16-02-06 Fitomax

Oidio 3.0 40 1 000 8 X X 14 40 5 08h00 09h00

6 16-02-07 Teldor Fiprogent

Botrytis Trips

1.0 0.3

40 1 000 4 X X X 7 42 5 06h20 06h50

7 16-02-09 Meltatox Dithane

Oidio Mildiú Velloso

1.5 1.5

40 1 000 8 X X 11 43 5 07h10 08h10

7 16-02-11 Teldor Agrostemin

Botrytis Foliar

1.0 1.0

40 1 000 8 X X X 12 42 5 07h20 08h20

7 16-02-12 Vertimec Ácaros 0.4 40 1 000 10 X X 16 41 5 08h10 09h10


121

ANEXO 5. Registro de aplicación de bioestimulantes FINCA: Flores de la Montaña CULTIVO: Rosa sp. cv Freedom BLOQUE: 33 SEMANA

FECHA

(aa-mm-dd)

PRODUCTO (S) APLICADO (S)

Volumen aplicado

mL/aplicación/cam

a

# CAMAS

Volumen

aplicado L/ cama

APLICACIÓN

IMPLEMENTO

DIRECCIÓN

T (°C)

HR (%)

pH

MEZCLA

HORA INICIO

HORA FINAL

L A N Z A

A G U I L Ó N

BOMBA MANUAL

ESPONJA

BOTÓN FLORAL

FOLLAJE

O T R O

51 15-12-19 BIO-SOLAR 16 8 0.016 Primera X X 12 41 5 06h30 06h45

52 15-12-22 BIO-SOLAR 16 8 0.016 Segunda X X 15 40 5 06h30 06h45

1 15-12-29 BIO-SOLAR 16 8 0.016 Tercera X X 17 40 5 06h30 06h45

Volumen total utilizado/tratamiento para una ocasión: 0.128 L Volumen total utilizado/tratamiento para segunda ocasión: 0.128 L Volumen total utilizado/tratamiento para tercera ocasión: 0.128 L

Volumen total utilizado para tres ocasiones: 0.384 L

2 16-01-05 HTP-B1 50 8 0.05 Primera X X 20 41 5 11h30 12h30

52 16-01-12 HTP-B1 1.5 8 0.0015 Segunda X X 20 41 5 11h30 12h30

Volumen total utilizado/tratamiento para una ocasión (forma tópica o manual): 0.4 L Volumen total utilizado/tratamiento para segunda ocasión (aspersión): 0.096 L

Volumen total utilizado para dos ocasiones (manual y aspersión): 0.496 L

1 16-01-19 GRAND-ROSE 45 8 0.045 Primera X X

11 43 5 07h10 08h10

Volumen total utilizado/tratamiento para una ocasión: 0.36 L Volumen total utilizado para una ocasión: 0.36 L


122

ANEXO 6. Rosales silvestres

Rosa Canina Rosa Damascena Fuente: American Rose Society, 2016 Fuente: American Rose Society, 2016 ANEXO 7. Rosales antiguos

Híbrido perpetuo Rosa Centifolia Fuente: American Rose Society, 2016 Fuente: American Rose Society, ANEXO 8. Rosales modernos

Rosa sp.cv Freedom Rosas Floribundas Fuente: American Rose Society, 2016 Fuente: American Rose Society, 2016

123

ANEXO 9. Rosales sarmentosos

Fuente: American Rose Society, 2016 Fuente: American Rose Society, 2016 ANEXO 10. Mutaciones de híbrido de Té

Híbrido de Té “Tarde Gris” Híbrido de Té “Peace” Fuente: American Rose Society, 2016 Fuente: American Rose Society, 2016 ANEXO 11. Rosales arbustivos o de parque

Rosal crecimiento en valla Rosal crecimiento a ras del suelo Fuente: American Rose Society, 2016 Fuente: American Rose Society, 2016

124

ANEXO 12. Rosales de macizo

Portulaca grandiflora Polyanthas Fuente: American Rose Society, 2016 Fuente: American Rose Society, 2016 ANEXO 13. Rosales miniatura

Fuente: American Rose Society, 2016 Fuente: American Rose Society, 2016 ANEXO 14. Plantines de rosa listas para el transplante

125

ANEXO 15. Temperaturas, humedades relativas y puntos de rocío registradas el día 2 de noviembre del 2015

NÚMERO DE MARCACIONES HORA TEMPERATURA °C HUMEDAD

RELATIVA % PUNTO DE

ROCÍO °C

1 12h29 11.276 34.297 -3.887

2 12h59 11.154 33.856 -4.167

3 01h29 11.130 34.946 -3.766

4 01h59 10.837 35.863 -3.681

5 02h29 10.495 36.372 -3.797

6 02h59 10.568 36.488 -3.689

7 03h29 9.955 36.538 -4.216

8 03h59 9.068 36.745 -4.932

9 04h29 9.192 38.477 -4.211

10 04h59 9.241 38.262 -4.242

11 05h29 8.721 37.346 -5.027

12 05h59 8.721 38.178 -4.736

13 06h29 8.622 37.661 -5.005

14 06h59 10.250 36.427 -3.994

15 07h29 13.404 29.792 -3.899

16 07h59 16.514 25.082 -3.523

17 08h29 18.037 15.810 -8302

18 08h59 20.201 15.000 -7.242

19 09h29 24.031 15.000 -4.185

20 09h59 27.019 15.000 -1.805

21 10h29 27.536 15.000 -1.395

22 10h59 26.481 15.000 -2.234

23 11h29 27.560 15.000 -1.375

24 11h59 26.946 15.000 -1.864

25 12h29 29.747 15.000 0.361

26 12h59 29.973 15.000 0.540

27 13h29 31.008 15.000 1.361

28 13h59 30.831 15.000 1.220

29 14h29 25.798 15.000 -2.777

30 14h59 27.216 15.000 -1.649

31 15h29 25.506 15.000 -3.009

32 15h59 20.916 15.000 -6.670

33 16h29 17.775 15.000 -9.184

34 16h59 15.918 15.000 -10.673

35 17h29 14.723 18.617 -8.910

36 17h59 14.053 19.007 -9.199

37 18h29 13.572 22.069 -7.686

38 18h59 12.850 25.997 -6.173

39 19h29 12.053 29.024 -5.416

40 19h59 12.222 28.028 -5.728

41 20h29 12.416 29.024 -4.904

42 20h59 12.343 28.028 -5.332

43 21h29 12.295 29.463 -5.097

44 21h59 12.028 30.068 -4.972

45 22h29 11.543 30.637 -5.147

46 22h59 10.617 32.242 -5.285

47 23h29 9.759 33.021 -5.725

48 23h59 9.216 34.146 -5.765


126

ANEXO 16. Grados día correspondiente al bloque 33 Rosa sp. cv Freedom

Número de días desde el Pinch Variedad Fecha Grados día

1 Freedom 02/11/2015 11.15

2 Freedom 03/11/2015 10.52

3 Freedom 04/11/2015 8.83

4 Freedom 05/11/2015 8.20

5 Freedom 06/11/2015 10.46

6 Freedom 07/11/2015 7.32

7 Freedom 08/11/2015 1.54

8 Freedom 09/11/2015 8.54

9 Freedom 10/11/2015 9.56

10 Freedom 11/11/2015 8.76

11 Freedom 12/11/2015 9.95

12 Freedom 13/11/2015 9.68

13 Freedom 14/11/2015 10.00

14 Freedom 15/11/2015 9.55

15 Freedom 16/11/2015 9.73

16 Freedom 17/11/2015 8.64

17 Freedom 18/11/2015 10.86

18 Freedom 19/11/2015 11.49

19 Freedom 20/11/2015 10.53

20 Freedom 21/11/2015 9.72

21 Freedom 22/11/2015 10.48

22 Freedom 23/11/2015 8.59

23 Freedom 24/11/2015 9.02

24 Freedom 25/11/2015 10.94

25 Freedom 26/11/2015 8.52

26 Freedom 27/11/2015 10.14

27 Freedom 28/11/2015 9.45

28 Freedom 29/11/2015 10.54

29 Freedom 30/11/2015 9.87

30 Freedom 01/12/2015 10.42

31 Freedom 02/12/2015 8.95

32 Freedom 03/12/2015 9.59

33 Freedom 04/12/2015 10.37

34 Freedom 05/12/2015 9.46

35 Freedom 06/12/2015 9.58

36 Freedom 07/12/2015 8.86

37 Freedom 08/12/2015 9.23

38 Freedom 09/12/2015 9.69

39 Freedom 10/12/2015 9.96

40 Freedom 11/12/2015 9.31

127

Anexo 16 (cont.).

41 Freedom 12/12/2015 9.56

42 Freedom 13/12/2015 10.18

43 Freedom 14/12/2015 9.84

44 Freedom 15/12/2015 8.60

45 Freedom 16/12/2015 10.09

46 Freedom 17/12/2015 9.79

47 Freedom 18/12/2015 9.07

48 Freedom 19/12/2015 10.23

49 Freedom 20/12/2015 9.69

50 Freedom 21/12/2015 10.29

51 Freedom 22/12/2015 10.55

52 Freedom 23/12/2015 9.37

53 Freedom 24/12/2015 9.52

54 Freedom 25/12/2015 9.64

55 Freedom 26/12/2015 10.14

56 Freedom 27/12/2015 11.42

57 Freedom 28/12/2015 10.32

58 Freedom 29/12/2015 10.86

59 Freedom 30/12/2015 11.47

60 Freedom 31/12/2015 11.21

61 Freedom 01/01/2016 11.76

62 Freedom 02/01/2016 9.40

63 Freedom 03/01/2016 10.58

64 Freedom 04/01/2016 11.10

65 Freedom 05/01/2016 12.16

66 Freedom 06/01/2016 11.16

67 Freedom 07/01/2016 11.69

68 Freedom 08/01/2016 12.47

69 Freedom 09/01/2016 11.33

70 Freedom 10/01/2016 11.17

71 Freedom 11/01/2016 11.52

72 Freedom 12/01/2016 11.56

73 Freedom 13/01/2016 10.07

74 Freedom 14/01/2016 11.49

75 Freedom 15/01/2016 10.69

76 Freedom 16/01/2016 9.93

77 Freedom 17/01/2016 10.29

78 Freedom 18/01/2016 10.52

79 Freedom 19/01/2016 9.57

80 Freedom 20/01/2016 9.90

128

Anexo 16 (cont.).

81 Freedom 21/01/2016 8.86

82 Freedom 22/01/2016 10.12

83 Freedom 23/01/2016 10.51

84 Freedom 24/01/2016 11.21

85 Freedom 25/01/2016 9.22

86 Freedom 26/01/2016 10.47

87 Freedom 27/01/2016 10.29


129

ANEXO 17. Formato del monitoreo fertirriego de la finca

GRADOS DE HUMEDAD

Fecha:_________________________________

GRADO HUMEDAD

1

Completamente seco PMP

Semana:______________________________ Sector 1 pH CE

2 Se humedece no agrega

AGUA

3 Agrega y humedece CC

P BALDE

4 Escurre /saturación

Suelos 2:1 Gotero Humedad al tacto Humedad al tacto

Cultivo Bloque pH C.E N-No3 pH C.E Lunes Jueves Lunes Jueves

1

2

3

4

5

6

7

24

25

26

27

28

30

31

Promedio

Nivel Óptimo 5.5 - 6.0 1.- 2 45 -113 5- 5.5 1.4-1.7 3 3 3 3 Fuente: FalconFarms de Ecuador S.A., 2016

130

ANEXO 18. Formato del monitoreo y control del fertiriego de la finca


131

ANEXO 19. Propuesta de la fertilización foliar pico de San Valentín 2016

Fuente: Base de datos FalconFarms de Ecuador S.A., 2016 Elaborado por: El Autor Para la fertilización foliar se toman en cuenta los siguientes factores a ser considerados como importantes:

Se debe iniciar las aplicaciones a partir de la primera, segunda y tercera semana después de la poda con el producto estimulante de brotación.

Programar fertilizaciones foliares máximo una vez por semana.

Los volúmenes por cama deben programarse de acuerdo a la cantidad de follaje que presente la cama según su estado fenológico (máximo 4-6 L/cama).

Para la aplicación vía foliar se debe tener en cuenta que el pH en solución final debe estar entre 5.0-5.5.

Para lograr una mayor eficiencia de los elementos a aplicar. Solicitar ácido cítrico para acidular el agua en el tanque.

En las semanas 43-48 las aplicaciones son consideradas como refuerzos para las raíces.

132

ANEXO 20. Formato de la lista semanal de chequeo de operación del fertirriego

133

Anexo 20 (cont.).

Fuente: FalconFarms de Ecuador S.A., 2016 PSI

1= libra-fuerza por pulgada cuadrada

gal/min2= galón por minuto

mabel3= marca comercial de inyectores

U4= Unidades

uS/cm5= micro siemens por centímetro

ppm6=partes por millón

134

ANEXO 21. Programa de Fertilización de FalconFarms de Ecuador S.A.

No. Camas 8 077

Cantidad de agua total (m3) 743.084

Lámina de riego (L) 92

Elemento

N

P

K

Ca

Mg

S

Fe

Mn

Zn

Cu

B

Mo

Fórmula en ppm

130

45

140

100

50

137

2

2

3

2.5

0.7

0.1


Fuente

Dosis: g/L

Kg/día

Nitrato de amonio 0.0867 64.4434

Nitrato de calcio 0.5263 391.0968

Ácido Fosfórico 0.0917 68.1160

Fosfato Monopotásico 0.0892 66.2883

Sulfato de potasio 0.2739 203.5024

Sulfato de Amonio 0.0922 68.5351

Sulfato de Magnesio 0.5208 387.0229

Bórax (B) 0.0045 3.3777

Forquelat Fe 0.0333 24.7695

Tradecorp Mn 0.0154 11.4321

Tradecorp Cu 0.0172 12.8118

Tradecorp Zn 0.0214 15.9232

Molibdato de Amonio Gramos 0.000185 137.6081

135

ANEXO 22. Aporte de cada fuente

Elemento

ppm

N 130

P 45

K 140

Ca 100

Mg 50

Mn 2

Cu 2.5

Zn 3

Fe 2

B 0.7

Mo 0.1

Fuente

Nitrato de amonio

29.053

Sulfato de amonio

19.368

Ácido fosfórico 24.75

Fosfato monopotásico

20.25

Sulfato de potasio

115.02

Nitrato de calcio

82


FUENTE

NITRÓGENO NÍTRICO (N-NO3)

NITRÓGENO AMONIACAL (N-

NH4)

TOTAL ppm

NITRATO DE

AMONIO

14.53

14.53

29.1

50 % nítrico 50 % amoniacal

NITRATO DE

CALCIO

76.32

5.26

81.6

93.548 % nítrico 6.452 % amoniacal

SULFATO DE

AMONIO 100 % amoniacal

19.37

19.4

TOTAL

90.84

39.16

130

136

ANEXO 23. Programa de fertilización de FalconFarms de Ecuador S.A. por áreas

ÁREAS

FLORES 1 FLORES 2 FLORES 3 FLORES 4

Número de camas

2 057

1 779

2 379

1 862

Número total de

camas

8 077

FUENTE

DÓSIS/SEMANA

Kg TOTAL CALCULADO

Kg REDONDEADO POR

PEDIDO

Nitrato de amonio 82.8 71.6 95.7 74.9 322.2 325

Sulfato de amonio 87.9 76 101.6 79.5 342.7 345

Ácido fosfórico 96.6 74.9 100.1 78.4 340.6 340

Fosfato monopotásico 85.3 73.8 98.7 77.2 331.4 335

Sulfato de potasio 259.8 224.7 300.4 235.1 1017.5 1020

Nitrato de calcio 497.9 430.6 375.8 450.7 1955.5 1955

Sulfato de magnesio 492.8 426.2 569.9 446.1 1935.1 1935

Tradecorp (Mn) 15.3 13.2 17.7 13.8 57.2 60

Forquelat (Fe) 31.8 27.5 36.8 28.8 123.8 125

Tradecorp (Cu) 16.6 14.3 19.1 15 64.1 65

Tradecorp (Zn) 20.4 17.6 23.6 18.4 79.6 80

Bórax (B) 4.3 3.7 5 3.9 16.9 17

Molibdato de amonio 0.25 0.22 0.29 0.23 0.7 1


137

ANEXO 24. Presupuesto de fertilización de Flores de la Montaña S.A.


FINCA FALCONFARMS DE ECUADOR S.A/FLORES DE LA MONTAÑA S.A.

Fuente

Dosis Kg Total día

Dosis Kg Total

semana

Marca (proveedor)

Costo/ Kg Costo/día

Costo/ semana

Costo Total/día

Costo Total/semana

Costo/Ha/ día

Costo/Ha/ semana

Nitrato de amonio 91 453

FERPACIFIC (FERPACIFIC) 0.570

51.87

258.21

1 597.21

7 993.22

43.17

216.03

Nitrato de calcio 315 1 575 YARA (SQM) 0.540

170.1

850.5

Ácido fosfórico 95 477 FERTISERV 1.32

125.4

629.64

Fosfato monopotásico

93 464 CHINO (QUIMICA

INDUSTRIAL) 2.08

193.44

965.12

Sulfato de potasio 213 1 064

SOPIB (FERMAGRI) 0.82

174.66

872.48

Sulfato de amonio 36 180 SQM 0.42

15.12

75.6

Sulfato de magnesio

452 2 258

FERTIQIM (QUIMICA

INDUSTRIAL) 0.29

131.08

654.82

Bórax (B) 3 14 0.86 2.58 12.04

Forquelat Fe 29 145

ARVENSIS (LA YAPA) 14.26

413.54

2 067.7

Tradecorp Mn 10 50

TRADECORP (RODEL) 11.15

111.5

557.5

Tradecorp Cu 9 45


105.3

526.5

Tradecorp Zn 9 46


91.35

466.9

Molibdato de amonio 161 803

FERMAGRI (FERMAGRI) 70

11.27

56.21

138

ANEXO 25. Registro de temperaturas del cuarto de evaluaciones en el mes de Diciembre 2015

TEMPERATURAS CUARTO DE EVALUACIONES

MES: DICIEMBRE 2015 TEMPERATURA

DÍA FECHA TEMPERATURA MÁXIMA TEMPERATURA MÍNIMA

LUNES 07/12/15 25 °C 15 °C

MARTES 08/12/15 26 °C 14 °C

MIÉRCOLES 09/12/15 25 °C 13 °C

JUEVES 10/12/15 25 °C 14 °C

VIERNES 11/12/15 24 °C 17 °C

LUNES 14/12/15 27 °C 15 °C

MARTES 15/12/15 26 °C 14 °C

MIÉRCOLES 16/12/15 26 °C 14 °C

JUEVES 17/12/15 28 °C 15 °C

VIERNES 18/12/15 26 °C 14 °C

LUNES 21/12/15 25 °C 13 °C

MARTES 22/12/15 25 °C 14 °C

MIÉRCOLES 23/12/15 29 °C 16 °C

JUEVES 24/12/15 23 °C 13 °C

VIERNES ------------ ------------ ------------

SÁBADO 26/12/15 28 °C 15 °C

LUNES 28/12/15 29 °C 15 °C

MARTES ------------ ------------ ------------

MIÉRCOLES ------------ ------------ ------------

JUEVES ------------ ------------ ------------

VIERNES ------------ ------------ ------------

139

ANEXO 26. Registro de temperaturas del cuarto de evaluaciones en el mes de Enero 2016

TEMPERATURAS CUARTOS DE EVALUACIONES

MES: ENERO 2016 TEMPERATURA


SÁBADO 02/01/16 30 °C 18 °C

LUNES 04/01/16 28 °C 14 °C

MARTES 05/01/16 30 °C 16 °C

MIÉRCOLES 06/01/16 29 °C 16 °C

JUEVES 07/01/16 28 °C 15 °C

VIERNES 08/01/16 26 °C 13 °C

LUNES 11/01/16 25 °C 14 °C

MARTES 12/01/16 27 °C 15 °C

MIÉRCOLES 13/01/16 28 °C 16 °C

JUEVES 14/01/16 27 °C 15 °C

VIERNES 15/01/16 25 °C 13 °C

SÁBADO 16/01/16 26 °C 14 °C

DOMINGO 17/01/02 30 °C 16 °C

LUNES 18/01/16 26 °C 14 °C

MARTES 19/01/16 25 °C 13 °C

MIÉRCOLES 20/01/16 29 °C 15 °C

JUEVES 21/01/16 28 °C 15 °C

VIERNES 22/01/16 27 °C 14 °C

SÁBADO 23/01/16 28 °C 14 °C

DOMINGO 24/01/16 25 °C 13 °C

LUNES 25/01/16 29 °C 16 °C

MARTES 26/01/16 24 °C 12 °C

MIÉRCOLES 27/01/16 28 °C 13 °C

JUEVES 28/01/16 29 °C 19 °C

VIERNES 29/01/16 30 °C 18 °C

SÁBADO 30/01/16 27 °C 17 °C

DOMINGO 31/01/16 29 °C 18 °C

140

ANEXO 27. Registro de temperaturas del cuarto de evaluaciones en el mes de Febrero 2016

TEMPERATURAS CUARTOS DE EVALUACIONES

MES: FEBRERO 2016 TEMPERATURA


LUNES 01/02/16 25 °C 18 °C

MARTES 02/02/16 28 °C 19 °C

MIÉRCOLES 03/02/16 29 °C 20 °C

JUEVES 04/02/16 25 °C 17 °C

VIERNES 05/02/16 29 °C 18 °C

SÁBADO 06/02/16 30 °C 19 °C

DOMINGO 07/02/16 ° C ° C

LUNES 08/02/16 28 °C 17 °C

MARTES 09/02/16 25 °C 16 °C

MIÉRCOLES 10/02/16 26 °C 16 °C

JUEVES 11/02/16 27 °C 17 °C

VIERNES 12/02/16 26 °C 16 °C

SÁBADO 13/02/16 ------------ ------------

DOMINGO 14/02/16 ------------ ------------

LUNES 15/02/16 26 °C 19 °C

MARTES 16/02/16 26 °C 17 °C

MIÉRCOLES 17/02/16 24 °C 16 °C

JUEVES 18/02/16 21 °C 17 °C

VIERNES 19/02/16 22 °C 14 °C

SÁBADO 20/02/16 ° C ° C

DOMINGO 21/02/16 ° C ° C

LUNES 22/02/16 21 °C 14 °C

MARTES 23/02/16 22 °C 15 °C

MIÉRCOLES 24/02/16 19 °C 15 °C

JUEVES 25/02/16 ° C ° C

VIERNES 26/02/16 ° C ° C

SÁBADO 27/02/16 ° C ° C

DOMINGO 28/02/16 ° C ° C

SÁBADO 29/02/16 ° C ° C

Documents

UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE …Dejo constancia de mi eterna gratitud a la Facultad de Ciencias Agrícolas, en especial a los docentes que intervinieron en la realización