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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
DIAGNÓSTICO Y PREVALENCIA DE ECTOPARÁSITOS EN
APIARIOS DE APIS MELLÍFERA EN LA REGIÓN SUR DEL
ECUADOR.
Trabajo de Grado Presentado como Requisito para Obtener el Grado
o Título de Médico Veterinario Zootecnista
ANDREA ESTEFANÍA ALVAREZ LÓPEZ.
TUTOR
Dr. Jorge Mosquera.
Quito, enero 2016.
ii
DEDICATORIA
A mis padres, quienes apoyaron, lucharon y dedicaron su vida por sus hijos,
a mi amado Ramiro quien me ama incondicionalmente y a mis hermosos
hijos.
Andrea Estefanía Alvarez López.
iii
AGRADECIMIENTO
Agradezco a Dios, por la salud, el amor, el trabajo, las bendiciones y la vida
que me ha brindado, sin El nada sería posible.
A mis queridos padres quienes me han apoyado siempre, me han amado, han
confiado en mí para convertirme en la persona quien soy ahora.
A mi querida Facultad que aportó todo el conocimiento y la experiencia de
tantos años; mi vocación creció todos los días al recorrer sus aulas y
compartir las experiencias con el personal docente.
A Agrocalidad, Institución a la que estoy muy agradecida, por permitir
elaborar mi proyecto; a mis queridos compañeros de laboratorio y a su
personal docente, en especial al Doctor Hugo Rosero, quien con sabiduría,
paciencia y dedicación supo guiarme para elaborar este proyecto y
compartir su conocimiento.
En especial, quiero agradecer al Doctor Jorge Mosquera, sabio doctor y
profesor, quien no solo me guió en este proyecto, sino en la mayor parte de
mi carrera; muchas gracias por su gran aporte y conocimiento.
iv
v
vi
vii
ÍNDICE DE CONTENIDO
DEDICATORIA ..................................................................................................... ii
AGRADECIMIENTO ........................................................................................... iii
AUTORIZACIÓN DE AUTORÍA INTELECTUAL ............................................ iv
ACEPTACIÓN DEL TUTOR ................................................................................ v
APROBACIÓN DEL TRABAJO/TRIBUNAL ..................................................... vi
ÍNDICE ................................................................................................................. vii
RESUMEN ............................................................................................................. xi
ABSTRACT .......................................................................................................... xii
INTRODUCCION. ................................................................................................. 1
CAPITULO I. .......................................................................................................... 2
EL PROBLEMA ................................................................................................. 2
Planteamiento del Problema........................................................................................ 2
Justificación ................................................................................................................ 3
Objetivo general. ................................................................................................. 6
Objetivos específicos. ......................................................................................... 6
CAPÍTULO II ......................................................................................................... 7
MARCO TEÓRICO ............................................................................................ 7
Antecedentes de la Investigación ................................................................................ 7
Fundamentación teórica .................................................................................. 9
TROPILAELAPSOSIS (Tropilaelaps claerae) ...................................................... 9
Ubicación. ......................................................................................................... 10
Ciclo de vida ..................................................................................................... 10
AETHINOSIS (Aethina tumida) ........................................................................... 12
Ubicación. ......................................................................................................... 12
Ciclo de vida ..................................................................................................... 13
BRAULOSIS (Braula coeca) ................................................................................ 14
Ubicación. ......................................................................................................... 15
Ciclo de vida. .................................................................................................... 15
Etapas de desarrollo de Braula .................................................................................. 16
VARROOSIS (Varroa destructor) ........................................................................ 17
Ubicación. ......................................................................................................... 18
Ciclo de vida. .................................................................................................... 18
viii
CAPITULO III ...................................................................................................... 21
METODOLOGÌA ............................................................................................. 21
Ubicación de la zona de estudio. ............................................................................... 21
Materiales y métodos. ............................................................................................... 23
Tipo de investigación. ............................................................................................... 24
Diseño de la investigación. ....................................................................................... 24
Operacionalización de las variables .......................................................................... 25
Unidades de muestreo. .............................................................................................. 27
Método. ..................................................................................................................... 28
Toma de muestras ..................................................................................................... 29
Procesamiento de la muestra ..................................................................................... 29
CAPITULO IV ...................................................................................................... 30
RESULTADOS Y DISCUSIÓN. ..................................................................... 30
Resultados .................................................................................................................... 30
Discusión. .......................................................................................................... 33
CAPÍTULO V ....................................................................................................... 36
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES. ............................................... 36
Conclusiones. ............................................................................................................ 36
Recomendaciones. .................................................................................................... 37
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS. ................................................................. 38
GLOSARIO .......................................................................................................... 40
ANEXOS. ............................................................................................................. 41
ix
LISTA DE GRÁFICOS
Gráfico 1.- Tropilaelaps claerae, National Bee Unit, The Animal and Plant Health
Agency (APHA), 2015. ........................................................................................... 9
Gráfico 2.- Ciclo de vida de Tropilaelaps, Dr.Marc Schäfer, FLI Laboratorio
Nacional de Referencia de Enfermedades de las abejas y figura modificada por
Donzé et al. (1998) ................................................................................................ 11
Gráfico 3.- Ciclo de vida de PEC (Pequeño escarabajo de la colmena), Dr. Otto
Boecking, Institut für Bienekun de Celle, Alemania, 2012. ................................. 13
Gráfico 4.- Braula adulta, Harold Ayton, Primefacts, Agosto 2007. ................... 15
Gráfico 5.- Evidencia de larvas de Braula, Nick Annand, Primefacts, Agosto
2007. ...................................................................................................................... 16
Gráfico 6.- Ciclo de vida de Varroa jacobsoni en celdas de abejas obreras,
Williams, Ramírez y Gard Otis, (2003) ................................................................ 19
Gráfico 7.- Prueba de frasco, Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria,
Argentina (2013) ................................................................................................... 28
Gráfico 8.- Asociación de variables con la presencia del parásito Varroa
destructor en la región sur del Ecuador. ............................................................... 32
x
LISTA DE TABLAS
Tabla 1.- Número de Explotaciones Apícolas de acuerdo al catastro realizado en el
período 2013- 2014, Agrocalidad (2014) ................................................................ 7
Tabla 2.- Ubicación del estudio en las provincias de Loja, El Oro y Zamora
Chinchipe. ............................................................................................................. 21
Tabla 3.- Variable independiente .......................................................................... 25
Tabla 4.- Variable dependiente ............................................................................. 26
Tabla 5.- Tamaño de la muestra para determinar prevalencia verdadera en Loja 27
Tabla 6.- Apiarios muestreados, PRONASA 2014. .............................................. 27
Tabla 7 .- Resultados de prevalencia de Varroa destructor, en fase forética, por
apiario y por colmenas (muestras), en las provincias de Loja y El Oro, en Apis
mellífera. ............................................................................................................... 30
Tabla 8.- Resultados de la encuesta de variables asociadas a la presentación del
parásito Varroa destructor en apiarios de Loja y El Oro. ...................................... 31
Tabla 9.- Resultado de Chi- Cuadrado para la asociación de variables. .............. 31
xi
“DIAGNÓSTICO Y PREVALENCIA DE ECTOPARÁSITOS EN
APIARIOS DE APIS MELLÍFERA EN LA REGIÓN SUR DEL ECUADOR”
AUTOR: Andrea Estefanía Alvarez López.
TUTOR: Jorge Mosquera, Dr.
RESUMEN
Esta investigación se realizó con Agrocalidad, en 51 apiarios de la región sur del
Ecuador (46 apiarios de Loja, 5 apiarios de El Oro) , con el propósito de la
determinación de presencia o ausencia de cuatro ectoparásitos de abejas adultas
de Apis mellífera, con el antecedente que dos ectoparásitos se consideran exóticos
para el país. Se empleó la prueba de frasco De Jong para la determinación de
ácaros y la observación directa de las muestras para los parásitos Aethina tumida
y Braula coeca. Se evaluaron 230 muestras de 46 apiarios de Loja y 25 muestras
de 5 apiarios de El Oro. Loja, presentó presencia del parásito de 99.13%
(228/230), una tasa de prevalencia de Varroa destructor de 33,61% y una tasa de
infestación de 71.34% (33/46). Tasa de infestación de 0% para Braula coeca,
Tropilaelaps claerae y Aethina tumida. El Oro presentó una presencia del parásito
de 100%(25/25), una tasa de prevalencia de Varroa destructor de 24% y una tasa
de infestación de 80% (4/5). Tasa de infestación de 0% para Braula coeca,
Tropilaelaps claerae y Aethina tumida. Se realizaron 51 encuestas
epidemiológicas; con un banco de preguntas asociadas, a los factores de riesgo
para la presentación de la enfermedad. Se empleó chi cuadrado para la
determinación de asociación, reflejando un resultado que no difiere para la
presentación de la enfermedad con la asociación de las variables. Se elaboró un
mapa epidemiológico en el que coincide la presentación del parásito Varroa
destructor, con la cercanía del patrimonio de áreas naturales protegidas con una
altitud de 2211,11 - 2633,33msnm y zonas de pluviosidad anual aproximada de
500 – 1250mm3.
Palabras clave: ECTOPARÁSITOS - TASA DE PREVALENCIA- FACTORES
DE RIESGO.
xii
“DIAGNOSIS AND PREVALENCE OF ECTOPARASITES IN APIARIES
OF APIS MELLÍFERA IN SOUTH REGION OF ECUADOR”
AUTHOR: Andrea Estefanía Alvarez López.
TUTOR: Jorge Mosquera, Dr.
ABSTRACT
This investigation was made in cooperation with Agrocalidad, based on the study of 51
apiaries from the south region of Ecuador (46 apiaries from Loja; 5 apiaries from El Oro),
with the final purpose to determinate the presence of four ectoparasites in Apis mellífera
adult honey bees. Knowing that two of these ectoparasites are considered exotic for this
country. The method used for determinate mite’s presence was the collection of adult honey
bees in a container (De Jong, et al, 1982) and the direct observation of the samples for the
parasites: Aethina tumida and Braula coeca. A total of 230 samples were evaluated: 46
samples from Loja’s apiaries and 25 samples from 5 El Oro’s apiaries. In Loja was found
99.13% of presence of Varroa destructor (228/230), a prevalence rate of 33.61%; and an
infestation rate of 73.34%; (33/46) as well. Infestation rate of 0% for Braula coeca
Tropilaelaps claerae and Aethina tumida. In El Oro we found 100% of presence of Varroa
destructor (25/25), a prevalence rate of 24% and an infestation rate of 80% (4/5).
Infestation rate of 0% for Braula coeca, Tropilaelaps claerae y Aethina tumida. We made
51 epidemiological surveys, with a full questionnaire associated to the risk factors for the
presence of this disease. The “Square Chi Method” was used for determinate the association
between them; giving us that the result don’t differ with the presence of the disease with
the variables association. An epidemiological map was made, in which clearly shows the
presence of Varroa destructor is near at the protected natural areas, considered as
patrimony forest at a height of 221.11 to 2633.33 meters in an area of annual rainfall of 500
to 1250mm3 approximately.
Keywords: ECTOPARASITES – PREVALENCE RATE – RISK FACTORS
1
INTRODUCCIÓN.
Aproximadamente cien parásitos han sido asociados a las abejas
productoras de miel, quienes en su mayoría son inofensivos. Tres especies
de ácaros de las abejas son de gran importancia debido al impacto
económico en el mundo. (Ritter, 2014)
Bruno (2003) comenta que, el aspecto sanitario de los colmenares, las
enfermedades y parásitos que los afectan, es uno de los principales factores
que inciden en su producción.
A lo largo de estos últimos años, no hay razón del porqué las abejas están
disminuyendo en el transcurso del tiempo. Es necesario realizar análisis del
sistema sanitario, el control de plagas y enfermedades en el país. El colapso
de colonias, de las abejas melíferas, está fuertemente ligado a la interacción
entre patógenos y otros factores estresantes de la colmena, incluyendo el
efecto a largo plazo del parasitismo por ácaros y la resistencia a los
pesticidas por parte de la abeja productora de miel (vanEngelsdorp Dennis,
2009)
La presencia de ectoparásitos que fueron investigados en este proyecto,
determina cuán peligrosa es la presencia de la enfermedad en el apiario, qué
porcentaje de mortalidad está ligado a la disminución de la colonia y
posterior colapso de la misma (CCD por sus siglas en inglés).
2
CAPITULO I.
EL PROBLEMA
Planteamiento del Problema
Las abejas mellíferas son susceptibles a presentar una serie de enfermedades
que causan un efecto negativo en el desarrollo y productividad de los
colmenares; la producción se encuentra vulnerable a su disminución y
mortalidad, resultado de la presencia y acción de parásitos externos.
Estas enfermedades son producidas por los parásitos Varroa destructor,
Tropilaelaps sp, Braula coeca y Aethina tumida, de las cuales, tres se
consideran de notificación obligatoria a la Organización Mundial de
Sanidad Animal (OIE), y dos de ellas se encuentran como enfermedades
exóticas de presentación estable fuera de nuestro país.
La acción tóxica de los parásitos se debe a los productos metabólicos que
excretan, así como a las sustancias liberadas en la descomposición de sus
cadáveres. Hay que poner de relieve que, a menudo, son causa de la
presentación de otras enfermedades, debido a las alteraciones que producen
en el organismo del hospedador (Martínez, 2003)
La presencia de estos parásitos afecta directamente a la producción,
provocando serias pérdidas económicas, representadas por escasos
productos obtenidos de la apicultura para el mercado y por mortalidad de
las abejas, llegando a desaparecer los apiarios.
3
Justificación
En el Mundo, gran número de colmenas han desaparecido por diversas
causas; entre las principales están: el cambio climático, la contaminación,
los pesticidas, virus, hongos, bacterias, protozoarios y otros parásitos tanto
internos como externos, que están mermando los cultivos; todos estos han
participado como agentes esenciales en la producción de un síndrome en
apicultura denominado: Colapso de colonias (Colony Collapse Disorder –
CCD- por sus siglas en inglés), al que se lo conoce como un fenómeno que
apareció en la década del año 2000, por el que una cantidad considerable
de abejas obreras de una colmena desaparecen abruptamente. Se aplicó por
primera vez este término tras un crecimiento drástico del número de
desapariciones en colonias de abejas en Norteamérica a finales del año 2006
(Honey Bee Die-Off Alarms Beekeepers, Crop Growers and Researchers-
2007). Se estima que en Estados Unidos se han perdido alrededor de cinco
a siete millones de colmenas por este síndrome.
En Ecuador, las colonias están desapareciendo en números alarmantes y,
por ello, se estima que entre un 20 a 30% de la mortalidad presentada en las
colmenas se debe a problemas como: varroosis, nosemosis y otras
enfermedades apícolas importantes, que no han sido evaluadas con la
importancia correspondiente; estas se encuentran en tasas de infestación
altas que superan el 30 %, siendo la principal causa de la mortandad la mala
nutrición de los apiaros (AGROCALIDAD, 2013).
Para la OIE (Organización Mundial de Sanidad Animal), existen seis
enfermedades y plagas de declaración obligatoria en apicultura para la
abeja predominante en Ecuador (Apis mellifera), entre las cuales
predominan las producidas por parásitos externos: Varroosis,
Tropilaelapsosis, Braulosis y PEC (pequeño escarabajo de la colmena).
4
La varroosis, causada por el ácaro denominado Varroa destructor, en
combinación con virus transmitidos por esos ácaros, se encuentra
distribuida en principio por todo el mundo y tiene importantes repercusiones
económicas internacionales en términos de pérdidas de colonias y de
pérdidas de producción de miel por falta de insectos polinizadores
(Eguarras, 2011).
La tropilaelapsosis es una parasitosis externa producida por un ácaro que
afecta fundamentalmente a la cría de las abejas. Es una enfermedad grave
de esta especie y, si no es tratada, produce graves perjuicios a la colonia de
abejas. Agrava el proceso producido por la varroosis (Martínez, 2003).
El pequeño escarabajo de la colmena es un coleóptero que está causando
graves daños en las colmenas de Centroamérica produciendo una seria
preocupación para toda Suramérica (Cubero, 2014).
Braula coeca, es un díptero que se encuentra en abejorros y en las abejas
melíferas, llegando a encontrarse sobre abejas reinas (Smith 1978). Fue
introducido en Estados Unidos desde Europa con los primeros envíos de
colmenas de abejas melíferas. Las larvas son problemáticas porque dañan
el aspecto de la miel afectando la comercialización de ésta.
El número de ácaros de Varroa aumenta con la producción creciente de crías
y el crecimiento de la población de abejas melíferas, especialmente a finales
de la estación, cuando pueden reconocerse por primera vez los signos
clínicos de la infestación. El ciclo de vida del ácaro depende de la
temperatura y de la humedad, pero, en la práctica, puede decirse que su
duración varía entre unos días y unos pocos meses (Sierra, 2001).
5
La mayoría de los síntomas de la varroosis son el resultado de la acción
conjunta de Varroa spp., ácaros y virus. Con la infestación por ácaros,
aumenta la carga viral en la colonia. Los tratamientos insuficientes o tardíos
dan lugar a la eliminación de los ácaros, pero la carga viral sigue siendo
elevada durante varias semanas, con efectos perjudiciales para la población
de abejas melíferas. El control de la varroosis se efectúa principalmente
mediante el control de Varroa spp. y su diagnóstico se realiza midiendo la
carga parasitaria. (OIE- APIDAE. Código sanitario animales terrestres,
2013).
La OIE propondrá a la comunidad internacional intensificar la investigación
sobre las causas de la mortalidad de las abejas y, en particular, mejorar las
medidas de control y lucha contra las numerosas enfermedades emergentes
y ya conocidas usando como base las normas y directrices aprobadas por la
Organización, incluyendo en la esfera de la bioseguridad del comercio
mundial y regional de abejas entre países, lo que representa una causa mayor
de contaminaciones en el mundo (Vallat, 2010).
La finalidad de la apicultura es obtener distintos productos de uso y
consumo humano, principalmente la miel, polen, jalea real, distintas ceras
y propóleos, La baja producción de estos productos mantiene en alerta al
Ecuador debido a la disminución, antes mencionada, de las abejas, ya que
al verse afectada la producción nacional, se ha elevado el consumo de
productos apícolas extranjeros. Se estima que, aproximadamente, en el
Ecuador existe un consumo de 300 toneladas de miel al año, pero las
estadísticas demuestran que en el año 2013, solo fuimos capaces de producir
130 toneladas de miel nacional (AGROCALIDAD, 2013), afectando a la
economía por el aumento de importaciones; esto también es un riesgo,
puesto que los productos que ingresan al país, muchas veces son de dudosa
6
calidad y a su vez ponen en mayor riesgo a las abejas del Ecuador, ya que
no poseen certificados zoosanitarios.
La determinación de los distintos parásitos nos ayudará a tener datos de
base para iniciar los estudios estadísticos de las razones de CCD y los
distintos tratamientos que serán efectivos para evitar la mortalidad elevada
y, a su vez, el correcto manejo de los apiarios aumentará la viabilidad de
las colmenas al disminuir la presencia de los parásitos. Por lo acotado, este
trabajo se llevará a cabo en razón de no existir investigación sobre el tema
en el país. Los únicos estudios realizados, en las tres provincias de la región
sur del Ecuador, fueron para la determinación de las 51 especies de abejas
presentes en esta región (Ramírez et al., 2002).
OBJETIVO GENERAL.
Determinar la presencia y prevalencia de ectoparásitos en los apiarios de
Apis mellífera en las provincias de Loja, El Oro y Zamora Chinchipe.
OBJETIVOS ESPECÍFICOS.
1. Determinar los factores de riesgo asociados con la presencia de
parásitos externos de Apis melliferas, mediante una encuesta
epidemiológica.
2. Elaborar un mapa epidemiológico de parásitos externos de Apis
melliferas de la región sur del Ecuador.
7
CAPÍTULO II
MARCO TEÓRICO
Antecedentes de la Investigación
En el Ecuador, según el primer catastro realizado por AGROCALIDAD en
el año 2014, la apicultura está distribuida en 902 explotaciones, de las
cuales 70% están ubicadas en la sierra, el 23% en el litoral, y el 7% en la
Amazonía. El catastro registró 12188 colmenas distribuidas con el 46% en
colmenas de dos pisos, 27% en colmenas de un piso, 14% en colmenas de
tres pisos, 8% de núcleos, 3% de babies núcleos y el 2% restante de otros
tipos de colmenas.
Tabla 1.- Número de Explotaciones Apícolas de acuerdo al catastro realizado en
el período 2013- 2014, AGROCALIDAD (2014)
PROVINCIA
TOTAL
EXPLOTACIONES TOTAL DE LOS APIARIOS
Nº
EXPLOTACIONE
S
TOTAL
COLMENA
S
MENOS DE 10 DE 11 A 50
COLMENAS DE 51 A 150 MAS DE 151
Nº
EXPLOTACIONE
S
TOTAL
COLMEN
A
Nº
EXPLOTACIONE
S
TOTAL
COLMEN
A
Nº
EXPLOTACIONE
S
TOTAL
COLMEN
A
Nº
EXPLOTACIONE
S
TOTAL
COLMENA
S
TOTAL
NACIONAL 902 12188 655 2556 214 4451 19 1496 14 3685
AZUAY 57 494 42 267 15 227 0 0 0 0
BOLÍVAR 25 119 22 64 3 55 0 0 0 0
CAÑAR 38 115 36 79 2 36 0 0 0 0
CARCHI 40 974 19 96 18 382 2 126 1 370
CHIMBORAZ
O 55 267 50 136 5 131 1 83 0 0
COTOPAXI 21 224 16 71 4 70 0 0 0 0
EL ORO 18 220 10 34 8 186 0 0 0 0
ESMERALDA
S 6 87 5 23 0 0 1 64 0 0
8
GUAYAS 13 957 3 18 4 136 3 202 3 601
IMBABURA 74 1025 46 290 25 494 3 241 0 0
LOJA 183 2146 146 423 31 668 2 170 4 885
LOS RIOS 23 449 16 75 6 174 0 0 1 200
MANABÍ 124 1418 96 341 24 513 3 260 1 304
MORONA
SANTIAGO 5 141 3 16 1 25 1 100 0 0
NAPO 7 18 7 18 0 0 0 0 0 0
ORELLANA 2 2 2 2 0 0 0 0 0 0
PASTAZA 14 74 11 25 3 49 0 0 0 0
PICHINCHA 108 2778 56 236 45 967 3 250 4 1325
SANTA
ELENA 24 184 19 101 5 83 0 0 0 0
SUCUMIOS 5 16 5 16 0 0 0 0 0 0
TSÁCHILA 10 86 7 33 3 53 0 0 0 0
TUNGURAHU
A 19 180 14 81 5 99 0 0 0 0
ZAMORA
CHINCHIPE 31 214 24 111 7 103 0 0 0 0
En el Ecuador, se conoce de la presencia de la Varroa destructor y Braula
coeca, pues están presentes en los apiarios, pero los apicultores desconocen
de las enfermedades exóticas producidas por otros ectoparásitos como son
Tropilaelaps claerae y Aethina tumida y el daño que podrían estos causar
en las colmenas (H. Rosero, entrevista personal, 10 de junio de 2015)
Por medio del Programa Nacional de Sanidad Apícola (PRONASA) de la
Agencia Nacional de Aseguramiento y Calidad del Agro
(AGROCALIDAD), se logró efectuar la investigación en las provincias de
Loja, El Oro y Zamora Chinchipe en el período de Marzo 2015 a Junio
2015.
9
Fundamentación teórica
TROPILAELAPSOSIS (Tropilaelaps claerae)
Los ácaros Tropilaelaps son mucho más pequeños y rápidos que Varroa, sin
embargo estos dos parásitos pueden ser confundidos por una persona no
entrenada. Similar que Varroa, Tropilaelaps es de color café rojizo, pero
contrario a Varroa es alargado, alrededor de 1mm de largo y 0.06 de ancho.
Los machos son casi del mismo tamaño que las hembras, pero menos
esclerotizados. Se encuentran cubiertos de pelos, poseen una parte dorsal
dura, donde se insertan los pelos, y una zona ventral compleja, que es blanda
y que contiene los aparatos bucal, respiratorio, excretor y reproductor
(Ritter, 2014)
La tropilaelapsosis es una parasitosis externa, que afecta fundamentalmente
a la cría de las abejas. Es una enfermedad grave de esta especie; si no es
tratada produce graves perjuicios a la colonia de las abejas. Este ácaro está
más restringido en su distribución que Varroa; no obstante, está más
adaptado a sistemas tropicales, en los que es considerado un problema
mucho más severo que Varroa. Los dos parásitos pueden ser encontrados
infestando una misma colonia (Martínez, 2003)
Este es el único ácaro de la abeja que puede tener otro huésped, ratas de
campo, se alimenta de la hemolinfa de larvas vivas o muertas, pupas y abejas
adultas. (SAGARPA, 2014)
Gráfico 1.- Tropilaelaps claerae, National Bee Unit, The Animal and Plant
Health Agency (APHA), 2015.
10
Ubicación.
Tropilaelaps claerae se encuentra solo en el continente Asiático y parte de
Oceanía (Nueva Guinea), afecta a las especies: Apis mellifera, Apis cerana,
Apis florea y Apis laboriosa. Se considera como un parásito exótico para
nuestro país, como para el continente americano (Ritter, 2014)
Ciclo de vida
El ciclo de vida de Tropilaelaps depende estrictamente del ciclo de vida del
hospedador. Similar que Varroa, la fase forética permite la dispersión de
las hembras a través de los intercambios entre las abejas adultas .
Tropilaelaps se ubica principalmente con las crías para la alimentación,
puesto que las piezas bucales del ácaro no son capaces de perforar el
tegumento de las abejas adultas. Por lo mencionado el ácaro es incapaz de
sobrevivir sin la presencia de larvas (Ritter, 2014)
El ciclo es muy similar al de Varroa, la hembra fecundada se suelta del
cuerpo de la abeja y cae en la celda antes de la operculación, donde dará de
1 hasta 4 huevos; la puesta del primer huevo será en un periodo de 40 a 48
horas; aproximadamente llega de huevo a adulto en un periodo de 6.31 días,
existiendo una relación de un macho por cada cuatro hembras del parásito.
El ciclo continúa con la salida de la hembra fecundada con el nacimiento de
la nueva abeja. Es muy importante para el parásito nuevamente entrar a una
celda a punto de ser operculada, puesto que al no poder alimentarse de la
abeja adulta, y al tener dependencia de la cría, es imposible continuar su
ciclo de vida fuera de la celda (SAGARPA & Ritter, 2014)
11
Gráfico 2.- Ciclo de vida de Tropilaelaps, Dr.Marc Schäfer, FLI Laboratorio
Nacional de Referencia de Enfermedades de las abejas y figura modificada por
Donzé et al. (1998)
La expansión de la enfermedad se encuentra ligada a:
El Pillaje
La Deriva
Transacciones comerciales
El enjambrazón natural
Visita de machos a la colmena
Mala práctica del apicultor
La trashumancia.
12
AETHINOSIS (Aethina tumida)
Este parásito, también denominado el “pequeño escarabajo de la colmena”,
se considera una plaga; ha ocasionado la pérdida de más de un millón de
colmenas en los Estados Unidos, desde su aparición en 1998. Este
coleóptero1 es originario de África y es perteneciente a la familia
Nitidulidae.
Este parásito no tiene mucha importancia en su continente originario, puesto
que las abejas africanas se defienden ante los escarabajos, aprisionándoles
con propóleos o sacándoles de la colmena.
Ataca principalmente a las abejas europeas de Apis mellifera, siendo su
estadio más dañino, el larval; se alimentan de la miel, polen y, de manera
preferencial, de la cera de las abejas. Generan una notoria destrucción de
los panales.
Ubicación.
La distribución natural de Aethina tumida es África, al sur del desierto del
Sahara. Se determinó invasiva en 1996, año que fue detectada por primera
vez fuera de su área de distribución natural en los Estados Unidos. Hoy el
pequeño escarabajo de la colmena ha sido reportado en todo Estados
Unidos, en países vecinos México, Canadá y Jamaica. El pequeño
escarabajo de la colmena, también ha sido encontrado en Australia (Ritter,
2014) . En Egipto existieron reportes del parásito en el año 2000; existe
presencia en las islas de Hawaii desde el año 2010 y su última presencia fue
en Nicaragua en el año 2014. Está sujeto al control legal en la mayoría de
países europeos, y los planes de contingencia han estado en vigor desde
hace algunos años a la espera de su llegada (American Bee Journal, 2015).
Se considera una plaga muy peligrosa que podría llegar a expandirse
mundialmente.
1 Orden de insectos masticadores que poseen un caparazón duro y dos alas, también duras, llamadas élitros, que cubren a su vez dos alas membranosas, como el escarabajo
13
Ciclo de vida
El escarabajo adulto es pequeño, mide en promedio 5mm de largo y 3 mm
de ancho (aproximadamente un tercio de una abeja obrera). Tiene forma
ovalada, su color varía de café a negro, siendo más oscuro conforme
madura. Su piel es dura y está cubierto por finas vellosidades, en el final de
las antenas presenta un lóbulo característico (SAGARPA, 2014)
La hembra de este coleóptero puede llegar a la ovoposición a la semana de
edad; sus huevos son de color perlado y llegan a medir 1.4mm de largo por
0.26mm de ancho, los que pueden ser depositados en cualquiera de las
pequeñas cavidades que efectúan estos escarabajos en el interior de la
colmena. El período de incubación va entre 1 a 6 días y su desarrollo larval
de 10 a 16 días. Las larvas llegan a medir de 5mm de largo por 1mm de
ancho, llegando a tamaños de hasta 1.2cm de largo. Una vez que estas larvas
están en pleno desarrollo, caen al suelo usando la piquera como medio de
salida, en donde se enterrarán y comenzarán su fase de pupa, que puede
durar de 15 a 60 días. Emergerán como escarabajos de la tierra entre tres a
cuatro semanas y volverán a ingresar, si así lo desean, a la colmena, para
continuar nuevamente su ciclo.
Gráfico 3.- Ciclo de vida de PEC (Pequeño escarabajo de la colmena), Dr. Otto
Boecking, Institut für Bienekun de Celle, Alemania, 2012.
14
BRAULOSIS (Braula coeca)
Es una mosca sin alas, un díptero, erróneamente denominado “piojo de las
abejas”. Este insecto vive en las colonias de abejas productoras de miel,
pero no se considera una amenaza significante para el bienestar de las
abejas. Para alimentarse, la mosca se mueve cerca de la boca (proboscis) 2 y
le roba parte del alimento (polen y néctar) que las otras obreras le proveen
(Doug, 2007)
Este díptero3 muy modificado, que ha perdido las alas, ha desarrollado
fuerte y largas patas que terminan en peines de dientes finos . El cuerpo es
de contorno oval, con unas medidas de 1.5mm de largo y 0.9mm de ancho.
El órgano bucal es de tipo chupador, no apto para perforar la capa quitinosa
de la abeja. Es de color blanco amarillento recién nacido y rojizo caoba en
estado de adulto. (Martínez, 2003)
Cuando la colmena es débil, no tiene suficiente número de crías o la abeja
reina es vieja, ahí es cuando existe la probabilidad de encontrar Braula
sobre la abeja reina, cuando esto sucede, pueden presentarse varias moscas
2 Un aparato bucal de succión alargado que es típicamente tubular y flexible 3 Insectos que tienen por lo general un único par de alas funcionales (par anterior) y el par posterior reducido a pequeñas estructuras nudosas y partes de la boca adaptadas para succionar o perforación.
15
de Braula sobre una sola reina, disminuyendo la disponibilidad de alimento
y a su vez alterando la postura de la reina.
Este díptero no daña o parasita ningún estadio del ciclo de vida de Apis
mellifera. Actúa como comensal de las abejas (Gráfico 4) (Martínez, 2003)
Ubicación.
Esta mosca se encuentra comúnmente en varias áreas del mundo, se presenta
en todos los continentes. La mosca adulta de Braula no se considera una
grave amenaza para la apicultura comercial (Doug, 2007)
Ciclo de vida.
Doug (2007) anota que estos huevos son muy pequeños, los que son
depositados en muchos sitios: celdas vacías, celdas de cría operculadas, en
los restos de cera presentes en el fondo del tablero y en panales de
almacenamiento de miel. Únicamente los huevos depositados en los panales
de almacenamiento son aquellos que eclosionan.
Gráfico 4.- Braula adulta, Harold Ayton, Primefacts, Agosto 2007.
16
Etapas de desarrollo de Braula
Huevos: miden 0.84mm de largo y 0.42mm de ancho; eclosionan
aproximadamente en 2 a 7 días, dependiendo de la temperatura.
Etapa larval: 7 a 11 días; generan túneles bajo las celdas operculadas,
de aproximadamente 1mm de ancho, dando un aspecto de panal
fracturado, lo que es determinante en presencia de Braula en una
colonia (Gráfico 5)
Etapa de pupa: 1 a 3 días; la pupa es de color blanco cremoso, que
mide de 1.4 a 1.7 mm de largo y 0.5 a 0.75mm de ancho.
El desarrollo de huevo a parásito adulto es de 10 a 23 días; este tiempo
depende de la temperatura (época del año) y, presuntamente, de la
disponibilidad de miel en los panales de almacenamiento de la colmena
(Doug, 2007) Braula coeca inverna en las colmenas (Martínez, 2003)
Gráfico 5.- Evidencia de larvas de Braula, Nick Annand, Primefacts, Agosto
2007.
17
VARROOSIS (Varroa destructor)
La varroosis es una enfermedad parasitaria grave causada por el ácaro
Varroa destructor , ectoparásito hematófago4 de las abejas adultas y de sus
crías, el cual puede llegar a ocasionar el colapso y la muerte de las colmenas
(Bruno, 2003). Es una de las enfermedades más graves de Apis mellifera.
El ácaro Varroa destructor, anteriormente descrito como jacobsoni (1904),
fue descubierto en la Isla de Java en la especie Apis cerana, estudios
recientes demuestran que el ácaro Varroa, causante de los graves daños en
la apicultura occidental de Apis mellifera, difiere genéticamente de su
progenitor, Varroa jacobsoni, denominando a esta nueva especie Varroa
destructor por Anderson y Trueman en el año 2000.
Varroa es bastante grande en comparación con otras especies de ácaros y
puede ser visto a simple vista sobre las abejas adultas; este parásito exhibe
un dimorfismo5 sexual, es decir las hembras y machos difieren en forma y
tamaño. Las hembras adultas miden 1.1 mm de largo y 1.6 mm de ancho, un
peso aproximadamente de 0.14mg y presentan un color marrón a rojizo
(siendo más oscuras cuando son adultas). Los machos adultos son mucho
más pequeños, presentan forma ovoide y un diámetro aproximado de 0.5
mm de diámetro; éstos muestran un color blanquecino cremoso, diferente a
las hembras adultas. (Ritter, 2014)
Las colonias de Apis mellifera infestadas de ácaros sufren directamente del
parasitismo (larvas y abejas adultas) e indirectamente de patógenos virales
y microbianos que ingresan al organismo de la abeja , ya que el ácaro actúa
como vector. La alimentación de los ácaros induce una inmunosupresión en
las abejas que conduce a un aumento de los títulos de las infecciones
preexistentes, lo que agrava aún más su impacto. El costo económico de
Varroa destructor en la apicultura es muy alto; se estiman pérdidas de
4 Del animal que se alimenta de sangre. 5 Fenómeno en que se dan dos formas distintas en su morfología externa en una determinada especie.
18
millones de dólares por año, y los agentes de control químico usados para
controlar la enfermedad son preocupantes, tanto por sus efectos colaterales
en la salud de las abejas y la posibilidad de contaminación de la miel (Evans
et al., 2010)
Ubicación.
Esta enfermedad se encuentra prácticamente en todo el mundo; es una
enfermedad de notificación inmediata a la Organización Mundial de
Sanidad Animal (OIE).
Se reportó por primera vez esta enfermedad en la década de los años sesenta
atacando a Apis mellifera; su dispersión al resto del mundo se produjo de
manera acelerada: Asia, Europa, norte de África, Oriente medio, América,
debido a la movilización de colmenas, migración natural de enjambres y la
introducción de abejas reinas (SAGARPA, 2014)
Ciclo de vida.
Varroa destructor, antes jacobsoni, se reproduce exclusivamente en las
celdas de cría, tanto de obreras como de zánganos, teniendo predilección
por estos últimos. Este parásito tiene dos períodos: forético, durante el que
se alimenta de la hemolinfa de la abeja adulta y, reproductivo, dentro de la
celda de cría.
La hembra fecundada de Varroa, se desprende de la abeja adulta para caer
dentro de las celdas de cría, antes de que las celdas sean operculadas, siendo
este el quinto estadio de desarrollo larval, 15 horas antes de ser operculadas
en celdas de obreras, y 45 horas antes de ser operculadas en celdas de
zánganos.
Aquí la hembra fecunda permanece inactiva e inmóvil hasta que inicia la
fase de pupa, en lo que la Varroa empieza a desovar6; aproximadamente,
una hembra fecunda puede dar en promedio 6 huevos; el primero que pondrá
6 Soltar sus huevos las hembras de los peces, anfibios e insectos.
19
luego de 60-70 horas será macho y el resto serán hembras, en intervalos de
30 horas por cada desove (Bruno, 2003)
Cuando la celda es infestada con una sola Varroa fecunda, el apareamiento
solo puede ocurrir entre el macho y sus hermanas, siendo entonces,
consanguíneo. El macho se aparea con la primera hembra tan pronto como
llega a la fase adulta (5.5 a 6 días en el macho y 7.5 a 8 días en la hembra).
Las hembras Varroa solo pueden ser fecundadas en el interior de la celda
donde nacen, nunca en el exterior. Una vez que las abejas adultas emergen
de las celdas, el ciclo se repite dentro de 4 a 5 días (Vandame, 2000 & Bruno
,2003)
FASE I: Post Apareamiento – Alimentación sobre abejas adultas.
FASE II: Penetración en el alimento larval e inactivación.
FASE III: Reactivación de la alimentación y oviposición de los primeros huevos.
FASE IV: Oviposición de últimos huevos y embriogénesis.
FASE V: Maduración y apareamiento.
Gráfico 6.- Ciclo de vida de Varroa jacobsoni en celdas de abejas obreras,
Williams, Ramírez y Gard Otis, (2003)
Las hembras de Varroa destructor tienen una preferencia para las abejas
nodrizas, más susceptibles de acercarse a la cría. Los demás Varroas,
20
foréticas de abejas cosechadoras, constituyen el factor principal de la
diseminación de la especie, ya que aprovechan la deriva de las cosechadoras
y del pillaje para invadir nuevas colmenas. De esta manera, durante un día
de gran actividad, hasta 70 Varroas por día pueden llegar a una nueva
colmena (Vandame, 2000)
21
CAPITULO III
METODOLOGÌA
Ubicación de la zona de estudio.
Tabla 2.- Ubicación del estudio en las provincias de Loja, El Oro y Zamora
Chinchipe.
Provincia Cantón Parroquia
El Oro
Zaruma
Zaruma
Sinsao
Arcapamba
Roma
Piñas
Capiro
Moromoro
San Roque
Piñas
Machala Machala
Loja
Loja
Valle Carigan
Jimbilla
Malacatos
San Sebastian
El Valle
Chantaco
Chuquiriba
Vilcabamba
Sucre
La Banda
El Cisne
Chuuiribamba
Paja Blanca
El Valle- Chinguilanchi
El Valle-Virgenpamba
Gonzanamá
Changainina
Purunuma
Gonzanamá
Catamayo El tambo
Catamayo
22
Chaguarpamba
Chaguarpamba
Santa Rufina
Buena Vista
Puyango
El Arenal
El Limo
Alamor
Macará Macará
Sabiango
Sozoranga Sozoranga
Saraguro Saraguro
Tenta
Quilanga Quilanga,
Fundochamba
Paltas
San Antonio
San José
Santa Marianita
San Isidro
San Antonio Santo Domingo
Espíndola Santa Teresita
Amaluza
Zapotillo
Garza Real
Zapotillo
Bolaspamba
Celica Cruzpamba
San Jose El Ramal
Zamora
Chinchipe
Zamora Cumbaratza
Palanda Palanda
Valladolid
El Pangui El Pangui
El Guismi
Yanzatza
Yanzatza
Chicaña
Los Encuentros
Elaboración: La autora
23
Materiales y métodos.
Materiales físicos.
Frascos de vidrio de 500ml, con su respectiva tapa.
Cajas desechables de espuma flex para transporte.
Gel refrigerante.
Pinza de disección.
Indumentaria de apicultura (Overol, botas, guantes, velo).
Materiales químicos.
Alcohol al 70%. Marca: LINUS. Lote: 1155.
Animales.
Abejas nodrizas.
Suministros de oficina.
Marcadores permanentes.
Formulario de vigilancia activa de AGROCALIDAD (Anexo 1)
Orden de trabajo de AGROCALIDAD (Anexo 2)
Libreta de campo.
Esferográficos.
Computadora portátil.
Equipos.
Autoclave. Marca: JISICO; Mod: MRC STE V-60 JNASG2.
24
Estereomicroscopio. Marca: KRÜSS Mod: optronic 1350010619.
Sistema de colador doble (Tamiz N°35 y Tamiz N°4, ambas con
malla de acero inoxidable). Artesanal.
Ahumador artesanal.
Palanca artesanal.
Otros.
Transporte.
Internet.
Telefonía pagada.
Tipo de investigación.
Este proyecto fue una investigación que determinó la prevalencia de la
enfermedad por medio de una muestra poblacional, en un tiempo
determinado; no existió manipulación de las variables y el estudio abarco
un periodo de cuatro meses; es decir, fue una investigación transversal- no
experimental, cuantitativa- observacional.
Diseño de la investigación.
Este proyecto se elaboró con un diseño transversal descriptivo, con
posterior análisis epidemiológico, tanto de la población como de los
factores predisponentes a su presentación.
Operacionalización de las variables
Variable Independiente: Apis mellifera
Tabla 3.- Variable independiente
Elaboración: La autora.
Observación directa.
Tabla 3.- Variable Independiente
Apis
mellifera .Morfometría
Largo del ala.Longitud de las alas
de 8.0-9.7 mm
Observación directa con
esteroescopio.
Índice cubital.
Índice cubital
normal en Apis
mellifera es de 1.75
A/B
Observación directa con
esteroescopio.
Tomento.
Elaborado: La Autora
Tomento se
encuentra en
terguito 3 y 5.
Observación directa con
esteroescopio.
Colmena. Panales en cavidad.
Variable dependiente: parásitos externos (Varroa destructor, Braula coeca, Aethina tumida, Tropilaelaps clareae)
Tabla 4.- Variable dependiente
Elaboración: La Autora.
Categoría
Presencia o ausencia
deVarroasis
Presencia o ausencia
del piojo de las abejas.
Presencia o ausencia de
PEC.
Determinar la presencia o no
de: Varrosis, Piojo de las
abejas, Tropilaelapsosis y
PEC en las muestras
obtenidas de las provincias
de Loja, El Oro y Zamora
Chinchipe por medio de
pruebas diagnósticas
específicas para cada
enfermedad..
Presencia o ausencia de
Tropilaelapsosis.Tropilaelaps clareae
Diagnóstico precoz del ácaro
Tropilaelaps clareae en cuanto
se conozca su existencia.
Dx diferencial con Varroa
destructor , si existe su
presencia.
Pequeño escarabajo de la colmena.
Presencia de Aethina tumida, en
colmena afectada se detecta un
fuerte olor a miel fermentada.
Las formas adultas y larvas de
Aethina tumida son fáciles de
ver en los panales y en el fondo
de la colmena afectada.
Braula coeca.Presencia de Braula coeca en el
cuerpo de la abeja.
Tx varroosis, Braula coeca
mueren.
Concepto Indicador Valoración. Técnica
Varroa destructor.
(fase forética)
Presencia de Varroa destructor ,
filtración del contenido, prueba
de frasco (Alcohol 70%).
Conteo ácaros - abejas.
Unidades de muestreo.
El muestreo fue aleatorio simple por conglomerados; nuestra población
estudiada se encuentra dividida, de manera natural, en grupos que contienen
toda la variabilidad, Se obtuvieron muestras al azar, para evitar sesgo en los
resultados. Por medio del programa epidemiológico veterinario AusVet se
determinó el tamaño de la muestra de cada provincia, empleando los datos
de entrada, descritos en la tabla 5.
Tabla 5.- Tamaño de la muestra para determinar prevalencia verdadera en Loja
Fuente: AusVet 2015
Tabla 6.- Apiarios muestreados, PRONASA 2014.
Elaboración: La autora
Se determinó que el tamaño de la muestra era del 25% de la población total
de cada provincia, tomando en cuenta una especificidad del 90% y una
sensibilidad del 85%; estos valores fueron determinados por medio de
pruebas de campo, procesadas en Dirección de diagnóstico animal para la
elaboración del Programa Nacional Sanitario Apícola por medio de pruebas
de campo, realizadas en estudio de vigilancia pasiva. Los cálculos
El Oro 18 5
Loja 183 46
Zamora Chinchipe 31 8
Fuente: La autora
Provincia.
Muestras de colmenas
Apiarios
existentes.
Apiarios a
muestrear.
Tabla 4.- Apiarios a muestrear, PRONASA 2014
28
estuvieron bajo la supervisión del Dr. Epidemiologo Manuel Sanchez, del
programa PANAFTOSA.
Método.
Vandame (2010) anota que existen tres tipos de pruebas para determinar la
presencia de Varroa en Apis mellifera.
Colocando una lámina grasosa de aluminio en la piquera, si existen
10 Varroa o más, se considera positivo.
La prueba de frasco, si existe 5% de Varroa o más en abejas adultas,
se determina como positivo (fase forética)
Tomando una muestra de panal de cría, si al desopercular existe 10%
de Varroa o más, se determina como positivo (fase reproductiva)
Para esta investigación se optó por la prueba de frasco, que permitió el
estudio de las 4 enfermedades mencionadas.
Gráfico 7.- Prueba de frasco, Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria,
Argentina (2013)
29
Toma de muestras
De cada explotación apícola, se procedió a tomar 5 muestras de abejas
nodrizas, en frascos previamente lavados y esterilizados en autoclave. En
cada apiario se llenó un formulario de vigilancia activa, para determinar la
presencia o ausencia de las enfermedades exóticas producidas por los
parásitos Tropilaelaps clareae y Aethina tumida, así como la orden de
trabajo para los estudios requeridos. Todas las muestras se enviaron
etiquetadas y con sus órdenes requeridas, al laboratorio de Sanidad Animal
de Agrocalidad, en Tumbaco.
Para la toma de la muestra, se ubicó el marco de manera vertical y se acercó
el frasco desde la parte superior y se procedió a bajarlo hasta la parte
inferior; esto se hizo en seis caras de los bastidores o tres marcos, con la
condición que tenga la cría abierta; para evitar que las abejas escaparan, se
creó una vibración por agitación en los frascos. Aproximadamente, se
recolectaron 300 abejas en cada frasco, al que posteriormente se añadió
alcohol al 70%; esto permitió que los parásitos se desprendieran de las
abejas.
Procesamiento de la muestra
Las muestras se identificaron con las siglas MNAB-#, que corresponde al
muestreo nacional de abejas y el número, indica el orden de ingreso a la
base de datos de Agrocalidad. Cada apiario tuvo 5 muestras tomadas al azar
de las distintas colmenas.
Se receptó, en el laboratorio de Sanidad Animal de Agrocalidad, las 230
muestras de la provincia de Loja y 25 muestras de la provincia de El Oro,
anotando que el estudio no se pudo efectuar en la provincia de Zamora
Chinchipe, puesto que las condiciones climáticas no permitieron ingresar a
los apiarios para la toma de muestras, en el periodo de estudio (Anexo 3)
CAPITULO IV
RESULTADOS Y DISCUSIÓN.
Resultados
Tabla 7 .- Resultados de prevalencia de Varroa destructor, en fase forética, por
apiario y por colmenas (muestras), en las provincias de Loja y El Oro, en Apis
mellífera.
Provincia
Apiarios Colmenas (Muestras)
Total
Positivos
≥ 5 %
Negativos
< 5 % Total
Positivos
≥ 5 %
Negativos
< 5 %
Nº % Nº % Nº % Nº %
Loja 46 33 71,34 13 28,66 230 78 33,61 152 66,39
El Oro 5 4 80 1 20 25 6 24 19 76
1. Según De Jong (1984)
Fuente y Elaboración: La autora.
Provincia de Loja.
Se determinó la presencia de Varroa destructor en un 99,13% (228/230) de
las muestras obteniéndose un porcentaje de infestación por apiarios del
71,34% (33/46) y con una tasa de prevalencia del parásito por colmenas del
33,61% (78/230 muestras). Los resultados para los ectoparásitos Braula
coeca, Aethina tumida y Tropilaelaps claerae fueron negativos (0/230
muestras).
Provincia de El Oro.
Se determinó la presencia de Varroa destructor en un 100% (25/25) de las
muestras, con un porcentaje de infestación por apiarios del 80% (4/5
apiarios) y una tasa de prevalencia del parásito de 24% (6/25 muestras). Los
resultados para los ectoparásitos Braula coeca, Aethina tumida y
Tropilaelaps claerae fueron negativos (0/25 muestras)
La datos recolectados, por medio de la encuesta epidemiológica, fueron
tabulados e introducidos en el programa estadístico InfoStat, para un estudio
estadístico no paramétrico (Chi cuadrado), para determinar la asociación de
31
las variables para la presentación de la enfermedad que, en las provincias
investigadas, la asociación demostró, que los apiarios positivos a Varroa
destructor fueron por: la falta de bioseguridad (5%), el poseer otros apiarios
(10%), la edad promedio del apiario (2%) y la época de la toma de muestras
(13%).
Tabla 8.- Resultados de la encuesta de variables asociadas a la presentación del
parásito Varroa destructor en apiarios de Loja y El Oro.
Pre
sen
cia
o A
use
nci
a d
el P
ará
sito
Encuesta epidemiológica.
Asociación
Resultados
Bio
seg
uri
da
d
Otr
os
pre
dio
s
Vec
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An
teced
ente
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En
f. D
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no
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Mo
vim
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to
Ed
ad
pro
med
io
Ép
oca
Apiarios Positivos (37) 22 42 2 0 0 0 9 51
Apiarios Negativos (14) 29 9 49 51 51 51 42 0
Apiarios Total (51) 51
Elaboración: La autora.
Tabla 9.- Resultado de Chi- Cuadrado para la asociación de variables.
Estadístico Valor gl p
Chi Cuadrado Pearson 270,94 7 <0,0001
Chi Cuadrado MV-G2 322,74 7 <0,0001
Coef.Conting.Cramer 0,58
Coef.Conting.Pearson 0,63
H0: La presentación de la enfermedad no difiere cuando existe o no las
variables de asociación.
H1: La presentación de la enfermedad difiere cuando existe o no las variables
de asociación.
32
Gráfico 8.- Asociación de variables con la presencia del parásito Varroa
destructor en la región sur del Ecuador.
La geo-referenciación de los apiarios nos permitió elaborar un mapa
epidemiológico de las provincias estudiadas por medio del programa
ArcGIS, que asocia: la altitud, pluviosidad (precipitación media de mm3
anuales) y la cercanía a las áreas protegidas de la región sur con la presencia
de Varroa destructor (Anexos 4 y 5)
0
2
4
6
8
10
12
14
Positivos (37) Negativos (14)
Variables
% d
e A
soci
ació
n
Discusión.
El Chi cuadrado indica que la presentación de la enfermedad difiere cuando
existen o no las variables de asociación (α0.05<P=0,0001). En el presente
trabajo no está ligada de manera concreta a los factores de riesgo
(bioseguridad, predios vecinos, edad, etc.) , aunque los apiarios se presenten
positivos al parásito (Varroa destructor)
Las zonas de mayor prevalencia del parásito Varroa destructor en fase
forética de nuestras provincias de estudio, estuvieron ligadas a la cercanía
del patrimonio de áreas naturales del estado (PANE), apiarios que se
encuentran situados a una altitud aproximada de: 2211,11 - 2633,33 msnm
y los que se encuentran situados en zonas de pluviosidad de 500 -1250 mm3/
anuales.
Además, existió una asociación con las deficientes prácticas de
bioseguridad y la cercanía de apiarios vecinos que contribuyeron a la
propagación del parásito. De acuerdo a los resultados obtenidos, se sugiere
como causas para el desencadenamiento de la enfermedad, el movimiento
de colmenas de un propietario, as, como las prácticas apícolas deficientes
de control de enfermedades existentes.
Loja y El Oro presentan muchos microclimas, que se pudieron constatar el
momento del muestreo; esto sugiere que el parásito no está condicionado a
un patrón homogéneo de componentes climáticos (altitud, temperatura,
humedad, pluviosidad, etc.) para su presentación, pero sí que los factores
climáticos están asociados a la susceptibilidad de los apiarios al parásito y,
a su vez, que el manejo de colmenas es muy importante para evitar la
entrada de aquel a los apiarios.
El estudio realizado en Colombia por Salamanca & Rodríguez (2013),
señala que el estrés térmico de alguna manera, genera susceptibilidad a las
34
infestaciones de Varroa en ambientes fríos, hecho que puede variar
dependiendo del entorno climático, el tamaño y fortaleza de las colonias.
En la investigación de la despoblación de colmenas del INIA en Uruguay
(2013), se determinó que las condiciones climáticas extremas, además de
afectar severamente la productividad de las colmenas por su incidencia en
las floraciones, influyen significativamente en el estado sanitario de las
mismas; a mayor temperatura y menor presión atmosférica existe mayor
nivel de infestación de Varroa destructor.
Los niveles de infestación dominantes de Varroa destructor en Colombia,
son concomitantes con el entorno térmico, las cotas altitudinales y los
niveles de precipitación asociados a las zonas de vida. El clima frío,
favorece la proliferación y actividad de Varroa sobre ecotipos de híbridos
europeos. En entornos climáticos fríos son afectadas las colonias de abejas
débiles, con mayor presencia de ácaros de Varroa destructor en su estado
forético (Salamanca & Rodríguez, 2013)
Pérez (2008) anota que existe relación entre los factores climatológicos
(temperatura, precipitaciones y humedad relativa) y los índices de
infestación por Varroa en abejas Apis mellifera.
PRONASA (2015) de Ecuador señala la presencia de las enfermedades
apícolas a nivel nacional, existiendo además presencia de Braula coeca
únicamente en las provincias del Carchi y Pichincha. (Anexo 7) y en
ninguna provincia Tropilaelaps claerae y Aethina tumida.
Hinojosa & González (2004) indican en su estudio que Braula coeca sólo
fue aislado en dos muestras, correspondientes a verano de 2000, lo que
resulta en una prevalencia de 1,4 ± 1,7% (total de 1.418 muestras), resultado
35
insuficiente para realizar comparaciones estadísticas entre estaciones o
colmenas.
El desarrollo del parásito (Braula coeca) está ligado directamente con la
temperatura y la época anual, lo que nos sugiere la razón de no encontrar a
este ectoparásito en nuestro muestreo realizado en época lluviosa.
SENASA (2004) Realizó la inspección clínica exhaustiva de 7.020
colmenas en 390 apiarios de la provincia de Buenos Aires, las que no
presentaron signos clínicos compatibles con las plagas bajo estudio. Los
resultados del muestreo permiten confirmar la ausencia de Tropilaelaps spp.
y Aethina tumida.
CAPÍTULO V
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES.
Conclusiones.
En las condiciones en que se realizó este trabajo, se establecieron las
siguientes conclusiones:
En las provincias de Loja y El Oro existe la presencia de Varroa
destructor.
En las dos provincias no existe Tropilaelaps claerae y Aethina
tumida, por lo que se clasifican como enfermedades exóticas. De
igual manera, no existe Braula coeca, supuestamente porque el
parásito inverna y requiere de una temperatura de 34.5 ± 5 oC, para
su desarrollo de huevo a parásito.
La presencia del parásito Varroa destructor está asociada a los
componentes climáticos de mayor altitud, pluviosidad anual
moderada de la zona de estudio y a la cercanía de los bosques
protegidos de la región sur del Ecuador.
37
Recomendaciones.
Aplicación de todas las buenas prácticas de manejo apícolas,
señaladas en la reglamentación respectiva para evitar la difusión de
los parásitos.
Se sugiere estudios posteriores para la determinación de la incidencia
de Varroa destructor en la región sur del Ecuador, en las que se
incluya mayor información en la encuesta epidemiológica.
38
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS.
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39
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6481
40
GLOSARIO
APIARIO.- Conjunto de colmenas ubicadas en un sitio determinado.
COLMENA.- Lugar donde habitan las abejas.
COLONIA.- Comunidad de abejas viviendo en estrecha asociación y
contribuyendo con sus trabajos a su mutua supervivencia.
CRIA.- Son los huevos, larvas y pupas de la abeja mellífera.
ECLOSIÓN.- Acción que hacen las abejas para salir de su celda, rompiendo
con sus mandíbulas, el opérculo que cubre su celda.
HÍBRIDOS.- Descendiente del cruce entre razas, variedades, estirpes o
líneas de la misma raza.
INFESTACIÓN.- A la invasión de un organismo vivo por agentes
parásitos externos o internos.
JALEA REAL.- Sustancia secretada por las glándulas hipofaríngeas de las
abejas nodrizas, sirve como alimento de las larvas durante los tres primeros días de
desarrollo y durante toda la vida de la reina.
OPERCULO.- Capa de cera con que las abejas cubren su miel y sus ninfas.
PRESENCIA.- Existencia de algo en un lugar o momento determinados.
PREVALENCIA.- Es la proporción de individuos de una población que
presentan el evento en un momento, o periodo de tiempo, determinado.
PIQUERA.- Espacio por el que salen y entran las abejas a su colmena.
41
ANEXOS.
Anexo 1.- Formulario de Vigilancia Activa, AGROCALIDAD (2015)
1. Provincia : 2. Cantón: 3. Parroquia:
4. Si tio o vía : 5. Huso: Coordenadas UTM:
6. Oficina AGROCALIDAD: 7. N° Orden:
1. Propietario: 8. Especie:
2. Cédula de Identidad: 9. Tipo de explotación:
3. Teléfono/celular: 10. ¿Cuántos predios vecinos exis ten?
4. Nombre de la explotación: 11. ¿Exis ten antecedentes de enfermedadesde abejas en la zona?
5. Extens ión del predio: Unidad12. ¿Se han presentado enfermedades desconocidas
6. ¿Tiene medidas de bioseguridad? a las antes indicadas ?
7. ¿El propietario tiene otros predios? 13. Indique la enfermedad:
1. Población de la explotación :
3. Movimiento de Colmenas y/o Colmenares :
ProvinciaCantónParroquiaEspeciePropietario
1.Prueba sol ici tada: 2.Laboratorio:
3.Número de muestras : 4.Tipo de muestras :
5.Fecha de colecta: 6.Fecha de envío:
VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA
YX
Egreso de colmenas/vehicul izantes
SANIDAD ANIMAL TUMBACO% IV,TIN, DELA
D. COLECTA DE MUESTRAS
Colm de tres pisos
Tota l 0 0 0 0
Co
lmen
as
Colm de un piso
Babies núcleos
Fecha
Colm de dos pisos
Ingreso de colmenas/vehicul izantes
AGENCIA DE ASEGURAMIENTO DE LA CALIDAD DEL AGRO - AGROCALIDAD
FORMULARIO PARA VIGILANCIA ACTIVA
TAMAÑO DE LA COLMENAEXISTENTES
VIVASENFERMOS
MUERTOS
NA
TUR
AL
A. UBICACIÓN Y DATOS GENERALES
B. IDENTIFICACIÓN DE LA EXPLOTACIÓN
SAC
RIF
ICA
DO
APIS MELLIFERA
OBSERVACIONES
C. POBLACIÓN DE LA EXPLOTACION Y ÚLTIMOS FLUJOS DE COLMENAS
Núcleos
Colm de mas de tres pisos
ABEJAS - LARVAS DE ABEJAS
ESTUDIO DE VIGILANCIA ACTIVA EN EXPLOTACIONES APICOLAS
42
BA
BIE
S N
UC
LE
OS
NU
CLE
OS
CO
L D
E U
N P
ISO
CO
L D
E D
OS
PIS
OS
CO
L D
E T
RE
S P
ISO
S
CO
L D
E M
AS
DE
TR
ES
PIS
OS
123456789
1011121314151617181920
¿Las colmenas han recibido a lguna clase de fármacos en las úl timas semanas? (deta l le a continuación)
Dosis fecha Inicio fecha Finalización
Cuadro Sintomatológico
Nombre Firma
No
Nombre (principio activo)
EP
OC
A D
EL A
ÑO
Descripción Sintomatología (escoja la
opción; se puede escoger hasta 3 signos
o síntomas, en caso de no encontrarse en
la lista digitar)
F. OBSERVACIONES
Categoría
Duración FinalidadTerapeútica
E. PROCEDIMIENTOS TERAPEÚTICOS
Profiláctica
(Adjuntar hojas extra con información sobre vacunaciones en caso de ser necesario)
ID. Colmenas
muestreadasEdad
G. RESPONSABLE AGROCALIDAD
UN
IDA
D
43
Anexo 2.- Orden de trabajo, AGROCALIDAD (2015)
44
45
Anexo 3.- Informe técnico sobre el cumplimiento de actividad del PAPP
sobre muestreo en apiarios de la provincia, AGROCALIDAD (2015)
46
47
48
49
Anexo 4.- Mapa Epidemiológico 3D – Identificación de Varroa
destructor, en las provincias de Loja y El Oro (2015).
50
Anexo 5.- Mapa Epidemiológico- Isoyetas – Identificación de Varroa
destructor, en las provincias de Loja y El Oro (2015).
51
Anexo 6.- Mapa Epidemiológico – Identificación de Tropilaelaps claerae,
Aethina tumida, Braula coeca en las provincias de Loja y El Oro (2015).
52
Anexo 7.- Identificación de Braula coeca, en muestras de colmenas de las
provincias de Carchi y Pichincha, AGROCALIDAD (2015).
Anexo 8.- Resultados de la prueba de frasco para la identificación de Varroa destructor, en las provincias de Loja y El Oro,
AGROCALIDAD (2015).
Loja
Apiario Muestra % Apiario Muestra % Apiario Muestra %
MNAB-51 (HUAJALANCHE)
12312 1,62
MNAB-76 (LA DELICIA)
12672 7,98
MNAB-134 (EL GUABO)
13497 0,94
12313 1,10 12673 1,35 13498 2,02
12314 2,43 12674 2,67 13499 1,34
12315 0,99 12675 2,72 13500 1,46
12316 1,91 12676 3,54 13501 2,66
Apiario Muestra % Apiario Muestra % Apiario Muestra %
MNAB-52 (MILAGROS)
12327 5,98
MNAB-77 (TANIJAL)
12687 0,00
MNAB-135 (CHUQUIRIBAMBA)
13512 11,11
12328 1,31 12688 8,06 13513 0,00
12329 2,31 12689 0,00 13514 1,95
12330 5,44 12690 5,13 13515 0,00
12331 1,34 12691 10,85 13516 0,67
Apiario Muestra % Apiario Muestra % Apiario Muestra %
MNAB-53 (CRUZPAMBA-
FAIQUE)
12342 2,45
MNAB-78 (NANGORA)
12702 4,76
MNAB-136 (SAÑI)
13527 2,83
12343 2,39 12703 21,17 13528 1,02
12344 3,95 12704 2,78 13529 5,41
12345 4,59 12705 6,96 13530 4,93
12346 3,09 12706 5,15 13531 4,64
54
Apiario Muestra % Apiario Muestra % Apiario Muestra %
MNAB-54 (CRUZPAMBA)
12357 1,58
MNAB-79 (SACAPO)
12717 2,01
MNAB-137 (EL CHAUPI)
13542 2,67
12358 5,17 12718 1,97 13543 3,59
12359 4,30 12719 5,40 13544 10,08
12360 1,62 12720 10,62 13545 6,28
12361 8,12 12721 1,68 13546 3,44
Apiario Muestra % Apiario Muestra % Apiario Muestra %
MNAB-55 (BOCASPAMBA)
12372 3,77
MNAB-80 (LA CRUZ)
12732 7,50
MNAB-138 (EL PALMAR)
13572 5,96
12373 4,68 12733 12,37 13573 16,05
12374 2,44 12734 5,42 13574 4,96
12375 1,29 12735 2,55 13575 5,04
12376 4,90 12736 3,40 13576 2,64
Apiario Muestra % Apiario Muestra % Apiario Muestra %
MNAB-67 (COFRADIA)
12537 1,42
MNAB-81 (CALASANZ)
12747 1,47
MNAB-139 (CACHACO 2)
13572 5,96
12538 0,87 12748 1,63 13573 16,05
12539 3,33 12749 0,97 13574 4,96
12540 7,66 12750 1,31 13575 5,04
12541 1,80 12751 2,37 13576 2,64
Apiario Muestra % Apiario Muestra % Apiario Muestra %
MNAB-68 (BELLA
ESPERANZA)
12552 4,35
MNAB-82 (CUINUMA)
12762 3,55
MNAB-140 (CHANTACO)
13587 4,14
1253 2,46 12763 3,33 13588 3,72
12554 3,62 12764 1,62 13589 4,19
12555 1,62 12765 0,86 13590 2,80
12556 3,55 12766 1,03 13591 3,20
55
Apiario Muestra % Apiario Muestra % Apiario Muestra %
MNAB-69 (APILOJA)
12567 2,04
MNAB-83 (JOSÉ SANCHÉZ)
12777 0,00
MNAB-141 (SAN PEDRO VILCABAMBA)
13602 2,31
12568 7,67 12778 0,58 13603 3,33
12569 1,67 12779 1,57 13604 11,63
12570 2,69 12780 5,00 13605 6,45
12571 1,99 12781 1,50 13606 3,33
Apiario Muestra % Apiario Muestra % Apiario Muestra %
MNAB-70 (PARQUE
UNIVERSITARIO)
12582 4,04
MNAB-84 (CRUZ DEL HUATO)
12792 0,76
MNAB-142 (CHANTACO)
13617 1,47
12583 0,76 12793 1,09 13618 2,42
12584 2,82 12794 2,63 13619 1,05
12585 3,55 12795 7,02 13620 7,43
12586 1,80 12796 0,00 13621 0,00
Apiario Muestra % Apiario Muestra %
MNAB-143 (SAN PEDRO
VILCABAMBA)
13632 9,45
MNAB-145 (SAN PEDRO VILCABAMBA)
13662 3,88
13633 14,29 13663 2,27
13634 9,22 13664 5,14
13635 12,5 13665 1,96
13636 10,53 13666 3,1
Apiario Muestra % Apiario Muestra %
MNAB-144 (CHANTACO)
13647 5,81
MNAB-146 (CACHACO)
13677 2,65
13648 7,76 13678 10,85
13649 8,95 13679 2,43
13650 5,38 13680 7,77
13651 4,24 13681 4,01
El Oro
Apiario Muestra %
MNAB-107 (VICTOR HUGO ROMERO)
13112 2,00
13113 3,60
13114 7,90
13115 2,00
13116 2,90
Apiario Muestra %
MNAB-147 (CARLOS VIVAR)
13697 2,57
13698 2,49
13699 3,29
13700 1,38
13701 5,45
Apiario Muestra %
MNAB-148 (WALTER CORREA)
13712 1,40
13713 1,00
13714 2,10
13715 2,40
13716 1,00
Apiario Muestra %
MNAB-149 (MANUEL SANCHÉZ)
13727 0,76
13728 6,58
13729 5,36
13730 9,75
13731 1,95
Apiario Muestra %
MNAB-150 (RICARDO CHAVEZ)
13742 2,89
13743 5,63
13744 3,53
13745 4,89
13746 1,50
57
Anexo 9.- Observación macroscópica en el estereomicroscopio de la
diferencia entre Varroa destructor (ácaro) y Braula coeca (díptero),
AGROCALIDAD (2015).
58
Anexo 10.- Observación macroscópica en el estereomicroscopio de
Varroa destructor,en muestras de Loja y El Oro, AGROCALIDAD (2015).
59
Anexo 11.- Observación macroscópica en el estereomicroscopio de Varroa
destructor sobre Apis mellifera, en muestras de Loja y El Oro,
AGROCALIDAD (2015).
60
Anexo 12.- Prueba de frasco, según De Jong (1984), AGROCALIDAD
(2015).
Muestras de Apiario HUAJALANCHE- Loja.
Doble tamiz.
61
Conteo de abejas del primer tamiz.
Conteo de Varroas del segundo tamiz.
62
Recolección de Varroas en tubo eppendorf.
