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“MONITOREO BACTERIOLÓGICO DE LA SALA DE
OPERACIONES ESTOMATOLÓGICA DE LA CLINICA
DENTAL CAYETANO HEREDIA AÑO 2011”
TESIS PARA OBTENER EL TÍTULO DE CIRUJANO DENTISTA
INÉS AGUIRRE VELA
LIMA – PERÚ
2011
FACULTAD DE ESTOMATOLOGÍA Roberto Beltrán
UNIVERSIDAD PERUANA CAYETANO HEREDIA
2
Dedicatoria
A Dios, porque nada habría sido posible sin Él,
porque gracias a Él aprendí que podemos ser
felices con las miles de oportunidades que nos
ofrece la vida, y a no dejar de serlo por aquellas
que nos hacen falta.
A mis padres, por sus sacrificios, confianza, amor,
y sus constantes esperanzas aun en los momentos
más difíciles, porque gracias a ese “si se puede”
comprendí que si se pudo.
A mis hermanos por su inmenso cariño y apoyo.
A mi papapa porque su cariño se siente con la
misma intensidad a pesar del tiempo y la distancia.
A Patch, Nani y Lana, porque sus ojos me dicen
mucho más de lo que alguien puede hablar.
A Schnappi, porque sigue presente en cada
despertar después de rasgar la puerta cada
mañana.
3
Agradecimientos
En primer lugar agradezco a la Dra. Sonia Sacsaquispe, quien confió en mí
para la elaboración de este trabajo de investigación, apoyándome siempre con
la firmeza y a la vez tolerancia que la caracteriza.
A la Dra. Dora Maurtua Torres, por su ayuda incondicional en todo momento,
porque siempre estuvo dispuesta a aportar de diferentes maneras para que
este trabajo se pudiera realizar de la mejor forma posible.
A las profesoras Ruth Cristóbal Castillo y Patricia Burgos Orejuela por su
paciencia e interés en este trabajo.
A la señora Betty por su optimismo, confianza y alegría, que me brindo en los
momentos en el laboratorio.
Al Dr. Manuel Arrascue, porque estuvo ahí en los momentos más difíciles, por
sus conocimientos a lo largo de la carrera y por significar para mí un ejemplo
de docente, padre y amigo.
Al Dr. Loza Fernández, por su gran ayuda en el momento más difícil de mi
carrera.
A la Dra. Janett Mas, Dra. Bertha Flores, Dr. Freddie Williams y Dr. Jorge
Acosta, por su cariño y porque nunca perdieron la confianza en mí.
A mis amigos de la universidad, en especial a Alejandra Belaunde, Geraldine
Pérez, María Meléndez, Christian Maquiche, Juan Blácido, Enzo Salazar y
Pablo Cermeño por su sincera amistad, porque sin ellos me habría perdido de
un sin número de momentos gratos e inolvidables.
A ellos y a los que no nombro pero no por eso son menos importantes es que
agradezco y dedico este trabajo de investigación.
4
INDICE DE CONTENIDOS
.
Pág.
1. INTRODUCCIÓN 6
2. PLANTEAMIENTO DE LA INVESTIGACION 7
2.1. Planteamiento del Problema 7
2.2. Justificación 7
3. MARCO REFERENCIAL 8
3.1. Infección y transmisión 8
3.2. Bioseguridad en salud 9
3.2.1. Limpieza 9
3.2.2. Desinfección 10
3.2.3. Esterilización 11
3.3. Infecciones nosocomiales y bacterias potencialmente 13
patógenas
3.4. Bacterias frecuentes en áreas clínicas odontológicas 15
3.5. Estudios microbiológicos de superficies quirúrgicas 19
de clínicas odontológicas
4. OBJETIVOS DEL ESTUDIO 20
4.1. Objetivo General 20
5
4.2. Objetivos Específicos 20
5. HIPÓTESIS 21
6. MATERIALES Y MÉTODOS 21
6.1. Diseño del estudio 21
6.2. Muestra 22
6.2.1. Criterios de inclusión 22
6.2.2. Criterios de exclusión 22
6.3. Variables 23
6.4. Técnicas y/o procedimientos 24
6.5. Plan de análisis 29
6.6. Consideraciones éticas 30
6.7. Recursos 30
7. RESULTADOS 33
8. DISCUSION 45
9. CONCLUSIONES 50
10. BIBLIOGRAFIA 51
11. ANEXOS 54
6
1. INTRODUCCIÓN
La infección de origen bacteriana constituye una frecuente complicación en
cirugía. La contaminación de heridas mientras se realiza alguna actividad
quirúrgica es una causa común de infección, por ello con el paso de los años
cada vez se le ha dado mayor importancia y se han tomado una serie de
medidas para reducir su contaminación.
Se han realizado muchos estudios sobre la prevalencia de infecciones
relacionadas al grado de contaminación y número de bacterias nosocomiales
presentes en quirófanos antes de ser realizada alguna actividad quirúrgica; y
los resultados de todas estas investigaciones concuerdan que la mayoría de
clínicas y hospitales tienen un alto nivel de biocontaminación relacionado a
un inadecuado mantenimiento y desinfección del ambiente.
Dado que no hay estudios en nuestro medio acerca de los aspectos
microbiológicos de los ambientes de odontología y siendo tan importante la
bioseguridad en el campo de la salud, y más aun en el quirófano, el
propósito del presente trabajo de investigación es el de determinar que
bacterias son las que tienen mayor prevalencia en superficies del quirófano
de la Clínica Estomatológica Central de la Facultad de Estomatología
Roberto Beltrán de la Universidad Peruana Cayetano Heredia.
7
2. PLANTEAMIENTO DE LA INVESTIGACION
2.1 Planteamiento del Problema
No se conoce si existen microorganismos, como bacterias potencialmente
patógenos, en la Sala de Operaciones de nuestro servicio, por lo que este
estudio tiene como fin determinar la presencia de bacterias
potencialmente patógenas presentes en la Sala de Operaciones
Estomatológica (SOPE) de la Clínica Estomatológica Central de la
Facultad de Estomatología Roberto Beltrán, y así, tener conocimiento
sobre el riesgo que tienen los pacientes que acuden al servicio para
someterse a alguna intervención quirúrgica.
2.2 Justificación
Es de gran importancia hacer un monitoreo bacteriológico en las salas de
operaciones, debido a que las bacterias nosocomiales incrementan la
posibilidad de acumular microorganismos potencialmente patógenos que
pueden comprometer el resultado final del tratamiento odontológico y/u
ocasionar problemas subyacentes tales como infecciones oportunistas.
8
3. MARCO REFERENCIAL
3.1 Infección y transmisión
Se denomina infección a la entrada de microorganismos dentro de los
tejidos, sin producir necesariamente sintomatología o enfermedad; y
transmisión es cualquier mecanismo en virtud del cual un agente
infeccioso se propaga en el ambiente o de una persona a otra. Ésta
puede ser de dos tipos:
- Transmisión directa: Es el traspaso directo e inmediato de un agente
infeccioso a una puerta de entrada receptiva tal como piel, mucosa
oral, mucosa nasal, conjuntivas o mucosas genitales; la cual puede
ocurrir por contacto directo (tocar), proyección directa de gotitas de
sangre, saliva o secreciones (hablar) y exposición al polvo
contaminado (ropas, suelos contaminados).(1)
- Transmisión indirecta: Es la transferencia de un agente infeccioso a
un individuo susceptible a través de: vehículos de transmisión
(objetos), por intermedio de un vector (interviene un insecto),
aerosoles microbianos (los aerosoles son suspensiones aéreas de
partículas constituidas parcial o totalmente por microorganismos). (1)
La infección nosocomial se considera como adquirida en la comunidad si
los signos y síntomas y los cultivos son positivos en las primeras 48 horas
9
de la admisión. La infección es nosocomial si los signos, síntomas y
cultivos son positivos después de las 48 a 72 horas de la admisión. (2)
3.2 Bioseguridad en Salud
Es necesario conocer las diferencias entre los métodos de
descontaminación, debido a que cada uno de ellos se aplica teniendo en
consideración el uso del material, ambiente o actividad médica a realizar;
y es indispensable conocerlas, porque así se pueden prevenir infecciones.
Éstas son:
3.2.1 Limpieza
Es la remoción mecánica de toda materia extraña en el ambiente, en
superficies y en objetos, utilizando para ello el lavado manual o
mecánico. El propósito de la limpieza es disminuir la biocarga (número
de microorganismos) a través del arrastre mecánico. Usualmente se
utiliza agua y detergente para este proceso. (3)
El propósito de la limpieza no es destruir o matar a los
microorganismos que contaminan los objetos, sino de eliminarlos por
arrastre. (1)
10
3.2.2 Desinfección
Se define como el proceso que elimina a los microorganismos
patógenos que se encuentran en objetos inanimados, se efectúa
mediante procedimientos que utilizan principalmente agentes químicos
en estado líquido. El grado de desinfección producido depende de
varios factores, pero esencialmente de la calidad y concentración del
agente microbiano, de la naturaleza de la contaminación de los objetos
y el tiempo de exposición. Algunos agentes de desinfección utilizados a
la concentración indicada y en período no inferior a 30 minutos
producen la destrucción de los microorganismos, con la sola excepción
de las esporas bacterianas resistentes. (1)
Existen tres niveles de desinfección:
- De bajo nivel: Destruye bacterias patógenas en su forma vegetativa y
algunos hongos, no elimina el Mycobacterium tuberculosis ni los virus
de tamaño pequeño no lipídicos. Existen desinfectantes de nivel bajo
que no destruyen las formas vegetativas de todas las bacterias. En
este grupo están los amonios cuaternarios. (3)
- De nivel intermedio: Destruye las formas vegetativas de bacterias,
hongos y virus pero no necesariamente todos los virus de tamaño
pequeño no lipídico. En circunstancias especiales puede eliminar el
M. tuberculosis. Aquí se incluyen los compuestos clorados, los
agentes lofódicos, los alcoholes y los fenoles. (3)
11
- De alto nivel: Destruye todos los microorganismos incluyendo al M.
tuberculosis y a los virus resistentes, pero no lo hace con todas las
esporas bacterianas. Como ejemplo esta el glutaraldehido, el
orthophtaldehido, el peróxido de hidrógeno, el formaldehido y los
productos basados en ácido paracético. (3)
3.2.3 Esterilización
Es el proceso mediante el cual se elimina de los objetos inanimados,
todas las formas vivientes, con ella se logra destruir las formas
vegetativas y esporas de los microorganismos, obteniéndose como
consecuencia la protección antibacteriana de los instrumentos y
materiales. (3)
Constituye la medida esencial para la seguridad y la protección que
demanda la atención de los pacientes. La esterilización se logra a
través de:
- Vapor saturado a presión
- Calor seco
- Mediante algunos agentes químicos en forma líquida o de gas. (1)
Es necesario saber que la limpieza es el procedimiento indispensable a
realizar antes de llevar a cabo la desinfección o esterilización de los
instrumentos. (1)
Existe una clasificación para los instrumentos, equipos y espacios para
su descontaminación, la cual se divide en:
12
− INVASIVOS
Características. Penetran tejidos y producen sangrado.
Descontaminación. Esterilización en autoclave, estufa o descartar. (1)
− NO INVASIVOS
Características. Entran en contacto con mucosas, dentina y esmalte
y no producen sangrado.
Descontaminación. Esterilización o desinfección de alto nivel y nivel
intermedio. (1)
− AMBIENTALES
Características. Solamente entran en contacto con la piel.
Descontaminación. Desinfección de nivel medio y bajo nivel. (1)
En 1997, la Organización Panamericana de la Salud (OPS), publicó que
17 millones de personas a nivel mundial fueron víctimas de infecciones
intrahospitalarias en 1995, como consecuencia de un abandono a los
programas de vigilancia sanitaria y a la reducción de investigaciones
hacia programas sanitarios básicos; además dicha organización alertó
que más de 250,000 niños, menores de 5 años de edad, mueren
anualmente en las Américas, por enfermedades que podrían haber sido
fácilmente prevenidas o tratadas. (4)
13
La Organización Panamericana de la Salud (OPS) y la Organización
Mundial de la Salud (OMS), agencias nacionales e internacionales y
organizaciones no gubernamentales (ONGs) esperaban prevenir 100,000
muertes de niños menores de 5 años de edad (de un promedio anual de
250,000) en las Américas en el 2002, promoviendo el entrenamiento de
profesionales en salud, calidad del sistema de salud requerido para un
efectivo manejo de las enfermedades en niños, familias y prácticas de la
comunidad. (4)
Los esfuerzos de disminuir el riesgo de transmisión de infecciones
incluyen programas en los cuales estas infecciones tienen un rol crucial.
Las superficies de los servicios médicos de los hospitales, la piel del
personal, equipamiento, muebles, y áreas deben de ser desinfectadas
mediante un apropiado agente desinfectante. (4)
3.3 Infecciones nosocomiales y bacterias potencialmente patógenas
Infecciones nosocomiales
Infección contraída en el hospital por un paciente internado por una razón
distinta de esa infección. Una infección que se presenta en un paciente
internado en un hospital o en otro establecimiento de atención de salud en
quien la infección no se había manifestado ni estaba en período de
incubación en el momento del internado, y se manifiestan después del
alta hospitalaria (4)
14
Las infecciones nosocomiales más frecuentes son las de heridas
quirúrgicas, las vías urinarias y las vías respiratorias inferiores. En el
estudio de la OMS y en otros se ha demostrado también que la máxima
prevalencia de infecciones nosocomiales ocurre en unidades de cuidados
intensivos y en pabellones quirúrgicos y ortopédicos de atención de
enfermedades agudas. Las tasas de prevalencia de infección son
mayores en pacientes con mayor vulnerabilidad por causa de edad
avanzada, enfermedad subyacente o quimioterapia. (4)
Bacterias potencialmente patógenas
Las bacterias patógenas son una de las principales causas de las
enfermedades y de la mortalidad humana, causando infecciones tales
como tétanos, fiebre tifoidea, difteria, sífilis, cólera, intoxicaciones
alimentarias, lepra y tuberculosis. Puede ocurrir que, para una
enfermedad médicamente conocida, su causa patogénica se descubra
solamente después de muchos años, como fue el caso de la úlcera
péptica y Helicobacter pylori. Las enfermedades bacterianas son también
importantes en la agricultura y en la ganadería, por ejemplo, el carbunco.
(4)
Cada especie de patógeno tiene un espectro característico de
interacciones con sus huéspedes humanos. Algunos organismos, tales
como los Staphylococcus sp. o Streptococcus sp., pueden causar
infecciones de la piel, pulmonía, meningitis e incluso sepsis, una
15
respuesta inflamatoria sistémica que produce shock, vasodilatación
masiva y muerte. Sin embargo, estos organismos son también parte de la
flora humana normal y se encuentran generalmente en la piel o nariz sin
causar ninguna enfermedad. Ciertas especies tales como Pseudomonas
aeruginosa, Burkholderia cenocepacia y Mycobacterium avium son
patógenos oportunistas y causan enfermedades principalmente en las
personas que sufren inmunosupresión o fibrosis quística. (1)
Los instrumentos quirúrgicos y dentales también son esterilizados para
prevenir la contaminación e infección por bacterias. Los desinfectantes se
utilizan para matar a bacterias u otros patógenos que se depositan sobre
las superficies para prevenir la contaminación y reducir el riesgo de
infección. (1)
3.4 Bacterias frecuentes en áreas clínicas odontológicas
• Pseudomonas sp.
Género Pseudomonas, grupo de bacilos Gram negativos aerobios
estrictos, que crecen bien en los medios habituales en 24 horas y que se
encuentran en abundancia en las plantas y en el ambiente, denominados
colectivamente bacilos gramnegativos no fermentadores. (5)
Producen infecciones oportunistas, tales como neumonía, infección
urinaria, infecciones quirúrgicas y septicemia entre otros. Con frecuencia,
alguna cepa se establece de modo endémico en un hospital dando lugar a
16
hiperendemias o epidemias. Presentan gran resistencia a los
antimicrobianos. (5)
Muchos ambientes de cirugía de uso dental, presentan un alto nivel de
biocontaminación, debido a un inapropiado mantenimiento y desinfección,
lo cual causa la colonización de diversas bacterias, siendo la P.
aeruginosa una de las más frecuentemente encontradas tanto en la taza
de la unidad dental, como en la jeringa triple, demostrado por el
porcentaje positivo de las muestras de agua (13.8%). (6)
Además, P. aeruginosa puede elevar la presencia de Legionella sp. Así
pues, incluso si el recuento total de bacterias, no siempre representa un
riesgo para el paciente y la salud de los trabajadores, la presencia de un
patógeno oportunista como P. aeruginosa, podría ser peligrosa,
especialmente cuando está asociada a otros microorganismos con
predilección por habitantes en agua (e.g., Leggionella y aeromonas sp.).
(6)
La Pseudomona aeruginosa es un frecuente patógeno nosocomial que
causa severas enfermedades en muchos casos, particularmente en
pacientes comprometidos, incluyendo aquellos con cáncer, quemaduras,
y fibrosis quística. Las infecciones son frecuentemente severas, y dos
recientes estudios indican que la tasa de mortalidad atribuido a
bacteremia por P. aeruginosa es aproximadamente del 34%. Muchos
factores de virulencia pueden ser atribuidos a su patogenicidad,
incluyendo formación de biofilm y la expresión de los adhesivos,
17
endotoxinas y exotoxinas hidrolíticas, los cuales causan destrucción
tisular. (5)
• Staphylococcus aureus
Género Staphylococcus, cocos Gram positivos agrupados habitualmente
en racimos aerobios y anaerobios facultativos. Sólo S. aureus produce la
enzima coagulasa, por lo que las demás especies se conocen como
coagulasa – negativas. (7)
S. aureus y S. epidermidis parecen ser, en principio, las únicas que se
aíslan en la cavidad oral y, aunque tienen el carácter de pertenecer a la
microbiota transitoria, están implicadas en numerosos procesos
patológicos en esta zona. Ambas especies, por su capacidad de soportar
elevadas concentraciones de NaCl, están ampliamente distribuidas en la
naturaleza como saprófitas y comensales de la piel y numerosas mucosas
(p.ejm nasofaringe o intestino). (7)
Fisiopatología y casos clínicos:
En principio, la característica fundamental es la acumulación de pus. La
puerta de entrada suele ser la cutáneo-mucosa, a partir de cepas
resistentes o adquiridas que colonizan los tejidos por adhesinas como los
ácidos teicoicos y la capa mucosa; si existen factores predisponentes, S.
aureus inicia su acción patógena con una secuencia de acontecimientos.
Las manifestaciones clínicas son: primarias purulentas, bacteriemias y
secundarias purulentas. (7)
18
• Escherichia coli
Conocida también como “colibacilo”, son bacilos Gram negativos,
aerobios facultativos, móvil por flagelos, no forma esporas. (8)
Es quizá el organismo procarionte más estudiado por el ser humano, se
trata de una bacteria unicelular que se encuentra generalmente en los
intestinos animales; ésta y otras bacterias son necesarias para el
funcionamiento correcto del proceso digestivo. Además produce vitaminas
B y K. (8)
• Acinetobacter sp.
El género Acinetobacter está formado por cocobacilos (con forma de
bastón corto y grueso) Gram negativos, oxidasa negativos, inmóviles.
Dada la complejidad de la nomenclatura de especies y biovariedades
individuales, algunos sistemas de clasificación utilizan la expresión
«complejo Acinetobacter calcoaceticus-baumannii», que abarca todos los
subgrupos pertenecientes a esta especie, como A. baumannii, A. iwoffii y
A. junii. (8)
La P. aeruginosa y Acinetobacter baumanni son las dos especies aisladas
con mayor frecuencia en clínica. (4)
19
3.5 Estudios microbiológicos de superficies quirúrgicas de clínicas
odontológicas
En la búsqueda de mejorar la salud bucal poblacional; muchas clínicas
odontológicas se ven en el deber de investigar acerca de cómo mantener
un adecuado ambiente clínico según lineamientos internacionales, debido
a que ciertas limitaciones incrementan la posibilidad de acumular
microorganismos potencialmente patógenos que pueden comprometer el
resultado final del tratamiento odontológico y/u ocasionar problemas
subyacentes. (9)
Existen evidencias de la presencia de bacterias en madera, plástico y
acero inoxidable, Rodríguez y col. en su estudio compararon la
contaminación bacteriana en un quirófano de uso dental, según tipos de
superficie; las cuales fueron: madera, plástico y acero inoxidable; ; los
resultados fueron que un tercio de las muestras tomadas de la madera y
un tercio de las muestras tomadas del plástico estaban contaminadas;
mientras que solo el 10% de las muestras obtenidas de la madera
estaban contaminadas. Esto nos indica que la madera es un medio hostil
para las bacterias. (9)
Al evaluarse la carga bacteriana y la presencia de patógenos como
Pseudomonas sp, Staphylococcus aureus, Escherichia coli y
Acinetobacter sp; en un ambiente quirúrgico dental, y obtener cargas
bacterianas elevadas, nos indica un ambiente inadecuado para
20
actividades quirúrgicas, debido a deficiencias en las normas de
desinfección ambiental manejadas; por lo que refleja la necesidad de
implementar programas de monitoreo bacteriológico del ambiente en
áreas clínicas odontológicas. (10)
4. OBJETIVOS DEL ESTUDIO
4.1 Objetivo General
Determinar las bacterias potencialmente patógenas antes y después de
los tratamientos quirúrgicos realizados en la Sala de Operaciones
Estomatológica (SOPE) de la Clínica Estomatológica Central de la
Facultad de Estomatología Roberto Beltrán de la Universidad Peruana
Cayetano Heredia.
4.2 Objetivos Específicos
• Determinar la presencia de cocos y bacilos con tinción Gram según
clase de superficie.
• Determinar la cantidad y promedio de Unidades Formadoras de
Colonias (UFC) antes de las cirugías y después de las cirugías según
clase de superficie.
• Determinar la cantidad y promedio de UFC antes de las cirugías y
después de las cirugías según tipo de superficie.
21
• Determinar presencia de microorganismos aislados según clase de
superficie.
• Determinar presencia de microorganismos aislados según tipo de
superficie.
5. HIPÓTESIS
Hay presencia de bacterias potencialmente patógenas en las superficies de
la Sala de Operaciones Estomatológica (SOPE) de la Clínica Estomatológica
Central de la Facultad de Estomatología Roberto Beltrán de la Universidad
Peruana Cayetano Heredia.
6. MATERIALES Y MÉTODOS
6.1 Diseño de estudio
Estudio descriptivo de tipo transversal, cuantitativo, observacional y
analítico.
22
6.2 Muestra
La muestra estuvo conformada por 5 superficies de la Sala de
Operaciones Estomatológica de la Clínica Estomatológica Central de la
Facultad de Estomatología Roberto Beltrán de la Universidad Peruana
Cayetano Heredia.
6.2.1 Criterios de inclusión
− Superficie a evaluar asociada a tratamientos que requieran
anestesia general.
− Superficie a evaluar asociada a pacientes adultos.
− Superficie a evaluar de la primera cirugía del día.
6.2.2 Criterios de exclusión
− Superficie a evaluar asociada a pacientes pediátricos.
− Superficie a evaluar asociada a tratamientos quirúrgicos de
procesos infecciosos.
− Superficie a evaluar de cirugías programadas para los días
sábados.
23
6.3 Variables
Variable Definición Dimensión operacional Tipo Escala de Medición Indicadores Valores
Independiente
Bacterias potencialmente
patógenas
Microorganismos causantes de infecciones
nosocomiales y de mortalidad
humana
Contar las unidades formadoras de colonias
de las placas Petri Cuantitativa De razón,
discontinua Unidad
formadora de colonia
Números enteros
Según tinción Gram, identificar si el
microorganismo es Gram positivo o Gram
negativo
Cualitativa Nominal, dicotómica Coloración Gram Gram positiva, Gram
negativo
Identificar microorganismos con
las pruebas bioquímicas necesarias
Cualitativa Nominal, politómica
Tipo de microorganismos
Pseudomonas sp., Staphylococcus
aureus, Escherichia coli,etc
Dependiente
Clase de superficie
Todo aquello específico a un
objeto o parte de un objeto
Clases de superficies Cualitativa Nominal, politómica
Clases de superficies
presentes en el consultorio
odontológico
Medio ambiente, succión, rejilla de
ventilación, mesa y agarradera de
lámpara
Tipo de superficie
Aquello perteneciente o relacionado al tipo de materia
Tipos de superficies Cualitativa Nominal, politómica
Tipos de superficies
odontológicas Ambiente, plástico y
madera
Tiempo Momento en el
cual se realiza la toma de muestra
Momento de tomada de la muestra, según haya sido antes o después
del procedimiento quirúrgico
Cualitativa Ordinal, dicotómica
Momento de la toma de muestra
Antes y después de la cirugía
24
6.4 Técnicas y/o procedimientos
Sin previo conocimiento del personal de cirugía, se realizaró un muestreo
antes y uno después de cada una de las cinco cirugías escogidas
aleatoriamente en el quirófano "A". Las muestras de superficie se tomaron
con ayuda de un hisopo de la agarradera de lámpara, manguera de
succión, mesa (madera), rejilla de ventilación y para la muestra del medio
ambiente se empleó el método de exposición en placa con Agar Tripticasa
Soya, Lecitina y Tween 80 (TSLT80), abierta sobre la bandeja de
instrumentos. Los hisopos fueron introducidos en tubos de ensayo
conteniendo medio Stuart (HiMedia) para su transporte hasta el
laboratorio. Luego se inocularon en placas de TSLT80 según la técnica
para semicuantificación bacteriana; y posteriormente cada una de las
colonias fueron introducidas en tubos con Caldo de Infusión Cerebro
Corazón (BHI, DIFCO) para enriquecer la presencia de patógenos. Todas
las placas y tubos se incubaron a 37 °C, evaluando el crecimiento a las 48
horas.
En cada cultivo en TSLT80 se estimó semicuantitativamente la carga
bacteriana, evaluando según los criterios de Prieto tomados de Medina y
col. Los tubos de BHI que presentaron turbidez fueron subcultivados para
recuperar los posibles patógenos (Pseudomonas, E. coli, S. aureus y
Acinetobacter.). En todas las colonias se observaron las caracterizadas
macroscópica y microscópicamente (tinción de Gram), diferenciándolas
25
para su posterior re aislamiento e identificación por pruebas bioquímicas y
metabólicas convencionales.
Metodología de análisis microbiológicos
Recuento de UFCs
Antes de la toma de muestras se prepararon los siguientes medios,
teniendo prioridad sobre los que se utilizaron los primeros días, tal como
se detallara a continuación:
1. Agar Tripticasa Soya con Lecitina y Tween 80 (TLT)
Según el número de placas que se necesitó para la toma de las diferentes
superficies es que se pesó en gramos el agar tripticasa soya para una
determinada cantidad en mililitros de agua destilada (con un litro alcanza
para 50 placas Petri) según el fabricante y se coloco en un frasco; y de
acuerdo con lo utilizado en gramos del agar, es que se determinó la
cantidad adecuada de tween 80 a colocar con la pipeta, y luego se mezcló
suavemente para que no se formen muchas burbujas y se colocó en la
autoclave por 45 minutos. Luego se esperó a que lo preparado no esté
tan caliente, como para poder sostenerlo con las manos, para luego
colocar la lecitina con la pipeta (yema de huevo), se mezcló suavemente y
se distribuyó en las placas Petri. Estas demoran 15 min en gelificar y
luego se colocaron con la base hacia arriba y rotularon, para luego ser
colocadas en la estufa a 37°C por 24 horas.
26
2. Caldo de Infusion Cerebro Corazón (BHI)
Según las instrucciones del fabricante se colocó una determinada de
cantidad en gramos de BHI para los mililitros que se necesitaran, teniendo
en cuenta que en un grupo de tubos de ensayo se colocaran 2ml de caldo
(para homogenizar la muestra tomada con el hisopo del medio de
transporte Stuart en el mixer) y en otro grupo será 1 ml de caldo (para
inocular las diferentes colonias que se encuentren a las 24h y 48h de las
placas Petri).
Luego se prepararon 4 agares:
1. Agar Manitol Sal (Mn) ¨Britania¨
2. Brain Heart Infusion Agar (BHA) ¨Merkoplate¨
3. Agar Mc Conckey (Mc) ¨Merkoplate¨
4. Agar Pseudomona F(Ps) ¨Britania¨
Para lo cual se determina cuantos gramos utilizar según las indicaciones
del fabricante, sabiendo que con 1 litro de agar se pueden dispensar en
50 placas Petri.
Las muestras se tomaron de acuerdo a la clase de superficie antes y
después de la cirugía:
27
• Agarradera de la lámpara, succión, mesa y rejilla de ventilación: Fueron
tomadas por hisopado con el medio de transporte Stuart.
• Medio ambiente: Se empleó el método de exposición en placa con Agar
Tripticasa Soya, Lecitina y Tween 80 (TSLT80), abierta sobre la bandeja
de instrumentos por 20 minutos.
Éstas se llevaron al laboratorio, y los hisopos fueron introducidos en tubos
de ensayo de 12x75mm y de 13x100ml. con 2ml de caldo de BHI y se
realizó la mezcla por 1 minuto con la ayuda del Mixer, el cual hace
movimientos vibratorios. Luego con la pipeta se tomó 0.1 ml de cada
caldo con BHI y se inoculó en una placa con TSLT80 y lo inoculado fue
esparcido con una Asa Driglaski en L. Finalmente se colocaron en la
estufa a 37°C por 24 horas.
Transcurridas 48 horas, se procedió a retirar de la estufa las placas Petri y
se observó si hubo o no presencia de UFCs, se contó cuantas hay en
cada placa y se registraron las que tuvieron diferente apariencia. Con un
asa de siembra en punta se tomó una pequeña muestra del centro de
cada colonia encontrada con distinta apariencia y se inoculó cada una en
un tubo de ensayo con 1ml de BHI anteriormente rotulado a criterio
propio, y finalmente los tubos fueron colocados en la estufa a 37°C por 24
horas.
Tinción Gram e identificación
Por otro lado, se tomó una muestra con el asa de siembra circular del
caldo de BHI de los tubos que tenían 48 horas en la estufa y presentaron
28
turbidez. La muestra fue colocada en láminas portaobjetos para
realizarles tinción gram. Y según la técnica por agotamiento se inocularon
en el medio correspondiente:
• Gram +: Agar BHA y Agar Mn
• Gram – : Agar BHA , Agar Mc y Agar Ps
A las 24 horas se observó y recopiló información para la tabla si en las
placas de Agar BHA, Agar Mn, Agar Mc y Agar Ps.
− Crecimiento o no de colonias
− Presencia de colonias pero no fermentación
− Presencia de colonias y fermentación.
Pruebas bioquímicas
En las colonias que aparecieron en el Agar de BHA, se realizaron las
pruebas bioquímicas de:
• Oxidasa, en la cual se procede a colocar papel filtro en una lámina
porta objetos, y sobre éste una gota del agente reactante. Luego con
la parte de madera de un hisopo estéril se toma un poco de las
colonias crecidas en la placa Petri que contiene BHA.
Si el papel se torna de un color azul es reacción positiva y si no
cambia de color es reacción negativa.
29
• Catalasa, en la cual se procede a colocar una gota de peróxido de
hidrogeno sobre una lámina porta objetos y luego con la parte de
madera de un hisopo estéril se toma un poco de las colonias crecidas
en la placa Petri que contiene BHA
Si burbujea es reacción positiva y si no burbujea es reacción negativa.
Según sea un bacilo o coco, Gram (+) o Gram (-), catalasa (+) o catalasa
(-) u oxidasa (+) u oxidasa (-) se les realizaron distintas pruebas
bioquímicas en las UFCs desarrolladas en el BHA:
6.5 Plan de análisis
Se construyó una base de datos con los resultados en Microsoft Office
Excel 2010 y se realizó estadística descriptiva para analizar y
representar datos calculando medidas de tendencia central.
Las tablas realizadas muestran: n, x y % de los resultados encontrados
en el estudio.
Se realizaron gráficos horizontales con los datos de las variables para
representar cada una de las tablas.
30
6.6 Consideraciones éticas
Se procedió a solicitar autorización y revisión del protocolo de
investigación de la Comisión de investigación de la Facultad (CIFE) y la
autorización de Jefe del Departamento de Medicina, Cirugía y Patología
Oral para trabajar en el Servicio de Cirugía Oral y Maxilofacial de la
Clínica Estomatológica Central de la Facultad de Estomatología de la
Universidad Peruana Cayetano Heredia
Se realizó la inscripción en el registro SIDISI, y se pidió la autorización y
aprobación de Comité de Ética de la Universidad Peruana Cayetano
Heredia para realizar el trabajo.
Se solicitó autorización del Laboratorio de Bacteriología de la Facultad de
Ciencias y Filosofía (FCF) – UPCH.
6.7 Recursos
6.7.1 Recursos humanos
- Operador logístico (investigador principal)
- Asesor especialista
- Microbióloga
- Estadístico.
31
6.7.2 Recursos logísticos
- Computadora Pentium M 1.5GHz.
- Software correspondiente para la elaboración del trabajo (Microsoft
Word, Microsoft Excel, Microsoft PowerPoint).
- Impresora digital, a color y blanco y negro.
- Material de escritorio (papel bond: 1 millar, lapiceros, lápices,
resaltadores, borradores, correctores, fólderes manila, fólderes
plásticos, perforador, tijeras, engrapador).
- Lugar de trabajo: escritorio, fuente de luz adecuada.
6.7.3 Material y Equipo
- Hielera
- Bolsas plásticas estériles
- Bolsas plásticas estériles con tiosulfato de sodio
- Rotulador
- Pipeteador
- Incubadora a 35°C +/- 0.5°C
- Gradillas plásticas
- Baño de María cubierto con un sistema circulante para mantener la
temperatura de 44°C +/- 0.2°C.
- Un termómetro del tipo de inmersión, de 1°C-55°C aproximadamente
de 55 cm. de largo con subdivisiones de 0.1 °C, certificado por NIST.
32
- Vortex
- Asas de nicromo en argolla y en punta
- Cámara de Québec
- Hisopo estéril de mango de madera de 10 cm
- Aparato de filtración ensamblado
- Pinzas estériles de metal
- Balanza analítica
Reactivos:
- Caldo Tripticasa Soya
- Caldo Letheen (con tween 80 y lecitina)
- Agar Cetrimide
- Agar Baird-Parker
- Agar MacConkey
- KOH 40%
Cristalería:
- Pipetas estériles graduadas, de 1.0 mL y 10.0 mL
- Frasco de dilución hecho de vidrio de borosilicato, con tapadera de
rosca de polietileno, equipados con teflón.
- Tubos de ensayo con tapón de rosca o tapa de presión.
- Campanillas durham
- Esparcidores de vidrio
- Cajas de Petri estériles desechables
33
7. RESULTADOS
En todas las superficies se encontró mayor cantidad de cocos y bacilos
Gram positivos, habiendo un mayor número de cocos que de bacilos siendo
34 (58%) y 21 (36%) respectivamente, sobre todo en el medio ambiente que
fueron 12 (20%) y 10 (17%) respectivamente.
Los cocos y bacilos Gram negativos se encontraron en pequeñas
cantidades, 1 (2%) y 3 (5%) respectivamente. No se encontraron
cocobacilos. (Tabla 1, gráfico 1)
El mayor desarrollo de UFCs se dio en la succión después de cada
procedimiento quirúrgico con 770 UFCs, seguido del medio ambiente antes
de cada procedimiento con 192 UFCs y después de cada procedimiento con
118 UFCs. En la rejilla de ventilación se encontraron 67 UFCs antes de
cada procedimiento. Mientras que en la succión, mesa y agarradera de
lámpara se encontró un menor recuento de UFCs antes de cada
procedimiento quirúrgico. (Tabla 2, gráfico 2)
Hubo un mayor promedio de UFCs según tipo de superficies en el plástico
después de realizadas las cirugías con un promedio de 79.7; en segundo y
tercer lugar en el medio ambiente antes y después respectivamente de
realizadas las cirugías, con un promedio de 38.4 y 23.6 respectivamente.
Mientras que el resto tiene promedios no mayores de 8. (Tabla 3 y gráfico 3)
El microorganismo que se halló en mayor cantidad fue el SCoN,
encontrándose el mayor número en el medio ambiente con un promedio de
17%, siguiéndole la succión y rejilla de ventilación con el 12%, mesa con el
8% y la agarradera de lámpara con el 5%; y en segundo lugar el Bacillus sp.
34
encontrándose la mayor cantidad en el medio ambiente con un promedio de
12%, siguiéndole la rejilla de ventilación con el 12%, y donde se encontró la
menor cantidad fue en la succión, mesa y agarradera de lámpara con el 2%.
Además se hallaron el Corynebacterium sp., Acinetobacter iwoffii.,
Lactobacillus sp., Micrococcus sp., Neisseria sp. y Pseudomona stutzeri,
pero con porcentajes no mayores al 5%. (Tabla 4, gráfico 4)
La mayor cantidad de microorganismos fue aislado del medio ambiente,
encontrándose principalmente el SCoN con 10, es decir, antes y después en
las 5 cirugías, luego el Bacillus sp. con 7 y Corynebacterium sp. con 3.
Además en el medio ambiente se encontraron microorganismos que no se
encontró en otros medios, tales como Acinetobacter iwoffii con 2,
Micrococcus sp. con 2, Neisseria sp. con 1 y Pseudomona stutzeri con 1 .
Se encontró Lactobacillus sp. sólo en la succión con 1. (Tabla 5, gráfico 5)
35
Tabla 1: Recuento de formas bacterianas según su tinción Gram y clase de superficie por el método de recolección
Tinción Morfología Medio
Ambiente Succión Rejilla de ventilación Mesa Agarradera
de lámpara Total
n % n % n % n % n % n %
Gram + Cocos 12 20% 7 12% 7 12% 5 8% 3 5% 34 58%
Bacilos 10 17% 2 3% 6 10% 1 2% 2 3% 21 36%
Cocobacilos 0 0% 0 0% 0 0% 0 0% 0 0% 0 0%
Gram - Cocos 1 2% 0 0% 0 0% 0 0% 0 0% 1 2%
Bacilos 3 5% 0 0% 0 0% 0 0% 0 0% 3 5%
Cocobacilos 0 0% 0 0% 0 0% 0 0% 0 0% 0 0% TOTAL 26 44% 9 15% 13 22% 6 10% 5 8% 59 100%
n: Cantidad, %: Porcentaje
36
37
Tabla 2: Cuadro de unidades formadoras de colonias antes de las cirugías y después de las cirugías según clase de superficie
Momento de toma Medio
Ambiente Succión Rejilla de ventilación Mesa Agarradera de
lámpara Total
n x % n x % n x % n x % n x % n x % Antes de las cirugías 192 38.4 15% 20 4 2% 67 13.4 5% 9 1.8 1% 4 0.8 0% 292 58.4 23%
Después de las cirugías 118 23.6 9% 770 154 61% 39 7.8 3% 24 4.8 2% 27 5.4 2% 978 195.6 77%
Total 310 62 24% 790 158 62% 106 21.2 8% 33 6.6 3% 31 6.2 2% 1270 254 100%
n: Cantidad, x: Promedio, %: Porcentaje
38
39
Tabla 3: Cuadro promedio de unidades formadoras de colonias antes de las cirugías y después de las cirugías según tipo de superficie
Momento de toma Medio Ambiente Madera Plástico Total
n x % n x % n x % n x %
Antes de las cirugías 192 38.4 29% 9 1.8 1% 30.3 6.06 5% 231.3 46.3 35%
Después de las cirugías 118 23.6 18% 24 4.8 4% 278.6 55.73 43% 421 84.1 65%
Total 310 62 48% 139 6.6 5% 308.9 16.8 47% 652 85.4 100% n: Cantidad, x: Promedio, %: Porcentaje
40
41
Tabla 4: Cantidad de microorganismos aislados según clase de superficie
Microorganismo Medio
Ambiente Succión Rejilla de ventilación Mesa Agarradera
de lámpara Total
n % n % n % n % n % n % Bacillus sp. 7 12% 1 2% 6 12% 1 2% 1 2% 16 27% SCoN 10 17% 7 12% 7 12% 5 8% 3 5% 32 54% Corynebacterium sp. 3 5% 0 0% 0 0% 0 0% 1 2% 4 7% Acinetobacter iwoffii 2 3% 0 0% 0 0% 0 0% 0 0% 2 3% Lactobacillus sp. 0 0% 1 2% 0 0% 0 0% 0 0% 1 2% Micrococcus sp. 2 3% 0 0% 0 0% 0 0% 0 0% 2 3% Neisseria sp. 1 2% 0 0% 0 0% 0 0% 0 0% 1 2% Pseudomona stutzeri 1 2% 0 0% 0 0% 0 0% 0 0% 1 2%
TOTAL 26 44% 9 16% 13 24% 6 10% 5 8% 59 100% n: Cantidad, %: Porcentaje, SCoN: Staphilococcus sp. coagulasa negativa
42
43
Tabla 5: Cantidad de microorganismos aislados según tipo de superficie
Microorganismo Medio ambiente (N=10)
Madera (N=10)
Plástico (N=30)
Total (N=50)
n % n % n % n %
Bacillus sp. 7 70% 1 10% 8 27% 16 27%SCoN 10 100% 5 50% 17 57% 32 54% Corynebacterium sp. 3 30% 0 0% 1 3% 4 7% Acinetobacter iwoffii 2 20% 0 0% 0 0% 2 3%Lactobacillus sp. 0 0% 0 0% 1 3% 1 2%Micrococcus sp. 2 20% 0 0% 0 0% 2 3%Neisseria sp. 1 10% 0 0% 0 0% 1 2% Pseudomona stutzeri 1 10% 0 0% 0 0% 1 2%n: Cantidad, %: Porcentaje, SCoN: Staphilococcus sp. coagulasa negativa
44
45
8. DISCUSIÓN
Numerosos investigadores han prestado atención, a las infecciones
nosocomiales en el ámbito médico-hospitalario. Sin embargo, es un área
desconocida para el odontólogo en nuestro país. Por ese motivo, es
fundamental implementar programas de monitoreo bacteriológico, para
conocer la situación de los espacios clínicos odontológicos y evaluar las
técnicas generalmente empleadas para su desinfección, ya que siendo
usadas tanto para tratamientos preventivos, restaurador o quirúrgico, son
consideradas de alto riesgo por la contaminación ambiental que presenta. (10)
El objetivo de control de la infección es la eliminación de la transferencia de
microorganismos, la cual se logra de varias maneras. Estos métodos
incluyen *1 el uso de equipos de barrera personal, *2 la inmunización de los
trabajadores de la salud dental contra las enfermedades infecciosas de
interés, *3 la correcta limpieza y desinfección de las superficies y equipos
para eliminar los agentes infecciosos, *4 la esterilización de los instrumentos
y (7) técnicas adecuadas para el manejo de instrumentos cortantes (Miller,
1996 y Wood, 1992). (11)
Hay casos en las que el recuento microbiano total no representa un riesgo
para los pacientes y trabajadores de la salud, pero es la presencia de un
patógeno oportunista como Pseudomona aeruginosa lo que puede ser
peligroso. (6)
En este estudio se encontraron varios patógenos oportunistas dentro de los
cuales están la Bacillus sp. SCoN, Corynebacterium sp, Acinetobacter
46
iwoffii, Lactobacillus sp., Micrococcus sp., Neisseria sp. y Pseudomona
Stutzeri, los cuales pueden significar un riesgo para pacientes que por lo
general no tienen un sistema inmune sano.
Los microorganismos generalmente asociados al aire son el Micrococcus
sp., Bacillus sp y los Corynebacterium sp (12), coincidiendo con los resultados
obtenidos en este estudio, debido a que se encontró Bacillus sp. SCoN,
Corynebacterium sp, Acinetobacter iwoffii, Micrococcus sp., Neisseria sp. y
Pseudomona Stutzeri, aunque unos en mayor cantidad que otros, tales como
el Bacillus sp. y el SCoN.
La mayoría de los microorganismos mencionados como potencialmente
patógenos forman parte de la flora normal en el ser humano o del ambiente,
a excepción del Pseudomona Stutzeri, el cual es poco probable aislarlo en
pacientes. En la mayoría de los casos su presencia representa la
contaminación o colonización en áreas de pacientes hospitalizados. (13) Este
microorganismo es considerado como uno de los que presenta mayor
resistencia a antibióticos, (14) motivo por el cual hay que prestarle la debida
importancia.
La P. Stutzeri ha sigo aislada en áreas de consultorios dentales en estudios
previos significando un riesgo de infección asociada a diseminación oral. (15)
La diferencia entre el número de UFCs antes y después de la cirugía no fue
como en otros estudios, en los que se encuentran los niveles de
contaminación bacteriana mayores después de la cirugía, (6, 16, 17) inclusive
en un estudio la UFCs fue de 3.3 veces mayor después de la cirugía, (16)
debido a que en este estudio, ese resultado solo se observo en las muestras
tomadas de la agarradera de lámpara, en la mesa y en la succión, mientras
47
que se observó menos UNF después de las cirugías en las muestras
tomadas del medio ambiente y rejilla de ventilación.
Hay que resaltar que el encontrar una carga bacteriana mayor antes del
procedimiento, hace pensar que las medidas de desinfección previas al
proceso quirúrgico fallaron en estas superficies, o probablemente a la falta
de un adecuado sistema de aspiración, lo que causaría que los
microorganismos caigan sobre las superficies. (6) Y por otro lado, el
encontrar un menor número de microorganismos después del procedimiento,
podría señalar baja contaminación durante la cirugía o la remoción total de
las bacterias en el muestreo previo al procedimiento quirúrgico.
De las cinco muestras obtenidas, fue en la agarradera de lámpara (plástico)
donde se encontró el menor porcentaje de carga bacteriana, en segundo
lugar la mesa (madera) y en tercer lugar la rejilla de ventilación (plástico).
Mientras que en otros estudios se observó un menor crecimiento bacteriano
en la madera, considerándosele un ambiente hostil para las bacterias y a las
propiedades antisépticas de los aceites naturales de la madera. (8) En
comparación con otros estudios como el de Zambrano y cols., (9) en los que
se halló una menor cantidad de microorganismos aislados del medio
ambiente, en este estudio, fue en el medio ambiente antes y después de
realizadas las cirugías, donde se encontró un mayor porcentaje de UFCs en
la mayoría de las cirugías, entando en una relación de 4:5.
El mayor número de UFCs se dio en el medio ambiente si consideramos que
presento el mayor número de UFCs en 4 de las 5 cirugías; pero fue en la
succión después de realizadas las cirugías si consideramos en promedio,
debido a que en una de las cirugías se encontró un gran número de UFCs,
48
mientras que en las otras 4 se observaron menos UFCs e inclusive en
algunos casos fue de cero.
Fue en el medio ambiente donde hubo mayor cantidad de microorganismos
con un 44% del total, en comparación con los resultados de Zambrano y
cols. (10) en el que representó solo el 4,9% del total.
Se obtuvieron bacterias con diferentes características morfológicas y de
tinción en elevadas proporciones antes y después de cada procedimiento
quirúrgico, siendo pocos los casos que no presentaron crecimiento
bacteriano. Hubo predominio de los cocos Gram positivos y bacilos Gram
positivos, pero también se encontró cocos Gram negativos y bacilos Gram
negativos, aunque en un menor porcentaje; en comparación con Zambrano y
cols. (9) quienes obtuvieron un predominio de bacilos Gram negativos, cocos
Gram positivos y cocos Gram negativos, y en un menor porcentaje a los
bacilos Gran positivos.
En este estudio se identificaron 8 géneros bacterianos, dentro de los cuales
en 2 de ellos se realizó identificación de especie, considerándose una de
estas potencialmente patógenas, debido a que es muy raro de encontrar en
ambientes clínicos u hospitalarios. (13) Es fundamental que se realicen
monitoreos bacteriológicos en áreas clínicas odontológicas, para así poder
tomar ciertas medidas y mejorar el control de la esterilidad de éstos y
prevenir enfermedades nosocomiales. Además, este estudio puede servir de
base para posteriores estudios sobre el medio en áreas clínicas
odontológicas.
Se encontró un mayor número de UFCs en la cirugía 5 y 3, habiendo 10 y 8
personas respectivamente, donde se presentó un mayor número de
49
personas. Las diferencias o similitudes entre muestreos es normal por la
variación de la rutina de uso del quirófano, así como por la presencia de
estudiantes y de personal auxiliar o pacientes de mayor o menor grado y las
condiciones ambientales del mismo, como señalan Alemán y González, (17)
quienes mencionan que la contaminación de los quirófanos aumenta debido
a la gran demanda que existe en las clínicas de cirugía en donde se realizan
procedimientos quirúrgicos de bajo costo, razón por la cual en mayoría de
los casos los quirófanos se utilizan dos veces por sesión o turno, impidiendo
que se realicen las medidas de limpieza adecuada entre cirugías.
Es necesario tener en cuenta que los quirófanos en los que se realizó el
estudio no cuentan con un sistema de extracción de aire como recomiendan
las normativas internacionales, (6,18) por lo que se recomienda prestar la
debida atención, por ser un factor muy importante para que se mejoren las
medidas de bioseguridad en el quirófano dental.
Los resultados obtenidos son importantes para reconocer que hay que
mejorar las medidas de desinfección del ambiente y de las superficies;
además de implementar programas de monitoreo bacteriológico para evaluar
que se esté mejorando el área quirúrgica y prevención de enfermedades
nosocomiales.
50
9. CONCLUSIONES
• La Pseudomonas sturzeri (aislado del medio ambiente en una cirugía) fue
el único microorganismo potencialmente patógeno aislado que fue
considerado como riesgo para el paciente, debido a que su aislamiento en
áreas hospitalarias se considera poco común.
• La forma bacteriana más prevalente fueron los cocos y bacilos Gram
positivos y se encontraron en su mayoría en el medio ambiente.
• La mayor cantidad y promedio de UFCs según clase de superficie se dio
en la succión. La mayor cantidad de UFCs se presentó después de haber
concluido el procedimiento quirúrgico.
• El mayor promedio de UFCs según tipo de superficie antes y después de
habiendo realizado el procedimiento quirúrgico se dieron en el medio
ambiente con un promedio de 48% y en el plástico con un promedio de
47% respectivamente.
• La cantidad de microorganismos aislados según clase de superficie se dio
de la siguiente manera: Medio ambiente 44%, Rejilla de ventilacion 24%,
succión 16%, mesa 10% agarradera de lámpara 8%, con un predominio
de Staphylococcus sp. coagulasa negativa y de Bacillus sp.
• La cantidad de microorganismos aislados según tipo de superficie se dio
en orden decreciente de la siguiente manera: medio ambiente, plástico y
madera.
51
10. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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52
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18. Bârlean L, Smaranda L, Luminiþa M, et al. Airborne Microbial
Contamination in Dental Practices in Iasi, Romania. Journal of Oral Health
and Dental Management. 9(1), 2010: 16-20
54
ANEXO 1
Ficha de toma de muestras
Personal presente en
el quirófano
nº
Docente
Residente
Diplomado
Internos
Externos
Asistentes técnicos
Anestesiólogo
Enfermera
Total
Tipo de cirugía
Biopsia de mucosa
Exodoncia
Ortognática
Nº HC: Fecha:
Nombre del paciente:
Sexo (F) (M)
Diagnostico presuntivo:
Diagnostico definitivo:
Tratamiento: Tiempo de inicio de la cirugía:
Tiempo final de la cirugía:
55
ANEXO 2
Ficha de llenado macroscópico por cada placa petri
Antes de la cirugía Después de la cirugía
Descripción de las UFCs Descripción de las UFCs
1 1
2 2
3 3
4 4
5 5
6 6
• Se rotuló bajo el siguiente formato.
o La primera letra indicó el nombre del investigador (I de Inés).
o La segunda letra indicó el número de la cirugía (la numeración
sería del 1 al 5 que son la cantidad de cirugías).
o La tercera letra indicó la inicial de la clase de superficie de la cual
es tomada la cirugía (A de medio ambiente, S de succión, R de
rejilla de ventilación, M de mesa y L de agarradera de lámpara).
o La cuarta letra indicó en momento en el que fue tomada la
muestra (A de antes de la cirugía o D de después de la cirugía).
56
ANEXO 3
Ficha de llenado de pruebas bioquímicas
