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UNIVERSIDAD ESTATAL DEL SUR DE MANABÍ FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES Y DE LA AGRICULTURA CARRERA DE INGENIERIA FORESTAL TRABAJO DE TITULACION MODALIDAD – PROYECTO DE INVESTIGACION Título Evaluación del comportamiento de las especies Swietenia macrophylla Fisher y Triplaris cumingiana Meyer con tres dosis de fertilizantes Autor: Stalin Jhoan Cedeño Mera

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UNIVERSIDAD ESTATAL DEL SUR DE MANABÍ

FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES Y DE LA

AGRICULTURA

CARRERA DE INGENIERIA FORESTAL

TRABAJO DE TITULACION

MODALIDAD – PROYECTO DE INVESTIGACION

Título

Evaluación del comportamiento de las especies Swietenia macrophylla

Fisher y Triplaris cumingiana Meyer con tres dosis de fertilizantes

Autor: Stalin Jhoan Cedeño Mera

Agosto 2018

Jipijapa – Manabí – Ecuador

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UNIVERSIDAD ESTATAL DEL SUR DE MANABÍ

FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES Y DE LA

AGRICULTURA

CARRERA DE INGENIERIA FORESTAL

TRABAJO DE TITULACION

MODALIDAD – PROYECTO DE INVESTIGACION

Título

Evaluación del comportamiento de las especies Swietenia macrophylla

y Triplaris cumingiana con tres dosis de fertilizantes

Autor: Stalin Jhoan Cedeño Mera

TUTOR

Ing. Sofía Ivonny Castro Ponce Mg. Sc.

Septiembre 2018

Jipijapa – Manabí – Ecuador

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D

E

D

I

C

A

T

O

R

I

A

Este proyecto de investigación está dedicado a:

A mí querida madre Lcda. Grey María Mera quien me apoyo incondicionalmente en los

momentos más difíciles durante mis años de estudios y fue la persona que me incentivo

a seguir adelante hasta conseguir la meta propuesta que es lograr el título profesional.

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A mi abuelita Nilda Solórzano y a mi tío Ing. Carlos Anchundia quienes estuvieron

apoyándome moralmente en este trajinar durante mis años de estudio.

A mi novia Andrea Martínez Alcívar quien me ha apoyado moralmente durante mis

últimos años de estudios y quien me ha incentivado a seguir adelante hasta lograr mi

objetivo.

Stalin Jhoan Cedeño Mera

Reconocimiento

El presente trabajo de investigación está dedicado a las siguientes instituciones y a las

personas que colaboraron de una u otra manera en el desarrollo y ejecución de este

proyecto de investigación.

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v

A mí querida Universidad Estatal del Sur de Manabí quien me acogió durante estos

años de estudios en donde logre conseguir mi meta propuesta.

A la Carrera de Ingeniería Forestal quien me brindo sus conocimientos científicos a

través de sus docentes.

A los docentes de la Carrera de Ingeniería Forestal que con sus consejos y apoyos

supieron guiarme por el buen camino hasta alcanzar mi meta.

Y a todas las personas y amigos que contribuyeron de una u otra manera en hacer

posible que alcanzara el objetivo propuesto.

Stalin Jhoan Cedeño Mera

Índice de contenidos

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I. INTRODUCCION……………………………………………………… 1

I. Introducción…………………………………………………. 2

II. Objetivos…………………………………………………….. 32.1. Objetivos General…………………………………………………….... 3

2.2. Objetivo Específicos…………………………………………………… 3

III. Marco Referencial…………………………………………… 43.1. Biofertilizantes………………………………………………………….. 4

3.2. Tipos y modo de acción de biofertilizantes……………………………... 4

3.3. Producción de biofertilizantes…………………………………………... 4

3.4. Solubilización de fuentes de fósforo asociada a compuestos

Orgánicos con biofertilizantes…………………………………………… 5

3.5. Caracterización y selección de bacterias y hongos micorricios

para la elaboración de fertilizantes………………………………………. 5

3.6. Biofertilizantes de origen de Azospirillum y micorrizas en especies……. 6

3.7. Estimulación de crecimiento en plántulas en vivero por hongos

Ectomicorricico y saprobio como biofertilizantes……………………….. 7

3.8. Efectos de los fertilizantes en los cultivos forestales…………………….. 7

3.9. Microorganismo rizosfericos en la germinación y crecimiento

de las especies forestales…………………………………………………. 8

3.10. Biofertilizantes…………………………………………………………… 8

3.11. Caracterización física y química de los biofertilizantes…………………. 9

3.12. Microrganismos benéficos en los biofertilizantes eficientes…………….. 9

3.13. Biofertilizantes en agricultura forestal…………………………………… 9

3.14. Ventajas de su uso………………………………………………………... 10

3.15. Crecimiento en viveros de las especies forestales y sustratos……………. 10

3.16. Pre germinación de semillas forestales……………………………………10

3.17. Caoba……………………………………………………………………... 11

3.18. Fernán Sánchez…………………………………………………………… 11

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IV. Materiales y métodos………………………………………… 134.1. Materiales……………………………………………………………..... 13

4.2. Métodos………………………………………………………………… 14

4.3. Ubicación geográfica…………………………………………………… 14

4.4. Diseño experimental……………………………………………………. 14

4.5. Tipo de estudio…………………………………………………………. 14

4.6. Factores en estudio……………………………………………………… 14

4.7. Análisis de Variación…………………………………………………… 15

4.8. Metodología de toma de datos………………………………………….. 15

4.9. Porcentaje de germinación (%)……………………………………….. 15

4.10. Altura de planta a los 30-60-90 días (cm)……………………………… 15

4.11. Diámetro de tallo 30-60-90 días (cm)………………………………….. 16

4.12. Proceso metodológico de la investigación……………………………... 16

4.13. Observación……………………………………………………………. 16

4.14. Analítico………………………………………………………………... 16

4.15. Estadístico………………………………………………………………. 16

4.16. Concentraciones de biofertilizantes……………………………………. 17

4.17. Tratamiento realizado a las plantas que fueron utilizadas……………… 17

4.18. Preparación de sustratos………………………………………………... 17

4.19. Siembra de semillas…………………………………………………….. 17

V. Resultados……………………………………………………. 185.1. Porcentaje de germinación (%)………………………………………… 18

5.2. Altura de planta a los 30-60 y 90 días (cm)……………………………… 18

5.3. Diámetro del tallo a los 30-60 y 90 días (cm)……………………………. 29

5.4. Número de hojas por planta a los 30-60 y 90 días (cm)………………….. 29

VI. Discusión……………………………………………………… 30

VII. Conclusiones………………………………………………….. 32VIII. Recomendaciones………………………………………………………... 33

IX. Bibliografía………………………………………………………………. 34

X. Anexos…………………………………………………………………… 38

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INDICE DE TABLAS

Tabla 1. Análisis de Varianza…………………………………………………………. 17

Tabla 2. Valores promedio de porcentaje de supervivencia, altura de planta (cm), Diámetro del tallo (cm) 30-60 y 90 días en el ensayo "Evaluación del efecto de un biofertilizante en la especie de caoba (Swietenia macrophylla) y Fernán Sánchez (Triplaris cumingiana). Cantón Portoviejo. 2018………………………………………………………...………………… 20

Tabla 3. Porcentaje de germinación (%)………………………………………………. 21

Tabla 4. Altura de planta a los 30 días (cm)…………………………………………….. 22

Tabla 5. Altura de planta a los 60 días (cm)…………………………………………….. 24

Tabla 6. Altura de planta a los 90 días (cm)…………………………………………….. 25

Tabla 7. Diámetro de tallo a los 30 días (cm)…………………………………………… 26

Tabla 8. Diámetro de tallo a los 60 días (cm)……………………………………………. 27

Tabla 9. Diámetro de tallo a los 90 días (cm)…………………………………………….. 28

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Índice de figuras

Foto 1. Evidencia de elaboración de substratos………………………………………. 41

Foto 2. Elaboración de semilleros en bandejas de germinación……………………… 41 Foto 3. Plántulas de caoba……………………………………………………………. 42

Foto 4. Plántulas de Fernán Sánchez…………………………………………………. 42

Foto. 5. Plántulas de Fernán Sánchez…………………………………………………. 43

Foto. 6. Plántulas de caoba……………………………………………………………. 43

Foto 7. Toma de datos en caoba y Fernán Sánchez en vivero………………………… 43

Foto 8. Área del ensayo en caoba y Fernán Sánchez en vivero……………………….. 44

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Resumen

El objetivo de la investigación fue evaluar el efecto de un biofertilizante en la especie

Swietenia macrophylla y Triplaris cumingiana, dada la aplicación inadecuada de

fertilizantes químicos que está incidiendo en los bajos rendimientos ofrecidos en estas

especies forestales. Para ello, en esta investigación se utilizaron dosis de 200, 300 y

400 ml en 5 lt de agua de sustrato orgánico tratado con microrganismos eficientes de

captación sanitaria del cantón Manta y el ensayo se realizó desde abril a julio del 2018,

ubicado en el Cantón Portoviejo en la vía a Crucita en el paso lateral y para ello se

empleó un diseño experimental de Bloques al Azar con arreglo factorial 2 x 4, con tres

repeticiones, logrando un total de 24 unidades experimentales, donde el cultivar caoba

(S. macrophylla) registró el mayor porcentaje de germinación en la etapa de semillero

con el 90,95% que probablemente estuvo supeditado a sus características agronómicas

definidas de esta especie maderable que con respecto al porcentaje de germinación lo

produjo el cultivar S. macrophylla que registró el mayor índice de germinación en la

etapa de semillero con el 90,95% y en la altura de planta a los 30 y 60 días (cm), la

misma especie reportó el mayor valor con 8,19 cm; 18,73 cm y 28,73 cm y en la

aplicación de las dosis del sustrato de biofertilizantes se pudo establecer que a los 60

con la dosis de 200 ml y 300 ml en cinco lt de agua la mayor altura de planta con 13,89

cm y 13,59 cm en ese orden respectivo. Asì mismo al interaccionarse los valores en la

misma variable altura de planta el tratamiento S. macrophylla con 200 ml en 5 lt de

agua presentó el mayor valor con 8,41 cm a los 30 días y 19,37 cm a los 60 días.

Mientras que el diámetro de tallo reportó a los 60 días un diámetro de tallos de 0,40

cm y a los 90 días con 0,70 cm para (S. macrophylla).

Palabras Claves: Biofertilizante -Especie Swietenia macrophylla y Triplaris

cumingiana Fisher y Meyer.

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Summary

The objective of the research was to evaluate the effect of a Biofertilizer in the species

Swietenia macrophylla and Triplaris cumingiana, given the inadequate application of

chemical fertilizers that is affecting the low yields offered in these forest species. For

this, in this research doses of 200, 300 and 400 ml were used in 5 lt of water of organic

substrate treated with efficient microorganisms of sanitary catchment of the Manta

canton and the test was carried out from April to July 2018, located in the Canton

Portoviejo on the road to Crucita in the lateral step and for this an experimental design

of Random Blocks with factorial arrangement 2 x 4 was used, with three repetitions,

achieving a total of 24 experimental units, where the cultivar mahogany (S.

macrophylla) recorded the highest percentage of germination in the seedling stage with

90,95% that was probably subject to its defined agronomic characteristics of this timber

species which, with respect to the percentage of germination, was produced by the

cultivar S. macrophylla, which recorded the highest rate of germination in the seedling

stage with 90,95% and in the plant height at 30 and 60 days (cm), the same species

reported the highest value with 8,19 cm; 18,73 cm and 28,73 cm and in the application

of the doses of the substrate of biofertilizantes it was possible to establish that to the 60

with the dose of 200 ml and 300 ml in five lt of water the greater height of plant with

13,89 cm and 13,59 cm in that order. Likewise, as the values in the same plant height

variable interacted, the S. macrophylla treatment with 200 ml in 5 lt of water presented

the highest value with 8, 41 cm at 30 days and 19,37 cm at 60 days. While the stem

diameter reported at 60 days stems diameter of 0,40 cm and at 90 days with 0,70 cm for

(S. macrophylla).

Key Words: Biofertilizer - Species of Swietenia macrophylla and Triplaris cumingiana

Fisher and Meyer.

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I. Introducción

Producción de biofertilizantes en este contexto, sostiene Avellán (2015), que

dada la producción de productos de origen orgánico en países desarrollados con

métodos de siembra tecnificados, y más que todo en lo relacionado a la preparación de

sustratos para la siembra de especies forestales de valor comercial y económico, se

incluyen a las micorrizas, las cuales contienen hongos del tipo Rhizobium,

Azospirillum, Azotobacter, Bacillus, Pseudomona y de biocontrol como las

Trichoderma. Sin embargo, declara (Guevara, 2013) que estos productos a nivel de país,

son concentrados a base de microorganismos eficientes, que tienen como propósito, al

ser aplicados al suelo cerca de la planta, logrando sustituir en forma parcial a los

fertilizantes químicos, beneficiando la microflora del suelo y evitar la contaminación

generadas por productos sintéticos, de acuerdo a Bashan (2014).

La investigación tuvo como objetivo evaluar el efecto de un biofertilizante en

las especies Swietenia macrophylla y Triplaris cumingiana, en dosis de 200, 300 y 400

ml en 5 lt de agua de sustrato orgánico tratado con microrganismos eficientes de

captación sanitaria del cantón Manta y el ensayo se instaló en el Cantón Portoviejo y

para ello se empleó un diseño experimental de Bloques al Azar con arreglo factorial 2 x

4, con tres repeticiones, logrando un total de 24 unidades, debido a la falta de

divulgación y por prácticas de sus efectos beneficiosos para el suelo, cultivos y el

medio ambiente, los cuales pueden llegar al uso mínimo de fertilizantes convencionales

de origen químico que son utilizados en forma exagerada en sus aplicaciones y en esta

investigación el mayor porcentaje de germinación lo produjo el cultivar S. macrophylla

que registró el mayor índice de germinación en la etapa de semillero con el 90,95%. En

la altura de planta a los 30 y 60 días (cm), la misma especie reportó el mayor valor con

8,19 cm; 18,73 cm y 28,73 cm y en la aplicación de las dosis del sustrato de

biofertilizantes se pudo establecer que a los 60 con la dosis de 200 ml y 300 ml en

cinco lt de agua la mayor altura de planta con 13,89 cm y 13,59 cm en ese orden

respectivo y al interaccionarse en la misma variable altura de planta el tratamiento S.

macrophylla con 200 ml en 5 lt de agua presentó el mayor valor con 8,41 cm a los 30

días y 19,37 cm a los 60 días. Mientras que el diámetro de tallo reportó a los 60 días

un diámetro de tallos de 0,40 cm y a los 90 días con 0,70 cm para (S. macrophylla).

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2

Lo que conllevó a que exista una adecuada absorción de nutrientes por parte de las

plantas, registrando rendimientos bajos acorde a la actividad agrícola, señala

(Vizacarra, 2014).

Por su parte, afirma Cuenca, (2013), que los agricultores están proponiendo

novedosas alternativas en la producción agrícola, que les ha permitido mantener la

sostenibilidad en cultivos varios. Registró el mayor índice de supervivencia en la etapa

de semillero con el 90,95% que probablemente estuvo supeditado a sus características

agronómicas definidas a las especies maderables.

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II. Objetivos

2.1. Objetivos General

Evaluar el efecto de un Biofertilizante en las especies Swietenia macrophylla y

Triplaris cumingiana

2.2. Objetivo Específicos

Determinar el porcentaje de germinación a la aplicación de tres dosis de

biofertilizantes de 200 ml, 300 ml y 400 ml en las Swietenia macrophylla y Triplaris

cumingiana

Analizar los efectos de las variables aplicación de biofertilizantes en tres dosis

en las especies Swietenia macrophylla y Triplaris cumingiana, en la etapa de vivero

2.3. Variables

2.3.1. Variable independiente

Germinación

Crecimiento

2.3.2. Variable dependiente

Dosis 200 ml

Dosis 300 ml

Dosis 400 ml

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III. Marco Referencial

3.1. Biofertilizantes

Según Gupta (2012), afirma que la existencia de ciertas bacterias, pueden

producir acciones beneficiosas en el suelo, entre ellas el Bacillus subtilis, la cual

produce hormonas naturales, como las auxinas, citoquininas y giberelinas, las cuales se

encargan de promover el crecimiento de la planta e inciden en su resistencia con

enfermedades.

3.2. Tipos y modo de acción de biofertilizantes

Según lo expresado por Barbera (2014), el componente principal son las

micorrizas las cuales fueron creadas por Albert Bernard Frank en el año de 1885, que

tiene el significado de hongo raíz, existiendo una asociación simbiótica entre el micelio

del hongo y las raíces del vegetal hospedante. Por ello lo indica (Suárez, 2015), que

entre los medios en el cual la micorriza puede mejorar el nivel nutricional de las plantas

por efecto del mejoramiento del suelo, está en el aumento de volumen radicular, por el

accionar de la hifas de hongo que interaccionan en lo que es una mejor asimilación del

agua y nutrientes mayores (nitrógeno, fósforo, potasio y calcio).

Entre tanto Barbera (2014), manifiesta que dado el tipo de estructura de suelo, se

mantienen unidos sus agregados, por el accionar del micelio de las micorrizas y la

secreción continua de glomalinas, por ella son utilizadas en proyectos de agricultura

sostenible. Donde (Tejada, 2013), enumera al género trichoderma como un habitante en

el área rizosfera, donde dado su mecanismo de acción permite una adecuada nutrición a

la planta de reguladores de crecimiento, solubilización y absorción adecuada de fósforo,

cobre, hierro, zinc y manganeso, no permitiendo cierto accionar de hongos en contra de

las plantas.

Las bacterias encargadas de este accionar, se presentan en una amplia variedad

de microorganismos del suelo, las cuales debido a su asociación simbiótica crecen en

forma adecuada con las plantas, estimulando su crecimiento, permitiendo acciones

fisiológicas tales como:

Fijación permanente de nitratos y nitritos

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Producción y suministro acorde a los requerimientos de la planta de vitaminas y

hormonas naturales.

Aumento de disponibilidad de nutrientes en la rizosfera

Incremento del área de contorno superficial de la raíz

Control de presencia de microorganismos patógenos (Aguirre, 2014)

Por su parte Rovira (2012), indica que cuantificando a esta hormona, permite a

la planta un desarrollo favorable, debido a que tiene la facultad de tener una mayor

absorción de nutrientes.

3.3. Producción de biofertilizantes

En este contexto, sostiene Avellán (2015), que dada la producción de

productos de origen orgánico en países desarrollados con métodos de siembra

tecnificados, y más que todo en lo relacionado a la preparación de sustratos para la

siembra de especies forestales de valor comercial y económico, se incluyen a las

micorrizas, las cuales contienen hongos del tipo Rhizobium, Azospirillum, Azotobacter,

Bacillus, Pseudomona y de biocontrol como las Trichoderma. Las cuales son

inoculantes que no ocasiona perjuicio a las plantas. Sin embargo declara (Guevara,

2013), que estos deben ser manejados con precaución y en dosis adecuadas, lo cual hace

que su uso sea restringido, ya que debe llevarse un control técnico, debido a que puede

existir renuencia por parte de estos microorganismos que actúan en contra perjudicial en

las plantas e incluso en los humanos, expone (Bardon, 2013). Por ello es evidente que

programas de forestación o en actividades dedicadas a la siembra de especies

maderables se debe tener un control adecuado del uso de inoculantes, con la finalidad

de obtener troncos de mayor diámetro, dureza y la coloración deseada, que incide en el

precio según la especie maderable, indica (Lynch, 2012).

3.4. Solubilización de fuentes de fósforo asociada a compuestos orgánicos con

biofertilizantes.

En un estudio realizado por (Rosatto, 2014) sobre él, enriquecimiento de un

producto orgánico con microorganismos, tales como bacterias solubulizadoras de

fósforo, con la finalidad de mejorar las propiedades del suelo para tener una mayor

disponibilidad de asimilación de nutrientes, en el cual se emplearon productos

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provenientes del fósforo, entre ellos roca fosfatada, fosfato natural, superfosfato triple y

fosforita cuba con dos fuentes de biofertilizantes, donde las verificaciones fueron

realizadas a los 30-60-90 días, los resultados mostraron que a los 90 días se vio un

incremento en la presencia de microorganismos dado su alto contenido de fósforo que

promovió la presencia de microorganismos solubilizadores.

3.5. Caracterización y selección de bacterias y hongos micorricios para la

elaboración de fertilizantes.

En este contexto señala Quirós (2014), en un ensayo realizado en especies

hortícolas, entre ellos pimiento y frejol, cultivos de importancia económica, donde los

resultados mostraron que, el empleó de microorganismos rizosfericos, como hongos

micorrizas y bacterias promotoras de crecimiento, solas o inoculadas mostraron su

efectividad en la nutrición de ambas especies, las cuales requieren un alto contenido de

aplicación de agroquímicos, entre ellos la alta fijación de nitrógeno, fosfato

solubilizado, producción de sideróforos, hormona auxina, etileno, las cuales lograron

que en ambos cultivares exista una respuesta agronómica, tanto a nivel de arquitectura

de planta como niveles de producción, donde se pudo establecer que las bacterias de

tipo endofitica, siamensis; hongo mossae, los cuales controlaron la presencia de

patógenos del suelo y las plantas se presentaron saludables.

3.6. Biofertilizantes de origen de Azospirillum y micorrizas en especies

forestales.

En la aplicación de alternativas realizadas por Sosa (2013), sobre el accionar de

los biofertilizantes a nivel de vivero en especies forestales, en matanzas, se mostró un

acción favorable en cuanto a crecimiento y nivel de supervivencia, en edad de 30 a 60

días en el cultivo de caoba (Swietenia macrophylla King). Por su parte (Zorrilla, 2013),

sostiene que la aplicación de micorrizas en especies maderables a nivel de vivero, en

cultivos maderables han mostrado un efecto benéfico en la planta en la etapa de

semillero a vivero, dado dice (Forty, 2014), por el accionar de hongos del tipo

Azospirillum, el cual ha mejorado el incremento en el número de hojas y contextura del

tallo. En este mismo contexto sostiene (Audrey, 2014), que dado este accionar y por la

presencia de hormonas naturales se estable que el crecimiento con la aplicación de

biofertilizantes su crecimiento es elevado y al mismo tiempo existe un mayor

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engrosamiento del tallo y lo microflora del suelo se incrementa existiendo una simbiosis

acorde a las necesidades de ambos componentes.

3.7. Estimulación de crecimiento en plántulas en vivero por hongos

ectomicorricico y saprobio como biofertilizantes.

De acuerdo a Gavilla (2015), en sus investigaciones en la preparación y

crecimiento de viveros forestales, los substratos se utilizan componentes como los

hongos sagofitos y micorrizas y por su accionar simbiótico estimula el crecimiento de

las especies forestales. En tanto que (Cadena, 2014), expresa, que la utilización de

hongos ectomicorrizales y saprofitos, gracias a su efectividad como inoculantes

biológicos, que se preparan con estos hongos de tipo Suillis luteus y Rhizopogon

luteolus y juntos a hongos de clase Coriolopsia rigida y Trichoderma harzianum los

combinados con biofertilizantes inciden en el crecimiento de las plantas a nivel de

vivero en especies forestales y por lo general su efecto se empieza a ver a partir de los

30-60 y 90 días, más que todo en las variables morfológicas de las plantas, por ello se

presenta como una alternativa viable en la producción de especies maderables.

Mientras que Pereira (2014), sostiene que la aplicación de tecnología orgánica a

nivel de substratos en especies forestales proporciona un adecuado sistema radicular y

un adecuado diámetro y crecimiento de planta hasta su sitio definitivo. Por su parte

(Barreto, 2012) , manifiesta que una adecuada proporción y mezcla es el éxito para una

plantación forestal que verá manifestada en adecuadas características agronómicas de la

planta. Sin embargo enumera (Reyes, 2012), que dada las condiciones exigente de

cultivos forestales, por su larga existencia, necesita reforzar su sistema radicular, por

ello las primera fases de semillero y vivero, se las considera fundamental.

En tanto que Díaz (2013), manifiesta, la utilización de biofertilizantes, debe

tener la asesoría de un profesional en las actividades forestales, debido a la falta de

divulgación y por prácticas de sus efectos beneficiosos para el suelo, cultivos y el

medio ambiente, los cuales pueden llegar al uso mínimo de fertilizantes convencionales

de origen químico que son utilizados en forma exagerada en sus aplicaciones

provocando efectos quelantes.

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3.8. Efectos de los fertilizantes en los cultivos forestales.

Para Murillo (2012), la aplicación de estos productos tiene un efecto beneficioso

en sus cualidades morfológicas, dado el accionar de los fertilizantes orgánicos por los

efectos microbianos que provoca en el suelo y por la actividad simbiótica que ocasiona

en la rizosfera de la planta. Pero estos productos dice (Ortega, 2014), trata varios

tópicos más que todo en lo relacionado a su arquitectura de planta, que se muestra en un

adecuado impacto en su crecimiento. Por lo tanto, se requiere una mayor vinculación

entre la industria y los científicos con el fin de colaborar en mejorar los sistemas de

producción y calidad de los biofertilizantes. Además, es indispensable contar con

asesoría, orientación y capacitación sobre su uso a los productores agrícolas.

3.9. Microorganismo rizosfericos en la germinación y crecimiento de las

especies forestales.

Mientras que Acuña, (2010), señala que, desde hace décadas, se han

desarrollado numerosos estudios para incorporar las Rizobacterias promotoras del

crecimiento vegetal en la producción agrícola. No obstante existe poca información

sobre estudios de rizobacterias promotoras de crecimiento vegetal en especies

forestales, especialmente del bosque seco tropical.

También Ortuño (2016) que el éxito de una planificación forestal,

independientemente del objetivo, inicia con la selección de semillas de calidad y la

producción de plántulas de calidad a nivel de vivero, calidad que no depende

únicamente en las propiedades genéticas de las semillas sino también de las propiedades

de los sustratos porque es en este medio en el cual la plántula desarrollará sus primeros

estadios de vida.

El suelo dice Aguirre (2014), es el medio de crecimiento de las plántulas por

naturaleza e históricamente ha sido el material más utilizado en los viveros, por

diversos factores tales como: su disponibilidad, costo, fácil obtención, entre otros. Sin

embargo no necesariamente sea el material más indicado para la producción de

plántulas en vivero. Por tanto, el conocimiento de las propiedades de otros sustratos

diferentes al suelo es de suma importancia (Aray, 2012).

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Si la disponibilidad de agua es baja, la planta encuentra dificultades para su

adecuada nutrición hídrica afectando su desarrollo (Aguirre, 2014). La densidad real

tiene un interés relativo, su valor varía según la materia de que se trate y suele oscilar

entre 2,5-3 para la mayoría de los sustratos de origen mineral; mientras que la densidad

aparente indica indirectamente la porosidad del sustrato y su facilidad de transporte y

manejo, los valores se prefieren bajos (0,7-0,1) y que garanticen una cierta consistencia

de la estructura.

3.10. Biofertilizantes

Los biofertilizantes son súper abonos líquidos con mucha energía equilibrada y

en armonía mineral, preparados a base de posta a de vaca muy fresca, disuelta en agua y

enriquecida con leche, melaza y ceniza, que se ha colocado a fermentar por varios días

en toneles o tanques de plástico, dice (Aguirre, 2014). Funcionan principalmente al

interior de las plantas, activando el fortalecimiento del equilibrio nutricional como un

mecanismo de defensa de las mismas, a través de los ácidos orgánicos, las hormonas de

crecimiento, antibióticos, vitaminas, minerales, enzimas y coenzimas, carbohidratos,

aminoácidos y azúcares complejas, entre otros, presentes en la complejidad de las

relaciones biológicas, químicas, físicas y energéticas que se establecen entre las plantas

y la vida del suelo, afirma (Guevara, 2013).

3.11. Caracterización física y química de los biofertilizantes

El conocimiento de las propiedades de los biofertilizantes Aguirre (2014) como

medios de crecimiento es importante para la toma de decisiones, pero no es suficiente

para determinar un sustrato ideal. Aunque en realidad Barbera (2014), dice que el

sustrato ideal quizá no exista, únicamente se puede conocer el sustrato adecuado porque

va a depender de muchos factores: tipo de planta, fase del proceso productivo en el que

se interviene (semillado, estaquillado, crecimiento, etc.), condiciones climatológicas, y

el manejo del sustrato.

El compostaje dice Amaguaña (2013), que consiste en la descomposición física

y química de materiales que liberan nutrientes disponibles para las plantas. Agentes

microorganismos, indica (Acosta, 2013), tales como hongos y bacterias digieren los

materiales durante el proceso de descomposición. Cualquier material orgánico se puede

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compostar, una mezcla de material puede ser mejor. En el caso del lombricompuesto es

un producto natural obtenido a través de la acción digestiva de la Lombriz Roja

Californiana sobre sustancias orgánicas de animales, previamente seleccionados y

acondicionados (Gupta, 2012), el lombricompuesto se utiliza como fertilizante

orgánico, enmienda orgánica y sustratos para plantas.

3.12. Microrganismos benéficos en los biofertilizantes eficientes

En el uso y manejo de biofertilizantes en la agricultura, expresa (Bardon, 2013)

uno de los principales problemas es el desconocimiento de las especies presentes en los

agroecosistemas y en la rizosfera de los cultivos, para su posible utilización eficiente.

Desde el punto de vista ecológico dice (Audrey, 2014), que es importante conocer los

integrantes de la comunidad bacteriana que favorecen su aplicación como inoculantes y

propician un efecto agro biológico positivo en los cultivos agrícolas.

3.13. Biofertilizantes en agricultura forestal

Señala Suárez (2015), que son insumos formulados con uno o varios

microorganismos benéficos (hongos y bacterias principalmente), los cuales aumentan la

disponibilidad de nutrientes para las plantas. Estos biofertilizantes, manifiesta (Ayala,

2014) pueden presentar grandes ventajas como una producción a menor costo,

protección del ambiente y aumento de la fertilidad y biodiversidad del suelo.

Los biofertilizantes, afirma Rovira (2012), que se usan abundantemente en

agricultura orgánica, sin embargo, es factible y ampliamente recomendable aplicarlos

de manera integral en cultivos intensivos en el sistema tradicional. Por su uso, los

biofertilizantes se podrían dividir fijadores de nitrógeno, solubilizadores de fósforo,

captadores de fósforo y promotores del crecimiento vegetal. A continuación se

mencionan algunos detalles y ejemplos de cada grupo.

Para Díaz (2013), los fijadores de nitrógeno, que son bacterias se desarrollan de

forma natural en el suelo, representan un biofertilizantes ecológico y se dividen en

simbióticas, señala (Aguirre, 2014), como Rhizobium, específicas de las leguminosas y

las libres, que viven en el suelo y no necesitan a la planta para su reproducción,

como Azotobacter y Azospirillum. 

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3.14. Ventajas de su uso

Estos insumos formulados con uno o varios microorganismos, señala, (Avellán,

2015), los cuales, de una forma u otra, proveen o mejoran la disponibilidad de

nutrientes cuando se aplican a los cultivos.

Permiten una producción a bajo costo

Enriquecimiento con materia orgánica para mejorar la textura y otras

características relacionadas con ella.

Regulación de las condiciones de nutrición, alcalinidad y salinidad

Regulación de las condiciones biológicas para limitar la aparición de plagas y

enfermedades en el suelo.

Protección del medio ambiente

Mantienen la conservación del suelo desde el punto de vista de fertilidad y

biodiversidad. (Acuña, 2010)

3.15. Crecimiento en viveros de las especies forestales y sustratos

Los suelos franco arenosos o francos son ingredientes buenos para la

preparación de mezclas con suelo señala (Artieri, 2014). Los francos tienen las

características físicas deseables de las arcillas y las arenas sin mostrar las propiedades

indeseables de soltura extrema, baja fertilidad, y baja retención de humedad por un

lado, y adherencia, compactación, drenaje y movimiento lento del aire por el otro

Zorrilla (2013).

Puesto que los problemas que envuelven el drenaje y la aireación son acentuados

cuando el suelo es colocado en un recipiente, el franco o el franco arenosos son

preferidos al franco limoso o arcilloso (Rodriguez, 2013).

3.16. Pre germinación de semillas forestales

Para garantizar una producción de plántulas de calidad, es necesario contar con

material genético de buena calidad. Es ahí la importancia de las semillas certificadas.

En Guatemala, la institución encargada de regir la calidad de las semillas, dice (Aray,

2012), De hecho, para que un plan de reforestación sea aprobado e incluido en el

Programa de Incentivos Forestales se debe utilizar semillas certificadas, sostiene Ayala

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(2014). Pero existen algunas prácticas antes del establecimiento de un vivero en

relación a las semillas, por ejemplo, el tratamiento pre germinativo, el cual tiene como

propósito romper la dormancia de la semilla y obtener una germinación uniforme

(Bardon, 2013).

El Cedro y la Caoba Antillana no requieren tratamiento, afirma Audrey (2014) y

la dinámica de crecimiento de las posturas obtenidas de semillas pre germinadas con

agua residual, que se manifiesta en un incremento de la altura y el diámetro, (Mesa,

2013).

3.17. Caoba

Nombre Común: Caoba

Nombre Científico: Swietenia macrophylla King

Familia: Meliaceae

Distribución geográfica: Es un árbol nativo, que es sembrado y cultivado en

bosques húmedos tropicales y secos en provincias, tales como Esmeraldas, Galápagos,

Napo, Pastaza y Loja, que oscila entre una altitud sobre el nivel del mar entre 1 a 500

metros señala (Aguirre, 2014).

Descripción botánica: Esta especie tiene una proximidad de hasta 40 m de

altura, con un diámetro de tallo entre 80 a 10 cm. Es de copa redondeada con ramas

extendidas y su tallo es erecto y cilíndrico, con raíces tablares pequeñas, siendo su

corteza externa de color gros a marrón, constituida por fisuras verticales, exfoliantes en

láminas, con ramas terminales cilíndricas, con forma estructural similar a una corona en

el ápice. Mientras que las hojas son compuestas, de tipo paripinnadas, de posición

alterna que tienen de 3 a 6 foliolos opuestos en el raquis, siendo estos con una longitud

entre 5 a 18 cm de longitud y un diámetro entre 3 a 6 centímetros, de forma oblonga a

lanceolada, con el ápice agudo, de bordes enteros y con una base desigual. Donde el

peciolo es pulvinado en su base, monoica y de flores grandes de color blanco a

amarillentas, de forma vistosa agrupadas en panículas terminales. Mientras que el fruto

es una cápsula grande y de consistencia leñosa, letincelada, dehiscente que se compone

entre 4 a 5 valvas, con varias semillas aladas, sostiene (Acosta, 2013)

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Color de la madera: Café rojizo 7,5YR 7/6.

Usos: Entre los usos de esta madera, dada su gran calidad, se la utiliza en la

fabricación de muebles de lujo, ebanistería y carpintería para diferentes fines, y en la

actualidad es exportable, con precios cotizados en el país y el comercio internacional, lo

indica, (Vásquez, 2014)

3.18. Fernán Sánchez

Nombre Común: Fernán Sánchez

Nombre Científico: Triplaris cumingiana Fisher y Meyer. Sinónimo: Triplaris

guayaquilensis Wedd. Familia: Polygonaceae

Distribución geográfica: Es un árbol endémico de la costa y de zonas

subtropicales, de provincias tales como Bolívar, Chimborazo, El Oro, Esmeraldas,

Galápagos, Guayas, Los Ríos, Manabí, Morona Santiago y Pichincha, con una altura

para su adecuado crecimiento entre 1 a 1500 metros sobre el nivel del mar, sostiene

(Rodriguez, 2013).

Descripción botánica: Esta especie, tiene una altura de 17 a 18 m, con una copa

irregular, con raíz axonomorfa profunda y muchas veces dan la forma de tablares, pero

son engrosamientos en la superficie que están en forma paralela al tallo, llegando a un

nivel entre 40 a 50 centímetros sobre el suelo. Mientras que el fuste es recto, con

hendiduras, su corteza de color grisáceo, mientras que internamente es de color café

claro. Por su parte las hojas son simples, alternas, de color verde mate, en el haz y en el

envés de color grisáceo, de forma oblonga, de borde entero, con nervadura (Nuñez,

2015).

Densidad de la madera: De 0,82 gr por cm3 y su color marrón a pálido 10YR 7/3

Usos: Es empleada y utilizada en la actividad de la mueblería, elaboración de puertas,

cajoneras, pisos de madera, sostiene (Grijalva, 2014)

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IV. Materiales y métodos

4.1. Materiales

Los materiales que se utilizaron en la investigación fueron de oficina y de

campo.

Materiales de oficina

Computadora

Impresora

Internet

Flash memory

Copias

Papel boom

Carpeta

Bolígrafos

Lápiz

Borrador

Anillado

Empastado de tesis

Transporte

Materiales de campo

Materia orgánica

Arena de rio

Semilla Caoba

Semilla Fernán Sánchez

Bandejas para germinación

Calibrador

Flexómetro

Fundas de 8x20

Equipo humano

Tutor del proyecto de investigación

Egresado

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4.2. Métodos

4.3. Ubicación geográfica

El proyecto de investigación se realizó, en el Cantón Portoviejo en la vía a

Crucita en el paso lateral a la altura del registro civil entre las coordenadas de latitud sur

a 01°03´16” y a 80°27´16” de longitud oeste, según reporte del (INAMHI, 2015) y a 15

msnm y según (Holdrige, 2013) como bosque tropical Seco, se inició desde abril a

julio del 2018.

4.4. Diseño experimental

Se empleó un diseño experimental de Bloques al Azar con arreglo factorial 2 x

4, con tres repeticiones, logrando un total de 24 unidades experimentales, donde los

datos fueron sometidos a la prueba de significación de Tukey en el nivel del 5% de

probabilidad para comprobar las diferencias entre los tratamientos.

4.5. Tipo de estudio

El trabajo de investigación fue apoyado por un diseño experimental, en el cual

se investigó cuál de los sustratos utilizados es el que obtuvo mejor respuesta, a través

del método experimental que se apoyó de los métodos estadísticos, inducción,

deducción, entre otros.

4.6. Factores en estudio

Estuvo basado en criterios forestales emitidos por parte de investigadores como

(Vizacarra, 2014), (Vásquez, 2014), los cuales señalaron la importancia de realizar

estudios sobre estas especies forestales, para su reforestación, ya que se están

extinguiendo estas especies por su valor comercial, por ello la importancia de evaluar el

efecto de un Biofertilizantes en las especies Swietenia macrophylla y Triplaris

cumingiana Fisher y Meyer), la cual se realizó desde abril a Julio del 2018, en el

Cantón Portoviejo en la vía a Crucita en el paso lateral y empleó un diseño

experimental de Bloques al Azar con arreglo factorial 2 x 4, con tres repeticiones,

logrando un total de 24 unidades experimentales, para los cuales se emplearon dos

factores que fueron estudiados y se establecen de la siguiente manera:

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Especies forestales

A1- Swietenia macrophylla

A2- Triplaris cumingiana.

Dosis utilizadas de biofertilizante (ME)

B1- 0 ml B2- 200 ml en 5 lt de agua

B3- 300 ml en 5 lt de agua B4- 400 ml en 5 lt de agua

TratamientosA1B1- Swietenia macrophylla + 0 mlA1B2- Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de aguaA1B3- Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de aguaA1B4- Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de aguaA2B1- Triplaris cumingiana + 0 mlA2B2- Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de aguaA2B3- Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de aguaA2B4- Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua

4.7. Análisis de Variación

Tabla 1. Análisis de VarianciaANOVA

FUENTE DE VARIACIÒN GRADO DE LIBERTADTotal 23

Repeticiones 2

Especies forestales 1

Dosis de biofertilizantes 3

Interacción (Especies y dosis) 3

Error 14

4.8. Metodología de toma de datos

Para la toma de los datos se procedió a utilizar un biofertilizantes a base de

productos vegetales, por el fabricante.

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4.9. Porcentaje de germinación (%)

Para determinar el tiempo de prendimiento, se procedió a utilizar un compuesto

realizado a base de productos naturales el mismo que sirvió como estimulante para

acelerar el proceso de germinación de la semilla y así poder evaluar qué tiempo demora

en germinar la planta con la ayuda del sustrato de biofertilizantes, el cual germinó a

partir de los 15 días T.cumingiana Fisher y Meyer y a los 21 días S. macrophylla de

sembradas las especies forestales.

4.10. Altura de planta a los 30, 60, 90 días (cm)

En cuanto al parámetro de altura se procedió a utilizar un flexómetro para así

determinar la altura en 10 plantas al azar que logro alcanzar durante cada 30 días luego

se continuó realizando la toma de altura cada mes hasta terminar la investigación.

4.11. Diámetro del tallo 30, 60, 90 días (cm)

Para lograr determinar el diámetro se procedió a realizar la toma cada mes en la

parte media ecuatorial del tallo de las plántulas con un calibrador expresado en

milímetros a los 30-60-90 días para así comprobar el porcentaje que ha desarrollado en

diámetro la planta.

4.12. Proceso metodológico de la investigación

La metodología que se utilizó en esta investigación fue de tipo estadística y

descriptiva para poder establecer resultados.

4.13. Observación

En este proceso se realizó la observación de cómo fue avanzando la germinación

y el crecimiento de las plantas tanto en longitud como en diámetro en cada una de sus

tratamientos y en las diferentes repeticiones.

4.14. Analítico

En este parámetro se realizó el análisis de los datos tomado en la investigación

para ir comprobando cómo va el desarrollo de las plantas en cada unidad experimental

así poder determinar el resultado esperado.

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4.15. Estadístico

Dentro de este proceso se realizó el análisis estadístico e interpretación de los

resultados obtenido a través de la investigación para determinar el resultado

correspondiente del trabajo investigativo.

4.16. Concentraciones de biofertilizantes

Las concentraciones utilizadas en la investigación para acelerar la germinación

de las semilla y planta fueron: 200 ml, 300 ml, 400 ml biofertilizantes de en 5 litros de

agua de un fertilizante residual proveniente de las lagunas sépticas de Manta, las cuales

fueron sometidas a tratamiento con microrganismos eficientes y están siendo aplicadas

en cultivos hortícolas de experimentación en los Bajos de Montecristi, y en las dos

especies utilizadas y en los diferentes tratamientos.

4.17. Tratamiento realizado a las plantas que fueron utilizadas

Dentro de la investigación se procedió a utilizar biofertilizantes como un

estimulante para acelerar la germinación de la semilla S. macrophylla y de T.

cumingiana). En una relación 200 ml, 300 ml y 40 ml en 5 litros de agua con esta dosis

empleada se puedo demostrar que si factible la utilización de biofertilizantes en las

semillas para que haya un mejor desarrollo en las plantas.

4.18. Preparación de Sustrato

El sustrato que se utilizó en la germinación de la semilla fue arena de rio

mesclado con materia orgánica, el mismo que se utilizó para el llenado de funda donde

se trasplanto las plantitas que germinaron en las bandejas germinadores para continuar

con la investigación.

4.19 . Siembra de semillas

Las semilla que se utilizó dentro de la investigación fueron especies forestales

de S. macrophylla y T. cumingiana.las cuales fueron seleccionadas de árboles de óptima

calidad y fueron regadas temprano en la mañana cada dos y según las condiciones

climáticas del medio con el fin de que tengan un buen proceso de germinación y de

desarrollo.

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V. Resultados

5.1. Porcentaje de germinación (%)

Con respecto a esta variable (Tabla 2), las especies forestales presentaron

diferencias para el 1% de probabilidad, donde los resultados sometidos a la prueba de

Tukey al 5%, detectaron dos rangos de significación, con S. macrophylla que registró el

mayor índice de germinación en la etapa de semillero con el 90,95% resultado que

estadísticamente fue superior al obtenido por la especie T. cumingiana Fisher y Meyer,

que reportó el menor valor con el 60,29% de germinación (Tabla 2), lo cual

probablemente estuvo supeditado a sus características agronómicas definidas de esta

especie maderable, permitiendo expontenciar su componente genético y por las

condiciones favorables que proporcionó el biofertilizante, ya que para (Murillo, 2012),

la aplicación de estos productos tiene un efecto beneficioso en su cualidades

morfológicas, dado el accionar de los fertilizantes orgánicos por el efectos microbiano

que provoca en el suelo y por la actividad simbiótica que ocasiona en la rizosfera de la

planta.

5.2. Altura de planta a los 30, 60, 90 días (cm).

Para esta característica, que se muestra en el (Tabla 2), se pudo evidenciar que

Las especies maderables presentaron un resultado favorable, registrando significación

estadística al 1% de probabilidad y los datos de la prueba de Tukey mostraron dos

rangos de significación a los 30-60 y 90 días donde la especie (Swietenia macrophylla)

reportó el mayor valor con 8,19 cm; 18,73 cm y 28,73 cm que fue superior

estadísticamente a los obtenidos por (Triplaris cumingiana), que mostró menores

valores con 5,48 cm; 8,19 cm y 20,31 cm a los 30-60 y 90 días en ese orden

consecutivo (Tablas 3, 4 y 5)

Probablemente se debió a que es un árbol nativo, que se adapta a varios micro

ambientes y por las características agronómicas de planta hace que presente este

comportamiento, en situaciones favorables y desfavorables, en relación al (Triplaris

cumingiana), que por su arquitectura propia de la planta en estado de vivero a esta edad

es susceptible a diversas condiciones adversas, entre ellas las condiciones de suelo y

ambiente de señala (Aguirre, 2014).

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Mientras que en la aplicación de las dosis del sustrato de biofertilizantes se pudo

establecer que este mostró diferencias estadísticas para el nivel del 1% de probabilidad,

donde la prueba de comparación de medias de Tukey al 5% encontró dos rangos de

significancia reportando a los 60 y 90 días con la dosis de 200 ml y 300 ml en cinco lt

de agua la mayor altura de planta con 13,89 cm y 25,24 cm en ese orden respectivo,

(Tabla 2), mostrando que este producto dice (Ortega, 2014), trata varios tópicos más

que todo en lo relacionado a su arquitectura de planta, que se muestra en un adecuado

impacto en su crecimiento. Por lo tanto, se requiere una mayor vinculación con el fin de

colaborar en mejorar los sistemas de producción y calidad de los biofertilizantes.

Además, es indispensable contar con asesoría, orientación y capacitación sobre su uso a

los productores agrícolas.

Mientras que al interaccionarse los factores estudiados, registraron a los 30 y 60

(Tabla 2) días diferencias estadísticas para los niveles del 5% y 1% de probabilidad

estadística, donde Tukey, presentó dos rangos de significación, estableciendo que el

tratamiento conformado por S. macrophylla + 200 ml en 5 litros de agua (A1B2)

presentó el mayor valor con 8,41 cm a los 30 días y 19,67 cm a los 60 días (Tablas 7 y

8), confirmando lo descrito por (Kamilova, 2011), quien dice que en investigaciones

realizadas en especies forestales a nivel de semillero y vivero, señala que es importante

la utilización de sustratos que tengan en su contenido Azospirillum brasilense, debido a

su accionar en la estimulación de crecimiento, la cual predomina en este hongo por su

emisión de hormonas naturales, que inciden en su crecimiento y afectan en forma

adecuada en la morfología y fisiología de la raíz, que se traduce en una adecuada

arquitectura de la planta.

Aunque es importante encontrar un sustrato ideal, porque cada especie tiene

requerimientos distintos, pero a través de investigaciones científicas es posible hallar un

sustrato óptimo que reúna las condiciones mínimas requeridas por las especies a

estudiar, dice (Artieri, 2014). En general, los nutrientes son vitales para el óptimo

crecimiento de plantas, dice Amaguaña (2013) en las especies forestales, al igual que

los cultivos agrícolas, requieren de ciertos elementos en el suelo, de manera que si

algunos escasean, deben ser agregados en las dosis y en el momento oportuno

(Avellán, 2015). Las plantas captan los nutrientes del suelo selectivamente, absorbiendo

preferentemente los nutrientes.

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Tabla 2. Valores promedio de porcentaje de supervivencia, altura de planta (cm), Diámetro del tallo (cm) a los 30,60 y 90 días en el ensayo "Evaluación del efecto de un biofertilizante en la especie de caoba (Swietenia macrophylla) y Fernán Sánchez (Triplaris cumingiana Fisher y Meyer). Cantón Portoviejo. 2018.

Factores % de Crecimiento de planta (cm)   Diámetro del tallo (cm)Germinación 30 días 60 días 90 días 30 días 60 días 90 días

Especies forestales ** ** ** ** ** NS **Swietenia macrophylla 90,95 a 8,19 a 18,73 a 28,73 a 0,40 a 0,68 0,70 aTriplaris cumingiana 60,29 b 5,48 b 8,19 b 20,31 b 0,10 b 0,46 0,50 b

Dosis de biofertilizante NS NS ** ** NS NS NS0 ml (Testigo) 66,97 6,86 12,98 b 23,20 b 0,23 0,51 0,58200 ml en 5 lt de agua 78,09 6,87 13,89 a 24,49 b 0,28 0,59 0,61300 ml en 5 lt de agua 77,66 6,86 13,59 a 25,24 a 0,24 0,58 0,62400 ml en 5 lt de agua 79,77 6,75 13,40 ab 25,16 ab 0,26 0,59 0,61

Tratamientos NS * ** NS NS NS NSA1B1 S. macrophylla+ 0 ml 79,40 7,96 b 18,00 a 28,12 0,36 0,63 0,69A1B2 S. macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 94,11 8,41 a 19,37 a 29,08 0,44 0,73 0,72A1B3 S. macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 95,07 8,18 ab 19,01 a 28,88 0,38 0,67 0,69A1B4 S. macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 95,25 8,23 a 18,57 a 28,86 0,43 0,68 0,70A2B1 T. cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 54,54 5,77 b 7,96 b 18,28 0,10 0,39 0,48A2B2 T, cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 62,08 5,34 b 8,41 b 19,91 0,12 0,45 0,50A2B3 T. cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 60,26 5,55 b 8,18 b 21,61 0,10 0,49 0,52A2B4 T. cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 64,29 5,28 b 8,23 b 21,46 0,09 0,51 0,53

Promedio 75,63 6,84 13,47 24,52 0,25 0,57 0,68C.V. (%) 33,56 14,09 13,82 9,53 33,38 30,38 26,71Tukey 5% (Especies forestales) 13,67 2,34 7,89 5,89 0,43 0,61Tukey 5% (Dosis de biofertilizante)     0,44 1,11   Tukey 5% (Interacciones)   2,11 7,89  

Tabla 3. Porcentaje de germinación (%)

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Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ PromedioA1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 77,45 83,21 77,56 238,22 79,40A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 92,45 98,32 91,56 282,33 94,11A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 91,23 99,42 94,56 285,21 95,07A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 97,34 92,89 95,52 285,75 95,25

358,47 373,84 359,2 1091,51  A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 66,34 56,35 41,23 163,92 54,54A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 62,67 62,34 61,23 186,24 62,08A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 52,37 56,78 71,63 180,78 60,26A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 62,34 69,32 61,23 192,89 64,29

243,72 244,79 235,32 723,83 602,19 618,63 594,52 1815,34

ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%

Total 23 6978,00        Repeticiones 2 40,91 20,45 0,07 NS 3,74 6,51Especies 1 2345,67 2345,67 8,65 ** 2,76 4,28Dosis 3 331,11 110,37 0,40 NS 3,74 6,51Interacción 3 467,89 155,96 0,57 NS 3,74 6,51Error 14 3792,42 270,88      ** Altamente significativo al 1% de probabilidadNS No significativo

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Tabla 4. Altura de planta a los 30 días (cm)

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Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ PromedioA1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 8,90 7,50 7,50 23,90 7,96A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 8,95 8,20 8,10 25,25 8,41A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 8,83 7,80 7,91 24,54 8,18A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 8,84 7,90 7,96 24,70 8,23

35,52 31,40 31,47 98,39 A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 6,32 5,78 5,23 17,33 5,77A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 5,34 5,34 5,34 16,02 5,34A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 6,11 4,76 5,78 16,65 5,55A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 5,32 5,23 5,31 15,86 5,28

23,09 21,11 21,66 65,86 58,61 52,51 53,13 164,25

ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%

Total 23 49,37        Repeticiones 2 2,82 1,41 1,51 NS 3,74 6,51Especies 1 16,43 16,43 17, 66 ** 2,76 4,28Dosis 3 8,43 2,81 3,02 NS 3,74 6,51Interacción 3 8,56 2,85 3,76 * 3,74 6,51Error 14 13,13 0,93      ** Altamente significativo al 1% de probabilidadNS No significativo

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Tabla 5. Altura de planta a los 60 días (cm)Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ Promedio

A1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 17,90 18,20 17,90 54,00 18,00A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 19,20 18,93 20,00 58,13 19,37A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 19,09 18,70 19,26 57,05 19,01A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 litros de agua 19,05 18,45 18,23 55,73 18,57

75,24 74,28 75,39 224,91 A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 8,90 7,50 7,50 23,90 7,96A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 8,95 8,20 8,10 25,25 8,41A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 8,83 7,80 7,91 24,54 8,18A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 8,84 7,90 7,96 24,70 8,23

35,52 31,40 31,47 98,39 110,76 105,68 106,86 323,3

ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%

Total 23 665,58        Repeticiones 2 1,76 0,88 0,25 NS 3,74 6,51Especies 1 234,67 234,67 67,62 ** 2,76 4,28Dosis 3 112,67 37,55 10,88 ** 3,74 6,51Interacción 3 167,89 55,96 16,12 ** 3,74 6,51Error 14 48,59 3,47      ** Altamente significativo al 1% de probabilidadNS No significativo

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Tabla 6. Altura de planta a los 90 días (cm)Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ Promedio

A1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 27,92 28,45 28,01 84,38 28,12A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 29,23 29,01 29,01 87,25 29,08A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 29,10 28,56 28,98 86,64 28,88A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 29,01 28,67 28,91 86,59 28,86

115,26 114,69 114,91 344,86 A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 15,56 19,45 19,67 54,68 18,28A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 17,82 20,13 21,78 59,73 19,91A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 19,45 21,61 23,78 64,84 21,61A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 21,67 19,15 23,56 64,38 21,46

74,50 80,34 88,79 243,63 189,76 195,23 203,7 588,49

ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%

Total 23 489,31        Repeticiones 2 22,14 11,07 2,02 NS 3,74 6,51Especies 1 222,23 222,23 216,76 ** 2,76 4,28Dosis 3 117,11 39,03 7,13 ** 3,74 6,51Interacción 3 51,23 17,07 3,12 NS 3,74 6,51Error 14 76,66 5,47      ** Altamente significativo al 1% de probabilidadNS No significativo

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Tabla 7. Diámetro de tallo a los 30 días (cm)Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ Promedio

A1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 0,22 0,40 0,47 1,09 0,36A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 0,28 0,47 0,57 1,33 0,44A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 0,25 0,45 0,46 1,16 0,38A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 0,35 0,39 0,55 1,30 0,38

1,11 1,72 2,05 4,89 A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 0,12 0,08 0,10 0,30 0,10A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 0,13 0,13 0,11 0,37 0,12A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 0,11 0,11 0,08 0,30 0,10A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 0,10 0,10 0,08 0,29 0,09

0,47 0,43 0,37 1,28 1,58 2,15 2,43 6,17

ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%

Total 23 2,73        Repeticiones 2 0,19 0,09 1,80 NS 3,74 6,51Especies 1 1,03 1,03 20,60 ** 2,76 4,28Dosis 3 0,56 0,18 3,60 NS 3,74 6,51Interacción 3 0,23 0,07 1,40 NS 3,74 6,51Error 14 0,72 0,05      ** Altamente significativo al 1% de probabilidadNS No significativo

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Tabla 8. Diámetro de tallo a los 60 días (cm)Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ Promedio

A1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 0,49 0,69 0,72 1,91 0,63A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 0,57 0,84 0,72 2,20 0,73A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 0,50 0,75 0,78 2,03 0,67A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 0,50 0,79 0,74 2,04 0,68

2,07 3,07 3,04 8,18A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 0,32 0,43 0,41 1,17 0,39A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 0,39 0,48 0,50 1,37 0,45A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 0,51 0,46 0,52 1,49 0,49A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 0,49 0,51 0,55 1,55 0,51

1,71 1,88 1,99 5,593,78 4,96 5,35 13,78

ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%

Total 23 2,04        Repeticiones 2 0,03 0,01 0,08 NS 3,74 6,51Especies 1 0,14 0,14 1,16 NS 2,76 4,28Dosis 3 0,08 0,02 0,16 NS 3,74 6,51Interacción 3 0,04 0,01 0,08 NS 3,74 6,51Error 14 1,75 0,12      NS No significativo

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Tabla 9. Diámetro de tallo a los 90 días (cm)Tratamientos Rep I Rep II Rep III ∑ Promedio

A1B1 Swietenia macrophylla + 0 ml 0,65 0,72 0,71 2,08 0,69A1B2 Swietenia macrophylla + 200 ml en 5 lt de agua 0,70 0,73 0,74 2,17 0,72A1B3 Swietenia macrophylla + 300 ml en 5 lt de agua 0,72 0,65 0,61 2,08 0,69A1B4 Swietenia macrophylla + 400 ml en 5 lt de agua 0,72 0,69 0,68 2,09 0,70

2,79 2,78 2,74 8,42A2B1 Triplaris cumingiana + 0 ml en 5 lt de agua 0,49 0,46 0,49 1,44 0,48A2B2 Triplaris cumingiana + 200 ml en 5 lt de agua 0,43 0,51 0,56 1,51 0,50A2B3 Triplaris cumingiana + 300 ml en 5 lt de agua 0,46 0,55 0,54 1,56 0,52A2B4 Triplaris cumingiana + 400 ml en 5 lt de agua 0,51 0,52 0,57 1,60 0,53

1,89 2,05 2,16 6,11 4,90 4,83 4,90 14,53

ADEVAF. de V. G.L. S.C. C.M. F. Cal. 0,50% 1%

Total 23 2,10        Repeticiones 2 0,24 0,12 1,71 NS 3,74 6,51Especies 1 0,78 1,78 25,42 ** 2,76 4,28Dosis 3 0,25 0,08 1,14 NS 3,74 6,51Interacción 3 0,14 0,04 0,57 NS 3,74 6,51Error 14 1,06 0,07      ** Altamente significativo al 1% de probabilidadNS No significativo

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29

5.3. Diámetro del tallo a los 30, 60, 90 días (cm).

Para esta variable (Cuadro 2), el factor relacionado con las especies forestales

presentaron diferencias estadísticas a los 30 y 60 días, donde la prueba de comparación

de medias de Tukey al 5% presentó dos rangos de significación reportado a los 60 días

un diámetro de tallos de 0,40 cm y a los 90 día con 0,70 cm para (S. macrophylla), que

estadísticamente fue superior a los valores obtenido por (T. cumingiana), que reportó un

diámetro de 0,10 cm a los 30 días y 0,50cm a los 90 días, comportamiento que estuvo

supeditado a las características agronómicas de cada especies, pero influencia por las

dosis del biofertilizante. Por su parte Parreño (2014), sostiene que para la siembra y

normas de aprovechamiento de bosques cultivados bajo sistemas agroforestales, es

importante en la fase de vivero la aplicación de productos orgánicos para mantener las

condiciones de la especie vegetal. Así mismo (Pulido, 2012), indica que en el ámbito

forestal la realización de un substrato orgánico, el cual identifica, a las plantaciones

forestales, árboles plantados y de regeneración.

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30

VI. Discusión

El cultivar S. macrophylla registró el mayor índice de germinación en la etapa

de semillero con el 90,95% resultado que estadísticamente fue superior al obtenido por

la especie T. cumingiana Fisher y Meyer, que reportó el menor valor con el 60,29% de

sobrevivencia, lo cual probablemente estuvo supeditado a sus características

agronómicas definidas de esta especie maderable, permitiendo exponer su componente

genético y por las condiciones favorables que proporcionó el biofertilizante, ya que para

(Murillo, 2012). Mientras que en la altura de la planta a los 30, 60 y 90 (cm) días la

especie S. macrophylla reportó el mayor valor a los obtenidos por el T. cumingiana,

que probablemente se deba a que es un árbol nativo, que se adapta a varios micro

ambientes y por las características agronómicas de planta hace que presente este

comportamiento, en situaciones favorables y desfavorables, en relación a esta especie

forestal que por su arquitectura propia de la planta en estado de vivero a esta edad es

susceptible a diversas condiciones adversas, entre ellas las condiciones de suelo y

ambiente de señala (Aguirre, 2014).

En las dosis del sustrato del biofertilizante a los 60 y 90 días con la dosis de 200

ml y 300 ml en cinco litros de agua la mayor altura de planta, mostrando que este

producto dice (Ortega, 2014), trata varios tópicos más que todo en lo relacionado a su

arquitectura de planta, que se muestra en un adecuado impacto en su crecimiento. Por lo

tanto, se requiere una mayor vinculación con el fin de colaborar en mejorar los sistemas

de producción y calidad de los biofertilizantes. Aunque es importante encontrar un

sustrato ideal, porque cada especie tiene requerimientos distintos, pero a través de

investigaciones científicas es posible hallar un sustrato óptimo que reúna las

condiciones mínimas requeridas por las especies a estudiar (Artieri, 2014). En general,

los nutrientes son vitales para el óptimo crecimiento de plantas, dice (Amaguaña, 2013)

en las especies forestales, al igual que los cultivos agrícolas, requieren de ciertos

elementos en el suelo, de manera que si algunos escasean, deben ser agregados en las

dosis y en el momento oportuno (Avellán, 2015). Las plantas captan los nutrientes del

suelo selectivamente, absorbiendo preferentemente los nutrientes.

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31

En el diámetro del tallo a los 30-60 y 90 días (cm) a los 30 y 60 días, para S.

macrophylla, que estadísticamente fue superior a los valores obtenido por T.

cumingiana Fisher y Meyer, que reportó un diámetro que estuvo supeditado a las

características agronómicas de cada especies, pero influencia por las dosis del

biofertilizante. Por su parte (Parreño, 2014), sostiene que para la siembra y normas de

aprovechamiento de bosques cultivados bajo sistemas agroforestales, es importante en

la fase de vivero la aplicación de productos orgánicos para mantener las condiciones de

la especie vegetal. En el número de hojas por planta S. macrophylla, reportó los

mayores valores y respondió en forma favorable a la aplicación de las dosis del

biofertilizante en forma de sustrato natural. Aunque señala (Suárez, 2015), que son

insumos formulados con uno o varios microorganismos benéficos (hongos y bacterias

principalmente), los cuales aumentan la disponibilidad de nutrientes para las plantas.

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VII. Conclusiones

De acuerdo a los resultados obtenidos se establecen las siguientes conclusiones:

En el porcentaje de germinación lo produjo el cultivar S. macrophylla que

registró el mayor índice de germinación en la etapa de semillero con el 90,95%.

En la altura de planta a los 30 y 60 días (cm), la misma especie reportó el mayor

valor con 8,19 cm; 18,73 cm y 28,73 cm y en la aplicación de las dosis del

sustrato de biofertilizante se pudo establecer que a los 60 días con la dosis de

200 ml y 300 ml en cinco lt de agua la mayor altura de planta con 13,89 cm y

13,59 cm en ese orden respectivo. Al interaccionarse el tratamiento S.

macrophylla con 200 ml en 5 lt de agua presentó el mayor valor con 8,41 cm a

los 30 días y 19,37 cm a los 60 días.

El diámetro de tallo reportó a los 60 días un diámetro de tallos de 0,40 cm y a

los 90 día con 0,70 cm para (S. macrophylla),

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33

VIII. Recomendaciones

En base al trabajo realizado se recomiendo lo siguiente:

Evaluar el porcentaje de germinación aplicando biofertilizante para

establecer potencialidad en calidad fisiológica y producción

Utilizar otros biofertilizantes en diferentes dosis y relacionar con sus

resultados obtenidos

Relacionar los resultados obtenidos de manera que se tomen en

consideración los problemas detectados, y así aplicar correctamente la

dosificación del biofertilizante

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34

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X. Anexos

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CROQUIS DE CAMPO

Testigo REPETICIONES

1 2 3

Caoba

t1+ agua-C

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T1+D1-EC

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T1+D1-EC

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T1+D1-EC

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t2+ agua-C

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t3+agua-C

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Fernán Sánchez

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FOTOS DE EVIDENCIA DE TRABAJO DE CAMPO