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Anestesiología
Tema 18
Anestesia en Animales Exóticos
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Programa de Anestesiología
ANESTESIOLOGÍA VETERINARIA
A - Anestesia General1. Introducción a la anestesia: concepto y
nomenclatura. 2. Evaluación preanestésica
B – Farmacología aplicada3. Preanestésicos: anticolinérgicos y
tranquilizantes4. Anestésicos intravenosos y disociativos5. Anestésicos inhalatorios6. Anestésicos locales. Analgesia loco-
Regional7. Relajantes musculares
C – Equipamiento y Monitorización8. Monitorización del paciente anestesiado9. Equipamiento anestésico
D – Técnicas de soporte. Complicaciones10. Dolor perioperatorio, reconocimiento y
tratamiento. Analgésicos11. Manejo de la vía venosa: Fluidoterapia12. Manejo de la vía aérea: Ventilación13. Complicaciones anestésicas
y su tratamiento
E - Anestesia por especies14. Anestesia en perro y gato15. Anestesia en équidos16. Anestesia en rumiantes y cerdo17. Anestesia en animales de laboratorio18. Anestesia en animales exóticos
F – Manejo anestésico en situaciones específicas
19. Anestesia en pacientes especiales sanos20. Anestesia en el paciente enfermo
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Objetivo del Tema
Conocer las características, fármacos y métodos empleados en la anestesia de Reptiles, Aves y Peces
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Anestesiología
Tema 18
Anestesia en Reptiles
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Anestesia en reptiles.
Características fisiológicas particulares
Poiquilotermia
Corazón tricavitario, excepto cocodrilianos
Sistema porta-renal
Adaptaciones físicas específicas
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Anatomía respiratoria
GlotisEn la base de la lengua: intubación sencillaQuelonios: lengua es más gruesa que dificulta la intubaciónCocodrilos: epiglotis desarrollada y disponen del pliegue gular que debe ser deprimido para permitir la intubación
TraqueaSaurios y los ofidios: anillos traqueales incompletosCocodrilos y quelonios: anillos completosQuelonios: traquea pequeña que se bifurca al entrar en la cavidad celómica.
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Administración de sustancias
Intramuscularen extremidades anteriores o posteriores.Ofidios, a lo largo de los paquetes musculares, preferentemente de los dorsales.
IntravenosaOfidios, vena ventral de la cola, o por punción intracardiacaQuelonios y saurios: venas yugular, dorsal de la cola, femoral y longitudinal del caparazón
IM, extremidad posterior
IV, dorsal de la cola
IV, yugularIC
IV, dorsal de la cola 8
Administración de Sustancias
IntraóseaEn tortugas y lagartos, en húmero y fémur, en tortugas además en puente del caparazón
Intracelómica
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Inducción Anestésica
Fases de la inducción anestésica en reptiles:
Excitación.Pérdida del reflejo de enderezamiento.Relajación muscular.Pérdida del reflejo de retirada.Reflejo de la membrana nictitante, en las especies que la tienen, se mantiene..Disminución de la frecuencia cardiaca, nunca por debajo del 80%.
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Inducción Anestésica e Intubación
InducciónCon mascarilla con isofluorano, halotano y sevofluoranoReptiles acuáticos y semiacuáticos son capaces de permanecer en apnea largos periodos de tiempo: se emplean sedantes inyectados
IntubaciónLa glotis se situa en la base de la lengua.Dificultades: Abrir el pico de los quelonios,En tortugas y cocodrilos los anillos traqueales son completos
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Mantenimiento
Anestésico de elecciónIsoflurano 1-2%
Flujo de O2<5 kg, sistema abierto, 0,3-0,5 l/kg/min.>5kg , sistema con absorción de CO2, 2-4 l/min para inducir, y 1-2 l/min para mantener
VentilaciónFrecuencia respiratoria normal 10-20 resp/minEn ventilación asistida: 2-6 resp/min, presión pico < 12 cm H2O
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Recuperación
Según anestésicoIsoflurano: 20-30 min para intervenciones de <1 hora.Anestésicos Inyectables: de horas a días
Ventilación asistidaMantener hasta que el animal ventile regular y expontaneamente.Se puede reducir a 2 resp/min para aumentar el CO2, o ventilar con aire ambiental
SoporteMantener la temperatura y la fluidoterapia para evitar retrasar la recuperación
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Protocolos Anestésicos
IsofluranoInducción y mantenimiento
Propofol5-10 mg/kg IV, IO + 0,25 mg/kg/min
Ketamina + Butorfanol10-30 mg/kg + 0,5-1,5 mg/kg IMpara pequeñas intervenciones en quelonios
Ketamina + diazepam60-80mg/kg + 0.2-0.8 mg/kg IMpara procedimientos que requieran relajación muscular
Ketamina + Medetomidina10 mg/kg + 0.1-0.3 mg/kg IM
Tiletamina + Zolazepam4-5 mg/kg SC, IM. Cirugía 30 min, recuperación en 1-12 h
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Anestesiología
Tema 18
Anestesia en Aves
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Fisiología Cardiovascular
Frecuencia CardiacaEntre 200-500 lpm. Colibríes 1000 lpm.
Gasto CardiacoMayor que en mamíferos y dependiente de la frecuencia Cardiaca
Presión ArterialControl poco conocido.Presiones ateriales más altas, > 150 mmHg en algunas especies
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Anatomía Respiratoria
GlotisAusencia de epiglotis, cuerdas vocales, cartílago tiroides
TráqueaAnillos cerrados de diámetro variable craneo-caudal (hasta 1/3).Diferentes morfologías (dobles, enrollamientos, divertículos)
En Anestesia:Espacio muerto elevado (x 4,5 respecto a mamíferos)Emplear tubos endotraqueales sin balón y con tamaño acorde a la porción caudal. No deben alcanzar la siringeDivertículos traqueales: Colocar vendajes en el cuello.
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Sacos Aéreos
Avasculares, No contribuyen al intercambio gaseoso.
Termoregulan y humidifican el aire.
Reducen y distribuyen el peso en el vuelo
Huesos neumatizados
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Fisiología Respiratoria
Frecuencia Respiratoria muy variableAvestruces (7rpm) → colibries (143 rpm)
Volumen corriente ligeramente superior a los mamíferos
Intercambio gaseoso en parabronquios y capilares aéreos
Modelo doble ciclo respiratorio
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Saco Aéreo Torácico Craneal
Inspiración
Tráquea
SiringeBronquioPrimario
Saco Aéreo Torácico Caudal
Saco Aéreo
Abdominal
Saco Aéreo Interclavicular
Bronquios Ventrales
Bronquios Dorsales
Bronquios Laterales
Segmento Acelerante
Bronquios Pulmonares
Parabronquios
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Parabronquios
Espiración
Saco Aéreo Interclavicular
Tráquea
SiringeBronquioPrimario
Segmento Acelerante
Bronquios Pulmonares
Bronquios Laterales
Saco Aéreo Torácico Caudal
Saco Aéreo
Abdominal
Bronquios Dorsales
Bronquios Ventrales
Saco Aéreo Torácico Craneal
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Ciclo respiratorio en las Aves
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Fisiología Respiratoria
Inspiración y espiración son activas:
No existe diafragma que separe cavidad abdominal y torácica
La musculatura respiratoria facilita el flujo de aire desde los sacos aéreos
Existe un flujo continuo de gas a través de los capilares aéreos desde los sacos aéreos
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Implicaciones Anestésicas del movimiento respiratorio
Monitorización de la frecuencia respiratoria difícilSe observa el movimiento de la quilla o capnografía
La posiciones en decúbito dorsal (supino) dificulta la ventilación:
Pared abdominal no sigue al esternón.Vísceras abdominales bloquean ostium y comprimen sacos aéreos caudales.Disminución volumen corriente y ventilación pulmonar.
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Eficiencia RespiratoriaEl intercambio gaseoso de las aves es muy eficiente, con una barrera de difusión muy delgada y extensa y con un intercambio continuo en los parabronquios y capilares alveolares
Ello implica:
Posibles sobredosificaciones (grisú)
Recuperaciones prolongadas por el efecto acumulativo en los sacos aéreos: el aire tarda más tiempo en renovarse.
La hipoxia/apneas no son bien toleradas en aves al ser el metabolismo elevado
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Termorregulación
Animales homeotermosTemperaturas varían entre 38-42ºC. Hipotermia <38ºC.Piel sin glándulas sudoríparas, eliminación calor por la erección de las plumas
La anestesia, especialmente los agentes inhalatorios y la relajación muscular provocan grandes pérdidas de calor
EVITAR PÉRDIDAS y APLICAR CALOR
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Vías de administraciónVía venosa
v. cubital v. metatarsiana
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Parasimpaticolíticos
No obligatorio su uso rutinario
Utilizar cuando se presente un animal con una historia previa de bradiarritmia
Atropina: 0,02-0,08 mg/kg IM
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Ketamina
Amplio margen de seguridadInducción rápidaMantiene Frecuencia CardiacaMantiene estabilidad ventilatoria
Excitación en la recuperaciónGran variabilidad de respuestas individuales
Utilización:Procedimientos cortosCirugía menorPrevio a anestesia general
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Xilacina+Ketamina
Combinación común: 100-200 mg/kg + 20-40 mg/kg
Buena relajación muscular y analgesia para la mayoría de intervenciones.
Inducción rápida y recuperación suave
Por especies:Género Buteo responde muy mal.Falconiformes y psitácidas responden muy bien.Acuáticas y columbiformes presentan movimientos espontáneos incluso a dosis muy altas.
Ketamina + Medetomidina: 100-200 mg/kg + 0,1-0,2 mg/kg: similar a la anterior 30
Antagonización
Fármacos:Yohimbina (ANTAGONIL®). 0.2 mg/kg) IV (0.5 mg/kg) IM.
Atipamezol (ANTISEDAN®) 5x dosis de medetomidina
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Tiletamina-Zolacepam
Inducción es rápida y suave
Recuperación es muy prolongada y esta asociada a factores desfavorables como temblores, excitación, aleteo.
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Propofol
Dosis: 20 mg/kg + 3mg/kg según demanda, IV
Poco empleada en aves aunque con buenos resultados
Gran incidencia de apneas:
Depresión respiratoria aguda y apneas documentadas en palomas (14 mg/kg).Utilizado en patos con pocas apneas.
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Analgesia
Características Generales:
Información escasa y confusa
Distribución de los receptores:en cerebro de palomas: kappa 76%, mu 14%
Difícil reconocimiento del dolor en aves.
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Analgesia
Monitorización del dolor mediante la respuesta al estímulo nociceptivo en:
CabezaCera del picoArticulacionesCloacaPeriostioEspacio InterdigitalAlmohadilla plantarPiel y vísceras
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Analgésicos
Buprenorfina0,01-0,03 mg/kg IM, IV, SCSeguro, reducción la CAM
Butorfanol0,1-0,5 mg/kg, IM, IV, SCMuy utilizado en psitácidasPuede producir bradicardia, y disminución de la ventilación
Fentanilo: ¡ Sin acción analgésica !
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Anestésicos Locales y AINEsAnestésicos Locales
Uso limitado en avesTópicamente para tratar heridas: benzocaina y bupivacainaToxicidad: adecuar las diluciones
Bupivacaina 0,5% (5 mg/ml): 1 mg/kgLidocaina 0,2% sin adrenalina (2 mg/ml): Diluir
AINEsKetoprofeno 5 mg/kg IM, en patosMeloxicam 0,2 mg/kgCarprofeno 1 mg/kg SC
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Anestesia Inhalatoria
Características Generales:Muy sensibles a las sobredosisInducción y recuperación más brevesPueden producirse cambios bruscos de planoMuy sensibles a hipoxia e hipercapniaDecúbito dorsal interfiere ventilaciónPotencian hipotermia y deshidrataciónHuesos neumatizados fracturadoscomplican la anestesiaNo se produce colapso pulmonar por cirugía torácica y abdominal
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Anestesia Inhalatoria
Isofluorano:
Efectos similares a mamíferos (Hipotensión)
La potencia es también similar (CAM)
Mejor tolerado en aves que el halotano
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CAM en aves
-1,35-Grulla
2,41.30,9Perro
-1,321,05Pato
2,21-0,85Gallina
-1,44-Cacatúa
Sevoflurano (%)Isoflurano (%)Halotano(%)
CAM para halotano, isoflurano y sevoflurano en aves
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Mascarillas y Tubos endotraqueales
MascarillasHan de adaptarse al pico y sus variaciones anatómicas
Empleadas en la inducción y mantenimiento de la anestesia
Tubo de sacos aéreos
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Ventilación Asistida
Se suele emplear cuando la depresión respiratoria de los anestésicos inhalatorios es excesiva
La presión pico aplicada se inferior a 15-20 cm H2O
Vigilar el movimiento de la pared abdominal y de la quilla para ajustar
Frecuencia Respiratoria:
Aves grandes: 8-25 resp/minAves pequeñas: 30-40 resp/min.
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Recuperación
OxigenaciónMantener oxigenado hasta que empiece a moverse, p.e. la cabeza
ExtubaciónEvitar aspiración de secreciones pero no retrasar
Evitar hipotermiaIncubadora …Jaula acolchada, ambiente tranquilo, con calor
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MonitorizaciónPlano anestésico
Superficial: reflejos presentes, ausencia de movimientos voluntarios
Medio: reflejo corneal (3er párpado) y podal presentes aunque reducidos, parpebral ausente. Respiración lenta, regular y profunda
Profundo: ausencia total de reflejos, Respiración lenta, irregular y superficial. Puede aparecer apnea
Signos vitales
Frecuencia cardiaca, ECG Frecuencia respiratoria, capnografíaPulsioximetría
Soporte
Mantener calienteMinimizar sangrado
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Cuidados postanestésicos
Envolver al ave con una toalla para prevenir traumatismos
Analgesia:Vigilar signos de dolorIniciar o mantener protocolos de analgesia postoperatoria
Mantener fluidoterapia
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Diagnósticas y Quirúrgicas
– Endoscopia de vías aéreas (laringe, tráquea y siringe).
– Oftalmología.
– Cirugía y exploración de la cabeza, cuello, buche, esófago y vías aéreas.
– Obstrucción de vías aéreas: semillas, granulomas fúngicos, tumores, concreciones de células epiteliales y mucus.
Anestesia por Sacos Aéreos
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Anestesiología
Tema 18
Anestesia en Peces
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ANESTESIA EN PECES
Se limita al empleo de unos pocos compuestos disueltos en el agua: Tricaina, Quinaldina, y CO2
El animal se recupera al pasar a un tanque de agua sin anestésico
Se emplean para la manipulación y pequeñas intervenciones quirúrgicas
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Anestésicos en pecesTricaina - (MS-222)Dosis: 15 to 330 mg/L tamponadas con NaHCO3 o Tris
Quinaldina y sulfato deDosis: 60 mg/L. Tamponar (0,45 g NaHCO3/1 g sulfato de quinaldina). Son irritantes
Dióxido de carbonoSe aplica como gas o administrando bicarbonato sódico. Se emplea para el transporte. Debe tamponarse
Isoeugenol (AQUI-S)Sedación: 5-10 mL/1000 lAnestesia: 17-20 mL/1000 l
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ResumenExóticos
Aves
Fisiología cardiovascularFrecuencia cardíaca
Fisiología respiratoriaCiclo respiratorio doble
Intubación endotraquealtamaño del tubo
Inducción anestésicaPropofol, ketamina, inhalatoria
Mantenimiento anestésicoInhalatorio
AnalgesiaOpioides kappa, AINEs
Reptiles
Anatomía y FisiologíaVías de administración
AnestésicosParenterales: ketamina y propofolInhalatorios: isoflurano
Analgésicos¿Opioides? ¿Otros?
Peces
Fisiología respiratoriaSoluciones anestésicas