Parásitos en los productos de la pesca y acuicultura
Protozoos de interés económico
Sub-reino Protozoa
-Phyla:
• Sarcomastigophora
• Apicomplexa
• Microspora
• Myxozoa
• Ciliophora
Sarcomastigophora
• Mastigophora (Flagelados):– Trypanosoma- HI: sanguijuelas (intestino) HD: peces (sangre).
– Trypanoplasma- HI: sanguijuelas (intestino) HD: peces (sangre).
– Cryptobia- HI: sanguijuelas (intestino) HD: peces (sangre). C. salmositica (truchas y salmones del género Oncorhyncus, carpas, tencas, ... )
– Ichthyobodo (Costia). Monoxeno.
– Hexamita y Spironucleus. Monoxeno. Intestino y vesícula biliar.
Sarcomastigophora: Mastigophora (Flagelados)
• Ichthyobodo (Costia) necatrix– Parásito monoxeno de peces de agua dulce.– Fase de vida libre (arriñonada u oval) y fases
parásita (piriforme).– Se fijan al epitelio a través de un disco adhesivo en el que está el citostoma, alimentándose del
contenido celular– Producen la “enfermedad de la turbidez de la piel”: velo blanquecino en agallas y piel, anorexia
aguda, lesiones, sobre todo en la aleta caudal, y muerte repentina. – Asociado a nutrición deficiente, alta densidad de peces y baja calidad del agua (pH, temperatura,
partículas, ...). – En peces sanos y/o adultos no es dañino. Pero es peligroso en alevines, peces con daños traumáticos
o con infecciones previas u otras enfermedades debilitantes. Importante en piscifactorías.– Diagnóstico microscópico.– Profilaxis: Mantenimiento de unas condiciones óptimas del agua y una buena alimentación.– Tratamiento: Baños en solución de formalina (250 ml/m3, 30 min), de ClNa (1-1,5 g/L, 20-30 min) o
de acriflavina (10 mg/L, 10 h). Y, siempre, cambio de tanque de cría.
Sección histológica de las agallas de un pezcon una fuerte infección por Ichthyobodo (Costia).Los parásitos, piriformes, se hallan unidos al epiteliode la agalla, alimentándose del contenido celular.
Fuente foto 1: http://www.dekoi.info/afbeeldingen/costia.jpgFuente foto 2: http://www.fishdoc.co.uk/disease/costia.htm
costia 01.mpg
Fuente vídeo: http://www.fishdoc.co.uk/video/fishmovies.htm
1
2
Sarcomastigophora
• Sarcodina (Amebas):– Acanthamoeba polyphaga (intestino, peritoneo
y agallas) => Ulceraciones en la córnea => ceguera en hombre.
– Schizamoeba (estómago e intestino)
Apicomplexa
• Perkinsiosis (enfermedad de dermo)– Perkinsus spp. Muy importante en moluscos.
• Coccidiosis– Eimeria subepithelialis. Coccidiosis nodular, en
intestino. No grave.– Eimeria carpelli. Enterococcidiosis. Más
grave. Destrucción de la mucosa intestinal. Pérdida de peso.
Microspora
• Parásitos obligados intracelulares. Sin mitocondria, peroxisomas ni aparato de Golgi.
• Transmisión por esporas muy pequeñas, de pared doble, ingeridas por el hospedador.
• La espora eclosiona, en respuesta a estímulos externos, y everte un tubo polar hueco (filamento polar) que permite el paso del esporoplasma al interior de la célula hospedadora.
• Reproducción asexual en el citoplasma de la célula hospedadora: esquizogonia y esporogonia.
Evertir: sacar algo volviéndolo del revés.
Fuente: H. Mehlhorn, editor, (2001) Encyclopedic reference of parasitology, vol. 1, Biology, structure, function. 2ª edn , Springer-Verlag, Berlin..
Microspora
Microspora:La espora
Esporas típicas de Tetramicra brevifilumFuente: http://www.mispeces.com/estudios/patologia/trouw-1/parasitosis_marinas.pdf
Fuente: http://www.palaeos.com/Eukarya/Units/Microsporidia/Microsporidia.000.html
Microspora
Fuente:http://www.cdfound.to.it/HTML/bie1c.htm
Microspora
Sección histológica de un intestino de rodaballodonde se observa un xenoma de Tetramicra brevifilum.
Fuente: http://www.mispeces.com/estudios/patologia/trouw-1/parasitosis_marinas.pdf
Fuente: http://www.abo.fi/instut/fisk/Fin/Parasiter/microspora.htm
Lesión producida por Glugea anomala.
Microspora• Glugea
• Nosema
• Loma
• Spraguea
• Ichthyosporidium
• Pleistophora
• Tetramicra
• Microgemma
• Thelohania
• Microsporidium
• Heterosporis
cysts: xenomas
http://www.state.me.us/ifw/fishing/fishlab/vol2issue1.htm
Se ha sugerido que los peces podrían actuar como fuente de infección humana por especies del género Pleistophora.
Myxozoa
• Parásitos de invertebrados y vertebrados poiquilotermos.
• Presentan esporas multicelulares con una pared formada por 1 ó 2 valvas, generalmente, que a veces tienen largas protuberancias.
• Las esporas se desarrollan en plasmodios (panesporoblasto) que contienen de 1 a 6 cápsulas polares con filamentos polares enrollados.
• Cuando las esporas son ingeridas por el hospedador, se unen a la pared intestinal por medio de los filamentos polares, descargando los esporoplasmas que atraviesan dicha pared, se dividen por mitosis y migran a diversos órganos del hospedador.
• Cuando las esporas no son ingeridas, pueden entrar en contacto con la piel del pez, inyectando, por medio de los filamentos polares, los esporoplasmas que se dividen por mitosis y migran a distintos órganos del hospedador.
Myxozoa
Fuente: H. Mehlhorn, editor, (2001) Encyclopedic reference of parasitology, vol. 1, Biology, structure, function. 2ª edn , Springer-Verlag, Berlín.
Ciclo de vida de Myxobolus (Myxosoma) cerebralis
gusano tubifícido (anélido), ej. Limnodrilus
trucha
Fase de triactinomyxonen M. cerebralis
CY, citómero;N, núcleo;P, célula pericítica; PF, filamento polar; PK, cápsula polar; S, célula esporogónica; SP, esporoplasma; V, valvas de la espora.
Fuente: http://en.wikipedia.org/wiki/Image:Fdl17-9-grey.jpg
Myxozoa
Ciclo epidemiológico de Myxobolus cerebralis
gusano tubifícido, ej. Limnodrilus
trucha
Fuente: http://en.wikipedia.org/wiki/Image:LifeCycle%28Myxobolus_cerebralis%29.jpg
Myxozoa. Myxobolus cerebralis: agente etiológico de la enfermedad del torneo en truchas y salmones
Sintomatología• Giros en círculo.
• Ennegrecimiento región caudal.
• Deformación dorso, mandíbulas y cabeza.
• Alta mortalidad en peces jóvenes.
Fig. 1. Jaw deformity resulting from juvenile infection by Myxobolus cerebralis.
Fig. 1. Jaw deformity resulting from juvenile infection by Myxobolus cerebralis.
Fig. 1. Jaw deformity resulting from juvenile infection by Myxobolus cerebralis.
Ennegrecimiento de la cola en una trucha arcoiris Deformación de la mandíbula inferior en una trucha arcoiris
This image (3) is scanned from the collection of Dr. Thomas L. Wellborn, Jr. The collection was donated to the US Fish & Wildlife Service in 1999. http://en.wikipedia.org/wiki/Image:Deformed_Brook_Trout.jpg
Imágenes 1 y 2 tomadas dehttp://www.state.me.us/ifw/fishing/fishlab/vol1issue2.htm
1
2
3Deformación de la cola en una trucha de arroyo
Myxozoa. Myxobolus cerebralisDiagnóstico• Signos clínicos: Diferenciar de dieta deficiente en triptófano y ácido ascórbico y de
contaminación del agua con tóxicos.
• Cortes histológicos: demostración de esporas en cartílago.
• Detección de anticuerpos por técnicas inmunológicas.
• PCR
A photomicrograph of the histological changes caused by Myxobolus cerebralis infection of salmonid cartilage, stained with Giemsa. From the collected images of Dr. Thomas L. Wellborn, Jr. http://en.wikipedia.org/wiki/Image:Whirling_disease_pathology.jpg
Tratamiento, prevención y control en acuicultura:
-Estanques de cemento (no de tierra para evitar los anélidos)
-Conducciones de material plástico resistente (evitar entrada de anélidos)
-Desinfección periódica de las instalaciones y del agua (filtración, cloración, UV)
-Tratamiento de los peces con fumagilina , ...
-Empleo de cepas de peces más resistentes a las infecciones
Espora: Ø 8-10 µm
Otros Myxozoa
• Myxobolus• Kudoa• Henneguya• Myxidium leei Sección histológica de un intestino de dorada
gravemente infectado por Myxidium leeiEsporas típicas de Myxidium leei
Fuente: http://www.mispeces.com/estudios/patologia/trouw-1/parasitosis_marinas.pdf
Xenomas producidos por infección con Myxobolus subtecalishttp://www.state.me.us/ifw/fishing/fishlab/vol4issue8.htm
Agalla de un lucio con xenomas que contienen millonesde esporas de Henneguya.http://www.state.me.us/ifw/fishing/fishlab/vol4issue5.htm
Ciliophora
• Ichthyophthirius multifiliis – Ich de agua dulce
• Cryptocarion irritans – Ich marino
• Trichodina y Trichodinella – Trichodiniasis
• Apiosoma y Epistylis – Enfermedad del alevín
• Chilodonella – Chilodonelliasis
Ciclo de vida de Ichthyophthirius multifiliis
CI, cilios; CV, vacuola contráctil; CW, pared quística en el fondo del estanque; CWS, pared quística en la piel; CY, citostoma; EN, teronte en o bajo epidermis; LC, cilio terminal largo; MA, macronúcleo; MI, micronúcleo; OP, apertura por ruptura de CW; Tomonte
Teronte30-50 μm
Trofozoíto o trofonte
1 hora
30 min - 2 días
1 ó varios trofontes en o bajo la epidermis. Ø hasta 1-1,5 mm
Tras 7-8 h. se forman256-1024 tomites
Fondo del estanque, lecho, ..
Fuente de los vídeos: http://www.fishdoc.co.uk/video/fishmovies.htm
Fuente: H. Mehlhorn, editor, (2001) Encyclopedic reference of parasitology, vol. 1, Biology, structure, function. 2ª edn , Springer-Verlag, Berlín.
white spot 01.mpg white spot 02.mpg
Tomites
Ichthyophthirius multifiliis, agente etiológico de la
enfermedad del punto blanco (ich)
Sintomatología• Presencia de puntos blancos a
modo de pústulas (1 mm) por la superficie del pez (1º aletas, 2º resto cuerpo, 3º opérculos y branquias, 4º muerte). El parásito puede atravesar la epidermis pero no la lámina basal (no alcanza la dermis).
• Tendencia a rascarse contra objetos.
• Natación errática.• Aletas plegadas.
Fuentes: http://www.alaquairum.net/enfermedad_del_punto_blanco.htm (foto superior) http://www.state.me.us/ifw/fishing/fishlab/vol3issue4.htm (foto inferiro)
Ichthyophthirius multifiliis, agente etiológico de la enfermedad del punto blanco (ich)
Diagnóstico• Síntomas clínicos (puntos
blancos, ...)
• Observación de los protozoos en frotis del contenido de un quiste.
Ichthyophthirius multifiliis. Trofozoítos con macronúcleo o micronúcleo visibles en secciones de tejido (izquierda) y agallas (derecha) de un pez.Fuente: http://www.cvm.okstate.edu/~users/jcfox/htdocs/clinpara/lst11_20.htm#img20
Fuente: http://www.alaquairum.net/enfermedad_del_punto_blanco.htm
Ichthyophthirius multifiliis, agente etiológico de la enfermedad del punto blanco (ich)
TratamientoEn baños (tiempo según producto).
• Quinina o tripaflavina contra la fase tomite/teronte.
• Formalina, azul de metileno, cloramina o verde malaquita para las fases tomonte y trofonte (trofozoíto).
Prevención y control• Tras la freza separar los adultos de
los tanques de desove (para evitar que si hay adultos infectados contaminen el tanque).
• Tras 5-6 días llevar alevines a los tanques de engorde (antes que una nuevas generaciones de parásitos les ataquen).
• Si los hay, eliminar los peces salvajes (pueden venir infectados).
• Tratamiento con radiaciones UV del agua de los tanques (agua muy clara y muy transparente al UV).
Prevención general en acuicultura
• Mantenimiento de unas condiciones óptimas del agua (pH, temperatura, salinidad, materia orgánica, contaminantes químicos o biológicos, ...).
• Limpieza exhaustiva y desinfección periódica de los tanques
• Alimentación equilibrada y variada.• Densidades no demasiado elevadas de peces.• Vigilancia para la detección precoz de
infecciones e instauración inmediata de las medidas de control.
• Evitar el estrés de los peces.• Evitar la introducción de peces salvajes
(pueden traer infecciones).
Recommended