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Fitopatología
Area Biodiversidad Vegetal y Microbiana
Campo Experimental “Villarino”
Casilla de Correo Nº 14 - S2125ZAA
Zavalla - Santa Fe – Argentina
www.fcagr.unr.edu.ar – agro@unr.edu.ar
Estrategias de Manejo sustentable de
Enfermedades
Docente: Profesora Rosanna Pioli
Dra. Or. Ciencias Biológicas. Esc. Grad. Fac. Cs. Bioquímicas y Farmacéuticas, UNR.
Investigador Cat. II (Máx. I) PNI. Ingeniera Agrónoma. Fac. Cs. Agrarias, UNR.
Profesor Adjunto, Cátedra Fitopatología, Carrera Ingeniería Agronómica.
Profesor A / Cargo Botánica Criptogámica, Lic. Recursos Naturales y Biodiversidad
Area Biodiversidad Vegetal y Microbiana: Responsable Titular del Laboratorio BioVyM
2014
JORNADAS DE PROTECCIÓN VEGETAL
De acuerdo a la Reunión Mundial sobre Alimentación 1996. “La seguridad alimentaria ocurre o existe cuando toda la gente y de manera sostenida en el tiempo tiene acceso a un alimento suficiente, seguro y nutritivo para mantener una vida sana y activa” Propuesta derivada de la presentación del Tema Calidad Sanitaria
Generar estrategias de producción de cultivos y semillas sustentables y en armonía con la vida urbana, rural y la preservación del ambiente.
2014
PLANTA SANA
es aquella que puede desarrollar sus funciones fisiológicas y expresar su potencial genético
HONGOS
BACTERIAS
VIRUS
Factores externos Climáticos edáficos Stress hídrico Anegamiento Fitotoxicidad
Factores medio vegetal Stress nutricional Factores fisiológicos
LOS PATÓGENOS
Origen Abiótico
Origen Biótico
LA OBSERVACIÓN
PRIMER PERCEPCIÓN
ENFERMEDAD Resultante de la Interacción
Genotipo planta – Ambiente - Poblaciones microbianas
Expresión de la planta
los síntomas
Hartman, Il.U
Expresión del Patógeno Fúngico
Picnidios
acérvulas peritecios
Peritecios
PATÓGENO CULTIVO
AMBIENTE FAVORABLE
MANEJO de SUELO y CULTIVO BIÓTICO-ABIÓTICO
ENFERMEDAD
El Sistema planta-patógeno-ambiente
INTERACCIÓN
COMPATIBLE
Espacio Tiempo
Macro Aéreo Edáfico
Micro ambiente vegetal
LA OBSERVACIÓN PRIMARIA Sn y Sg
DIAGNÓSTICO
ESTUDIOS EPIDEMIOLÓGICOS
CUANTIFICACIÓN
SELECCIÓN de GENOTIPOS
ESTRATEGIAS CONTROL SUSTENTABLES
Supervivencia y Diseminación Se y Rt Contacto y Penetración Incubación Infección Latencia Invasión y Colonización Reproducción Supervivencia y Diseminación
Cic
lo p
ato
génic
o
Ciclo de las relaciones hospedante-patógeno Ciclo de la enfermedad
DURACIÓN = 6, 15 a 45 días
HOSPEDANTE – Estados de desarrollo
PERÍODOS
La magnitud de las pérdidas depende de la etapa de desarrollo de cultivo
Foto EMBRAPA
Vegetativo Reproductivo
Nº de granos Peso RIESGO
R5 FL
CICLOS BIOLÓGICOS
FUENTES Y TIPO DE INÓCULO
BIO
TR
OF
OS
BIO
HE
TE
RO
TR
OF
OS
RELACIÓN CICLOS - BIOLOGICOS DEL PATÓGENO
- DE ENFERMEDAD
Gral. Fase asexual
Fase sexual
Agrios, 2005
AMBIENTE – combinaciones Tº- Humedad Progreso y Dinámica (nº de ciclos) de la Enfermedad
Penetration
Host recognition
Host plant
signs
symptoms
Fin Incubación
Fin latencia
EL PATÓGENO y LOS SIGNOS
- a. Macro esclerotos internos, de color negro en tallos y también en vainas.
- b. Esclerotos en contaminación
concomitante con las semillas.
- c. Esclerotos (indicado por flecha)
produciendo apotecios.
a
apotecios
escleroto c
b Berlin D. Nelson
ND Univ
Cristina Palacio
CICLO BIOLÓGICO de S. sclerotiorum
B
A Sustrato intermedio
colonizado
Patógenos Hemi Biotrofos
SUPERVIVENCIA
VARIABILIDAD GENÉTICA HOSPEDANTES
INÓCULO PRIMARIO
ETAPA PARASÍTICA sobre el CULTIVO – Fase asexual
RASTROJO
SEMILLAS R. Pioli
R. Pioli
R. Pioli
Tapari APS
ETAPA SAPROFÍTICA – Fase sexual- teleomorfo
Control de las enfermedades y particularmente las transmisibles a semillas
Prácticas culturales Rotaciones Diseño Espaciamiento/Densidad de plantas
Estrategias genéticas Evaluación y detección de germoplasma resistente
Estrategias químicas Bio fungicidas Producción de bio moléculas
Manejo y aplicación sustentables de las actuales
**
Estrategias
Epidemiológicas - Culturales
ALGUNAS ESTRATEGIAS A SEGUIR
Conocer las fuentes de inóculo
Estimar Inóculo Potencial
Disminuir el Inóculo
Patógenos Hemi Biotrofos
SUPERVIVENCIA
VARIABILIDAD GENÉTICA
HOSPEDANTES INÓCULO PRIMARIO
ETAPA PARASÍTICA sobre el CULTIVO – Fase asexual
RASTROJO
SEMILLAS R. Pioli
R. Pioli
R. Pioli
Tapari APS
ETAPA SAPROFÍTICA – Fase sexual- teleomorfo
Introducción de Fuente de inóculo 1º
Hongos asociados a semillas
Muchas gracias
SÍNTOMAS EN SEMILLAS causados por EFC y OTROS
Transmisión
Ciclo S Pl PM S Pl
Importancia de la Asociación Patógeno / Semilla
Importancia Económica
c- La magnitud del daño puede ser evaluado en diferentes momentos o estadios de desarrollo del cultivo, mediante monitoreos: 1- De emergencia- mortandad de plántulas en pre siembra, durante y posterior a la emergencia. 2- Durante el cultivo, evaluando cuantitativa y cualitativamente las pérdidas. 3- Durante el período de almacenamiento.
Importancia Epifitiológica
La semilla contaminada o infestada es la semilla que sólo transporta o acarrea los microorganismos superficialmente
La semilla infectada es aquella capaz de transmitir al patógeno a la plántula originada. Esta interacción patógeno semillas puede generar distintos niveles de daño: - Daño actual o individual de la semilla de mala calidad.
- Daño potencial posterior a la siembra y sobre el futuro cultivo.
- La semilla infectada constituye un sustrato efectivo para la supervivencia de los patógenos asegurándoles longevidad.
* La semilla actúa como vehículo de transmisión de patógenos a distancia * Representa la primera introducción y/o migración de nuevas patologías desde lotes contaminados a lotes libres
1º Inóculo colonizador
II- Infección y Mecanismos de transmisión de enfermedades de semillas
II.a- Concepto de un Ciclo de Transmisión:
Se refiere al proceso de transferencia del patógeno y su posterior establecimiento en la planta originada. Desde la semilla a la planta originada Desde la planta madre a sus semillas Esta asociación semillas - planta madre – semillas – plántula
suele denominarse TRANSMISION
II.b- Importancia:
La transmisión por semillas es un proceso muy eficiente por dos aspectos:
En el momento de la siembra posibilita la distribución homogénea del inóculo.
Favorece la infección precoz de la planta,
Coincide con los momentos de mayor susceptibilidad.
Patógenos asociados a semillas
Momento de infección
Relación con Cultivo antecesor
INCIDENCIA DE LOS PATÓGENOS en SEMILLAS y porciones de FRUTOS
ubicadas en posición P, M, D
Comunicaciones Biológicas, 2004; Fitopatología, 2000
DISTAL MEDIA PROXIMAL
SEMILLAS
Porciones
FRUTOS
B. VIAS de PENETRACIÓN e INFECCIÓN
C. TEJIDOS COLONIZADOS: Semillas y/o Frutos
2- Métodos Indirectos en Medio de cultivo
PATOLOGÍAS EN SEMILLAS
Relación entre Incidencia de patógenos en semillas de soja, el poder germinativo,
y el % de semilla infectada y muerta (Pioli et al., 1997)
V.b- Tasas epidemiológicas - Secuencia de determinación
a- Tasa de Inóculo en Semilla b- Densidad de Inóculo c- Tasa de Transmisión d- Tasa de aumento de inóculo e- Tasa de Restablecimiento del Inóculo f- Tasa de Reducción de la productividad
Interacciones de Patógenos de ciclo
reproductivo asociados a frutos y
semillas de soja
con insectos
INTERACCIONES PATÓGENOS de FIN DE CICLO
e INSECTOS
El daño patogénico en semillas está directamente relacionado al nivel de chinche / m2
- A mayor cantidad de chinches se observó una mayor incidencia de bacterias y
Fusarium asociados a la semilla de soja.
- Las semillas con daño severo causado por chinche presentaron mayor incidencia de
Phomopsis spp. y Alternaria spp.
- Cercospora kikuchii fue más frecuente en semilla sana y en ausencia de otros
patógenos.
Congreso Mundial soja. Rev. INTA Oliveros
Patógenos asociados a frutos y semillas
de especies arbóreas
potenciales Hospedantes secundarios
Patógenos en frutos y semillas de Especies forestales nativas
su relación con la viabilidad de semillas
III.d- Factores que afectan los Resultados
El equipamiento: Puede acarrear problemas de contaminación y obstaculizar la identificación o alterando los recuentos.
Técnicas auxiliares: Se relacionan fundamentalmente con las condiciones de limpieza y asepsia.
El Número y Tamaño de la Muestra: El Tamaño y representatividad de la muestra. Los análisis deben ajustarse a las Normas Internacionales fijadas por ISTA. Las condiciones y tiempo de almacenamiento de las muestras.
La semilla: Considerar datos sobre temperatura y humedad de cosecha, acondicionamiento, secado y almacenamiento. Edad de la semilla y la posibilidad de supervivencia del patógeno.
El Patógeno: Formas y etapas de supervivencia en patógenos biotrofos y hemi-biotrofos. Momento de infección y su ubicación en la semilla.
V.a- Patrones de Tolerancia
Factores que inciden en su determinación:
métodos de análisis de semillas utilizados
importancia económica de la especie
el destino geográfico: que se envíe a zonas que actualmente están libres,
pero donde las condiciones ambientales favorecen al patógeno.
factibilidad de control
determinación de la concentración del inóculo en las muestras de semilla y
en el suelo de los lotes de producción.
Los parámetros considerados para la fijación de Patrones de Tolerancia,
son la secuencia de una serie de determinaciones conocidas
como Tasas epidemiológicas
V.b- Tasas epidemiológicas - Secuencia de determinación
a- Tasa de Inóculo en Semilla b- Densidad de Inóculo c- Tasa de Transmisión d- Tasa de aumento de inóculo e- Tasa de Restablecimiento del Inóculo f- Tasa de Reducción de la productividad
Fuentes de inóculo 1º ya establecidas
Hongos asociados a Rastrojo
Degradación del rastrojo y Evolución de población patógena
Evaluó el efecto de Dos rotaciones M-S-T/S y T/S Dos tipos de labranzas SD y LV Factores climáticos (Tº-HR-Ppt) Micota total y específica asociada sobre el proceso de degradación del rastrojo de trigo a través del tiempo.
Fig. 2: Degradación anual del rastrojo de trigo Fig. 2: Degradación anual del rastrojo de trigo
Fig. 2: Degradación anual del rastrojo de trigo Fig. 2: Degradación anual del rastrojo de trigo
Fig. 2: Degradación anual del rastrojo de trigo
Degradación anual del rastrojo de trigo Período de 12 meses
PERSPECTIVAS
Estrategias de Control Cultural
y Químico
En cada Bloque
Colonias y picnidios de P. longicolla
T1-SD T2-LM T3- F1 T4- F2 En cada Bloque
Colonias y picnidios de P. longicolla
Efecto de Tratamientos Culturales y Químicos sobre
Patógenos asociados a Rastrojo
Tablas 1 y 2. Valores promedio de ufc de PL por g rastrojo de soja, bajo 4 tratamientos diferentes
Letras diferentes indican diferencias significativas entre los grupos, para Duncan con =0,05.
11,0 c1952,2 c4583,2 b7489,5 a
T4 F2T3 F1T2 LMT1 SD
Tabla 1: Trozos de tallo de mayor grosor
P. longicolla asociado al rastrojo de soja
(ufc / g rastrojo)
11,0 c1952,2 c4583,2 b7489,5 a
T4 F2T3 F1T2 LMT1 SD
Tabla 1: Trozos de tallo de mayor grosor
P. longicolla asociado al rastrojo de soja
(ufc / g rastrojo)
3624,4 bc426,5 c5525,8 b14209,7 a
T4 F2T3 F1T2 LMT1 SD
Tabla 2: Trozos de ramificaciones finas
3624,4 bc426,5 c5525,8 b14209,7 a
T4 F2T3 F1T2 LMT1 SD
Tabla 2: Trozos de ramificaciones finas
UFC – P. longicolla asociado a 2 tipos de residuos
de cosecha de soja
Rendimiento (kg/ha) en parcelas de Soja
con 4 Tratamientos del Rastrojo
TeSD, TeLM, F1SD, F2SD
403239794082
3616
3200,0
3400,0
3600,0
3800,0
4000,0
4200,0
1 2 3 4
Tratamientos
Ren
dim
ien
to k
g h
a
b *
a aa
RESULTADOS DE RENDIMIENTO
en SD Te, LMTe, SD F1 y SD F2
Los resultados indicaron:
a) La población patogénica asociada al rastrojo decreció de
manera significativa en aquellas parcelas sometidas a alguna
alternativa de control,
sea cultural (T2-Labranza Mínima)
o químicas (T3-FA y T4-FB)
b) Propuesta sugerida para la aplicación de químicos: es en
estadios vegetativos tempranos del cultivo
para protección de plántulas y
tratamiento de la fuente de inóculo primario: rastrojos
(Backman 1985; FCA 2003-2007).
Control de las enfermedades y particularmente las transmisibles a semillas
Prácticas culturales Rotaciones Diseño Espaciamiento/Densidad de plantas
Estrategias genéticas Evaluación y detección de germoplasma resistente
Estrategias químicas Bio fungicidas Producción de bio moléculas
Manejo y aplicación sustentables de las actuales
**
Estrategias genéticas: Caracterización de
interacciones P-P
Inoculación y selección
Estudio de respuestas fisiológicas de defensa vegetal
inducidas por hongos foliares en cultivos de soja y trigo
Beccacece Stella; Galli Nora; Giuntoli Gustavo; Uboldi Luciana;
Zanotti Eric; Pioli Rosanna.
Objetivos:
Detectar el incremento/disminución de algunos compuestos
vegetales isoflavonoides, proteinas totales y actividad de enzimas
peroxidasas, inducidos en respuesta a la inoculación natural de
patógenos foliares.
Identificar cuál/cuáles podrían ser utilizados como moléculas
antifúngicas endógenas en soja y otras especies (trigo).
Difundir estas nuevas alternativas o herramientas bio-químicas
naturales para minimizar el riesgo de enfermedades de cultivo.
S: H. Sanas
In: H. Inferctadas Sf: 2 Secciones Foliares
Apical
Basal
S: H. Sanas In: H. Inferctadas Sf: 2 SeccionesFoliares
Apical
Basal
S: H. Sanas In: H. Inferctadas Sf: 2 SeccionesFoliares
Apical
Basal
Fig. 3b : Comparaci ó n de valores medios
de mg PT / ml Ec en hojas Sanas e
Infectadas
Fig. 4 : Comparaci ó n de valores medios de
mg PT / ml Ec en 2 secciones foliares ( Sf ).
H. Sanas H. Infectadas
1 2
29
32
38
41
44
a
b
mg
.PT
/ m
l.E
c
35
Sf . Apical Sf . Basal
1 2 31
33
35
37
39
41
mg
PT
/ m
l E
c
a
b
Proteinas Totales frente a MOR
Fig. 3b : Comparaci ó n de valores medios
de mg PT / ml Ec en hojas Sanas e
Infectadas
Fig. 4 : Comparaci ó n de valores medios de
mg PT / ml Ec en 2 secciones foliares ( Sf ).
H. Sanas H. Infectadas
1 2
29
32
38
41
44
a
b
mg
.PT
/ m
l.E
c
35
Sf . Apical Sf . Basal
1 2 31
33
35
37
39
41
mg
PT
/ m
l E
c
a
b
Proteinas Totales frente a MOR
µm
ole
s p
rod
/ m
in.m
g
de e
nz
Fig. 5: Comparación de valores medios de µmoles
prod / min.mg de enz.,peroxidasa en Hojas Sanas e
Infectadas
Fig. 6: Comparación de valores medios de µmoles prod / min.mg
de enz., peroxidasa entre las secciones apicales y basales de la
lámina.
1 2
10
12
14
16
18
H. Infectadas H. Sanas
a
b
µm
ole
s p
rod / m
in.m
g
de
en
z
1 2
11
12
13
14
15
16
a a
µm
ole
s p
rod
/ m
in.m
g
de
en
z
Sec. apicales Sec. basales
µm
ole
s p
rod
/ m
in.m
g
de e
nz
Fig. 5: Comparación de valores medios de µmoles
prod / min.mg de enz.,peroxidasa en Hojas Sanas e
Infectadas
Fig. 6: Comparación de valores medios de µmoles prod / min.mg
de enz., peroxidasa entre las secciones apicales y basales de la
lámina.
1 2
10
12
14
16
18
H. InfectadasH. Sanas
a
b
µm
ole
s p
rod
/ m
in.m
g
de e
nz
1 2
11
12
13
14
15
16
aa
µm
ole
s p
rod
/ m
in.m
g
de e
nz
Sec. apicales Sec. basales
µm
ole
s p
rod
/ m
in.m
g
de e
nz
Fig. 5: Comparación de valores medios de µmoles
prod / min.mg de enz.,peroxidasa en Hojas Sanas e
Infectadas
Fig. 6: Comparación de valores medios de µmoles prod / min.mg
de enz., peroxidasa entre las secciones apicales y basales de la
lámina.
1 2
10
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16
18
1 2
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18
H. InfectadasH. Sanas
a
b
µm
ole
s p
rod
/ m
in.m
g
de e
nz
1 2
11
12
13
14
15
16
1 2
11
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13
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15
16
aa
µm
ole
s p
rod
/ m
in.m
g
de e
nz
Sec. apicales Sec. basales
CONCLUSIONES CONCLUSIONES
El contenido de Proteínas Totales se incrementó en las hojas con síntomas de la enfermedad MOR respecto a las hojas asintomáticas; y coincide con las respuestas previamente evaluadas sobre hojas expuestas a otras patologías (Beccacece y col., 2009).
La Actividad Peroxidasa, sin embargo, fue inducida y se manifestó diferencialmente en hojas, que aun habiendo estado expuestas almismo ambiente y patógeno C. sojina, no mostraron síntomas de MOR.
Si bien frente a esta enfermedad, la AP fue similar en secciones Apicales y Basales, en evaluaciones previas, la distribución de PT y AP fue heterogénea en la lámina foliar.
En próximos estudios se realizarán proteinogramas en extractos de genotipos con respuesta diferencial a la exposición al patógeno a fin de identificar otras proteínas potencialmente inducidas durante la interacción G. max – C. sojina.
CONCLUSIONES CONCLUSIONES
El contenido de Proteínas Totales se incrementó en las hojas con síntomas de la enfermedad MOR respecto a las hojas asintomáticas; y coincide con las respuestas previamente evaluadas sobre hojas expuestas a otras patologías (Beccacece y col., 2009).
La Actividad Peroxidasa, sin embargo, fue inducida y se manifestó diferencialmente en hojas, que aun habiendo estado expuestas almismo ambiente y patógeno C. sojina, no mostraron síntomas de MOR.
Si bien frente a esta enfermedad, la AP fue similar en secciones Apicales y Basales, en evaluaciones previas, la distribución de PT y AP fue heterogénea en la lámina foliar.
En próximos estudios se realizarán proteinogramas en extractos de genotipos con respuesta diferencial a la exposición al patógeno a fin de identificar otras proteínas potencialmente inducidas durante la interacción G. max – C. sojina.
•
•
•
• •
Enfermedad Enfermedad
Enfermedad
d.p.i. d.p.i.
d.p.i.
Disminuir el inóculo inicial
y tasa constante Disminuir la tasa
epidémica
Disminuir el tiempo
de exposición
PRÁCTICAS DE MANEJO DE LA ENFERMEDAD
Vanderplank, 1963
a. y c. ESTRATEGIAS CULTURALES
a. b.
c
a. y b. ESTRATEGIAS QUÍMICAS
a. y b. ESTRATEGIAS GENÉTICAS
Control de las enfermedades y particularmente las transmisibles a semillas
Prácticas culturales Rotaciones Diseño Espaciamiento/Densidad de plantas
Estrategias genéticas Evaluación y detección de germoplasma resistente
Estrategias químicas Bio fungicidas Producción de bio moléculas
Manejo y aplicación sustentables de las actuales
**
vía pulverización sobre los órganos
aéreos
Fungicidas
exógenos
Control de las enfermedades fúngicas
Estrategias químicas - Exógenas
Estructuras de los antifúngicos comerciales más comunes
C
N
O
NN
O
C
C C
H
O
CH3
O
O
H3C
Estrobirulinas Azoxistrobin
Benzimidazoles HN
N
NHOCH3
O
Carbendazim
Triazoles Penconazol
N
N
N
CH
H2C
Cl
Cl
H2C CH2
CH3
QUÍMICOS NATURALES
Respuesta endógena
de la planta
O
ON
OCH3
OCH3
N
R4R3
R2
R1
NH
R1
R2
R3
N
R1
R2
R3
N
H3C
H N
NH
H3C
N
N
N
N
CH
H2C
Cl
Cl
H2C CH2
CH3
N
N
N
O
CHCH
HO
CH3C
H3C
CH3
Estrategias genéticas - endógenas
Bio fungicidas – Prod. Químicos Metabolómicas
Los patógenos fueron aislados y
cultivados en condiciones
adecuadas para promover la
fructificación
APGA
Cebador: OP-AA01
Gel de poliacrilamida
Cebador: OP-AA06
Bioensayo
Extractos
EtOH
Dilución en agar (EET)
Incubación a 28 ºC ( 48 - 72 h)
250 125 100 62,5 50 25 12,5 6,25 3,12 1,56
CIM: concentración inhibitoria mínima
Selección de compuestos naturales anti-fúngicos
Fungicidas endógenos
Los compuestos más activos fueron las chalconas, particularmente activos frente a P. longicolla, C. truncatum, F. graminearum y N. oryzae.
Las flavanonas y el éster derivado del ácido cafeico mostraron buena actividad frente a P. longicolla y N. oryzae.
Gracias
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