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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD CIENCIAS QUÍMICAS
MODALIDAD INVESTIGACIÓN
TEMA:
EVALUACIÓN DE LA CALIDAD DEL AGUA DEL ESTERO
COBINA, SECTOR LA PLAYITA DEL GUASMO
UBICADA EN LA COOPERATIVA SAN
FELIPO DE LA CIUDAD DE
GUAYAQUIL FEBRERO
ABRIL 2015.
TRABAJO DE TITULACIÓN PRESENTADO COMO REQUISITO
PREVIO PARA OPTAR AL GRADO DE QUÍMICO Y
FARMACEÚTICO
AUTORES:
RICARDO JOSÉ SUÁREZ PELÁEZ
FABRICIO GUILLERMO RIVERA VIDAL
TUTOR:
Blgo. Gustavo Escobar Valdivieso M.Sc.
GUAYAQUIL – ECUADOR
2015
I
II
III
IV
V
DEDICATORIA
A nuestros padres, hermanos, amigos y a todas aquellas personas que nos
brindaron su apoyo incondicional en todo momento.
VI
AGRADECIMIENTO
Al capitán de navío Humberto Gómez Director del Instituto Oceanográfico de la
Armada por haber permitido realizar los análisis en las instalaciones de dicha
institución, al Q.F. Luis Burgos por brindarnos asesoría técnica en todo momento y a
todas aquellas personas que de una u otra forma contribuyeron en la realización de
este trabajo.
VII
ÍNDICE
Contenido Pág.
INTRODUCCIÓN. 1
PROBLEMA. 3
Planteamiento del problema. 3
Formulación del problema. 3
Justificación. 3
Objetivos.
Objetivo general. 4
Objetivos específicos. 4
Hipótesis. 4
Variables. 4
Variable dependiente. 4
Variables independientes. 4
Variables, Conceptualización, e indicadores. 5
1. MARCO TEÓRICO.
1.1. Antecedentes. 6
1.2. Estado del Arte. 7
1.3. Fundamentos Teóricos. 8
1.3.1. El Agua. 10
1.3.2. Estructura química. 11
1.3.3. Propiedades fisicoquímicas. 11
1.3.4. Calidad de Agua. 12
1.3.5. Principales parámetros que inciden en la
calidad de agua de un estuario. 13
1.3.5.1. Parámetros Físicos. 13
1.3.5.2. Parámetros Químicos. 16
1.3.5.3. Parámetros microbiológicos. 19
1.3.6 Índice de calidad Ambiental del Agua (ICA). 19
VIII
1.2. Glosario. 20
2. METODOLOGÍA DE LA INVESTIGACIÓN.
2.1. Metodo científico empleado en la investigación. 21
2.1.1. Método empírico. 21
2.2. Metodología. 21
2.3. Tipo de Investigación. 25
2.4. Diseño experimental de la Investigación. 25
2.5. Población y Muestra. 25
2.6. Criterios de Investigación. 25
2.6.1. Selección de las estaciones de muestreo. 25
2.7. Materiales y Equipos. 25
2.7.1. Materiales de campo. 25
2.7.2. Materiales Fungibles para laboratorio. 25
2.7.3. Reactivos. 26
2.7.4. Equipos. 28
2.8. Procedimiento. 29
2.8.1. Recolección de la muestra para la Determinación.
de oxígeno disuelto por Método Iodométrico. 30
2.8.2. Recolección de la muestra para la Determinación
de DBO (Demanda Bioquímica de Oxígeno) por
Método Iodométrico. 30
2.8.3. Recolección de la muestra para la Determinación
de pH por Método Potenciométrico. 30
2.8.4. Recolección de la muestra para la Determinación
de turbidez por Método de Turbidimetría. 31
2.8.5. Recolección de la muestra para la Determinación
de, TDS (Sólidos Disueltos Totales), por Método de
Conductimetría. 31
2.8.6. Recolección de la muestra para la Determinación
de sólidos suspendidos. 31
IX
2.8.7. Recolección de la muestra para la Determinación de
Fosfatos. 31
2.8.8. Recolección de la muestra para la Determinación de
Nitratos. 32
2.8.9. Recolección de la muestra para la Determinación
de Coliformes; Filtración por Membrana. 32
2.9. Análisis estadístico. 32
3. ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS.
Técnicas utilizadas para la recolección de la Información. 34
Análisis de resultados. 34
Conclusiones. 41
Recomendaciones. 42
Referencias bibliográfica. 43
ANEXOS. 46
X
ÍNDICE DE GRÁFICOS
Contenido pág.
Gráfico I. Temperatura 34
Gráfico II. Temperatura Ambiente 35
Gráfico III. Potencial de hidrogeno (pH) 35
Gráfico IV. Turbidez 36
Gráfico V. Sólidos suspendidos totales (TSS) 36
Gráfico VI. Sólidos disueltos totales (TDS) 37
Gráfico VII. Oxígeno Disuelto 37
Gráfico VIII. Demanda bioquímica de oxígeno 38
Gráfico IX. Fosfatos 38
Gráfico X. Nitratos 39
Gráfico XI. Coliformes fecales 39
Gráfico XII. Criterio de calidad con respecto al
Índice de Calidad Ambiental del agua ICA. 40
XI
ÍNDICE DE TABLA
Contenido pág.
Tabla I. Código y coordenadas de las estaciones de muestreo
de agua del estero Cobina balneario “La Playita”. 22
XII
ÍNDICE DE ANEXOS
Contenido pág.
ANEXO I.- Ubicación de las estaciones de muestreo. 46
ANEXO II.- Recolección de la muestra para la determinación
de oxígeno disuelto por método Iodométrico. 46
ANEXO III.- Recolección de la muestra para la determinación
de DBO por método Iodométrico. 46
ANEXO IV.- Recolección de la muestra para la determinación
de pH por método potenciométrico. 47
ANEXO V.- Recolección de la muestra para la determinación
de turbidez por método de turbidimetría. 47
ANEXO VI.- Recolección de la muestra para la determinación de
TDS por método de conductimetría. 47
ANEXO VII.- Recolección de la muestra para la determinación de
sólidos suspendidos totales. 48
ANEXO VIII.- Recolección de la muestra para la determinación de
fosfato. 48
ANEXO IX.- Recolección de la muestra para la determinación de
nitratos. 48
ANEXO X.- Recolección de la muestra para la determinación de
coliformes fecales; filtración por membrana. 49
ANEXO XI.- Resultados de la experimentación. 49
ANEXO XII.- Índice de Calidad Ambiental del Agua (ICA). 53
ANEXO XIII.- Evidencias 54
XIII
ÍNDICE DE IMAGENES
Contenido pág.
Imagen I. Ubicación geográfica del área de estudio. 10
Imagen II. Criterio de calidad con respecto al Índice de
Calidad Ambiental del agua ICA. 40
XIV
RESUMEN
Introducción la Playita del Guasmo es una zona recreativa que forma parte del
Estero Salado, el cual ha sufrido cambios significativos con el transcurso del tiempo,
modificándose inclusive su tamaño, no solo por las condiciones geomorfológicas
sino más bien por la actividad antropológica, lo que ha afectado sin duda
principalmente la calidad de sus aguas. Su importancia ecológica radica en sus
manglares siendo el manglar el mejor mecanismo natural de auto limpieza. Objetivo
evaluar la calidad del agua de la Playita del Guasmo, ubicada en la Cooperativa San
Felipo de la ciudad de Guayaquil, febrero-abril 2015. Metodología se escogieron 9
estaciones para la toma de muestra y respectivo análisis, procesos que fueron
realizados de acuerdo a los protocolos estandarizados por el Departamento de
Química Oceanográfica del Instituto Oceanográfico de la Armada. Resultados los
promedios obtenidos en cada uno de los parámetros entre los meses de febrero y
abril fueron: temperatura 34,7 0C, Ph 7,6, turbidez 19,05 NTU, sólidos suspendidos
totales 64,4 mg/l, sólidos disueltos totales 21875 mg/l, oxígeno disuelto 50% de
saturación, demanda bioquímica de oxígeno 1,94 mg/l, fosfato 0,68 mg/l, nitrato 1,25
mg/l, coliformes fecales 8458 UFC/100ml. Conclusión de acuerdo a los resultados
obtenidos se demuestra que las condiciones fisicoquímicas y microbiológicas del
área de estudio son aceptables según el Índice de Calidad Ambiental del Agua “WQI
2015” que presenta un nivel medio con un valor de 58,4 según los rangos
establecidos por el ICA.
Palabras claves: calidad, Playita del Guasmo, monitoreo, estaciones, estuario,
parámetros.
XV
ABSTRACT
Introduction: The “Playita del Guasmo” is a recreational place that is part of the
Estero Salado, which has had significant changes over the time, including its size
modification, not only in geomorphological conditions but rather by its
anthropological activity, which has affected without a doubt the quality of its waters.
Its ecological importance lies in the mangroves, being this the best natural self-
cleaning mechanism. Objective: Evaluate the quality of water of the “Playita
Guasmo”, located in the Cooperative San Felipo of Guayaquil, from February to April
2015. Methodology: 9 stations were chosen for sampling and analyzing, processes
that were performed according to the standardized protocols of the Department of
Chemical Oceanographic Institute of the Navy. Results: the average results
obtained in each of the parameters between the months of February and April were
34.7 0C temperature, pH 7.6, 19.05 NTU turbidity, total suspended solids 64.4 mg / l
total dissolved solids 21875 mg / l, dissolved oxygen 50% saturation, biochemical
oxygen demand 1.94 mg / l phosphate 0.68 mg / l, nitrate 1.25 mg / l, fecal coliforms
8458 CFU / 100ml. Conclusion: According to the obtained results, the
physicochemical and microbiological study area conditions are acceptable according
to the Index of Environmental Water Quality "WQI 2015" having an average level
with a value of 58.4 according to the ranges established by ICA.
Keywords: quality assessment, Playita del Guasmo, monitoring, stations, estuary
parameters.
1
INTRODUCCIÓN.
Los estuarios son zonas de transición entre el medio fluvial y marino, que están
constituidos por terrenos llanos inundables con suelos de fango y arena
prácticamente impermeables, drenados por diversos cauces y una tupida red de
caños. Se distingue de un río por sus intercambios de agua, sedimentos, nutrientes
y energía con la atmósfera y océano, que indican la dinámica y los procesos del
estuario, y el desarrollo de una compleja y rica diversidad biológica (Contreras,
2012).
El Estero Salado de la ciudad de Guayaquil ha sufrido cambios significativos con
el transcurso del tiempo, modificándose inclusive su tamaño, no solo por las
condiciones geomorfológicas sino más bien por la actividad antropológica, lo que ha
afectado sin duda principalmente la calidad de sus aguas. Su importancia ecológica
radica en sus manglares siendo el manglar el mejor mecanismo natural de auto
limpieza (Calero, 2010).
Las aguas del Estero Salado se caracterizan por tener una elevada turbidez, con
un alto contenido de sólidos suspendidos y disueltos. Además de presentar trazas
de hidrocarburos, pesticidas, y contenidos de metales pesados.
El conocimiento de la calidad de agua del balneario Playita-San Felipo de la
ciudad de Guayaquil reviste de vital importancia para la flora y fauna del medio que
lo rodea, por esta razón surgen diferentes investigaciones en el tema propuesto
como las realizadas por Ureta (2002) y Padau (2008) en las cuales se realizaron
diferentes caracterizaciones físicas, químicas, y biológicas, que revelan un alto
grado de contaminación que podría ser perjudicial para el sector turístico; además la
despreocupación ambiental, al existir contaminación por parte de los pobladores y
empresas aledañas, quienes se encuentran a las orillas del Estero Salado lo cual
2
provoca desprendimiento de gases tóxicos, acumulación de desperdicios a orillas
del Estero Salado, y contaminación del agua (Montero & Calapiña, 2012).
La Playita del Guasmo es una zona recreativa que fue inaugurada en julio del
2004 por la alcaldía de Guayaquil, forma parte del Estero Salado, el cual es un
sistema estuarino compuesto por una red de drenajes, el cual está conformado por
brazos de mar que se mezclan con las aguas del Rio Guayas (Calero, 2010).
3
PROBLEMA
Planteamiento del problema.
La Playita del Guasmo forma parte del estero Cobina, el mismo que a través de
los años ha aumentado los asientos poblacionales en sus riberas lo que ha
incrementado los desechos arrojados al balneario por falta de consciencia por parte
de sus moradores. Además de la descarga de aguas residuales domésticas e
industriales que van directamente a este sector turístico, así mismo la falta de
servicio sanitario. Todos estos factores conllevan a una determinada contaminación
del lugar que influyen en la calidad de agua.
Formulación del problema.
La contaminación por materia orgánica e inorgánica afecta a la calidad de agua
de la Playita del Guasmo, Cooperativa San Felipo de la ciudad de Guayaquil.
Justificación.
Desde su inauguración, la Playita del Guasmo, se ha convertido en sitio de
recreación, no solo de moradores de las cooperativas cercanas a este sector de la
ciudad de Guayaquil, sino de todo aquel que busque diversión y descanso y cada
vez la demanda aumenta, sin embargo la calidad del agua es cuestionable debido a
los desechos que son arrojados por los moradores del sector como: botellas
plásticas, fundas, pañales usados, cartones, cáscaras de frutas, chatarra, madera,
etc. También se debe a la descarga de aguas residuales domésticas e industriales
provenientes de centros poblados asentados en la zona de influencia, por lo que es
necesario realizar una evaluación de la calidad del agua de este sistema estuarino.
Este estudio servirá como datos de referencia para próximas investigaciones del
balneario con el fin de mejorar la calidad del agua del mismo lo que permitirá tomar
medidas de control que sean necesarias para la optimización del uso del agua en el
balneario la Playita del Guasmo.
4
Objetivos.
Objetivo general.
Evaluar la Calidad del agua del Estero Cobina sector “La Playita del Guasmo”,
ubicada en la Cooperativa San Felipo de la ciudad de Guayaquil, febrero-abril 2015.
Objetivos específicos.
1) Determinar los parámetros físicos-químicos, in situ y en el laboratorio, en las aguas de la Playita del Guasmo de la Cooperativa San Felipo.
2) Determinar la presencia de Coliformes fecales en las aguas de la Playita del Guasmo.
3) Determinar el nivel de calidad del agua de la Playita del Guasmo mediante el
Índice de Calidad Ambiental del Agua (ICA).
Hipótesis.
Las condiciones fisicoquímicas y microbiológicas del balneario de la “Playita del
Guasmo” no son aceptables de acuerdo al Índice de Calidad Ambiental del Agua
(ICA).
Variables.
Variable dependiente.
Calidad de agua.
Variables independientes.
Contaminantes: Físicos, químicos y microbiológicos.
5
Variables, Conceptualización e Indicadores
6
1. MARCO TEÓRICO.
1.1. Antecedentes
Estudios realizados por López et al (2012) en la Laguna de Tampamachoco,
(México) durante el periodo de invierno 2009 a invierno 2010, sobre las
características fisicoquímicas de las lagunas costeras mexicanas y sus variaciones
con respecto a las fluctuaciones climáticas estacionales muestran que la menor
saturación de oxígeno se presentó en invierno 2010 con un valor promedio de
65,99% con temperaturas más altas, los porcentajes de saturación de oxígeno en la
laguna, no evidencian signos de hipoxia. Los SDT fueron mayores en el invierno del
2009 con valores promedio de 26,24 ppt (parte por trillón).
Investigaciones realizadas por Rodríguez (2013) en la Bahía de Jaramijó en el
año 2007 indican que el promedio de oxígeno disuelto en todas las profundidades
tanto en época húmeda como en época seca se encontraron en un rango de 6.08 -
6.69 mg/l, con respecto a los nutrientes inorgánicos se encontraron concentraciones
bajas de ión nitrito de 0.3 ugat/l, (microgramo átomo por litro) además los fosfatos se
encontraron con valores promedios bajos de 0.5 ugat/l, para nitratos el valor
promedio registrado fue 1.1 ugat/l, con el ion silicato sus concentraciones promedio
en época húmeda fueron de 4.2 - 6.6 ugat/l.
Estudios realizados por CEMA (2014). “Centro de Estudios del Medio Ambiente”,
para el dragado de mantenimiento del canal de acceso al puerto marítimo de
Guayaquil, se realizaron análisis fisicoquímicos y microbiológicos donde muestran
valores de potencial de hidrógeno (pH) promedio superficial de 7,89, los promedios
de oxígeno disuelto de 7,22 mg/l, con respecto a la demanda bioquímica de oxígeno
(DBO), el promedio superficial registrado fue de 1,89mg/l, con respecto al fosfato,
los valores promedio fueron de 0,268 mg/l en la superficie, la concentración
7
promedio de nitritos y nitratos a nivel superficial fueron de 0,031 mg/l NO2 y 1,872
mg/l NO3.
Estudios realizados por Ureta (2002) indica que, investigadores ecuatorianos
especialistas como Valencia (1987) realizaron estudios sobre la calidad de las
aguas en el Estero del Muerto de la ciudad de Guayaquil, el mismo que es un ramal
del Estero Salado presentando un análisis de la influencia de la marea y profundidad
sobre la concentración de oxígeno disuelto en esta agua; el mismo concluyó que
existen condiciones deficitarias de oxígeno lo que indica problemas de
contaminación. El mismo autor realizó un estudio en 1995 en el Estero Salado de
los resultados obtenidos concluyó que los valores físicos-químicos como: oxígeno,
pH, sólidos suspendidos, y micro nutrientes determinan que las aguas tienen niveles
de contaminación más altos en reflujo (salida de agua) que en flujo (ingreso del
agua) lo cual se explica por el ingreso de aguas procedentes del Golfo de
Guayaquil. Así mismo concluyó que los nutrientes nitrogenados no oxigenados
(amonio y amoniaco) tienden a crecer mientras que los nutrientes nitrogenados
oxigenados como los nitritos y los nitratos tienden a decrecer lo que indica que el
ciclo biológico del nitrógeno en las aguas del estero no se está cumpliendo en su
totalidad lo que da como resultado una afección en la calidad de su agua, del mismo
modo aseveró que los valores para los fosfatos (de procedencia industrial) están
muchos más elevados que su valor permisible de 0.5 mg/l por lo que ocasionan un
desequilibrio en su asimilación como nutriente (relación nitrógeno / fósforo)
interfiriendo en el desarrollo del plancton autotrófico, dando paso al desarrollo de
especies heterotróficas (microalgas).
1.2. Estado del Arte
Investigaciones realizadas por Rodríguez (2013) en la Bahía de Jaramijó en el
año 2007 indican que el promedio de oxígeno disuelto en todas las profundidades
tanto en época húmeda como en época seca se encontraron en un rango de 6.08 -
6.69 mg/l, con respecto a los nutrientes inorgánicos se encontraron concentraciones
bajas de ión nitrito de 0.3 ugat/l, además los fosfatos se encontraron con valores
promedios bajos de 0.5 ugat/l, para nitratos el valor promedio registrado fue 1.1
8
ugat/l, con el ion silicato sus concentraciones promedio en época húmeda fueron de
4.2 - 6.6 ugat/l.
Estudios realizados por CEMA (2014). “Centro de Estudios del Medio Ambiente”,
para el dragado de mantenimiento del canal de acceso al puerto marítimo de
Guayaquil, se realizaron análisis fisicoquímicos y microbiológicos donde muestran
valores de potencial de hidrógeno (pH) promedio superficial de 7,89, los promedios
de oxígeno disuelto de 7,22 mg/l, con respecto a la demanda bioquímica de oxígeno
(DBO), el promedio superficial registrado fue de 1,89mg/l, con respecto al fosfato,
los valores promedio fueron de 0,268 mg/l en la superficie, la concentración
promedio de nitritos y nitratos a nivel superficial fueron de 0,031 mg/l NO2 y 1,872
mg/l NO3.
1.3. Fundamentos teóricos
El Golfo de Guayaquil se divide en dos áreas interna y el externa. El área interna
se desarrolla desde la Isla Puná a lo largo del Canal de Cascajal y se extiende hasta
el noreste por dos ramales: río Guayas y el Estero Salado (Ureta, 2002).
El Estero Salado es un sistema estuarino de aproximadamente 60 Km de
longitud que va desde el Puerto Marítimo hasta Posorja. Este ecosistema estuarino
ofrece una gran variedad de bienes y servicios ecológicos importantes para la
sustentación de comunidades costeras, albergando peces, crustáceos y moluscos
de valor ecológico y comercial. El Estero Salado por ser un brazo de mar y no recibir
aportes de afluentes, sus aguas tienen ciertos movimientos que no están dirigidos
hacia el mar abierto predominantemente, el cuerpo de agua se desliza con la marea
hacia el mar, pero recupera su posición inicial con el reflujo de la misma; este
comportamiento afecta la renovación y autodepuración de las aguas del Estero
Salado principalmente en la zona interna que delimita con la ciudad de Guayaquil
(Calle, Monserrate, & Medina, 2008).
9
Los aportes de agua dulce hacia el Estero Salado se dan a través de un pequeño
transporte de agua dulce desde el rio Guayas a través del Canal Puná, siendo este
flujo el de mayor origen de agua dulce por volumen para el Estero Salado.
Mezclándose con aguas del Golfo de Guayaquil a través del Canal del Morro, es
transportada por las corrientes producidas por las mareas hacia el estuario.
También tenemos un aporte de agua dulce en estaciones lluviosas la cual se dirige
a los canales de la parte superior del estuario a través de riachuelos (Calero, 2010).
El Balneario “La Playita” se encuentra ubicado en la ciudad de Guayaquil,
parroquia Ximena, entre la cooperativa San Felipo y Miami Beach en el Estero
Cobina, ocupando un área aproximadamente de 4000 𝑚2 de playa y 3500 𝑚2 de
infraestructura con un malecón de 270 m de longitud, presenta un muelle pequeño
para embarcaciones de bajo calado, áreas verdes, baños, graderíos, iluminación,
patio de comida etc. con una altura de 2m.s.n.m., una temperatura que fluctúa entre
24 - 30°C, y una precipitación anual entre los 500 – 1000 mm. Este sector turístico
posee una gran riqueza en flora entre los cuales se encuentran Mangle blanco,
Álamo, Chirigua, Verdolaga, Bototillo etc. La fauna presenta diversas variedades de
peces, moluscos, aves etc.
El agua del estero es turbia, esto se debe a los desperdicio que provienen de
empresas camaroneras, del destripaje del pescado, producto de la pesca artesanal,
o de los mismos moradores que no tienen conocimiento de la contaminación que
ellos provocan, aguas residuales provenientes de casas aledañas que no presentan
ningún tipo de servicios básicos. Su estado se encuentra alterado debido a la
modificación de la playa por la creación de muros de contención, muelle de bajo
calado, graderíos, etc. Lo que produce erosión (Naranjo & Almiña, 2013).
10
Imagen I: Ureta (2002). Ubicación geográfica del área de estudio.
1.3.1. El Agua.
El agua, un compuesto extraordinariamente simple, es sin embargo una
sustancia de características tan excepcionales y únicas que sin ella sería imposible
la vida. El agua es en el hombre, el líquido en el que se produce el proceso de la
vida y, de hecho, la supervivencia de las células depende de su capacidad para
mantener el volumen celular y la homeostasia. Es fundamental para prácticamente
todas las funciones del organismo y es también su componente más abundante. Sin
embargo, aunque dependemos de ella, nuestro organismo no es capaz de
sintetizarla en cantidades suficientes ni de almacenarla, por lo que debe ingerirse
regularmente. Existen organismos capaces de vivir sin luz, incluso sin oxígeno, pero
ninguno puede vivir sin agua. En la naturaleza no se encuentra nunca el agua de los
químicos, es decir, el agua pura, inodora, incolora e insípida. El agua de los ríos, el
agua subterránea, el agua de lluvia y el agua que bebemos contiene siempre otras
sustancias disueltas que, aún en cantidades reducidas, aportan cualidades
organolépticas y nutritivas por lo que el agua también debe considerarse un
alimento (Carbajal & Gonzales, 2012).
11
1.3.2. Estructura química.
Carbajal y González (2012), indican que el agua es una molécula sencilla que
está formada por átomos pequeños, dos de hidrógeno y uno de oxígeno, unidos por
enlaces covalentes muy fuertes que hacen que la molécula sea muy estable. Tiene
una distribución irregular de la densidad electrónica, ya que el oxígeno, uno de los
elementos más electronegativos, atrae hacia él, los electrones de ambos enlaces
covalentes, de manera que alrededor del átomo de oxígeno se concentra la mayor
densidad electrónica y cerca de los hidrógenos la menor. La molécula tiene una
geometría angular lo que hace que pueda unirse a otras muchas sustancias polares
(Carbajal, et al 2012).
La atracción electrostática entre la carga parcial positiva cercana a los átomos de hidrógeno de una molécula de agua y la carga parcial negativa cercana al oxígeno de otra, permite la unión de moléculas de agua vecinas mediante un enlace químico muy especial y de excepcional importancia para la vida y que explica el amplio abanico de sus propiedades físicas y químicas: el puente de hidrógeno. El enlace sólo requiere que el átomo electronegativo que atrae al hidrógeno sea pequeño, posea un par de electrones no enlazantes y una geometría que permita que el hidrógeno haga de puente entre los dos átomos electronegativos. Cada molécula de agua puede potencialmente formar 4 puentes de hidrógeno con otras tantas moléculas de agua dando lugar a una estructura tetraédrica reticular relativamente ordenada, responsable de sus peculiares propiedades físico-químicas. Esta atracción es fuerte porque las moléculas de agua, siendo pequeñas, pueden acercarse mucho más que moléculas mayores y quedan firmemente atraídas por su gran polaridad (Carbajal, et al 2012. p. 67,68).
1.3.3. Propiedades fisicoquímicas.
El agua es uno de los elementos más importantes desde el punto de vista
fisicoquímico, hasta tal punto que sus temperaturas de transformación de un estado
a otro han sido tomadas como puntos fijos, a pesar de que su punto de congelación
y ebullición sean anormales, debido a las asociaciones moleculares. A temperatura
ambiente, el agua pura es inodora, insípida e incolora, aunque adquiere una leve
tonalidad azul en grandes volúmenes, debido a la refracción de la luz al atravesarla,
12
ya que absorbe con mayor facilidad las longitudes de onda larga (rojo, amarillo,
naranja) que las longitudes de onda corta (azul, violeta), desviando lentamente
estas otras, provocando que en grandes cantidades de agua esas ondas cortas se
hagan apreciables. Su importancia reside en que casi la totalidad de los procesos
químicos que suceden en la naturaleza, no solo en organismos vivos sino también
en la superficie no organizada de la tierra, así como los que se llevan a cabo en la
industria tienen lugar entre sustancias disueltas en agua. El agua posee una gran
cohesividad intermolecular, condicionando su alto punto ebullición, de fusión y
elevado calor específico. Romper estos puentes, que en una masa de agua son
muchos, requiere mucha energía y por ello el agua tiene un punto de ebullición tan
alto. Esta es la razón por la que el agua es líquida en el amplio rango de
temperaturas en las que se producen las reacciones de la vida y no un gas como le
correspondería por su bajo peso molecular (Felez, 2009).
1.3.4. Calidad de Agua.
Aranda (2004) determinó que, el concepto de calidad de agua es complejo y
difícil de precisar, ya que éste va a variar según la utilización de la misma ya sea de
uso comercial, industrial, recreativo, etc. Sin embargo se pueden medir sus
cualidades realizando cuantificaciones químicas, físicas y biológicas lo cual permitirá
calificarla y determinar su calidad con respecto al uso que se le va a dar. Las
fuentes de contaminación de un estuario se ha divido en fuentes puntuales y fuentes
difusas. Las fuentes puntuales son las que se pueden identificar físicamente con
precisión como tuberías, túneles, pozos, etc. Las fuentes difusas son aquellas que
no pueden identificarse con precisión como la escorrentía de la zona agrícola. La
contaminación del agua que proviene de fuentes difusas, es el resultado de una
diversidad de actividades humanas, donde los contaminantes no tienen un punto
preciso de ingreso en los cursos de agua que los reciben; la contaminación se da
cuando el agua discurre sobre la superficie del terreno y al percolar por el subsuelo,
va arrastrando los contaminantes y los lleva finalmente a aguas superficiales,
costeras y subterráneas, por lo que son más difíciles de identificar, medir y controlar.
13
De acuerdo a Calapiña y Montero (2012, p. 16), las posibles causas y
consecuencias de la contaminación del Estero Salado son:
Causas.
Poco interés ambiental que hay en el sector por parte de los moradores.
Sobre población.
Fábricas cercanas que derraman sus desperdicios al agua sin razón alguna.
Desconocimiento del horario del recolector de basura por la empresa “Puerto Limpio”.
Falta de conocimiento de las sanciones impuestas por el gobierno ante la
contaminación.
Desconocimiento de enfermedades producidas por la contaminación.
Consecuencias.
Desprendimiento de gases tóxicos generados por la descomposición de los desechos.
Acumulación de desperdicios a orillas del Estero Salado.
Enfermedades dermatológicas, virales y bacterianas.
1.3.5. Principales parámetros que inciden en la calidad de agua de un estuario.
1.3.5.1. Parámetros Físicos.
Temperatura.
La energía solar ingresa a través del agua como luz, calentándola y es absorbida
exponencialmente almacenándose la mayor cantidad de calor en la capa superficial.
Altas concentraciones de materia orgánica disuelta y particulada aumentan la
absorción de la energía en comparación con las aguas menos turbias dependiendo
14
de la transferencia de calor de capas superficiales o capas profundas de la mezcla
del agua (Ureta, 2002). La temperatura es un factor importante en la velocidad de
las reacciones químicas y procesos biológicos tales como oxidación de la materia
orgánica, incremento de concentración de microorganismos etc. El aumento de
temperatura disminuye la solubilidad de los gases e incrementa la de las sales
minerales (Solano, 2009).
Si la temperatura aumenta, disminuye la capacidad que tiene el agua para
retener oxígeno lo que conlleva a que aumente la actividad fisiológica de los
organismos acuáticos produciendo la asfixia de los mismos. Un aumento de
temperatura de 10°C suele doblar la tasa de descomposición y consumo de O2.
Debe considerarse también que la temperatura es un factor que permite determinar
el tipo de especies que habitan en un medio acuático, ya que regula la actividad
química que ocurre en el agua .Por otro lado la actividad bacteriológica es más alta
en aguas cálidas que en frías, así pues especies que están a temperaturas en el
agua sobre su óptimo terma, están sujetos a parásitos y sobrecrecimiento bacterial
(Ureta, 2002).
Potencial de Hidrógeno (pH).
Es un indicador importante de la condición química de las aguas estuarinas. En
los estuarios el pH se controla generalmente por la mezcla de solutos de agua
salada con el flujo de agua dulce. Un factor importante que influye en el pH de las
aguas estuarinas es la solubilidad al CO2, el cual está en función principalmente de
la salinidad y luego de la temperatura (Solano, 2009).
El pH indica la actividad de iones H+ en una solución expresada en términos
logaritmo negativo, se expresa en una escala que va de 0 a 14. El pH de las aguas
estuarinas se ve afectado por diferentes tipos de efectos como lo es la deposición
ácida provocada por la contaminación atmosférica, residuos de minería,
eutrofización causada por descargas excesivas de nutrientes, también puede ser
afectado por actividad bacteriana, turbidez, procesos naturales como la fotosíntesis
y respiración de los organismos (Padau, 2009).
15
Los valores de pH incrementan cuando el fitoplancton ha pasado por una
fotosíntesis activa y disminuyen por la respiración de animales o por
concentraciones grandes de material orgánico y la descomposición de detritos
provocando que se incremente el consumo de Oxígeno Disuelto y la evolución de
CO2 (Ureta, 2002).
Turbidez.
El mayor componente de la turbiedad en los estuarios es el limo (sedimento en
suspensión). La descarga de limo por ríos y arroyos a los estuarios varía según las
estaciones en las épocas lluviosas que es donde existe la máxima descarga del
mismo. Según Solano (2009) determinó que, la turbiedad tiene dos efectos
importantes en los estuarios:
Primero: reduce el OD al disminuir la penetración de luz ya que esto afecta
directamente la producción y cantidad de macrófitos acuáticos, lo que reduce la
producción de oxígeno, las plantas morirán más fácilmente y las bacterias
comenzarán a descomponerlas lo que hará que disminuya el oxígeno. Las
partículas suspendidas en el agua absorben calor adicional de la luz solar lo que
ocasionará el aumento de su temperatura. El agua caliente no es capaz de guardar
tanto oxígeno como el agua fría, por lo que los niveles de OD bajaran aún más
especialmente cerca de la superficie.
Segundo: el asentamiento de material particulado puede provocar depósitos de
lodo, limo, otros sedimentos y detritos.
Sólidos Disueltos y Suspendidos.
El análisis de sólidos es necesario para el control biológico y físico en los
procesos de tratamiento de aguas, así como también para evaluar complicaciones
que tienen que ver con afluentes de desperdicios domésticos, aguas negras,
desperdicios industriales y agrícolas, generalmente se presenta estas
complicaciones por el abuso en la utilización de pesticidas, fungicidas y fertilizantes
16
que son arrastrados por las lluvias hacia los ríos y estuarios. Aguas con
concentraciones altas de sólidos disueltos, por lo general son de inferior calidad, y
podrían provocar diferentes reacciones fisiológicas al ingerirlas o al estar en
contacto primario o secundario con ellas (Ureta, 2002).
Los sólidos suspendidos son partículas erosionadas del suelo que son
arrastradas al agua junto con otros materiales en suspensión estas se expresan en
términos de masa total, la turbidez que provocan dificulta la vida de algunas
especies y los sedimentos que se acumulan destruyen sitios de alimentación o
desove de los peces (Solano, 2009).
Los sólidos suspendidos aumenta el área de crecimiento de hongos y bacterias
por lo que podría incrementar el potencial de enfermedades en el sistema acuático,
así mismo estas partículas absorben varias sustancias químicas como el fosfato por
lo que la fertilización puede ser menos efectiva en aguas turbias esto se debe a que
los nutrientes no están libres para incorporarse a la textura de las plantas (Ureta,
2002).
1.3.5.2. Parámetros Químicos.
Oxígeno Disuelto.
El oxígeno es un gas de constitución variable, poco soluble, el cual su solubilidad
depende de la temperatura, de las presiones parciales de vapor saturado y de la
cantidad de sólidos disueltos, necesario para la vida de los organismos acuáticos al
ser utilizado en procesos de respiración, oxidación - reducción, solubilidad de
minerales y descomposición de materia orgánica, obtenido a través de la atmósfera
o por medio de la fotosíntesis, para poder realizar sus procesos metabólicos del cual
obtienen energía necesaria para su desarrollo y reproducción (Padau, 2008).
La concentración de oxígeno depende del balance entre los fenómenos de
producción de oxígeno y consumo, la producción de oxígeno está directamente
relacionada con el proceso de fotosíntesis, mientras que el consumo de oxígeno se
17
da por los procesos de respiración o descomposición de sustancias orgánicas, si el
consumo de oxígeno es mayor que la producción del mismo, la concentración de
oxígeno caerá por debajo de los niveles necesarios para la vida sostenible de
muchos organismos acuáticos en especial los peces que son muy sensibles a la
hipoxia (Goyenola, 2007).
Merizalde (2008), indica que en la Norma de Calidad Ambiental la concentración
de oxígeno disuelto en estuarios no debe ser menor a 5mg/l para la preservación de
flora y fauna en los estuarios.
Demanda Bioquímica de Oxígeno DBO.
La Demanda Bioquímica de oxígeno es indicador de contaminación orgánica en
aguas residuales y superficiales, nos da a conocer la cantidad de oxígeno que se
necesita para oxidar la materia orgánica en una muestra de agua por medio de una
población microbiana heterogénea. Los datos obtenidos son en si la materia
orgánica biodegradable que se encuentra en agua estuarinas, este proceso se da a
través de la respiración del plancton y bacterias (Ureta, 2002).
Valores altos reflejan en un cuerpo de agua muy contaminado polisaprobico, en
donde solo viven los microorganismos más resistentes a la contaminación,
tornándose el agua de un aspecto séptico con alta turbiedad, color y olor (Solano,
2009).
Nutrientes Inorgánicos.
Fosfatos.
Los fosfatos son compuestos importantes para la vida porque permiten la
transmisión de información genética, además estos compuestos son los principales
medios de energía para la célula. Las principales fuentes de fosfatos son las rocas
fosfatadas, excremento de aves marinas y depósito de animales fosilizados, Los
fosfatos son liberados de estas reservas por medio de erosión natural y lixiviación,
18
gran parte de estos fosfatos liberados llegan a los ecosistemas marinos y son
depositados en sedimentos superficiales o profundos (Ureta, 2002).
El fosforo es un elemento que favorece a la eutrofización lo que provoca la
proliferación de algas, y organismos macrotíficos, que se desarrollan reproducen y
mueren, dejando como resultado materia orgánica en descomposición que consume
grandes cantidades de oxígeno, dejando como resultado las bajas concentraciones
de oxígeno, provocando hipoxia a los organismo acuáticos (Padau, 2008).
Nitratos.
Son iones que están presentes en forma natural en los estuarios como
consecuencia de la deposición atmosférica, la escorrentía superficial y subterránea,
disolución de depósitos geológicos ricos en nitrógeno, descomposición biológica de
la materia orgánica, y la fijación de nitrógeno por organismos procariontes
(Camargo, Alonso, 2006).
La acción tóxica de los Nitratos se debe a la conversión de los pigmentos
respiratorios (hemoglobina, hemocianina) en formas que son incapaces de
transportar y liberar oxígeno (meta-hemoglobina, meta-hemocianina), lo cual puede
causar asfixia y en último término la muerte. Sin embargo, el nitrato presenta una
menor toxicidad que el nitrito como resultado de su baja permeabilidad branquial, lo
cual hace que su absorción a través de las branquias sea más limitada (Camargo, et
al 2006).
1.3.5.3. Parámetros microbiológicos.
Coliformes.
Los Coliformes totales son bacterias Gram negativo los cuales tienen la
capacidad de fermentar la lactosa a 35°C. Con producción de gas, entre ellos se
encuentra un subgrupo denominado Coliformes fecales que presentan
características similares con la diferencia que tienen la capacidad de desarrollarse a
19
temperaturas de 45°C y producir indol a partil de triptófano , el mayor representante
de este subgrupo es la Escherichia Coli que es considerado como indicador de
contaminación fecal (Salcedo, 2013).
Los Coliformes fecales han sido utilizados como indicadores para determinar la
calidad de aguas estuarinas por su capacidad de adaptación y resistencia al medio
marino lo cual permite revelar si el medio ha sufrido contaminación fecal por
descargas de aguas residuales. Estudios epidemiológicos indican que altas
concentraciones de coliformes fecales en cuerpos hídricos producen enfermedades
gastrointestinales cuando estos no cumplen con los requisitos mínimos de calidad
microbiana (Salcedo, 2013).
1.3.6. Índice de calidad Ambiental del Agua (ICA).
Se trata de un número único que expresa la calidad de un recurso hídrico
mediante la integración de parámetros de calidad del agua, reduce una gran
cantidad de parámetros a una expresión simple para una fácil interpretación por
técnicos, administradores ambientales, y público en general, el ICA más usado para
medir la calidad del agua superficial es el WQI – Water Quality Index de la
Fundación Nacional de Salinidad (NSF), de los Estados Unidos, 1970, desarrollado
por método DELPHI (encuesta a 142 expertos de los Estados Unidos), de los cuales
se consideran 9 parámetros como los más importantes para determinar la calidad
del Agua (OD, coliformes fecales, pH, DBO5, nitratos, fosfatos, diferencia
temperatura, sólidos totales). No incluye pesticidas, metales pesados,
hidrocarburos, etc (Hernán & Patiño, 2009).
El índice de calidad ambiental de agua superficial involucra la ponderación de los
nueve parámetros establecidos de acuerdo a los pesos que han sido dados por los
expertos.
20
1.4. Glosario.
Calado: Es la distancia vertical entre un punto de la línea de flotación y la línea base
o quilla, con el espesor del casco incluido.
Precipitación: Caída de agua por la condensación del vapor sobre la superficie
terrestre.
Peso molecular: es el resultado de la suma de los pesos atómicos de los
elementos que forman una molécula.
Actividad Fisiológica: Proceso Fisicoquímicos que se desarrollan en los seres
vivos como parte de su metabolismo.
Sedimentos: Material sólido acumulado sobre la superficie terrestre derivado de las
acciones de fenómenos y procesos que actúan en la atmósfera, en la hidrosfera y
en la biosfera.
Erosión: es la degradación y el transporte del suelo o de roca que producen
distintos procesos en la superficie de la tierra. Entre estos agentes está la
circulación de agua o hielo , el viento, o los cambios térmicos.
Presión atmosférica: Es la fuerza por unidad de área que ejerce el aire sobre
la superficie terrestre.
Polisaprobico: Especies marinas que pueden vivir en condices exigentes como en
aguas sin oxígeno, turbias, mal olientes.
Hipoxia: es un estado de deficiencia de oxígeno.
Plantas macrófitas: Son formas macroscópicas de vegetación acuática.
21
2. METODOLOGÍA DE LA INVESTIGACIÓN.
2.1. Método científico empleado en la investigación.
2.1.1. Método empírico.
Utilizamos este método porque nos permitió verificar la hipótesis así como
responder a las interrogantes de la investigación tomando como base, datos a
través del estudio de resultados de la actividad.
2.2. Metodología
La realización del presente trabajo, corresponde a la Evaluación de la calidad de
agua del Balneario “La Playita” con una distancia de 270 mts, en la cual se
escogieron 9 estaciones, cada estación de muestreo fue identificado por un código y
coordenadas geográficas, mediante un sistema de posicionamiento global (GPS). El
estudio se dió entre los meses de Febrero y Abril, dentro de los cuales se realizaron
4 monitoreos, transcurriendo un tiempo entre monitoreos de 15 días, para la
realización de los monitoreos se utilizaron embarcaciones de remo los cuales tenían
las condiciones adecuadas para realizar el trabajo de campo.
22
Tabla II. Código y coordenadas de las estaciones de muestreo de agua del estero
Cobina balneario “La Playita”: (Rivera y Suarez, 2015).
ESTACIONES DE
MUESTREO
COORDENADAS
Latitud Longitud
E1 2°17´7.68”S 79°53´4.04”O
E2 2°17´7.75”S 79°53´0.78”O
E3 2°17´7.43”S 79°52´58.11”O
E4 2°17´9.51”S 79°53´3.83”O
E5 2°17´9.33”S 79°53´0.67”O
E6 2°17´9.18”S 79°52´58.01”O
E7 2°17´10.72”S 79°53´0.58”O
E8 2°17´6.17”S 79°52´51.40”O
E9 2°17´10.04”S 79°53´10.59”O
La metodología aplicada la presente investigación se lleva a cabo mediante 3
etapas:
Etapa I: trabajo de campo.
Se realizó el trabajo de campo en el Estero Cobina del denominado balneario “La
Playita”, para la obtención de las muestras en las 9 estaciones seleccionadas de
acuerdo a criterios de investigación, se escogieron 4 tipos de envase destinados a
los diversos análisis, botellas Winkler oscuras de 300 ml para el análisis de DBO,
botellas Winkler de 300 ml para al análisis de oxígeno disuelto, el cual se fijó a
través de los reactivos Sulfato Manganoso (S𝑂4𝑀𝑛) y Ioduro de Potasio (IK),
botellas plásticas de 1L para el análisis de turbidez, sólidos disueltos totales, sólidos
suspendidos, nutrientes inorgánicos: fosfatos y nitratos, por último se utilizaron
fundas estériles para análisis microbiológico: coliformes fecales.
23
En general se siguió los requerimientos especiales para la toma y enumeración
de la muestra de acuerdo a los protocolos estandarizados por el Departamento de
Química Oceanográfica del INOCAR (Instituto Oceanográfico de la Armada 2015).
Las muestras fueron analizadas de inmediato a excepción de los nutrientes
inorgánicos: fosfatos y nitratos los cuales fueron preservados en refrigeración
durante 24 horas para el posterior análisis.
Etapa II determinación de parámetros.
Los parámetros empleados para el análisis de las muestras fueron escogidos de
acuerdo con el Índice de Calidad Ambiental del Agua (ICA) que es un número único
el cual expresa la calidad de un recurso hídrico, el mismo que considera 9
parámetros como los más importantes para determinar la calidad del Agua (OD,
coliformes fecales, pH, DBO5, nitratos, fosfatos, desviación de temperatura, sólidos
totales). Desarrollado por método DELPHI (encuesta a 142 expertos en USA).
Parámetros Físicos.- Temperatura (in situ), sólidos disueltos totales, potencial de hidrógeno, sólidos suspendidos totales.
Parámetros Químicos.- Oxígeno disuelto, demanda bioquímica de oxígeno
y los micronutrientes como son, nitratos, y fosfatos.
Parámetros Microbiológicos.- Recuento de coliformes fecales.
Etapa III Metodología de Cálculo del ICA.
El Índice de Calidad Ambiental del Agua se calculó a través del sistema DELPHI que
se basa en una fórmula desarrollada por la Fundación Nacional de Salinidad (NSF),
la fórmulas consiste en la sumatoria de los pesos dados por los expertos por el
subíndice obtenido de las curvas estándares de cada parámetro.
iiNSF IWWQI
24
2.3. Tipo de Investigación.
Tipo de investigación: explicativa.
2.4. Diseño experimental de la Investigación.
No experimental, longitudinal, cuantitativa.
Técnica de recolección de la información:
Análisis de contenido.
2.5. Población y Muestra.
La selección de los puntos de muestreo en el Estero Cobina fue comprendido en
una longitud de 270 mts, la muestra fueron porciones superficiales del balneario
denominado “La Playita” entre los meses de Febrero y Abril en época de invierno,
seleccionados en 9 estaciones de acuerdo a los criterios de investigación, los cuales
se distribuyeron de la siguiente forma:
E1, E2, E3.- Las muestras fueron tomadas en la orillas del estuario a las esquinas y en el centro.
E4, E5, E6.- Las muestras fueron tomadas en el centro del estuario.
E7.- Las muestras fueron tomadas en la orilla del manglar al frente
con el balneario.
E8.- Las muestras fueron tomadas a 200 metros corriente abajo dirección a las esclusas.
E9.- Las muestras fueron tomadas a 200 metros corriente arriba
dirección al Puerto marítimo (Anexo 2).
25
2.6. Criterios de Investigación.
2.6.1. Selección de las estaciones de muestreo.
1. Influencia de la población
2. Influencia del sector camaronero
3. Influencia del puerto marítimo.
4. Influencia de las exclusas
2.7. Materiales y Equipos.
2.7.1. Materiales de campo.
2 Hieleras
2 Chalecos salvavidas
Guantes Descartables
Embarcación
Botellas Winkler
Botellas para DBO
Botellas plásticas de 1Lt
Fundas estériles microbiológicas
Parafilm
Guantes descartables
Marcador permanente.
2.7.2. Materiales Fungibles para laboratorio.
Matraz aforado de 200 ml
Fiolas de 500 ml
Pipetas de 10 ml
Beacker de 1000 ml
Cubeta de vidrio
26
Caja Petri
Matraz aforado de 1000 ml.
10 Botellas de vidrio
Probeta de 500 ml
Puntas para micropipeta
Micropipeta de 1000 µl
Botellas plásticas estériles.
Toallas absorbentes
Embudos imantados
Filtros estériles
Cronómetro
Embudos de rosca
Pinzas estériles
Papel aluminio
2.7.3. Reactivos.
REACTIVO FÓRMULA CONCENTRACIÓN
Sulfato manganoso (S𝑂4𝑀𝑛) 0,15M
Ioduro alcalino IK 70%KOH- 15% IK- 3,8%
Na𝑁3
Ácido sulfúrico CONC.
(S𝑂4𝐻2) 99%
Tiosulfato de Sodio
(𝑆2𝑂3𝑁𝑎2) 0,025M
Solución de Almidón
1%
Molibdato de Amonio (para
fosfatos)
Mo𝑂4𝑁𝐻42 3%
Ácido Sulfúrico (para fosfatos) (S𝑂4𝐻2) 85%
27
Ácido Ascórbico 𝐶6𝐻8𝑂6 5,4%
Tartrato de Antimonio y Potasio
(𝐶4𝑂6)𝑆𝑏 𝐾
0,14%
Molibdato de Amonio (para
silicatos)
Mo𝑂4𝑁𝐻42 4%
Ácido Sulfúrico (para silicatos)
(S𝑂4𝐻2)
50%
Metol Sulfito (6N𝐻3OMe)
S𝑂32−
1,2% NaS𝑂3 – 2% Metol
Ácido Oxálico
(𝐻2𝐶2𝑂4)
10%
Agua destilada
N/A N/A
Sulfanilamida
(𝐶6𝐻8𝑁2𝑂2S) 1%
N-1 Naftiletilendiamina
(𝐶12𝐻14𝑁2.2HCl) 0,1%
Cloruro de Amonio
Cl NH4 25%
Medio m - Endo para coliformes
totales
N/A N/A
Caldo mfc para coliformes
fecales
N/A N/A
28
2.7.4. Equipos.
EQUIPO DESCRIPCIÓN MARCA CÓDIGO
Termómetro digital
Se midió la temperatura
superficial del Estero
Cobina.
Fisher
Scientific
EQ-QUI-080
Bureta digital
Se tituló las muestras
con Tiosulfato de Sodio
(𝑆2𝑂3𝑁𝑎2) 0,025 M.
Brand
EQ-QUI-096
Incubadora Se incubó las muestras
de DBO a una T° de
20°C.
Pol-eko
505BC10536
Potenciómetro Se realizaron las lecturas
de pH.
WTW EQ-QUI-038
Turbidímetro Se realizaron las lecturas
de turbidez.
Hach EC-2013-2956
Conductímetro Se realizaron las lecturas
de Conductividad,
Sólidos Disueltos
Totales.
Hach EQ-QUI-096
Balanza analítica Se utilizó para pesar los
filtros para sólidos
suspendidos y reactivos.
Sartorius EQ-QUI-093
Bomba de presión
Se Utilizó para los
procesos de filtración por
membrana y para sólidos
suspendidos.
Heidolph 37346601
Desecador
Se utilizó para secar los
filtros con materia
orgánica.
Sanpla Dry
Keeper
EQ-QUI-069
Destilador de Agua Se utilizó para obtener Thermo N/A
29
2.8. Procedimiento.
2.8.1. Recolección de la muestra para la Determinación de oxígeno disuelto
por Método Iodométrico.
La muestra de agua fueron recolectadas en botellas Winkler de 300 ml y fijadas
con Sulfato Manganoso (S𝑂4𝑀𝑛) y Ioduro Alcalino (IK), se agregó Ácido Sulfúrico
agua destilada para los
diversos análisis.
Columna de Cu y
Cd
Se realizó la
transformación de nitritos
a nitratos.
Thomas N/A
Cabina de flujo
laminar
Sirve para eliminar
partículas de aire, y
mantener un ambiente
limpio.
Labconco EQ-QUI-047
Incubadora 35°C Permitió el crecimiento
de bacterias coliformes
totales.
Fisher EQ-QUI-012
Incubadora 45°C Permitió el crecimiento
de bacterias coliformes
fecales (Escherichia
Coli).
Thermo
scientific
EQ-QUI-042
Autoclave Permitió la esterilización
de los materiales y
medios de cultivos.
Zelian EQ-QUI-019
Espectrofotómetro. Se realizaron las lecturas
de las absorbancias para
fosfatos, silicatos, nitritos
y nitratos.
Thermo EQ-QUI-007
30
(S𝑂4𝐻2), luego se procedió a realizar la titulación de Iodo Libre con una solución de
Tiosulfato de Sodio (𝑆2𝑂3𝑁𝑎2) 0,025 M, hasta dar una coloración amarillo pajizo,
después se añadió solución de almidón la cual da una coloración azulada a la
solución, se continuó con valoración gota a gota, y se verificó la desaparición del
color azul como indicador de punto final de la titulación (Ver Anexo 2).
2.8.2. Recolección de la muestra para la Determinación de DBO (Demanda
Bioquímica de Oxígeno) por Método Iodométrico.
Las muestras fueron recolectadas en botellas Winkler oscuras de 300 ml luego
se procedió a la incubación de las muestras a una temperatura de 20°C por 5 días
para el crecimiento de microorganismo que oxidan la materia orgánica, después se
fijó las muestras con Sulfato Manganoso (S𝑂4𝑀𝑛) y Ioduro Alcalino (IK), se agregó
Ácido Sulfúrico (S𝑂4𝐻2) para disolver el precipitado, se procedió a realizar la
titulación de Iodo Libre con una solución de Tiosulfato de Sodio (𝑆2𝑂3𝑁𝑎2) 0,025 M
hasta dar una coloración amarillo pajizo, después se añadió solución de almidón la
cual dió una coloración azulada, se continuó con la titulación gota a gota, y se
verificó la desaparición del color azul como indicador de punto final de la titulación.
(Ver Anexo 3).
2.8.3. Recolección de la muestra para la Determinación de pH por Método
Potenciométrico.
Las muestras fueron recolectadas en botellas plásticas de 1 L. en de las
estaciones seleccionadas, se procedió a la calibración del potenciómetro con buffer
de pH 4 Y pH 10, se colocaron las muestras en vaso de precipitación, luego se
procedió a la lectura de las muestras, y después los valores fueron registrados en
una base de datos (Ver Anexo 4).
31
2.8.4. Recolección de la muestra para la Determinación de turbidez por Método
de Turbidimetría.
Se utilizaron las muestras que fueron recolectas en botellas plásticas de 1 L. Se
realizó la calibración del turbidímetro con sus respectivos estándares, luego se
agitaron las muestras, después fueron colocadas en el turbidímetro para proceder a
la lectura de las mismas, y los valores fueron registrados en una base de datos en
unidades de NTU (Ver Anexo 5).
2.8.5. Recolección de la muestra para la Determinación de, TDS (sólidos
disueltos totales), por Método de Conductimetría.
Se utilizaron las muestras que fueron recolectas en botellas plásticas de 1 L. Se
calibró el conductímetro con su respectivo estándar a una temperatura de 25 °C, se
agitaron las muestras para proceder a la lectura de los sólidos disueltos totales,
luego se registró dicho valor en una base de datos en mg/l para Sólidos Disueltos
Totales (Ver Anexo 6).
2.8.6. Recolección de la muestra para la Determinación de sólidos
suspendidos.
Se pesaron filtros vacíos en balanza analítica, se registraron dichos valores,
luego se armó el equipo de filtración que fue conectado a una bomba de presión, se
colocaron los filtros vacíos en el equipo donde se filtró 200 ml de la muestras, los
filtros fueron llevados al horno de secado, después fueron colocados en el
desecador y por último se pesó nuevamente los filtros con los sólidos suspendidos,
y se calculó el resultado por diferencia de peso ( Ver Anexo 7).
2.8.7. Recolección de la muestra para la Determinación de Fosfatos.
Se utilizaron las muestras que fueron filtradas en la determinación de sólidos
suspendidos, se adicionó 25 ml de las muestras filtradas en fiolas, luego se le
32
agrego la mezcla reactiva se dejó en reposo, se hizo la lectura en un
espectrofotómetro a 885 nm y se procedió hacer los cálculos respectivos (Ver Anexo
8).
2.8.8. Recolección de la muestra para la Determinación de Nitratos.
Se utilizaron las muestras que fueron filtradas en la determinación de sólidos
suspendidos, se adicionó la muestra filtrada en fiolas, luego se le agregó Cloruro de
Amonio concentrado (ClNH4 Conc), se procedió a pasar la muestra a través una
columna reductora de Cobre (Cu) y Cadmio (Cd). Después se le adicionó
Sulfanilamida (𝐶6𝐻8𝑁2𝑂2S) y Naftiletilendiamina dihidrocloruro (𝐶12𝐻14𝑁2.2HCl), se
dejó en reposo, luego se hizo la lectura en un espectrofotómetro a 543 nm y se
procedió hacer los cálculos respectivos (Ver Anexo 9).
2.8.9. Recolección de la muestra para la Determinación de Coliformes Fecales;
Filtración por Membrana.
Se recolectaron las muestras en fundas plásticas estériles, después se preparó
agua de peptona para realizar las diluciones respectivas a continuación se esterilizó
el agua de peptona junto con el material que se iba utilizar para el análisis. Luego se
realizó la dilución de la muestra 1/100, después se procedió a filtrar las diluciones
en el equipo de filtración por membrana, a continuación se colocó el filtro en los
medios para coliformes fecales, se procedió a incubar a 45 °C para coliformes
fecales, luego de 24h se procedió a la lectura (Ver Anexo 10).
2.9. Análisis estadístico.
El análisis estadístico fue realizado en la plataforma de Excel en el cual se
introdujeron fórmulas para obtener la concentración de los parámetros establecidos
para la evaluación de la calidad de agua del Balneario “La Playita”.
33
El ICA es un programa basado en el sistema de encuesta DELPHI donde se
introdujeron los valores promedios de los 9 parámetros utilizados que son
Coliformes fecales (UFC/100 ml), oxígeno disuelto (% de saturación), pH, demanda
bioquímica de oxígeno (mg/l), fosfato (mg/l), nitratos (mg/l), turbidez (NTU),
diferencia de temperatura, sólidos totales (mg/l) y relaciona dichos valores con los
pesos de los nueve parámetros expresados como índice referencial del cual se
obtiene un valor que describe la calidad ambiental del balneario “La Payita”.
34
3. RECOLECCIÓN DE DATOS. ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN DE
RESULTADOS.
Técnicas utilizadas para la recolección de la Información.
Análisis de contenido
Análisis de resultados.
Para la realización de los análisis estadísticos e interpretación del presente
estudio se obtuvo el apoyo de un asesor técnico del Instituto Oceanográfico de la
Armada.
Parámetros físicos.
Gráfico I: (Rivera y Suarez, 2015). Temperatura.
En el gráfico I se observa que la máxima temperatura registrada se obtuvo en el
monitoreo # 2 con un valor de 37,2 oC, con una temperatura mínima de 29,02 o
Monitoreo 12015/02/17
Monitoreo 22015/03/04
Monitoreo 32015/03/18
Monitoreo 42015/04/15
Series1 36,8 37,2 35,7 29,2
010203040
Gra
do
ce
nti
grad
os Promedio de temperatura
35
registrada en el monitoreo # 4, teniendo un promedio entre los meses de Febrero y
Abril de 34,7 oC.
Gráfico II: (Rivera y Suarez, 2015). Temperatura Ambiente.
Gráfico II: se observa que la máxima temperatura ambiente registrada se obtuvo en
el monitoreo # 2 y # 3 con un valor de 33 oC, con una temperatura mínima de 29 o C
registrada en el monitoreo # 4, teniendo un promedio entre los meses de Febrero y
Abril de 31,2 oC.
Gráfico III: (Rivera y Suarez, 2015). Potencial de Hidrógeno
En el gráfico III se observa que el máximo valor de pH registrado se obtuvo en el
monitoreo # 2 con un valor de 7,9, con un valor mínimo de 7,4, en el monitoreo # 4,
teniendo un promedio entre los meses de Febrero y Abril de 7,6.
Monitoreo 12015/02/17
Monitoreo 22015/03/04
Monitoreo 32015/03/18
Monitoreo 42015/04/15
Series1 7,7 7,9 7,5 7,4
77,27,47,67,8
8
Promedio de pH
Monitoreo 12015/02/17
Monitoreo 22015/03/04
Monitoreo 32015/03/18
Monitoreo 42015/04/15
Series1 33 33 29 30
26
28
30
32
34G
rad
o c
en
tigr
ado
s
Temperatura Ambiente
36
Gráfico IV: (Rivera y Suarez, 2015). Turbidez
En el gráfico IV se observa que el máximo valor de turbidez registrado se obtuvo
en el monitoreo # 4 con un valor de 26,7 NTU, y un valor mínimo de 15,9 NTU, en el
monitoreo # 2, teniendo un promedio entre los meses de Febrero y Abril de 19,05
NTU.
Gráfico V: (Rivera y Suarez, 2015). Sólidos suspendidos totales
En el gráfico V se observa que el máximo valor de sólidos suspendidos totales
registrado se obtuvo en el monitoreo # 2 con un valor de 72,7 mg/l, y un valor
mínimo de 57,5mg/l, en el monitoreo # 3, teniendo un promedio entre los meses de
Febrero y Abril de 64,4 mg/l.
Monitoreo 12015/02/17
Monitoreo 22015/03/04
Monitoreo 32015/03/18
Monitoreo 42015/04/15
Series1 16,5 15,9 17,1 26,7
0
10
20
30
NTU
Promedio de turbidez
Monitoreo 12015/02/17
Monitoreo 22015/03/04
Monitoreo 32015/03/18
Monitoreo 42015/04/15
Series1 69 72,7 57,5 58,5
020406080
mg/
l
sólidos suspendidos totales
37
Gráfico VI: (Rivera y Suarez, 2015). Sólidos disueltos totales.
En el gráfico VI se observa que el máximo valor de sólidos disueltos totales
registrado se obtuvo en el monitoreo # 1 con un valor de 26200 mg/l, con un valor
mínimo de 15400 mg/l, en el monitoreo # 4, teniendo un promedio entre los meses
de Febrero y Abril de 21875 mg/l.
Parámetros químicos.
Gráfico VII: (Rivera y Suarez, 2015). Oxígeno disuelto.
Monitoreo 12015/02/17
Monitoreo 22015/03/04
Monitoreo 32015/03/18
Monitoreo 42015/04/15
Series1 60% 51% 40% 49%
0%
20%
40%
60%
80%
% d
e sa
tura
ció
n
Promedio de oxígeno disuelto
Monitoreo 12015/02/17
Monitoreo 22015/03/04
Monitoreo 32015/03/18
Monitoreo 42015/04/15
Series1 26200 25200 20700 15400
05000
1000015000200002500030000
mg/
l
sólidos disueltos totales
38
En el gráfico VII se observa que el máximo valor de oxígeno disuelto registrado
se obtuvo en el monitoreo # 1 con un valor de 60%, y un valor mínimo de 40% en el
monitoreo # 3, teniendo un promedio entre los meses de Febrero y Abril de 50%.
Gráfico VIII: (Rivera y Suarez, 2015). Demanda bioquímica de oxígeno.
En el gráfico VIII se observa que el máximo valor de la demanda bioquímica de
oxígeno registrado se obtuvo en el monitoreo # 3 con un valor de 2,66mg/l, y un
valor mínimo de 1,29mg/l en el monitoreo # 2, teniendo un promedio entre los
meses de Febrero y Abril de 1,94mg/l.
Gráfico IX: (Rivera y Suarez, 2015). Fosfatos.
Monitoreo 12015/02/17
Monitoreo 22015/03/04
Monitoreo 32015/03/18
Monitoreo 42015/04/15
Series1 1,41 1,29 2,66 2,4
0
1
2
3
mg/
l
Promedio de DBO
Monitoreo 12015/02/17
Monitoreo 22015/03/04
Monitoreo 32015/03/18
Monitoreo 42015/04/15
Series1 0,53 0,93 0,59 0,67
00,20,40,60,8
1
mg/
l
Fosfatos
39
En el gráfico IX se observa que el máximo valor de fosfato registrado se obtuvo
en el monitoreo # 2 con un valor de 0,93 mg/l, con un valor mínimo de 0,53 mg/l en
el monitoreo # 1, teniendo un promedio entre los meses de Febrero y Abril de 0,68
mg/l.
Gráfico X: (Rivera y Suarez, 2015). Nitratos.
En el gráfico X se observa que el máximo valor de nitratos registrado se obtuvo
en el monitoreo # 3 con un valor de 2,4mg/l, y un valor mínimo de 0,60 mg/l en el
monitoreo # 4, teniendo un promedio entre los meses de Febrero y Abril de 1,25
mg/l.
Parámetros microbiológicos.
Gráfico XI: (Rivera y Suarez, 2015). Coliformes fecales.
Monitoreo 12015/02/17
Monitoreo 22015/03/04
Monitoreo 32015/03/18
Monitoreo 42015/04/15
Series1 0,93 1,08 2,4 0,6
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
mg/
l
Nitratos
Monitoreo 12015/02/17
Monitoreo 22015/03/04
Monitoreo 32015/03/18
Monitoreo 42015/04/15
Series1 5067 3633 14022,22 11111
0
5000
10000
15000
UFC
/100
ml
Promedio de Coliformes fecales
40
En el gráfico XI se observa que el máximo valor de coliformes fecales registrado
se obtuvo en el monitoreo # 3 con un valor de 14022 UFC/100ml, con un valor
mínimo de 3633 UFC/100ml en el monitoreo # 2, teniendo un valor promedio entre
los meses de Febrero y Abril de 8458 UFC/100ml.
Imagen II: (Matamoros, 2015). Criterio de calidad con respecto al Índice de Calidad
Ambiental del Agua.
Gráfico XII: (Rivera y Suárez, 2015). Criterio de calidad con respecto al Índice de
Calidad Ambiental del Agua.
En el gráfico XII se observa que el Índice de Calidad Ambiental del Agua ICA;
registró un valor de 57,07 estando dentro de un nivel medio con un valor mínimo de
51 y un valor máximo de 70.
MUY MALO MALO MEDIO BUENO EXCELENTE
mínimo 0 26 51 71 91
máximo 25 50 70 90 100
valor obtenido 57,07
020406080
100120
Índice de Calidad Ambiental del Agua
41
CONCLUSIONES.
Los valores de turbidez y sólidos suspendidos totales hallados concuerdan con
las altas temperaturas encontradas ya que las partículas en suspensión absorben
calor. Los valores más altos encontrados se dieron en las estaciones E1, E2 y E3,
que tienen la característica de estar cercanas a la población, así como en la
estación E7 por la presencia del sector camaronero. Además se encontraron valores
de 280 NTU (turbidez) y 510,5 mg/l (sólidos suspendidos totales) en la estación E3
del monitoreo # 3, los cuales no fueron considerados para determinar el índice de
calidad del agua por estar muy dispersos con respecto a los demás valores
encontrados en las otras estaciones.
Con respecto a los sólidos disueltos totales, se encontró que el menor valor se
dió en el monitoreo # 4, esto se debe a la presencia de lluvia al instante de la toma
de muestra para la determinación de este parámetro ocasionando un efecto de
dilución.
El valor promedio de la demanda bioquímica de oxígeno registrado entre los
meses de Febrero y Abril fue de 1,94mg/l, esta concentración es ligeramente mayor
con respecto a los valores registrados por el Centro de Estudios del Medio Ambiente
(2014), con una concentración de 1,89 mg/l. Este incremento puede estar
relacionado a una alta concentración de materia orgánica en las estaciones de
muestreo (Rodríguez, 2013).
El valor promedio de fosfato registrado entre los meses de Febrero y Abril fue de
0,68mg/l, el cual se encuentra elevado con respecto a los valores registrado por el
CEMA (2014), los cuales fueron realizados en época seca, que presentan una
concentración de 0,27 mg/l, esto puede deberse a la presencia de lluvia por el
arrastre de compuestos fosforados de los de depósitos rocosos en la época de
estudio.
42
De acuerdo a los resultados obtenidos se demuestra que las condiciones
fisicoquímicas y microbiológicas del área de estudio son aceptables según el Índice
de Calidad Ambiental del Agua “WQI 2015” que presenta un nivel medio con un
valor de 57,07 según los rangos establecidos por el ICA (Anexo XIII).
RECOMENDACIONES.
Realizar campañas de concientización a los moradores que viven alrededor del
sector, acerca de la importancia que tiene mejorar la calidad del agua del balneario
la Playita.
Efectuar un mayor control por parte de las autoridades competentes, a los
desechos que vierten directamente al balneario, las personas y camaroneras
aledañas al sector.
Realizar estudios periódicamente de la calidad física, química y microbiológica
del agua del balneario, con el fin de mantener un registro y tomar las acciones
correspondientes de acuerdo a los resultados obtenidos.
43
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44
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45
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46
ANEXOS
ANEXO I.- UBICACIÓN DE LAS ESTACIONES DE MUESTREO.
Anexo I: (Rivera y Suarez, 2015). Vista satelital de las estaciones de monitoreo.
ANEXO II.- RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA PARA LA DETERMINACIÓN DE OXÍGENO DISUELTO POR MÉTODO IODOMÉTRICO.
1. Recolectar las muestras en botellas Winkler de 300 ml en las estaciones
seleccionadas. 2. Fijar las muestras con Sulfato Manganoso (SO4Mn) he Ioduro alcalino (IK).
3. Agregar a la muestra fijada 1 ml de Ácido Sulfúrico (S𝑂4𝐻2). 4. Medir la muestra en un matraz de 200 ml. 5. Realizar la titulación de Iodo Libre con una solución de Tiosulfato de Sodio
0,025 M, (𝑆2𝑂3𝑁𝑎2) por medio de una bureta digital hasta dar una coloración amarilla pajizo.
6. Añadir 1 ml de solución de almidón la cual da una coloración azulada a la solución.
7. Continuar con la valoración gota a gota, hasta la desaparición del color azul como indicador de punto final de la titulación.
ANEXO III.- RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA PARA LA DETERMINACIÓN DE DBO POR MÉTODO IODOMÉTRICO.
1. Recolectar las muestras en botellas Winkler oscuras de 300 ml en las
estaciones seleccionadas. 2. Incubar las muestras a una temperatura de 20°C por 5 días para el
crecimiento de microorganismo que oxidan la materia orgánica 3. Fijar las muestras con Sulfato Manganoso (S𝑂4𝑀𝑛), Ioduro Alcalino (IK). 4. Esperar 45 minutos para agregar el Ácido Sulfúrico (S𝑂4𝐻2) para disolver el
precipitado.
47
5. Realizar la titulación de Iodo Libre con una solución de Tiosulfato de Sodio 0,025 M por medio de una bureta digital hasta dar una coloración amarilla pajizo.
6. Añadir 1 ml de solución de almidón la cual da una coloración azulada a la solución.
7. Continuar con la valoración gota a gota, hasta la desaparición del color azul como indicador de punto final de la titulación.
ANEXO IV.- RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA PARA LA DETERMINACIÓN DE pH POR MÉTODO POTENCIOMÉTRICO.
1. Recolectar las muestras en botellas plásticas de 1 L en de las estaciones
seleccionadas 2. Encender el potenciómetro. 3. Calibrar el potenciómetro con buffer de pH 4 Y pH 10. 4. Agitar las muestras y colocarlas en Beacker de 100 ml. 5. Limpiar el censor del potenciómetro con agua destilada 6. Colocar el censor del potenciómetro en el beacker que contiene la muestra y
proceder a la lectura del pH de la muestra. 7. Registrar los resultados en una base de datos.
ANEXO V.- RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA PARA LA DETERMINACIÓN DE TURBIDEZ POR MÉTODO DE TURBIDIMETRÍA.
1. Utilizar las muestras que se recolectaron en las botellas plásticas de 1 L 2. Encender el turbidímetro 3. Realizar la calibración del turbidímetro con los estándares correspondientes 4. Agitar las muestras que se encuentran en los frascos plásticos de 1 L 5. Tomar aproximadamente 50 ml de dichas muestras 6. Colocar los 50 ml de muestras en un envase de vidrio pequeño del
turbidímetro 7. Limpiar el envase de vidrio con toallas absorbente para evitar interferencias
externas. 8. Realizar la lectura de las muestras. 9. Registrar los valores obtenidos en una base de datos en unidades de NTU.
ANEXO VI.- RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA PARA LA DETERMINACIÓN DE SÓLIDOS DISUELTOS TOTALES, POR MÉTODO DE CONDUCTIMETRÍA.
1. Utilizar las muestras que se recolectaron en las botellas plásticas de 1L 2. Encender el conductímetro. 3. Calibrar el conductímetro con los estándares correspondientes a una
temperatura de 25°C. 4. Agitar las muestras que se encuentran en frascos plásticos de 1 L 5. Colocar las muestras en un beacker de 1000 ml. 6. Limpiar el censor del conductímetro con agua destilada 7. Colocar el censor en el beacker que contiene las muestras.
48
8. Realizar la lectura de los sólidos disueltos totales 9. Registrar los valores obtenidos en una base de datos en unidades de mg/l
para TDS (sólidos disueltos totales).
ANEXO VII.- RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA PARA LA DETERMINACIÓN DE SÓLIDOS SUSPENDIDOS TOTALES.
1. Pesar en una balanza analítica los filtros vacíos con tamaño de poro de 0,4
µm. 2. Registrar los pesos de los filtros vacíos. 3. Armar el equipo de filtración, conformado por embudos imantados, matraz
Kitasato, y bomba de presión, 4. Colocar los filtros vacíos en el embudo imantado. 5. Filtrar 200 ml de muestra que se encuentra en las botellas plásticas de 1 L
(para el análisis de nutrientes inorgánicos). 6. Quitar el filtro del equipo y llevarlo al horno de secado a una temperatura de
110°C por 1 hora, 7. Colocar el filtro en el desecador por 1 hora 8. Pesar nuevamente los filtros con los sólidos suspendidos 9. Calcular los resultados por diferencia de peso.
ANEXO VIII.- RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA PARA LA DETERMINACION DE FOSFATOS.
1. Utilizar las muestras que fueron filtradas en la determinación de sólidos suspendidos totales.
2. Adicionar 25 ml de las muestras filtradas en fiolas de 100ml 3. Agregar 2.5 ml de mezcla reactiva 4. Dejar en reposo por 10 minutos 5. Observar la coloración azulada 6. Realizar las lecturas de la absorbancia a 885nm.
ANEXO IX.- RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA PARA LA DETERMINACION DE NITRATOS.
1. Utilizar las muestras que fueron filtradas en la determinación de sólidos
suspendidos totales. 2. Agregar 1ml de ClNH4 Conc. en una fiola de 100 ml. 3. Pasar la muestra por una columna reductora de Cu y Cd 4. Recoger 25 ml de la muestra en un intervalo de tiempo de 2 a 3 minutos 5. Colocar los 25 ml de muestra que se recogieron de la columna de Cu y Cd
en la fiola de 100 ml. 6. Agregar 0.5 ml de Sulfanilamida 7. Dejar en reposo de 2 a 3 minutos, 8. Agregar 0.5 de Naftiletilendiamina dihidrocloruro 9. Dejar en reposo de 8 a10 minutos 10. Realizar la lectura de la absorbancia a 543nm
49
11. Realizar los cálculos respectivos con las absorbancias obtenidas.
ANEXO X.- RECOLECCIÓN DE LA MUESTRA PARA LA DETERMINACION DE COLIFORMES FECALES; FILTRACION POR MEMBRANA.
1. Recolectar muestras de las estaciones seleccionadas en fundas
microbiológicas estériles 2. Preparar agua de peptona 3. Esterilizar el agua peptona junto al material que se iba utilizar en el
autoclave. 4. Realizar la dilución de la muestra 1/100. 5. Armar el equipo de filtración por membrana 6. Filtrar 50 ml de la dilución de las muestras para coliformes fecales. 7. Colocar el filtro en el respectivo medio para coliformes fecales. 8. Incubar a 45 °C los medios con las muestras para coliformes fecales 9. Proceder a la lectura luego de 24 horas.
ANEXO XI.- RESULTADOS DE LA EXPERMIENTACIÓN.
Anexo XI: (Rivera y Suarez, 2015). Ensayos físicos del monitoreo # 1.
50
Ensayos químicos y microbiológicos.
Anexo XI: (Rivera y Suarez, 2015). Ensayos químicos y microbiológicos del
monitoreo # 1.
Anexo XI: (Rivera y Suarez, 2015). Ensayos físicos del monitoreo # 2.
51
Ensayos químicos y microbiológicos.
Anexo XI: (Rivera y Suarez, 2015). Ensayos químicos y microbiológicos del
monitoreo # 2.
Anexo XI: (Rivera y Suarez, 2015). Ensayos físicos del monitoreo # 3.
52
Ensayos químicos y microbiológicos.
Anexo XI: (Rivera y Suarez, 2015). Ensayos químicos y microbiológicos del
monitoreo # 3.
Anexo XI: (Rivera y Suarez, 2015). Ensayos físicos del monitoreo # 4
53
Ensayos químicos y microbiológicos.
Anexo XI: (Rivera y Suarez, 2015). Ensayos químicos y microbiológicos del
monitoreo # 4.
ANEXO XII.- ÍNDICE DE CALIDAD AMBIENTAL DEL AGUA (ICA).
Anexo XII: (Matamoros, 2015). Descripción ambiental del Índice de Calidad
Ambiental del Agua.
54
ANEXO XIII.- EVIDENCIAS.
Imagen 1: Balneario “La Playita” Imagen 2: Preparación del material
Imagen 3: Preparación para el embarque Imagen 4: Toma de muestra
Imagen 5: Análisis Fisicoquímicos Imagen 6: Análisis Microbiológicos
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