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UNIVERSIDAD AUTONOMA DE PUEBLA
Tonanzintla 2014
“Modelos in-silicio: desde los canales
iónicos a la terapia genética
Que sabemos……
………fatales……..
…..como lo sabemos…..
+
+
+
+
+
P
NH2 COOH
S4 S5 S3 S2 S1
OUT
IN - -
-
Canal de sodio
ß1 S6
Aminoquinolinas Efecto tóxico …
INa Ito Ik1 Ik
Primaquina
Cloroquina
Quinidina
4,7-dicloroquinolina
++ - - -
+ - ++ +
+ +++ - +
- ++ - +(Ikr)
Vm (mV)
-120 -80 -40 0 40
Im (pA)
-4000
-2000
0
2000
4000
[PQ]
1 10 100
Inhib
itio
n o
f I N
a (
%)
0
25
50
75
100
A B
Time (min)
Rela
tive I
Na
Curr
ent
0.0
0.5
1.0 3µM
10 µM
30 µM
12
8 16 24 32
5 ms
1 n
A
1
2
A B
1 n
A
P1P1 P1
P20
P20
,P20
C 1Hz 2 Hz
n
-20 mV
Vh
10 ms
Pulse Number
0 5 10 15 20
Norm
aliz
ed I N
a
0.0
0.5
1.0
Time (ms)
0 50 100 150
Norm
aliz
ed I
Na
0.0
0.5
1.0
200
A B
Sitio de unión Toxina o droga Dominio Efecto fisiológico
1 Tetrodotoxina (TTX)
Saxitoxina (STX)
µ-Conotoxina
IS2-S6,IIS2-S6,
IIS2-S6,IVS2-S6
Bloqueo del canal Inhibición del
transporte iónico
2 Veratridina
Batracotoxina (BTX)
Aconitina
Grayanotoxina (GTX)
IS6,IVS6 Activación persistente
3 -toxina de escorpiones de África
del Norte
Toxinas de anémona de mar
(ATX)
-atracotoxinas
IS5-IS6,IVS3-S4,
IVS5-S6
Inactivación lenta; incremento de la
activación persistente
4 -toxinas de escorpiones
americanos
IIS1-S2,IIS3-S4 Actividad repetitiva transitoria y
bloqueo corrimiento de la
activación dependiente de voltaje a
potenciales más negativos
5 Brevetoxinas (PbTx)
Ciguatoxinas (CTX)
IS6, IVS5 Actividad repetitiva; activación
persistente corrimiento de la
activación dependiente de voltaje a
potenciales más negativos
6? Piretroides
DDT
No establecido Actividad repetitiva y/o bloqueo;
retardo de la activación, Inactivación y
desactivación
Sitio no
identificado
DPI 201-106 No establecido Prolongación del potencial de acción
Sitio receptor a
anestésicos
locales
Anestésicos locales,
antiarrítmicos*, antiepilépticos
IS6,IIIS6,IVS6 Bloqueo del canal
Fármaco Sistema Biológico
Actividad biológica
Toxicidad
Sistemas Biológicos
Receptores
Células
Órganos
Organismos
Poblaciones
Absorción
Distribución
Metabolismo
Excreción
Farmacodinamia (Que le hace el fármaco al sistema)
Farmacocinética (Que le hacen los sistemas biológicos al fármaco)
Estructura
cristalina
del blanco
es
conocida?
Acercamiento basado en
estructura
Creación de un
farmacóforo del lugar de
unión
Acercamiento con base en
el ligando
Usar bases de datos para
comprender la biología del
ligando
Examinar ligandos de
blancos similares
Búsqueda en base de
datos
Búsqueda rápida
experimental
Docking del ligando
Modelo homologo
comparativo
La estructura
cristalina de
un blanco
similar es
conocida?
La
estructura
del
ligando es
conocida?
Identificación de nuevos
ligandos
SI
NO
SI
SI
NO
NO
Expresión del canal de sodio
•El DNAc del canal de sodio, fue microinyectado en los ovocitos
del Xenopus laevis.
• Ambas subuniades y fueron microinyectadas en una
proporción de 1:5 para asegurar una cinética normal del canal.
Inyección del DNA
Inyección
nuclear de
50nL de DNA
en le polo
animal.
Exploración
de la corriente
producida por
los ovocitos
(1-6 mA)
Examinación por
fluorescencia de la
intensidad de la
expresión de los
canales por medio de
microscopia confocal.
13
14 15
Expresión de canales de Sodio en ovocitos de la rana
Xenopus laevis
Mutantes del poro con cisteina:
Dominio I Y401C
Dominio I D400C
Dominio II E758C
Dominio III K1237C
Dominio IV F1579A
Dominio IV A1529C
Topología del canal de sodio
IFM
N
I II III IV
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
+
C
Mutantes del poro con cisteina:
Dominio I W402C
Dominio II W756C
Dominio III W1239C
Dominio IV W1531C
Vista superior del canal de sodio. La bola gris representa un ión de sodio.
Vista lateral del canal de sodio. Se representan los dominios I (Magenta), II (verde), III (amarillo), y IV (naranja). Las bolas y bastones pequeños (al centro) representan el motivo DEKA. Las bolas medianas (azul , gris y celeste),representan a la primaquina en su docking con el canal.
Acercamiento de la vista anterior.
Simplificación del docking de la primaquina y su posible interacción con el sodio (pelota gris)
in
out
DEKA
PQ
Nav W756C - 1
Em (mV)
-100 -80 -60 -40 -20 0 20 40
I Na
norm
alizad
a
-1,0
-0,8
-0,6
-0,4
-0,2
0,0
W756C Control n=6
W756C PQ 10 M n=6
Nav 1.4 - 1
Em (mV)
-100 -80 -60 -40 -20 0 20 40
I Na n
orm
alizad
a
-1,0
-0,8
-0,6
-0,4
-0,2
0,0
Nav 1.4 Control n=5
Nav 1.4 PQ10 M n=5
-100 mV
+50 mV30 ms10 ms
1
A
10 ms
1
A
Nav 1.4 - 1
Em (mV)
-100 -80 -60 -40 -20 0 20 40
I Na
no
rma
liza
da
-1,0
-0,8
-0,6
-0,4
-0,2
0,0
Control n=3
Post inyecc PQ60 M n=3
10 ms
2
A
0 20 40 60 80 100
% de Bloqueo por PQ 10 M
Nav 1.4
F1579C
Y401C
D400C
E758C
K1237C
A1529C
W756C
W1239C
W1531C
Biología Molecular Lourdes Millan PérezPeña Alfredo Sánchez Solano Modelos In-Silico Thomas F. Scior Angel A. Islas
Laboratorio de Biofísica Cardíaca
Electrofisiología Evelyn Martínez Morales Claudia Mancilla Simbro Erwin J. Pérez Cortez