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DEPARTAMENTO DE CIENCIAS DE LA VIDA INGENIERÍA EN BIOTECNOLOGÍA. EVALUACIÓN DE BIOAEROSOLES, BACTERIAS Y HONGOS, EN EL LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA – BIOTECNOLOGÍA DE LA ESPE Y CONSTRUCCIÓN PREVIA DE UN MUESTREADOR DE BURBUJEO EXPERIMENTAL. Tesista : Andrés López M. - PowerPoint PPT Presentation
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DEPARTAMENTO DE CIENCIAS DE LA VIDAINGENIERÍA EN BIOTECNOLOGÍA
EVALUACIÓN DE BIOAEROSOLES, BACTERIAS Y HONGOS, EN EL LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA –
BIOTECNOLOGÍA DE LA ESPE Y CONSTRUCCIÓN PREVIA DE UN MUESTREADOR DE BURBUJEO EXPERIMENTAL.
Tesista: Andrés López M.Directora: M. Sc. Alma KochCodirector: Ing. Mat. Pedro Romero
I. INTRODUCCIÓN
Problemática
Conjunto de partículas en suspensión de origen biológico variable en un medio gaseoso
Tamaño
Trabajadores
0,001 – 1 µm1 – 5 µm5 – 10 µm
Fuentes
Asociados a• Enfermedades• Rol ecológico
Bioaerosoles
2. Objetivos de la Investigación
Objetivo General
Evaluar los bioaerosoles (bacterias y hongos) en el Laboratorio de Microbiología - Biotecnología de la ESPE y construir previamente un muestreador de burbujeo experimental.
Objetivos Específicos
1. Determinar la existencia de bioaerosoles. 2. Establecer las posibles fuentes de emisión
de bioaerosoles. 3. Evaluar tareas y puestos de trabajo y su
relación con los bioaerosoles. 4. Construir un muestreador de burbujeo
experimental en base al diseño de Agranovski et al. (2002).
5. Tomar muestras de bioaerosoles con el muestreador de burbujeo experimental (Agranovski et al., 2002).
6. Identificar las muestras de bioaerosoles recolectadas usando técnicas de cultivo convencionales.
7. Cuantificar la concentración de bioaerosoles.8. Documentar la presencia de bioaerosoles.
I. INTRODUCCIÓN
3. Hipótesis
Hipótesis nula
• La presencia de bioaerosoles, bacterias y hongos en el Laboratorio de Microbiología - Biotecnología de la ESPE no es significativa.
Hipótesis alternativa
• La presencia de bioaerosoles, bacterias y hongos en el Laboratorio de Microbiología - Biotecnología de la ESPE es significativa.
I. INTRODUCCIÓN
II. MATERIALES Y MÉTODOS
1. Participantes
Tesista: Andrés López M.Directora: M. Sc. Alma KochCodirector: Ing. Mat. Pedro Romero
Personal del LaboratorioEstudiantesCentro de Investigaciones Científicas (CEINCI) de la ESPE
2. Zona de Estudio
Investigación de campo y análisis de laboratorio: Laboratorio de Microbiología - Biotecnología de la ESPE (constituido por tres áreas).
Área de Investigaciones
Área de Docencia
Área de Biología Molecular
Laboratorio de Microbiología - Biotecnología de la ESPE.Área de Investigaciones, Área A. Área aproximada de 30,16 m2
II. MATERIALES Y MÉTODOS
Laboratorio de Microbiología - Biotecnología de la ESPE.Área de Docencia, Área B. Área aproximada de 53,65 m2
II. MATERIALES Y MÉTODOS
Laboratorio de Microbiología - Biotecnología de la ESPE.Área de Biología Molecular, Área C. Área aproximada de 46,34 m2
II. MATERIALES Y MÉTODOS
3. Diseño experimental (Gutiérrez & De La Vara, 2008).
Diseño de bloques completos al azar (DBCA)
Arreglo de los datos en el DBCA para la investigación
Modelo estadístico
Hipótesis
Número de tratamientos3 áreas x 3 días x duplicado = 18
Pruebas• LSD de Fisher• Shapiro Wilks• Levene • Independencia
II. MATERIALES Y MÉTODOS
4. Procedimientos
Construcción del muestreador experimental•De acuerdo al diseño de Agranovski et al. (2002), con modificaciones
Inspección detallada del edificio•Inspección exterior•Inspección interior
Descripción de actividades del área de trabajo•Identificar los posibles mecanismos de propagación de bioaerosoles
Identificación de los bioaerosoles muestreados•Mediante técnicas de Microbiología tradicional
•Bacterias (Género y especie)•Hongos (Género)
Muestreo de bioaerosoles (bacterias y hongos)•De acuerdo a la norma NIOSH 0800 Bioerosols Sampling, con modificaciones
Determinación de las concentraciones de bioaerosoles•Partículas totales•Bioaerosoles viables y no viables•UFC/m3
II. MATERIALES Y MÉTODOS
4.1. Construcción del muestreador experimental
Esquema del muestreador: (a) vista tridimensional y vista lateral, y (b) vista de planta (Agranovski, Agranovski, Reponen, Willeke, & Grinshpun, 2002)
Muestreadores experimentales construidos
Material de construcción Acrílico
Material de construcción PVC
Diseño
II. MATERIALES Y MÉTODOS
(b)
4.1. Construcción del muestreador experimental
Producción de burbujas para fotografías (Agranovski, Braddock, & Myojo, 1999)
Absorción de aerosoles en burbujeo• Circulación de aire en el interior de la burbuja• Deposición inercial • Sedimentación • Difusión
Principio de funcionamiento
Muestreador en funcionamiento
II. MATERIALES Y MÉTODOS
4.2. Inspección detallada del edificio (exterior e interior)
4.3. Descripción de actividades del área de trabajo
II. MATERIALES Y MÉTODOS
Registro de inspección exterior e interior
Registro de actividades durante la evaluación
4.4. Muestreo de bioaerosoles (bacterias y hongos)
Tipos de bioaerosoles a muestrearBacterias y hongos
Puntos de muestreo2 puntos de muestreo por cada área
Número de muestras3 áreas x 3 días x duplicado = 18
Tiempo y flujo de muestreo• 8 h continuas diarias• 4 L/min
Temperatura, humedad relativa y presión atmosférica
Fluido de recolecciónTripticase Soy Broth (TSB)
Medios de cultivo• Bacterias Tripticase Soy Agar (TSA) con
0,04% de actidiona • Hongos Malt Extract Agar (MEA) con
0,01% de cloranfenicol
II. MATERIALES Y MÉTODOS
Registro muestreo de bioaerosoles
4.4. Muestreo de bioaerosoles (bacterias y hongos)
Limpieza y desinfección del equipo muestreador
Limpieza Desinfección
Preparación de los equipos muestreadores
Relleno del dispositivo muestreador de bioaerosoles con 40 mL de medio TSB mediante un dosificador
Equipos muestreadores B1, B2 y B3 con 40 mL de medio TSB listos
Equipos muestreadores sellados y listos
II. MATERIALES Y MÉTODOS
4.4. Muestreo de bioaerosoles (bacterias y hongos)
Equipos muestreadores B1, B2 y B3
Bombas de succión de aire
Puntos de muestreo en área A
Uso del equipo muestreador In situ
II. MATERIALES Y MÉTODOS
4.4. Muestreo de bioaerosoles (bacterias y hongos)
Uso del equipo muestreador In situ
Equipos muestreadores B1, B2 y B3
Bombas de succión de airePuntos de muestreo en área B
II. MATERIALES Y MÉTODOS
4.4. Muestreo de bioaerosoles (bacterias y hongos)
Equipos muestreadores B1, B2 y B3
Bombas de succión de airePuntos de muestreo en área C
Uso del equipo muestreador In situ
II. MATERIALES Y MÉTODOS
Procesamiento de las muestras de bioaerosoles
4.4. Muestreo de bioaerosoles (bacterias y hongos)
Enjuague y recuperación
Volumen final (80 mL)
División en alícuotas (40 mL)
Equipos al finalizar la toma de muestras
Refrigeración
II. MATERIALES Y MÉTODOS
4.5. Determinación de las concentraciones de bioaerosoles
Recuento total de partículas biológicas y no biológicas
Recuento de bioaerosoles viables y no viables
Conteo en la Cámara de Neubauer
Diluciones seriadas (10-1 y 10-3) y cultivo en medios MEA y TSA
II. MATERIALES Y MÉTODOS
UFC/m3 de aire
4.5. Determinación de las concentraciones de bioaerosoles
Corrección de las mediciones observadas
(Agranovski, Agranovski, Reponen, Willeke, & Grinshpun, 2002)
(TULAS, 2011)
II. MATERIALES Y MÉTODOS
4.6. Identificación de los bioaerosoles muestreados
Aislamiento de bioaerosoles (bacterias y hongos)
Medios de cultivo• Bacterias Tripticase Soy Agar (TSA) con
0,04% de actidiona • Hongos Malt Extract Agar (MEA) con
0,01% de cloranfenicol• Algunas bacterias y hongos Potato
Dextrose Agar (PDA)
Evaluación morfológica, se escogieron las colonias distintas
Selección de bioaerosoles (bacterias y hongos)
II. MATERIALES Y MÉTODOS
4.6. Identificación de los bioaerosoles muestreados
• Tinción Gram• Prueba de la Catalasa• Prueba de Oxidasa
• Evaluación macroscópica• Evaluación microscópica
• Técnica del celo• Tinción de KOH y azul de
metileno modificada • Tinción Gram
• Determinación del género Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology, 2001
Bacterias Hongos
• Software Identax Bacterial identification System
II. MATERIALES Y MÉTODOS
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
1. Construcción previa del muestreador de burbujeo experimental
Equipos muestreadores B1, B2 y B3 (Agranovski et al., 2002) construidos para la Evaluación de Bioaerosoles (bacterias y hongos)
2. Inspecciones exterior e interior del edificio
• Buenas condiciones, • Poco polvo • No había evidencias visibles de fuentes
microbianas, nutrientes o agua.
• No existen sistemas de ventilación o filtración de aire
• La infraestructura física (pisos, mesas de trabajo, ventanas) no cumplen con los requerimientos adecuados para un laboratorio de Microbiología.
Área B
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Interior
Exterior
Área A
3. Actividades en el entorno de trabajo
Área B
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Área C
3. Actividades en el entorno de trabajo
Acciones comunes
Movimiento del aire generado por • Caminar• Hablar• Toser• Estornudar• Reaerolización de partículas del piso
y de las superficies
Fuentes:• Bacterias aire interior, ocupación
humana, sus actividades• Hongos aire exterior, plantas, suelo
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
4. Temperatura, humedad relativa y presión atmosférica
Aumento temperatura• Recuentos elevados de microorganismos
y esporas de hongos en el aire
Humedad relativa interior• Desecación puede conducir a la pérdida
de viabilidad
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
5. Recuento total de partículas biológicas y no biológicas
Observación de dos partículas (posibles bioaerosoles),
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
6. Recuento de bioaerosoles viables y no viables
Conteo de bioaerosoles (bacterias y hongos) viables en el contador de colonias Quebec
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
7. Concentración de bioaerosoles, UFC/m3
Bacterias y hongos
ANOVA
(p<0,05)
Límites permisibles sugeridos• Holanda 10000 UFC/m3
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Bacterias
ANOVA
(p<0,05)
7. Concentración de bioaerosoles, UFC/m3
Límites permisibles sugeridos• Unión Europea 10000 UFC/m3
• OMS 500 UFC/m3
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Hongos
ANOVA
(p<0,05)
7. Concentración de bioaerosoles, UFC/m3
Límites permisibles sugeridos• Unión Europea 10000 UFC/m3
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Selección de dos colonias distintas de bioaerosoles (bacterias),
8. Selección de bioaerosoles (bacterias y hongos)
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Selección de una colonia distinta de bioaerosoles (bacterias resistentes al cloranfenicol),
Selección de la colonia del bioaerosol hongo,
8. Selección de bioaerosoles (bacterias y hongos)
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
9. Aislamiento de bioaerosoles (bacterias y hongos)
Medio TSA Medio MEA
Medio PDA
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
10. Identificación de los bioaerosoles bacterias
Catalasa
Oxidasa
Tinción Gram
Pruebas bioquímicas
Antibiograma
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
Identax
10. Identificación de los bioaerosoles hongos
Tinción de KOH y azul de metileno
Tinción Gram
Tinción de Azul de Lactofenol
Técnica del celo (cinta adhesiva)
Bacterias resistentes al cloranfenicol
Hongo filamentoso
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
11. Localización de los bioaerosoles encontrados
Área de Investigaciones
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
8 bacterias
7 especies
11. Localización de los bioaerosoles encontrados
Área de Docencia
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
15 bacterias1 hongo
11 especies 1 género
11. Localización de los bioaerosoles encontrados
Área de Biología Molecular
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
18 bacterias
16 especies
IV. CONCLUSIONES
• Las posibles fuentes de emisión de los bioaerosoles encontrados fueron el movimiento del aire generado por las personas al caminar, al hablar, toser, estornudar, la reaerolización de partículas del piso y de las superficies y también el aire proveniente del ambiente exterior.
• Se analizaron las tareas y puestos de trabajo durante la evaluación de bioaerosoles y se descubrió que la apertura y cierre de puertas constituye la acción predominante que probablemente permite la proliferación de los bioaerosoles, además de la presencia de seres humanos, otras actividades y el aire exterior.
• La viabilidad de los bioaerosoles en las tres áreas analizadas se mantuvo entre 0,654% y 2,386% y los factores principales que posiblemente los afectaron son la humedad y la temperatura ambiental durante la evaluación.
• El área de Biología Molecular registró la mayor concentración de bioaerosoles, la de Docencia mostró una concentración intermedia y la de Investigaciones reveló la menor concentración.
• Se evidenció que casi todas las concentraciones de bioaerosoles detectadas excedieron los límites sugeridos por la Organización Mundial de la Salud, la Unión Europea, y Holanda.
• De las tres áreas del Laboratorio de Microbiología - Biotecnología se aislaron 42 bioaerosoles (41 bacterias y 1 hongo), 38 bioaerosoles bacterias fueron bacilos Gram negativos, mientras que 3 fueron bacilos Gram positivos, de igual manera se halló un sólo bioaerosol hongo filamentoso. Los bioaerosoles bacterias fueron predominantes sobre los hongos.
• Sobre los géneros de bioaerosoles descubiertos se obtuvo que 2 son de Enterobacter, 3 de Yersinia, 1 de Serratia, 5 de Ewingella, 4 de Burkholderia, 1 de Klebsiella, 2 de Proteus, 19 de Pseudomonas, 1 de Hafnia, 3 de Bacillus y 1 de Alternaria spp.
• Se comprobó que la presencia de bioaerosoles, bacterias y hongos, en el Laboratorio de Microbiología - Biotecnología de la ESPE es significativa.
IV. CONCLUSIONES
V. RECOMENDACIONES
Se debería:• Ampliar la información sobre bioaerosoles en el Ecuador realizando nuevas investigaciones en
otros ambientes laborales.
• Investigar los bioaerosoles recolectados ya que algunos tienen diversas aplicaciones.
• Incrementar la concentración del agente antibacteriano cloranfenicol en el medio de cultivo MEA o utilizar otras alternativas.
• Extender el número de muestras y la inversión económica para mejorar la inferencia estadística. • Implementar algún sistema de control de bioaerosoles para disminuir sus concentraciones en el
Laboratorio de Microbiología - Biotecnología de la ESPE.
• Rediseñar y adecuar las instalaciones del Laboratorio de Microbiología – Biotecnología de la ESPE para lograr un eficiente desarrollo de sus actividades.
AGRADECIMIENTOS
• A la Escuela Superior Politécnica del Ejército por el apoyo y recursos brindados.
• A mi querida madre Sarita, que me enseñó, apoyó y respaldó mis anhelos y sueños para convertirme en el ser humano que soy.
• A todos esos dilectos amigos y amigas de mi madre, que se preocuparon y me apoyaron para que culmine con éxito mi estudio.
• A M. Sc. Almita Koch Kaiser y al Ing.-Mat. Pedro Romero, Directora y Codirector de mi Tesis, por su acogida, respaldo y conocimientos brindados.
• A Ing. Jessie Maisincho y la Dra. Ligia Ayala por su apoyo y colaboración.
• A mis apreciados amigos y amigas.