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DIVERSIDAD DE FAMILIAS DE POLILLAS NOCTURNAS (LEPIDOPTERA) EN
LA VEREDA BUENAVISTA, EN EL MUNICIPIO DE VILLAGÓMEZ,
CUNDINAMARCA
KATHERYN DAYANA DÍAZ ORTÍZ
DENNIS MELISA SALAZAR MUÑOZ
UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALADAS
FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN
PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN BIOLOGÍA
BOGOTÁ D.C.
2015
DIVERSIDAD DE FAMILIAS DE POLILLAS NOCTURNAS (LEPIDOPTERA) EN
LA VEREDA BUENAVISTA, EN EL MUNICIPIO DE VILLAGÓMEZ,
CUNDINAMARCA
KATHERYN DAYANA DÍAZ ORTIZ
DENNIS MELISA SALAZAR MUÑOZ
Este trabajo es presentado al programa de Licenciatura en Biología de la Facultad de
Ciencias y Educación de la Universidad Distrital Francisco José de Caldas para optar al
título de Licenciado en Biología
Directora
Esp. Diana Del Socorro Daza Ardila
Codirector
Msc. Oscar Javier Mahecha
UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALADAS
FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN
PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN BIOLOGÍA
BOGOTÁ D.C.
2015.
Notas de aceptación
_______________________________
_______________________________
_______________________________
_______________________________
_______________________________
______________________________
Presidente del Jurado
______________________________
Jurado
______________________________
Jurado
Bogotá, 2015
La universidad no será responsable de las
ideas expuestas por el graduado en el
trabajo de grado “Diversidad de familias
de polillas nocturnas (Lepidoptera) en la
vereda Buenavista en el municipio de
Villagómez, Cundinamarca” según el
artículo 117, del acuerdo 029 del Consejo
Superior de la Universidad Distrital
Francisco José de Caldas, expedido en
Junio de 1988.
3
3
Este trabajo va dedicado con
todo nuestro amor y esfuerzo a
las familias Salazar Muñoz y
Díaz Ortiz, a nuestros amigos y
en especial a las mujeres de
nuestra vida, Leticia, Sandra y
Dalys por su apoyo
incondicional.
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Agradecimientos
Este trabajo se realizó gracias a la colaboración de los habitantes de la vereda Buenavista,
del municipio de Villagómez en Cundinamarca, en especial a los señores Adela Moreno,
Héctor Aldana, Liliana Aldana, quienes nos acogieron y respaldaron, en la realización de
este trabajo.
Agradecemos de manera especial a los profesores Diana Del Socorro Daza, Oscar Javier
Mahecha, a nuestros padres y hermanos quienes siempre nos colaboraron.
¡Gracias!
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CONTENIDO RESUMEN ......................................................................................................................................................... 9
INTRODUCCIÓN ............................................................................................................................................ 10
1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ................................................................................................. 12
2 JUSTIFICACIÓN ..................................................................................................................................... 13
3 OBJETIVOS. ............................................................................................................................................ 15
3.1.1 Objetivo General......................................................................................................................... 15
3.1.2 Objetivos Específicos ................................................................................................................. 15
4 ANTECEDENTES ................................................................................................................................... 16
5 MARCO TEÓRICO ................................................................................................................................. 22
5.1 FAMILIAS...................................................................................................................................... 22
5.1.1 Tortricidae .................................................................................................................................. 22
5.1.2 Pyralidae ..................................................................................................................................... 23
5.1.3 Sesiidae ....................................................................................................................................... 23
5.1.4 Cossidae ...................................................................................................................................... 23
5.1.5 Geometridae ............................................................................................................................... 24
5.1.6 Sphingidae .................................................................................................................................. 24
5.1.7 Lasiocampidae ............................................................................................................................ 25
5.1.8 Saturniidae .................................................................................................................................. 25
5.1.9 Erebidae ...................................................................................................................................... 26
5.1.10 Noctuidae ............................................................................................................................... 27
5.1.11 Crambidae .............................................................................................................................. 27
5.1.12 Pterophoridae ......................................................................................................................... 28
5.2 DIVERSIDAD ................................................................................................................................ 28
6 METODOLOGÍA. ................................................................................................................................... 31
6.1 Área De Estudio .............................................................................................................................. 31
6.2 ESTACIONES MUESTREO .......................................................................................................... 33
6.2.1 Estación # 1. Policultivo. ............................................................................................................ 33
6.2.2 Estación # 2 Bosque Secundario. ................................................................................................ 34
6.3 DISEÑO METODOLÓGICO ......................................................................................................... 35
6.3.1 Trampas ...................................................................................................................................... 35
6.3.2 Fase de Determinación ............................................................................................................... 37
6.4 FASE DE ANÁLISIS ..................................................................................................................... 37
6.4.1 Listado de familias...................................................................................................................... 37
6.4.2 Diversidad Alfa .......................................................................................................................... 38
6.4.3 Diversidad Beta .......................................................................................................................... 40
6
6
6.5 FASE DE CARACTERIZACIÓN DE LA ACTIVIDAD DE POLILLAS NOCTURNAS EN
CADA FASE LUNAR. ................................................................................................................................ 41
7 RESULTADOS ........................................................................................................................................ 42
7.1 COMPOSICIÓN DEL ENSAMBLAJE DE POLILLAS NOCTURNAS EN EL MUNICIPIO DE
VILLAGÓMEZ, CUNDINAMARCA. ........................................................................................................ 42
7.2 DIVERSIDAD ALFA EN ESTACIONES DE MUESTREO ........................................................ 48
7.3 DIVERSIDAD BETA DE POLILLAS NOCTURNAS EN LAS DOS ESTCIONES DE
MUESTREO ................................................................................................................................................ 51
7.4 ACTIVIDAD DE POLILLAS NOCTURNAS EN CADA FASE LUNAR ................................... 51
7.5 POLILLAS NOCTURNAS COLECTADAS POR FASES LUNARES ........................................ 51
7.5.1 DIVERSIDAD ALFA DE FASES LUNARES .......................................................................... 57
7.5.2 DIVERSIDAD BETA DE FASES LUNARES .......................................................................... 59
8 ANÁLISIS DE RESULTADOS ............................................................................................................... 61
8.1 COMPOSICIÓN DEL ENSAMBLAJE DE POLILLAS NOCTURNAS DE LA VEREDA
BUENAVISTA. ........................................................................................................................................... 61
8.2 DIVERSIDAD ALFA EN ESTACIONES DE MUESTREO ........................................................ 62
8.3 DIVERSIDAD BETA DE POLILLAS NOCTURNAS EN LAS DOS ESTCIONES DE
MUESTREO ................................................................................................................................................ 65
8.4 ACTIVIDAD DE POLILLAS NOCTURNAS EN CADA FASE LUNAR ................................... 66
8.5 POLILLAS NOCTURNAS COLECTADAS POR FASES LUNARES ........................................ 66
8.5.1 DIVERSIDAD ALFA DE FASES LUNARES .......................................................................... 67
8.5.2 DIVERSIDAD BETA DE FASES LUNARES .......................................................................... 70
9 CONCLUSIONES .................................................................................................................................... 72
10 RECOMENDACIONES ..................................................................................................................... 74
11 REFERENCIAS .................................................................................................................................. 74
12 ANEXOS ............................................................................................................................................. 82
Estaciones De Muestreo ............................................................................................................................... 94
Estaciones De Muestreo. .............................................................................................................................. 95
Estaciones De Muestreo ............................................................................................................................... 97
7
7
LISTADO DE FIGURAS
Figura 1. Municipio de Villagómez, Cundinamarca. Ubicación del municipio de
Villagómez en el departamento de Cundinamarca. ............................................................. 32 Figura 2. Vereda Buenavista, Villagómez, Cundinamarca. Ubicación de la vereda
Buenavista dentro del municipio de Villagómez, Cundinamarca ........................................ 32 Figura 3. Estación # 1. Policultivo. Trampa número 1. ....................................................... 33 Figura 4. Estación # 1. Policultivo. Trampa número 2. ........................................................ 34 Figura 5. Estación # 2. Bosque secundario. .......................................................................... 35 Figura 6. Trampa de luz LED blanca de 15 w. En la estación 1, trampa número 2. ............ 36 Figura 7. Gráfica de individuos colectados en cada salida de campo vs las dos trampas de
captura utilizadas en la Estación # 1. .................................................................................... 42 Figura 8. Gráfica de individuos colectados en cada salida de campo vs las dos trampas de
captura utilizadas en la Estación # 2. .................................................................................... 43 Figura 9. Montaje individuos colectados. ............................................................................. 44 Figura 10. Gráfica de Rarefacción para las dos estaciones de muestreo.. ............................ 51 Figura 11. Número de polillas nocturnas colectadas en cada una de las fases lunares. ....... 52 Figura 12. Gráfica de barras del número de morfotipos por las familias colectados en cada
fase lunar............................................................................................................................... 57 Figura 13. Gráfica de Rarefacción para las fases lunares en los que se realizaron muestreos.
.............................................................................................................................................. 59 Figura 14. Dendograma de las fases lunares en las que se realizaron muestreos. ................ 60 Figura 15. Abundanciade individuos colectados por familias, sin importar la estación de
muestreo. .............................................................................................................................. 62 Figura 16. Montaje de individuos colectados.. ..................................................................... 68
LISTADO DE TABLAS
Tabla 1. Número de individuos colectados en cada una de las trampas de captura, en las
diferentes salidas de campo en la estación de muestreo # 1. ............................................... 42 Tabla 2. Número de individuos colectados en cada una de las trampas de captura, en las
diferentes salidas de campo en la estación de muestreo # 2. ................................................ 43 Tabla 3. Listado de morfotipos colectados por familia y la estación de muestreo donde
fueron colectados. ................................................................................................................. 44 Tabla 4. Listado del número de ejemplares y morfotipos colectados por cada familia. ...... 48 Tabla 5. Estimativos de diversidad. ...................................................................................... 49 Tabla 6. Número de individuos colectados en las dos estaciones de muestreo según las fases
lunares. .................................................................................................................................. 52 Tabla 7. Número de morfotipos capturados en cada una de las fases lunares. . ................... 53 Tabla 8. Número de morfotipos por las familias colectados en cada fase lunar. ................. 56
8
8
Tabla 9. Estimativos de diversidad para cada una de las fases lunares. ............................... 58
TABLA DE ANEXOS
Anexo 1. Montaje individuos colectados. Catálogo. ........................................................... 82 Anexo 2. Formato recepción de datos salidas de campo. ..................................................... 82 Anexo 3. Test De Normalidad Shapiro Wilk ....................................................................... 94 Anexo 4. Test No Paremétrico De Kruskal-Wallis .............................................................. 95 Anexo 5. Estimativos De Diversidad Alfa ........................................................................... 97
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RESUMEN
Palabras clave: diversidad alfa, diversidad beta, lepidópteros nocturnos, ensamblaje,
actividad lunar.
La riqueza y diversidad de organismos está asociada a cambios ambientales y a factores
climáticos como la altitud, determinando el surgimiento de patrones de distribución de
grupos y especies. En este estudio se compararon dos estaciones con diferente uso del suelo
y altura (1759 y 1800 msnm), ubicados en la Vereda Buenavista, del municipio de
Villagómez, Cundinamarca, Colombia, usando dos trampas de luz LED de 15 w separadas
a una distancia de 50 m; en cada estación se realizó el muestreo en las cuatro diferentes
fases lunares, entre las 18:00 y las 22:00 horas, con otra franja de 3:30 a 5:30 am, con el fin
de presentar un listado de familias colectadas para el sitio de muestreo, evaluar la
diversidad alfa y beta del ensamblaje y adicionalmente comparar la influencia lunar en la
actividad de los lepidópteros nocturnos colectados. Se capturaron 174 individuos
representados en nueve (9) familias de macropolillas: 35 Crambidae, 23 Geometridae, 49
Noctuidae, 10 Erebidae, 4 Pterophoridae, 4 Pyralidae, 3 Sphingidae, 4 Saturniidae, 3
Lasicampidae (33 individuos no se tuvieron en cuenta para el estudio por mal estado de las
muestras). Se aplicaron índices de riqueza y diversidad Alfa que se caracterizaron por tener
diversidad alta y dominancia baja, estimando una gran abundancia de individuos para la
zona, también se aplicaron para diversidad Beta con el índice de similitud Jaccard con un
J= 0.82 revelando que no existen diferencias significativas entre las dos estaciones.
Adicionalmente se evidenció que la fase lunar en la que más se recolectaron individuos fue
luna llena con 70 morfotipos, contrastando con lo encontrado en la literatura; aunque la fase
lunar que más tuvo variación en cuanto al número individuos colectados fue en luna nueva,
debido a que la eficiencia de la lámpara era mayor en comparación de otras fases lunares.
10
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INTRODUCCIÓN
Las polillas nocturnas pertenecen al Orden Lepidóptera, que dentro de los artrópodos
constituyen el segundo orden más numeroso después de los coleópteros; estos animales
aparecieron sobre la Tierra hace unos 140 millones de años, mucho más tarde que los
primeros artrópodos (Uribe, 2006). El número total de especies de lepidópteros descritas en
el mundo sobrepasa las 130.000 de las cuales cerca de 17.000 son mariposas diurnas, es
decir, que casi por cada mariposa existen 8 polillas, pero lo que es realmente grave es que
estas últimas son poco estudiadas (Uribe, 2006). En contraste los pocos estudios del grupo
se encuentran restringidos principalmente a especies de interés económico, asociadas a
cultivos agrícolas, o especies forestales; razón por la cual sólo conocemos patrones de
distribución, huéspedes, parásitos, ecología, entre otros (Hernández, 2010).
La Región Neotropical exhibe la mayor diversidad de Lepidóptera en el mundo, más del
31% de las especies descritas del mundo (cerca de 146.000) se hallan en el Neotrópico, el
porcentaje aumenta a más del 35% al tener en cuenta las especies aún inéditas o
desconocidas, con totales superiores a 255.000 especies para todo el mundo (Lamas, 2000).
Para Colombia se estima que hay 3.019 especies de mariposas que representan el 61,9% de
las mariposas conocidas para el Neotrópico (Andrade, 2002).
Colombia presenta una gran biodiversidad de especies de lepidópteros nocturnos, teniendo
en cuenta que la biodiversidad constituye el sostén de una gran variedad de servicios
ambientales de los cuales han dependido las sociedades humanas; cuando se pierde algún
elemento de la biodiversidad de un ecosistema este pierde la capacidad de recuperación y
los servicios que prestan se ven amenazados (Andrade, 2011). En consecuencia el estudio
de las familias de polillas nocturnas es de gran importancia biológica, ya que están
representados por innumerables especies aún no descritas y poco estudiadas;
adicionalmente es el primer estudio que se realiza a nivel regional y aporta al conocimiento
del orden aspectos ecológicos, comportamentales, así como un listado de familias de la
vereda Buenavista, municipio de Villagómez, Cundinamarca.
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Este proyecto de investigación caracterizó el ensamblaje de polillas nocturnas en la Vereda
Buenavista en el Municipio de Villagómez, al nororiente del Departamento de
Cundinamarca; donde se determinó la composición de dicho ensamblaje y consolidar por
primera vez un listado de las familias para el lugar. También se evaluará la diversidad Alfa
mediante el índice de Shannon, entro otros y la diversidad Beta usando el índice de
similitud de Jaccard del ensamblaje de polillas nocturnas. Adicionalmente, se comparó la
influencia de la luna en la actividad de las polillas, realizando colectas en cada fase lunar
para conocer si existe o no afectación de la luna en el comportamiento de las polillas
nocturnas.
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1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
En los últimos años ha crecido el interés de estudiar la biodiversidad de la clase insecta en
todo el territorio nacional debido a sus múltiples beneficios (Lozano, 2005),
particularmente el Orden Lepidóptera, que tiene gran diversidad de especies y en el cual se
puede encontrar individuos de hábitos diurnos y nocturnos, diversos tamaños y
coloraciones; los más estudiados son los lepidópteros diurnos y en cuanto a los de hábitos
nocturnos los estudios se reducen en su mayoría a los que son considerados plagas de
interés agrícola.
Los estudios actuales registrados para Colombia, sobre polillas nocturnas, están
restringidos para algunos municipios del Valle del Cauca; Caquetá; Boyacá, alrededores de
Cundinamarca y Meta (Amarillo, 1997, 1999. Amarillo y Muñoz, 2010).. Es un gran aporte
conocer un listado de las familias, y de igual manera aspectos ecológicos de las familias de
lepidópteros nocturnos que contribuyan al conocimiento de la biodiversidad del municipio
de Villagómez, Cundinamarca.
El estudio de lepidópteros nocturnos es de vital importancia debido a que son indicadoras
de la calidad del ambiente, su presencia en un hábitat determinado indica la baja
contaminación y una buena conservación de la biodiversidad, estos se ven afectados cuando
se deteriora el ecosistema, además son agentes polinizadores de gran importancia, y por
ende emprender acciones que permitan a las autoridades ambientales la conservación y el
manejo de dichas especies es de gran importancia (Mariposario de Benalmadena, 2011).
Por todo lo anterior, se formuló la siguiente pregunta que es el punto de partida para
empezar a dar una respuesta a la problemática antes expuesta ¿Cuál es la diversidad,
dominancia y el efecto que causan las diferentes fases lunares, en el ensamblaje de
lepidópteros nocturnos de la Vereda Buenavista en el Municipio de Villagómez en
Cundinamarca, Colombia?
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2 JUSTIFICACIÓN
Cálculos recientes indican que más del 31% de las especies de lepidópteros descritos del
mundo (cerca de 146.000) se hallan en el Neotrópico, en tanto este porcentaje aumenta a
más del 35% al añadir las especies aún inéditas o desconocidas, con totales superiores a
255.000 especies para todo el mundo (Lamas, 2000).
Naturalmente, el grado de conocimiento varía enormemente en diferentes grupos
taxonómicos, con familias donde es seguro que más del 95% de las especies han sido ya
nominadas (por ejemplo Papilionidae, Sphingidae y Castniidae, a otras principalmente entre
los "microlepidópteros" donde quizás menos del 10% de las especies ha recibido nombre
(Lamas, 2000).
Se tienen estudios sobre polillas nocturnas, que se han venido actualizando
aproximadamente desde el año 2000, en donde se aprecian, clasificaciones de familias y
subfamilias (Amarillo, 2000), dichos estudios están restringidos a municipios en el
departamento del Valle y Nariño (Amarillo, 1997). Los estudios en Cundinamarca están
dirigidos hacia especies como Tutta absoluta y Tecia solanivora Povolny (Lepidóptera)
considerada como plaga agrícola de las solanáceas (Polack, 2007), y no se reportan estudios
sobre clasificación de familias, ni aspectos ecológicos en municipios de este departamento.
Este trabajo de investigación es de gran importancia para la comunidad científica y para la
población del municipio de Villagómez y del departamento de Cundinamarca, pues se
presenta por primera vez un listado de familias de polillas nocturnas presentes en el lugar, y
aspectos ecológicos y comportamentales de dichas familias; con el fin de conocer,
apropiarse y conservar la diversidad de lepidópteros del municipio, teniendo en cuenta que
estos individuos son buenos indicadores de los cambios de la diversidad de especies que
ocurren con las transformaciones antrópicas del paisaje, y adicionalmente son excelentes
indicadoras ecológicas del estado de la biota en cuanto a parámetros como biodiversidad
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según (Andrade, 1998) en Colombia hay una pérdida acelerada de los ecosistemas. Existen
zonas donde el proceso es más pronunciado, los insectos son utilizados como
bioindicadores ya que “son de alta riqueza, tiene diversidad de especies, fácil manipulación,
fidelidad ecológica, fragilidad ante perturbaciones mínimas y corta temporalidad
generacional” (Andrade, 1998). La presencia de cualquier especie de lepidóptera es un
indicador seguro de la presencia simultánea de otras especies de plantas que proveen
recursos alimenticios de la oruga y el adulto, animales (parásitos y depredadores) y un
conjunto especial de factores ambientales como el nivel de luminosidad, entre otros
(Ramírez, Chacón De Ulloa y Constantino, 2007).
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3 OBJETIVOS.
3.1.1 Objetivo General
Caracterizar la diversidad de familias de Polillas Nocturnas (Lepidóptera) en la Vereda
Buenavista en el Municipio de Villagómez, Cundinamarca.
3.1.2 Objetivos Específicos
• Determinar mediante la utilización de claves taxonómicas la composición del
ensamblaje de lepidópteros nocturnos, para la Vereda Buenavista en el municipio de
Villagómez, Cundinamarca.
• Evaluar la diversidad y dominancia del ensamblaje de polillas nocturnas en la
vereda Buenavista, en el municipio de Villagómez, Cundinamarca, usando los
índices de diversidad Alfa
• Evaluar el recambio poblacional del ensamblaje de polillas nocturnas en la vereda
Buenavista, en el municipio de Villagómez, Cundinamarca, usando el Índice de
diversidad Beta.
• Comparar el comportamiento del ensamblaje de polillas nocturnas relacionada con
las fases lunares por medio de capturas en luna llena, cuarto menguante, cuarto
creciente, luna nueva.
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4 ANTECEDENTES
Kristensen, Scoble y Karsholt (2007), presentan un estudio filogenético del estado
taxonómico de lepidópteros, donde se discute por separado para micro-polillas, macro-
polillas y mariposas, tres ensamblajes que han seguido históricamente caminos diferentes.
En la actualidad hay cerca de 160.000 especies descritas de lepidópteros, el número total de
especies existentes se estima en alrededor de medio millón. En promedio, poco más de un
millar de nuevas especies de lepidópteros se han descrito anualmente en los últimos años.
Teniendo en cuenta los nuevos sinónimos que se establecieron simultáneamente, el
incremento neto en el número de especies aún superior a 800 por año (Kristensen, Scoble y
Karsholt, 2007).
Lamas (2000), hace una revisión del estado del conocimiento de la fauna de lepidóptera en
la región neotrópical, encontrando que en Argentina existe una lista nacional de mariposas
diurnas y para familias de polillas nocturnas se encuentran listas ya obsoletas. En Belice, se
reportan listados de Ropalóceros, Saturniidae y Sphingidae realizados por Meerman en
1999; en Bolivia sólo se cuenta con listas parciales para algunos grupos de mariposas
diurnas; para Brasil se reportan algunas listas regionales incompletas de lepidópteros
diurnos y nocturnos. En Chile, se encuentran trabajos sobre mariposas diurnas del país de
Peña y Ugarte de 1997, y listas incompletas de algunos grupos de polillas nocturnas
realizadas por Ureta y Donoso en 1956. En México en 1989 y 1991 Maza y Maza,
realizaron una lista bastante actualizada de las mariposas diurnas del país. Para las polillas
nocturnas se cuenta únicamente con listas para algunas familias (Lamas, G. 2000).
A nivel del neotrópico se han realizado algunos estudios de individuos pertenecientes a las
familias Saturniidae y Arctiidae, específicamente para la segunda familia, se realizó un
inventario de las especies pertenecientes a la subfamilia Ctenuchinae en la Zona Reservada
Tambopata- Candamo, madre de Dios en Perú, obteniendo así un listado preliminar de las
especies que habitan la zona y una posterior comparación con otros lugares del neotrópico
en los que tiene incidencia esta subfamilia; la captura de los individuos se basó en la
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recolección diurna y nocturna mediante el uso de trampas de luz y cebos de plantas y se
colectaron 199 especies (Grados, 1999).
En un estudio titulado: Los Arctiidae y Sphingidae (Lepidoptera: Heterocera) del Santuario
Histórico De Machu Picchu, Cuzco, Perú: Estudio Preliminar; hace una introspección sobre
los estudios anteriores y la variedad de polillas de las familias mencionadas anteriormente,
haciendo un análisis bibliográfico y captura de este tipo de polillas usando Trampas de luz
de mercurio a 250v. El autor registra la ocurrencia de 80 especies de Arctiidae para el
Santuario Histórico de Machu Picchu; la mayor diversidad encontrada se ubica en la parte
baja (1800- 2200 m), con 63 especies (79%), mientras en la parte alta se tiene 30 especies
(37,5%); se hace referencia a la poca información que se puede obtener de las especies en
el lugar y hace una comparación con las cordilleras cercanas y las clasificaciones hechas
anteriormente; adicionalmente sugiere realizar más muestreos así como estudios
morfológicos más detallados y análisis de los tipos de especies presentes en el territorio
(Grados, 2002).
En Perú se realiza una sinopsis de los Pericopinae, que constituyen una pequeña subfamilia
de Arctiidae, con unas 300 especies. Los autores presentan una lista de las 92 especies de
Pericopinae registradas para Perú, indicando su distribución geográfica generalizada;
proponen algunos cambios taxonómicos y presentan algunas correcciones al catálogo de
Watson y Goodger; adicionalmente se describe una nueva subespecie, del sureste del Perú
(Lamas y Grados, 1996).
En un estudio realizado en el Parque Nacional Santa Rosa, Guanacaste, Costa Rica se
reportan que en el nuevo mundo, los saturnidos tiene una distribución amplia desde Canadá
hasta argentina hay aproximadamente 1250 especies en el mundo, 850 de ellas en el nuevo
mundo. Las hembras depositan entre 100 y 400 huevos que son depredados por aves e
insectos, las hembras viven de 3 a 6 días mientras los machos viven de 5 a 10 días,
generalmente no se separan mucho de donde nacieron, y el estado de larva dura de 4ª 8
semanas (Janzen, 1982).
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En la universidad del valle en Guatemala que se encuentra ubicada en la parte sur del
volcán Atitla, en el departamento de Suchitequepéz, de la República de Guatemala a un
altura media de 1565 msnm, se realizó un estudio sobre las familias Artctiidae, Saturniidae
y Sphingidae; se colectaron un total de 477 ejemplares de Arctiidae, 97 de Saturnniidae y
113 de Sphigindae, para un total de 667 ejemplares. Se pudieron reconocer 163 especies de
las tres familias mostrando con este estudio la importancia de la colecta de lepidópteros y la
identificación de los mismos, los autores presentan un álbum fotográfico de las 163
especies que lograron identificar (Monzón y Laguerre, 2011).
Fiedler y otros autores evalúan la Variación de los Patrones de Diversidad de Familias de
Polillas a lo Largo de un Gradiente Altitudinal Tropical, Tomando muestras de las polillas
en 22 sitios ubicados en 1040-2677 msnm en la frontera norte del Parque Nacional
Podocarpus y en la Reserva Biológica San Francisco. Las polillas se sienten atraídos por las
fuentes de luz artificiales débiles (2 x 15 W) a nivel del suelo, muestreados de forma
manual. Las relaciones entre las medidas de diversidad o con variables ambientales fueron
evaluadas a través de la correlación estándar y técnicas de regresión. La media entre el
matrices de similitud faunística se evaluó mediante pruebas de permutación para el rango
de matriz de correlaciones (Fiedler et al, 2008).
En otro estudio realizado por algunos de los anteriores autores denominado Efectos de
Perturbaciones en la Diversidad de Epífitas y Polillas en un Bosque de Montaña en
Ecuador; el trabajo de campo se llevó a cabo a una altura de 1800-2000m en la Reserva
Biológica San Francisco y sus alrededores, situado en el valle del río San Francisco entre
Loja y Zamora, al sur de Ecuador. Las capturas fueron replicadas 4-9 veces en cada sitio
para mejorar la cobertura y representatividad, y se recopilaron en una muestra para su
análisis, ya que los conjuntos de polillas en el área de estudio no muestran evidencia de los
cambios estacionales en todo año. Los Arctiidae eran significativamente más ricos en
especies en los bosques recuperados y la vegetación abierta de bosque maduro.
Concluyendo así que para algunos organismos, hábitats modificados pueden desempeñar un
papel importante para la conservación de la biodiversidad en los Andes (Nöskea et al,
2008).
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Por otro lado Brehm y otros estudiaron La Diversidad Beta de Polillas Geométridos
(Lepidoptera: Geometridae) en un Bosque Pluvial Montano Andino, encontrando que la
renovación de la composición de especies de la familia Geometridae es extremadamente
rica. El estudio se realizó en el sur de Ecuador (Reserva Biológica San Francisco). Se
obtuvieron un total de 13.938 ejemplares de los cuales de analizaron 1.010 especies y se
concluyó que la temperatura se supone que es el más importante determinante abiótico
responsable para el recambio de especies entre las polillas y que el factor subyacente
común, como el ambiente y la temperatura también pueden ser responsables de cambios en
la vegetación (Brehm, et al, 2003).
La colombiana Ángela Amarillo en su artículo titulado Actividad de Saturnidos
(Lepidóptera: Saturniidae) en la Reserva Natural Río Ñambí, Nariño, Colombia, estimó la
abundancia relativa y la relación entre especies de las subfamilias y su llegada a las trampas
de luz en la noche y diferentes tiempos atmosféricos, en esta reserva. Se registraron un total
de 32 especies en la Reserva pertenecientes a las siguientes subfamilias: 4 Attacinae, 3
Arsenurinae, 8 a Ceratocampinae y 17 a Hemileucinae, que representan un 46.4% del total.
En cuanto a la llegada de los saturnidos a las trampas de luz se encontró que la mayoría
arribó entre las 6:00 y las 9:00 pm y es importante mencionar que hubo una disminución en
el arribo de individuos entre las 3:00 y las 6:00 am, es decir tienen como patrón de llegada
a la luz las tres primeras horas de la noche (Amarillo, 1997).
Años más tarde Amarillo A. en su artículo Polillas Saturnidas (Lepidóptera: Saturniideae)
de Colombia, realiza un listado de especies de esta familia, distribución en Colombia y
altitud, con información suministrada de fuentes bibliográficas y visitas a colecciones
entomológicas de universidades de Bogotá, Medellín y Cali; en este escrito se registran un
total de 185 especies distribuidas en 46 géneros, además es de gran importancia el registro
que se realiza por primera vez de un listado de especies de la subfamilia Hemileucinae para
Colombia. Por otro lado hace un breve recuento de la sistemática y como a partir de un
análisis filogenético Minet (1986) reasigno las familias Oxytenidae y Cercophanidae como
subfamilias de Saturniidae; pero en dicha revisión se tiene en cuenta la clasificación
20
20
presentada por Heppner en 1996, donde la familia saturniidae está conformada por siete
subfamilias: Agliinae, Ludiinae, Salassinae, Saturniinae, Hemileucinae, ceratocampinae, y
Arsenurinae, las cuatro últimas representadas en toda América (Amarillo, 2000).
En el año 2010 Amarillo A. y Muñoz A., realizaron un trabajo sobre la variación altitudinal
en diversidad de Arctiidae y Saturniideae (lepidóptera) en un bosque de niebla Colombiano;
teniendo en cuenta que la riqueza y abundancia de especies está relacionada con factores
como la altitud y cambios ambientales que determinan patrones de distribución de especies;
el estudio compraró la distribución de la riqueza de estas dos familias, teniendo en cuenta el
gradiente altitudinal de 1448-2068 msnm en un bosque de niebla en el departamento del
Cauca (Reserva natural Tambito); se recolectaron 149 ejemplares de la familia Arctiidae y
56 de la familia Saturniidae, mostrando un eficiencia de muestreo positiva para ambas
familias (42% Arctiidae y 98% Saturniidae). Por otro lado la riqueza de la familia
Saturniideae es menor con relación a los encontrados en otros departamentos colombianos,
esto explicado en función del gradiente altitudinal pues en los otros estudios realizados la
altitud no superó los 1000msnm, la reserva natural de tambito posee el 5% de los saturnidos
del país en un área no mayor a 1400 Has. En el caso de la familia Arctiidae no se pudo
realizar la comparación debido a que no se reportan estudios sobre distribución y riqueza de
la misma (Amarillo y Muñoz, 2010).
En cuanto a la variación altitudinal la riqueza y diversidad de Saturniidae disminuye con la
altitud, pero la tendencia de la riqueza por subfamilia varia. Ceratocampinae y Saturniinae
registraron mayores valores de riqueza a 1631 msnm; la mayor riqueza de Arctiidae se
presentó a 1631 msnm disminuyendo así en las altitudes restantes, esto debido a la
versatilidad de sus especies que permiten que la familia pueda resistir cambios bruscos en
las condiciones ambientales como lo plantea (Amarillo y Muñoz, 2010).
La luna en su fase creciente conduce, proyecta, admite, construye, inhala, almacena
energía, acumula fuerza, invita al cuidado y al establecimiento, mientras que la luna en su
fase menguante aclara, suda, exhala, seca, invita a la actividad y dispendio de energía,
según indican (Paungger & Poppe, 1993). Dichos autores también señalan que el momento
de la recolección de las diferentes partes de las plantas deberá estar basado en la ubicación
de la luna durante el recorrido por las constelaciones. En el caso de las plantas cuya parte a
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cosechar sean las raíces, se deberán desenterrar en luna llena o menguante, ya que es
cuando se encuentran más rígidas. Para las hojas, la recolección debería hacerse en luna
ascendente o creciente. Las flores deberán cosecharse en creciente o luna llena. Los frutos y
semillas recolectados en creciente son aptos solamente para consumirse inmediatamente.
Según (Paungger & Poppe, 1993) con la ayuda de los ritmos lunares, la humanidad podrá
renunciar al uso indiscriminado de insecticidas, herbicidas, fungicidas y fertilizantes
químicos y volver a encontrar el equilibrio natural y dinámico de la tierra. Plantas que
crecen y dan frutos (vainas) por encima de la superficie de la tierra deberán sembrarse con
la luna en creciente. Las plantas cuyas hortalizas crecen bajo la tierra prosperan cuando son
sembradas o plantadas con la luna menguante. El momento oportuno más favorable para
aplicar medidas de combate es cuando la luna se encuentra en menguante. La luna llena
alcanza como máximo una luminosidad de 0,25 a 0,50 lux (menos que la de una vela a un
metro de distancia), mientras que el sol en un día despejado llega fácilmente a los 100.000
lux. El zoólogo Hauenschild, citado por Scheppach (1995) demostró en los años sesenta
como los seres vivos reaccionaban de un modo extraordinario ante luces débiles. Mediante
una linterna de bolsillo simuló en el laboratorio la luna llena, experimentando con gusanos
marinos pudo comprobar que una radiación lumínica tan débil influía en su ciclo
reproductor (Scheppach, 1995). La bióloga alemana Kolisko, citada por (Scheppach, 1995)
investigó las relaciones entre la luna y la flora terrestre.
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5 MARCO TEÓRICO
Las mariposas (Lepidoptera) son uno de los mayores Ordenes de la C1ase insecta y
comprende cerca de 100.000 especies; tradicionalmente han sido divididas en dos
subordenes: los Rhopalocera (mariposas diurnas) que se caracterizan por tener las antenas
terminando en una masa, comprendiendo aproximadamente 15.000 especies, y los
Heterocera (mariposas nocturnas) con unas 85.000 especies caracterizadas por tener las
antenas de formas muy variadas (Andrade, 1990). A continuación se presenta una
descripción de cada una de las familias de polillas nocturnas que existen reportadas
actualmente; seguidos del concepto e importancia de la diversidad y finalmente una
definición de diversidad alfa y diversidad beta y los índices que se trabajaran para el
análisis de la información.
5.1 FAMILIAS
5.1.1 Tortricidae
La familia Tortricidae es una familia grande y relativamente homogénea en la superfamilia
Tortricoidea, con tres subfamilias a veces han considerado las familias separadas:
Chlidanotinae, Tortricinae y Olethreutinae. Hay alrededor de 9.000 especies descritas
ricamente distribuidas en todo el mundo en 1000 o más géneros; números incalculables
permanecen en el anonimato, en las regiones tropicales. Muchos tortrícidos son de
importancia económica como plagas agrícolas y forestales. Los adultos son pequeños a
moderadamente grande (1-3.3 cm de envergadura), y son nocturnos Normalmente con alas
anteriores de color crípticamente en el óxido gris, marrón, o marrón, a veces con manchas
de colores. En reposo, las alas se llevan a cabo como un techo aplanado, dando la
semejanza de una punta de flecha. Las larvas son rodillos de la hoja, o barrenadores en las
raíces, tallos, o frutos, y la mayoría de las especies son especialistas en la selección de
plantas de alimentos, con al enorme variedad de plantas que sirven como anfitriones
(Lohman et al, 2008).
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5.1.2 Pyralidae
Los Pyralidae son miembros de la superfamilia de Pyraloidea. Un grupo diverso, hay más
de 6.000 especies descritas en el mundo, y más de 600 especies en América al norte de
México, que comprende la tercera familia de polillas grande más grande en América del
Norte. Se trata de pequeñas a medianas y ocasionalmente grandes polillas (envergadura 0,9-
3,7 cm) con características morfológicas variables. Adultos mantienen sus alas hacia el
lado, dobladas planas, o para arriba, haciendo que sus cuerpos parezcan palos. Las larvas se
alimentan principalmente oculta, lo más a menudo barrenadores en semillas, frutos o tallos,
o en los túneles en el suelo debajo de las plantas. Otros construyen nido como refugios
entre las hojas atadas, a veces de seda dura. Diversas plantas vivas se consumen, así como
la materia vegetal seca que incluye semillas, nidos de himenópteros, colmenas de abejas y
cera muchos son los hogares y graneros plagas que han sido transportados en todo el
mundo por las actividades humanas (Delvare et al, 2002).
5.1.3 Sesiidae
Las polillas Sesiidaes son miembros de la superfamilia Sesioidea. Son pequeños a
moderadamente grandes (1.4 a 4.6 cm de envergadura),-de cuerpo pesado, diurna o
crepuscular, y casi todas las especies se asemejan a las avispas o abejas, presumiblemente
un mimetismo inespecífica ayuda a evitar depredadores vertebrados. Esto implica no sólo
alas claras y coloridas, el abdomen con bandas, pero las patas con mechones modificados,
que en algunos casos tienen escamas de color amarillo con punta para simular el polen
Llevado por las abejas. Las larvas son gruesas, y se alimentan de más de 40 familias de
plantas con flores, sin una fuerte preferencia por uno. Ellos perforan los tallos, cortezas y
raíces, o en agallas causadas por otros insectos. (Nowinzky et al, 2012).
5.1.4 Cossidae
Los Cossidae son miembros de la superfamilia de Cossoidea. Se producen en todo el
mundo, con más de 670 especies descritas, el mayor número se encuentra en regiones
tropicales. Cerca de 50 especies en América al norte de México. Estas polillas son pequeñas
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a grandes, con una envergadura de 2,5 a 8,5 cm. Así se le conoce como "la polilla de
cabra", o "polilla leopardo". Los adultos son robustos y corpulentos, y son nocturnos.
Típicamente, en su mayoría de color gris con manchas negras. Las hembras son más
grandes que los machos a menudo mucho. Los huevos son depositados en grietas o en
general, con corteza, y 'se pueden producir en grandes cantidades. Las larvas perforan las
ramas o troncos de árboles vivos o arbustos, a veces causando daños considerables, y
requieren de 1 a 4 años en madurar. Plantas huéspedes incluyen por lo menos 17 familias
de angiospermas. (Monzón y Laguerre, 2011).
5.1.5 Geometridae
Las polillas geómetridas son la segunda gran familia más grande de las polillas en América
del Norte. Esta familia incluye muchas plagas agrícolas y forestales graves. Estas polillas
son pequeñas o de tamaño medio, con cuerpos delgados y alas anchas. En promedio, la
envergadura de las polillas es de 1-6 cm, aunque las hembras de algunas especies carecen
de alas completamente. Las larvas son generalmente con los primeros 2-3 pares de patas
falsas. Se mueven por extensión de la parte frontal del cuerpo lo más adelante posible, a
continuación, con lo que la parte trasera del cuerpo hacia arriba a su encuentro; así es como
han conseguido el nombre de "gusanito" Las larvas se alimentan externamente en las hojas
y por lo general se transforman en crisálidas en capullos sueltos en la hojarasca o el suelo
(Nowinzky et al., 2012).
5.1.6 Sphingidae
Los Sphingidos pertenecen a la superfamilia de Sphingoidea. Los miembros de esta familia
son comúnmente llamados "colibrí", "Esfinge", o "la polilla halcón", y algunos se pueden
confundir con los colibríes. La mayoría son medianas y grandes mariposas nocturnas, con
los cuerpos pesados; su envergadura alcanza los 5 centímetros o más en algunas especies.
Los Sphingidae son aviadores fuertes y rápidos, con un aleteo rápido. (Lamas, 2000). La
mayoría de las especies del grupo son activos al anochecer, y la mayoría se alimenta mucho
como colibríes, flotando en frente de una flor y bebiendo el néctar a través de la trompa
prolongada. La probóscide se enrolla Cuando no está en uso. Algunas especies carecen de
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escamas en grandes porciones de sus alas, lo que resulta en las alas transparentes o claras.
En la mayoría de las especies, la etapa larval se llama un "gusano cornudo" porque el
extremo posterior de la oruga tiene un gancho inofensivo o apéndice córneo que sobresale
hacia arriba. Por desgracia, la oruga de algunas especies puede ser muy destructiva para los
cultivos agrícolas y plantaciones ornamentales. (Monzón y Laguerre, 2011).
5.1.7 Lasiocampidae
Las polillas Lasiocampidas son de tamaño mediano, con cuerpos peludos qué suelen
superar a las posteriores de longitud. Envergadura es 2.5 a 5.8 cm., Y ocelos ausentes. En
ambos sexos, las antenas son bipectinadas en las puntas. Al descansar, polillas sostienen
sus alas como un techo sobre sus cuerpos. Las larvas son de colores, rayada
longitudinalmente, y densamente pilosas. Algunas especies son plagas serias en los bosques
y en los árboles de sombra. Las larvas de algunas especies construyen redes comunales (o
"tiendas de campaña") en los árboles para la protección contra los depredadores, dejando
las redes de larvas que se alimentan de follaje del árbol huésped, y otros árboles de hoja
caduca y arbustos. Polillas de esta familia se convierten en crisálidas dentro de un capullo.
La seda de algunas especies se ha utilizado para el paño, pero está cardada e hilado - una
técnica diferente a la utilizada para la seda del gusano de seda de la polilla. (Fielder et al,
2008).
5.1.8 Saturniidae
La familia Saturniidae constituye una familia muy diversa con representantes en todas las
regiones zoogeográficas, especialmente en las regiones tropicales donde hay alrededor de
6.000 especies. (Amarillo y Muñoz, 2010).
Es característico de la familia que las alas posteriores sean bastante estrechas en
comparación con las anteriores. Los huevos de Saturniidae son grandes (esféricos u
ovalados con un largo máximo de 1.5 hasta 3 mm, según la especie) y son adheridos a las
hojas con la goma de una glándula del abdomen de la hembra. Una hembra deposita sus
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huevos de 2-5 días después de copular y muere. Los huevos producen larvas de 5-20 días
después de la puesta, y las larvas empiezan inmediatamente a comer la hoja en que se
encontraba el huevo o una hoja cercana en la misma planta. Las larvas tardan de 4-8
semanas para crecer hasta su tamaño máximo y pesan entre 2 y 20 gr. según la especie
(Janzen, 1982). Los jóvenes Saturniidae son depredados por varios animales, Los adultos
de Saturniidae presentan el aparato bucal atrofiado, por lo que no se alimentan en estado
adulto, alas generalmente muy escamosas, cuerpos "velludos y lanosos", machos con
antenas plumosas, cuadripectinadas o bipectinadas, mientras que en las hembras son
normalmente bipectinadas o filamentosas (Amarillo, 2000). En muchas especies se presenta
una marca en forma de media luna, redondeada u oval en la región central del ala; esta
marca en ciertos casos carece de escamas formando una mancha hialina (Amarillo y
Muñoz, 2010). La familia Saturniidae está compuesta por siete subfamilias Agliinae,
Ludiinae, Salassinae, Saturniinae, Hemileucinae, Ceratocampinae, y Arsenurinae, las cuatro
últimas representadas en toda América.
5.1.9 Erebidae
Constituye una familia muy diversa con representantes en todas las regiones
zoogeográficas, especialmente en las regiones tropicales donde hay alrededor de 6.000
especies. En algunos países son llamadas polillas tigre, debido a la configuración de sus
colores, aunque algunas son de tonalidades castañas o grises. Algunos grupos están
compuestos por especies de color blanco puro, a veces con franjas negras y anaranjadas en
el cuerpo, o con patas de color naranja. Una gran variedad de especies de vivos colores y
diseños se encuentran especialmente en el Neotrópico. Es característico de la familia que
las alas posteriores sean bastante estrechas en comparación con las anteriores (Amarillo y
Muñoz, 2010), se caracterizan por ser mariposas de cuerpo robusto y con frecuencia
cubierto de pilosidad, con una expansión alar aproximado de 12-70 mm (Hernández, 2010).
Las larvas de esta familia generalmente son pubescentes, con pelos reunidos en penachos
que surgen de abultamientos del cuerpo. Son muy poco restringidas en sus dietas
alimenticias consumiendo con mayor frecuencia de especies herbáceas, pocas comen hojas
de árboles o arbustos. Los adultos presentan un par de órganos timpánicos a cada lado del
metatórax con membranas timpánicas oblicuas y dirigidas hacia atrás, las antenas son
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bipectinadas, ciliadas en los machos o simples en las hembras. Los palpos maxilares son
diminutos, con estructuras de un solo segmento y los palpos labiales son típicamente cortos
(Scoble 1992) citado por Amarillo y Muñoz, 2010.
Happner (1998) dividió esta familia en cinco subfamilias: Arctiinae, Ctenuchinae,
Lithosinae, pericopinae y Syntominae. La característica principal de la familia es la
presencia de un órgano estridulatorio en el metepisternum del adulto (excepto en
Ctenuchinae) y de dos sedas subventrales (sv) en el meso y metatórax de la larva. Otras
especializaciones incluyen la presencia de un engrosamiento en la base de la vena subcostal
(Sc) del ala posterior, y la de un par de glándulas situadas anterodorsalmente entre los
lóbulos del ovipositor.
5.1.10 Noctuidae
Los noctuidos son miembros de la superfamilia Noctuoidea. Mundial en la distribución,
esta familia es el más grande de los lepidópteros y cuenta con aproximadamente 20.000
especies. Cerca de 2900 se encuentran en América del Norte, y hay una amplia variación en
la apariencia y el comportamiento. La mayoría de las polillas son de color gris a marrón en
color y tienen línea o manchas en las alas. Algunas especies son de colores brillantes. Son
pequeñas o grandes, y la mayoría de las especies son con una envergadura de 2 de tamaño
mediano - 4,5 cm. Cuando está en reposo, los adultos de la mayoría de las especies tienen
las alas por encima de sus cuerpos como un techo. Típicamente noctuidos son nocturnos,
aunque algunas especies son diurnas. La mayoría larvas se alimentan de follaje de la planta,
las hojas muertas, líquenes y hongos; muchos son graves plagas forestales. Algunas
especies son mineros de hoja, otras son barrenadores, y aún otros se alimentan de noche en
la planta. Las polillas se convierten en crisálidas en las células en el suelo, en las cavidades
de las plantas, o en los capullos de seda (Brehm, Homeier y Fiedler. 2003).
5.1.11 Crambidae
Los Crambidos pertenecen a la superfamilia de Pyraloidea. Más de 11.500 especies han
sido descritas en todo el mundo, con más de 800 especies en América al norte y México, la
mayoría en el Atlántico y en los estados del sureste o sur de Texas y Arizona. Los
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Crambridos son diversos y variables en la morfología y la biología. Hábitos y morfología
de larvas son por lo tanto muy variables entre subfamilias e incluyen especies de plagas
agrícolas. (Fielder et al. 2008).
5.1.12 Pterophoridae
Los Pterophoridae forman parte de la superfamilia Pterophoroidea. Más de 1.000 especies
han sido descritas en todo el mundo, con probablemente muchas especies tropicales no
descritas. En América del norte de México, más de 150 especies han sido nombradas, y se
encuentran principalmente en el Oeste. Los adultos son medianos a pequeños (1.3 a 4.1 cm
de envergadura), con un cuerpo largo y delgado, las piernas y las alas, y un aspecto en
forma de T. Cuando está en reposo. Ellos han profundamente hendido típicamente las alas,
con cada una de las tres divisiones de las alas posteriores que llevan franjas anchas, de la
cual el nombre común de la familia deriva. Estas polillas son nocturnas y por lo general de
color, beige, marrón o gris con marcas más oscuras y más pálidas. Algunas especies son
barrenadores de tallos o raíces, pero la mayoría son alimentadores externos en el follaje.
Las pupas se forman en las galerías larvarias o fijarse para acoger tallos de las plantas o
escombros, totalmente expuesta, y se alimentan de plantas angiospermas vivientes.
(Apolinar, 1925).
5.2 DIVERSIDAD
En el "Convenio sobre la Diversidad Biológica" , específicamente, se define a la diversidad
biológica como la variabilidad de organismos vivos de cualquier fuente, incluidos, entre
otras cosas, los ecosistemas terrestres y marinos y otros ecosistemas acuáticos y los
complejos ecológicos de los que forman parte; comprende la diversidad dentro de cada
especie, entre las especies y de los ecosistemas". Además de reconocerse el valor intrínseco
de la diversidad biológica se reconocen otros valores (ecológicos, genéticos, sociales,
económicos, científicos, educativos, culturales, recreativos y estéticos), y se declara la
importancia de la diversidad biológica para la evolución y para el mantenimiento de los
sistemas necesarios para la vida de la biosfera (ONU, 1992).
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En otro nivel de organización, las comunidades ecológicas están integradas por un
determinado número de especies, y cada una de estas especies tiene una cierta importancia
en la comunidad. La importancia está determinada por el número de individuos, biomasa,
cobertura, entre otras, de cada una de las especies. A esta variabilidad se le conoce como
diversidad de especies (Moreno, 2001).
Asimismo de los niveles genético, de especie y de comunidades es posible evidenciar
aspectos de la composición, que se refiere a la identidad y variedad de genes, poblaciones,
especies, comunidades; la estructura hace referencia a la manera en que se organizan los
componentes, desde la genética de las poblaciones hasta la composición del paisaje; y por
último la función de los sistemas biológicos, se refiere a los procesos ecológicos y
evolutivos que ocurren entre los componentes (Halffter, Moreno y Pineda, 2001).
Una de las mejores formas para medir la diversidad es a través del material estadístico que
relaciona el número de especies en relación al total de la población encontrada, mediante el
análisis y síntesis de la información obtenida de estos inventarios, debe permitir mostrar
una recolección de la información que date la biodiversidad lo más clara y precisa posible.
(Álvarez, et al. 2004). Estos datos se organizan en bases de datos y tablas que contienen los
datos originales, tal como se obtuvieron en campo, pero están organizados. Una base de
datos bien estructurada, agiliza el análisis de la información y garantiza su posterior uso o
reinterpretación. Para evaluar la biodiversidad en sus diferentes componentes y niveles o
escalas, se pueden utilizar índices que finalmente ayudan a resumir información en un solo
valor y permiten unificar cantidades para realizar comparaciones. Sin embargo, para la
aplicación de índices es necesario conocer los supuestos en los que están enmarcados para
que la información generada a través de éstos pueda ser utilizada para interpretar
correctamente el comportamiento de la biodiversidad. (Fielder et al. 2008) Para estudiar la
biodiversidad se puede considerar y separar en diferentes niveles para obtener información
más allá de sólo listados de especies, y se usan análisis como la diversidad Alfa y Beta.
(Álvarez et al, 2004).
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La diversidad Alfa es la riqueza de especies de una comunidad determinada y que se
considera homogénea, por lo tanto es a un nivel “local”. Una comunidad es dependiente de
los objetivos y escala de trabajo (Álvarez et al, 2004). La diversidad beta es la medida del
grado de cambio o reemplazo en la composición de especies entre las comunidades que se
encuentran en un área mayor. Se propone que se obtenga a partir de comparaciones entre
pares de unidades de paisaje; sin embargo, esto depende de lo que se haya definido como
ensamblaje (Álvarez et al, 2004).
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6 METODOLOGÍA.
La metodología de investigación del proyecto es de tipo cuantitativo investigativo, se usa
técnicas estadísticas para conocer ciertos aspectos de interés del ensamblaje que está
estudiando (Hueso y Cascant, 2012). En el caso del enfoque cuantitativo existe asimismo
una exigencia de en cuanto a los pasos a seguir puesto que el desarrollo de este tipo de
metodología requiere de una marcada secuencia de ciertos procedimientos (Aravena et al.
2006).
6.1 Área De Estudio
El estudio se realizó en el municipio de Villagómez, Cundinamarca (figura 1), en la Vereda
Buenavista (figura 2) ubicada en la subcuenca del río Veraguas, en el Sudoeste del
municipio y limita al Norte con la vereda La Argentina en la cuchilla de Capira, al Sur y al
Oeste con el municipio de Pacho en la cuchilla de Capira y el Río Veraguas; al Oriente con
la Vereda de Veragüitas en la Cuchilla de Veragüitas. El municipio cuenta con una altura
media de 1700 metros sobre el nivel del mar, a una temperatura media de 20° centígrados,
la vertiente del Río Negro conformado por la Veredas de Buenavista y Veragüitas que es
más seca y menos lluviosa, con una precipitación anual es de 3.000 mm aproximadamente.
En la Vereda Buenavista se ubica la laguna de Tambiribuco, la cual presenta afectación por
infiltraciones y fallas geológicas sumado al impacto ambiental provocado por la vía
principal Pacho- Villagómez; la ronda de la laguna cuenta con un bosque natural
secundario (Alcaldía de Villagómez, 2001).
Su economía se basa principalmente en la ganadería extensiva, cultivos de pan coger, como
maíz, plátano y yuca, y método tradicional, caña panelera, arracacha, arveja, frijol y
cítricos, su comercialización se realiza en el municipio de Pacho (Alcaldía de Villagómez,
2001).
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Figura 1. Municipio de Villagómez, Cundinamarca. Ubicación del municipio de Villagómez en el
departamento de Cundinamarca. Tomado de http://mapas.cundinamarca.gov.co/flexviewers/20130803_Base/
Figura 2. Vereda Buenavista, Villagómez, Cundinamarca. Ubicación de la vereda Buenavista dentro del
municipio de Villagómez, Cundinamarca. Tomado de
http://mapas.cundinamarca.gov.co/flexviewers/20130803_Base/
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6.2 ESTACIONES MUESTREO
6.2.1 Estación # 1. Policultivo.
La estación # 1 (figuras 3, 4) se localiza en una altitud de 1759 msnm, en dicha estación se
encuentran pequeños cultivos de plátano Musa paradisiaca, café (coffea arabica), naranja
(Citrus sinensis), maíz (Z. mays ssp), yuca (Manihot esculenta) y caña de azúcar
(Saccharum officinarum).
Figura 3. Estación # 1. Policultivo. Trampa número 1.
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Figura 4. Estación # 1. Policultivo. Trampa número 2.
6.2.2 Estación # 2 Bosque Secundario.
La segunda estación de muestreo es un bosque secundario (ver Figura 5.) ubicado a 1800
msnm presenta una vegetación arbustiva y arbórea que consiste en eucaliptos (Eucalyptus
globulus labill), guayabos (Psidium guajava), guaduas (Guadua angustifolia), pomarrosa
(Syzygium jambos).
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Figura 5. Estación # 2. Bosque secundario.
6.3 DISEÑO METODOLÓGICO
El muestreo se realizó en la Vereda Buenavista, del municipio de Villagómez en
Cundinamarca, usando una fuente de luz blanca, debido a que las polillas se sienten atraídas
por fuentes de luz artificial débil de tubos de 15W Sylvania negro azul claro, F15W /
T8/BLB y Philips TLB 15W 05, a nivel del suelo (Nöskea et al. 2008).
6.3.1 Trampas
Para realizar los muestreos se utilizaron dos trampas de luz en cada estación de muestreo,
se dejaron 50 m de distancia, consisten de una fuente de luz LED, de 15 W y una torre de
tela blanca de altura 170 cm y con diámetro de 70 cm (Figura 6.) (Truxa y Fielder, 2012).
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Figura 6. Trampa de luz LED blanca de 15 w. En la estación 1, trampa número 2.
Se realizó una salida mensual, desde el mes de abril hasta el mes de julio del año 2014,
cada una tuvo una duración total de cuatro días, repartidas las cuales dos días se tomaran
muestras en cada estación. Los muestreos se realizaron en cada una de las fases lunares, de
la siguiente manera: en el mes de abril se realizó el muestreo en luna llena, los días del 15
al 18; en el mes de mayo se realizó el muestreo en la fase lunar cuarto menguante, del 27 al
30 de este mes; la fase lunar de luna nueva se realizó del 18 al 21 de junio y por último la
fase lunar de cuarto creciente se llevó a cabo del 4 al 7 de julio del 2014. En cada salida la
recolección se realizó de 6:00pm a 10:00pm (Truxa y Fielder, 2012) en donde se hizo el
montaje de las lámparas y las baterías en cada estación, se dejaron las lámparas encendidas
toda la noche, la siguiente revisión y acompañamiento de las trampas se hace de 3:30am a
5:30 am ya que se describe como las horas en que las polillas presentan más actividad
(Truxa y Fielder, 2012). Con anticipación, se hicieron y se portaron los sobres
entomológicos para recoger las muestras, de forma manual, es decir con el sobre se
recolectan los especímenes, luego fueron rotulados (fecha, estación, número consecutivo de
las recolectoras), el sacrificio se realizó mediante choque térmico, es decir empleando bajas
temperaturas para evitar daños en los ejemplares hasta el día de la determinación, en un
refrigerador casero a 4ºC (Andrade, et al, 2013).
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6.3.2 Fase de Determinación
Para la determinación de los individuos colectados se realizó el montaje de los mismos
usando las Técnicas y Procesamiento para la Recolección, Preservación y Montaje de
Mariposas en Estudios de Biodiversidad y Conservación. (Lepidoptera: Hesperoidea –
Papilionoidea) propuestas por Andrade, et al. (2013) (ver figura 9 y Anexo 1) y se
depositaran posteriormente en el museo de la Universidad Distrital Francisco José de
Caldas y se utilizarán las claves de Janzen (1982) guía para la identificación de mariposas
nocturnas de la familia Saturniidae del parque nacional Santa Rosa, Guanacaste, Costa
Rica. Departamento de biología, Universidad de Pensilvania, Philadelphia, y Museo
Nacional de San José en Costa rica; Amarillo (2001) Clave sinóptica para las familias y
subfamilias de mariposas y polillas colombianas, Instituto de Ciencias Naturales
Universidad Nacional de Colombia. Los Insectos de África y De América Tropical Claves
para la Identificación de las Principales Familias, Delvare, et al. (2002). A Photographic
Guide to Macro-moths of the Algarve, Associação A Rocha (2012). An Illustrated Catalog
of the Neotropic Arctiinae types in the United States of National Museum (Lepidoptera-
Arctiidae) PART II, Allan Watson, Smithsonian contributions to Zoology, number 128,
Washington 1973. Watson, (1973); adicionalmente los individuos colectados se
determinaron hasta la categoría de morfotipo (Oliver y Beattie, 1996; Derraik et al. 2002) y
adicionalmente corroborados por el especialista Cristobal Ríos Malaver del IVIC,
Venezuela y por Msc. Oscar Javier Mahecha.
6.4 FASE DE ANÁLISIS
6.4.1 Listado de familias
Con la determinación de los individuos colectados se consolido un listado de familias y
morfotipos presentes en la vereda Buenavista del municipio de Villagómez, Cundinamarca.
38
38
6.4.2 Diversidad Alfa
En primer lugar se contrastó la normalidad de los datos obtenidos con la prueba de Shapiro-
Wilk con ayuda del programa estadístico “Statistix 8” y luego se realizó un contraste no
paramétrico de Kruskal-wallis, que contrasta si los valores obtenidos en los diferentes
grupos son similares (Barón y Téllez. 2004), por lo anterior surgió como Hipótesis nula,
Ho= que los datos obtenidos en la muestra son normales y como hipótesis alterna, H1= que
los datos obtenidos en la muestra no son normales.
Para evaluar la diversidad alfa del ensamblaje de polillas nocturnas de la Vereda
Buenavista, en Villagómez, Cundinamarca se utilizaron los siguientes índices usando el
programa estadístico Statistix 8: el Índice de dominancia de Simpson que permite medir la
riqueza de los organismos de una muestra, adicionalmente muestra la probabilidad de que
los individuos de una muestra sean de la misma especie; está influido por las especies más
dominantes (Moreno, 2001).
λ = pi ²
Dónde: pi = abundancia proporcional de la especie i, es decir, el número de individuos de la
especie i dividido entre el número total de individuos de la muestra (Moreno, 2001).
Se usó un índice de equidad donde se tiene en cuenta la abundancia de cada familia y que
tan uniformemente están distribuidas, el índice de Shannon, el cual asume que todas las
familias están representadas en las muestras; indica qué tan uniformes están representadas
las especies (en abundancia) teniendo en cuenta todas las especies muestreadas (Álvarez et
al. 2004).
Dónde:
pi = abundancia proporcional de la especie i, lo cual implica obtener el número de
individuos de la especie i dividido entre el número total de individuos de la muestra.
Asume que todas las especies están representadas en las muestras y que todos los
individuos fueron muestreados al azar. Puede adquirir valores entre cero (0) cuando hay
39
39
una sola especie y el logaritmo de S cuando todas las especies están representadas por el
mismo número de individuos. Puede verse fuertemente influenciado por las especies más
abundantes (Álvarez, et al. 2004).
Índice de Fisher Alfa
S = α Loge (I+N/α)
Donde S es: número de especies de la muestra, N es: el número de individuos en
la muestra y α es: el índice de diversidad (Fisher et al. 1943, citado por Medianero,
Valderrama y Barrios, 2003.).
Rarefacción
“Permite hacer comparaciones de números de especies entre comunidades cuando el
tamaño de las muestras no es igual. Calcula el número esperado de especies de cada
muestra si todas las muestras fueran reducidas a un tamaño estándar, es decir, si la muestra
fuera considerada de n individuos (n<N), ¿cuántas especies se habrían registrado?”
(Moreno. 2001):
donde:
E(S) = número esperado de especies
N = número total de individuos en la muestra
Ni = número de individuos de la iésima especie
n = tamaño de la muestra estandarizado (Moreno, 2001.)
Estos índices fueron usados, ya que son los más adecuados, con Shapiro Wilk los datos se
acercan a la normalidad y de esta forma los datos ser uniformes y tener resultados más
confiables, para medir la riqueza de la zona con el índice de dominancia de Simpson, el cual
nos muestra si es una sola familia la que predomina; con el índice de Shannon se estima la
equidad de las familias presentes, estos índices fueron usados ya que son eficaces y adecuados
para este estudio, así mismo se usó el índice de fisher alfa y las curvas de rarefacción para
medir la diversidad, son los índices más claros y que más se adecuan a lo que se buscaba
obtener con los resultados.
40
40
6.4.3 Diversidad Beta
Para hallar la diversidad beta del ensamblaje de polillas nocturnas colectadas se usó un
método cualitativo el cual expresa la semejanza entre dos muestras sólo considerando la
composición de especies, y particularmente el Índice de similitud de Jaccard que relaciona
el número de especies compartidas con el número total de especies (Álvarez et al. 2004)
para las estaciones de muestreo y las fases lunares,
IJ: c/(a+b-c)
Dónde:
a= número de especies en el sitio A
b= número de especies en el sitio B
c= número de especies presentes en ambos sitios A y B, es decir que están compartidas
El rango de este índice va desde cero (0) cuando no hay especies compartidas, hasta uno (1)
cuando los dos sitios comparten las mismas especies. Este índice mide diferencias en la
presencia o ausencia de especies (Álvarez et al. 2004).
Análisis de Clusters
El Análisis de Clusters (o Análisis de conglomerados) es una técnica de análisis
exploratorio de datos para resolver problemas de clasificación; permite descubrir
asociaciones y estructuras en los datos que no son evidentes a priori pero que pueden ser
útiles una vez que se han encontrado. Un dendograma es una representación gráfica en
forma de árbol que resume el proceso de agrupación en un análisis de clusters. Los objetos
similares se conectan mediante enlaces cuya posición en el diagrama está determinada por
el nivel de similitud/disimilitud entre los objetos (Vicente, 2006). Este análisis se realizó
con el programa estadístico Biodiversity Pro y solo fue usado para la determinación en las
fases lunares teniendo en cuenta que el análisis discriminante al conjunto de técnicas que
tiene por objetivo la clasificación de los individuos y los que están mayormente
relacionados según familia.
41
41
6.5 FASE DE CARACTERIZACIÓN DE LA ACTIVIDAD DE POLILLAS NOCTURNAS EN CADA FASE LUNAR.
Con la ayuda de las tablas de resultados de diversidad: índice de dominancia de Simpson,
equidad de Shannon, diversidad con Fisher Alfa, y diversidad Beta con el índice de Jaccard
utilizando el programa estadístico Statistix 8 y BioDiversity Pro se establecieron los
comportamientos de los lepidópteros nocturnos, ya que tienen comportamientos diferentes
con respecto a distintos estímulos como las fases lunares, pues la luna actúa como atrayente
para los insectos, para corroborar estos datos se usó el análisis de Cluster y se definió en
qué fase lunar presentan más actividad las polillas de la Vereda Buenavista, del Municipio
de Villagómez, Cundinamarca.
42
42
7 RESULTADOS
A continuación se presenta el listado de familias de polillas nocturnas que se reportan para
la vereda Buenavista, del municipio de Villagómez, Cundinamarca, así mismo se muestra
la evaluación de la diversidad alfa y beta del ensamblaje de polillas nocturnas y una
comparación del comportamiento de los individuos en relación con las fases lunares.
7.1 COMPOSICIÓN DEL ENSAMBLAJE DE POLILLAS NOCTURNAS EN EL MUNICIPIO DE VILLAGÓMEZ, CUNDINAMARCA.
Al terminar la fase de campo se colectó un total de 174 individuos en las dos estaciones de
muestreo, en la Estación de muestreo #1 se colectó un total de 81 individuos (ver tabla 1.),
siendo la salida 1 en Luna Llena la más exitosa con 31 individuos como se muestra en la
figura 7.
Tabla 1. Número de individuos colectados en cada una de las trampas de captura, en las diferentes salidas de
campo en la estación de muestreo # 1. (L Ll. Luna Llena; C M, Cuarto Menguante; L N, Luna Nueva; C C,
Cuarto Creciente.)
ESTACIÓN # 1 ECOSISTEMA INTERVENIDO (CULTIVO)
Trampa 1 Trampa 2 Total
Salida 1 (L Ll.) 19 12 31
Salida 2 (C M.) 17 8 25
Salida 3 (L N.) 4 10 14
Salida 4 (C C.) 3 8 11
Total 43 38 81
Figura 7. Gráfica de individuos colectados en cada salida de campo vs las dos trampas de captura utilizadas en la
Estación # 1.
43
43
En la Estación de muestreo #2 Bosque Secundario, se colectó un total de 93 individuos (ver
tabla 2.), siendo la salida 1 en Luna Llena la más exitosa con 33 individuos seguida de la
salida 3 en fase de Luna Nueva con 30 individuos, como se muestra en la figura 8.
Tabla 2. Número de individuos colectados en cada una de las trampas de captura, en las diferentes salidas de
campo en la estación de muestreo # 2. (L Ll. Luna Llena; C M, Cuarto Menguante; L N, Luna Nueva; C C,
Cuarto Creciente.)
Figura 8. Gráfica de individuos colectados en cada salida de campo vs las dos trampas de captura utilizadas
en la Estación # 2.
Los individuos colectados y montados (ver figura 9 y Anexo 1.) están representados en
nueve (9) familias de macropolillas: Crambidae, 35 individuos; Geometridae, 23
individuos; Noctuidae, 49 individuos; Erebidae, 10 individuos; Pterophoridae, 4 individuos;
Pyralidae, 4 individuos; Sphingidae, 3 individuos; Saturniidae, 4 individuos; Lasicampidae,
3 individuos; Sin Determinar, 5 individuos; algunos individuos pertenecientes a familias de
micropolillas (28 individuos) y 8 individuos en mal estado que no se tuvieron en cuenta
ESTACIÓN # 2 ECOSISTEMA BOSCOSO
Trampa 1 Trampa 2 Total
Salida 1 (L Ll.) 5 28 33
Salida 2 (C M.) 12 8 20
Salida 3 (L N.) 11 18 30
Salida 4 (C C.) 5 6 11
Total 34 60 93
44
44
para esta investigación ya que su estado no permitió realizar la determinación de los
mismos, (ver Tabla 3 y Anexo 1.).
Figura 9. Montaje individuos colectados.
Tabla 3. Listado de morfotipos colectados por familia y la estación de muestreo donde fueron colectados
(Estación 1 policultivo, Estación 2 bosque secundario). E. ejemplar. Mf. morfotipos.
Familia Morfotipo Estación 1 Estación 2
Crambidae
E. (115) 1 0
Mf 4 3
E. (012) 0 1
E. (043) 1 0
Mf 5 3
E. (123) 0 1
E. (125) 0 1
Mf 0 1
E. (106) 0 1
E. (147) 1 0
E. (146) 1 0
Mf 1 0
E. (136) 1 0
E. (113) 1 0
E. (141) 1 0
E. (057) 1 0
Mf. 2 1
E. (056) 1 0
E. (156) 1 0
E. (084) 1 0
Erebidae E. (025) 0 1
E. (042) 1 0
45
45
E. (139) 1 0
Mf. 2 0
E. (086) 0 1
Mf 1 0
E. (035) 1 0
E. (042) 1 0
E. (089) 0 1
Geometridae
E. (134) 0 1
Mf. 3 1
E. (067) 1 0
Mf 2 0
E. (100) 1 0
E. (132) 1 0
E. (065) 1 0
Mf. 0 1
E. (128) 1 0
E. (162) 1 0
E. (158) 0 1
E. (163) 0 1
Mf 1 0
E. (133) 1 0
E. (030) 0 1
E. (032) 0 1
E. (026) 0 1
E. (068) 1 0
E. (040) 1 0
Noctuidae
E. (027) 0 1
E. (023) 0 1
Mf. 4 1
E. (095) 0 1
E. (001) 1 0
Mf. 2 2
E. (029) 0 1
Mf. 0 3
E. (098) 0 1
Mf 1 0
E. (124) 0 1
Mf. 0 1
E. (144) 1 0
E. (131) 1 0
Mf. 1 2
E. (152) 0 1
E. (169) 0 1
E. (118) 0 1
46
46
E. (142) 1 0
E. (150) 0 1
E. (170) 0 1
E. (041) 1 0
Mf. 2 0
E. (082) 1 0
Mf. 1 1
E. (116) 1 0
E. (173) 0 1
Mf 1 0
E. (108) 0 1
E. (016) 0 1
E. (161) 1 0
E. (165) 1 0
E. (160) 0 1
E. (031) 0 1
E. (148) 0 1
E. (058) 1 0
Pyralidae
E. (076) 1 0
Mf. 1 1
E. (090) 0 1
Sphingidae
E.(111) 1 0
Mf. 1 0
E. (138) 1 0
Saturniidae
E. (110) 1 1
E. (107) 0 0
E. (153) 1 0
E. (154) 1 1
Pterophoridae
E. (033) 0 1
E. (054) 1 0
Mf. 2 0
Lasiocampidae
E. (127) 0 1
E. (126) 0 1
E. (119) 0 1
Individuos Sin
Determinar
E. (014) 0 1
E. (062) 1 0
E. (036) 1 0
E. (013) 1 0
Mf. 1 0
MicroMoth
E. (002) 0 1
E. (007) 0 1
E. (008) 0 1
E. (014) 0 1
E. (015) 0 1
47
47
E. (018) 0 1
E. (022) 0 1
E. (044) 1 0
E. (050) 1 0
E. (060) 1 0
E. (062) 1 0
E. (071) 1 0
E. (077) 1 0
E. (088) 1 0
E. (157) 0 1
E. (003) 0 1
E. (006) 0 1
E. (020) 0 1
E. (046) 1 0
E. (047) 1 0
E. (049) 1 0
E. (053) 1 0
E. (055) 1 0
E. (059) 1 0
E. (064) 1 0
E. (159) 0 1
E. (061) 1 0
Individuos en mal
estado.
E. (081) 1 0
E. (009) 0 1
E. (092) 0 1
E. (024) 0 1
E. (083) 1 0
E. (096) 0 1
E. (103) 1 0
E. (017) 0 0
Se colectaron 15 ejemplares y 20 morfotipos de la familia Crambidae, para la familia
Geometridae se encontraron 15 ejemplares y 8 morfotipos, de la familia Noctuidae se
colectaron 27 ejemplares y 22 morfotipos, de la familia Erebidae, 7 ejemplares y 3
morfotipo; de la familia Pterophoridae se colectaron 2 ejemplares y 2 morfotipos; de la
familia Pyralidae, 2 ejemplares y 2 morfotipo; familia Sphingidae 2 ejemplares y 1
morfotipo; 4 ejemplares colectados de la familia Saturniidae (Tabla 4).
Con la totalidad de los datos en el programa estadístico Statistix 8.0
se realizó el test de normalidad Shapiro-Wilk, para verificar si la población colectada en las
48
48
dos estaciones de muestreo tiene una distribución normal, encontrando para cada estación
de muestro un P: 0.0000 con una confiabilidad del 95% indicando que los datos tienen una
distribución no normal (Anexo 3.).
Tabla 4. Listado del número de ejemplares y morfotipos colectados por cada familia.
Familia Ejemplares Morfotipos
Crambidae 15 20
Geometridae 15 8
Noctuidae 27 22
Erebidae 7 3
Pterophoridae 2 2
Pyralidae 2 2
Sphingidae 2 1
Lasiocampidae 3 0
Saturniidae 4 0
Ind. Sin Determinar 4 1
Micromoth 28 0
Ind. Mal Estado 8 0
Adicionalmente se realizó la prueba no paramétrica de Kruskal-Wallis para contrastar la
hipótesis nula de que las muestras cuantitativas fueron obtenidas de la misma población;
dando como resultado P: 0.10200 con una confiabilidad del 95%, indicando que no hay
diferencias significativas en relación a las dos estaciones de muestreo y se acepta la
hipótesis nula (Anexo 4.), es decir los que datos están distribuidos normalmente.
7.2 DIVERSIDAD ALFA EN ESTACIONES DE MUESTREO
Para evaluar la Diversidad Alfa del ensamblaje de polillas nocturnas de la vereda
Buenavista, del municipio de Villagómez, Cundinamarca; se aplicaron los siguientes
índices de diversidad:
49
49
Tabla 5. Estimativos de diversidad.
Estación 1 Estación 2
Taxa_S 60 51
Individuals 78 59
Dominance_D 0,02301 0,02327
Simpson_1-D 0,01 0,006
Shannon_H 3,962 3,863
Fisher_alpha 119,1 179,2
Se analizaron los datos de las dos estaciones de muestreo obteniendo los datos que se
observan en la tabla 5. Se encontró una Riqueza Específica de 60 morfotipos en la Estación
1 de muestreo y 51 morfotipos en la Estación 2 de muestreo, siendo la estación 1 de
policultivo la que presentó mayor riqueza de morfotipos.
Se encontró que la estación que presenta mayor abundancia de individuos de los morfotipos
nuevamente es la Estación 1 (policultivo) con 78individuos, en contraste la Estación 2 de
muestreo (Bosque Secundario) presenta 59 individuos. Adicionalmente se obtuvieron datos
de la Dominancia de especies, en este caso particular morfotipos de las dos Estaciones de
muestreo, encontrando que presentan una dominancia similar de morfotipos con un
0,02301en la Estación 1 y en Estación de Bosque Secundario con un 0,02327.
Para evaluar la diversidad alfa del ensamblaje de polillas nocturnas en cada una de las dos
estaciones de muestreo policultivo y bosque secundario, se tuvieron en cuenta los
estimativos de diversidad que se describen en la tabla 5 y Anexo 5. En primer lugar se tiene
en cuenta el Índice de Dominancia de Simpson que para la Estación 1 de muestreo es de
0,01 y la Estación 2 de muestreo 0,006, es decir, que ambas estaciones presentan una
diversidad alta y por ende una dominancia de morfotipos bastante baja; teniendo en cuenta
que en este índice el número mínimo es 1 que indica que no hay diversidad y que la
dominancia es alta.
Por otro lado, se evalúa la diversidad usando el Índice de equidad Shannon, encontrando
que la Estación 1 Policultivo muestra un H: 3,962 y una diversidad alta de morfotipos y la
50
50
Estación de muestreo 2 Bosque Secundario un H: 3,863, teniendo en cuenta que este índice
maneja una escala donde 1 representa la ausencia de diversidad hasta 5 donde hay mucha
diversidad (Álvarez et al. 2004), entonces de acuerdo a lo anterior ambas estaciones de
muestreo presentan una diversidad de morfotipos alta ya que se aproximan a 4 en la escala
de Shannon.
El índice de Fisher- Alfa permite evidenciar la diversidad de especies del ensamblaje de
polillas nocturnas; según este las estaciones de muestreo presentan un alto índice de
diversidad de morfotipos con valores entre los 115 y 180 aproximadamente, sin embargo la
estación que presenta un índice de diversidad más alto es la Estación 2, Bosque Secundario
con un S= 179.1; seguido de la Estación 1, Policultivo con un S= 119,1.
Adicionalmente, se usó el Método de Rarefacción para las dos estaciones de muestreo, el
cual compara la diversidad de dos muestras obtenidas por medio de intensidades de
muestreo diferentes, obteniendo así la siguiente curva de rarefacción, donde se evidencia
que la estación de muestreo 2 Bosque secundario, es la que presenta una mayor riqueza de
morfotipos (ver figura 10.).
51
51
Figura 10. Gráfica de Rarefacción para las dos estaciones de muestreo. Estación 1 policultivo y Estación 2
Bosque Secundario.
7.3 DIVERSIDAD BETA DE POLILLAS NOCTURNAS EN LAS DOS ESTCIONES DE MUESTREO
Para hallar la diversidad beta, es decir el recambio de morfotipos del ensamble de polillas
nocturnas colectadas en la vereda Buenavista, municipio de Villagómez, Cundinamarca, se
analizaron los datos de las dos estaciones de muestreo y se analizó este recambio con el
índice de Similitud de Jaccard (ver Tabla 6.) encontrando los siguientes datos:
J=C/(a+b-c)
Tabla 6. Índice de Jaccard para las dos estaciones de muestreo. A. número de individuos de la estación 1. B.
número de individuos de la estación 2. C. Número de individuos compartidos en las dos estaciones de
muestreo. J índice de Jaccard.
Índice de Jaccard
A 52
B 41
C 42
J 0,823529412
82,4 %
El índice para las dos estaciones de muestreo (Policultivo y Bosque Secundario) es de
0,8235, lo que infiere que si hay especies compartidas entre ambas; es decir, un 82,4% de
similitud entre los dos lugares de captura de individuos.
7.4 ACTIVIDAD DE POLILLAS NOCTURNAS EN CADA FASE LUNAR
A continuación se describe la actividad del ensamblaje de polillas nocturnas de la vereda
Buenavista, municipio de Villagómez, Cundinamarca teniendo en cuenta los individuos
capturados en cada una de las fases lunares; la diversidad alfa y beta y adicionalmente un
análisis de Clúster.
7.5 POLILLAS NOCTURNAS COLECTADAS POR FASES LUNARES
Los individuos fueron capturados por medio de trampas de luz en dos estaciones de
muestreo, para la fase de Luna llena se capturaron 32 individuos en la Estación 1
52
52
(Policultivo) y 33 individuos en la Estación 2 (Bosque Secundario), para un total de 65
individuos. En la fase de Cuarto menguante se capturaron 26 polillas nocturnas en la
Estación 1 y 20 en la Estación 2 de muestreo, para un total de 46 polillas capturadas. En la
fase de Luna nueva se capturaron 14 individuos en la Estación 1 de muestreo y 30
individuos en la Estación 2 de muestreo, para un total de 44 individuos colectados. En la
última fase luna, Cuarto creciente se colectaron 11 individuos en cada una de las dos
Estaciones de muestreo, para un total de 22 individuos colectados (Ver Tabla 6, y Figura
11).
Tabla 7. Número de individuos colectados en las dos estaciones de muestreo según las fases lunares.
Luna Llena Cuarto Menguante Luna Nueva Cuarto Creciente
Estación 1 32 26 14 11
Estación 2 33 20 30 11
Total 65 46 44 22
La fase lunar donde se colectó el mayor número de individuos fue Luna Llena con 65
individuos, siendo esta fase la más exitosa en cuanto a captura de individuos se refiere;
seguida de la fase de Cuarto Menguante con 46 individuos y Luna Nueva con 44
individuos, sin diferencias muy significativas entre estas.
Figura 11. Número de polillas nocturnas colectadas en cada una de las fases lunares.
Al realizar la determinación de los individuos colectados hasta el carácter de morfotipo o
morfoespecie se encontró la siguiente distribución de capturas en cada una de las fases
53
53
lunares: Luna llena (70 morfotipos), Cuarto menguante (40 morfotipos), Luna nueva (43
morfotipos) y Cuarto creciente (22 morfotipos) respectivamente (ver Tabla 7).
Tabla 8. Número de morfotipos capturados en cada una de las fases lunares. E. ejemplar. Mf morfotipo.
Familia Morfotipo Luna Llena
Cuarto
Menguante
Luna
Nueva
Cuarto
Creciente
Crambidae
E. (115) 0 0 1 0
Mf 3 3 0 1
E. (012) 1 0 0 0
E. (043) 1 0 0 0
Mf 0 3 0 5
E. (123) 0 0 1 0
E. (125) 0 0 1 0
Mf 0 0 1 0
E. (106) 0 1 0 0
E. (147) 0 0 1 0
E. (146) 0 0 1 0
Mf 0 1 0 0
E. (136) 0 0 1 0
E. (113) 0 0 1 0
E. (141) 0 0 1 0
E. (057) 1 0 0 0
Mf. 3 0 0 0
E. (056) 1 0 0 0
E. (156) 0 0 0 1
E. (084) 0 1 0 0
Erebidae
E. (025) 1 0 0 0
E. (042) 1 0 0 0
E. (139) 0 0 1 0
Mf. 0 0 1 0
E. (086) 0 1 0 0
54
54
Mf 0 0 1 0
E. (035) 1 0 0 0
E. (042) 1 0 0 0
E. (089) 0 1 0 0
Geometridae
E. (134) 1 0 0 0
Mf. 2 0 2 0
E. (067) 1 0 0 0
Mf 0 2 0 0
E. (100) 0 1 0 0
E. (132) 0 0 1 0
E. (065) 1 0 0 0
Mf. 1 0 0 0
E. (128) 0 0 1 0
E. (162) 0 0 0 1
E. (158) 0 0 0 1
E. (163) 0 0 0 1
Mf 1 0 0 0
E. (133) 0 0 1 0
E. (030) 1 0 0 0
E. (032) 1 0 0 0
E. (026) 1 0 0 0
E. (068) 0 1 0 0
E. (040) 1 0 0 0
Noctuidae
E. (027) 1 0 0 0
E. (023) 1 0 0 0
Mf. 2 3 0 0
E. (095) 0 1 0 0
E. (001) 1 0 0 0
Mf. 0 2 0 1
E. (029) 1 0 0 0
55
55
Mf. 0 2 1 0
E. (098) 0 1 0 0
Mf 0 1 0 0
E. (124) 0 0 1 0
Mf. 0 0 0 1
E. (144) 0 0 1 0
E. (131) 0 0 1 0
Mf. 0 0 3 0
E. (152) 0 0 1 0
E. (169) 0 0 0 1
E. (118) 0 0 1 0
E. (142) 0 0 1 0
E. (150) 0 0 1 0
E. (170) 0 0 0 1
E. (041) 1 0 0 0
Mf. 1 0 1 0
E. (082) 0 1 0 0
Mf. 0 2 0 0
E. (116) 0 0 1 0
E. (173) 0 0 0 1
Mf 0 0 1 0
E. (108) 0 0 1 0
E. (016) 1 0 0 0
E. (161) 0 0 0 1
E. (165) 0 0 0 1
E. (160) 0 0 0 1
E. (031) 1 0 0 0
E. (148) 0 0 1 0
E. (058) 1 0 0 0
Pyralidae E. (076) 0 1 0 0
56
56
Mf. 0 0 1 0
E. (090) 0 1 0 0
Sphingidae
E.(111) 0 0 1 0
Mf. 0 0 1 0
E. (138) 0 0 1 0
Saturniidae
E. (110) 0 0 1 0
E. (107) 0 1 0 0
E. (153) 0 0 0 1
E. (154) 0 0 0 1
Pterophoridae
E. (033) 1 0 0 0
E. (054) 1 0 0 0
Mf. 2 0 0 0
Lasiocampidae
E. (127) 0 0 1 0
E. (126) 0 0 1 0
E. (119) 0 0 1 0
En cuanto a los morfotipos distribuidos en las nueve familias y su actividad en las
diferentes fases lunares se encontró que las familias que están representadas por mayor
número de morfotipos, es decir Crambidae, Geometridae y Noctuidae tienen en la fase de
Luna Llena 10, 11 y 11 morfotipos respectivamente, en Cuarto Menguante presentan 9,4 y
13 morfotipos; en Luna Nueva 9, 5 y 16 morfotipos en cada una y por último en Cuarto
Creciente presentan 7,3 y 8 respectivamente, ver tabla 8 y figura 12.
Tabla 9. Número de morfotipos por las familias colectados en cada fase lunar.
Familia Luna Llena
Cuarto
Menguante Luna Nueva Cuarto Creciente
Crambidae 10 9 9 7
Erebidae 4 2 3 0
Geometridae 11 4 5 3
Noctuidae 11 13 16 8
Pyralidae 0 2 1 0
Sphingidae 0 0 3 0
Saturniidae 0 1 1 2
Pterophoridae 4 0 0 0
Lasiocampidae 0 0 3 0
57
57
Figura 12. Gráfica de barras del número de morfotipos por las familias colectados en cada fase lunar
7.5.1 DIVERSIDAD ALFA DE FASES LUNARES
Se analizaron los datos de las dos estaciones de muestreo obteniendo los datos que se
observan en la tabla 9. Se encontró que la fase lunar con mayor Riqueza Especifica es la de
Luna nueva con 38 morfotipos; seguida de Luna llena con 33 morfotipos, Cuarto
menguante con 21 morfotipos y por último la fase con menos riqueza especifica Cuarto
creciente con 16 morfotipos.
Adicionalmente, se encontró que la fase lunar que presenta mayor abundancia de
morfotipos es Luna nueva con 41 morfotipos, la que menos abundancia presenta es Cuarto
creciente con 20 morfotipos. Adicionalmente se obtuvieron datos de la Dominancia de
especies, y la fase lunar con mayor dominancia de morfotipos es Cuarto creciente igual a
0,1, seguida de Cuarto menguante con 0,059 y las fases con menor índice de dominancia
son Luna llena con 0,036 y Luna nueva con 0,029 respectivamente.
Para evaluar la diversidad alfa del ensamblaje de polillas nocturnas en cada una de las fases
lunares, se tuvieron en cuenta los estimativos de diversidad que se describen en la tabla 9 y
Anexo 5. En primer lugar se tiene en cuenta el índice de Dominancia de Simpson, que
58
58
presentan para la fase lunar de Luna Llena un valor de 0,012, Cuarto Menguante 0,028,
Luna Nueva presenta un valor de 0,005 y la fase lunar de Cuarto Creciente con un valor de
0,053, todas las fases lunares presentan una diversidad alta y por ende una dominancia de
morfotipos bastante baja; teniendo en cuenta que en este índice el número mínimo es 1 que
indica que no hay diversidad y que la dominancia es alta (Lamprecht. 1990. Citado por
Orellana J. 2009).
Tabla 10. Estimativos de diversidad para cada una de las fases lunares.
Por otro lado se evalúa la diversidad usando el Índice de equidad Shannon, encontrando
que la fase de Luna llena tiene un H= 3,42, Cuarto menguante un H= 2,936, Luna nueva un
H= 3,599 y Cuarto creciente un H= 2,593, por consiguiente la diversidad alfa en cada una
de las fases lunares se encuentran dentro de la media por tener valores entre 2 y 3, es decir,
que hay similitud en la distribución de morfotipos.
El índice de Fisher- Alfa permite evidenciar la diversidad de especies del ensamblaje de
polillas nocturnas; las fases lunares que presentan un alto índice de diversidad de
morfotipos Luna nueva con S= 253,2 y Luna llena con S= 88,44 y la fase lunar que
presenta el índice más bajo de diversidad de morfotipos es Cuarto meguante con un S= 28,6
(ver tabla 9.).
Adicionalmente, se usó el Método de Rarefacción para las cuatro fases lunares en los que se
realizaron los muestreos, donde se evidencia que las fases lunares de Luna Llena y Luna
nueva, son las fases lunares que presentan una mayor riqueza de morfotipos y las fase de
Cuarto menguante y Cuarto creciente presentan una menor distribución de morfotipos, esto
confirma los resultados obtenidos con los estimativos de diversidad presentados
anteriormente (ver figura 13).
Luna Llena Cuarto Menguante Luna Nueva Cuarto Creciente
Taxa_S 33 21 38 16
Individuals 40 31 41 20
Dominance_D 0,03625 0,05931 0,02915 0,1
Simpson_1-D 0,012 0,028 0,005 0,053
Shannon_H 3,42 2,936 3,599 2,593
Fisher_alpha 88,44 28,6 253,2 37,14
59
59
Figura 13. Gráfica de Rarefacción para las fases lunares en los que se realizaron muestreos.
7.5.2 DIVERSIDAD BETA DE FASES LUNARES
Para hallar la diversidad beta, es decir el recambio de morfotipos del ensamblaje de polillas
nocturnas colectadas en la vereda Buenavista, municipio de Villagómez, Cundinamarca en
las cuatro fases lunares en que se realizaron muestreos, se analizó este recambio con el
índice de Jaccard (ver Tabla 10.) encontrando los siguientes datos:
Tabla 11. Índice de Jaccard para las diferentes fases lunares Ll. Luna llena; Cm. Cuarto menguante; Ln. Luna
nueva y Cr. Cuarto creciente. A. número de individuos de la estación 1. B. número de individuos de la
estación 2. C. Número de individuos compartidos en las dos estaciones de muestreo. J índice de Jaccard.
Ll/ Mg Ll/Ln Ll/Cr Cm/Ln Cm/Cc Ln/Cr
A 35 37 37 29 23 41
B 25 38 19 40 13 20
C 11 6 4 3 15 0
J 0,2244898 0,08695652 0,07692308 0,04545455 0,71428571 0
22,4% 87,0% 76,9% 45,4% 71,4% 0,00%
Las fases lunares que presentaron un Índice de Jaccard con valores altos fueron las fases
lunares de Luna llena vs. Luna nueva con J= 0,08695652 (87%), seguida de las fases
lunares de Luna llena vs. Cuarto creciente con J=0,07692308 (76,9%) y Cuarto menguante
vs. Cuarto creciente con un J= 0,71428571 (71,4%), es decir que tienen bastantes especies
60
60
compartidas un 87%, 76,9% y un 71,4% de similitud entre el muestreo realizado en dichas
fases lunares. En contraste las fases lunares que presentaron el valor más bajo fueron Luna
nueva vs. cuarto creciente con J=0 seguido por Luna llena vs. Cuarto menguante con un J=
0,2244898, que indica que estas fases lunares no comparten especies entre sí con un 0% y
un 22,4% de similitud entre las mismas.
Adicionalmente se realizó un Análisis de Cluster usando como índice de similitud a Jaccard
para evidenciar el nivel de similitud/disimilitud entre las fases lunares en las que se
realizaron muestreos y su representación gráfica nos muestra un dendograma (ver figura
14), donde se puede apreciar que la fase lunar que se encuentra más distante al resto es la
de Luna llena (primer Cluster) seguida de la fase lunar de Luna nueva con una distancia
cercana al 10 (segundo Cluster); por el contrario las fases más cercanas son Cuarto
creciente y Cuarto menguante con una distancia de 7,5 (tercer cluster).
Figura 14. Dendograma de las fases lunares en las que se realizaron muestreos
61
61
8 ANÁLISIS DE RESULTADOS
8.1 COMPOSICIÓN DEL ENSAMBLAJE DE POLILLAS NOCTURNAS DE LA VEREDA BUENAVISTA.
La determinación de los individuos colectados posterior a su montaje, se realizó
inicialmente hasta familia, y se dejan enunciados los morfotipos encontrados por cada una,
ya que la determinación hasta dicho taxón es sumamente difícil, debido a la falta de
información y de claves taxonómicas para Colombia (Grados, 2002); es importante
mencionar que cada uno de los ejemplares y morfotipos fueron descritos de esa forma
teniendo en cuenta que cada ejemplar posee características morfotípicas y genitales
diferentes que permiten concluir que se trata de morfotipos totalmente diferentes.
Teniendo en cuenta lo anterior, el ensamblaje de polillas nocturnas de la vereda Buenavista
del municipio de Villagómez, Cundinamarca, está compuesto principalmente por
macropolillas de la familia Noctuidae (49 ind.), Crambidae (35 ind.) y Geometridae (23
ind.) como se evidencia en la figura 15. y en menor proporción por morfotipos
pertenecientes a la familia Erebidae (10 ind.), Saturniidae, Pterophoridae, Pyralidae (4
ind.), Sphingidae y Lasiocampidae (3 ind.); debido a la amplia distribución altitudinal que
presentan los lepidópteros a nivel mundial, la Región Neotropical exhibe la mayor
diversidad de Lepidoptera en el mundo, más del 31% de las especies descritas del mundo
(cerca de 146.000) se hallan en el Neotrópico (Lamas, 2000). Para las familias
Geometridae, Erebidae, Pyralidae, existen amplios reportes en gradientes altitudinales
similares a los usados en este estudio, realizados por Hilt y Fiedler (2008.), Brehm, Colwell
y Kluge, (2007), Beck, Brehm y Fiedler (2010), entre otros, y reportes para Colombia de la
familia Erebidae y Saturniidae por Amarillo, A. (1997, 2000, 2001 y 2010).
Adicionalmente Fielder et al. (2007), reportan una lista de verificación de Arctiidae,
Geometridae, Pyraloidea, Sphingidae, Saturniidae, entre otros, en la Reserva Biológica San
Francisco (Prov. Zamora-Chinchipe, S. Ecuador).
62
62
Figura 15. Abundanciade individuos colectados por familias, sin importar la estación de muestreo.
Las dos áreas de muestreo presentan características favorables para la obtención de
recursos, la diversidad de vegetación arbustiva y arbórea que consiste en eucaliptos
(Eucalyptus globulus labill), guayabos (Psidium guajava), guaduas (Guadua angustifolia),
pomarrosa (Syzygium jambos) y la presencia de pequeños cultivos de plátano (Musa
paradisiaca), café (coffea arabica), naranja (Citrus sinensis), maíz (Z. mays ssp), yuca
(Manihot esculenta) y caña de azúcar (Saccharum officinarum) brindan alimento,
hospedaje y permiten la reproducción, ya que se encuentran en la misma área geográfica al
ser zona rural en la Vertiente del Río Negro.
8.2 DIVERSIDAD ALFA EN ESTACIONES DE MUESTREO
La riqueza específica es la forma más sencilla de medir la biodiversidad, se basa
únicamente en el número de especies presentes, sin tomar en cuenta el valor de importancia
de las mismas. (Moreno, 2001), al usar estimativos de diversidad (tabla 5) se evidencia que
para el policultivo (estación 1) se obtuvieron 60 morfotipos y en el bosque secundario
(estación 2) se obtuvieron 51 morfotipos. De lo cual, se deduce que no hay diferencias
significativas entre las dos estaciones de muestreo, ya que difieren en solo 9 morfotipos,
encontrando así que el policultivo y el bosque secundario poseen características especiales
que ayudan a potenciar el hábitat de los lepidópteros nocturnos encontrados; algunas
especies de solanáceas que se ubican en el policultivo son fuente de alimento para los
63
63
estados larvales y adultos de familias como Noctuidae, Arctiinidae y Sphingidae que se
alimenta de las flores de los cálices muy largos (Monzón, 2009)
Las estaciones de muestreo presentan una dominancia similar de morfotipos con un
0,02301 en la Estación de policultivo y en Estación de Bosque Secundario con un 0,02327,
de estos resultados se observa que la dominancia es muy baja ya que es cercana a 0, lo que
quiere decir que los morfotipos recolectados presentan una dominancia muy baja, entonces
no existe algún morfotipo que sea dominante, y al comparar las estaciones de muestreo la
estación del policultivo presenta 0.00026 menor dominancia de morfotipos con respecto a
la estación de Bosque secundario, siendo evidente que entre las dos estaciones no se
encuentra una diferencia significativa.
El índice de dominancia de Simpson manifiesta la probabilidad de que dos individuos
tomados al azar de una muestra sean de la misma especie. Está fuertemente influido por la
importancia de las especies más dominantes (Magurran, 1988) se encuentra que para la
Estación del policultivo el índice de dominancia de Simpson el resultado es de 0,001 y la
Estación del Bosque secundario el resultado es de 0,006, según el índice de dominancia de
Simpson dice que el rango va de 0 cuando todos los taxones están igualmente presentes, a 1
donde la dominancia de un taxón es completa (Harper, 1999) mencionado en
http://folk.uio.no/ohammer/past/diversity.html), se deduce que existe gran diversidad de
morfotipos en las dos estaciones de muestreo ya que los resultados son cercanos a 0,
indicando que no existen morfotipos presentes que dominan en las dos estaciones de
muestreo, indicando que los recursos disponibles en ambos lugares son similares, la altura
no es significativa ya que se encuentran los dos lugares en la misma vereda que tiene una
composición geográfica y de cualidades climáticas similares, encontrándose en la cuenca
del Río Negro de esta forma no logra cambiar la composición del ensamblaje de polillas en
la vereda Buenavista, en el municipio de Villagómez.
Según Moreno (2001) el índice de Shannon tiene un rango 0 a 5, se refiere a la cantidad de
especies presentes en el área de estudio (riqueza de especies), y la cantidad relativa de
individuos de cada una de esas especies (abundancia). En la estación de policultivo
64
64
(estación 1) se obtiene resultado de H’=3,962, y en la estación del Bosque secundario
(estación 2) se obtiene resultado de H’=3,863., mostrando que existe un alto porcentaje de
diversidad de individuos colectados, sin embargo no presentan diferencias significativas
entre las dos estaciones de muestreo, el índice de Shannon para el bosque secundario y
policultivo del área de estudio con un H’ aproximado a 4 a pesar de estar constituidos de
manera distinta presentan los resultados esperados para riqueza de especies y abundancia.
Según Agea (2013). Esto se ve ratificado con el análisis de Fisher Alfa donde se evidencia
que ambas estaciones de muestreo presentan un índice alto de diversidad con valores entre
los 115 y 180 aproximadamente; al encontrar estos resultados indican que las dos zonas de
muestreo presentan una similitud alta en cuanto a contenido de familias recolectadas siendo
así, estas dos áreas de composición florística y faunística similares, ya que se encuentran en
la misma área geográfica al ser zona rural en la Vertiente del Río Negro.
El método no paramétrico de rarefacción muestra que en las dos estaciones de muestreo el
número de especies colectadas fue mayor al número de especies esperadas, siendo la
estación 1 la que presentó mayores valores; la diversidad de esta zona de policultivo, es
buena y con respecto a los resultados obtenidos en otras pruebas coincide con que la
diversidad del policultivo es alta, esto debido a su composición florística y a la fuente de
luz usada en la trampa que potencia la actividad del ensamblaje de los lepidópteros en esa
zona, ya que en el caso de las polillas, se ha comprobado en ciertos estudios a través de
trampas de luz negra, infrarroja y ultravioleta de distintas densidades, que las polillas y
mariposas nocturnas incrementan su actividad y son atraídas a las fuentes lumínicas
(Merkel y Fatzinger, 1971).
Para hallar el índice de recambio poblacional entre las dos estaciones de muestreo
(Policultivo y Bosque Secundario) se utilizó el Índice de Similitud de Jaccard, el cual
presentó un valor de 0,8235, teniendo en cuenta, que este índice mide diferencias en la
presencia o ausencia de individuos (Álvarez, et. al. 2004) podemos evidenciar que las dos
estaciones de muestreo comparten morfotipos entre sí con un 82, 4%; la altitud de muestreo
está entre los 1759 y 1800 msnm es un factor importante para la diversidad de morfotipos,
ya que la estructura de la vegetación también puede ser más heterogénea en escalas
65
65
pequeñas ya que las diferencias en el aspecto, la disponibilidad de nutrientes y de edad
sucesional de los sitios tendrán un efecto considerable sobre características estructurales,
adicionalmente debe existir un microclima adecuado, así como plantas huésped y fuentes
de alimentación para los individuos adultos. (Brehm, Homeier y Fiedler.. 2003), teniendo
en cuenta lo anterior altitud no influye significativamente, por ende la composición vegetal
de las dos estaciones de muestreo ofrece a los individuos una buena fuente de recursos, ya
que la estación de muestreo # 1 es un policultivo donde se encuentran pequeños cultivos de
plátano (Musa paradisiaca), café (coffea arabica), naranja (Citrus sinensis), maíz (Z. mays
ssp), yuca (Manihot esculenta) y caña de azúcar (Saccharum officinarum), es decir, el
hábitat ha sido modificado, a diferencia de la estación de muestreo # 2 Bosque Secundario
que presenta una vegetación de tipo arbustiva y arbórea.
Estudios indican que los efectos de la perturbación forestal sobre la diversidad de las
especies están fuertemente dependientes de la escala (Hamer y Hi1l, 2000 y 2004 citado
por Hilt y Fielder. 2008). En pequeñas escalas espaciales la perturbación del hábitat de
hecho con frecuencia aumenta la diversidad, mientras que a mayor escala hay mayor
diversidad en las selvas vírgenes (Hamer y Hill, 2000 citado por Hilt y Fielder. 2008). Para
los bosques montanos tropicales andinos aún debe explorarse a grandes escalas espaciales
(Hilt y Fielder. 2008).
8.3 DIVERSIDAD BETA DE POLILLAS NOCTURNAS EN LAS DOS ESTCIONES DE MUESTREO
Para hallar el índice de recambio poblacional entre las dos estaciones de muestreo
(Policultivo y Bosque Secundario) se utilizó el Índice de Similitud de Jaccard, el cual
presentó un valor de 0,8235, teniendo en cuenta, que este índice mide diferencias en la
presencia o ausencia de individuos (Álvarez, et. al. 2004) podemos evidenciar que las dos
estaciones de muestreo comparten morfotipos entre sí con un 82, 4%; la altitud de muestreo
está entre los 1759 y 1800 msnm es un factor importante para la diversidad de morfotipos,
ya que la estructura de la vegetación también puede ser más heterogénea en escalas
pequeñas ya que las diferencias en el aspecto, la disponibilidad de nutrientes y de edad
sucesional de los sitios tendrán un efecto considerable sobre características estructurales,
adicionalmente debe existir un microclima adecuado, así como plantas huésped y fuentes
66
66
de alimentación para los individuos adultos. (Brehm, Homeier y Fiedler 2003), teniendo en
cuenta lo anterior altitud no influye significativamente, por ende la composición vegetal de
las dos estaciones de muestreo ofrece a los individuos una buena fuente de recursos, ya que
la estación de muestreo # 1 es un policultivo donde se encuentran pequeños cultivos de
plátano (Musa paradisiaca), café (coffea arabica), naranja (Citrus sinensis), maíz (Z. mays
ssp), yuca (Manihot esculenta) y caña de azúcar (Saccharum officinarum), es decir, el
hábitat ha sido modificado, a diferencia de la estación de muestreo # 2 Bosque Secundario
que presenta una vegetación de tipo arbustiva y arbórea.
8.4 ACTIVIDAD DE POLILLAS NOCTURNAS EN CADA FASE LUNAR
8.5 POLILLAS NOCTURNAS COLECTADAS POR FASES LUNARES
La fase lunar en la que se colectaron más individuos fue Luna llena con un total de 65,
seguida de cuarto menguante (ver tabla 7), la estación de muestreo más exitosa fue la
estación # 2 Bosque Secundario con un total de 94 individuos colectados, mientras que en
la estación # 1 Policultivo se colectaron 83 individuos.
Al realizar la determinación de los individuos por familias y morfotipos se encontró que la
fase de Luna Llena se colectaron 70 morfotipos, en Cuarto Menguante 40 morfotipos, en la
fase de Luna Nueva 43 morfotipos y por último en Cuarto Creciente (22 morfotipos)
respectivamente (ver Tabla 8). El número elevado de individuos colectados en la fase de
Luna Llena entra en contradicción con lo expuesto por Nowinszky et al. (2012), en su
investigación, donde explica que la mayoría de los científicos que trabajan con trampas de
luz, reconocen un déficit en la eficiencia de las trampas cuando hay Luna Llena, porque la
luz de una lámpara atrae a las polillas de una distancia menor a la de la luz de la luna, y las
polillas son menos activas en Luna llena, por consiguiente la poblaciones activa disponible
para la luz de la trampa es mucho menor, en la investigación se colectaron un total de 40
morfotipos durante esta fase lunar y las familias más abundantes fueron Noctuidae y
Geometridae, como se muestra en el anexo 2. salida 1, las condiciones de visibilidad de la
luna fueron nulas permitiendo que la luz de la luna no fuera un factor determinante para la
captura de los morfotipos.
67
67
En cuanto a los morfotipos distribuidos en las nueve familias y su actividad en las
diferentes fases lunares encontramos que las familias que están representadas por mayor
número de morfotipos, es decir Crambidae, Geometridae y Noctuidae tienen en la fase de
Luna Llena 10, 11 y 11 morfotipos respectivamente, en Cuarto Menguante presentan 9,4 y
13 morfotipos; en Luna Nueva 9, 5 y 16 morfotipos en cada una y por último en Cuarto
Creciente presentan 7,3 y 8 respectivamente, como se observa en la tabla 9 y en la figura
12.
La familia Noctuidae presentó el mayor número de morfotipos durante la fase de Luna
nueva con un total de 16; por otro lado es importante mencionar que familias como
Sphingidae y Lasiocampidae solo se presentaron en dicha fase y esto puede deberse a que
la ausencia de luz de luna les permite transitar en la noche pese a su gran tamaño sin ser
predadas por otros individuos.
8.5.1 DIVERSIDAD ALFA DE FASES LUNARES
La riqueza de morfotipos para el ensamblaje de polillas nocturnas de la Vereda Buenavista,
del municipio de Villagómez teniendo en cuenta el comportamiento de las mismas en las
diferentes fases lunares, se encontró que en la fase de Luna llena se encuentra la mayor
riqueza de morfotipos con 38 individuos, es importante mencionar que durante tres de los
días de muestreo se presentaron lloviznas permanentes y la visibilidad de la luna era escasa
(ver Anexo 2), por lo que se sugiere que la nubosidad favorece la actividad de las polillas
nocturnas durante esta fase lunar, contario a la teoría, ya que en dicha fase lunar los
insectos no presentan una actividad significativa debido a que pueden ser predados por
otros animales, adicionalmente como lo indica Agea (2013) los lepidópteros nocturnos no
tienen la capacidad de enfocar con claridad y sus ojos no son sensibles a los cambios
fuertes de luz, lo que quiere decir que las fuentes lumínicas, en la noche, son captadas con
facilidad y provocan una cierta atracción por ende se ven atraídos por la luz de la luna que
es más fuerte que la luz provocada por las trampas de muestreo (Agea. 2013). Es
significativo mencionar que la mayoría de los individuos colectados durante esta fase lunar
presentan un tamaño no superior a los 3 cm de longitud (ver figura 16).
68
68
La fase de Luna Nueva presentó una riqueza de 33 morfotipos, contrastando con la teoría,
ya que debería ser la fase lunar con más individuos colectados, pues la ausencia de luz de
luna, propicia el desplazamiento de individuos debido a que las polillas, al tener ojos
compuestos que refractan cierta cantidad de luz a fin de captar la más mínima fuente en la
oscuridad, son atraídas por la claridad de las fuentes luminosas en la noche (Marshal et al.,
1985. Citado por Agea R. 2013.). En cuanto a las fases de Cuarto Menguante con 21
morfotipos y la fase de Cuarto Creciente con 16 morfotipos presentan menor riqueza
específica.
La abundancia de morfotipos en las diferentes fases lunares presenta una similitud en las
fases lunares de Luna Nueva y Luna Llena, ya que presentan una diferencia de un individuo
de siendo la fase de Luna Nueva la que presenta mayor abundancia; en contraste, la fase
que presentó menor abundancia de morfotipos fue Cuarto creciente con 20 individuos; es
de vital importancia medir la abundancia ya que permite identificar aquellas especies y/o
morfotipos que por su escasa representatividad son más sensibles a perturbaciones
ambientales (Moreno. 2001).
Figura 16. Montaje de individuos colectados. Arriba izquierda, individuo colectado en Luna Llena 3 cm de
longitud. Arriba derecha, individuo colectado en Cuarto Menguante, 12 cm de longitud. Abajo izquierda,
individuo colectado en Luna Nueva 6 cm de longitud. Abajo derecha, individuo colectado en Cuarto
Creciente 5 cm de longitud.
69
69
Para evaluar la diversidad alfa del ensamblaje de polillas nocturnas en relación con las fases
lunares se tuvo en cuenta el Índice de Dominancia de Simpson, la fase lunar que presenta
mayor dominancia de morfotipos es la fase lunar de Cuarto Creciente con un valor de
0,053, seguida Cuarto Menguante con 0,028, Luna Llena un valor de 0,012 y la que
presenta menor dominancia es Luna Nueva con un valor de 0,005; sin embargo, todas las
fases lunares presentan una dominancia bastante baja y por ende una diversidad alta y una
distribución equitativa; teniendo en cuenta que en este índice el valor mínimo es 1 que
indica que no hay diversidad y que la dominancia es alta (Lamprecht. 1990. Citado por
Orellana J. 2009).
El índice de Shannon para este caso las fases lunares presentan una diversidad media ya
que los valores de H están entre 2,5 y 3,5, sin embargo entre las fases lunares, la que mayor
diversidad presenta es Luna Nueva con un H= 3,599. En comparación con el Índice de
Fisher Alfa para las fases lunares observamos que la estación que presenta mayor
diversidad de morfotipos es nuevamente Luna Nueva con S= 253,2 seguido de Luna Llena
con S= 88,44 y la fase lunar que presenta el índice más bajo de diversidad de morfotipos es
Cuarto Menguante con un S= 28,6. Estos resultados pueden estar relacionados directamente
con el estado del clima que presentaba el lugar, el tiempo que predomino durante los
muestreos fue seco y una temperatura entre los 12 y 17° C. como se observa en el anexo #
2.
En la gráfica de rarefacción (ver figura 13) se evidencia que en la fase lunar de Cuarto
Creciente la relación entre las especies esperadas (10) y las especies colectadas (10) es la
misma, es decir, no hay una diferencia significativa de las especies colectadas, sin embargo
en las fases lunares de Luna Llena y Luna Nueva se evidencia que el número de especies
colectadas es mucho mayor que las especies esperadas, estas dos fases lunares presentan
mayor diversidad de morfotipos debido a las alteraciones en el clima que presentaron
durante las dos fases lunares y además, esto puede ser debido a que “las variaciones en el
rendimiento de las trampas luminosas está en relación directa con las fases de la luna; la
causa estaría en que la luz lunar reduce el radio de acción de las luces artificiales” (Dufay
1964. citado por Palanca 1987.)
70
70
8.5.2 DIVERSIDAD BETA DE FASES LUNARES
En el coeficiente de similitud de Jaccard se relacionan número de especies compartidas en
sitios diferentes, en este caso se están comparando las diferentes fases lunares, con el fin de
introducir y argumentar datos sobre la recolecta en fases lunares como luna llena, que el
autor como Nowinszky, et al. (2012) dice que no es apropiado colectar 5 días antes y 5 días
después de luna llena, ya que los lepidópteros siguen la luz de la luna, y no encuentran la
luz de la trampa como atrayente, varias fuentes afirman que los insectos son generalmente
ciegos a la luz roja pero pueden percibir luz ultravioleta y la dirección de la polarización
(Lataza y Garzón. 1999), lo anterior es refutado en esta investigación ya que al comparar
las fases lunares de Luna llena con el resto de las fases lunares esta comparte un número de
morfotipos altísimo con un 87%. En el caso de los lepidópteros, se conoce que las
mariposas no tienen la capacidad de enfocar con claridad y sus ojos no son sensibles a los
cambios fuertes de luz, lo que quiere decir que las fuentes lumínicas, en la noche, son
captadas con facilidad y provocan una cierta atracción. Las polillas, al tener ojos
compuestos que refractan cierta cantidad de luz a fin de captar la más mínima fuente en la
oscuridad, son atraídas por la claridad de las fuentes luminosas en la noche (Mendez,
2001).
En el dendrograma (figura 14.) se observan tres clusters. El primer cluster que es el más
alejado contiene los resultados de la fase lunar de luna nueva indicando que los individuos
acá presentes no presentan en si tanta relación con los individuos de las otras fases lunares,
en el segundo Cluster se encuentra la fase de luna llena la cual se encuentra más cercana a
las otras dos fases lunares, de esta forma podemos inferir que tiene morfotipos similares, el
tercer cluster es el más cercano y se encuentran las fases lunares de creciente y menguante
en donde podemos encontrar morfotipos más estrechamente relacionados entre estas dos
fases, indicando que el análisis y los individuos recolectados coinciden ya que en las fases
lunares creciente y menguante la luna se encuentra irradiando cantidad de luz similar, esto
indica que las familias y especies de polillas que salen, se encuentran en una frecuencia de
similitud en cuanto atracción a la luz de la luna, diferente a la fase lunar nueva en donde la
oscuridad es total atrayendo individuos de diferentes familias.
71
71
Al comparar el índice de similitud de Jaccard y el de cluster encontramos concordancia
indicando que las fases lunares alejadas como luna llena y luna menguante, no tienen los
suficientes morfotipos compartidos a diferencia de las fases lunares de creciente y
menguante que comparten individuos, lo que indica que la incidencia de la luz lunar influye
en los cambios del ensamblaje de los lepidópteros nocturnos de la Vereda Buenavista del
municipio de Villagomez, aumentando la diversidad y la riqueza de la zona, pero en
encuentran individuos y se puede colectar de la misma forma que se colecta en las otras
fases lunares, adicional a esto que se encuentren diferencias entre las estaciones de
recolecta como lo fueron el policultivo y el bosque secundario, ya que el policultivo y el
dosel es diferente al que se encuntra en un bosque secundario, según (Bunning y Moser,
1968) la luna nueva tiene una luminosidad de 0.001 Luz cuando esta despejado, en luna
creciente o menguante 0.01 Lux y en luna llena 1 Lux, entonces en el bosque segundario se
encuentra una menor entrada de luz de luna, pero en el policultivo al no tener el mismo
tamaño en su vegetación la intensidad luminica es mayor, logrando mayor atracción hacia
esta zona por ende el ligero aumento de lepidópteros en la zona del policultivo.
72
72
9 CONCLUSIONES
• El ensamblaje de lepidópteros nocturnos de la vereda Buenavista en el municipio de
Villagómez, Cundinamarca está compuesto principalmente por macropolillas de la
familia Noctuidae (49 ind.), Crambidae (35 ind.) y Geometridae (23 ind) y en menor
proporción por individuos pertenecientes a la familia Erebidae (10 ind.),
Saturniidae, Pterophoridae, Pyralidae (4 ind.), Sphingidae y Lasiocampidae (3 ind).
• La diversidad alfa del ensamblaje de lepidópteros nocturnos de la vereda
Buenavista, se caracteriza por tener índices de diversidad altos en las dos estaciones
de muestreo, se halla una dominancia de especies es baja, revelando, una gran
abundancia de individuos como se evidencia en los índices de Shannon, que estiman
la abundancia en las dos estaciones de muestreo con un H= 3.9 y 3.8
respectivamente, los resultados de las dos estaciones de muestreo son similares, ya
que, la composición de la flora en los dos sitios presenta condiciones favorables
para el ensamblaje de polillas de la vereda, y al estar geográficamente en la misma
zona limitando con la vertiente del Río Negro.
• La diversidad beta del ensamble de polillas nocturnas en las dos estaciones de
muestreo indica que comparten morfotipos entre sí con un J=0,82, esto debido a que
el gradiente altitudinal que presentan los sitios de estudio no tienen diferencias
significativas y a la heterogeneidad de vegetación que existe, favoreciendo la
disponibilidad de recursos y nutrientes en ambas estaciones.
• El ensamblaje de polillas nocturnas de la Vereda Buenavista presentó mayor
actividad durante la fase de Luna Llena donde se colectó 70 morfotipos, seguido por
Luna Nueva con 43 morfotipos, Cuarto Menguante 40 morfotipos, y por último
Cuarto Creciente con 22 morfotipos; esto está en contradicción con la teoria donde
reconocen un déficit en la eficiencia de las trampas cuando hay Luna Llena, ya que
la luz de una lámpara atrae a las polillas de una distancia menor a la de la luz de la
luna, y las polillas son menos activas en Luna llena.
• Según el índice de Shannon (3,599), índice de dominancia de Simpson (0,005),
Índice de Fisher alfa (253,2) y curva de rarefacción la fase lunar que tiene mayor
diversidad de morfotipos es Luna nueva aunque no fue la fase lunar con mayor
73
73
número de individuos colectados, debido a que las variaciones en el rendimiento de
las trampas luminosas está en relación directa con las fases de la luna; la causa
estaría en que la luz lunar reduce el radio de acción de las luces artificiales, por ende
los lepidópteros nocturnos se ven más atraídos por las trampas de luz artificial
ubicadas en cada estación de muestreo.
• El analisis de Cluster indica que la luz artificial atrae a las polillas según la fase
lunar en que se realiza la captura, pues en las fases lunares de meguante y creciente
se obtuvieron resultados con presencia de familias similares, en cambio si se
contrasta las fases lunares llena y nueva, las familias alli encontradas son muy
diferentes, queriendo decir que la luz de la luna si tiene influencia en la apricion de
familias y sus comportamientos, adicional a esto se pudo ver que en luna llena es
posible recolectar lepidopteros nocturnos contrario a lo descrito en la literatura.
74
74
10 RECOMENDACIONES
Se recomienda para futuros trabajos realizar mayor número de muestreos durante las
diferentes fases lunares y aumentar el número de trampas de luz para hacer más efectiva la
colecta de individuos. Adicionalmente es importante lograr la determinación hasta especie
de los individuos colectados para nutrir el listado de especies reportadas para el municipio e
identificar cuales especies son dominantes de acuerdo al uso de la tierra que se le de al
lugar, ya sea policultivo o bosque secundario.
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82
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12 ANEXOS
Anexo 1. Montaje individuos colectados. Catálogo.
Anexo 2. Formato recepción de datos salidas de campo.
SALIDA #1 LUNA LLENA
Estación # 1 Ecosistema Intervenido Cultivo
Trampa 1
Fecha: 14 abril de 2014
Altitud
% visibilidad
Luna Teórica % visibilidad Luna T ° Clima
Franja
Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 96% 0%
17°
C
Llovizna
permanente
6:30 pm- 9:25
pm 0 2 2
Revisión 2 1759 msnm 96% 10%
17°
C
Llovizna
permanente
3:10 am- 4:20
am 0 3 3
Estación # 1 Ecosistema Intervenido Cultivo
Trampa 2
Fecha: 14 abril de 2014
Altitud
% visibilidad
Luna Teórica % visibilidad Luna T ° Clima
Franja
Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 96% 0%
17°
C
Llovizna
permanente
9:30 pm- 10:35
pm 0 4 0
Revisión 2 1759 msnm 96% 10%
17°
C
Llovizna
permanente
4:25 am- 5:40
am 1 0 1
Estación # 2 Sendero Boscoso
83
83
Trampa 1
Fecha: 15 abril de 2014
Altitud
% visibilidad
Luna Teórica % visibilidad Luna T ° Clima
Franja
Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm Luna Llena 0%
17°
C Seco (neblina)
6:40 pm- 8:25
pm 5 17 22
Revisión 2 1800 msnm Luna Llena 80%
17°
C Seco
3:30 am- 4:20
am 0 2 2
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 2
Fecha: 15 abril de 2014
Altitud
% visibilidad
Luna Teórica % visibilidad Luna T ° Clima
Franja
Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm Luna Llena 0%
15°
C Seco (neblina)
8:30 pm- 10:20
pm 17 3 20
Revisión 2 1800 msnm Luna Llena 80%
15°
C Seco (neblina)
4:25 am- 5:20
am 0 2 2
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 1
Fecha: 16 abril de 2014
Altitud
% visibilidad
Luna Teórica % visibilidad Luna T ° Clima
Franja
Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm 99% 0% 15°C
Llovizna
permanente
6:30 pm- 9:25
pm 0 0
no se puede
muestrear
Revisión 2 1800 msnm 99% 10% 14°C
Llovizna
permanente
3:10 am- 4:20
am 0 0
no se puede
muestrear
84
84
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 2
Fecha: 16 abril de 2014
Altitud
% visibilidad
Luna Teórica % visibilidad Luna T ° Clima
Franja
Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm 99% 0% 15°C
Llovizna
permanente
9:30 pm- 10:35
pm 9 2 11
Revisión 2 1800 msnm 99% 10% 14°C
Llovizna
permanente
4:25 am- 5:40
am 2 2 4
Estación # 1 Ecosistema intervenido (cultivo)
Trampa 1
Fecha: 17 abril de 2014
Altitud
% visibilidad
Luna Teórica
% visibilidad Luna
Campo T ° Clima
Franja
Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 97% o% 15°C
Llovizna
permanente
6:40 pm- 7:45
pm 14 8 22
Revisión 2 1759 msnm 97% 10% 13°C
Llovizna
permanente
3:30 am- 4:10
am 5 3 8
Estación # 1 Ecosistema Intervenido Cultivo
Trampa 2
Fecha: 17 abril de 2014
Altitud
% visibilidad
Luna Teórica % visibilidad Luna T ° Clima
Franja
Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 96% 0% 15°C
Llovizna
permanente
6:30 pm- 9:25
pm 10 12 22
Revisión 2 1759 msnm 96% 10% 13°C
Llovizna
permanente
3:10 am- 4:20
am 2 3 5
85
85
SALIDA # 2. CUARTO MENGUANTE
Estación # 1 Ecosistema Intervenido Cultivo
Trampa 1
Fecha: 18 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 70% 0% 15°C Seco 6:55 pm- 7:30 pm 6 5 11
Revisión 2 1759 msnm 70% 100% 14° C Seco 3:40 am- 4:20 am 6 3 9
Estación # 1 Ecosistema Intervenido Cultivo
Trampa 2
Fecha: 18 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 70% 0% 15° C Seco 7:35 pm- 9:25 pm 4 4 8
Revisión 2 1759 msnm 70% 100% 14° C Seco 4:25 am- 5:00 am 2 4 6
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 1
Fecha: 19 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm Cuarto Menguante 100% 16° C Seco 6:50 pm- 7:50 pm 4 4 8
Revisión 2 1800 msnm Cuarto Menguante 100% 17° C Seco 3:20 am- 4:20 am 3 2 5
86
86
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 2
Fecha: 19 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm Cuarto Menguante 100% 16° C Seco 7:55 pm- 8:55 pm 4 3 7
Revisión 2 1800 msnm Cuarto Menguante 100% 17° C Seco 4:25 am- 5:20 am 2 3 5
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 1
Fecha: 20 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm 48% 100% 15°C Seco 6:45 pm- 7:50 pm 4 7 11
Revisión 2 1800 msnm 48% 100% 14°C Seco 3:30 am- 4:30 am 1 5 6
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 2
Fecha: 20 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm 48% 100% 15°C Seco 7:55 pm- 8:55 pm 2 4 6
Revisión 2 1800 msnm 48% 100% 14°C Seco 4:35 am- 5:30 am 0 4 4
87
87
Estación # 1 Ecosistema intervenido (cultivo)
Trampa 1
Fecha: 21 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica
% visibilidad Luna
Campo T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 97% 100% 15°C Seco 6:40 pm- 7:40 pm 1 6 7
Revisión 2 1759 msnm 97% 80% 13°C Seco 3:20 am- 4:25 am 5 3 8
Estación # 1 Ecosistema Intervenido Cultivo
Trampa 2
Fecha: 21 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 96% 100% 15°C Seco 7:45 pm- 8:55 pm 1 8 9
Revisión 2 1759 msnm 96% 80% 13°C Seco 4:30 am- 5:30 am 1 6 7
88
88
SALIDA # 3. LUNA NUEVA
Estación # 1 Ecosistema Intervenido Cultivo
Trampa 1
Fecha: 26 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 2% 0% 16°C Seco 6:40 pm- 7:35 pm 2 7 11
Revisión 2 1759 msnm 2% 0% 14° C Seco 3:10 am- 4:10 am 1 8 9
Estación # 1 Ecosistema Intervenido Cultivo
Trampa 2
Fecha: 26 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 2% 0% 16° C Seco 7:40 pm- 8:45 pm 3 7 10
Revisión 2 1759 msnm 2% 0% 14° C Seco 4:15 am- 5:10 am 3 6 9
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 1
Fecha: 27 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm Luna Nueva 0% 16° C Seco 7:20 pm- 8:35 pm 3 5 8
Revisión 2 1800 msnm Luna Nueva 0% 15° C Seco 3:10 am- 4:10 am 1 3 4
89
89
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 2
Fecha: 27 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm Luna Nueva 0% 16° C Seco 8:40 pm- 10:00 pm 3 3 6
Revisión 2 1800 msnm Luna Nueva 0% 15° C Seco 4:15 am- 5:10 am 3 4 7
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 1
Fecha: 28 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teorica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm 1% 0% 15°C seco 6:30 pm- 7:30 pm 4 3 7
Revisión 2 1800 msnm 1% 0% 14°C seco 3:10 am- 4:10 am 4 5 9
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 2
Fecha: 28 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm 1% 0% 15°C seco 7:35 pm- 8:45 pm 5 4 9
Revisión 2 1800 msnm 1% 0% 14°C seco 4:15 am- 5:10 am 7 3 10
90
90
Estación # 1 Ecosistema intervenido (cultivo)
Trampa 1
Fecha: 29 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica
% visibilidad Luna
Campo T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 3% 0% 15°C seco 6:20 pm- 7:20 pm 1 5 6
Revisión 2 1759 msnm 3% 0% 13°C seco 3:10 am- 4:10 am 0 2 2
Estación # 1 Ecosistema Intervenido Cultivo
Trampa 2
Fecha: 29 Junio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 3% 0% 15°C Seco 7:30 pm- 8:40 pm 2 4 6
Revisión 2 1759 msnm 3% 0% 13°C Seco 4:15 am- 5:10 am 2 6 8
91
91
SALIDA # 4. CUARTO CRECIENTE
Estación # 1 Ecosistema Intervenido Cultivo
Trampa 1
Fecha: 4 Julio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 36% 100% 16°C Lluvioso 6:30 pm- 7:30 pm 1 6 7
Revisión 2 1759 msnm 36% 100% 14° C Seco 3:10 am- 4:10 am 0 6 6
Estación # 1 Ecosistema Intervenido Cultivo
Trampa 2
Fecha: 4 Juliode 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 36% 100% 16° C Lluvioso 7:40 pm- 8:45 pm 3 5 8
Revisión 2 1759 msnm 36% 100% 14° C Seco 4:15 am- 5:10 am 0 4 4
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 1
Fecha: 5 Julio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm Cuarto Creciente 100% 16° C Seco 6:30 pm- 7:30 pm 1 4 5
Revisión 2 1800 msnm Cuarto Creciente 100% 15° C Seco 3:10 am- 4:10 am 1 3 4
92
92
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 2
Fecha: 5 Julio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm Cuarto Creciente 100% 16° C Seco 7:35 pm- 8:45pm 2 4 6
Revisión 2 1800 msnm Cuarto Creciente 100% 15° C Seco 4:15 am- 5:10 am 0 4 4
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 1
Fecha: 6 Julio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm 55% 100% 15°C seco 6:25 pm- 7:25 pm 3 3 6
Revisión 2 1800 msnm 55% 100% 14°C seco 3:10 am- 4:10 am 0 4 4
Estación # 2 Sendero Boscoso
Trampa 2
Fecha: 6 Julio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1800 msnm 55% 0% 15°C seco 7:30 pm- 8:45 pm 4 2 6
Revisión 2 1800 msnm 55% 0% 14°C seco 4:15 am- 5:10 am 0 2 2
93
93
Estación # 1 Ecosistema intervenido (cultivo)
Trampa 1
Fecha: 7 Julio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica
% visibilidad Luna
Campo T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 65% 100% 15°C seco 6:15 pm- 7:25 pm 2 3 5
Revisión 2 1759 msnm 65% 100% 13°C seco 3:10 am- 4:10 am 0 2 2
Estación # 1 Ecosistema Intervenido Cultivo
Trampa 2
Fecha: 7 Julio de 2014
Altitud
% visibilidad Luna
Teórica % visibilidad Luna T ° Clima Franja Horaria Moths Otros Total
Revisión 1 1759 msnm 65% 100% 15°C Seco 7:30 pm- 8:40 pm 3 3 6
Revisión 2 1759 msnm 65% 100% 13°C Seco 4:15 am- 5:15 am 2 1 3
94
94
Anexo 3. Test De Normalidad Shapiro Wilk
Estaciones De Muestreo
Statistix 8.0 21/10/2014, 12:14:45 a.m.
Shapiro-Wilk Normality Test
Variable N W P
Esta 100 0.6994 0.0000
Esta2 100 0.7027 0.0000
Fases Lunares
Statistix 8.0 21/10/2014, 12:49:18 a.m.
Shapiro-Wilk Normality Test
Variable N W P
CRECIENTE 100 0.3450 0.0000
LLENA 100 0.6303 0.0000
MENGUANTE 100 0.5088 0.0000
NUEVA 100 0.6488 0.0000
95
95
Anexo 4. Test No Paremétrico De Kruskal-Wallis
Estaciones De Muestreo.
Statistix 8.0 21/10/2014, 12:16:57 a.m.
Kruskal-Wallis One-Way Nonparametric AOV
Mean Sample
Variable Rank Size
Esta 106.5 100
Esta2 94.5 100
Total 100.5 200
Kruskal-Wallis Statistic 2.6766
P-Value, Using Chi-Squared Approximation 0.1018
Parametric AOV Applied to Ranks
Source DF SS MS F P
Between 1 7188 7188.00 2.70 0.1020
Within 198 527232 2662.79
Total 199 534420
Total number of values that were tied 199
Max. diff. allowed between ties 0.00001
Cases Included 200 Missing Cases 0
Fases Lunares
Statistix 8.0 21/10/2014, 12:49:54 a.m.
Kruskal-Wallis One-Way Nonparametric AOV
Mean Sample
Variable Rank Size
CRECIENTE 177.9 100
LLENA 212.7 100
MENGUANTE 190.7 100
NUEVA 220.7 100
Total 200.5 400
Kruskal-Wallis Statistic 14.5622
P-Value, Using Chi-Squared Approximation 0.0022
Parametric AOV Applied to Ranks
Source DF SS MS F P
Between 3 116479 38826.2 5.00 0.0021
Within 396 3075007 7765.2
96
96
Total 399 3191485
Total number of values that were tied 399
Max. diff. allowed between ties 0.00001
Cases Included 400 Missing Cases 0
97
97
Anexo 5. Estimativos De Diversidad Alfa
Estaciones De Muestreo
0 ESTACIÓN 1 ESTACIÓN 2
Taxa_S 60 51
Individuals 78 59
Dominance_D 0,02301 0,02327
Simpson_1-D 0,977 0,9767
Shannon_H 3,962 3,863
Evenness_e^H/S 0,8764 0,9335
Brillouin 3,177 3,013
Menhinick 6,794 6,64
Margalef 13,54 12,26
Equitability_J 0,9678 0,9825
Fisher_alpha 119,1 179,2
Berger-Parker 0,0641 0,05085
Index ESTA 1 ESTA 2
Simpsons
Diversity (D) 0,01 0,006
Simpsons
Diversity (1/D) 96,871 155,545
Fases Lunares
0 Luna Llena
Cuarto
Menguante Luna Nueva Cuarto Creciente
Taxa_S 33 21 38 16
Individuals 40 31 41 20
Dominance_D 0,03625 0,05931 0,02915 0,1
Simpson_1-D 0,9637 0,9407 0,9709 0,9
Shannon_H 3,42 2,936 3,599 2,593
Evenness_e^H/S 0,9265 0,8973 0,9625 0,8359
Brillouin 2,616 2,256 2,721 1,877
Menhinick 5,218 3,772 5,935 3,578
Margalef 8,675 5,824 9,963 5,007
Equitability_J 0,9782 0,9644 0,9895 0,9354
Fisher_alpha 88,44 28,6 253,2 37,14
Berger-Parker 0,075 0,09677 0,07317 0,25
Simpsons Diversity (D) 0,012 0,028 0,005 0,053
Simpsons Diversity (1/D) 86,667 35,769 205 19
