“MONITOREO BACTERIOLÓGICO DE LOS
CONSULTORIOS EXTERNOS DEL SERVICIO DE
CIRUGÍA ORAL Y MAXILO FACIAL DE LA CLINICA
DENTAL CAYETANO HEREDIA, 2010”
TESIS PARA OBTENER EL TÍTULO DE CIRUJANO DENTISTA
ERNESTO AGUIRRE VELA
LIMA – PERÚ
2011
FACULTAD DE ESTOMATOLOGÍA Roberto Beltrán
UNIVERSIDAD PERUANA CAYETANO HEREDIA
ASESOR DE LA TESIS:
Dra. Sonia Julia Sacsaquispe Contreras
JURADO EXAMINADOR:
Presidente: Dr. Sr. Gabriel Flores Mena
Secretario: Dr. Sr. Carlos Espinoza Montes
Miembro: Dr. Sr. Fredy Gutiérrez Ventura
Jurado Acordó otorgarle el calificativo de:
APROBADO POR UNANIMIDAD
Dedicatoria
A mi padre, paradigma de trabajo, constancia,
honestidad y perseverancia. Junto con mi madre y mis
hermanas, referentes en mi vida; por enseñarme el
camino. Por su cariño, este logro también es suyo.
A Schnappi y Pedro, por su amor incondicional que nos
ilumina desde el cielo.
Agradecimientos Este trabajo de investigación ha sido posible, gracias a la colaboración y esfuerzo de
un gran número de personas a las que dedico mi más sincero agradecimiento.
En primer lugar, me gustaría expresar mi total gratitud a miS tutoras, la Dra. Sonia
Sacsaquispe Contreras y la Dra. Dora Maurtua Torres, por dirigir sin imponer, por su
paciencia y ayuda, por todo el esfuerzo y dedicación que ha empleado en este estudio,
sin cuya dirección y disposición permanente no habría sido posible finalizar.
A la Fundación “Barbara Ann Kotowski de Tejada” por mostrar su apoyo
incondicional a lo que en verdad es la esencia de nuestra universidad: LA
INVESTIGACION.
Al Dr. Manuel Arrascue Dulanto, por confiar en mí desde el principio, por su apoyo,
su estímulo y su interés constante. Por sus conocimientos y sabiduría transmitidos a lo
largo de mis años de formación académica. Por su orientación en mi crecimiento
profesional.
A las profesoras Ruth Cristóbal Castillo y Patricia Burgos Orejuela por su constante
lluvia de conocimientos que hicieron posibles la ejecución de éste trabajo.
A la señora Betty por su apoyo material y humano.
A mis amigos, en especial a Christian, Juan Carlos y Rodrigo, compañeros de
batallas, que siempre estuvieron a mi lado para ayudarme a no perder el ánimo.
También a todos los que no nombro pero no olvido: gracias por vuestro apoyo.
Y a todos aquellos que de una u otra forma han contribuido a la elaboración de este
trabajo.
A todos, muchas gracias.
INDICE DE CONTENIDOS
Pág.
I. INTRODUCCIÓN
II. PLANTEAMIENTO DE LA INVESTIGACION
2.1. Planteamiento del Problema
2.2. Justificación
III. MARCO REFERENCIAL
3.1. Infección y transmisión
3.2. Bioseguridad en salud
3.2.1. Limpieza
3.2.2. Desinfección
3.2.3. Esterilización
3.3. Bacterias nosocomiales y potencialmente
patógenas
3.4. Bacterias frecuentes en áreas clínicas
odontológicas
3.4.1. Pseudomonas sp.
3.4.2. Staphylococcus aureus
3.4.3. Escherichia coli
3.4.4. Acinetobacter sp.
3.5. Estudios microbiológicos en superficies
quirúrgicas odontológicas de clínicas
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IV. OBJETIVOS DEL ESTUDIO
4.1. Objetivo General
4.2. Objetivos Específicos
V. HIPÓTESIS
VI. MATERIALES Y MÉTODOS
6.1. Diseño del estudio
6.2. Población
6.3. Muestra
6.3.1. Criterios de inclusión
6.3.2. Criterios de exclusión
6.4. Variables
6.5. Procedimientos
6.6. Plan de análisis
6.7. Consideraciones éticas
6.8. Recursos
VII. RESULTADOS
VIII. DISCUSIÓN
IX. CONCLUSIONES
X. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ANEXOS
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INDICE DE TABLAS
Pág.
Tabla 1: Recuento de formas bacterianas según su
tinción Gram y clase de superficie por el método de
recolección
Tabla 2: cuadro de unidades formadoras de colonias
antes de las cirugías y después de las cirugías según
clase de superficie
Tabla 3: Cuadro promedio de unidades formadoras de
colonias antes de las cirugías y después de las cirugías
según tipo de superficie
Tabla 4: Cantidad de microorganismos aislados según
clase de superficie
Tabla 5: Cantidad de microorganismos aislados según
tipo de superficies
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INDICE DE GRÁFICOS
Pág.
Gráfico 1: Recuento de formas bacterianas según su
tinción Gram y clase de superficie por el método de
recolección
Gráfico 2: Cuadro de unidades formadoras de colonias
antes de las cirugías y después de las cirugías según
clase de superficie
Gráfico 3: Cuadro promedio de unidades formadoras
de colonias antes de las cirugías y después de las
cirugías según tipo de superficie
Gráfico 4: Cantidad de microorganismos aislados
según clase de superficie
Gráfico 5: Cantidad de microorganismos aislados
según tipo de superficies
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INDICE DE ABREVIATURAS
BHI = Brain Heart Infusion (Infusión Cerebro Corazón)
BHA = Brain Heart Agar (Agar Cerebro Corazón)
CIFE = Comisión de Investigación de la Facultad
OPS = Organización Panamericana de la Salud
OMS = Organización Mundial de la Salud
ONG = Organizaciones No Gubernamentales
Scon = Staphylococcus spp Coagulasa Negativa
TLT = Agar Tripticasa Soya con Lecitina y Tween 80
UFC = Unidades Formadoras de Colonias
RESÚMEN
Objetivo: El propósito de éste estudio fue determinar si existen bacterias potencialmente patógenas en los consultorios externos del servicio de Cirugía Oral y Maxilofacial de la Clínica Estomatológica Central de la Facultad de Estomatología Roberto Beltrán de la Universidad Peruana Cayetano Heredia. Materiales y Métodos: Se tomaron muestras de 5 superficies (medio ambiente, jeringa triple, brazo de la unidad, agarradera de succión y agarradera de lámpara) de los consultorios de 5 cirugías orales menores antes y después de los procedimientos con hisopos, se les realizó análisis microbiológico con pruebas bioquímicas y utilizando el API 20 NE. Resultados: La forma bacteriana más prevalente fueron los cocos y bacilos Gram positivos. La mayor cantidad y promedio de unidades formadoras de colonias (UFCs) según clase de superficie y tipo de superficie se dio en el medio ambiente (569 UFCs de total y 56,9 UFCs de promedio), la mayor cantidad se presentó después de haber concluido los procedimientos. La cantidad de microorganismos aislados según clase de material fue: medio ambiente (48%), brazo de unidad (19%), jeringa triple (11%), agarradera de succión (11%) y agarradera de lámpara (10%); y según tipo de superficie se dio de la siguiente manera: medio ambiente (48%), plástico (40%) y acero inoxidable (11%) con un predominio de Staphylococcus spp coagulasa negativa. Conclusiones: La Pseudomonas stutzeri fue el único microorganismo potencialmente patógeno que fue aislado, se le encontró en el medio ambiente, acero inoxidable y plástico en un consultorio. Palabras clave: Microorganismo, infección, equipo dental, contaminación de equipos
1
I. INTRODUCCIÓN
Las infecciones son una importante y frecuente complicación en cirugía. La
contaminación del campo operatorio mientras se realiza alguna actividad
quirúrgica es una causa común de infección, por ello con el paso de los años
cada vez se le ha dado mayor importancia a la toma de procedimientos básicos
de conducta que debe seguir el personal de salud cuando se enfrenta a riesgos
para su propia salud y la comunidad.
Se han realizado muchos estudios sobre la prevalencia de infecciones
relacionadas al grado de contaminación y número de bacterias nosocomiales
presentes en quirófanos antes de ser realizada alguna actividad quirúrgica.
Los resultados de todas estas investigaciones concuerdan que la mayoría de
clínicas, hospitales y diferentes centros de salud tienen un alto nivel de
biocontaminación relacionado a un mal mantenimiento y desinfección del
ambiente.
Por lo que se ha planteado mejorar los sistemas de prevención y control de
infecciones basadas en evidencias científicas que resulten en un considerable
ahorro de recursos para los servicios de salud, sus pacientes y la reducción de
morbilidad y mortalidad, particularmente, en los pacientes sometidos a
procedimientos quirúrgicos que lo exponen al riesgo de adquirir infecciones.
Dado a que no hay estudios en nuestro medio acerca de los aspectos
microbiológicos en odontología y siendo tan importante la bioseguridad en el
campo de la salud, y más aun en el consultorio externo de cirugía oral menor; el
propósito del presente trabajo de investigación es el de determinar que bacterias
son las que tienen mayor prevalencia en superficies de los consultorios externos
del Servicio de Cirugía Oral y Maxilofacial de la Clínica Estomatológica
2
Central de la Facultad de Estomatología Roberto Beltrán de la Universidad
Peruana Cayetano Heredia.
3
II. PLANTEAMIENTO DE LA INVESTIGACION
II.1. Planteamiento del Problema
No se conoce si existen microorganismos; como bacterias potencialmente
patógenas, en las unidades del consultorio externo de nuestro servicio de
cirugía, por lo que este estudio tiene como fin determinar la presencia de
bacterias potencialmente patógenas presentes en el consultorio externo del
servicio de cirugía oral y maxilofacial donde se realizan procedimientos de
cirugía oral menor de la Clínica Estomatológica Central (CEC) de la Facultad
de Estomatología Roberto Beltrán (FE) de la Universidad Peruana Cayetano
Heredia (UPCH), para poder tener conocimiento sobre el riesgo que presentan
los pacientes de adquirir alguna infección cruzada al someterse a intervención
quirúrgica menor.
II.2. Justificación
Es de gran importancia hacer un monitoreo bacteriológico en los consultorios
externos del servicio de cirugía oral y maxilofacial donde se realizan
procedimientos de cirugía oral menor de la Clínica Estomatológica Central (CEC)
de la Facultad de Estomatología Roberto Beltrán (FE) de la Universidad Peruana
Cayetano Heredia (UPCH),, debido a que éstas incrementan la posibilidad de
acumular microorganismos potencialmente patógenos que pueden
comprometer el resultado final del tratamiento odontológico y/u ocasionar
problemas subyacentes tales como infecciones oportunistas.
4
III. MARCO REFERENCIAL
III.1. Infección y transmisión
Se denomina infección a la entrada de microorganismos dentro de los tejidos,
sin producir necesariamente sintomatología o enfermedad; de un huésped
susceptible a otro de la misma o diferente especie y transmisión es cualquier
mecanismo en virtud del cual un agente infeccioso se propaga en el ambiente
o de una persona a otra. (1)
La infección nosocomial se define como la infección que adquiere un paciente
durante su hospitalización, que no padecía previamente ni la estaba
padeciendo en el momento de la admisión. (1)
La infección es considerada como adquirida en la comunidad si los signos y
síntomas y los cultivos son positivos en las primeras 48 horas a la admisión.
La infección es nosocomial si los signos, síntomas y cultivos son positivos
después de las 48 – 72 horas de la admisión. (2)
Cuando el período de incubación es desconocido, se considera infección
nosocomial si se desarrolla en cualquier momento después de la admisión. Si
padece infección en la admisión se toma como infección nosocomial si está
relacionada o es residual de una admisión previa.
Si la infección tiene respaldo bacteriológico se debe tener en cuenta que la
muestra sea recolectada adecuadamente y entregada en forma oportuna. En un
paciente con infección documentada con cultivo positivo, dos situaciones
deben considerarse cuando se trata de infecciones nosocomiales: la aparición
de una infección clínica en otro sitio diferente, con el mismo germen de una
infección original, se considera como infección secundaria y probablemente
5
como una alta infección. Por el contrario, la aparición (en cultivos) de nuevos
gérmenes en un sitio de infección que ha tenido otro germen se debe
considerar infección nosocomial nueva, en especial si hay deterioro clínico en
la condición del paciente. (3)
La transmisión de enfermedades puede ser de dos tipos:
• Transmisión directa: Es el traspaso directo e inmediato de un agente
infeccioso a una puerta de entrada receptiva tal como piel, mucosa
oral, mucosa nasal, conjuntivas o mucosas genitales; la cual puede
ocurrir por contacto directo (tocar), proyección directa de gotitas de
sangre, saliva o secreciones (hablar), exposición al polvo contaminado
(ropas, suelos contaminados). (4)
• Transmisión indirecta: Es la transferencia de un agente infeccioso a un
individuo susceptible a través de: vehículos de transmisión (objetos),
por intermedio de un vector (interviene un insecto), aerosoles
microbianos (los aerosoles son suspensiones aéreas de partículas
constituidas parcial o totalmente por microorganismos). (1)
6
III.2. Bioseguridad en Salud
Es necesario conocer las diferencias entre los métodos de descontaminación,
debido a que cada uno de ellos se aplica teniendo en consideración el uso del
material, ambiente o actividad médica a realizar; y es indispensable
conocerlas, porque así se pueden prevenir infecciones. Estas son: (12)
III.2.1. Limpieza
Es el proceso de lavado con agua corriente y detergente por el cual se elimina
de los instrumentos las materias orgánicas y se reduce la cantidad de bacterias.
El propósito de la limpieza no es destruir o matar a los microorganismos que
contaminan los objetos, sino de eliminarlos por arrastre. (11)
III.2.2. Desinfección
Se define como el proceso por medio del cual se logra eliminar a los
microorganismos de formas vegetativas en objetos inanimados, sin que se
asegure la eliminación de las esporas bacterianas. (12)
El grado de desinfección producido depende de varios factores, pero
esencialmente de la calidad y concentración del agente microbiano, de la
naturaleza de la contaminación de los objetos y el tiempo de exposición.
(5) Algunos agentes de desinfección utilizados a la concentración indicada y en
período no inferior a 30 minutos producen la destrucción de los
microorganismos, con la sola excepción de las esporas bacterianas resistentes.
(11)
7
Existen tres niveles de desinfección:
- De bajo nivel: cuando se eliminan microorganismos pero no las esporas
bacterianas ni al M. tuberculoso. (6)
- De nivel intermedio: cuando se eliminan microorganismos incluyendo al
M. tuberculoso pero no las esporas bacterianas. (6)
- De alto nivel: cuando se eliminan microorganismos incluyendo al M.
tuberculoso, hongos, virus y algunas esporas bacterianas. (6)
III.2.3. Esterilización
Es el proceso mediante el cual se elimina a todas las formas vivientes de
microorganismos, incluyendo a las esporas bacterianas. Constituye la medida
esencial para la seguridad y la protección que demanda la atención de los
pacientes. La esterilización se logra a través de:
- Vapor saturado a presión
- Calor seco
- Mediante algunos agentes químicos en forma líquida o de gas. (8)
Es necesario saber que la limpieza es el procedimiento indispensable a realizar
antes de llevar a cabo la desinfección o esterilización de los instrumentos. (8)
Existe una clasificación para los instrumentos, equipos y espacios para su
descontaminación, la cual se divide en:
• INVASIVOS
o Características.- Penetran tejidos y producen sangrado.
o Descontaminación.- Esterilización en autoclave o estufa o descartar. (1)
8
• NO INVASIVOS
o Características.- Entran en contacto con mucosas, dentina y esmalte y
no producen sangrado.
o Descontaminación.- Esterilización o desinfección de alto nivel y nivel
intermedio. (1)
• AMBIENTALES
o Características. Solamente entran en contacto con la piel.
o Descontaminación. Desinfección de nivel medio y bajo nivel. (1)
En 1997, la Organización Panamericana de la Salud (OPS), publicó que 17
millones de personas a nivel mundial fueron víctimas de infecciones
intrahospitalarias en 1995, como consecuencia de un abandono a los
proGramas de vigilancia sanitaria y a la reducción de investigaciones hacia
proGramas sanitarios básicos; además dicha organización alertó que más de
250,000 niños, menores de 5 años de edad, mueren anualmente en las
Américas, por enfermedades que podrían haber sido fácilmente prevenidas o
tratadas. (2)
La Organización Panamericana de la Salud (OPS) y la Organización Mundial
de la Salud (OMS), agencias nacionales e internacionales y organizaciones no
gubernamentales (ONGs) esperan prevenir 100,000 muertes de niños menores
de 5 años de edad (de un promedio anual de 250,000) en las Américas en el
2002, promoviendo el entrenamiento de profesionales en salud, calidad del
sistema de salud requerido para un efectivo manejo de las enfermedades en
niños, familias y prácticas de la comunidad. (2)
9
Los esfuerzos de disminuir el riesgo de transmisión de infecciones incluyen
proGramas en los cuales estas infecciones tienen un rol crucial. Las superficies
de los servicios médicos de los hospitales, la piel del personal, equipamiento,
muebles, y áreas deben de ser desinfectadas mediante un apropiado agente
desinfectante. (2)
III.3. Bacterias nosocomiales y potencialmente patógenas
Infecciones nosocomiales
Las infecciones nosocomiales más frecuentes son las de heridas quirúrgicas,
las vías urinarias y las vías respiratorias inferiores. En el estudio de la OMS y
en otros se ha demostrado también que la máxima prevalencia de infecciones
nosocomiales ocurre en unidades de cuidados intensivos y en pabellones
quirúrgicos y ortopédicos de atención de enfermedades agudas. Las tasas de
prevalencia de infección son mayores en pacientes con mayor vulnerabilidad
por causa de edad avanzada, enfermedad subyacente o quimioterapia. (2)
Bacterias potencialmente patógenas
Las bacterias patógenas son una de las principales causas de las enfermedades
y de la mortalidad humana, causando infecciones tales como tétanos, fiebre
tifoidea, difteria, sífilis, cólera, intoxicaciones alimentarias, lepra y
tuberculosis. Puede ocurrir que, para una enfermedad médicamente conocida,
su causa patogénica se descubra solamente después de muchos años, como fue
el caso de la úlcera péptica y Helicobacter pylori. Las enfermedades
bacterianas son también importantes en la agricultura y en la ganadería, por
ejemplo, el carbunco. (2)
10
Cada especie de patógeno tiene un espectro característico de interacciones con
sus huéspedes humanos. Algunos organismos, tales Staphylococcus o
Streptococcus, pueden causar infecciones de la piel, pulmonía, meningitis e
incluso sepsis, una respuesta inflamatoria sistémica que produce shock,
vasodilatación masiva y muerte. Sin embargo, estos organismos son también
parte de la flora humana normal y se encuentran generalmente en la piel o
nariz sin causar ninguna enfermedad. Ciertas especies tales como
Pseudomonas aeruginosa, Burkholderia cenocepacia y Mycobacterium avium
son patógenos oportunistas y causan enfermedades principalmente en las
personas que sufren inmunosupresión o fibrosis quística. (1)
Los instrumentos quirúrgicos y dentales también son esterilizados para
prevenir la contaminación e infección por bacterias. Los desinfectantes se
utilizan para matar a bacterias u otros patógenos que se depositan sobre las
superficies para prevenir la contaminación y reducir el riesgo de infección. (1)
III.4. Bacterias frecuentes en áreas clínicas odontológicas
III.4.1. Pseudomonas sp.
El género Pseudomonas es grupo de bacilos Gramnegativos aerobios estrictos,
que crecen bien en los medios habituales en 24 horas y que se encuentran en
abundancia en las plantas y en el ambiente, denominados colectivamente
bacilos Gramnegativos no fermentadores.
Producen infecciones oportunistas, tales como neumonía, infección urinaria,
infecciones quirúrgicas y septicemia entre otros. Con frecuencia, alguna cepa
11
se establece de modo endémico en un hospital dando lugar a hiperendemias o
epidemias. Presentan gran resistencia a los antimicrobianos. (7)
Muchos ambientes de cirugía de uso dental presentan un alto nivel de
biocontaminación, un inapropiado mantenimiento y desinfección que
probablemente cause colonización de P. aeruginosa, demostrado por el
porcentaje positivo de las muestras de agua (13.8%). (5)
La Pseudomona aeruginosa es un frecuente patógeno nosocomial que causa
severas enfermedades en muchos casos, particularmente en pacientes
comprometidos, incluyendo aquellos con cáncer, quemaduras, y fibrosis
quística. Las infecciones son frecuentemente severas, y dos recientes estudios
indican que el ritmo de mortalidad atribuido a bacteremia por P. aeruginosa es
aproximadamente del 34%. Muchos factores de virulencia pueden ser
atribuidos a patogenicidad, incluyendo formación de biofilm y la expresión de
los adhesivos, endotoxinas y exotoxinas hidrolíticas, los cuales causan
destrucción tisular. (2)
III.4.2. Staphylococcus aureus
Las bacterias del género Staphylococcus son cocos Gram positivos, agrupados,
habitualmente, en racimos aerobios y anaerobios facultativos. Sólo S. aureus
produce la enzima coagulasa, por lo que las demás especies se conocen como
coagulasa – negativas. (3)
Es un agente etiológico de diversas patologías, incluyendo infecciones de piel
y tejidos blandos, bacteremia, endocarditis, infección del sistema nervioso
central y del tracto genitourinario. (5)
12
S. aureus y S. epidermidis parecen ser, en principio, las únicas que se aíslan en
la cavidad oral y, aunque tienen el carácter de pertenecer a la microbiota
transitoria están implicadas en numerosos procesos patológicos en esta zona.
Ambas especies, por su capacidad de soportar elevadas concentraciones de
NaCl, están ampliamente distribuidas en la naturaleza como saprófitas y
comensales de la piel y numerosas mucosas (p.ejm nasofaringe o intestino). (3)
En principio, la característica fundamental es la acumulación de pus. La puerta
de entrada suele ser la vía cutáneo-mucosa, a partir de cepas resistentes o
adquiridas que colonizan los tejidos por adhesinas como los ácidos teicoicos y
la capa mucosa; si existen factores predisponentes, S. aureus inicia su acción
patógena con una secuencia de acontecimientos. Las manifestaciones clínicas
son: primarias purulentas, bacteriemias y secundarias purulentas. (3)
III.4.3. Escherichia coli
Conocida también como “colibacilo”, son bacilos Gramnegativos, aerobios
facultativos, móvil por flagelos, no forma esporas. (5)
Es quizás el organismo procarionte más estudiado por el ser humano, se trata
de una bacteria unicelular que se encuentra generalmente en los intestinos
animales; ésta y otras bacterias son necesarias para el funcionamiento correcto
del proceso digestivo. Además produce vitaminas B y K. (5)
13
III.4.4. Acinetobacter sp.
El género Acinetobacter está formado por cocobacilos (con forma de bastón
corto y grueso) Gramnegativos, oxidasanegativos, inmóviles. Dada la
complejidad de la nomenclatura de especies y biovariedades individuales,
algunos sistemas de clasificación utilizan la expresión «complejo
Acinetobacter calcoaceticus-baumannii», que abarca todos los subgrupos
pertenecientes a esta especie, como A. baumannii, A. iwoffii y A. junii. (9)
Son bacilos Gramnegativos aerobios estrictos, que crecen bien en los medios
habituales en 24 horas y que se encuentran en abundancia en las plantas y el
ambiente, denominados colectivamente bacilos Gramnegativos no
fermentadores. (3)
La P. aeruginosa y Acinetobacter baumanni son las dos especies aisladas con
mayor frecuencia en clínica. (2)
III.5. Estudios microbiológicos en superficies quirúrgicas odontológicas
de clínicas
En la búsqueda de mejorar la salud bucal poblacional; muchas clínicas
odontológicas se ven en el deber de investigar acerca de cómo mantener un
adecuado ambiente clínico según lineamientos internacionales, debido a que
ciertas limitaciones incrementan la posibilidad de acumular microorganismos
potencialmente patógenos que pueden comprometer el resultado final del
tratamiento odontológico y/u ocasionar problemas subyacentes. (2)
Existen evidencias de la presencia de bacterias en madera, plástico y acero
inoxidable. Rodríguez y col. en su estudio compararon la contaminación
14
bacteriana en un quirófano de uso dental, según tipos de superficie; las cuales
fueron: madera, plástico y acero inoxidable; los resultados fueron que un
tercio de las muestras tomadas de la madera estaban contaminadas; mientras
que solo el 10% de las muestra obtenidas del plástico y acero inoxidable
estaban contaminados. Esto nos indica que la madera es un medio hostil para
las bacterias. (2)
Al evaluarse la carga bacteriana y la presencia de patógenos como
Pseudomonas sp, Staphylococcus aureus, Escherichia coli y Acinetobacter sp
en un ambiente quirúrgico dental y obtener cargas bacterianas elevadas, se
concluyó que el ambiente era inadecuado para actividades quirúrgicas, estos
resultados dan a relucir las deficiencias en las normas de desinfección
ambiental manejadas y reflejan la necesidad de implementar proGramas de
monitoreo bacteriológico del ambiente en áreas clínicas odontológicas. (2)
15
IV. OBJETIVOS DEL ESTUDIO
IV.1. Objetivo General
Determinar las bacterias potencialmente patógenas según clase y tipo de
superficie antes y después de los procedimientos quirúrgicos menores
realizados en los consultorios externos del servicio de Cirugía Oral y
Maxilofacial de la Clínica Estomatológica Central de la Facultad de
Estomatología Roberto Beltrán de la Universidad Peruana Cayetano Heredia.
IV.2. Objetivos Específicos
• Determinar la presencia de cocos y bacilos con tinción Gram según clase
de superficie.
• Determinar la cantidad y promedio de unidades formadoras de colonias
(UFCs) antes de las cirugías y después de las cirugías según clase de
superficie.
• Determinar la cantidad y promedio de UFCs antes de las cirugías y
después de las cirugías según tipo de superficie.
• Determinar presencia de microorganismos aislados según clase de
superficie.
• Determinar presencia de microorganismos aislados según tipo de
superficie.
16
V. Hipótesis
Existen bacterias potencialmente patógenas en las superficies de los
consultorios externos del servicio de Cirugía Oral y Maxilofacial donde se
realizan procedimientos de cirugía oral menor de la Clínica Estomatológica
Central de la Facultad de Estomatología Roberto Beltrán de la Universidad
Peruana Cayetano Heredia.
17
VI. MATERIALES Y MÉTODOS
VI.1. Diseño de estudio
Estudio descriptivo, cuantitativo, transversal, observacional y analítico
VI.2. Población
La población estuvo conformada por las superficies de las unidades dentales
de los consultorios externos del servicio de cirugía oral y maxilofacial del
Servicio de la Clínica Estomatológica Central de la Facultad de Estomatología
Roberto Beltrán de la Universidad Peruana Cayetano Heredia.
VI.3. Muestra
La muestra estuvo conformada por 5 superficies (el medio ambiente fue
considerado una superficie) de los consultorios externos del servicio de cirugía
oral y maxilofacial del Servicio de la Clínica Estomatológica Central de la
Facultad de Estomatología Roberto Beltrán de la Universidad Peruana
Cayetano Heredia, que fueron escogidos por ser superficies potencialmente
contaminadas.
VI.3.1. Criterios de inclusión
− Superficies usadas durante los procedimientos quirúrgicos
menores.
− Cirugías proGramadas para los días de lunes a viernes
18
VI.3.2. Criterios de exclusión
− Superficies que no entran en uso durante las cirugías.
− Tratamientos quirúrgicos de procesos infecciosos
− Cirugías proGramadas para los días sábados
19
VI.4. Variables (Operacionalización de Variables)
20
VI.5. Procedimientos
Recuento de Unidades Formadoras de Colonias:
Se preparó el Agar Tripticasa Soya con Lecitina y Tween 80 (TLT), luego se
depositó con la pipeta la cantidad equivalente en tween 80, se agrega la
lecitina para homogenizar y distribuir en las placas petri. También se preparó
caldo BHI (brain heart infusion) para 1 litro de TLT y se depositó 1ml en
tubos de ensayo de 12x75mm y de 13x100ml.
Sin previo conocimiento del personal de cirugía, se realizó un muestreo antes
y uno después de cada una de las cinco cirugías escogidas aleatoriamente en
las unidades dentales de las unidades dentales del servicio de cirugía oral y
maxilofacial.
Se tomaron las muestras de las 4 superficies (brazo de unidad, agarradera de
lámpara, jeringa triple y de la base de la succión) con los hisopos conteniendo
el medio Stuart (medio de transporte). Se llevaron los medios al laboratorio y
fueron colocados en caldo BHI de 1ml vibrándolo por un periodo de 1 minuto.
Luego de tomó 0,1ml del caldo BHI para depositarlo directamente sobre la
placa de TLT y con ayuda del asa de Drigalski se esparció la muestra. Estas
placas se colocaron boca abajo en la estufa a 37°C por 24 horas. Las muestras
tomadas del medio ambiente entraron directamente a la estufa bajo los mismos
parámetros.
Transcurridas las 48 horas se realizó el recuento de las unidades formadoras de
colonias (UFC), se registraron los distintos tipos de colonias, se tomó una
muestra de cada uno de ellos con ayuda de un asa en punta y se depositaron en
21
caldo BHI de 1ml, se agitó y se colocó cada tubo de ensayo en estufa a 37°C
por 24 horas.
Se procedió a preparar Agar Manitol Salado (Britania®), Agar BHA (brain
heart agar) (Merkoplate®), Agar Mc Conckey (Merkoplate®) y Agar
Pseudomona F (Britania®) según las instrucciones del fabricante.
Tinción Gram e identificación:
Se tomó un inóculo del caldo BHI y se depositó en una lámina porta objetos
para realizar tinción Gram de los microorganismos aislados, dependiendo a su
resultado se procedió a sembrarlo en su agar respectivo:
• Gram + y - : Agar BHA
• Gram +: Agar Manitol Salado
• Gram – : Agar Mc Conckey y Agar Pseudomona F
22
Pruebas bioquímicas:
Se procedió a realizar las pruebas bioquímicas a todas las colonias que fueron
aisladas, se les hizo prueba de oxigenasa y de catalasa. Dependiendo de si es
un bacilo o coco, Gram + o Gram -, catalasa + o catalasa – u oxidasa + o – se
les realizaron distintas pruebas bioquímicas (los métodos bioquímicos se
aplicaron a las bacterias con crecimiento en BHA) como lo muestra la
siguiente tabla:
23
VI.6. Plan de análisis
Se construyó una base de datos con los resultados en Microsoft Office Excel
2010 y se realizó estadística descriptiva para analizar y representar datos
calculando medidas de tendencia central, para ver en qué medida los datos se
agrupan o dispersan en torno a un valor central. Las tablas realizadas muestran
los valores completos de cuantificación, promedios y porcentaje de los
resultados encontrados en el estudio. Se realizaron gráficos horizontales con
los datos de las variables para representar cada una de las tablas.
VI.7. Consideraciones éticas
Se procedió a solicitar autorización y revisión del protocolo de investigación
de la Comisión de investigación de la Facultad (CIFE) y la autorización de
Jefe del Departamento de Medicina, Cirugía y Patología Oral para trabajar en
el Servicio de Cirugía Oral y Maxilofacial de la Clínica Estomatológica
Central de la Facultad de Estomatología de la Universidad Peruana Cayetano
Heredia
También se realizó la inscripción en el registro SIDISI, y se solicitó la
autorización y aprobación de Comité de Ética de la Universidad Peruana
Cayetano Heredia para realizar el trabajo.
24
VI.8. Recursos
VI.8.1. Recursos humanos
− 01 Operador logístico (investigador principal).
− 01 Asesor especialista (especialista en patología y medicina oral)
− 01 microbióloga
− 01 Estadístico.
VI.8.2. Recursos logísticos
− Computadora Pentium M 1.5GHz.
− Software correspondiente para la elaboración del trabajo (Microsoft Word,
Microsoft Excel, Microsoft PowerPoint).
− Impresora digital, a color y blanco y negro.
− Material de escritorio (papel bond: 1 millar, lapiceros, lápices,
resaltadores, borradores, correctores, fólderes manila, fólderes plásticos,
perforador, tijeras, engrapador).
− Lugar de trabajo: escritorio, fuente de luz adecuada.
VI.8.3. Material y Equipo:
− Hielera
− Bolsas plásticas estériles
− Bolsas plásticas estériles con tiosulfato de sodio
− Rotulador
− Pipeteador
25
− Incubadora a 35°C +/- 0.5°C
− Gradillas plásticas
− Un termómetro del tipo de inmersión, de 1°C-55°C aproximadamente de 55
cm. de largo con subdivisiones de 0.1 °C, certificado por NIST.
− Vortex
− Asas de nicromo en argolla y en punta
− Cámara de Québec
− Hisopo estéril de mango de madera de 10 cm
− Aparato de filtración ensamblado
− Pinzas estériles de metal
− Balanza analítica
Reactivos:
− Caldo Tripticasa Soya
− Caldo Letheen (con tween 80 y lecitina)
− Agar Cetrimide
− Agar Baird-Parker
− Agar MacConkey
− Agar BHA (agar cerebro corazón)
− KOH 40%
− Medio de transporte Stuart
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Cristalería:
− Pipetas estériles graduadas, de 1.0 mL y 10.0 mL
− Frasco de dilución hecho de vidrio de borosilicato, con tapadera de rosca de
polietileno, equipados con teflón.
− Tubos de ensayo con tapón de rosca o tapa de presión.
− Campanillas durham
− Esparcidores de vidrio
− Cajas de Petri estériles desechables
27
VII. RESULTADOS
En todas las superficies de estudio de encontraron mayor cantidad de cocos y
bacilos Gram positivos, sobre todo en los cocos y bacilos aislados en el medio
ambiente que fueron 14 (23%) y 15 (24%) respectivamente del total de los de
ese grupo. Los cocos y bacilos Gram negativos se encontraron en pequeñas
cantidades, 1 (2%) y 3 (5%) respectivamente. No se encontraron cocobacilos.
(Tabla 1, Gráfico 1)
El mayor desarrollo de UFCs se dio en el medio ambiente después de cada
procedimiento quirúrgico menor con 300 UFCs de cantidad total (60 UFCs de
promedio que representa el 34%del total), seguido del mismo medio ambiente
antes de cada procedimiento con 269 UFCs de cantidad total (53,8 UFCs de
promedio que representa el 30% del total), en todas las superficies se dio un
menor recuento de UFCs antes de cada procedimiento quirúrgico menor a
excepción de la jeringa triple que mostró un valor de 51 UFCs (6%) de
cantidad total antes de las cirugías y luego un valor de 22 UFCs (4%) de
cantidad total después de las cirugías. En cuanto a las cantidades totales por
clase de superficie el que presentó los valores mayores indiscutiblemente fue
el del medio ambiente con 569 UFCs de cantidad total (113,8 UFCs de
promedio que representa el 64% del total), seguido luego de la agarradera de
succión con 147 UFCs de cantidad total (29,4 UFCs de promedio que
representa el 16% del total), la jeringa triple con 84 UFCs de cantidad total
(16.8 UFCs de promedio que representa el 9% del total), el brazo de unidad
con 75 UFCs de cantidad total (15 UFCs de promedio que representa el 8%
del total) y en último lugar la agarradera de la lámpara con 16 UFCs de
28
cantidad total (3.2 UFCs de promedio que representa el 2% del total). (Tabla
2, Gráfico 2)
En todos los tipos de superficies se dio un menor recuento de UFCs antes de
cada procedimiento quirúrgico menor a excepción del acero inoxidable que
mostró un una cantidad total de 51 UFCs (7%) de cantidad total antes de las
cirugías y luego un valor de 33 UFCs (5%) de cantidad total después de las
cirugías. En cuanto a las cantidades totales por tipo de superficie el que
presentó los valores mayores fue el del medio ambiente con 569 UFCs de
cantidad total (56.9 UFCs de promedio que representa el 78% del total),
seguido del acero inoxidable con 84 UFCs de cantidad total (8.4 UFCs de
promedio que representa el 9% del total) y el plástico en último lugar con una
cantidad total de 79 UFCs (7.9 UFCs de promedio que representa el 11% del
total). (Tabla 3, Gráfico 3)
En el medio ambiente se aislaron la mayor cantidad de microorganismos sobre
todo los géneros Bacillus sp, SCoN (Staphilococcus sp coagulasa negativa) y
Micrococcus sp con 8 (13%), 8 (13%) y 6 (10%) respectivamente. En el total
general se repitió la misma tendencia con un predominio en el aislamiento de
los géneros Bacillus sp y SCoN con 13 (21%) y 29 (47%) respectivamente y
con un menor aislamiento de Corynebacterium sp con 6 (6%), Kurthia sp con
2 (3%), Listeria sp con 1 (2%), Micrococcus sp con 7 (11%), Neiseria sp con
1 (2%) y 3 (5%) bacterias aisladas del microorganismo Pseudomonas stutzeri
que fue la única bacteria potencialmente patógena. (Tabla 4, Gráfico 4)
La cantidad de microorganismo aislados en tipo de superficie según el total de
placas de trabajo, de las 10 placas tomadas del medio ambiente se encontró en
el 80% de ellas los géneros Bacillus sp y SCoN, seguido de los Micrococcus
sp con 60% de las placas y el Corynebacterium sp que se aisló en el 40% de
29
las placas de dicho medio, de las placas tomadas del plástico se recolectaron
mayor cantidad de SCoN que representan el 57% del total de placas del tipo de
material seguido de los Bacillus sp que re recolectaron en un 10%, finalmente
en el acero inoxidable también hubo un predominio de SCoN que se
recolectaron en un 40% seguido de los Bacillus sp en un 20%. Sobre el
promedio general de aislamiento, se logró aislar mayor cantidad de SCoNs con
un 58%, seguido de los Bacillus sp con 26%. (Tabla 5, Gráfico 5)
30
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VIII. DISCUSIÓN
Se logró observar alta carga bacteriana sobre todo en las muestras
provenientes del medio ambiente y teniendo como segundo lugar la agarradera
de la succión, datos parecidos a estudios previos que mostraron una mayor
cantidad de UFC en la manguera de succión y la agarradera de la lámpara (16).
De las muestras obtenidas, la agarradera de lámpara mostró la carga bacteriana
más baja de los cinco muestreos. En comparación con otros estudios como el
de Zambrano y cols (11) en el que difieren nuestros resultados pues se hallaron
mayor cantidad de microorganismos aislados de la manguera de succión y del
brazo de la unidad, teniendo en último lugar al medio ambiente, la explicación
de esto se da más adelante.
Se recuperaron bacterias con diferentes características morfológicas y de
tinción en elevadas proporciones antes y después de cada procedimiento
quirúrgico, siendo pocos los casos que no presentaron crecimiento bacteriano.
Hubo predominio de los cocos Gram positivos y bacilos Gram positivos. El
medio ambiente fue la zona que presentó mayor cantidad con un 48% del total
en comparación con Zambrano y cols (11) en el que representó solo el 4,9%
del total. El tipo de material en el cual se aislaron mayor cantidad de
microorganismos fue el medio ambiente con 30, seguido del plástico con 25 de
promedio y en último lugar el acero inoxidable con 7 mostrando los
microorganismos con menor predilección por éste último, se presume debido a
lo regular de ésta superficie que no permite la adherencia bacteriana con
facilidad.
Varios investigadores han buscado bacterias potencialmente patógenas que
puedan producir infecciones cruzadas (11, 13-18), sin embargo, en nuestro
41
país no hay estudios que reporten el nivel de contaminación bacteriana en las
unidades dentales, éste estudio identificó 7 géneros bacterianos más uno con
especie. Éste dato es importante para tener éste estudio como base para
realizar posteriores y tener un mejor control de la esterilidad en los
consultorios odontológicos.
Según Bârlean y col el promedio de unidades formadoras de colonias
encontrado en su estudio al inicio de 15 cirugías antes de realizados los
procedimientos fue de 129 mientras que al final fue de 429,6 (16), mientras
que en los consultorios externos de cirugía de la Clínica Dental de la Facultad
de Estomatología de la Universidad Peruana Cayetano Heredia fue de 68,6
antes de los procedimientos y 77,9 después de realizada la cirugía.
En el presente estudio los niveles de contaminación en el medio ambiente
fueron inferiores a los encontrados en estudios previos en cuanto al promedio
que mostraron de 56.9 UFCs. Un estudio publicado (18) se reportaron niveles
de contaminación de 216 UFC y en un estudio más reciente (14) se
encontraron de 120 a 180 UFCs en el aire en cirugías dentales.
Los resultados expuestos, comprueban la existencia de una bacteria
inadecuada para el ambiente en las cirugías 2 y 5 en las cuales se encontraron
Pseudomonas stutzeri a diferencia de la Cátedra de Anestesiologia y Cirugía
Estomatologica "Dr. Juan Omar Briceño" (11) en la cual se aislaron patógenos
S. aureus, A. baumannii y P. aeruginosa. Se acepta que la carga bacteriana de
un consultorio debería ser baja antes de una cirugía y aumentar o permanecer
igual después de la misma, dato que no se cumplió en el caso del acero
inoxidable que presenta un valor inverso que probablemente se deba a que al
momento de hisopar antes de la cirugía se tomó el mismo punto de superficie
posterior a la finalización de la cirugía que terminó en una reducción de la
42
cantidad bacteriana, en las demás cirugías si aumentó la UFC luego de
acabado el procedimiento quirúrgico.
El aire puede considerarse como un vector de microorganismos ya que su
movimiento puede arrastrar gérmenes de un lugar a otro, los vientos pueden
levantar flora de tierras y desiertos y en los fenómenos de evaporación
transportar gotitas de agua con microorganismos. El aire en ambientes
cerrados sí puede contener un gran número de microorganismos procedentes
de los otros seres que allí se encuentran y, por lo tanto, albergaría bacterias de
baja, media y alta virulencia; tal es el caso del aire de un galpón, de una sala
de cirugía, de un teatro o de un laboratorio de microbiología. Los
microorganismos generalmente asociados al aire son los Micrococcus spp.,
Bacillus spp y los Corynebacterium spp (19) que fueron aislados en mayor
cantidad juntos con los SCoN.
Debido a su constante exposición y contacto con el ambiente, la piel alberga
una buena cantidad de microorganismos y esta flora puede modificarse por el
hábito de llevar determinado tipo de ropas, los ambientes en los que vive el
individuo, la cercanía a mucosas, pero en términos generales las bacterias más
comúnmente encontradas son Staphylococcus coagulasa negativa,
Corynebacterium spp, Bacillus spp, Micrococcus spp, Acinetobacter spp,
Propionibacterium spp Aerococcus spp y Propionibacterium spp. según
Murray y cols en una serie de varios análisis establecidos en habitaciones de
casas en Inglaterra (19), ésta información es de vital importancia respecto a los
microorganismos encontrados en los consultorios debido a que los mismos
pacientes u operadores son los que traerían la mayor cantidad de
microorganismos a los consultorios.
43
El tracto respiratorio superior esta colonizado con numerosos
microorganismos, con 10 -100 anaerobios por cada aerobio, y es importante
anotar que la boca es un ecosistema con sus propias características por su
desarrollo anatómico y fisiológico así como que los microorganismos que con
mayor frecuencia abundan en la boca son los Gram + siendo este dato vital
respecto a lo encontrado en el presente estudio con un 93%. Los anaerobios
más comunes son Peptostreptococcus, Veillonella, Actinomyces y
Fusobacterium y entre los aerobios Streptococcus, Haemophilus y Neisseria
spp (19), sobre éste último microorganismo es de importancia mencionar que
fue aislado de la agarradera de la succión por lo cual debe ser tomado como
una bacteria normal que pertenece a la flora oral.
La Listeria spp al ser manitol positivo elimina la posibilidad de que sea la
única especie patógena del género que sería la Listeria Monocitogenes, y la
Kurthia spp no es usualmente patógeno (a menos que el paciente se encuentre
inmunosuprimido) y se asocia su presencia a la carne y a material clínico (20),
ambos géneros fueron aislados en 4 oportunidades lo cual los ubica como de
incidencia baja en los consultorios externos de cirugía. Estos microorganismos
no han sido identificados en estudios previos sobre consultorios odontológicos
(11, 16, 18).
La única bacteria potencialmente patógena que se encontró y se aisló fue la
Pseudomonas stutzeri, que no es un patógeno agresivo en humanos pero puede
causar infecciones serias si se le da la oportunidad. Es un bacilo Gram
negativo que tiene la capacidad de liberar nitrógeno de nitratos (21). Este
microorganismo ha sido aislado de sangre, líquido cefaloraquídeo, secreciones
del oído medio, esputo, orina y heridas. Es ubicuo en suelo y en agua,
44
aislándose mayoritariamente en equipos de aerosoles. Es causante de
bacteremias, otitis media, artritis séptica, infecciones del tracto urinario,
infecciones postoperatorias (22), neumonía (23), septicemia (24) y fiebre
entérica (25). Además, es considerado como una de las bacterias con mayor
resistencia a antibióticos (26). El patógeno P. stutzeri ha sido aislado de
algunas áreas de los consultorios dentales en estudios previos sugiriendo un
riesgo de infección asociada con diseminación oral (27). En el presente estudio
se aisló la P. stutzeri en 3 oportunidades en 2 cirugías de 3 superficies distintas
que fueron el medio ambiente, la jeringa triple y el brazo de la unidad que no
representan una gran contaminación por ésta bacteria pero sí un importante
riesgo para los pacientes. Otros estudios reportan la presencia de Pseudomonas
en sus cultivos pero nunca de una de la especie stutzeri (11, 16, 18).
El equipo y las superficies de contacto de la clínica deben estar protegidos de
la contaminación usando barreras. Las barreras de protección son
particularmente efectivas para aquellas superficies clínicas que son de
dificultosa limpieza y desinfección debido a la topografía de las superficies o
la incompatibilidad química de los materiales. En los casos de la agarradera de
succión, agarradera de la lámpara de luz y la jeringa triple se debería
implementar el uso de bolsas descartables al igual que lo hacen con las
unidades dentales de los departamentos de clínica del adulto y clínica de niño
y el adolescente. Los materiales de barrera se contaminan durante la atención
del paciente. Éstas deben ser removidas o descartadas entre pacientes con el
uso de guantes. Algo nuevo que debería ser agregado es un protector del brazo
de la unidad que entra en constante contacto con los brazos de los pacientes
que cargan con gran cantidad de bacterias.
45
En cuanto a la contaminación del medio ambiente del consultorio externo de
cirugía se debería colocar aire acondicionado con un extractor de partículas
que estén encendidos permanentemente durante los procedimientos,
normalmente el servicio de atención de cirugía se encuentra con las ventanas
abiertas que comunican a los consultorios con el estacionamiento permitiendo
que una gran cantidad de microorganismos ingresen, a esto se le suma la
presencia de los ventiladores que ayudan a diseminar la contaminación. Otra
opción podría ser establecer un flujo laminar unidireccional asegurándose la
filtración del aire que ingresa al ambiente operatorio junto con protocolos de
radiación ultravioleta.
La prevención de las formas de infección cruzada debe ser un aspecto esencial
en la práctica odontológica. El cirujano dentista debe adoptar precauciones
estándar que consideren todos los fluidos y la sangre contaminada como
potencialmente infeccioso en su práctica.
Los resultados obtenidos destacan la necesidad mejorar las normas de
bioseguridad llevadas en los consultorios, evaluar las normas de limpieza y
desinfección aplicadas e implementar proGramas de monitoreo ambiental con
vigilancia epidemiológica, para disminuir el riesgo de adquirir infecciones en
la práctica odontológica general, así mismo destaca la importancia de
mantener un entrenamiento adecuado del personal de limpieza para aplicar los
protocolos de desinfección más apropiados.
46
IX. CONCLUSIONES
• La Pseudomonas stutzeri fue el único microorganismo potencialmente
patógeno que fue aislado, se le encontró en un consultorio en 3 oportunidades
en medio ambiente, acero inoxidable y plástico.
• La forma bacteriana más prevalente fueron los cocos y bacilos Gram positivos
y se encontraron en su mayoría en el medio ambiente.
• La mayor cantidad y promedio de unidades formadoras de colonias (UFCs)
según clase de superficie se dio en el medio ambiente (569 UFCs de total, 56,9
UFCs de promedio, 64%) y se presentó después de haber concluido el
procedimiento quirúrgico menor.
• Según tipo de superficie la mayor cantidad y promedio de unidades
formadoras de colonias (UFCs) se dio en el medio ambiente (569 UFCs de
total, 56,9 UFCs de promedio, 78%) y se presentó después de haber concluido
el procedimiento quirúrgico menor.
• La cantidad de microorganismos aislados según clase de material fue: medio
ambiente (48%), brazo de unidad (19%), jeringa triple (11%), agarradera de
succión (11%) y agarradera de lámpara (10%); con un predominio de
Staphylococcus spp coagulasa negativa (47% del total) en cada uno de ellos.
• Según tipo de material la cantidad de microorganismos aislados fue: medio
ambiente (48%), plástico (40%) y acero inoxidable (11%); con un predominio
de Staphylococcus spp coagulasa negativa en cada uno de ellos.
47
X. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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49
ANEXO 1
Ficha de toma de muestras
Nº HC:
Fecha:
Nombre del paciente:
Sexo (F) (M)
Diagnostico presuntivo:
Diagnostico definitivo:
Tratamiento: Tiempo de inicio de la cirugía: Tiempo final de la cirugía:
50
ANEXO 2
Ficha de llenado macroscópico por cada placa petri
UFC en 20´
123456
EXXA
Descripción
UFC en 20´
123456
EXXD
Descripción
• Se rotulará bajo el siguiente formato.
o La primera letra indica el nombre del investigador (E de Ernesto).
o La segunda letra indica el número de la cirugía (la numeración sería del
1 al 5 que son la cantidad de cirugías)
o La tercera letra indica la superficie de la cual es tomada la cirugía (A
de ambiente, B de Brazo de la unidad, S de la Succión, T de la jeringa
Tripe y L de la agarradera de la Lámpara de la unidad)
o La cuarta letra representa en momento en el que fue tomada la muestra
(A de antes de la cirugía o D de después de la cirugía)
51
ANEXO 3
Ficha de llenado de pruebas bioquímicas