Guías TP 2015

UNIVERSIDAD NACIONAL DE MISIONES

FACULTAD DE CIENCIAS EXACTAS, QUÍMICAS Y NATURALES

GUIA DE TRABAJOS DE LABORATORIO

INTRODUCCION A LA INGENIERIA AMBIENTAL

Carrera: Ingeniería Química

Profesor Responsable Cátedra: Mgter.Ing. Carlos Jejer.Jefe de Trabajos Prácticos: Ing. Roberto Balmaceda; Dra. Laura Vera; Mgter.Ing. Cecilia Puchalski.Auxiliares: Mgter. Jeannette Baumann; Lic. Carla Silva.

Año 2015

Introducción a la Ingeniería Ambiental Año: 2015

INDICE

Recomendaciones generales para el trabajo en el laboratorio 4

CLASE DE LABORATORIO N°1MUESTREO DE AGUA y DETERMINACIÓN DE PARÁMETROS IN SITU 5Introducción ObjetivosFundamentos ActividadesParámetros físicos1) Determinación de color2) Determinación de turbidez Parámetros químicos1) Determinación de pH2) Determinación de la conductividadCuestionario InformeBibliografíaAnexos

CLASE DE LABORATORIO N°2DETERMINACIÓN DE COMPUESTOS ORGÁNICOS E INORGÁNICOS 22IntroducciónObjetivosActividadesCompuestos inorgánicosa) Determinación de nitrógeno de nitritob) Determinación de alcalinidad Compuestos orgánicos1) Determinación de demanda bioquímica de oxígeno2) Determinación de demanda química de oxígeno CuestionarioBibliografía Informe del prácticoAnexo

CLASE DE LABORATORIO N°3CALIDAD BACTERIOLOGICA DEL AGUA 31IntroducciónObjetivosActividadesParámetros bacteriológicos


a) Determinación de Coliformesb) Determinación de Pseudomonas aeruginosas Anexoc) Recuento de Bacterias MesófilasCuestionarioBibliografíaInforme del prácticoAnexo

CLASE DE LABORATORIO Nº 4CONTROL MICROBIOLOGICO AMBIENTAL 38IntroducciónObjetivosActividadesParámetros microbiológicos1-Análisis del aire2-Análisis de superficies CuestionarioBibliografíaInforme del práctico

CLASE DE LABORATORIO Nº5 45MEDICION DE RUIDOSIntroducciónObjetivosActividadesCuestionarioBibliografíaInforme del práctico

CLASE DE LABORATORIO Nº6DETERMINACIÓN DE LA TEXTURA DEL SUELO 52IntroducciónObjetivosActividadesCuestionarioBibliografíaInforme del práctico


RECOMENDACIONES GENERALES PARA EL TRABAJO EN EL LABORATORIO

* Conocer los fundamentos teóricos vinculados a las experiencias a realizar. * Concurrir al trabajo práctico con la guía leída y guardapolvo. * Prestar atención a las indicaciones del profesor sobre cómo trabajar en el laboratorio, la manipulación del instrumental y cumplir con las normas de seguridad que se indiquen. * Elaborar un Informe Final de cada Trabajo de Laboratorio y elevarlo a la cátedra. Dicho informe deberá tener:

Título y Número del Trabajo de Laboratorio. Nombre y Apellido de los integrantes. Introducción (breve descripción del marco teórico). Materiales y Métodos. Resultados. Conclusiones. Referencias Bibliográficas (si fuese necesario).

RECOMENDACIONES DE TRABAJO PARA EVITAR ACCIDENTES YOBTENER BUENOS RESULTADOS EN LAS EXPERIENCIAS

* Leer cuidadosamente las etiquetas de los frascos para estar informado sobre qué sustancia se va a utilizar.

* Evitar el contacto directo de las drogas con la piel, no oler, no acercar a la boca ni a los ojos. * Si por accidente entra en contacto con la piel cualquier droga que se utilice, en especial ácidos y bases, inmediatamente lavar con abundante agua y avisar al Profesor. * No retornar el exceso de un reactivo al recipiente original, para evitar contaminaciones. * No se puede fumar, comer o beber en el laboratorio. * Mantener limpia la mesada en la que se trabaja. * Antes de retirarse del laboratorio deberá dejar limpio y ordenado el lugar de trabajo y el material que utilizó.


CLASE DE LABORATORIO N°1

MUESTREO DE AGUA Y DETERMINACIÓN DE PARÁMETROS

IN SITU

Profesor Responsable Cátedra: Mgter.Ing. Carlos Jejer.Auxiliar: Lic. Carla Silva-Mgter. Jeannette Bauman.


INTRODUCCIÓN Se entiende por calidad del agua al conjunto de características físicas, químicas y biológicas

que hacen que el agua sea apropiada para un uso determinado. En base a la vinculación entre calidad de aguas y sus usos, se establecen estándares y

criterios de calidad específicos que definen los requisitos que han de reunir el agua en estudio para un fin concreto, requisitos que vienen expresados como rangos cuantitativos de determinadas características fisicoquímicas y biológicas.

Una vez establecidos estos criterios de calidad en función del uso, se promulgan leyes y se desarrollan programas orientados a garantizar el cumplimiento de dichos criterios.

Se comparan los valores de los parámetros fisicoquímicos y biológicos con las siguientes reglamentaciones para determinar así su aptitud a) para los usos o b) para el vuelco a cursos receptores:

a) Agua para uso potable: Código Alimentario Argentino Agua en función de los diferentes usos: Dec 831/93 Anexo II Reglamentación de la Ley Nac

24051 de Residuos peligrosos b) Normas de emisión de efluentes industriales Dec 2149/88 Pcia de Misiones

Los datos se pueden utilizar para fines operativos y de control, o para planificación e investigación.

Los análisis carecen de valor si las muestras analizadas no han sido recolectadas, almacenadas e identificadas debidamente.

El muestreo debe ser realizado por personal calificado para asegurar que las muestras sean representativas del agua que se está analizando y que durante el muestreo y transporte su composición no se modifique.

OBJETIVOS Comprender la importancia de realizar un muestreo. Conocer y aplicar los procedimientos de muestreo a diferentes cuerpos de agua. Aplicar los criterios para manejo, preservación y transporte de muestras. Conocer los equipos y materiales de muestreo. Comprender el principio de los distintos parámetros y la importancia de su medición en el

lugar del muestreo.

FUNDAMENTOS


El objetivo de la toma de muestras es la obtención de una porción de material cuyo volumen sea lo suficientemente pequeño como para que pueda ser transportado con facilidad y manipulado en el laboratorio sin que por ello deje de representar con exactitud al material de donde procede.Preparación de Envases para la toma de muestrasExceptuando el material específico que pueda utilizarse para determinaciones analíticas especiales, los recipientes en que se recogen las muestras deberán ser de vidrio borosilicato o material plástico y tendrán que cumplir los siguientes requisitos:a) No desprender materia orgánica, elementos alcalinos, boro, sílice u otros que puedan contaminar la muestra recogida.b) Que la adsorción ejercida por sus paredes sea mínima sobre cualquiera de los componentes presentes en la muestra de agua.c) Que el material constituyente del recipiente no reaccione con los componentes de la muestra.d) Deberán cerrarse y sellar herméticamente.

Los envases de plástico no deben utilizarse para el análisis de gases disueltos, debido a su permeabilidad, ni para analizar compuestos orgánicos y algunos elementos minerales (por ejemplo fósforo) dada su capacidad de adsorber dichos compuestos.Los envases de vidrio no deben utilizarse para tomar las muestras en que se deben determinar elementos alcalinos, fluoruros, boro, sílice o bien se vaya a medir la radiactividad.Los envases para la toma de muestra deben lavarse con dicromato de potasio y ácido sulfúrico (mezcla sulfocrómica), y después con agua destilada hasta eliminación total de la acidez. En el momento de la toma de muestra, los envases han de ser enjuagados varias veces con el agua a analizar, a menos que el envase contenga un conservante y después llenados completamente sin dejar cámara de aire (en la mayoría de los análisis) o dejar un espacio vacío para aireación, mezclas, etc (análisis microbiológicos).El envase para la toma de muestras tendrá las características apropiadas para el tipo de análisis que se efectuará.

DETERMINACIONES ENVASE TAMAÑO CONSERVANTE CONSERVACIONAlcalinidad Plas/Vid 200 ml Refrigerar 24 hsDBO Plas/Vid 1000 ml Refrigerar 6 hsCianuro Plas/Vid 500 ml NaOH pH>12 24 hsCloro Plas/Vid 500 ml Inmediato 0,5 hsColor Plas/Vid 500 ml Refrigerar 48 hsConductividad Plas/Vid 500 ml Inmediato 0,5 hsDureza Plas/Vid 100 ml HNO3 pH<2 6 mesesFenoles Vidrio 1000 ml ac.sulf. ph<2 28 díasFloruro Plástico 300 ml Refrigerar 28 díasFosfato Vidrio 100 ml Filtrar y refr. 48 hsMetales gral Plástico 500 ml HNO3 pH<2 6 mesesNitrato Plas/Vid 100 ml Refrigerar 48 hsNitrito Plas/Vid 100 ml Refrigerar 24 hsNitrogeno amoniaco Plas/Vid 500 ml H2SO4 pH <2 7 diasOxigeno disuelto Vidrio 300 ml Inmediato 0,5 hs


PH Plas/Vid 100 ml Inmediato 2 hsSílice Plástico 500 ml Refrigerar 28 diasSólidos Plas/Vid 1000 ml Refrigerar 7 diasSulfuro Vidrio 500 ml ac zn 4 g/100 ml 7 diasTemperatura Plas/Vid 100 ml Inmediato 0,5 hsTurbidez Plas/Vid 100 ml Refrigerar 24 hsColiforme total y fec Plas/Vid 250 ml Refrigerar 24 hs

Fte. Standard Methods For the Examination of Water and Wastewater. 17 edition

Tipo de muestrasEl tipo de muestra a tomar depende del programa de muestreo establecido y de la finalidad requerida. Así, pueden tomarse muestras simples o compuestas. - Muestras simples: Son las que se toman en un tiempo y espacio determinado para su análisis. Reflejan las características instantáneas de la población en estudio.- Muestras compuestas: Son las que se obtienen por mezcla de dos o más muestras puntuales. Puede ser compuesta con respecto al:

• Tiempo: Se obtiene por combinación de varias muestras puntuales tomadas en un mismo sitio pero en diferentes instantes de tiempo.

• Espacio: Se obtiene por combinación de varias muestras puntuales que han sido tomadas en diferentes puntos durante un mismo intervalo de tiempo.

• Caudal: han sido tomadas en cantidad proporcional al caudal en cada punto.

Procedimientos de toma de muestrasLa muestra puede tomarse por alguno de los siguientes métodos:a) Directamente en la botella o recipiente que se va a enviar al laboratorio o que se utilice para las determinaciones "in situ". Este procedimiento está recomendado en grifos de redes de distribución, fuentes, canales de riego, arroyos de poca profundidad, pozos dotados de bombas de extracción y casos similares. En estos casos, es recomendable dejar fluir el agua durante cierto tiempo para conseguir que la muestra sea verdaderamente representativa.b) Mediante equipos de toma de muestra. Estos equipos se utilizan en ríos, embalses, pozos sin bomba, grandes depósitos de almacenamiento, etc. En estos casos es preciso considerar diversos factores, tales como la profundidad, flujo de corriente, distancia a la orilla, etc. Si es posible, es recomendable obtener muestras integradas, y de no ser posible, se tomarán muestras simples en los lugares más apropiados de la masa de agua (centro, orillas, a profundidades distintas, etc.). Asimismo, dependiendo de las necesidades, se tomarán muestras compuestas (por ejemplo, en el estudio de vertidos industriales, urbanos, etc.). Las siguientes pautas se aplican en la extracción de muestras de agua:*No incluir en la muestra partículas grandes no homogéneas, tales como hojas.*Colocar el aparato de muestreo aguas arriba a fin de evitar la contaminación. *Recolectar un volumen suficiente que permita repetir los análisis y efectuar el control de calidad. *Llevar registros precisos en las planillas de muestreo sobre posibles fuentes de interferencia, condiciones ambientales y áreas problemáticas.

Preservación de la muestra


La adición de ciertos compuestos químicos facilita la conservación de las muestras durante un cierto tiempo. No obstante, ciertos parámetros deben ser determinados dentro de las 24 horas siguientes aun añadiéndole dichos agentes preservantes.

Transporte de las muestrasLos frascos deben ser transportados en refrigeradoras con hielo para preservar la temperatura en 4 ºC.

Cadena de custodiaTiene por objetivo rastrear la muestra desde el momento de muestreo hasta su entrega en el laboratorio. Principales aspectos de la cadena de vigilancia:

a) Etiquetado: Debe incluir, N° de muestra, nombre del muestreador, fecha y momento de la toma y lugar de la misma.

b) Sellado: se coloca de forma tal que sea necesario romperlo para abrir el envase, se utiliza para detectar cualquier falsificación.

c) Libro de registro de campo: se registra, objeto de la toma, localización del pto, nombre y dirección del contacto de campo, tipo de muestra, número y volumen de la muestra, descripción del pto. de muestreo, método, fecha y momento de la toma, mediciones de campo y firmas de los responsables de las observaciones.

d) Registro de la cadena de vigilancia: Debe constar, N° muestra, firma del que hizo la toma, fecha, momento y lugar de la toma, tipo de muestra y firma de las personas que han participado en la cadena de posesión.

e) Hoja de petición de análisis de la muestra: La muestra irá al laboratorio acompañada de una hoja de petición de análisis con información referida al trabajo de campo.

f) Envío de muestra al laboratorio: Se envía lo antes posible acompañada del registro de cadena de vigilancia y de la hoja de petición de análisis.

g) Recepción y almacenamiento: En el laboratorio la persona encargada, recibe e inspecciona el estado y sello de la muestra, comprueba la información de la etiqueta y del sello y la compara con la del registro de la cadena de vigilancia, la registra en el libro de entrada al laboratorio y la guarda en la heladera.

h) Asignación de la muestra para ser analizada: Una vez en el laboratorio el analista es responsable del cuidado y la vigilancia de la muestra.

Equipos de muestreo

*Muestreador Van Dorn: este equipo está diseñado para extraer muestras a una profundidad de 2 m o mayor. El cuerpo del muestreador puede ser de cloruro de polivinilo o de acrílico, con sellos herméticas de neopreno y/o de siliconas. El procedimiento básico es el siguiente:a) Abrir el extractor levantando los elementos de cierre o sellos de obstrucción; b) Fijar el mecanismo disparador; c) Introducir el muestreador en el cuerpo de agua y dejarlo descender hasta la profundidad deseada; d) Activar el mensajero de metal o goma para disparar el mecanismo que


cierra los obturadores de los extremos del extractor y e) Extraer el muestreador del agua y trasvasar la muestra a través de la válvula de drenaje a un recipiente individual.

*Extractor de Kemmerer: Es un extractor vertical accionados por mensajero. El funcionamiento es similar al del muestreador Van Dorn.

Muestreador Van Dorn Muestreador de Kemmerer Disco de Secchi

PARAMETROS FISICOS

1) Determinación de ColorEl color del agua puede estar condicionado por la presencia de iones metálicos naturales

(hierro y manganeso), de humus y turbas, de plancton, de restos vegetales y de residuos industriales.El término de “color real” se asocia al concepto de color puro, es el color cuya turbidez ha

sido eliminada. Mientras que el “color aparente” engloba no sólo el color debido a las sustancias disueltas, sino también a las materias en suspensión, es decir en la muestra original sin filtrado ni centrifugado.

Método: Método de comparación visual. SM 2120 – B

Fundamento: El color se determina mediante comparación visual de la muestra con concentraciones conocidas de soluciones coloreadas. El método patrón de medida de color es el de cobalto-platinato, siendo la unidad de color el producido por 1 mg de platino/lt en forma de ión cloroplatinato.

Equipos y materiales:1. Tubos de Nessler, 50 ml.2. Medidor de pH. 3.

Procedimiento1. Observar el color de la muestra llenando con ésta un tubo de Nessler hasta la marca de 50

ml, y comparar con el estándar.


2. Mirar verticalmente hacia abajo a través de los tubos sobre una superficie blanca o especular, situada en un ángulo de forma que la luz se refleje hacia arriba a través de las columnas de líquido.

3. Si existe turbidez y no se ha eliminado, anótese “color aparente”. Si el color excede las 70 unidades, diluír la muestra en agua destilada a proporciones conocidas hasta que el color se sitúe dentro de los márgenes del estándar.

4. Medir el pH de cada muestra.

Cálculo de la unidad de color:

Unidad de color = A x 50 B

Donde: A = Color estimado de una muestra diluída.B = ml de muestra tomados para la dilución.

Expresión del resultado: Los resultados expresados en UC se recomienda informarlos en cifras completas. Informar el pH de la muestra.

Observación: La determinación colorimétrica debe realizarse dentro de un plazo razonable, ya que las alteraciones biológicas y físicas producidas durante la conservación pueden afectar al color.

2) Determinación de TurbidezLa turbidez del agua es producida por materias en suspensión, como arcilla, cieno o materias

orgánicas e inorgánicas finamente divididas, compuestos orgánicos solubles coloreados, plancton y otros microorganismos. La turbidez es una expresión de la propiedad óptica que origina que la luz se disperse y absorba en vez de transmitirse en línea recta a través de la muestra.

Método: Método nefelométrico. SM 2130 – B

Fundamento: Este método se basa en la comparación de la intensidad de la luz dispersada por la muestra en condiciones definidas y la dispersada por una solución patrón de referencia en idénticas condiciones. Cuanto mayor es la intensidad de la luz dispersada, más intensa es la turbidez.

Equipos y materiales:

1. Turbidímetro: TRITON (PARSEC S.A.)


Consiste en un nefelómetro con una fuente de luz para iluminar la muestra, y uno o más detectores fotoeléctricos con un dispositivo de lectura exterior para indicar la intensidad de la luz dispersada a 90° de la vía de luz incidente. Criterios de diseño:*Fuente de luz: lámpara de filamento de tungsteno dispuesto para una temperatura de calor comprendida entre 2200 y 3000 °K.*Distancia recorrida por la luz incidente y la dispersada dentro del tubo de muestra: total que no exceda de 10 cm.*Ángulo de aceptación de la luz por el receptor: centrada a 90° de haz de luz incidente y sin exceder ± 30° a partir de 90°.*Rangos de turbiedad: 0 a 0,2 NTU;0 a 1 NTU;0 a 10 NTU; 0 a 100 NTU y 0 a 1000 NTU *Accesorios: *tubos de vidrio para la muestra, *patrones de turbiedad.

2. Patrones de turbiedad 0,6 NTU, 10 NTU y 80 NTU.3. Tubos de vidrio transparentes de 10 cm. 4. Vasos de precipitados

Procedimiento1. Encender el equipo de turbiedad 2 horas antes de la medición.2. Comprobar que el turbidímetro facilite lecturas estables en todos los márgenes de

sensibilidad utilizados.3. Calibrar con los patrones verificando las lecturas en cada margen del aparato que se vaya a

utilizar.4. Llenar el tubo de vidrio con la muestra después de agitación cuidadosa, dejando tiempo para

que se elimine las burbujas de aire.

Cálculo de la unidad de turbiedad:En caso de turbideces mayores realizar las diluciones convenientes.

(NTU) = A x (B+C) C

Donde: A = NTU encontrada en la muestra diluída.B = Volumen (ml) de agua de dilución. C = Volumen (ml) de muestra tomada para dilución.

Expresión del resultado:En los resultados expresados en NTU se recomienda informarlos como sigue:

MARGEN DE TURBIDEZ INFORME


0 - 11 - 10>10

0,050,11

Observación: Determinar la turbidez el mismo día en que se toma la muestra.

3) Determinación de TransparenciaFundamento: La transparencia es una característica del agua que varía con los efectos combinados del color y la turbiedad. Disco de Secchi: El aparato consiste en un disco de 250 mm de diámetro de metal o plástico rígido, pintado de blanco alternado con negro. El disco se monta en el extremo de una varilla, cuerda o cadena graduada en intervalos de 10 centímetros, estando el disco ubicado en el cero. Procedimiento: El procedimiento consiste simplemente en introducir el disco de Secchi desde la superficie y observar la profundidad a la cual el disco deja de verse. Luego se procede a extraerlo y cuando se lo visualiza nuevamente se registra la profundidad. El promedio de ambas lecturas expresa el valor correspondiente a la “transparencia o profundidad del disco de Secchi”, el informe sobre transparencia debe consignar el diámetro del disco y el color (o diseño) sobre su superficie superior.

PARAMETROS QUÍMICOS

1) Determinación de pHLa disolución iónica del agua es un proceso de equilibrio

Para el cual podemos escribir la constante de equilibrio:

La concentración del agua, en el agua pura, es muy elevada (es igual al número de gramos de agua en un litro divididos por el peso molecular gramo, o sea 1000/18 = 55,5 M).El término 55,5 Keq puede sustituirse por una constante <global> Kw llamada producto iónico del agua. Kw = El valor de Kw a 15ºC es de 1,0 x 10-14.

El Kw constituye la base para la escala de pH que es un medio utilizado para designar la concentración real de iones H+ (y por lo tanto de iones OH-) en una disolución acuosa. La escala de pH se utiliza para caracterizar la fuerza de los ácidos y los álcalis. Va de 1 a 14, cuanto más iones de hidrógeno libera mayor es la fuerza y menor el pH.

Método: ElectrométricoEl método es aplicable a aguas en todo el rango de pH.

Equipos y materiales:


1- Peachímetro YSI (de campo) 2- Probeta o material de vidrio común (vaso de precipitado)3- Pizeta y papel 4- Agua destilada5- Buffers pH 4, 7 y 10

Procedimiento:1. Colocar el electrodo en un vaso de precipitado o probeta y enjuagar con agua destilada luego secar con papel sin frotar.2. Colocar el electrodo en el buffer pH 7 para realizar la calibración, medir y ajustar el valor. 3. Enjuagar bien y proceder de la misma manera con el buffer pH 4 y 10.4. En otro vaso o probeta que contenga la muestra sumergir el electrodo hasta lograr la estabilidad de la medida.Dadas las diferencias entre las distintas marcas y modelos de medidores de pH, la calibración debe hacerse siguiendo estrictamente las instrucciones de fábrica. Además debe comprobarse la linealidad del electrodo con las soluciones buffer.

Calibración:Colocar el electrodo en el buffer pH 7 medir y ajustar el valor a 7.Enjuagar bien y proceder de la misma manera con el buffer pH 4 y 10.

Expresión del resultado:En los resultados expresados en unidad de pH se recomienda informarlos como sigue:

PH REDONDEO

1,00 1,0

0,01 0,1

Observación: Determinar el pH el mismo día en que se toma la muestra.

2) Determinación de la Conductividad


La conductividad eléctrica es el recíproco de la resistencia en ohms, medida entre las caras opuestas de un cubo de 1.0 cm de una solución acuosa a una temperatura especificada. Las unidades de la conductividad eléctrica son el Siemens/cm.

Un aumento en la temperatura, disminuye la viscosidad del agua y permite que los iones se muevan más rápidamente, conduciendo más electricidad.

Método ElectrométricoFundamento: El método es aplicable a todo tipo de aguas. Consiste en medir la capacidad del agua para conducir la energía eléctrica, está íntimamente relacionado con la concentración de los iones. La medición se realiza con un electrodo para conductividad.

Equipos y materiales:1-PHmetro Multifunción YSI (de campo)2-Probeta o material de vidrio común (Vasos de precipitado)3-Pizeta y papel 4-Agua destilada5-Patrones de ClK6-Electrodo para conductividad

Procedimiento:1-Colocar el electrodo en un vaso de precipitado o probeta y enjuagar con agua destilada luego secar con papel sin frotar. 2-En otro vaso o probeta con la muestra sumergir el electrodo hasta lograr la estabilidad de la lectura.3-Dadas las diferencias entre las distintas marcas y modelos de medidores de conductividad, la calibración debe ser siguiendo estrictamente las instrucciones de fabrica.Además debe comprobarse la linealidad del electrodo con las soluciones patrones.

Calibración:Colocar el electrodo en las soluciones patrones a medir y ajustar los valores.Algunos equipos no permiten calibración por lo cual se debe hacer solamente un control.Enjuagar bien y proceder de la misma manera con las muestras.

Expresión de los resultados:

CONDUCTIVIDAD (S/CM) REDONDEO

1 10 100

0,01 0,1 1

Observación: La exposición de la muestra al aire atmosférico, puede causar cambios en la conductividad, debido a pérdida o ganancia de gases disueltos, en especial el CO2. Esto es especialmente importante para aguas de alta pureza, con concentraciones bajas de gases y sustancias ionizables.

ACTIVIDADES


Muestreo y determinación de parámetros “in situ”Cada grupo procederá a la elaboración de un plan de muestreo en el que se establezcan: 1. Puntos de muestreo. (Elegir los puntos de muestreo con ayuda de su profesor). 2. Determinación de los parámetros a ser analizados 3. Determinar la cantidad de muestra necesaria para realizar los parámetros por triplicado 4. Preparar los envases (rótulos, conservantes) y planillas necesarias.5. Realizar el muestreo de los puntos seleccionados y realizar la cadena de custodia.6. Preservación de muestra y transporte.7.Cada grupo determinará los parámetros fisicoquímicos in-situ de las muestras.8.Elaborararán un informe con los resultados obtenidos y las conclusiones.

CUESTIONARIO

1. Explicar los pasos en la toma de muestra para análisis microbiológico de un grifo. 2. ¿Cuál es el objetivo del muestreo? 3. ¿Qué es una cadena de custodia? 4. ¿Qué consideraciones se deben tener durante el muestreo?.5. ¿Luego de tomada la muestra, cuánto tiempo puede pasar antes de realizar el análisis?6. ¿Qué entiende por calidad del agua?7. ¿Qué importancia tiene la realización de los parámetros fisicoquímicos in–situ? 8. ¿Cómo se mide la turbidez?9. ¿Qué significan los términos “color real” y “color aparente”?10. ¿Con que objetivo se mide la conductividad eléctrica?

INFORMERealizar un informe del trabajo de laboratorio. Incluir el cuestionario con las respuestas.

Título y Número del Trabajo de Laboratorio. Nombre y Apellido de los integrantes. Introducción (breve descripción de lo realizado en el laboratorio). Materiales y resultados. Incluir la cadena de custodia. Conclusiones (Describir si tuvieron alguna dificultad). Referencias Bibliográficas (si fuese necesario).

BIBLIOGRAFÍA


1. Standard Methods for the Examination of Water of Wastewater. Seventeenth Edition. APHA. AWWA. WPCF. Ed. 17ª. Editorial Diaz de Santos. 1992.

2. Guías para la Calidad del Agua Potable. Volumen 2 Organización Panamericana de la Salud. 1987.

3. CETUA: Centro De Tecnología de Uso del Agua dependiente del Instituto Nacional del Agua.

4. Guía operativa GEMS/AGUA. Tercera edición. GEMS/W. 94.1


ANEXO 1

Planilla de custodia

PLANILLA CUSTODIA MUESTREO: Fecha

Responsable toma de muestra:Responsable del transporte:

Muestra PrecintoParámetros

Observaciones

HORA Toma de muestra

Inicio: Nombre DNI FirmaFinal:

HORA Recepción

Inicio: Nombre DNI FirmaFinal:

………………………………………………………………………………………………Modelo de Etiquetas

ANEXO 2

INFORME

UNIVERSIDAD NACIONAL DE MISIONESFACULTAD DE CIENCIAS EXACTAS QUIMICAS Y NATURALES

Universidad Nacional de MisionesFacultad de Ciencias Exactas, Químicas y Naturales

Solicitante: Muestra: Determinación: Conservante: Procedencia:

Universidad Nacional de MisionesFacultad de Ciencias Exactas, Químicas y Naturales

Solicitante: Muestra: Determinación: Conservante: Procedencia:


DETERMINACIÓN DE PARÁMETROS FISICO-QUÍMICOS IN SITU

Grupo N°: …………Alumnos:…………………………………………………………………………………….…

Introducción:………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….………………………………………………………………………

Tipo de muestra: …………………………………………………………………………………….……………..

RESULTADOSPARAMETROS FISICOS1) Determinación de Color y Turbidez

MUESTRA DILUCIÓN UC NTU OBSERVACIONES

PARAMETROS QUÍMICOS1) Determinación de pH y Conductividad

MUESTRA pHCONDUCTIVIDAD

TEMPERATURA

Discusión:………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….………………………………………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………


ANEXO 2

MonitoreoVariables analizadas Importancia

Las partículas en suspensión afectan la claridad del agua y la penetración de la luz, la temperatura, los componentes disueltos, la absorción de sust. Total de sólidos tóxicas. Revisten importancia para el control de los procesos biológicos y en suspensión físicos del tratamiento de aguas residuales y para evaluar el cumpliento de las pautas impuestas por las agencias de regulación. La temperatura del agua es importante en relación con la vida de los peces. Temperatura Además influye en el sabor del agua potable, y es importante en relación con el uso del agua para baño y riego agrícola. La concentración de los iones hidrógeno es un factor principal en las reacciones

Calidad químicas asociadas a la formación, alteración y disolución de minerales. El pHgeneral pH afecta los procesos de transformación entre las diversas formas de nutrientes ydel agua metales e influye en la toxicidad de los contaminantes formados por ácidos y

bases debido a los efectos que ejerce la ionización en estos compuestos. Con la conductividad se puede evaluar las variaciones en el contenido de Conductividad minerales disueltos en el agua, se puede determinar el grado de mineralización eléctrica y su efecto en el equilibrio químico, en la fisiología de las plantas y animales, en los niveles de corrosión, etc. La concentración de oxígeno disuelto es importante para evaluar la calidad del agua superficial y para controlar el proceso de tratamiento de residuos. Es Oxígeno disuelto esencial para la respiración aeróbica y es un indicador de la actividad biológica (fotosíntesis) en una masa de agua. Una menor penetración de la luz reducirá la fotosíntesis y tendrá un efecto

Transparencia directo en la producción biológica que se produce en la masa de agua; además puede afectar la detección de alimentos para los peces, las migraciones de zooplancton y la reproducción de invertebrados bénticos. Calcio El calcio aporta dureza al agua, y en presencia de alcalinidad o sulfato, puede producir incrustaciones en calderas. El carbonato de calcio protege las cañerías. Magnesio Imparte dureza al agua. Es importante conocer su concentración para determinar su adecuación para el Sodio riego o para alimentación de calderas, además de controlarlo por la ingesta en agua potable por su relación con personas que sufren hipertensión. Potasio No tiene importancia directa, excepto como componente de SDT.

Sales disueltas Un alto contenido de cloruro puede indicar que hay contaminación por desagües

Cloruro cloacales o residuos industriales o por intrusión de agua de mar u otro tipo de agua salina. Además tiene efectos negativos en cañerías, estructuras metálicas. Se agrega al agua potable para prevenir las caries dentales, pero con estricto Fluoruro control. Se lo emplea en algunos procesos industriales, por consiguiente se lo puede encontrar en aguas residuales. (Industria de coque, vidrio, cerámica, etc) Sulfato Ejerce una acción catártica en presencia de iones magnesio y sodio. Alcalinidad Es útil para el dosaje de los productos químicos requeridos para el tratamiento del agua potable y de aguas residuales.


Monitoreo Variables Importancia Nitrato Su determinación ayuda a controlar el carácter y grado de oxidación en agua, en procesos biológicos y en el tratamiento avanzado de aguas residuales. Nitrito Su presencia indica polución, con la consecuente aparición de patógenos. Amoníaco La presencia de amoníaco libre es tóxico para los peces, se considera como una prueba química de contaminación reciente y peligrosa. Nitrógeno total y El nitrógeno orgánico se calcula como la diferencia entre el nitrógeno Kjeldhal

Nutrientes orgánico total y el amoníaco libre. En las aguas en que el fósforo es un nutriente, estimula el crecimiento de micro Fósforo total y macro-organismos acuáticos fotosintéticos en cantidades indeseables. Los fosfatos condensados no están disponibles para la captación biológica hasta que hayan sido hidrolizados en ortofosfatos por las bacterias.

Carbono orgánico El carbono orgánico en las aguas superficiales es inferior a 10 mg/l, excepto donde hay una alta concentración de desechos municipales e ind.

Materia DBOSe usa como una medida aproximada de la cantidad de materia orgánica bioquímicamente degradable en una muestra.

Orgánica DQO Se usa como una medida del oxígeno equivalente del contenido de materia orgáni- ca de una muestra que es susceptible de ser oxidada por un oxidante químico fte. Clorofila a Para estimar la biomasa de fitoplancton se usa la concentración de pigmentos fotosintéticos. Aluminio En aguas tratadas puede aparecer como un residual de la coagulación con SO4Al. Arsénico Es venenoso y tóxico en bajas concentraciones. La ingesta de grandes cantidades de boro puede afectar el SNC, y en bajas Boro concentraciones en el agua de riego puede afectar los productos agrícolas como cítricos, nueces y porotos. El cadmio es tóxico para el hombre, los órganos reproductores pueden verse Cadmio afectados por dosis muy pequeñas, que se concentra en los riñones. Además hay peces y ciertos invertebrados que son sensibles a niveles bajos de Cd. El cobre es un elemento traza esencial para la nutrición de plantas y animales, Contaminantes Cobre incluso el hombre. Es necesario para el funcionamiento de varias enzimas y para

Inorgánicos la biosíntesis de la clorofila. El Cu en el suministro público de agua incrementa la corrosión de los artefactos sanitarios de hierro galvanizado y de acero. La formación de óxido férrico hidratado hace que las aguas cargadas de hierro Hierro tengan un sabor, coloración y olor desagradables. El precipitado férrico deja una mancha naranja en cualquier superficie que se deposite. Plomo El plomo es tóxico para los organismos acuáticos.

A niveles superiores a 0,15 mg/l, el Mn en el agua mancha los artefactos sanitarios

Manganeso y la ropa. A mayores concentraciones produce un sabor desagradable en las bebidas. Mercurio Es importante tener en cta. la acumulación biológica en los tejidos. El zinc es un elemento esencial para la nutrición del hombre. En algunas especies Zinc acuáticas es tóxico. Y en el agua potable en concentraciones superior a 5 mg/l tiene un gusto astringente desagradable, es opalecescente y forma una película grasa al hervir. Pueden interferir con los procesos biológicos aeróbicos y anaeróbicos. Cuando Hidrocarburos totales se descargan en aguas residuales o efluentes tratados, puedenContaminan. producir películas superficiales y depósitos a lo largo de la costa, dando lugarOrgánicos a la degradación ambiental. Fenoles La cloración de puede producir clorofenol de olor desagradable.


ANEXO 3

PARAMETROS DEFINICIÓN EFECTO

Turbiedad

Es la dificultad del agua para transmitir la luz debido a materiales insolubles en suspensión, coloidales o muy finos e incluso microorganismos, que se presentan principalmente en aguas superficiales.

El aporte al agua de altas concentraciones de sólidos en suspensión, coloidales o finos, aumenta la turbiedad, se disminuye la transparencia, impidiendo la penetración de la luz, disminuyendo la incorporación del oxígeno disuelto por la fotosíntesis, afectando la calidad y productividad de los ecosistemas.

Conductividad

Es la medida de la capacidad del agua para conducir la electricidad. Es indicativa de la presencia de iones. Proviene de una base, un ácido o una sal, disociadas en iones.

La conductividad y la dureza son dos parámetros cuyos valores están relacionados y reflejan el grado de mineralización de las aguas y su productividad potencial. Un aumento en la conductividad de las aguas naturales afecta la productividad de los ecosistemas.

pH

El pH expresa la intensidad de la condición ácida o alcalina de una solución. El pH del agua natural se debe a la composición de los terrenos atravesados, el pH alcalino indica que los suelos son calizos y el pH ácido que son silicios.

Los vertidos de pH ácidos, (pH <6) en corrientes de agua con baja alcalinidad ocasionan disminuciones del pH del agua por debajo de los valores de tolerancia de las especies acuáticas (pH entre 5 y 9) además de que disuelve los metales pesados y el pH alcalino los precipitan.

Temperatura

La temperatura determina la evolución o tendencia de las propiedades físicas, químicas o biológicas.

El aumento de la temperatura, aumenta la solubilidad de las sales, ocasionando cambios de la conductividad y el pH.Es importante en relación a la vida de los peces, con el uso para baño y riego.


TRABAJO DE LABORATORIO Nº2

DETERMINACIÓN DE COMPUESTOS

ORGÁNICOS E INORGÁNICOS

Profesor Responsable Cátedra: Mgter.Ing. Carlos Jejer.Auxiliar: Lic. Carla Silva.


INTRODUCCIÓNEl estado de una masa de agua natural viene dado por su estado ecológico y su estado

químico. El estado ecológico es una expresión de la calidad de la estructura y el funcionamiento de los ecosistemas acuáticos en relación a las condiciones de referencia. El estado químico es una expresión de la calidad de las aguas que refleja el grado de cumplimiento de las normas de calidad ambiental en cuanto a las sustancias químicas.

OBJETIVOSAdquirir destreza en el manejo de algunas técnicas representativas de los distintos compuestos orgánicos e inorgánicos que pueden estar presentes en una muestra y que deben ser analizadas para asegurar la calidad del agua de acuerdo al uso que se le dará.

ACTIVIDADES Cada grupo determinará los parámetros fisicoquímicos a las muestras asignadas por el

docente. Realizaran un informe con los resultados obtenidos y las conclusiones.

COMPUESTOS INORGÁNICOSa) Determinación de Nitrógeno de Nitrito

Las formas de nitrógeno de mayor interés en las aguas naturales y residuales son, por orden decreciente de su estado de oxidación, nitrato, nitrito, amoníaco y nitrógeno orgánico. Todas esas formas del nitrógeno son interconvertibles bioquímicamente y forman parte del ciclo del nitrógeno. El nitrito es un estado intermedio de la oxidación del nitrógeno, tanto en la oxidación del amoníaco a nitrato como en la reducción del nitrato. El nitrito puede pasar al sistema de suministro de agua debido a su uso como inhibidor de la corrosión en el agua para procesos industriales. El nitrito es el agente causal real de la metahemoglobinemia. El ácido nitroso, formado a partir del nitrito en soluciones ácidas, puede reaccionar con aminas secundarias dando lugar a nitrosaminas, muchas de las cuales son agentes carcinógenos.

Método: Método colorimétrico. SM 4500 – BFundamento: El nitrito se determina por la formación de un colorante azo púrpura rojizo, producido a pH 2 a 2,5 por acoplamiento de sulfanilamida con N-(1-naftil)-etilendiamina bicloruro. El sistema de color obedece la ley de Beer hasta 180 µg N/lt con cubeta de 10 cm de recorrido de luz a 543 nm. Para concentraciones mayores se utiliza dilución de la muestra.

Equipos y materiales:1. Espectrofotómetro (543 nm). 2. Cubetas de recorrido de luz de 10 cm.3. Tubos nessler de 50 ml y 100 ml.4. Filtros de membrana de 0,45 µm.5. Portafiltro.6. Kitasato.7. Bomba de vacío.8. Pipetas


Procedimiento1. Eliminar los sólidos en suspensión filtrando a través de un filtro de membrana de 0,45 µm

de diámetro de poro y llevar a un tubo nessler de 50 ml. 2. Si el pH de la muestra no estuviera comprendido entre 5 y 9, ajustar a ese valor con HCl 1 N

o NH4OH según convenga. 3. Añadir 1 ml de solución de sulfanilamida, dejar reaccionar de 2-8 minutos, agregar 1 ml de

solución de N-1-Naftil etilendiamina dicloruro, mezclar y dejar reposar 10 minutos.4. Medir la absorbancia a 543 nm con cubetas de paso de luz de 10 cm. Realizar la lectura

después de los 10 minutos y antes de 2 horas de agregado los reactivos.5. Preparar siempre un blanco de reactivos con agua destilada.

Cálculo de la cantidad de nitrito:

mg N-NO2/lt = µg leídos en el espectro ml de muestra

Expresión del resultado:Los resultados expresados en mg/lt se recomienda informarlos como sigue:

mg N/ltRedondeo

< 0,1000,10 – 1,00

>1,0

0,0010,010,1

Límite de detección: 0,001 mg/ltObservación: La concentración de nitrito en las muestras recolectadas puede cambiar muy rápidamente debido a conversiones bacterianas oxidantes o reductoras, por lo que se recomienda hacer el análisis antes de que pase 24 hs desde la toma de la muestra.

b) Determinación de alcalinidad La alcalinidad del agua es su capacidad para neutralizar ácidos y constituye la suma de todas

las bases titulables. En aguas naturales la alcalinidad es casi siempre debida a Bicarbonatos y en algunos casos a Carbonatos y Bicarbonatos. La determinación se realiza por titulación con un ácido mineral fuerte. Las determinaciones de alcalinidad se utilizan en la interpretación y control de los procesos de tratamiento de aguas limpias y residuales.

Método: Titulación SM 2320-B Fundamento: Los iones hidroxilos presentes en una muestra, se deben a la disociación o hidrólisis de los solutos y reaccionan con las adiciones sucesivas de ácido estándar, por lo tanto, la alcalinidad depende del pH del punto final utilizado.


La valoración se realiza hasta los puntos sucesivos de equivalencia del bicarbonato y ácido carbónico, por medio de los indicadores: fenolftaleína para el primer punto (pH 8,3) y verde de bromocresol para el segundo (pH 4,5).

Equipos y materiales:1. Bureta2. Erlenmeyers 3. Pipetas 4. Probetas.

Procedimiento:1. Tomar 100 ml de muestra a temperatura ambiente, determinar el pH. Si el pH es mayor a

8,3 agregar 3 gotas de fenolftaleína (color rosado) y titular con el ácido normalizado hasta el viraje a incoloro, registrar la cantidad de ácido gastado.

2. A la misma porción de muestra se le agregan 3 gotas de verde de bromocresol (color azul) y titular hasta viraje a color verde oliva, registrar los ml gastados.

Cálculos:1. Alcalinidad a la fenolftaleina:

Se toman los ml de ácido gastado hasta producir la decoloración de la fenolftaleína o llegar a pH 8,3.

mg CO3Ca/l = A x N x 50 x 1.000ml muestra

A: ml de ácido estándar.N: normalidad del ácido.

2. Alcalinidad Total: Se toman el total de ml gastados hasta el viraje del indicador verde de bromocresol (de azul a verde oliva), y se aplica la misma fórmula

mg CO3Ca/l = A x N x 50 x 1.000ml muestra

A: ml de ácido estándar.N: normalidad del ácido.Expresión del resultado:En los resultados expresados en mg/L se recomienda informarlos como sigue:

mg/LREDONDEO

<10,010,0 – 99,0

>99

0,010,11


Observación: La alcalinidad debe determinarse dentro de las 24 hs.

COMPUESTOS ORGÁNICOS1) Determinación de demanda bioquímica de oxígeno

La determinación de la DBO es una prueba empírica en la que se utilizan procedimientos estandarizados de laboratorio para determinar los requerimientos relativos de oxígeno de las aguas residuales y efluentes. La prueba mide el oxígeno utilizado, durante un período de incubación especificado, para la degradación bioquímica de materia orgánica e inorgánica.

Método: Prueba de DBO de 5 días. SM 5210 – BFundamento: El método consiste en llenar con muestra hasta rebosar, un frasco hermético de tamaño especificado, e incubarlo a temperatura de 20 ºC durante 5 días. El OD se mide antes y después de la incubación.

Equipos y materiales:1. Incubador de aire o Baño de agua. (Controlado por termostato a 20 ±1 ºC)2. Botellas de incubación3. Pipetas 4. Matraces5. Probetas6. Erlemeyers7. Bureta8. Dispositivo para sifón9. Bidón 10 a 20 L

Procedimiento1. Preparación del agua de dilución: (ADR): agregar 10 ml por cada 10 litros de agua de las

soluciones 1,2,3 y 12,5 ml de la solución 4. Mezclar y en caso necesario mantener a 20°C hasta el momento de utilizarla.

2. Siembra del ADR en caso necesario (por ejemplo para muestras tratadas con Hipoclorito de Sodio o altas temperaturas). Como simiente puede usarse un efluente de un sistema de tratamiento biológico o sobrenadante de agua residual domestica (1 ml por litro de ADR) o agua de río (10 ml por litro de ADR).

3. Neutralizar las muestras (pH 6,5 - 7,5) de ser necesario.4. Inhibir la nitrificación cuando sea necesario, agregando el inhibidor a cada frasco o al

agua de dilución de manera de obtener una concentración final de 10 mg/l.5. Realizar las diluciones en probetas o matraces de 1 - 2 L, usando agua de dilución para

llevar a volumen y luego llenar 2 frascos de D.B.O. por sifón, o preparar las mismas directamente en frascos de D.B.O.

6. Determinar el OD inicial de todas las diluciones y del ADR. 7. Incubar durante 5 días a 20 °C, en oscuridad.8. Determinar el OD final después de la incubación.


Cálculo de la DBO:Para ADR sin simiente:

D.B.O5 (mg/l) = D1 - D2 x 100 P

Para ADR con simiente:

D.B.O5 (mg/l) = [(D1 - D2) - (B1 - B2).f] x 100 P

D1 = OD de la muestra antes de la incubación-D2 = OD de la muestra después de la incubación-P = Dilución utilizadaB1 = OD del control de simiente antes de la incubaciónB2 = OD del control de simiente después de la incubaciónf = % de simiente en muestra diluída / % de simiente en el control de simiente

Expresión del resultado: En los resultados expresados en mg/L se recomienda informarlos como sigue:

mgO2/LREDONDEO

<10,010 - 100

>100

0,1110

2) Determinación de demanda química de oxígeno Es un parámetro que mide la cantidad de sustancias susceptibles de ser oxidadas por medios

químicos. Es una medida aproximada del total de materia orgánica presente en una muestra.

Método: Reflujo abierto. SM 5220 – B

Fundamento: Se somete a reflujo una muestra en solución ácida con exceso conocido de dicromato de potasio, usando ión plata como catalizador, por un período de tiempo determinado. Después de la digestión el dicromato no reducido que quede se determina con sulfato amonio ferroso. Se expresa como el oxígeno equivalente al contenido de materia orgánica en mg/l.

Procedimiento para muestras de efluente:1. Agregar 10 ml de muestra al erlenmeyer de 500 ml.2. Añadir 5 ml de solución de dicromato de potasio 0,25 N.3. Añadir 15 ml del reactivo sulfúrico y mezclar el contenido del matraz, luego conectar al

refrigerante.


4. Cubrir el extremo abierto del refrigerante con una pequeña cubeta para evitar la entrada de material extraño a la mezcla de reflujo, encender el calefactor y abrir el grifo de agua fría para refrigerar el sistema, calentar por 2 horas.

5. Después apague el calefactor y luego de 5 min. Agregar 80 ml de agua destilada a través del refrigerante.

6. Retirar el erlenmeyer enfriándolo hasta temperatura ambiente para iniciar la titulación.7. Agregar 2 o 3 gotas de indicador ferroína, tomar como punto final de la titulación el primer

cambio de color desde el azul verdoso al marrón rojizo.8. De la misma manera someter a reflujo y titular un blanco que contenga los reactivos y un

volumen de agua destilada igual que la muestra.

Cálculo de la DQO

D.Q.O (mg O2/l) = [(A - B) x N x 8000] ml de muestra

A = ml de SAF utilizados para el blanco B = ml de SAF utilizados en la muestraN = normalidad del SAF

CUESTIONARIO1. ¿Qué finalidad tiene determinar la DBO en las muestras de agua?2. ¿Por qué se determina la DBO a los 5 días?3. ¿En qué casos es necesario realizar una siembra en las muestras para la determinación de la

DBO? 4. ¿Qué finalidad tiene determinar la DQO en las muestras de agua?5. ¿Qué relación existe entre los parámetros DBO y DQO?6. ¿Qué diferencia existe entre la alcalinidad total y la alcalinidad a la fenolftaleína?7. ¿Qué normativas se utilizan para calificar la calidad del agua?

INFORMERealizar un informe del trabajo de laboratorio. Incluir el cuestionario con las respuestas.

Título y Número del Trabajo de Laboratorio. Nombre y Apellido de los integrantes. Introducción (breve descripción de lo realizado en el laboratorio). Resultados. Conclusiones. Referencias Bibliográficas (si fuese necesario).

BIBLIOGRAFÍA 1. Standard Methods for the Examination of Water of Wastewater. Seventeenth Edition.

APHA. AWWA. WPCF. Ed. 17ª. Editorial Diaz de Santos. 1992.2. CETUA: Centro De Tecnología de Uso del Agua dependiente del Instituto Nacional del

Agua.3. Guía operativa GEMS/AGUA. Tercera edición. GEMS/W. 94.1


INFORME DETERMINACIÓN DE COMPUESTOS ORGÁNICOS E INORGÁNICOS

Grupo N°: …………Alumnos:…………………………………………………………………………………….…

Introducción:………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….………………………………………………………………………

Tipo de muestra: …………………………………………………………………………………….…

RESULTADOS

COMPUESTOS INORGÁNICOSa) Determinación de Nitrógeno de Nitrito

Muestra Nº Dilución Lectura mg N-NO2/lt

b) Determinación de alcalinidad

Muestra Erlml de

muestraml SO4H2 0,02N

Fenolftaleina TotalAlcalinidad

FenolftaleinaAlcalinidad total

Discusión:………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………


………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………


ANEXO

PARAMETROS INFORMACIÓN EFECTO

Carbonatos y Bicarbonatos

Las sales que corresponden a carbonatos y bicarbonatos contribuyen a la alcalinidad del agua, que es una medida de la capacidad para neutralizar ácidos.

Los carbonatos y bicarbonatos favorecen la capacidad de la corriente de agua a neutralizar los ácidos. Estos iones, también son causantes de la dureza del agua, ocasiona incrustaciones, altas concentraciones de dureza en el agua, limita su uso para el consumo humano e industrial.

Compuestos del Nitrógeno

El nitrógeno se encuentra en el agua como gas disuelto, combinaciones orgánicas e inorgánicas. El nitrógeno inorgánico no gaseoso se halla en forma de nitratos, nitritos y amonio. La presencia de nitritos se debe a contaminación reciente, aunque haya desaparecido el amoníaco.

La presencia de nitritos limita el uso del agua para consumo humano, su presencia indica polución, con la consecuente aparición de organismos patógenos.La presencia de amoníaco libre o ion amonio (NH4

+) se considera como una prueba química de contaminación reciente y peligrosa, las aguas superficiales aireadas no deben contener amoníaco.Los nitratos pueden provenir de oxidación bacteriana de la materia orgánica, principalmente de la eliminada por animales. El aumento en la concentración de nitratos limita el uso del agua para consumo humano.

Demanda Bioquímica de

Oxígeno

La DBO es una prueba que mide la cantidad de oxígeno consumido en la degradación bioquímica de la materia orgánica mediante procesos biológicos aerobios

El aumento de la DBO, al igual que la DQO ocasiona disminución del oxígeno disuelto, afectando la vida acuática. Valores de DBO mayores de 6 ppm indican alta contaminación.

Demanda Química de Oxígeno

La DQO es la cantidad de oxígeno consumida por las materias existentes en el agua, oxidables en unas condiciones determinadas. Es la medida del material oxidable, cualquiera sea su origen, biodegradable y no biodegradable.

El vertido de aguas residuales domésticas o industriales incrementa el contenido de materia orgánica en el agua, aumentando la DQO con la consecuente disminución del oxígeno disuelto.


TRABAJO DE LABORATORIO N°3

CALIDAD BACTERIOLOGICA DEL AGUA

Profesor Responsable Cátedra: Mgter.Ing. Carlos Jejer.Auxiliar: Mgter. Jeannette Baumann.


INTRODUCCIÓNLa calidad del agua para consumo humano tiene una fuerte incidencia en la salud de las

personas, ya que el agua sirve como vehículo de transmisión de muchos microorganismos de origen intestinal. El riesgo de contraer enfermedades transmitidas por el agua aumenta con el grado de presencia de microorganismos patógenos. Sin embargo, la relación no necesariamente es simple y depende de otros factores tales como la dosis infecciosa y la susceptibilidad del huésped.

Entre los agentes patógenos de mayor representatividad y que pueden estar presentes en el agua, se tiene a las bacterias, virus y, en menor cuantía, a los protozoos y helmintos. Debido a la dificultad para determinar la presencia de todos los microorganismos patógenos implicados en los procesos de contaminación ambiental, se determinan indicadores de contaminación.

Una vez demostrada la presencia de grupos indicadores, se puede inferir que los patógenos se encuentran presentes en la misma concentración y que su comportamiento frente a diferentes factores como pH, temperatura, presencia de nutrientes, tiempo de retención hidráulica o sistemas de desinfección es similar a la del indicador

La vigilancia y control de la calidad del agua para consumo humano tiene como principal objetivo la detección, predicción y prevención de la contaminación del agua de bebida con el fin de minimizar la incidencia de enfermedades transmitidas por el agua.

OBJETIVOS*Adquirir los conocimientos necesarios para realizar las diferentes técnicas de análisis bacteriológicos*Conocer las distintas normativas que regulan la calidad bacteriológica del agua para los distintos usos del recurso

ACTIVIDADES Cada grupo traerá una muestra de agua y realizara los análisis bacteriológicos

correspondientes al tipo de muestra. Comparan con las normativas vigentes para establecer la aptitud de la misma según su uso. Realizaran un informe con los resultados obtenidos y las conclusiones.

PARAMETROS BACTERIOLOGICOS


a) Determinación de coliformesMétodo: Fermentación por tubos múltiples [SM 9221 D]

- Prueba presuntiva para coliformes totales:- Preparar tres series sucesivas de 3 tubos con caldo Mac Conkey. - En la primer serie agregar 10 ml de muestra y en las próximas series 5 ml con la dilución correspondiente.- Rotular las series con 10, 1 y 0,1 mL, o la dilución correspondiente- Agitar vigorosamente la muestra por lo menos 25 veces antes de tomar el volumen que se va a inocular, a efecto de homogeneizar.- Antes y después de realizar las inoculaciones, la boca de los tubos deberá ser flameada con objeto de evitar la contaminación.- Inocular con pipeta el volumen de muestra en la serie de tubos - Realizar la lectura a las 48 horas de incubación para observar si hay tubos positivos (producción de ácido y gas en la campana Durham)

Interpretación:- Si el total de tubos son negativos: el examen se da por terminado, reportando la ausencia de coliformes totales y fecales en la muestra analizada.- Todos aquellos tubos que den positivos se anotarán convenientemente y se procederá a realizar la prueba confirmatoria para coliformes totales y fecales.

- Prueba para coliformes fecales:- A partir de cada uno de los tubos que han resultado positivos en la prueba presuntiva, agitándolos previamente para homogeneizar, inocular con tres asadas tubos conteniendo caldo Mac Conkey estéril de simple concentración.- Incubar durante 48h a 45°C.- Después de la incubación observar la presencia de acidez y gas.

Cálculo y presentación de los resultadosDe acuerdo a los tubos positivos en las pruebas confirmatorias para Coliformes Totales y Fecales:- Establecer los códigos correspondientes para calcular por referencia en la tabla estadística correspondiente el NMP de Coliformes Totales y Fecales en 100 mL de agua.- Cuando se utilicen más de tres diluciones en series de diluciones decimales, solo se tomaran los resultados positivos de tres de ellas con la dilución más alta.- Cuando el NMP para combinaciones no aparecen en la tabla se debe calcular mediante la fórmula de Thomas:

En caso de que las combinaciones no se encuentren en la tabla, calcular mediante la siguiente fórmula:


Los resultados obtenidos se expresan de la siguiente manera:NMP DE COLIFORMES TOTALES: __________ / 100 mLNMP DE COLIFORMES FECALES: __________ / 100 mL

b) Determinación de Pseudomonas aeruginosas

Método cualitativo: [SM 9221 D]- Prueba presuntiva - Inocular una serie de cinco tubos con 10 ml de muestra en el medio líquido asparagina de doble concentración.- Incubar a 37 ºC durante 48 h. - Observar bajo luz ultravioleta en una habitación oscura. La producción de un pigmento verdoso fluorescente indica positividad del análisis.

-Prueba confirmatoria Confirmar el resultado positivo inoculando en agar cetrimide e incubar a 37 ºC.

- Pruebas bioquímicas mínimas1. Coloración de Gram: Bacilos Gram negativos 2. Agar hierro triple azúcar (TSI): alcalino/neutro3. Prueba de la oxidasa: positiva4. Movilidad: positiva5. Pigmentación: Observación bajo luz UV

Cálculo y presentación de los resultadosExpresar como ausencia o presencia de Pseudomonas aeruginosas

c) Recuento de bacterias mesófilas

Método: Placa fluida [SM - 9215 B]

Técnica 1. Agitar vigorosamente la muestra de agua, para homogeneizar.2. Utilizando pipeta estéril, tomar 1 mL de la muestra y verterlo en la placa petri estéril,

adecuadamente rotulada.3. Agregar el agar fundido sobre la placa de petri4. Antes de que el medio de cultivo solidifique homogeneizar cada placa mediante

movimientos de translación y rotación en una superficie plana aproximadamente durante 1 minuto evitando que se mojen la tapa y los costados de la placa.

5. Dejar reposar las placas el tiempo necesario para que solidifique el agar.


6. Una vez solidificado el agar en las placas, incubar en posición invertida con objeto de que el agua de condensación del agar no caiga sobre la superficie del cultivo. Las condiciones de incubación son: 37 °C durante 48 horas.

7. Transcurrido el tiempo de incubación contar las colonias que se han desarrollado en cada una de las placas, usando un cuenta colonias.

Cálculo y presentación de los resultadosLos resultados se expresan como Unidades Formadoras de Colonias por mililitro (UFC/mL)Si no se observan colonias en ninguna de las placas sembradas, el resultado se expresa como<1 UFC/mL.

Los resultados se expresan así:NUMERO DE BACTERIAS MESOFILAS TOTALES: ____ UFC/mL.

CUESTIONARIO

1. ¿Que determinaciones le haría a una muestra de agua proveniente de una perforación?2. ¿Para que se utiliza el tiosulfato de sodio y el EDTA en la toma de muestra de

coliformes? 3. ¿Por que no se determinan los microorganismos patógenos en los análisis de rutina?4. ¿Que grupo de bacterias se utilizan como indicadores de contaminación fecal? Y

porque?5. De acuerdo a la normatividad vigente, ¿Cuál es el límite máximo permisible para

bacterias mesófilas aerobias en agua potable?6. ¿Que nos indica la presencia de coliformes totales, coliformes fecales, Pseudomonas y

Bacterias mesófilas totales, en una muestra de agua?7. ¿Qué diferencia existe entre los coliformes totales y coliformes fecales?8. Si tiene que analizar el agua proveniente de un efluente ¿Que análisis recomendaría?

BIBLIOGRAFÍA1. Standard Methods for the Examination of Water of Wastewater. Seventeenth Edition.

APHA. AWWA. WPCF. Ed. 17ª. Editorial Diaz de Santos. 1992.2. Guías para la Calidad del Agua Potable. Volumen 2 Organización Panamericana de la

Salud. 1987. 3. CETUA: Centro De Tecnología de Uso del Agua dependiente del Instituto Nacional del

Agua.4. Guía operativa GEMS/AGUA. Tercera edición. GEMS/W. 94.1


INFORME CALIDAD BACTERIOLOGICA DEL AGUA

Grupo N°: …………Alumnos:…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….………

Tipo de muestra: …………………………………………………………………………………….…

Resultados:

Parámetros Nº tubos positivos

10ml 1ml 0,1mlColiformes totales

Coliformes fecales

Parámetros de control:

Parámetros Unidad Muestra

Coliformes totales NMP/100ml

Coliformes fecales NMP/100ml

Pseudomona aeruginosa Ausencia/Presencia en 100ml

Bacterias mesofilas totales UFC/ml

Discusión:………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….……………………………………………………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….……………………………………………………


ANEXO

Índice del NMP para una serie de tres diluciones y tres tubos por diluciónCombinación de tubos

positivoNMP/100 ml

Limites con 95 % de confiabilidad

Inferior Superior0 – 0 – 0 <30 – 0 – 1 3 <0,5 90 – 1 – 0 3 <0,5 13

1 – 0 – 0 4 <0,5 201 – 0 – 1 7 1 211 – 1 – 0 7 1 231 – 1 – 1 11 3 361 – 2 – 0 11 3 36

2 – 0 – 0 9 1 362 – 0 – 1 14 3 372 – 1 – 0 15 3 442 – 1 – 1 20 7 892 – 2 – 0 21 4 472 – 2 – 1 28 10 150

3 – 0 – 0 23 4 1203 – 0 – 1 39 7 1303 – 0 – 2 64 15 380

3 – 1 – 0 43 7 2103 – 1 – 1 75 14 2303 – 1 – 2 120 30 380

3 – 2 – 0 93 15 3803 – 2 – 1 150 30 4403 – 2 – 2 210 35 470

3 – 3 – 0 240 36 13003 – 3 – 1 460 71 24003 – 3 – 2 1100 150 48003 – 3 – 3 >2400


TRABAJO DE LABORATORIO Nº 4

CONTROL MICROBIOLOGICO AMBIENTAL

Profesor Responsable Cátedra: Mgter.Ing. Carlos Jejer.Jefe de Trabajos Prácticos: Mgter.Ing. Cecilia PuchalskiAuxiliar: Mgter. Jeannette Baumann


INTRODUCCIÓNEl aire contiene en suspensión diferentes tipos de microorganismos, especialmente bacterias

y hongos. La presencia de uno u otro tipo depende del origen, de la dirección e intensidad de las corrientes de aire y de la supervivencia del microorganismo.

La evaluación de la calidad microbiológica del ambiente nos indica la cantidad de microorganismos que están presentes en un área determinada. Mientras más limpia es un área, menor será el número de microorganismos presentes en el aire de la misma.

Los microorganismos generalmente no están flotando en el aire sino que se encuentran sobre partículas inertes, por ejemplo polvo, gotas de agua, etc. que le sirven como medio de transporte, y pueden encontrarse aislados o agregados. Algunas de estas partículas pueden depositarse sobre las superficies.

Las personas también son una fuente de contaminación, ya que liberan gran cantidad de partículas al moverse, toser, estornudar, por exfoliación de la piel, etc. Algunas de estas partículas llevan microorganismos que podrían contaminar el material con el que estamos trabajando.

Por lo anteriormente expuesto es necesario determinar la calidad microbiológica del aire, las superficies y los operarios.

OBJETIVOS*Comprender la importancia de realizar un monitoreo microbiológico ambiental.*Identificar los principales parámetros microbiológicos de calidad y la importancia de su determinación.*Reconocer y aplicar los distintos métodos de muestreos aplicados al ambiente.

ACTIVIDADESCada grupo realizara:

Un muestreo del aire mediante exposición estática en distintos ambientes de la facultad. Un hisopado de superficies de uso frecuente: celular, picaporte, mesada,etc. Un hisopado de manos Un muestreo de manos por Impacto sobre superficies solidas.

Realizaran un informe con los resultados obtenidos y las conclusiones.


PARAMETROS MICROBIOLOGICOS

1- ANALISIS DEL AIREMétodo: Exposición estáticaEste método permite cuantificar la microflora bacteriana y micótica presente en el ambiente en la zona definida.

PrincipioEl método se basa en la exposición estática de las placas durante 30 minutos. Luego se incuban a una temperatura adecuada y finalmente se efectúa el recuento de las colonias.

Materiales − Placas conteniendo los siguientes medios de cultivo: TSA (Tripteína soya agar) y HyL (hongos y levaduras).

Técnica- Abrir las placas en los lugares determinados y realizar la exposición durante 30 minutos.- Incubar las placas invertidas a 35 ºC durante 48 hs (aerobios mesófilos) y a 25 ºC durante 5 - 7 días (hongos y levaduras)

Calculo- Realizar el recuento de las placas individualmente para cada punto.- Expresar el resultado en UFC/placa.- Para tiempos de exposición superiores a 30 min. Realizar la corrección según la fórmula:

2-ANÁLISIS DE SUPERFICIES 2.1. Método: Hisopado

PrincipioEl método se basa en la recolección de muestras mediante hisopos, transfiriendo alícuotas a medios de cultivos específicos, incubación en estufas y observación para la verificación de crecimiento microbiano.

Materiales − Hisopo estéril.− Tubo con 10 ml de solución salina estéril.− Plantilla estéril con una abertura central 5x5cm− Cajas Petri conteniendo los siguientes medios de cultivo: TSA y HyL

Técnica


1) Humedecer el hisopo estéril en una solución con 10 ml de solución salina estéril y frotar varias veces sobre la superficie.2) Introducir de nuevo el hisopo en el tubo con solución salina estéril y dejar durante 15-30 minutos de manera que los microorganismos se liberen del algodón al medio líquido.3) Sembrar 1 ml de dicha solución en una placa con agar TSA (tripteina soya agar) para microorganismos aerobio mesófilos totales y en una placa con agar HyL (hongos y levaduras) para hongos y levaduras.4) Incubar las placas a 35 ºC durante 48 hs para bacterias y a 20ºC durante 7dias para hongos y levaduras.

Calculo- El número de colonias obtenidas (UFC) se multiplicará por el factor de dilución y por el volumen de solución diluyente utilizada en el muestreo (10 mL) - Expresar los resultados en UFC/25cm2.

2.2. MÉTODO: Impacto sobre superficies solidas

Procedimiento:1. Marcar tres sectores en el medio de cultivo:

a. PCA (para aislamiento de aerobios mesófilos totales)b. agar Mac Conkey (para aislamiento de Coliformes).

2. Sin lavarse las manos, presionar con un dedo en el 1° sector del medio de cultivo.2. Lavarse las manos con agua y jabón y tocar con el dedo en el 2º sector.3. Desinfectar el dedo con alcohol y tocar en el 3° sector.4. Incubar las placas durante 24-48 horas a 37 ºC.5. Observar el crecimiento de colonias características en cada medio de cultivo.


CUESTIONARIO

1. ¿Cuál es la importancia de realizar un control microbiologico ambiental?2. Describa las técnicas que se aplican a muestreos de superficies.3. Describa la técnica que se aplica a muestreos de aire.4. Explique el método de hisopado de manos. ¿Que desventajas presenta dicho método?5. Explique el método de la placa de contacto. ¿Que desventajas presenta dicho método?

BIBLIOGRAFIA

1. ISO-14644-1: 1999: Clasificación de la pureza del aire en salas limpias y ambientes controlados asociados.

2. ISO-14644-2: 2000: Especificaciones de prueba y control para demostrar el continuo cumplimiento de la norma ISO-14644-1

3. Norma NTP 203: Contaminantes biológicos: evaluación en ambientes laborales. Instituto Nacional de Seguridad e Higiene en el Trabajo. España.

4. Practical Mycology - Manual for Identification of Fungi, Sigurd Funder, Broggers Boktr. Forlag, Oslo, Norway, 1953.

5. Crow, S.A., Ahearn, D.G., Noble, J.A. Moyenuddin, M. and Price, D.L. 1994 Microbial ecology of buildings: Effects of fungi on indoor air quality. American Environmental Laboratory p.16-18.

6. Ref. Norma NTP 335. Calidad de aire interior: evaluación de la presencia de polen y espora fúngicas .Centro Nacional de Condiciones de Trabajo, Instituto de Seguridad e Higiene del Trabajo. España.

http://www.monografias.com/trabajos10/sehig/sehig.shtml

http://www.monografias.com/trabajos/fintrabajo/fintrabajo.shtml


INFORME DEL PRÁCTICOCONTROL MICROBIOLOGICO AMBIENTAL

Alumnos: ______________________________________________________________Fecha: ________________________________________________________________

RESULTADOS

Muestras de aire – Exposición estáticaÁrea evaluada: _________________________________________________________Tiempo de exposición de las placas: ________________________________________

Parámetro Unidades Muestra 1

Bacterias mesófilas totales UFC/placa

Hongos UFC/placa

Levaduras UFC/placa

Observaciones:________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Muestras de superficie – Hisopado Superficie evaluada: _____________________________________________________

Parámetro Unidades Muestra 1

Bacterias mesófilas totales UFC/25cm2.

Hongos UFC/25cm2.

Levaduras UFC/25cm2.

Observaciones: ____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________


Muestras de superficies –Impacto sobre superficies solidas Superficie evaluada: ____________________________________________________

Bacterias mesófilas totales

Muestra 1 Muestra 2 Muestra 3

Resultado esperado

Resultado obtenido

Bacterias Coliformes Muestra 1 Muestra 2 Muestra 3

Resultado esperado

Resultado obtenido

Observaciones: ______________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________

Discusión:………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………………….………………………………………………………………………………………………….………………………………………………………………………………………………….…………………………………………………………………………


TRABAJO DE LABORATORIO Nº5:

MEDICION DE RUIDOS

Profesor Responsable Cátedra: Mgter.Ing. Carlos Jejer.Jefe de Trabajos Prácticos: Mgter.Ing. Cecilia Puchalski.Auxiliar: Ing. Hernan, Traid; Mgter. Jeannette Baumann


INTRODUCCION

El ruido urbano (también denominado ruido ambiental, ruido residencial o ruido doméstico) se define como el ruido emitido por todas las fuentes a excepción de las áreas industriales. Las fuentes principales del ruido urbano son el tránsito automotor, ferroviario y aéreo, la construcción y obras públicas y el vecindario.

En las grandes ciudades de todo el mundo, la población está cada vez más expuesta al ruido urbano debido a las fuentes mencionadas y sus efectos sobre la salud se consideran un problema cada vez más importante.

La mayoría de ruidos ambientales puede describirse mediante medidas sencillas. Todas las medidas consideran la frecuencia del sonido, los niveles generales de presión sonora y la variación de esos niveles con el tiempo.

La mayor parte de sonidos ambientales está constituida por una mezcla compleja de frecuencias diferentes. Nuestros sistemas auditivos no perciben todas las frecuencias sonoras y, por ello, se usan diversos tipos de filtros o medidores de frecuencias para determinar las frecuencias que produce un ruido ambiental específico. La ponderación A es la más usada, ya que es la que mejor estima la respuesta de nuestro sistema auditivo a la frecuencia. La suma de la energía total durante un período tiempo da como resultado un nivel equivalente a la energía sonora promedio en ese período. Así, LAeq,T es el nivel equivalente de la energía promedio del sonido con ponderación A en un período T. Se debe usar LAeq,T para medir sonidos continuos, tales como el ruido del tránsito en carreteras o ruidos industriales más o menos continuos. Sin embargo, en sucesos distintivos, como son los ruidos de aviones o ferrocarriles, también se deben obtener medidas de sucesos individuales como el nivel máximo de ruido (LAmax) o el nivel de exposición al sonido (NES) con ponderación A. Cuando el ruido consta de un número pequeño de eventos discretos, el nivel máximo (LAmax) es el mejor indicador del trastorno del sueño y otras actividades. Sin embargo, en la mayoría de casos, el nivel de exposición al sonido con ponderación A (LAE) proporciona una medida más uniforme de los eventos individuales de ruido porque integra el evento de ruido completo. Estas medidas simples tienen limitaciones pero también muchas ventajas prácticas, incluida la economía y los beneficios de un enfoque estandarizado.

OBJETIVOS

Reforzar los conceptos relacionados con la contaminación por ruido, mediante la realización de mediciones de sonido en diferentes ambientes y la comparación de los resultados obtenidos con la legislación vigente.

ACTIVIDADES

• Realización de mediciones en ambiente urbano• Realización de mediciones en ambiente laboral simulado• Realización de mediciones de sonidos tipo impacto


Equipo y materiales

• Sonómetro TES 1358• Planilla de campo

Procedimiento:

• Se determina la posición en la cual se determinará el nivel de ruido.• Se verifica las condiciones del equipo adecuándolas a las necesidades operativas.• Se realizan las mediciones, asentando los valores en la planilla correspondiente.• Se completa el informe de medición mediante el análisis de los resultados obtenidos

comparando con la legislación vigente.

CUESTIONARIO

1. ¿Que diferencia hay entre ruido y sonido?2. ¿Como afecta el ruido a la salud de las personas?3. ¿Que entiende por decibel dB?4. Hasta que nivel de decibel es considerado no perjudicial para la salud, según las normativas?5. ¿Que ponderación es la que se utiliza con mayor frecuencia? Por que?6. ¿Que ponderación de tiempo se utilizan durante la medición? De ejemplos de casos en la

que utilizaría cada una.7. ¿Que se valora con el Leq Nivel equivalente?8. ¿Que ponderación de tiempo conviene utilizar para medir sonidos urbanos?9. ¿Que características de medición elegiría para realizar una medición en un ambiente laboral?

Ponderación de frecuencia, tiempo, banda de análisis.10. ¿Que características de medición elegiría para realizar una medición de ruido urbano?

BIBLIOGRAFIA

1. Medida y control del ruido. Pérez Ocho, J.M.; Bolaños, F. 1990.2. Ruido Industrial y Urbano. Rejano de la Rosa, M.2000.


INFORME DEL PRÁCTICO

MEDICION DE RUIDOS

Alumnos:………………………………………………………………………………

Fecha: :………………………………………………………………………………

RESULTADOS

1. Realización de mediciones en ambiente urbano

Equipo utilizado para mediciónEquipo 1 Equipo 2

Marca:Nro de Serie:Fecha de calibración:Observaciones:

Equipo utilizado para calibraciónEquipo 1 Equipo 2


Características de la medición:Banda utilizada:Ponderación:Velocidad de respuesta:Frecuencia de adquisición de datos:Tiempo de medición:Observaciones:


Descripción del lugar de medición:Imagen o esquema del lugar: *agregar foto en el anexoCaracterísticas generales del ambiente: Observaciones:

Resultados Equipo 1 Equipo 2Lmin

Lmax

Leq

LAE

2. Realización de mediciones en ambiente laboral simulado





Características de la medición:Banda utilizada:

Ponderación:

Velocidad de respuesta:

Frecuencia de adquisición de datos:

Tiempo de medición:


Observaciones:

Descripción del lugar de medición:Imagen o esquema del lugar: *agregar foto en el anexoCaracterísticas generales del ambiente:Observaciones:


Lmax

Leq

LAE

3. Realización de mediciones de sonido tipo impacto





Características de la medición:

Banda utilizada: *agregar foto en el anexoPonderación:

Velocidad de respuesta:


Frecuencia de adquisición de datos:

Tiempo de medición:

Observaciones:

Descripción del lugar de medición:Imagen o esquema del lugar:Características generales del ambiente:Observaciones:


Lmax

Leq

LAE


TRABAJO DE LABORATORIO Nº 6

DETERMINACIÓN DE LA TEXTURA DEL SUELO

Profesor Responsable Cátedra: Mgter.Ing. Carlos Jejer.Jefe de Trabajos Prácticos: Dra. Laura VeraAuxiliar: Lic. Carla Silva.


Año 2015

Asignatura: Introducción a la Ingeniería Ambiental Año: 2015

Introducción

Las propiedades físicas de los suelos, determinan los potenciales usos a los que el hombre los sujeta. La condición física de un suelo determina la rigidez y la facilidad para la penetración de las raíces, la aireación, la capacidad de drenaje y de almacenamiento de agua, la plasticidad, y la retención de nutrientes. El término textura se usa para representar la composición granulométrica del suelo. Cada termino textural corresponde con una determinada composición cuantitativa de arena, limo y arcilla. Un suelo tiene buena textura cuando la proporción de los elementos que la constituyen le dan la posibilidad de ser un soporte capaz de favorecer la fijación del sistema radicular de las plantas y su nutrición.

Fracción arcilla: En esta fracción se encuentran generalmente diversos minerales secundarios. Se caracteriza por adquirir plasticidad al ser mezclada con agua. Está formada principalmente por silicatos de aluminio y hierro.Fracción de limo: es una fracción mineral compuesta por partículas microscópicas, siendo el cuarzo el mineral dominante.Fracción de arena: Las partículas de arena son, casi siempre fragmentos de roca, sobre todo de cuarzo, existiendo además cantidades variables de otros minerales primarios. Los numerosos métodos de análisis están basados en el hecho de que la velocidad de caída de las partículas del suelo a través del agua aumenta con el diámetro de las mismas, se fundamenta en la Ley de Stokes para partículas sólidas que caen dentro de un fluido viscoso. La fórmula propuesta por Stokes para calcular la velocidad de sedimentación de las partículas es la siguiente:

V= (2/9)*r 2* g*( ρp - ρf )/ η

Donde V es la velocidad de sedimentación (cm/seg), r es el radio de las partículas (cm), g es la gravedad (cm/seg2), ρp y ρf son las densidades de las partículas sólidas y del fluido o agua, respectivamente (g/cm3), y η es la viscosidad del fluido (Poise).

Los métodos más utilizados para el análisis granulométrico que se fundamentan en la ley de Stokes son el método de la pipeta y del hidrómetro de Bouyoucos.

El método de pipeta requiere tratar la muestra de suelo con diferentes reactivos para eliminar los agentes cementantes y asegurar una máxima dispersión de las partículas.

El método Bouyoucos consiste en la medición de la densidad en una suspensión de suelo colocada en una probeta de sedimentación, la cual va disminuyendo a medida que las partículas sedimentan.Para determinar el tipo granulométrico o clase textural de un suelo, se recurre a varios métodos. Se utilizan cada vez más los diagramas triangulares, siendo el triángulo de referencia un triángulo equilátero. Cada uno de sus lados presenta un eje graduado de 10 en 10, en escala del 0 a100, sobre el cual se transporta la cantidad del elemento que representa; en general un lado del triángulo corresponde a la arcilla, el otro al limo, el tercero a la arena. Figura 1.

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Figura 1. Clasificación texturalSe utiliza el triángulo de la siguiente manera: cuando se dispone del análisis granulométrico de un suelo, su tenor en arcilla, en limo y en arena determina un punto que se sitúa en el triángulo, en el interior de una casilla, y que permite identificarlo asimilándolo a la clase textural representada por esa casilla por ejemplo, franco, arcillo arenoso, etc.

La textura posee una elevada influencia sobre las siguientes propiedades del suelo:1) Desde el punto de vista agronómico, la textura es importante por sus

consecuencias sobre los cultivos.a) Los suelos arenosos poseen: * una buena fertilidad física, poseen un alto

grado de aireación, alta permeabilidad y escasa retención de agua lo que permiten un rápido calentamiento del suelo, la plasticidad de los suelos arenosos es baja; *y una mala fertilidad química, son inertes y carecen de propiedades coloidales, sus reservas de nutrientes son pobres.

b) Los suelos limosos no son frecuentes, si la proporción de materia orgánica en el suelo es baja, la capacidad de intercambio catiónico del suelo y las reservas de nutrientes son poco importantes. Carecen de capacidad de agregación. Poseen cierta capacidad de retención de agua, pero al ser

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partículas finas son arrastradas por el agua depositándose en los poros, disminuyendo la aireación y permeabilidad.

c) Los suelos arcillosos son muy activos desde el punto de vista químico. Funcionan como reserva de nutrientes del suelo y poseen una gran capacidad de regulación del pH.

d) En los suelos francos por su estructura, se ven favorecidos los procesos físicos,químicos y biológicos del suelo. Propiedades agrologicas

2) La textura condiciona la erosión del suelo. Las partículas de arena son arrastradas por el viento y el agua, las arcillas se unen entre sí y se protegen mientras que los limosos no se unen y se erosionan fácilmente.

3) El comportamiento en cuanto a la amortiguación de la contaminación es muy distinto dependiendo de cada fracción. Las arenas son inertes mientras que las arcillas tienen un alto poder de amortiguación, pueden fijar y transformar a los contaminantes.

Cuadro 1. Propiedades del tipo de suelo

ObjetivoDeterminar el porcentaje de arena, limo y arcilla presente en varios tipos de suelos y determinar la clase textural.

Actividades

Equipos, materiales y reactivos: *Balanza,*Estufa de secado (105ºC),*Hidrómetro con escala Bouyoucos en g/L,*Tamíz con abertura de 2 mm, *Probetas de 1 L, *Erlenmeyer con tapa para agitación mecánica, *Cápsulas de porcelana, *Agitador manual, *Alcohol amílico, *Solución de hexametafosfato de sodio (HMF) 50 g/L.

A) Determinación de humedad1) Se toman aproximadamente 25 g de suelo.2) Se registra el peso en húmedo (Muestra-tara)3) Se seca el material a 105ºC hasta peso constante (peso seco).4) Se aplica la siguiente fórmula:

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B) Molienda y tamizado1)Se toman 40 g de suelo seco a 105°C y se coloca en un mortero.2)Se muele el suelo y se eliminan las partículas como grava y piedras a través de un tamiz de malla de 2mm.

C) Determinación de textura

1)Calibración del hidrómetro.- Adicionar 100 ml de la solución HMF a una probeta y aforar a 1 L en un cuarto de temperatura controlada. Mezclar vigorosamente con el agitador de plástico y tomar la temperatura. Introducir el hidrómetro en la solución y determinar RL leyendo la parte superior del menisco en la escala del hidrómetro. Los valores de calibración RL se utilizan en el análisis para corregir la viscosidad de la solución y para corregir la concentración del suelo en la suspensión 2.

2)Dispersión del suelo.- Pesar 40 g de suelo previamente tamizada y secada a 105ºC y colocar en un vaso de 600 ml, adicionar 250 ml de agua destilada, 100 ml de solución de HMF, y dejar que la muestra se remoje toda la noche. Transferir la muestra tratada con el dispersante a erlenmeyer y agite mecánicamente durante toda la noche en posición horizontal. Transferir la suspensión a una probeta de 1 L y adicionar agua destilada hasta la marca.

3)Lecturas con el hidrómetro.- Dar tiempo para que la suspensión se equilibre y tomar nota de la temperatura. Introducir el agitador manual a la probeta, y mezclar la suspensión vigorosamente pero con precaución, sujetando la probeta de la parte baja para prevenir que se caiga. Asegúrese de que se muevan las arenas de la parte inferior de la probeta, y agite durante 1 min. Adicionar unas gotas de alcohol amílico si la superficie de la suspensión está cubierta con espuma. Tan pronto haya terminado de agitar, introducir el hidrómetro en la suspensión y tomar una lectura después de 40 segundos. Sacar el hidrómetro, enjuagar y secar. Nuevamente, introducir el hidrómetro cuidadosamente 10 segundos antes de los 120 min. Anotar las lecturas (R) cada vez que las tome. Tomar una lectura del hidrómetro en la solución en blanco (no contiene suelo), y anotar la lectura como RL , además de la temperatura de la solución.

Cálculos:

100%=%arena+%Limos+%Arcilla

*Con la primera lectura del Hidrómetro y del termómetro (40 seg) se determina el porcentaje de las partículas en suspensión de Arcillas + Limos por lo tanto por diferencia se obtiene el porcentaje de las partículas de arenas.

% Ar + L= (R-RL)+/- Fc/peso suelo x 100

%arena= 100 – (% Ar + L)

*Con la segunda lectura del Hidrómetro y del termómetro (120 min) se determina el porcentaje de las partículas en suspensión de Arcilla.

% Ar=(R-RL)+Fc /peso suelo x 100

*Con el porcentaje de Arena y de Arcillas se determina el porcentaje de los Limos.

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%L= (% Ar + L) - % Ar

Fc= Factor corrección de temperatura (20ºC).

°F= (°C x 9/5) + 32

Fc= (°F – 67) x 0,2

4)Clase textural: Con los porcentajes calculados entrar al triangulo de la figura 1 para evaluar la clase textural del suelo.

Bibliografía*Adan Cano García. Manual de prácticas de la materia de edafología. Poder ejecutivo de Chiapas.*Freddy H. Sánchez. Reconocimientos de suelos. Universidad católica del Táchira. *ftp://ftp.fao.org/fi/CDrom/FAO_Training/FAO_Training/General/x6706s/x6706s06.htm#top*http://www.fagro.edu.uy/~edafologia/curso/Material%20de%20lectura/FISICAS/fisicas.pdf

Página 60

http://www.fagro.edu.uy/~edafologia/curso/Material%20de%20lectura/FISICAS/fisicas.pdf

http://www.fagro.edu.uy/~edafologia/curso/Material%20de%20lectura/FISICAS/fisicas.pdf

ftp://ftp.fao.org/fi/CDrom/FAO_Training/FAO_Training/General/x6706s/x6706s06.htm#top

ftp://ftp.fao.org/fi/CDrom/FAO_Training/FAO_Training/General/x6706s/x6706s06.htm#top


INFORME DEL PRÁCTICO DE TEXTURA

Alumnos:……………………………………………. Fecha:…………….. ……………………………………………...

……………………………………………... Muestra:……………..

Resultados

TEXTURA

MUESTRA

TIEMPO R (g/L)

RL(g/L)

TEMPERATURA(ºC) Fc

(R-RL) +/- Fc

Peso Suelo

(g)%

arena%Arcil

la%Lim

o

40 seg

120 min

Clase textural: ……………………………………

Discusión

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………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………

Ejemplo

TEXTURA

MUESTRA TIEMPO R (g/L) RL(g/L)T

(ºC) Fc(R-RL) +/- Fc

PesoSuelo

(g)%

arena %Arcilla %Limo

ClaseTextural

Arcilla40 seg 12 -1 23 +1,28 14,28

20 28,6 58,2 13,2

Arcilloso

120 min 10 0 24 +1,64 11,64

Arena40 seg 3 -1 24 +1,64 5,64

30 81,2 15,5 3,3Franco

arenoso120 min 3 0 24 +1,64 4,64

Tierra roja

40 seg 15 -1 24 +1,64 17,6430 41,2 42,1 16,7

Arcilloso

120min 11 0 24 +1,64 12,64

Tierra negra

40 seg 3 -1 24 +1,64 5,64 20 71,8 23,2 5

Fco.ArcillosoArenoso

120min 3 0 24 +1,64 4,64

Cálculos

*Fc °F= (23°C x 9/5) + 32 °F= (24°C x 9/5) + 32

Fc= (73,4 °F – 67) x 0,2 Fc= (75,2 °F – 67) x 0,2

Fc=+1,28 Fc=+1,64

*%Arena (40seg) % Ar + L= (R-RL)+/- Fc/peso suelo x 100…… %arena= 100 – (% Ar + L)

*%Arcilla (120 seg) % Ar=(R-RL)+Fc /peso suelo x 100

*%Limo %L= (% Ar + L) - % Ar

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Documents

Guías TP 2015