A UNIVERSIDAD DE GUAYAQUILPO FACULTAD DE ...repositorio.ug.edu.ec/bitstream/redug/32916/1/2018- 331...cantón Milagro, realizado entre los meses de marzo a julio del 2018, mediante

A

UNIVERSIDAD DE GUAYAQUILPO

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

TRABAJO DE TITULACIÓN

PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE:

MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA

TÍTULO

“PARÁSITOS GASTROINTESTINALES EN ROEDORES DE LA CIUDADELA

“LAS PIÑAS” DEL CANTÓN MILAGRO”

AUTORA

Antonella Estefanía Ramírez Tigrero

TUTOR

MVZ ROBERTO DARWIN COELLO PERALTA, MSc.

GUAYAQUIL, 4 DE SEPTIEMBRE 2018

UNIVERSIDAD DE GUAYAQUILPO


TRABAJO DE TITULACIÓN

PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE:

MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA

TÍTULO

“PARÁSITOS GASTROINTESTINALES EN ROEDORES DE LA CIUDADELA

“LAS PIÑAS” DEL CANTÓN MILAGRO”

AUTORA


TUTOR

MVZ ROBERTO DARWIN COELLO PERALTA, MSc.

GUAYAQUIL, 4 DE SEPTIEMBRE 2018


CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

UNIDAD DE TITULACIÓN

REPOSITORIO NACIONAL EN CIENCIA Y TECNOLOGÍA

FICHA DE REGISTRO DE TESIS TITULO Y SUBTITULO: PARÁSITOS GASTROINTESTINALES EN ROEDORES DE LA CIUDADELA

“LAS PIÑAS” DEL CANTÓN MILAGRO.

AUTOR: ANTONELLA

ESTEFANÍA RAMÍREZ TIGRERO.

REVISORES: MVZ Pedro Cedeño Mg. Sc.

Dra. Lidia Paredes Mg. Sc. Dr. Pablo Torres Mg. Sc.

INSTITUCIÓN:

UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL

FACULTAD:


CARRERA: MÉDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

FECHA DE PUBLICACIÓN: 4 DE SEPTIEMBRE - 2018

N. DE PAGS:

ÁREAS TEMÁTICAS: SALUD ANIMAL Y SALUD PÚBLICA

PALABRAS CLAVE: ROEDORES, PARASITOSIS, ZOONOTICOS.

RESUMEN:150/ 200 PALABRAS

Las parasitosis gastrointestinales en roedores son importantes en ambientes silvestres y como problemas en Salud pública, ya que algunos de estos parásitos pueden ser transmitidos al ser humano. El presente trabajo tuvo como objetivo: Identificar parásitos intestinales en roedores de la ciudadela “Las Piñas” del cantón Milagro, realizado entre los meses de marzo a julio del 2018, mediante un estudio Aplicado, con enfoque cualitativo, de tipo descriptivo-prospectivo-transversal. De un total de 47 roedores capturados y procesados, 31 roedores (65,96%) resultaron positivos para algún tipo de parásitos intestinales. Entre los parásitos determinados fueron de interés zoonóticos y no zoonóticos: Heterakis spumosa en 21 casos (44,68%), Strongyloides ratti en 7 casos (14,89), Nippostrongylus brasiliensis en 5 casos (10,64%), Heligmosomoides polygirus en 7 casos (14,89%), Hymenolepis nana o Rodentolepis fraterna en 10 casos (21,28%), e Himenolepis diminuta en 5 casos (10,64%). También, se describió los factores que favorecen para la presencia de roedores.

N. DE REGISTRO (en base de datos):

N. DE CLASIFICACIÓN:

DIRECCIÓN URL (tesis en la web):

ADJUNTO URL (tesis en la web):

ADJUNTO PDF: SI NO

CONTACTO CON AUTOR: Teléfono: 0981244191 E-mail: [email protected]

CONTACTO EN LA INSTITUCION: Universidad de Guayaquil

UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

Teléfono:04-211-9498

E-mail: [email protected]

x

X

mailto:[email protected]

ii




TRABAJO DE TITULACION

PREVIO A LA OBTENCION DEL TITULO DE:

MÉDICO VETERINARIO Y ZOOTECNISTA

Los miembros del tribunal de sustentación designados por la comisión

interna de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, damos por

aprobados la presente investigación con la nota de ______________

equivalente a _______________

_____________________________

Decana o delegado

___________________ _____________________

Tutor Revisor Docente del área de estudio

iii




Guayaquil, agosto 13 del 2018.

Sr. Dr.

Wilfrido López Salcedo Mg. Sc.

DIRECTOR DE LA CARRERA FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y

ZOOTECNIA DE LA UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL

Ciudad. -

De mis consideraciones:

Envío a Ud. el Informe correspondiente a la tutoría realizada al Trabajo de

Titulación: Parásitos gastrointestinales en roedores de la ciudadela Las Piñas del

cantón Milagro, de la estudiante Antonella Estefanía Ramírez Tigrero, indicando

que ha cumplido con todos los parámetros establecidos en la normativa vigente:

• El trabajo es el resultado de una investigación.

• El estudiante demuestra conocimiento profesional integral.

• El trabajo presenta una propuesta en el área de conocimiento.

• El nivel de argumentación es coherente con el campo de conocimiento.

Adicionalmente, se adjunta el certificado de porcentaje de similitud y la valoración

del trabajo de titulación con la respectiva calificación.

Dando por concluida esta tutoría de trabajo de titulación, CERTIFICO, para los

fines pertinentes, que el estudiante está apto para continuar con el proceso de

revisión final.

Atentamente,

MVZ Roberto Coello Peralta MSc.

C.I. 1204443137

iv




Guayaquil, agosto 10 del 2018

CERTIFICADO PORCENTAJE DE SIMILITUD

Habiendo sido nombrado MVZ Roberto Coello Peralta MSc, TUTOR DEL

TRABAJO DE TITULACIÓN, certifico que el trabajo de titulación ha sido

elaborado por Antonella Estefanía Ramírez Tigrero, con CC. 240019983-8, con

mi respectiva supervisión como requisito parcial para la obtención del título de

Médico Veterinario y Zootecnista.

Se informa que el trabajo de titulación “PARASITOS GASTROINTESTINALES

EN ROEDORES DE LA CIUDADELA LAS PIÑAS, DEL CANTÓN MILAGRO”,

ha sido orientado durante todo el período de la ejecución en el programa

antiplagio URKUND, quedando 5% de coincidencia.

MVZ Roberto Coello Peralta MSc.

C.I. 1204443137

v




CERTIFICACIÓN DE TUTOR REVISOR

Habiendo sido nombrado Dr. Pablo Torres Lasso Mg. Sc., tutor del trabajo de

titulación certifico que el presente proyecto ha sido elaborado por Antonella

Estefanía Ramírez Tigrero C.C: 240019983-8 con mi respectiva supervisión

como requerimiento parcial para la obtención del título de Médico Veterinario y

Zootecnista.

Título “PARÁSITOS GASTROINTESTINALES EN ROEDORES DE LA

CIUDADELA LAS PIÑAS DEL CANTÓN MILAGRO”

Certifico que he revisado y aprobado en todas sus partes, encontrándose apto

para su sustentación.

Atentamente

Dr. Pablo Torres Lasso Mg. Sc. DOCENTE TUTOR REVISOR C.I. 1706479993

vi




LICENCIA GRATUITA INTRANSFERIBLE Y NO EXCLUSIVA PARA EL USO

NO COMERCIAL DE LA OBRA CON FINES NO CADÉMICOS

Yo, ANTONELLA ESTEFANÍA RAMÍREZ TIGRERO con C.I. N° 240019983-8,

certifico que los contenidos desarrollados en este trabajo de titulación, cuyo título

es “PARÁSITOS GASTROINTESTINALES EN ROEDORES DE LA CIUDADELA

LAS PIÑAS DEL CANTÓN MILAGRO” son de mi absoluta propiedad y

responsabilidad y según el Art. 114 del CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA

SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E INNOVACIÓN*, autorizo

el uso de una licencia gratuita intransferible y no exclusiva para el uso no

comercial de la presente obra con fines no académicos, en favor de la

Universidad de Guayaquil, para que haga uso del mismo, como fuera pertinente

________________________


C.I. N° 240019983-8

*CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E INNOVACIÓN (Registro Oficial n. 899 -

Dic./2016) Artículo 114.- De los titulares de derechos de obras creadas en las instituciones de educación superior y centros

educativos.- En el caso de las obras creadas en centros educativos, universidades, escuelas politécnicas, institutos superiores

técnicos, tecnológicos, pedagógicos, de artes y los conservatorios superiores, e institutos públicos de investigación como

resultado de su actividad académica o de investigación tales como trabajos de titulación, proyectos de investigación o innovación,

artículos académicos, u otros análogos, sin perjuicio de que pueda existir relación de dependencia, la titularidad de los derechos

patrimoniales corresponderá a los autores. Sin embargo, el establecimiento tendrá una licencia gratuita, intransferible y no

exclusiva para el uso no comercial de la obra con fines académicos.

vii

DEDICATORIA

A Dios todo poderoso primero por darme la vida, salud y perseverancia e

iluminarme en el camino de mi vida.

A mis padres Pedro Abelardo Ramírez De La A y Silvia Gioconda Tigrero

Barzola, por todo el apoyo moral y económico dado durante toda mi vida.

A mis abuelos que fueron los que me inspiraron siempre a alcanzar mis

metas y a superarme, siendo esto la principal motivación para el progreso y éxito

de mi vida personal y profesional.

A mi enamorado Manuel Ernesto Bernstein Romero por brindarme su

apoyo incondicional, por permanecer a mi lado durante toda esta difícil etapa de

mi vida.

Y a mis mascotas Linda, Negro y Samara Valentina por acompañarme en

todo momento un amor puro sincero entrega total, los amo.

viii

AGRADECIMIENTO

A ti Padre Celestial tengo que agradecerte la vida, la salud y haber

puesto en mi vida a todas las personas que me apoyaron a lo largo de este

caminar; porque tu estuviste en cada una de ellas, haciéndome sentir tu

presencia y tu hombro cada día.

A mis padres, este es un logro que quiero compartir con ustedes, por

creer en mi por, su imborrable y completo apoyo durante mi trabajo de tesis.

A mis compañeros de curso: quienes compartieron su conocimiento,

alegrías y tristezas, quienes me ayudaron con un granito de arena a culminar un

triunfo más en mi vida profesional; ustedes siempre estarán en mi corazón; mi

gratitud eterna.

A mi enamorado, a quien le agradezco por su sacrificio, esfuerzo y

tiempo para ayudarme incontables veces en el proceso del Trabajo de Titulación,

quien estuvo a mi lado sin esperar nada a cambio siempre brindándome su

cariño y amor.

A la Universidad de Guayaquil, Facultad de Medicina Veterinaria y

profesores, por haberme formado y apoyado a lo largo de mi carrera, al DR.

MSc. Roberto Coello por su guía en la elaboración de este proyecto.

ix

TABLA DE CONTENIDO 1 INTRODUCCIÓN ........................................................................................ 1

1.1 Problema:............................................................................................. 2

1.2 Justificación ......................................................................................... 2

1.3 Objetivos: ............................................................................................. 2

1.3.1 Objetivo general: ........................................................................... 2

1.3.2 Objetivos específicos: .................................................................... 2

1.4 Variables. ............................................................................................. 3

1.4.1 Variable interviniente. .................................................................... 3

1.5 Hipótesis .............................................................................................. 3

2 MARCO TEÓRICO ..................................................................................... 4

2.1 Parásitos intestinales propios de roedores: .......................................... 4

2.1.1 Nipostrongylus brasiliensis ............................................................ 4

2.1.2 Nematospiroides dubius ................................................................ 4

2.1.3 Aspiculuris tetráptera, .................................................................... 4

2.1.4 Gongylonema neoplasticum .......................................................... 5

2.1.5 Trichosomoides crassicauda, ........................................................ 5

2.1.6 Heterakis spumosa, ....................................................................... 5

2.1.7 Syphacia muris .............................................................................. 6

2.2 Parásitos intestinales de interés zoonótico: .......................................... 7

2.2.1 Giardia spp: ................................................................................... 7

2.2.2 Strongyloides ratti: ......................................................................... 6

2.2.3 Trichinella spiralis: ......................................................................... 7

2.2.4 Hymenolepis nana: ........................................................................ 7

2.2.5 Hymenolepis diminuta: .................................................................. 8

2.3 Transmisión ......................................................................................... 8

2.4 Epidemiologia: ..................................................................................... 9

2.5 Inmunidad ............................................................................................ 9

2.6 Clínica: ................................................................................................. 9

2.7 Diagnósticos: ..................................................................................... 10

2.8 Prevención y Control .......................................................................... 10

3 MATERIALES Y MÉTODOS..................................................................... 11

3.1 Ubicación de la investigación y caracteristicas ................................... 11

x

3.1.1 Localización ................................................................................. 11

3.1.2 Caracterización de la zona de trabajo .......................................... 11

3.2 Período de investigación .................................................................... 11

3.3 Tipo de Investigación ......................................................................... 11

3.4 Diseño de la investigación .................................................................. 11

3.5 Tamaño de la muestra ....................................................................... 12

3.6 Metodología ........................................... ¡Error! Marcador no definido.

3.7 Materiales de investigación: ............................................................... 13

3.8 Análisis estadístico: ............................................................................ 14

3.9 Recursos humanos ............................................................................ 14

4 RESULTADOS ......................................................................................... 15

5 DISCUSIÓN ............................................................................................. 23

6 CONCLUSIONES ..................................................................................... 26

7 RECOMENDACIONES ............................................................................. 27

8 LITERATURA CITADA ............................................................................. 28

9 ANEXOS .................................................................................................. 31

xi

ÍNDICE DE TABLAS

Tabla 1 Presencia parásitos en roedores capturados ................................................... 15

Tabla 2 Parásitos encontrados ...................................................................................... 16

Tabla 3 Total de porcentaje de paràsitos zoonóticos .................................................... 17

Tabla 4 Total de porcentaje de parásitos no zoonóticos ............................................... 17

Tabla 5 Total de los parásitos por área ......................................................................... 19

Tabla 6 Base de datos.................................................................................................... 45

xii

ÍNDICE DE GRÁFICOS

Figure 1 Total de roedores capturados ........................................................... 15

Figure 2 Parásitos encontrados ...................................................................... 16

Figure 3 total de parásitos zoonóticos y no zoonóticos ................................... 18

Figure 4 Total parásitos por área .................................................................... 19

Figure 5 Presencia de roedores ...................................................................... 20

Figure 6 Presencia de alimentos farinaceos y tenebrionidos ........................... 21

xiii




“PARASITOS GASTROINTESTINALES EN ROEDORES DE LA CIUDADELA LAS PIÑAS DEL CANTON MILAGRO.”.

Autor: Antonella Estefanía Ramírez Tigrero

Tutor: MVZ ROBERTO DARWIN COELLO PERALTA, MSc.

RESUMEN

Las parasitosis gastrointestinales en roedores son importantes en ambientes

silvestres y como problemas en Salud pública, ya que algunos de estos parásitos

pueden ser transmitidos al ser humano. El presente trabajo tuvo como objetivo:

Identificar parásitos intestinales en roedores de la ciudadela “Las Piñas” del

cantón Milagro, realizado entre los meses de mayo a julio del 2018, mediante un

estudio aplicado, con enfoque cualitativo, de tipo descriptivo-prospectivo-

transversal. De un total de 47 roedores capturados y procesados, 31 roedores

(65,96%) resultaron positivos para algún tipo de parásitos intestinales. Entre los

parásitos determinados fueron de interés zoonóticos y no zoonóticos: Heterakis

spumosa en 21 casos (44,68%), Strongyloides ratti en 7 casos (14,89),

Nippostrongylus brasiliensis en 5 casos (10,64%), Heligmosomoides

polygirus en 7 casos (14,89%), Hymenolepis nana o Rodentolepis fraterna

en 10 casos (21,28%), e Himenolepis diminuta en 5 casos (10,64%). También,

se describió los factores que favorecen para la presencia de roedores.

Palabras Claves: ROEDORES, PARASITOSIS, ZOONOTICOS.

xiv

UNIVERSITY OF GUAYAQUIL

FACULTY OF VETERINARY MEDICINE AND ZOOTECHNCs

TITULATION UNIT

“GASTROINTESTINAL PARASITES IN RODENTS OF THE CITADEL “LAS

PIÑAS” OF THE MILAGRO CANTON.”

Autor: Antonela Estefanía Ramírez Tigrero

Tutor: MVZ ROBERTO DARWIN COELLO PERALTA, MSc.

ABSTRACT

Gastrointestinal parasitosis in rodents are important in wild environments and as

problems in public health, since some of these parasites can be transmitted to

humans. The objective of this work was to: Identify intestinal parasites in rodents

from the "Las Piñas" citadel of Cantón Milagro, carried out between May and July

of 2018, through an applied study, with a qualitative approach, of a descriptive-

prospective-transversal type. Of a total of 47 rodents captured and processed, 31

rodents (65.96%) were positive for some type of intestinal parasites. Among the

parasites determined were of zoonotic and non-zoonotic interest: Heterakis

spumosa in 21 cases (44.68%), Strongyloides ratti in 7 cases (14.89),

Nippostrongylus brasiliensis in 5 cases (10.64%), Heligmosomoides polygirus in

7 cases (14.89%), Hymenolepis nana or Rodentolepis fraterna in 10 cases

(21.28%), and Himenolepis diminuta in 5 cases (10.64%). Also, the cases of

parasitized rodents were related to the risk of transmission to domestic and

human dogs, health situation, captured site, surrounding perimeter and nearby

families.

Keywords: RODENTS, PARASITOSIS, ZOONOTIC.

1

1 INTRODUCCIÓN

Los agentes infecciosos transmitidos de animales a humanos representan la

mayoría de los brotes de nuevos patógenos en todo el mundo con más de mil

millones de casos de enfermedades humanas atribuibles a enfermedades

zoonóticas cada año, por lo cual, la identificación de reservorios silvestres de

patógenos zoonóticos es una prioridad perenne en Salud Pública.

En el caso de Rattus norvegicus (rata marrón) y Rattus rattus (rata negra) son

reservorios conocidos de bacterias, virus y parásitos zoonóticos de importancia

Veterinaria.

Entre las parasitosis intestinales determinadas en roedores de Latinoamérica se

tiene: Protozoarios intestinales como: Giardia spp., Hexamita spp., Trichomonas

spp., Chilomastix spp. y Entamoeba spp. Nemátodos como: Strongyloides ratti,

Nipostrongylus brasiliensis, Aspicularis tetráptera, Gongylonema neoplasticum,

Protospirura muris, Trichosomoides erassieauda, Trichinella spiralis. Heterakis

spumosa, Syphacia muris. Trichuris y Ascaris; Céstodos como: Taenia

taeniformis e Hymenolepis nana, Hymenolepis diminuta. Raillietina

demerariensis y los Acantocéfalos como: Moniliformis moniliformis.

En Latinoamérica, existe pocos reportes de parásitos intestinales en roedores,

han reportado países como: Costa Rica, Perú, Brasil, Chile, etc.

En Ecuador son pocos los estudios sobre presencia de parásitos intestinales en

roedores, por lo cual, es necesario conocer casos de parásitos en estos

reservorios, ya que son potenciales fuentes de parasitosis, que podrían conllevar

a problemas de Salud animal, al ser transmitidos a los animales domésticos y

problemas de Salud Pública al transmitirse a los humanos. Por otra parte, La

ciudadela “Las Piñas” es un sector urbano marginal, del cantón Milagro reúne las

condiciones necesarias, para contar con la presencia de roedores, como lo son:

no poseer alcantarillado, existencia de casas desocupadas, acumulación de

basura en los alrededores de las casas, sembríos de caña, cacao, banano y

pastizales a los alrededores, zanjas, pozos sépticos y pocos poseen agua

potable.

2

1.1 Problema:

Desconocimiento de la prevalencia de parásitos intestinales en roedores de la

ciudadela “Las Piñas” del cantón Milagro.

1.2 Justificación

Es importante realizar el estudio porque se determinaría parásitos no zoonóticos

(propios) y zoonóticos como: Strongiloides spp., Himenolepis spp., Raillietina

spp., entre otros. Por lo que es de gran interés Veterinario y de Salud Pública.

Además, la ciudadela “Las Piñas” del cantón Milagro, cuenta con todas las

condiciones para que se dé el ciclo de muchas parasitosis, en la que intervienen

factores bióticos como roedores, perros domésticos y humanos y factores

abiótico como el medio ambiente, lo que ayudaría a la comprensión de la

ecoactividad de parásitos intestinales en la zona de estudio.

También, los resultados de esta investigación serán de vital importancia para

comunicar a las autoridades de salud, y estas a su vez realicen campañas de

control y prevención de parasitosis desatendidas.

1.3 Objetivos:

1.3.1 Objetivo general:

Identificar parásitos gastrointestinales en roedores de la ciudadela “Las Piñas”

del cantón Milagro.

1.3.2 Objetivos específicos:

1. Identificar parásitos gastrointestinales en las heces de los roedores

mediante métodos coproparasitarios directo y flotación-centrifugación con

solución salina saturada.

2. Definir parásitos intestinales no zoonóticos y zoonóticos en los roedores

capturados. Realizar un análisis epidemiológico con los datos obtenidos.

3. Describir los factores que favorecen la presencia de roedores.

3

1.4 Variables.

1.4.1 Variable independiente.

Especie y radio de acción, lugar de captura (intra y peridomicialiarios), área.

Manejo de las excretas, presencia de roedores intradomiciliarios y

peridomiciliarios, almacenamiento de alimentos farináceos, presencia de

tenebrionidos en los alimentos farináceos

1.4.2 Variable dependiente

Presencia de parásitos en los roedores

1.5 Hipótesis

En los roedores capturados de la zona urbano marginal “Las Piñas” del cantón

Milagro se encuentra la presencia de parásitos intestinales.

4

2 MARCO TEÓRICO

2.1 Parásitos intestinales propios de roedores:

2.1.1 Nipostrongylus brasiliensis

También llamado Nippostrongylus muris, este un parásito nematodo

cosmopolita de la superfamilia Trichostrongyloidea que habita en el intestino

delgado de los roedores. (Mehlhorn H., 2016).

Los parásitos adultos son filiformes y de color rojizo; los machos miden entre

2.1 a 4.5 mm y las hembras de 2.5 a 6 mm. Los huevos son elipsoidales, de

caparazón delgado y miden de 52-63 × 28-35 μm. El ciclo de vida es directo y la

infección suele ser percutánea, a través de la L3 infectante, que luego migran a

través de los pulmones. (Taylor M., Coop R., Wall R., 2016)

2.1.2 Nematospiroides dubius

Tambien conocido como Heligmosomoides polygyrus. Es un nematodo que

parasita el intestino delgado de las ratas y ratones los adultos son gusanos

rojos largos de 0.6 a 1.3 cm de largo, con cola enrollada. Los huevos son

ovoides y miden 68 × 43 μm. Esta parasitosis suele ser asintomática pero

pueden producir pequeños quistes en la pared intestinal. (Mehlhorn H., 2016).

2.1.3 Aspiculuris tetráptera

Son parásitos cosmopolitas y nematodos de la familia Oxyuridae, también llama

do lombriz intestinal del ratón, ya que su habitad es en el ciego y el colon, son

gusanos pequeños, que en el caso de los machos miden de 2-4 mm y las

hembras 3-4 mm. Los huevos son asimétricamente aplanados, larvados,

midiendo entre 89-93 × 36-42 μm. Posee un ciclo de vida simple y son

frecuentemente encontrados en colonias de ratones de laboratorio. La infección

se transmite por la ingestión de huevos embrionados. (Taylor M., Coop R., Wall

5

R., 2016)

2.1.4 Gongylonema neoplasticum

Es un parásito nematodo gastrointestinal de los roedores. Los parásitos adultos

se encuentran en el epitelio de la porción anterior del tracto digestivo,

correspondiente a la boca, la lengua, el esófago y el fondo. Un macho adulto es

relativamente más pequeño, mide 1.5 cm de largo y 0.1 a 0.16 mm de ancho. Y

los huevos miden entre 0.04 a 0.06mm. Se lo considera como un nematodo

cosmopolita. (Setsuda A, Ribas A., Chaisiri K., 2018)

2.1.5 Trichosomoides crassicauda

Son especies de parásitos nematodos que viven en grupos en la vejiga urinaria,

uréteres, riñones de liebre, conejos y roedores. Los parásitos adultos hembras

miden, de 10-19 mm y los machos, de 1-3 mm). Esta parasitosis es

asintomática. Las larvas entran en la pared del estómago y penetran en los

vasos sanguíneos. (Mehlhorn H., 2016).

Las dimensiones de los huevos, 60-65 x 30-38 μm, conjuntamente con la

peculiar forma alimonada o de barrilete, con tapones polares transparentes que

sobresalen ligeramente y conteniendo una larva en su interior. (Taylor M., Coop

R., Wall R., 2016)

2.1.6 Heterakis spumosa

Es un parásito nematodo cosmopolita asociado con roedor Rattus rattus. El

parasito adulto hembra mide de 9,00 mm a 11,10 mm de largo y de 0,155 mm a

0,204 mm de ancho. (Ribas A., Bellocq J., Ros A., Ndiaye P., Miquel J., 2013).

Cuerpo delgado y de color blanquecino. En la hembra el extremo caudal es

largo y aguzado; en el macho presenta alas caudales bien desarrolladas. La

cutícula que recubre la parte anterior presenta estriaciones transversales muy

finas. Los huevos maduros no son embrionados, miden de 0,054 a 0,058 por

6

0,038 a 0,042 mm de diámetro, son ovoideos de cubierta gruesa y levemente

mamelonadas. (Mehlhorn H., 2016).

2.1.7 Syphacia muris

Parasito nematodo de la superfamilia Oxyuridae. Syphacia spp. (S. muris, S.

obvelata). Se encuentran en el ciego y el colon de roedores. Los machos miden

de 1.5 μm, las hembras de hasta 4.5 mm de largo. Los huevos miden 150 × 50

μm. (Mehlhorn H., 2016).

2.1.8 Strongyloides ratti:

Es un parásito nematodo común de los vertebrados, y parasitan a los roedores.

El Strongyloides ratti se extiende en un rango geográfico y en esas regiones las

coinfecciones son muy comunes. La evidencia filogenética sugiere que S. ratti

es el resultado de dos transiciones evolutivas independientes al parasitismo de

ratas, que por lo tanto presenta una oportunidad ideal para comenzar a

investigar la base de la especificidad del hospedador en Strongyloides spp.

(Viney M., Kikuchi M., 2016).

7

2.2 Parásitos intestinales de interés zoonótico:

2.2.1 Giardia spp

Es un protozoario zoomastigophoraside que causa una enfermedad parasitaria

gastrointestinal en humanos y otros mamíferos, este complejo de especies está

representado por grupos genéticamente distintos (conjuntos A-H) con potencial

zoonótico variable y con preferencias de hospedadores. Los roedores silvestres

pueden albergar conjuntos zoonóticos A y B, y el conjunto específico de

roedores. (Helmy Y., Spierling N., Schmidt S., Rosenfeld U., 2018).

A lo largo de su ciclo de vida, Giardia pasa por dos estadios claramente

diferenciables, denominados trofozoíto y quiste, los cuales corresponden a las

formas vegetativa e infecciosa del parásito, respectivamente. El trofozoíto mide

de 12 a 15 µm de largo y de 5 a 9 μm de ancho, y tiene forma de pera, con una

superficie ventral plana y una superficie dorsal convexa. (Hernández P.,

Chaparro J., Velandia M., Álverez W., Perez P., 2012).

2.2.2 Trichinella spiralis

Es una especie de nematodos. Los adultos machos miden de 1-1.8 mm y las

hembras de 1.4-3.7 mm. Los machos tienen pequeños apéndices en forma de

hojas que sirven para la cópula, pero no poseen espículas. (Mehlhorn H. 2016).

Es un nematodo filiforme, el mas pequeño conocido que parasita al humano. En

la parte posterior del esófago, la larva madura presenta un esticosoma,

constituido por esticocitos (hileras de células especializadas), los cuales

producen gránulos con diferentes polipéptidos de naturaleza antigénica. Las

formas infectantes, larvas L1 en células nodriza, miden alrededor de 1.2 mm y

unos 35 - 40 µm de diámetro. (Uribarren T. 2018).

2.2.3 Hymenolepis nana

También conocida como Rodentolepis nana, Hymenolepis fratern, Vampirolepis

8

nana. Es un cestodo de la familia Hymenolepididae que parasita el intestino del

gado de algunos mamíferos. Es una tenia pequeña, de 2.5 a 4 cm de longitud y

tiene una estrobila con alrededor de 200 segmentos. (Mehlhorn H., 2016).

El escolex tiene cuatro ventosas y está armado con un rostelo retráctil con una

sola fila de 20 a 30 ganchos. Los huevos son pequeños, de forma redonda u

ovalada de 44 a 62 × 30 a 55 μm, y contienen protuberantes o tapones polares

y un embrión con tres pequeños ganchos. Pueden ser zoonótico directamente a

las personas. (Taylor M., Coop R., Wall R., 2016).

2.2.4 Hymenolepis diminuta

Es un parasito cestodo de la familia Hymenolepididae, que habita en el intestino

delgado de los roedores y del hombre. Es una Tenia de 20-30 cm de longitud. E

l parasito adulto posee un rostelo sin ganchos. Los huevos tienen un tamaño de

60-70 μm. En contraste con H. nana, no poseen protuberancias polares. Tambi

én afecta en casos raros también las personas en especial los de países en vía

s de desarrollo esto ocurre sobre un insecto u hospedero intermedio (pulgas de

rata, escarabajos de la harina, ocasionalmente cucarachas). (Taylor M., Coop

R., Wall R., 2016).

2.3 Transmisión

Los parásitos intestinales zoonóticos tienen un ciclo de vida directo, se

transmiten por vía fecal-oral a los seres humanos en especial en sitios urbanos

con deficiencia sanitaria de países en vías de desarrollo. Además de causar

mortalidad y morbilidad, las infecciiones con parásitos intestinales en los

humanos se ha asociado con anemia, retraso en el crecimiento, debilidad física

y bajo rendimiento educativo sobre todo en escolares. (Abossie A., Seid M.

2014).

9

2.4 Epidemiologia

La distribución y prevalencia de varias especies de parásitos intestinales difiere

de una región a otra debido a varios factores ambientales, sociales y geográficos.

La alta prevalencia de infecciones parasitarias en niños indica que los protozoos

y los helmintos afectados son muy comunes en el entorno de los pueblos.

(Abossie A., Seid M. 2014).

En Perú, la prevalencia de ratas infectadas con al menos una especie parasitaria,

es de 83.6%. Las especies de mayor frecuencia fueron: el nematodo

Gongylonema neoplasticum (41.5%), el cestodo Hymenolepis diminuta (39.6%)

y el acantocéfalo Moniliformis moniliformis (32.1%). En el caso de R. norvegicus

fueron los nematodos G. neoplasticum (75%) y Heterakis spumosa (65%) y el

cestodo H. diminuta (55%). (Sotomayor, 2015).

2.5 Inmunidad

Los parásitos son inmunogenéticos pero la calidad de la respuesta del hospedero

contra el parasito depende de los mecanismos que este último logre desarrollar

para evadir la acción del huésped. La respuesta inmune se lleva a cabo con la

participación de todos los sistemas inmunológicos como son inmunidad humoral,

inmunidad celular, fagocitosis y complemento. El efecto de estas defensas se

manifiestan de acuerdo, al número de parásitos en el hospedero, cambios

morfológicos, daños estructurales, alteraciones en el ritmo cardiaco, acción

exfoliativa, cambio en la infectividad y acción tóxica. (Abossie A., Seid M. 2014).

2.6 Clínica

Las parasitosis en los roedores en la mayor de los casos pueden ser asintomáti

cas, aunque pueden presentarse síntomas leves o con un cuadro típico y caract

erístico. Esto dependerá del número, tamaño, actividad y toxicidad del parásito

en el hospedero y de la respuesta inmune de éste, así como del ciclo del parási

10

to. Con frecuencia, cursan con sintomatología variada como: dispepsia, diarrea,

estreñimiento, dolor abdominal difuso, entre otras. (Abossie A., Seid M. 2014).

2.7 Diagnósticos

El diagnóstico suele realizarse de acuerdo a través del método coproparasitario

directo o indirecto. El método coproparasitario directo sirve para la determinar a

lguna forma parasitaria y en el caso del PCR para la detección del Ácido nucleic

o del parásito; respecto a los métodos indirectos para la detección de anticuerp

os contra parásitos, para los que se usa la técnica de ELISA. (Abossie A., Seid

M. 2014).

2.8 Prevención y Control

Con el fin de prevenir enfermedades zoonóticas es importante tener en cuenta

los siguientes puntos:

• Filtrar y hervir el agua.

• Lavado de manos.

• Lavar las verduras, frutas y hortalizas.

• Mantener las uñas cortas y evitar la onicofagia.

• Buen manejo de excretas.

• Diagnóstico y tratamiento precoz de las enfermedades parasitarias

intestinales. (Abossie A., Seid M. 2014).

11

3 MATERIALES Y MÉTODOS

3.1 Ubicación de la investigacion y caracteristicas

3.1.1 Localización

La presente investigación se realizó en la ciudadela urbano marginal “Las Piñas”

del cantón Milagro, de la provincia del Guayas.

3.1.2 Caracterización de la zona de trabajo

Las Piñas es una ciudadela situada en la parte norte del cantón Milagro, sus

coordenadas geográficas son 2 ° 7 '0 "Sur, 79 ° 36' 0" Oeste (Milagro Map.

2018). El clima es tropical y fresco, con marcada diferencia entre el invierno y

verano, con temperaturas que fluctúan entre los 22 y 36°C. (MIM-M. 2018) (Ane

xo 1)

3.2 Período de investigación

La presente investigación comprende los meses de marzo a julio del 2018.

3.3 Tipo de Investigación

Aplicado, con enfoque cualitativo, de tipo descriptivo-prospectivo-transversal.

3.4 Diseño de la investigación

Se utilizó un modelo de muestreo dirigido no probabilístico, en sitios como:

basureros, lotes vacíos, zanjas, etc.

12

3.5 Tamaño de la muestra

El total de la muestra fueron todos los roedores capturados en el periodo de

estudio, que fueron 47 roedores.

3.6 Metodología

Se realizó una encuesta acerca del lugar y sobre la situación sanitaria de la

misma. (Anexo 2)

Luego, se realizaron capturas de los roedores con ayuda de trampas de resortera

(artesanal), Tomahawk y sherman y de cebos no tóxicos. Estas trampas se

colocaron de forma estratégica en la ciudadela, es decir, en lugares de

importancia como: botaderos de basuras, zanjas, pastizales, y en las casas de

ciertos colaboradores de la comunidad que aseguran tener roedores.

Aquellos roedores capturados vivos fueron sacrificados con cloroformo puro

empapado en algodón para la eutanasia y se les roció fipronil al 0.15% antes de

proceder con la necropsia.

Una vez capturados los animales se transportaron entre 4 a 8°C, al laboratorio

de Microbiología de la FMVZ de la UG. donde se realizó la necropsia del animal

y se extrajo la muestra. Estas muestras se analizaran por los métodos directos y

de flotación-centrifugación con solución salina saturada (Sürsal, 2014).

Durante la necropsia se retiraron los tractos gastrointestinales y se les sometió

a la técnica cualitativa de Travassos (Sotomayor, 2015), con el fin de obtener

parásitos adultos. Se revisaron las mucosas de los órganos ya lavados para

detectar helmintos adheridos a la mucosa o por debajo de ella. Los helmintos

fueron fijados con formol al 10%.

13

3.7 Materiales de investigación

Los materiales que utilizaron fueron los siguientes:

DE CAMPO

Trampas tipo Tomahawk

Trampas tipo Sherman.

Trampas caseras.

Frasco estériles

Mascarilla 3 M.

Batones Bioseguridad tipo II.

Marcador

Guantes gruesos.

Fundas plásticas estériles con cierre hermético.

Cajas térmicas

Tableros con los registros

Mochila.

Se utilizó un radio de acción de 30 m. para la especie Rattus rattus y de

20 m para Rattus novergicus.

DE LABORATORIO

Microscopio óptico.

Estereomicroscopio.

Guantes.

Equipo de disección.

Bisturí.

Cloroformo.

Frasco estériles

Solución Salina sobresaturada.

Palos de helados

14

Lamina porta objeto

Lamina cubre objeto

Lugol

Gotero

3.8 Análisis estadístico

Con los datos obtenidos se realizó un resumen de variables cualitativas, las

cuales se representaron en proporciones con sus gráficos dependientes.

3.9 RECURSOS HUMANOS

En la Investigación participarán: Tesista: Antonella Ramírez Tigrero, Ayudantes:

Manuel Bernstein Romero, Tutor: MSc. Roberto Coello Peralta.

15

4 RESULTADOS

4.1 Parásitos gastrointestinales en las heces de los roedores

mediante métodos coproparasitarios directo y flotación-

centrifugación con solución salina saturada.

De 47 roedores capturados y procesados, 31 roedores (65,96%) resultaron

positivos para algún tipo de parasitos intestinales y 16 roedores (34,04%) fueron

negativos, mediante los métodos coproparasitarios directo y flotación-

centrifugación con solución salina saturada.

Tabla 1 Presencia parásitos en roedores capturados

positivos negativos total muestras

muestras 31 16 47

porcentaje 65,96 34,04 100

Figure 1 Total de roedores capturados

65,96

34,04

Total de los roedores

Positivos Negativos

16

Entre los parásitos determinados fueron: Heterakis spumosa en 21 casos

(44,68%), Strongyloides ratti en 7 casos (14,89), Nippostrongylus

brasiliensis en 5 casos (10,64%), Heligmosomoides polygirus en 7 casos

(14,89%), Hymenolepis nana o Rodentolepis fraterna en 10 casos (21,28%),

e Himenolepis diminuta en 5 casos (10,64%).

Tabla 2 Parásitos encontrados

total %

Heterakis spumosa 21 44,68

Strongyloides ratti 7 14,89

Nippostrongylus brasiliensis 5 10,64

Hymenolepis nana 10 21,28

Hymenolepis diminuta 5 10,64

Heligmosomoides polygirus 7 14,89

Figure 2 Parásitos encontrados

Las formas parasitarias encontradas fueron: Huevo de Heterakis spumosa,

huevo de Strongyloides ratti, huevo y parasito adulto de Nippostrongylus

brasiliensis, huevo, larva filariforme y adulto de Heligmosomoides polygirus,

huevo de Hymenolepis nana o Rodentolepis fraterna y huevo de Himenolepis

diminuta. (Anexos 3)

44,68

14,8910,64

21,28

10,64

14,89

Parásitos encontrados

Heterakis spumosa Strongyloides ratti Nippostrongylus brasiliensis

Hymenolepis nana Hymenolepis diminuta Heligmosomoides

17

4.2 Parásitos gastrointestinales no zoonóticos y zoonóticos en

los roedores capturados. Realizar un análisis

epidemiológico con los datos obtenidos.

Los parásitos de interés no zoonóticos fueron: Heterakis spumosa,

Strongyloides ratti, Nippostrongylus brasiliensis e Heligmosomoides

polygirus.

Aquellos parásitos de interés zoonóticos fueron: Hymenolepis diminuta y

Rodentolepis nana.

Respecto a las parasitos zoonóticos encontrados (Hymenolepis diminuta y

Rodentolepis nana) se determinó el 27,27% de prevalencia zoonótica.

Tabla 3 Total de porcentaje de paràsitos zoonóticos

Parasitos zoonoticos

Hymenolepis nana Hymenolepis diminuta %

10 5 27,27

Tabla 4 Total de porcentaje de parásitos no zoonóticos

Parasitos no zoonoticos

Heligmosomoides polygirus

Nippostrongylus brasiliensis

Heterakis spumosa

Strongyloides ratti

%

7 5 21 7 72,73

18

Figure 3 total de parásitos zoonóticos y no zoonóticos

Análisis epidemiológico con los datos obtenidos

En todas las áreas estudiadas se encontró casos de parásitos zoonóticos y no

zoonóticos.

En el área 1, hubo un total de 18 casos (32,72%) de parásitos zoonóticos y no

zoonóticos.

En el área 2, se presentó 17 casos (30,91%) de parásitos zoonóticos y no

zoonóticos.

En el área 3, se determinó un total de 20 casos (36,36%) de parásitos zoonóticos

y no zoonóticos.

27,27%

72,73%

Parasitos zoonóticos y no zoonóticos

Parasitos zoonoticos

Parásitos no zoonoticos

19

Tabla 5 Total de los parásitos por área

area 1 area 2 area 3 total %

Heterakis spumosa 4 8 9 21 44,68

Strongyloides ratti 3 1 3 7 14,89

Nippostrongylus brasiliensis 2 1 2 5 10,64

Hymenolepis nana 5 3 2 10 21,28

Hymenolepis diminuta 1 2 2 5 10,64

Heligmosomoides polygirus 3 2 2 7 14,89

Figure 4 Total parásitos por área

4

8

9

3

1

3

2

1

2

5

3

2

1

2 2

3

2 2

0

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

Área 1 Área 2 Área 3

Total de los parasitos por área

Heterakis spumosa Strongyloides ratti Nippostrongylus brasiliensis

Hymenolepis nana Hymenolepis diminuta Heligmosomoides polygirus

20

4.3 Describir los factores que favorecen a la presencia de

roedores

Se encuestaron 90 habitantes de la ciudadela “Las Piñas” y registraron un total

de 550 personas integrantes de la familia y se presentaron los siguientes

resultados:

a) Manejo de excretas:

Todas las personas encuestadas manifestaron descartar sus excretas por pozo

séptico y las excretas de sus perros domésticos son descartadas al aire libre.

Para el caso de las excretas de los roedores, los encuestados indicaron suponer

que caían al suelo.

b) Presencia de roedores intra y peridomiciliarios:

32 personas manifestaron ver roedores intradomiciliarios

48 personas manifestaron ver roedores peridomiciliarios.

10 personas manifestaron no ver roedores dentro y fuera de sus casas.

Figure 5 Presencia de roedores

32

48

10

Presencia de roedores

Intradomicialios peridomiciliarios Dentro y fuera de sus casas

21

c) Presencia de depósitos de alimentos farináceos (arroz, maíz, cebada,

etc):

Solo 17 personas (18,88%) manifestaron tener en sus casas depósitos de

alimentos farináceos.

d) Presencia de Tenebriónidos (escarabajos, pulgas, gorgojos, etc) en

los depósitos de alimentos farináceos:

13 personas indicaron ver Tenebriónidos en sus depósitos de alimentos

farináceos localizados en sus hogares.

Figure 6 Presencia de alimentos farinaceos y tenebrionidos

Situación sanitaria.

70 personas encuestadas (77,78%) mencionaron no poseer agua potable y el

100% de los encuestados manifestaron no contar con alcantarillado.

18,88%

14,44%

Presencia de alimentos farinaceos Presencia de tenebrionidos

Presencia de alimentos farinaceos y tenebrionidos

22

Sitio capturado,

En el área 1, se determinaron casos de parásitos intestinales en roedores de:

Casas habitadas, solares baldíos, zanjas pequeñas, basureros.

En el área 2, se determinaron parásitos intestinales en roedores de: Zanjas

pequeñas y basureros.

En el área 3, se determinaron casos de parásitos intestinales en roedores del:

alrededores de la Unidad Policial Comunitaria (UPC), zanja grande, basurero y

solares baldíos.

Perímetro alrededor y familias cercanas.

En el área 1, en este estudio las trampas donde se encontraron roedores

positivos tomando el radio de acción comprometían entre 10 a 18 familias.

En el área 2, se usó el radio de acción de 30m para la especie Rattus rattus y de

20m para Rattus novergicus. Las trampas donde se encontraron roedores

positivos tomando el radio de acción comprometían entre 15 a 18 familias.

En el área 3, se usó el radio de acción de 30m en la especie Rattus rattus y de

20m en Rattus novergicus. Por otro lado, las trampas donde se encontraron

roedores positivos tomando el radio de acción comprometían entre 10 a 25

familias.

23

5 DISCUSIÓN

El 65,96% (31/47) de prevalencia encontrada se encuentra entre las registradas

en el mundo del 51,3% (Arzamani K. 2017) al 100% (De Sotomayor R. 2015).

Por otro lado, el 65,96% se encuentra por encima de las registradas en Irán 51,3

(Arzamani K. 2017%), Egipto 54% (Youssef A. 2014), Turquía 57,5% (Sürsal N.

2014), Palestina 58,5% (Al Hindi A. 2013) y por debajo de las determinadas en

Serbia 88% (Bjelić-Čabrilo O. et al. 2015), Brasil 92,91% (Fernández C. 2017) y

98,7% (Simoes R. et al. 2014), Korea 97,5% (Woon-Mok S. 2014), Perú 72,2

(Abad D. et al. 2016) 100% (De Sotomayor R. 2015), Costa Rica 100%.

La prevalencia de los parásitos determinados fue: Heterakis spumosa 44,68%

(21/47), Strongyloides ratti en 14,89% (7/47), Nippostrongylus brasiliensis

10,64% (5/47), Heligmosomoides polygirus 14,89% (7/47), Hymenolepis

nana o Rodentolepis fraterna 21,28% (10/47), e Himenolepis diminuta

10,64% (5/47).

El 44,68% de prevalencia de Heterakis spumosa se encuentra por encima de la

registrada en Perú (13.2%).

En el caso de la prevalencia de Strongyloides ratti encontrada 14,89%, se

encuentra por debajo de la registrada por Sotomayor R. (2015) que es del 45%.

La prevalencia del 10,64% de Nippostrongylus brasiliensis determinada, se

encuentra por debajo de las determinas en Brasil (63.7–80.5%) por Simoes R.

2014.

El 14,89% de prevalencia de Heligmosomoides polygirus encontrada, se

encuentra en menor proporción de la registrada en Korea (36.1%) por Deok-Gyu

K. (2015).

La prevalencia de Hymenolepis nana encontrada del 21,28%, es mayor que la

determinada en Perú (5%) por De Sotomayor R (2015) y menor que la

determinada en Brasil (35.7%) por Fernandes C. et al. 2017.

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Al%20Hindi%20AI%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23697031

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Kim%20DG%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=25748722


24

El 10,64% de Himenolepis diminuta determinada, es menor que la determinada

por De Sotomayor R (2015) en Perú (55%).

Análisis de parásitos no zoonóticos identificados:

Los parásitos no zoonóticos identificados fueron: Heterakis spumosa,

Strongyloides ratti, Nippostrongylus brasiliensis e Heligmosomoides polygirus

también descritos por De Sotomayor R. (2015), Simoes R. 2014 y Deok-Gyu K.

(2015).

Análisis de parásitos zoonóticos determinados:

Aquellos parásitos determinados en este estudio, de interés zoonóticos fueron:

Hymenolepis diminuta y Rodentolepis nana, igualmente han sido descrito en

Perú (De Sotomayor R. 2015), Brasil (Fernandes C. et al. 2017).

Así mismo, el 27,27% de prevalencia total de parásitos zoonóticos encontrados

(Hymenolepis diminuta y Rodentolepis nana) se encuentra por debajo de la

registrada en Perú (50%).

En todas las áreas estudiadas se encontró casos de parásitos zoonóticos y no

zoonóticos.

Análisis de encuesta:

Todas las personas encuestadas manifestaron descartar sus excretas por pozo

séptico igual se evidencia en el sector Limoncito. (Estrella M. 2015)

El 35,56% de las personas manifestaron ver roedores intradomiciliarios y el

53,33% personas manifestaron ver roedores peridomiciliarios, esto es un factor

potencial para el incremento de roedores frente al presente incremento de la

población. (OPS. 2012)

Así mismo, el 18,88% de los encuestados manifestaron tener en sus casas

depósitos de alimentos farináceos, principal fuente de Tenebriónidos, que son


25

hospederos intermediarios de la Hymenolepis diminuta. (Sadat M. et al. 2017;

Uribarren T. 2018)

14,44% de las personas indicaron ver Tenebriónidos en sus depósitos de

alimentos farináceos localizados en sus hogares, por lo que existe una mayor

probabilidad de que se presenten casos de Hymenolepidiasis Diminuta.

(Uribarren T. 2018)

El 77,78% de los encuestados mencionaron no poseer agua potable, Estrella M.

(2015) reporta el 100%. También el 100% de los encuestados manifestaron no

contar con alcantarillado, al igual que en Limoncito (Estrella M. (2015), estos dos

son indicadores muy importantes de parasitosis desatendidas en poblaciones

vulnerables. (OMS. 2018)

Finalmente, se determinaron casos de parásitos intestinales en roedores de:

Casas habitadas, zanjas, basureros, solares y terrenos baldíos que son sitios en

donde hay mayor proliferación de estos mamíferos. (OPS. 2012)

En todas las áreas estudiadas se determinaron las especies Rattus rattus y

Rattus novergicus. Según OPS. 2012, se utilizó un radio de acción de 40 -50m

para la especie Rattus rattus y de 30 a 45m para Rattus novergicus. Las trampas

donde se encontraron roedores positivos tomando el radio de acción

comprometían entre 10 a 25 familias.

26

6 CONCLUSIONES

Se identificó parásitos intestinales en heces de roedores de la ciudadela

“Las Piñas” del cantón Milagro, mediante los métodos coproparasitarios

directo y flotación-centrifugación con solución salina saturada.

Se definió parásitos intestinales no zoonóticos y zoonóticos en los

roedores capturados.

Se realizó un análisis epidemiológico con los datos obtenidos.

Se describió los factores que favorecen la presencia de roedores.

27

7 RECOMENDACIONES

1. Realizar estudios más amplios en otras zonas del país.

2. Comunicar a las autoridades de salud de los hallazgos de este trabajo.

3. Difundir los resultados obtenidos a la comunidad médica, científica y la

sociedad en general.

4. Fomentar las campañas de educación, prevención, y control de la

enfermedad ocasionada por geohelmintos.

28

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https://link.springer.com/article/10.1007/s11230-018-9778-0

31

9 ANEXOS

ANEXO 1. MAPA DEL SECTOR LAS “PIÑAS” DEL CANTÓN

MILAGRO, ECUADOR.

Mapa del sector Las Piñas

Elaborado por: Antonella Ramírez Tigrero.

32

ANEXO 2. ENCUESTA REALIZADA A LOS HABITANTES DE LA

CIUDADELA “LAS PIÑAS”.

PARÁSITOS GASTROINTESTINALES EN ROEDORES DE LA CIUDA

DELA “LAS PIÑAS” DEL CANTÓN MILAGRO.

Área: No……………………………………Formulario:……………………….

Dirección:………………………………………………………………………...

Habitante…….:…………………………………Código:………………………

Sexo:……………………...………Edad:……………………………………….

.

No. Telef.:..……………………………………………………………………...

ENCUESTA SOBRE EL RIESGO DE TRANSMISIÓN A LOS PERROS

DOMÉSTICOS Y A HUMANOS

1) Cómo es el Manejo de las excretas:

2) Usted ha presenciado roedores intradomiciliarios

3) Usted ha presenciado roedores peridomiciliarios:

4) Usted posee depósitos de alimentos farináceos (arroz, maíz, cebada,

trigo, harinas, etc):

5) Usted ha observado Tenebriónidos (escarabajos, pulgas, gorgojos,

etc) en depósitos de alimentos farináceos:

33

ENCUESTA DE SITUACIÓN SANITARIA.

1) Usted posee agua potable en su hogar.

2) Usted posee alcantarillado.

……………………………… Responsable

Fecha:……………………….......

34

ANEXO 3. FOTOS DE LOS RESULTADOS POSITIVOS DURANTE EL

ESTUDIO SOBRE PARÁSITOS GASTROINTESTINALES EN ROEDOR

ES DE LA CIUDADELA “LAS PIÑAS” DEL CANTÓN MILAGRO.

Huevo de Heterakis spumosa

Huevo de Heterakis spumosa teñido con lugol

35

Huevo de Strongyloides ratti

Huevo de Nippostrongylus brasiliensis

36

Parásito adulto de Nippostrongylus brasiliensis

Huevo de Heligmosomoides polygirus

37

Huevo de Heligmosomoides polygirus

L3 de Heligmosomoides polygirus

38

Parásito adulto de Heligmosomoides polygirus

39

Huevo de Hymenolepis nana o Rodentolepis fraterna teñido con lugol

Huevo de Himenolepis diminuta teñido con lugol

40

ANEXO 4. FOTOS TOMADAS DURANTE LA INVESTIGACIÓN DE

PARÁSITOS GASTROINTESTINALES EN ROEDORES DE LA

CIUDADELA “LAS PIÑAS” DEL CANTÓN MILAGRO.

Sitio de captura de roedores-Zanjas

41

Trampas utilizadas

Roedor capturado

42

Extracción de las heces de los intestinos

Dilución de las heces en solución salina

43

Colocación de la muestra en la placa porta-objetos

Adición del lugol

44

Colocación de la placa cubre-objetos

Observación de los parásitos en el microscopio

45

ANEXO 5

Tabla 6 Base de datos

codigo especie lugar de la captura

área

radio de accion

familias alrededor

parasitos encontrados

1 Rattus rattus

UPC 3 40 y 50m

15 Strongyloides ratti

2 Rattus rattus

Sanja al fondo 3 40 y 50m

18 Heterakis spumosa, Strongyloides rattis.

3 Rattus novergicus

lote vacio 3 30 a 45 m

10 Heterakis spumosa. Himinolepis nana, Heligmosomoides polygirus, Nippostrongylus spp.

4 Rattus rattus

basurero 3 40 y 50m

12 Heligmosomoides polygirus, Nippostrongylus spp.

5 Rattus rattus

sanja al fondo 3 40 y 50m

15 casas Heterakis spumosa.

6 Rattus novergicus

Sanja al fondo 3 30 a 45 m

16 casas Negativo

7 Rattus novergicus

sanja al fondo 3 30 a 45 m

17 casas Negativo

8 Rattus novergicus


18 casas Himenolepis diminuta

9 Rattus novergicus

basurero 3 30 a 45 m

20 casas Negativo

10 Rattus rattus.

basurero 2 40 y 50m

25 casas Negativo

11 Rattus novergicus.

casas 2 30 a 45 m

18 casas Negativo.

12 Rattus rattus

sanja 2 40 y 50m

18 casas Heterakis spumosa


sanja 2 30 a 45 m



sanja 2 30 a 45 m

18 casas Heligmosomoides polygirus


sanja 2 30 a 45 m



sanja 2 30 a 45 m

18 casas Negativo

46


sanja 2 30 a 45 m

18 casas nippostrongylus brasiliensis ++ heterakis spumosa +++ Hymenolepis nana ++ Heligmosomoides polygirus.


sanja 2 30 a 45 m

18 casas Heterakis spumosa. ++ Hymenoleís diminuta Hymenolepis nana++



18 casas heterakis spumosa Strongyloides ratti


Sanja al fondo 3 30 a 45 m

18 casas Hymenolepis nana Heterakis spumosa



18 casas Hymenolepis diminuta Heterakis spumosa





UPC 3 30 a 45 m



UPC 3 30 a 45 m




18 casas Heterakis spumosa, Strongyloides ratti.

26 Rattus rattus

interior de casa

1 40 y 50m

15 casas negativo

27 Rattus rattus

interior de casa

1 40 y 50m

18 casas Heterakis spumosa, Strongyloides rattis.

28 Rattus novergicus


10 casas Heterakis spumosa. Strongyloides ratti,Heligmosomoides polygirus Nippostrongylus spp.

29 Rattus rattus

sanja 1 40 y 50m

12 casas Himenolepis nana, Heligmosomoides polygirus, Nippostrongylus spp.

30 Rattus rattus

sanja 1 40 y 50m

15 casas Negativo.


sanja 2 30 a 45 m

16 casas Negativo

47


sanja 2 30 a 45 m

17 casas Negativo


sanja 2 30 a 45 m

18 casas Himenolepis diminuta



20 casas Heterakis spumosa.

35 Rattus rattus.

basurero 2 40 y 50m

25 casas Heterakis spumosa, Himenolepis nana


casas 1 30 a 45 m

30 casas Heterakis spumosa, Himenolepis nana

37 Rattus rattus

lote vacio 1 40 y 50m




18 casas Negativo



18 casas Himenolepis nana.



18 casas Negativo



18 casas Negativo


Basurero 1 30 a 45 m

18 casas Hymenolepis nana ++ Heligmosomoides polygirus.


interior de casa

1 30 a 45 m

25 casas Hymenoleís diminuta Hymenolepis nana++



10 casas Strongyloides ratti



10 casas Negativo



18 casas Negativo



18 casas negativo

Documents

A UNIVERSIDAD DE GUAYAQUILPO FACULTAD DE ...repositorio.ug.edu.ec/bitstream/redug/32916/1/2018- 331...cantón Milagro, realizado entre los meses de marzo a julio del 2018, mediante