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ENFERMEDADES MICOLOGICAS Y BACTERIANAS DEL AJO (Allium sativum)1

CURSO PRODUCCIÒN DE AJO - POSGRADO DE HORTICULTURA

UN Cuyo - INTA

11 DE ABRIL DE 2007 1. Enfermedades en el follaje 1.1. Tizón de la hoja o Podredumbre del tallo (Stemphylium Leaf Blight y Stalk Rot). Distribución geográfica: Ha sido registrada en Asia (India), América (USA y Argentina). La enfermedad probablemente ocurra en otras regiones donde se cultivan ajo y cebolla. Sintomatología: Las lesiones aisladas son pequeñas, amarillas claras, a violáceas o pardas, en forma de huso que se alargan pudiendo alcanzar las puntas de las hojas; pudiendo coalescer, formando manchas más extendidas dando la apariencia del tizón en los cultivos afectados. Luego se transforman de color pardo claro con el centro de color más claro. Más tarde oscurecen, adquiriendo tonos violáceos, verde oliva o negro con desarrollo de conidióforos y conidios del patógeno. Síntomas similares aparecen en la base del seudotallo. Pueden emerger peritecios en ciertas regiones bajo condiciones especiales (Figura 2 A, B y C) Organismo causal: Stemphylium vesicarium (Wallr) [Pleospora allii (Rabenh.)]. Los conidios son oblongos u ovales anchos y a menudo sin simetría lateral. Tienen de una a seis septas transversas y una a tres (completas o no) septas longitudinales. Miden entre 12-22 X 25-42 µm, son de color pardo amarillentos a pardos oliva, y todos poseen una zona cicatricial de hasta 7 µm de diámetro rodeando un pequeño poro (Figura 2 C, D y E) Ciclo de la enfermedad y epidemiología: Las infecciones permanecen confinadas a las hojas o al seudotallo generalmente. Las lesiones aparecen generalmente del lado de la dirección predominante del viento. El patógeno puede invadir áreas foliares secas. Las epidemias se establecen después de condiciones de temperaturas templadas y presencia de períodos con permanencia de agua líquida en el follaje. Períodos lluviosos que puedan prevalecer más de 24 hs es posible observar poblaciones de conidios cercanas a 200 conidios por cm-2. Transmisión:

• Por rastrojos de cultivos anteriores tanto de ajo como de cebolla.

• A través de ajo "semilla". Control:

• Siembra de semilla sana. • Prácticas culturales como rotación de cultivos.

1 Preparado por Ing. Agr. (M.Sc.) Ricardo J. PICCOLO. EEA La Consulta - INTA. CC8. 5567 La Consulta. Te. (02622) 470304 / 470753. Correo electrónico: rpiccolo@laconsulta.inta.gov.ar Fotos de la tapa: Roya del ajo (Puccinia porrii), izquierda; Tizón de la hoja (Stemphylium vesicarium) derecha arriba; Tristeza del ajo (Micoplasma) derecha abajo

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• Aplicación de productos fungicidas de protección (ditiocarbamatos y bencimidazoles).

1.2. Roya del ajo (Garlic Rust) Distribución geográfica: Ocurre en zonas templadas. En Argentina es común en zonas productoras de ajo temprano como Córdoba, Santiago del Estero. En Mendoza y San Juan, su importancia se ha incrementado en los últimos 7 a 8 años. Es la enfermedad foliar más importante por los daños que causa en el país. Sintomatología: Los síntomas iniciales son pequeñas puntuaciones blancas sobre las hojas y seudotallos. Posteriormente, estas lesiones maduran y se transforman en pústulas de color anaranjadas de 1-3 m de forma circular a elongadas. Normalmente se distribuyen entre las nervaduras. Las hojas infectadas muy intensamente pueden transformarse en cloróticas, amarillentas y luego mueren. Las pústulas son uridios, que se transforman en teliosporos al finalizar la temporada. El estado picnial y aecial son raros en la naturaleza (Figura 2 A,B) Organismo causal: Puccinia porri G. Wint. (Sin. P. alli F. Rudolphi). El hongo varía en diferentes hospederos y en diferentes ambientes, por lo que puede tener diferentes nombres y descripciones. Probablemente es autotecio. Las urediosporas (21-24 X 23-29 µm) son globoides a elipsoides de color amarillentas a anaranjadas. Las teliosporas son grises, bicelulares, elipsoides a ovoides, con un pedicelo corto. Se estima que esta roya es microcíclica, estando presente los Estados II (uredios) y III (telios), según el Gráfico 1. Ciclo de la enfermedad y epidemiología: El hongo sobrevive el invierno como uredospora o teliospora. Las primeras son más importantes en la sobrevivencia y pueden ser transportadas por la acción del viento a distancias largas. Se ha informado sobre la existencia de razas fisiológicas del hongo con diferentes grados de virulencia en distintas especies del género Allium. La enfermedad ocurre con mayor intensidad en condiciones de alta humedad relativa (HR) y baja frecuencia de lluvias, la inmersión en agua reduce la viabilidad de las esporas. Las uredosporas necesitan al menos 4 hs a 97% de HR para germinar e infectar. La mayor eficiencia de infección ocurre a 100% de HR con 10-15 ºC. Temperaturas por debajo de 10 ºC y por arriba de 24 ºC inhiben la infección. La enfermedad se intensifica cuando las plantas están bajo estrés (baja o alta humedad o exceso de nitrógeno) (Gráfico 1). Transmisión:

• En malezas del grupo de las Aliáceas (restos de cultivos de cebolla, ajo, puerro, etc).

Control:

• Siembra de semilla sana. • Rotación de cultivos. • Aplicación de fungicidas del grupo de los

ditiocarbamatos en un esquema de protección.

• Aplicación de triazoles en un como curativos y cuando la enfermedad se ha detectado

• Cultivares resistentes (Tabla 1)

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1.3. Podredumbre del Cuello del ajo (Botrytis Neck Rot y Botrytis Rot of Garlic) Distribución geográfica: La enfermedad se encuentra difundida en Europa (Noruega, Finlandia, Bulgaria, Hungría, Alemania, Inglaterra y Francia), América del Norte (USA y Canadá), América del Sur (Brasil) y Oceanía (Nueva Zelandia). Las pérdidas de cultivo pueden llegar al 30%. Sintomatología: Produce necrosis del seudotallo con abundante proliferación de micelio de color gris. Cuando la enfermedad avanza en el tiempo, se pueden apreciar pequeños cuerpos negros inmersos en el micelio (esclerocios). En ataques severos la planta muere, mostrando un marchitamiento y desecamiento apical que se va extendiendo hacia la parte basal de las hojas. Agente causal: Botrytis porri Buchw. [estado teleomórfico: Botryotina porri]. Produce conidios, esclerocios y ascosporas. El óptimo de crecimiento vegetativo ocurre a 22.5 ºC. Los conidios (7.4-19.5 X 6.0-13.0 µm) se forman con temperaturas óptimas de 13-15 ºC. Tienen forma elipsoide, ovoidea o esférica. Los esclerocios pueden llegar hasta los 2 cm, pardos al principio y negros al final. Los esclerocios pueden producir tanto conidios como primordios de apotecios (si están a una temperatura entre 0 a 5 ºC). El número de apotecios que se forman por esclerocio va de 1 a 12, el tallo y la copa de los apotecios son pardo claro a pardo oscuro de hasta 4-5 cm. Ciclo de la enfermedad y epidemiología: En cultivos de siembra otoñal, los síntomas aparecen a la altura del seudocuello como una pudrición. No está claro si las plantas que presentan síntomas tempranos de la enfermedad son producto de infecciones provenientes de esporas en el otoño, semilla infectada o esporas producidas al principio de la primavera. Bajo condiciones de alta humedad y frío, la enfermedad se puede transformar en severas epidemias durante primavera y principios de verano, pero no prospera si las condiciones son de temperatura templada y seca. Cultivos con infecciones tardías pueden mostrar decaimiento en el momento de cosecha y abundante cantidad de esclerocios en los bulbos. En regiones secas, se pueden presentar ambas sintomatologías (necrosis del cuello y decaimiento del bulbo), siendo más grave en suelos sobreirrigados. Sin embargo, suelos regados con períodos nublados, o suelos pesados con alta retención de agua son proclives a la pudrición del cuello (Figuras 3 A, B y C). Transmisión:

• Por semilla. • En rastrojos de ajo u otras aliáceas.

Control:

• Uso de semilla sana. • Rotación de cultivos. • Control del riego en zonas áridas. • Aplicación de fungicidas en un esquema de

protección (dicarboximidas y becimidazoles). 1.4. Mancha púrpura de la hoja (Purple blotch) Distribución geográfica: Es una enfermedad que se presenta en todas las áreas cebolleras y ajeras del mundo de las regiones húmedas y cálidas. Sintomatología: Los síntomas comienzan en las hojas o en los escapos florales con lesiones o manchas acuosas de 2 - 3 mm de diámetro con centros

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blancos. A medida que las lesiones se agrandan, se zonifican con anillos y se transforman en color marrón o púrpura. Los márgenes de las lesiones son sombreados de color púrpura rodeada por una zona amarilla, que se extienden hacia arriba y hacia abajo. En áreas con elevada humedad, las lesiones se cubren con las fructificaciones del hongo de color gris oscuro. A medida que las lesiones, pocas en número por hoja, se alargan y coalescen, los tejidos distales se secan y las hojas se retuercen. Estas lesiones se presentan también en los escapos florales y como resultado, hay un mayor número de semillas vanas. Las lesiones pueden ser invadidas por Stemphylium vesicarium y se transforman negras con estructuras de este hongo. S. vesicarium puede causar lesiones por sí mismo. Los bulbos pueden ser atacados en cosecha. El hongo los invade a través del cuello pero también puede entrar por las catáfilas carnosas. La coloración de las catáfilas invadidas se transforman coloreadas de púrpura (Figura 6). Agente causal: La mancha púrpura es causada por Alternaria porri (Ellis) Cif. Los conidióforos emergen en forma individual o en grupos y son derechos o flexuosos, septados, y medio marrones. Son de 120 µm de largo máximo y 5 - 10 µm de gruesos y tienen de uno a varias cicatrices de bien definidas de conidios. Los conidios son solitarios comúnmente, derechos o curvos, de forma clavada con el cuerpo elipsoidal con una cola de igual largo o algo mayor que el cuerpo. El largo total va de 100 a 300 µm y el ancho de 15 a 20 µm. Ellos pueden contener entre 8 a 12 septas transversas y de ninguna a varias longitudinales. Ciclo de la enfermedad y epidemiología: Los conidióforos se forman individualmente o en grupos sobre las lesiones. Los conidios se generan en ciclos sucesivos secos y húmedos. El hongo puede crecer entre 6 - 34 ºC, pero el óptimo se ubica en los 25 ºC y poco crecimiento ocurre por debajo de los 13 ºC. Requiere humedad relativa superior a 90% para que se produzca la esporulación. Los conidios enteramente maduros aparecen después de 15 hs de agua libre sobre la hoja. Sin embargo, cuando las condiciones son de 12 hs de rocío, las lesiones son como pequeños puntos, mientras aquellas formadas con periodos mayores de 16 hs, son del aspecto típico. La esporulación ocurre durante la noche con alta humedad relativa. A medida que la misma disminuye entre las 7:00 a 10:00 am, movimientos higroscópicos dentro del aparato conidial causa que el conidio se desprenda. La concentración de conidios en el aire crece en días ventosos, después de lluvias e irrigación, durante operaciones de pulverizados. Los conidios aterrizan en el follaje, el cual se hace más susceptible cuanto más viejo se transforman o cuanto más afectadas por daños de trips. Las primeras lesiones aparecen entre el 1º al 4º día después del inicio de infección. El hongo sobrevive en restos vegetales donde puede esporular. Control:

• Uso de cultivares resistentes • Rotaciones • Buen drenaje de los campos y reducción de la

densidad de plantación. • Uso de fungicidas preventivos (mancozeb,

maneb y clorotalonil)

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1.5. Oidiopsis (Powdery mildew) Distribución geográfica: Está difundida en USA, Argentina, Sudán y se supone que en otras zonas templadas semiáridas del mundo. Ataca a cultivos de ajo y cebolla. Sintomatología: Manchas circulares amarillentas, circulares a oblongas de 5 a 15 mm de diámetro aparecen sobre el follaje. Las hojas basales son infectadas primero. Las lesiones se cubren de un micelio blanco a gris y las masas de conidios les dan apariencia de oidio (Figura 7). Agente causal: La enfermedad está causada por Leveilula taurica cuya forma teleomórfica es Oidiopsis sicula (Sacalia). La especie es un endoparásito, el micelio penetra por los estomas y coloniza el mesófilo. Los peritecios contienen de 20 ‘ 35 esporas dobles por asco. Las ascosporas son cilíndricas a piriformes, algo curvado y variable en tamaño 12 - 22 x 25 - 40 µm. Los conidios Son de 22 - 95 x 14 - 20 µm, nacen en forma simple sobre ramificaciones, de forma cilíndricas o naviculares (dependiendo del hospedero) Transmisión:

• Por el viento de malezas u otros cultivos Control:

• Eliminación de malezas portadoras • Empleo de preventivos como azufre mojable o

erradicantes, cuando se aprecian las primeras lesiones.

1.6. Peronóspora de la cebolla (Downy mildew) Distribución geográfica: Es una enfermedad muy distribuida en todos los continentes, especialmente en zonas templadas. En Argentina es endémica en la Provincia de San Juan donde causa graves pérdidas en cultivos para producción e semilla. Sintomatología: Las infecciones el follaje y escapos florales. Las lesiones se transforman en lesiones eporulantes durante tiempo con alta humedad relativa (mayor de 90% durante períodos prolongados). Las lesiones en las hojas son alargadas un color amarillo pálido al principio. La superficie de las mismas se cubren de una felpa blanquecina a púrpura, producto de las fructificaciones (zoosporangios). Bajo condiciones menos conductivas, las lesiones quedan restringidas a manchas más pequeñas de color blanco. Las lesiones viejas pueden ser invadidas por S. vesicarium como ocurre con la mancha púrpura (Figura 4). Agente causal: El agente causal el hongo Peronospora destructor. El micelio es no septado, posee esporangióforos ramificados monopódicamente, los cuales sostienen esporangios piriformes. El hongo tiene oogonios y anteridios para su multiplicación sexual los cuales producen oosporas de paredes gruesas. Ciclo de la enfermedad y epidemiología: El hongo sobrevive en rastrojo y bulbos de descarte en los campos como oospora o clamidospora o en el follaje

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de cebollas invernales como zoosporangio. En el caso del mayor problema para la producción de semilla lo constituye los bulbos en el método semilla - bulbo - semilla, los cuales portan el inóculo en zonas endémicas. Los esporangios son producidos sobre un amplio rango de temperaturas que van de 3 a 25 ºC a nivel de saturación de humedad relativa. Los esporangios maduros son liberados entre las 8:00 a 9:00 hs a medida que las hojas disminuyen el período con agua libre sobre la superficie de la hoja. Humedad relativa cercana al 59% fueron más efectivas para la liberación de los esporangios. Los esporangios producen infecciones efectivas cuando el tiempo está nublado y la germinación es favorecida cuando se acumula agua libre sobre la hoja. Los esporangios germinan cuando las temperaturas alcanzan un rango de 6 - 27 ºC con un óptimo de 10 - 12 ºC produciendo los tubos germinativos entre 2 - 4 hs. Una vez que el tejido ha sido infectado, ciclos subsecuentes toman entre 11 - 14 días si las condiciones son favorables. El hongo puede alcanzar el cuello de los bulbos y permanecer en ellos durante el período de almacenamiento por varios meses. En ensayos de conservación, P. destructor ha permanecido viable durante cinco meses a 1 - 2 ºC y alrededor de 2 meses en bulbos almacenados a 20 - 22 ºC Transmisión:

• Por el viento y la lluvia • En bulbos almacenados. • Por semilla (muy poco probable) • En residuos de un cultivo a otro

Control:

• Resistencia genética • “Roguing” de plantas voluntarias • Rotación de cultivos • Pulverización con fungicidas protectivos

(mancozeb, maneb, clorotalonil) • Pulverización con fungicidas erradicantes

como metalaxil • Sistemas de predicción

2. Enfermedades en el bulbo y raíces 2.1. Podredumbre del cuello de la cebolla (Botrytis neck rot) Distribución geográfica: Esta enfermedad se encuentra difundida en casi todas las áreas del mundo donde se cultiva le ajo y la cebolla. Sintomatología: La podredumbre del cuello ocurre primariamente en bulbos almacenados. Los bulbos desarrollan una pudrición acuosa comenzando desde la zona del cuello, la que se mueve hacia abajo, atacando todo el bulbo. Los tejidos de las catáfilas se ablandan y se transforman acuosos y translúcidos. Aparece un micelio blanco a gris entre las catáfilas (moho). Se pueden formar esclerocios en las catáfilas externas y en los hombros del cuello. Además, se puede apreciar un moho grisáceo en el exterior del cuello y los hombros del bulbo (Figura 5).

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Agente causal: La podredumbre del cuello es causada por Botrytis alli Munn (=Botrytis aclada) y Botrytis porrii. Posee micelio septado, ramificado, y hialino cuando joven. Los conidios cuando están en masa toman una apariencia algodonosa de color gris. El tamaño de los mismos están comprendidos entre los 4 - 8 x 6 - 16 µm pero con mayor frecuencia entre 5 - 6 x 7 - 11 µm; de forma ovoides y hialinos. Están sobre conidióforos ramificados en las puntas. Generalmente, forman esclerocios elongados a irregulares en forma sobre la zona de los hombros del cuello. Alcanzan un tamaño de hasta 10 mm de largo. B. alli forma conidios en forma abundante en medios artificiales. Por el contrario, B squamosa, hongo que afecta el follaje de la cebolla, lo hace con mucha dificultad. Ciclo de la enfermedad y epidemiología: El hongo sobrevive durante el invierno como esclerocio sobre bulbos podridos o directamente en forma libre sobre el suelo. Se supone que fructifican en primavera formando conidios. Esta enfermedad se transmite por semilla. Se ha informado que este hongo invade los cotiledones de las plántulas con micelio proveniente de la cubierta de la semilla. Las plantas de cebolla se pueden infectar y seguir vegetando en forma asintomática o mostrando pequeñas manchas en las hojas. Esto puede ocurrir mediando el cultivo hasta fines del mismo. Sin embargo, los mayores daños los produce en almacenamiento. Se ha demostrado que se puede detectar tejido infectado pero asintomático usando rojo de metilo. Debido a que las plantas son infectadas durante la etapa de cultivo, ha sido muy difícil poder definir las condiciones precisas en que comienzan las infecciones. El hongo esporula sobre tejido muerto o seco bajo períodos prolongados de humedad. Los conidios son transportados por corrientes de aire. Esporula fácilmente sobre esclerocios y catáfilas infectadas externas de los bulbos. Si los cuellos de los bulbos están suculentos en el momento de la cosecha, ellos proveen condiciones muy favorables para que el hongo infecte a los bulbos. El hongo es incapaz de infectar a los bulbos cuando estos están secos. Transmisión:

• Por semilla • Aire y lluvia • Sobrevive en el suelo y en los restos

vegetales. Control:

• Cultivos sanos bien curados • No aplicar fertilizantes nitrogenados más tarde

de 8 a 9 semanas de la siembra. • En regiones de alta humedad cuando se

practica el curado, es posible realizar un proceso de secado de los bulbos a 34 ºC a razón de 2 m3 de aire por minuto por metro cúbico de bulbos. Luego, se prosigue con el almacenamiento normal.

• Las condiciones ideales de almacenamiento son entre 0 - 1 ºC a 75 - 75% de HR.

• Sembrar semilla libre de B. allii.

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2.2. Podredumbre Verde o Moho Azul, Decaimiento de la Semilla por Penicillium (Penicillium Decay of Garlic, Blue mold) Distribución geográfica: Está difundido en todos los países donde se cultiva el ajo, en mayor o menor medida. Sintomatología: Produce el decaimiento de la semilla de ajo después de plantada. Los síntomas visibles son marchitamientos, clorosis y plantas con crecimiento pobre. El hongo puede penetrar dentro del tallo del diente y afectar el desarrollo y emisión de nuevas raíces. El hongo esporula en la superficie de los dientes infectados produciendo una masa de moho de color azul-verdosa. Las plantas infectadas crecen a un ritmo más lento y son muy débiles pudiendo morir. La enfermedad también puede destruir a la semilla antes de brotar y a plántulas recién emergidas, siendo éstas las principales causas de pérdidas (Figura 8). Organismo causal: Hay varias especies del género Penicillium identificadas como causantes de la enfermedad. P. allí (Figura 9) P. hirsutum Westling P. corymbiferum Westling P. viridicatum Westling P. digitatum Sacc. P. cyclopium Westling Ciclo de la enfermedad y epidemiología: El hongo se propaga en la semilla. La distribución del hongo en el bulbo muestra una intensidad mayor en la hoja estéril, luego en el disco o tallo y disminuye hacia el interior del bulbo hasta la segunda hoja fértil y su respectivo diente, en infecciones graves para ajo blanco. En el caso de ajo colorado, parece estar confinado mayormente en el disco, hoja estéril y primer diente. En infecciones severas, puede distribuirse en todo el bulbo. En ensayos realizados en condiciones de cámara (15 ºC) y galpón, no existieron diferencias apreciables en la severidad de la infección. En general la cantidad de infección por esta enfermedad aumenta durante la conservación a medida que el IVD es mayor. La intensidad de la enfermedad es mayor cuando los dientes presentan daños mecánicos. Mientras mayor sea el tiempo entre desgrane a plantación mayor es la incidencia de la enfermedad. El desgrane mecanizado, cuando el equipo no está bien calibrado, provoca mayor incidencia. El hongo sobrevive en el suelo y en residuos de cultivos de ajo. Las esporas germinan entre los 15-32 ºC. La temperatura óptima para el desarrollo de la enfermedad es 21-25 ºC. La incidencia en cultivo disminuye cuando los suelos se mantienen en capacidad de campo. Existe resistencia entre distintos clones de ajo. Según Cavagnaro et al. los cultivares Morado INTA y Castaño INTA fueron los más resistentes entre doce cultivares ensayados. Se ha observado que la intensidad de la infección aumenta a mediada que el índice visual de superación de la dormición aumenta, y esto varía entre clones y cultivares (Gráfico 2). Transmisión:

• Por semilla. • En el suelo y residuos de cultivos anteriores • Por elementos de acondicionamiento de la

semilla y heridas. • En tratamientos de semilla por inmersión

cuando los químicos no son los apropiados. Control:

• Uso de semilla sana.

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• Evitar siembras tardías en suelos poco aireados

• Evitar las lesiones de los dientes durante el desgrane.

• Usar tratamientos químicos en inmersión o "slurry" Iprodione, Procimidone, PCNB. Benomil puede crear resistencia del complejo de hongos.

• Los mejores resultados se han obtenido empleando combinaciones de Tiran, Carboxin y Procloraz en inmersión o slurry

2.3. Ajo cabeza Negra o Carbonilla del Ajo (Smutty Spot of Garlic) Distribución geográfica: Está presente en todas las áreas donde se cultiva ajo en el mundo. Sintomatología: Los síntomas característicos de la enfermedad son manchas negras errumpentes en las catáfilas externas de los bulbos y dientes. Las manchas son producto de la proliferación del micelio y las esporas del hongo. Normalmente no se desarrolla en el disco o tallo. En ataques muy severos, el bulbo presenta una profusa proliferación del hongo, tomando una coloración negra carbonosa. La enfermedad incrementa su intensidad hacia principio del verano, las plantas más afectadas presentan hojas más cloróticas que las sanas (Figura 15). Organismo causal: Helminthosporium alli Campanile (= Embellisia allii) (Campan.) E.G. Simmons. Ciclo de la enfermedad y epidemiología: Las principales fuentes de inóculo son el suelo y resto de vegetales. Es un hongo saprofito que convive en la materia orgánica en descomposición. Invade al bulbo por penetración directa por medio de apresorios a través de las catáfilas o heridas provocadas durante la cosecha o manipulación en almacenamiento y acondicionamiento. En el bulbo, se distribuye en el disco y penetra la hoja estéril y las fértiles alojándose en los dientes. Esa distribución es más intensa en profundidad en ajos blancos que en colorados. Los primeros han mostrado mayor susceptibilidad a la infección con el hongo (23%) respecto a los segundos (16%) en el promedio de incidencia media de los análisis de semilla del programa de producción de semilla mejorada de ajo en la provincia de Mendoza. La intensidad de la enfermedad aumenta hacia principios de verano en cultivo y durante la conservación hasta la plantación. Si el ajo no ha estado bien conservado, durante el proceso de deschalado se dispersa gran cantidad de inóculo que afecta la intensidad de la enfermedad. Las esporas son fácilmente transportadas por corrientes de aire. Transmisión:

• Por la semilla • Permanece en el suelo y rastrojos de cultivos

de Aliáceas. • Las esporas son fácilmente transportadas por

el aire. Control:

• Usar semilla saneada y tratada con agroquímicos por inmersión o "slurry" con productos como Thiran, PCNB o dicarboximidas.

• Practicar las rotaciones.

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• Desinfectar los depósitos de almacenamiento y maquinarias de acondicionamiento, embalaje y contenedores.

• Retirar la "chala" y todo resto de material contaminante en sectores de acondicionamiento de semilla y bulbos.

2.4. Mancha Herrumbre (Fusarium Basal Rot) Distribución geográfica: Esta enfermedad se encuentra muy difundida donde se cultivan Aliáceas en general. Es una enfermedad que afecta tanto al ajo como a la cebolla y otras especies. En ajo provoca pérdidas considerables en cultivo y almacenamiento. Organismo causal: Fusarium oxysporum f.sp. cepae (Hans.) Snyd. et Hans. y Fusarium proliferatum Fusarium oxysporum f.sp. cepae tiene tres formas de multiplicación a través de macroconidios, microconidios y clamidosporas. Esta última forma es también una vía de supervivencia. Los microconidios, que son de forma esférica, se producen entre las hojas envolventes y son poco comunes en cultivos artificiales. Los macroconidios se forman in vitro sobre esporodoquios o pionotes; siendo fusiformes y septados (3 a 4 septas normalmente). Las clamidosporas se forman de las hifas o macroconidios, pudiendo ser terminales o intercalares en el primer caso. Sintomatología: La infección de plantas en el cultivo se manifiesta como un marchitamiento. Las hojas expresan clorosis y las puntas se secan hacia abajo. En ataques tempranos la planta se observa con un crecimiento reducido. Se pueden observar raíces con la enfermedad las cuales se colorean de pardo claro al principio, perdiendo turgencia y luego mueren. En el bulbo es posible observar tanto en las hojas carnosas como en el disco pequeñas pústulas de color castaño rojizo (pionotes) o de tonalidad herrumbrosa. Estas se pueden distribuir por todo el diente en número variable. A medida que la enfermedad progresa, el micelio del patógeno puede invadir gran parte del bulbillo, el que se torna parduzco al tiempo que se deshidrata generando un podredumbre seca (Figura 10 y 11). Ciclo de la enfermedad y epidemiología: El hongo puede quedar en residuos del cultivo anterior o en restos de bulbos de cebolla como clamidospora. La penetración es directa en las raíces y el disco o por heridas. La distribución de la infección es pareja y bastante intensa desde el disco hacia la parte interna del bulbo. Las temperaturas óptimas de crecimiento del hongo en medio artificial es de 24-27 °C. Por debajo de 9 °C y por arriba de 36 °C el crecimiento del patógeno disminuye considerablemente. La temperatura es el principal factor que gobierna la actividad de F. cepae en cultivo en cuanto a la expresión de los síntomas y a la incidencia de la enfermedad. Generalmente el crecimiento del cultivo no es afectado hasta que las temperaturas del suelo no superan los 25 °C. Sin embargo, las pérdidas de raíces comienzan a temperaturas inferiores. El cultivo repetido de cebolla y/o ajo en el mismo suelo aumenta la incidencia de la enfermedad año tras año debido a la supervivencia de clamidosporas como efecto acumulativo de inóculo. Transmisión:

• Por la semilla. • Rastrojo de ajo y/o cebolla. • Agua de riego.

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Control: • Tratamiento de la semilla con productos

becimidazoles entre los cuales Benomil es el más efectivo tanto por inmersión como por "slurry".

• Rotación de cultivos, la cual es efectiva por la especificidad de patógeno.

• Tratamientos al suelo con bromuro de metilo o metan sodio (Vapam).

2.5. Raíz rosada (Pink root) Distribución geográfica: Está ampliamente difundida en todas las áreas en donde se cultivan especies del género Allium. Organismo causal: Phoma terrestris Hansen. La enfermedad es diagnosticada por la presencia de picnidios subglobosos, ostiolados, papilados de color negro, los que son producidos rápidamente en medios mínimos con paja estéril bajo el efecto de la luz ultravioleta. Primordios de picnidios se pueden encontrar en la superficie de las raíces de cebolla atacadas por el hongo. Las raíces adquieren una coloración rosada, de ahí el nombre de la enfermedad. Los conidios son unicelulares, pequeños 4-7 X 1.5-4.5 µm. El inóculo queda en los residuos de los cultivos como picnidio o microesclerocios. Sintomatología: El síntoma clásico es la coloración rosada que adquieren las raíces infectadas. Las mismas pierden rápidamente turgencia, se acintan y se secan. La parte aérea de la planta presenta principio de clorosis, provocando un secamiento de las puntas hacia abajo. En ataques muy intensos, las hojas se colapsan completamente y la reducción de la superficie fotositéticamente activa disminuye. Consecuentemente, la tasa de crecimiento del bulbo decrece (Figura 17). Ciclo de la enfermedad y epidemiología: El hongo sobrevive en el suelo en restos de materia orgánica. Se ha demostrado su presencia hasta los 0.45 m de profundidad con pruebas biológicas, pero es más abundante hasta los 0.15 m de profundidad. El hongo ha sido recuperado a través de aislamientos en 86 especies de gramíneas y dicotiledóneas. Como F. cepae, la temperatura óptima de crecimiento está entre los 24-28 °C, aunque el patógeno crece a 13 °C y 30 °C. En ajo, las infecciones se presentan al final del ciclo cuando las temperaturas del suelo no superan el rango crítico óptimo del hongo. Sin embargo, en áreas cálidas como en distritos de San Juan y el norte de Mendoza, el inicio de infección respecto a la fenología del cultivo se adelanta y puede producir pérdidas considerables. En cebolla es una enfermedad de importancia ya que destruye el sistema radical al que ataca. Transmisión:

• En el suelo, a través de residuos de cultivos. • En la semilla como microesclerocio, ya que no

afecta al disco. • Comercio de plantines de cebolla de zonas

endémicas a regiones libres de la enfermedad.

Control:

• Rotación de cultivos (5 a 6 años). • Tratamiento del suelo con productos como el

dicloropropano (Telone) 450 l/ha, mezcla de diclopropano-cloropicrina (40/60%) a 84 l/ha o metán sodio (Vapam) 1000 l/ha.

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• Solarización. • Evitar la contaminación de suelos con

plantines de cebolla enfermos. 2.6. Podredumbre Blanca (Allium White Rot) Distribución geográfica: La enfermedad está distribuida en varios países productores de ajo y cebolla. Fue citada por primera vez en Inglaterra y luego en Italia. La importancia de la enfermedad radica en: 1) pérdidas reales de producción y los costos asociados con la cosecha, 2) la inseguridad relacionada con el posible incremento del daño cuando las Aliáceas sean cultivadas en suelos ya infectados y 3) la posibilidad de nuevas epidemias en suelos que no han sido infectados por la enfermedad. Es la principal causa de pérdidas de producción en el mundo, tanto en ajo como en cebolla. Organismo causal: Sclerotium cepivorum Berk. El organismo tiene hifas de 9 a 18 µm de diámetro y células de 30 a 100 µm de largo, siendo las apicales 3 a 4 veces más largas. Los esclerocios son mayormente esféricos de 200 a 700 µm de diámetro. Los esclerocios son de forma de campana formando grupos en material afectado. Son de superficie oscura, algo rugosa y textura gomosa. Hay esclerocios secundarios de 100 a 150 µm que son entre el 5 al 10% del total que se pueden formar de un esclerocio padre. Son estimulados para germinar en la presencia de raíces de cebolla y ajo. Los conidios son esféricos de 1.6 a 3.4 µm de diámetro se producen a partir del micelio en suelo, pero hay poca evidencia de que los mismos puedan aportar algo a la infección. S. cepivorum germina solo en contacto con exudados de las raíces de especies de la familia de las Aliáceas. Compuestos precursores de la n-propil cisteína y n-propenil cisteína y sus sulfóxidos presentes en los exudados de las raíces son degradados por complejos microbianos produciendo sustancias volátiles que estimulan la germinación de esclerocios. Los esclerocios recién producidos están en estado de dormición durante 1 a 3 meses. El congelamiento hasta -22 °C ha roto la dormición in vitro. Los esclerocios pueden sobrevivir hasta 18 años. Sin embargo en suelos tratados con calor (solarización) se puede reducir considerablemente la viabilidad de los mismos (Figura 14). Sintomatología: Las plantas pueden ser infectadas en cualquier momento de su crecimiento. Sin embargo, el tipo de síntoma y su intensidad dependen del estado de crecimiento del cultivo y la duración de las condiciones ambientales que favorecen al patógeno. En las plantas atacadas hay una abundante proliferación de micelio blanco sedoso y superficial. En él se forman rápidamente esclerocios negros como los descriptos anteriormente. Los tejidos afectados presentan rápidamente una Pudrición acuosa. En la parte aérea, las hojas se vuelven amarillentas, síntomas que progresan de arriba hacia abajo. En condiciones de ataques severos, al marchitamiento le sobreviene la muerte de la planta. Si el ataque es próximo a la cosecha, la planta puede presentar áreas afectadas en el bulbo y seudotallo. La enfermedad puede prosperar luego en almacenamiento (Figura 12 y 13). Condiciones predisponentes y epidemiología: La penetración es directa. Las raíces producen exudados que estimulan la germinación de los esclerocios, los cuales infectan a las plantas. Se ha demostrado que la diseminación puede ser por el agua de riego y voladuras provocadas por el viento, pero las más importantes vías son el material infectado y los mismos esclerocios. Las temperaturas óptimas de crecimiento son entre 15-24 °C. Las mínimas y máximas son a 5 y 29 °C. El desarrollo de síntomas es poco afectado sobre un rango de humedad de suelo. El hospedero estimula máxima germinación de esclerocios entre 15 a 18 °C y a un potencial matriz de -85 mb a -300 mb. Se ha demostrado que la infección secundaria se incrementa al aumentar la

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densidad de plantación debido al estrecho contacto entre raíces y bulbos. En ajo, muchas raíces se producen en forma horizontal hasta 30 cm a 6 cm de profundidad y la infección se incrementará desde una población de 1 esclerocio por kg de suelo hasta alcanzar 50% de infección. Se ha tratado de relacionar cantidad de esclerocios por kg de suelo con la intensidad de infección o pérdidas. Control:

• Restricción de la diseminación de áreas infectadas

• Material de plantación: tratando dientes con • formaldehído • Cuarentenas • Erradicación de esclerocios del campo • “Roguing" • Solarización • Estimulantes de la germinación como aceite

de cebolla agregados al suelo provocan la germinación del esclerocio y la muerte del inóculo. Hay reducción entre el 55 al 75%

• de la infección. • Fumigantes del suelo (idem raíz rosada) • Prácticas culturales • Rotación de cultivos (4 a 10 años). • Control químico con productos como PCNB,

bencimidazoles, dicarboximidas o triazoles. 2.7. Otras podredumbres del bulbo -Pudrición por Sclerotinia- y -Pudrición por Slerotium rolfsii- (Sclerotinia rot y Southern blight) Distribución geográfica: Ambas enfermedades se encuentran ampliamente distribuidas. Los patógenos que las originan afectan a diversas especies cultivadas dentro de las Crucíferas, Cucurbitáceas, Solanáceas, Compuestas, flores y malezas. Organismos causales: Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary produce esclerocios grandes, globosos a cilíndricos 2-1.5 x 2-30 mm) con una corteza externa negra y el interior blanco. Cada esclerocio puede llegar a producir de uno a varios apotecios en forma de salchicha de color variable de blanco a pardo con cortos pedicelos. Sclerotium rolfsii Sacc. [Athelia rolfsii (Currzi) Tu & Kimbrough] las hifas presentan conexiones (clamp connections). Los esclerocios son pequeños, redondos de 0.5-1.5 mm de diámetro. La forma teleomórfica produce un himenio expuesto con basidios en forma de clava, y basidiosporas piriformes. Sintomatología: En el caso de la pudrición provocada por S. rolfsii se manifiesta a través de manchas blancas sucias en las catáfilas externas de los bulbos de cebolla y ajo. Aparecen manchas acuosas en la zona del seudocuello. Una masa de micelio blanquecino se puede formar alrededor de los bulbos, los cuales quedan con suelo y materia orgánica adherida. En la masa miceliar, se forman esclerocios redondos de color pardos que los diferencian de los de S. cepivorum. Si los bulbos infectados se almacenan sin un secado previo y refrigerado, los mismos se desintegrarán completamente transformándose en una masa acuosa. En el caso de la podredumbre provocada por Sclerotinia, los síntomas son muy parecidos. Los esclerocios son negros, alargados (+1 cm) y no se agrupan.

14

Condiciones predisponentes y epidemiología: La podredumbre provocada por S. rolfsii se disemina como micelio, micelio rizomorfo en materia orgánica infectada y como esclerocio en el suelo. Los tejidos de cebolla son destruidos por el ácido oxálico, enzimas pectolíticas y celulolíticas producidas por el hongo. La infección se produce por penetración directa de las hifas del hongo a través de las catáfilas externas o por el cuello de los bulbos en maduración, pero esto ocurre en suelos arenosos. La temperatura óptima para el crecimiento del hongo es de 25-30 °C, el crecimiento decrece a menos de 15 °C. La humedad es importante para el desarrollo de la enfermedad. En el caso de S. sclerotiorum, el hongo trabaja a un rango de temperatura más baja. La enfermedad puede prosperar entre los 0-28 °C en ambientes húmedos. El patógeno persiste en el suelo, en restos vegetales. Transmisión:

• S. rolfsii se transmite a través de la semilla de ajo y en la materia orgánica proveniente de cultivos en descomposición.

• S. sclerotiurum se transmite de la misma forma que el anterior. Además, cuando produce apotecios, las ascosporas se diseminan con el viento.

Control: Ambas enfermedades se controlan con el uso de semilla sana y tratada con productos derivados de las dicarboximidas y bencimidazoles. La solarización es una técnica apropiada para el control de esta enfermedad en el suelo. No hay que sembrar ajo o cebolla en suelos donde se hayan detectado ataques de estos hongos en cultivos previos. 2.8. Podredumbre Blanda Bacteriana (Soft Rot) Distribución geográfica: La podredumbre blanda es muy común en otros vegetales y está distribuida en regiones cálidas y templadas donde se cultiva el ajo y la cebolla. Organismo causal: Erwinia carotovora subsp. carotovora (Jones) Bergey et al. Sintomatología: Los tejidos afectados se manifiestan con un podredumbre acuosa. El color es amarillo pardo a pardo. Todo el interior del bulbo está colapsado, acuoso, con olor fuerte y hay exudado bacteriano. Tanto en cebolla como en ajo la bacteria se ubica en el interior del cuello inicialmente. En el follaje, la enfermedad se manifiesta como un marchitamiento. Condiciones predisponentes y epidemiología: La principal fuente de infección es el suelo y residuos de cultivos. Salpicaduras de lluvia, agua de riego e insectos son los principales agentes de diseminación de la enfermedad. El patógeno penetra por el cuello de la planta, heridas, e insectos que atacan durante el almacenamiento. En Mendoza y San Juan, estas enfermedad es la más importante durante almacenamiento de los bulbos de cebolla. La bacteria puede vivir en el tracto digestivo de algunos insectos. La temperatura óptima es de 20-30 °C. En almacenamiento, puede prosperar por arriba de los 3 °C. Transmisión:

• Agua de lluvia y riego. • Suelo y restos vegetales • Insectos • Maquinaria de cosecha y almacenaje

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Control: Tanto en cebolla como en ajo realizar el "curado" de los bulbos, evitar la cosecha y almacenamiento en tiempo lluvioso, acondicionar los bulbos durante almacenamiento para que las pilas o ballenas tengan buena aireación. 2.9. Tristeza del Ajo Distribución geográfica: Esta enfermedad se ha observado en las provincias de Mendoza, San Juan y Córdoba. Según los años, su presencia y daño varía llegando a producir pérdidas de no más del 10%. Organismo causal: Se ha aislado un micoplasma (MLO - mycoplasm-like organism) en forma consistente de las plantas que presentaron el síntoma. Sintomatología: Las plantas afectadas muestran un pobre desarrollo foliar. Generalmente no llegan a bulbificar y en todos los casos mueren antes de llegar a cosecha. Las hojas presentan un marchitamiento y luego se secan. En ajo blanco, las plantas afectadas desarrollan un tono violáceo oscuro en el follaje. Por el contrario, ajos del grupo de los colorados, las plantas manifiestan un marchitamiento y las hojas se amarillean (Figura 16). Transmisión: se desconoce. Control: Eliminación de plantas enfermas. 2.10. Carbonilla o moho negro (Black mold) Distribución geográfica: Al ser una enfermedad de almacenamiento, se presenta donde se cultive la cebolla y otras aliáceas. Sintomatología. El hongo infecta el cuello de los bulbos, ocasionalmente penetra las partes laterales y las bases de los mismos. El hongo ataca como patógeno primario, aunque puede invadir zonas afectadas por otros hongos. Produce infecciones que generan proliferación de micelio blanco que luego se tornan negras por la producción de los órganos de dispersión. Organismo causal: Aspergillus niger Ciclo de la enfermedad y epidemiología: El hongo se transmite por semilla y “sets”. También sobrevive en el suelo y se dispersa a través de la lluvia antes de la cosecha y prospera en almacenamiento con alta humedad relativa. Las condiciones óptimas de infección son 30 ºC y 100% HR y 40 ºC y 93% HR. A. niger es un patógeno débil, pero con las condiciones mencionadas produce infecciones que generan muchas pérdidas. Transmisión:

• A través de la semilla • Por el suelo • Salpicaduras por lluvia

Control:

• Procurar un buen curado del bulbo • Bajar la HR de los depósitos a menos del 80%

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• Eliminar malezas con herbicidas y reducir las labores mecánicas.

• Uso de aire forzado a 30 ºC a HR < 80% moviendo aproximadamente 500 m3. H -1. T -1.

• Uso de semilla tratada con químicos • Inmersión de los bulbos en una solución de

carbonato de calcio al 17%. 2.11. Virosis en ajo Distribución geográfica: El cultivo de ajo por su naturaleza de propagación agámica, es portador de una gran cantidad de virus, tanto a nivel mundial como en la Argentina. Muchos de ellos son comunes a otras aliáceas, por lo que espectro y la incidencia en la distribución favorecen la presencia de estos organismos. Sintomalogía: Las albaceas son infectadas por numerosos virus que no llegan a producir la muerte de las plantas pero que en ataques muy severos peden ocasionar pérdidas de producción importantes. Siendo el ajo una especie de propagación agámica casi exclusivamente, las infecciones con diferentes virus son de naturaleza compleja y mixta. En términos generales, la sintomatología de las virosis en ajo se manifiestan con mosaicos y decoloraciones en el follaje con intensidades que pueden variar según las distintas combinaciones de virus existentes en las plantas, estado ontológico de las mismas, condiciones climáticas y resistencia de algunos cultivares. Los mosaicos se manifiestan en formas de estrías que recorren el follaje desde el extremo apical hasta el basal, variando el color desde un verde más claro que el color normal de la variedad hasta amarillos intensos. En términos generales, este conjunto de síntomas recibe el nombre de mosaico del ajo (Figura 18). Ciclo de la enfermedad y epidemiología: Por tratarse de un complejo de virus transmitidos principalmente por los bulbos y bulbillo (dientes) de ajo, se puede afirmar que el ciclo de la enfermedad es un proceso continuo que comienza con la semilla infectada, continua con la planta y termina con el bulbo o cabeza enferma. De esta forma las partículas virales en complejo o solas, se transmiten de generación en generación. En algunas virosis, las malezas y otras aliáceas, constituyen las fuentes de inóculo alternativas para asegurar las infecciones primarias en cultivos nuevos. En esos casos, los vectores tales como los áfidos y los ácaros son los agentes de dispersión y transmisión de las virosis. Transmisión:

• A través de la semilla o diente • Insectos • Malezas

Control:

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• Solo es posible controlar las virosis del ajo a través de cultivos de meristemas apicales y termoterapia

Tabla 2. Clasificación tentativa de virus en ajo Familia Partícula Virus Transmisión RNA . DNA Carlaviridae Filamento

levemente flexuoso de 610 – 700 nm x 12 – 15 nm diámetro

Shallot latent carlavirus (SLV) Garlic latent virus (GLV) Carnation latent carlavirus (CLV)

Myzus (Sciamyzus) ascolonicus no persistente Myzus persicae no persistente

Hebra simple de RNA

Potyviridae Filamento flexuoso de 720 – 900 nm x 11 nm diámetro

Onion yellow dwarft virus (OYDV) Leek yellow stripe virus (LYSV)

Myzus persicae no persistente

Hebra simple de RNA

Allexiviridae Filamento flexuoso de 700 nm x 10 nm de diámetro

Onion mite-borne latent virus (OMbLV) Onion mite-borne latent virus raza ajo (OMbLV-G) Shallot mite-borne latent virus (SMbLV)

Aceria tulipae Hebra simple de RNA

ICTVdB - The Universal Virus Database, version 4. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/ICTVdb/ICTVdB/

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Figura 1A. Ascos con ascosporas de Pleospora allii estado teleomórfico de

Stemphillyum vesicarium Figura 1B. Conidios y conidióforos de Stemphillyum vesicarium

Figura 1 C, D, E. Síntomas en hoja de Stemphyllium allii . Foto José Portela EEA

Consulta INTA)

Figura 2 A. Síntomas de roya en hoja. Figura 2 B. Detalle de las lesiones de roya en la superficie foliar

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Gráfico 1. Supuesto ciclo de la roya del ajo en Argentina

20

T

Tabla 1. Clasificación de la resistencia a la roya de cultivares de ajo de la Colección

Activa del Proyecto AJO/INTA. (según Salvalaggio & Piccolo, 2005 datos no publicados). La severidad representada por una escala donde 0= inmune 100 = extremadamente susceptible

Cultivar/Clon Severidad Tukey 5%

Colorado UR 21 6,25 A INCO 30 7,50 AB Chonan 8,70 ABC

Colorado L 8,75 ABC Colorado UR 17 8,75 ABC

Hungría 11,25 ABC Colorado T. 11,25 ABC Colorado G. 11,25 ABCD Español 542 12,25 ABCDE

Español A 12,50 ABCDE Colorado Pareditas 13,70 ABCDE

Cazador 30 13,75 ABCDEF Colorado LV 6 13,75 ABCDEF

RUBI INTA 15,00 ABCDEFG FUEGO INTA 17,50 ABCDEFG

Ruso 20,00 BCDEFGH FG 20,00 BCDEFGH

GOSTOSO INTA 20,00 BCDEFGHI Selección IDEVI 20,00 BCDEFGHI

Saneado 032 21,00 BCDEFGHI Colorado Copemen 21,00 CDEFGHI

Colorado FCA 10 21,00 CDEFGHI Italiano 21,00 CDEFGHI

Rose De Lautrec 26,25 DEFGHIJ CASTAÑO INTA 27,50 DEFGHIJ

Español 27,50 EFGHIJ SUR 30,00 FGHIJ

Colorado Malvinas 1 30 GHIJ Colorado Malvinas 2 31,25 GHIJ

NEVADO 40 HIJK Don Rafael 41,25 IJK

PAYEN 43,75 JK Colorado FCA 19 45 JK

Colorado A-1 58 K Colorado A-2 59 K SUREÑO INTA 61 K

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Figura 4 A y B. Síntomas de tizón producidos por Penospora destructor en un cultivo y

hojas de ajo (Foto Ricardo Piccolo EEA La Consulta)

Figura 5 A: Botrytis allí en una cabeza de ajo. Se puede ver el micelio gris o moho y los

esclerosios del hongo irrumpentes en las catáfilas del bulbo Figura 5 B: Mancha acuosa alrededor del área cubierta con moho gris Figura 5 C: Los tejidos afectados se secarán eventualmente si se mantiene el diente

en condiciones de baja humedad relativa

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Figura 6. Lesiones de mancha púrpura (Alternaria porrii)

Figura 7. Síntomas de lesiones primarias en hojas de ajo (A), y cebolla (B y C). Conidio de Oidiopsis taurica. Ailton ReisI; Leonardo S. BoiteuxI, III; Milton L. Paz-LimaII; Patrícia P. SilvaI, III; Carlos A. LopesI, IEmbrapa Hortaliças, C Postal 218, 70359-970 Brasília-DF IIUniversidade de Brasília (UnB), Depto. Fitopatologia, C. Postal 4457, 70910-900 Brasília-DF Oídio em espécies do gênero Allium, causado por Oidiopsis taurica, no Brasil. Hortic. Bras. vol.22 no.4 Brasília Oct./Dec. 2004

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Figura 8. Síntoma de la mancha verde mostrando una planta totalmente colapsada (A), la cual luego de desenterrada se puede observar el característico desarrollo de moho verde correspondiente al micelio y fructificaciones de Penicillium allii (B yC) (Foto Ricardo Piccolo EEA La Consulta)

Figura 9. Diferentes aislamientos crecidos in vitro de Penicillium allii sobre CYA durante 7 días a 25 ºC obtenidos por Jorge Valdez (EEA La Consulta INTA) (Foto Jorge Valdez)

c d

e f

g h

a b

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Gráfico 2. Esporulación de P. hirsutum (luego P. allii sensu Valdez et al.) en distintas variedades y clones de ajo como parte de los componentes de resistencia a la enfermedad. Cavagnaro et al. (2005)

Figura 10. Síntoma de una planta infectada con Fusarium oxysporum fsp. cepae

Figura 11. Fusarium desarrollado en una cabeza de ajo (Foto de arriba) y en un diente afectando un diente donde se aprecia el micelio algodonoso del hongo y rodeándolo una mancha de aspecto acuoso (Foto de abajo). Lesiones de aspecto herrumbroso en un diente (Foto arriba a la derecha)

0

300

600

900

1200

1500

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Figura 12. Síntomas de podredumbre blanca en un cultivo de ajo (Foto Ricardo Piccolo EEA La Consulta)

Figura 13. Plantas enfermas desenterradas mostrando el síntoma característico de la enfermedad (Foto Ricardo Piccolo EEA La Consulta) .

Sana

Enferma

Muerta

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Figura 14. Esclerocio de Sclerotium cepae germinando por acción de exudados de raíces de ajo o cebolla (izquierda), masas de esclerosios y micelio sobre catáfilas de ajo infectadas con Sclerotium cepae (derecha y abajo)

Figura 15. Conidios de Helminthosporium allii (=Embellicia allii) (izquierda), síntomas de cabeza negra en un bulbo de ajo (derecha, arriba y abajo).

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Figura 16. Plantas de ajo colorado en el campo mostrando los síntomas característicos de tristeza (Foto José Burba (EEA La Consulta).

Figura 17. Raíces de cebolla infectadas con Phoma terrestris. Síntomas semejantes pueden observarse en plantas de ajo con estos síntomas (izquierda). Método rápido in vitro para diagnosticar infecciones en raíces de Phoma terrestris (derecha) (Foto APS Compendium of Onion and Garlic Disease)

Figura 18. Virosis en ajo. Mosaico estriado a la largo de la hoja (Foto Ricardo Piccolo EEA La Consulta)