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Tesis de Licenciatura, Facultad de Ciencias, UNAM, 2009, Para obtener el titulo de BIOLOGA, Adriana Reyes Gómez.
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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA
FACULTAD DE CIENCIAS
“SISTEMÁTICA DE LOS QUITONES (MOLLUSCA:
POLYPLACOPHORA) DE LA COLECCIÓN NACIONAL DE
MOLUSCOS DEL INSTITUTO DE BIOLOGÍA UNAM.”
T E S I S
QUE PARA OBTENER EL TITULO DE: B I O L O G A
P R E S E N T A :
ADRIANA REYES GÓMEZ
DIRECTOR DE TESIS
Dr. Mario Alejandro Salcedo Vargas
MÉXICO, D. F. 1999
AGRADECIMIENTOS
Agradezco sinceramente al Dr. Mario Alejandro Salcedo
Vargas por su visión, apoyo incondicional y valiosa
asesoría para estudiar a estos maravillosos organismos,
por su enseñanza, amistad y conocimientos compartidos.
A la Dra. Edna Naranjo, por haberme permitido estudiar la
Colección Nacional de Moluscos del Instituto de Biología
UNAM.
Especialmente al Dr. Sergio Salazar y a la Biol. Emilia
González de ECOSUR, Q. Roo, por su interés en el
desarrollo del presente estudio, por el apoyo con parte del
material bibliográfico y especímenes donados a la CNMO.
Al M. en C. Jorge L. Hernández, M. en C. Rosa E. Toral, Biol.
José A. Ruiz y el M. en C. Gerardo Rivas, por la revisión y
valiosos comentarios a la presente obra.
Al Laboratorio de Invertebrados de la Facultad de Ciencias
UNAM y a Fundación UNAM, que me apoyaron durante la
última fase de mi formación académica.
Al programa de becas de tesis de licenciatura PROBETEL,
ya que gracias a este apoyo económico fue posible
estudiar y esquematizar a los quitones.
A mis amigos de toda la vida, por su apoyo incondicional y
seguimiento durante la realización de la presente obra:
Esme, Elvia, Karlota, Lupita, Gus, José y Quique.
Y a todos los colegas, compañeros y amistades que
formaron parte de mi desarrollo durante la licenciatura y
para la conclusión de este proyecto de tesis.
i
Dedicatorias
A Rebeca Gómez Esquivel, por apoyarme durante todo
mi camino recorrido, por el ejemplo de lucha y coraje,
por esos momentos de felicidad, por esa espera,
paciencia y por ser mi madre.
A mis queridísimos hermanos Verónica, Paola Angélica
y Pedro Alfonso, compañeros en la tristeza y alegría y
quienes siempre me impulsaron para la conclusión de
este estudio, por su compañía, ayuda y amor.
ii
CONTENIDO
Pág.
I. Intro ducción
-Generalidades de la Clase Polyplacophora ..........................................................1
-Objetivos ....................................................................................................……..4
-Antecedentes ........................................................................................................5
Colección Nacional de Moluscos (CNMO) ......................................................... 6
II. Área de Estudio
Costa Rocosa ........................................................................................................7
Distribución de los quitones en una costa rocosa .................................................9
Zonas de recolecta de la CNMO ........................................................................ 11
Golfo de California .....................................................................................…... .13
Pacífico Tropical Mexicano ........................................................................…. ..15
Caribe Mexicano ...........................................................................................… .17
Islas Galápagos ........................................................................................….......18
III. Mat erial y Método
Procesamiento de las muestras ...............................................................…........20
Metodología del estudio en la colección .................................................……...21
Quitones de la CNMO .............................................................................….......23
Tratamiento Sistemático .............................................................................…....25
IV. Esquem as Morfológicos
-Esquemas Morfológicos ......................................................................…..........26
-Instrucciones del glosario ............................................................................…..34
Glosario de términos (Mollusca: Polyplacophora) ...................................……..35
iii
Pág.
V. Lista Sistemáti ca de la CNMO
Listado de los quitones en México ................................................................….50
VI. Sistemátic a de la Clase Polyplacophora
FAMILIA ISCHNOCHITONIDAE ............................................................…...56
Género Chaetopleura .........................................................................................58
Chaetopleura scabricula ..............................................................................60
Género Ischnochiton .......................................................................................…66
Ischnochiton muscarius ................................................................................67
Ischnochiton aethalotus ................................................................................72
Género Stenoplax ...............................................................................................77
Stenoplax (Stenoradsia) sonorana ....................................................….......78
Stenoplax limaciformis .................................................................................84
Stenoplax sp. A .............................................................................................89
Género Callistoplax ............................................................................................94
Callistoplax retusa .......................................................................................95
FAMILIA CHITONIDAE ...........................................................................…...98
Género Chiton ..................................................................................................100
Chiton (Chiton) virgulatus ...................................................................…..103
Chiton (Diochiton) albolineatus ................................................................108
Chiton (Diochiton) articulatus ...................................................................112
Chiton (Diochiton) goodallii ......................................................................117
Género Acanthopleura .....................................................................................120
Acanthopleura granulata ...........................................................................121
FAMILIA ACANTHOCHITONIDAE .......................................................….126
Género Acanthochitona ....................................................................................127
Acanthochitona sp. A .................................................................................128
iv
Pág.
VII. Discusión
Biogeografía ...........................................................................…......................139
Sistema de clasificación de los quitones .....................................................….140
Análisis de caracteres ...................................................................…................141
Estudios recientes aplicados a los quitones ...........................................……...147
Problemática en la sistemática de los quitones .............................……...........148
Quitones de la CNMO ..............................................................................……149
Estudio de los quitones en México .......................................................……....151
VIII. Conclusiones
IX. Literatura Citada
X. Apéndice
I. Tablas de datos merísticos ...............................................................…..…..165
II. Listado de especies reportadas para las costas mexicanas ...............….…..178
III. Recolecta y preservado de los quitones .....................................................183
v
CUADROS
Pág.
Cuadro 1. Zonas y Localidades de recolecta de los quitones de la CNMO ...................…19
Cuadro 2. Géneros y especies de la CNMO ..................................................................….23
Cuadro 3. Comparación de tres especies del género Acanthochitona ..............................132
Cuadro 4. Datos merísticos de las especies de la CNMO ..........................................…..177
FIGURAS
Fig. 1. Perfil Hipotético de una playa rocosa .............................................................……10
Fig. 2. Mapa de las zonas de estudio ........................................................................……..12
Fig. 3. Quitón Hipotético ............................................................................................…...27
Fig. 4. Valvas en vista Dorsal ......................................................................................…..28
Fig. 5. Valvas en vista Ventral .................................................................................…......29
Fig. 6. Morfología Interna .............................................................................................….30
Fig. 7. Aparato Digestivo ..........................................................................................….…31
Fig. 8. Escama Hipotética, Sistema Nervioso y Rádula ....................................................32
Fig. 9. Género Acanthochitona ..............................................................................…........33
vi
FIGURAS DE LAS ESPECIES
Pág.
Fig. 10. Chaetopleura scabricula ...............................................................................64 y 65
Fig. 11. Ischnochiton muscarius ........................................................................................71
Fig. 12. Ischnochiton aethalotus .........................................................................................76
Fig. 13. Stenoplax (Stenoradsia) sonorana ................................................................82 y 83
Fig. 14. Stenoplax limaciformis ..................................................................................87 y 88
Fig. 15. Stenoplax sp. A ..............................................................................................92 y 93
Fig. 16. Callistoplax retusa ................................................................................................97
Fig. 17. Chiton (Chiton) virgulatus .................................................................................106
Fig. 18. Chiton (Diochiton) albolineatus ..........................................................................110
Fig. 19. Chiton (Diochiton) articulatus ............................................................................115
Fig. 20. Chiton (Diochiton) goodallii ...............................................................................119
Fig. 21. Acanthopleura granulata ..........................................................................124 y 125
Fig. 22. Acanthochitona sp. A ................................................................................137 y 138
vii
I. INTRODUCCIÓN
GENERALIDADES DE LA CLASE POLYPLACOPHORA
Los poliplacóforos son un grupo antiguo de moluscos estrictamente marinos, mejor
conocidos como quitones. Se distribuyen en playas de litoral rocoso de todo el mundo, se
fijan sobre las rocas y debajo de ellas, aunque también se les puede hallar en sustratos
fangosos. Son organismos con un patrón corporal deprimido (aplanados
dorsoventralmente) y de forma ovalada, presentan simetría bilateral y están adaptados a
deslizarse sobre el sustrato para desplazarse y alimentarse. Presentan hábitos nocturnos y
la mayoría de las especies se encuentran en aguas someras, donde se mantienen la mayor
parte del día expuestos a la acción desecante del sol y a la erosión mecánica de las olas
(Eernisse, 1994).
Estos moluscos pueden presentar tallas desde 3 mm hasta 40 cm, sin embargo, la mayoría
de las especies miden en promedio de 3 a 12 cm, suelen presentar matices parduscos de
rojo, marrón, amarillo y verde, aunque se ha observado que las especies de profundidades
mayores a los 100 m son las más coloridas (Boyle, 1977).
Los quitones presentan una concha dividida en ocho valvas, las cuales se encuentran
traslapadas entre sí, por su morfología estas valvas o placas se dividen básicamente en
tres, una valva cefálica o valva I, seis valvas intermedias (II-VII) y una valva anal o valva
VIII (Smith en Moore, 1960).
Las valvas en vista dorsal están regionalizadas, excepto la valva cefálica; las valvas
intermedias (II-VII) presentan dos áreas laterales y un área central, mientras que la valva
anal presenta una región anteromucronal y una postmucronal. Estas regiones son
distinguibles, ya que presentan diferentes tipos de escultura tegumental u ornamentación,
las formas más comunes son las costillas, surcos y gránulos, aunque algunas especies
pueden ser lisas. Ventralmente las valvas presentan prolongaciones que permiten el
1
contacto entre ellas, así como la inserción al cinturón y permitir se mantengan en su
misma posición. Estas prolongaciones son llamadas placas de inserción (situadas
lateralmente) las cuales se embeben en el cinturón, y apófisis (situadas anteriormente) que
permiten el contacto entre valva y valva (Hyman, 1967).
El cinturón es una estructura periférica musculosa que presenta derivados epidérmicos
como espículas, espinas y escamas de un material calcáreo llamado aragonita. También es
posible encontrar pelos fibrosos, calcáreos y algunas especies presentan cinturón liso, es
decir, están cubiertos únicamente por una fina cutícula protectora (Smith en Moore, 1960).
La mayoría de los quitones son micrófagos y se alimentan de algas finas y de otros
organismos invertebrados, los cuales obtienen raspando la superficie de las rocas y
conchas con su rádula. En general los quitones presentan una dieta alimenticia muy
variada, algunas especies se pueden alimentar de diatomeas y detritus. Algunos estudios
han demostrado que el 75% del contenido estomacal de los quitones corresponde a
sedimentos de minerales finos y partículas, ya que estas partículas son arrastradas junto
con el alimento (Mook, 1983). Sin embargo, algunas especies se alimentan de algas de
dimensiones muy grandes, de crustáceos y de otros moluscos (Eernisse, 1994).
El sistema digestivo se compone de una porción de masa visceral en forma de un tubo o
tracto, este conducto alberga dos tipos de glándulas una digestiva que lleva a cabo parte de
la digestión extracelular y un par de glándulas de azúcar, las cuales secretan mucosas que
acompañan el alimento para ser digerido (Hyman, 1967).
El sistema nervioso de los quitones es primitivo, consiste principalmente de un anillo
nervioso que circunda el esófago del cual parten nervios hacia la región anterior para
inervar la cavidad bucal y el órgano subradular. En dirección posterior el anillo nervioso
forma un par de gruesos cordones nerviosos pedales, que inervan el manto y los órganos
viscerales. Los principales órganos de los sentidos son el órgano subradular y los estetos.
Los estetos son células del manto alojadas dentro de diminutos canales verticales,
2
embebidos en el tegumento de las valvas. Los estetos consisten de un cuerpo denominado
macroesteto, el cual está ramificado, estas ramificaciones se denominan microestetos,
llamados así porque son de menor tamaño que los macroestetos. Estos órganos sensoriales
están presentes en gran número en el tegumento de las valvas, en estudios recientes se ha
calculado que su densidad puede ser mayor a 250 macroestetos y 4, 200 microestetos por
mm2 (Eernisse, 1994).
Los quitones en general son dioicos aunque hay algunas especies hermafroditas, presentan
una sola gónada media, situada enfrente de la cavidad pericárdica. Estos moluscos no
copulan, sino que los gametos salen con las corrientes exhalantes y la fecundación sucede
en el agua o dentro de la cavidad del manto de la hembra. Sus hábitos gregarios facilitan
este tipo de fecundación. Los óvulos, encerrados por una cubierta ornamentada y el
esperma son expulsados envueltos en una matriz gelatinosa que facilita su unión. Una vez
que se han fertilizado externamente desarrollan una trocófora libre nadadora. Estos
moluscos no desarrollan una larva tipo véliger, fenómeno que ha sido interpretado por
muchos autores como la prueba de que el grupo de los quitones es muy antiguo.
Posteriormente las larvas ya desarrolladas se adhieren al sustrato para iniciar sus hábitos
de raspadores de sustratos (Brusca, C. and J. Brusca, 1990).
3
OBJETIVOS
I. Contribuir al conocimiento del estudio de la sistemática de la Clase
Polyplacophora, con una guía sistemática de las especies de quitones de la
Colección Nacional de Moluscos (CNMO).
II. Determinar la situación actual de la Colección de Quitones de la CNMO.
III. Elaborar un glosario ilustrado de la terminología usada en el estudio de los
quitones.
IV. Realizar una revisión bibliográfica actualizada de la sistemática de los quitones,
para la elaboración del primer listado actualizado de especies de quitones en aguas
mexicanas.
V. Describir y elaborar los esquemas de las estructuras taxonómicas más importantes
de las especies de quitones de la CNMO.
VI. Realizar un análisis de caracteres para la estandarización de términos de las
estructuras con importancia sistemática y como estudio básico para la elaboración
futura de un estudio filogenético del grupo.
4
ANTECEDENTES
En México los quitones han sido poco estudiados, son contados los trabajos nacionales
donde se han tomado en cuenta, pero las contribuciones han sido hasta ahora poco
relevantes ya que sólo han sido mencionadas algunas especies en trabajos sobre ecología
costera (Reguero, R. y A. C. García, 1993), así como en listados de moluscos en México
(González en Salazar González, 1993), sin embargo, no se han realizado estudios de
biología básica ni profundizado en el estudio este grupo de moluscos, a pesar de que los
quitones forman parte importante en la dinámica costera de nuestros litorales.
Los estudios más importantes sobre poliplacóforos en México, han sido realizados por
autores extranjeros. Estos trabajos son de carácter monográfico como los de Keen (1958,
1971) y Abbott (1954 y 1974), en donde se presenta la diagnosis, distribución y láminas
de las especies de quitones más abundantes. Algunos especialistas importantes de la
sistemática de los quitones fueron Ferreira (1974, 1976-1987) y Smith (en Moore, 1960,
1976 y 1977), quienes concentraron sus estudios principalmente en los quitones del Nuevo
Mundo, ellos retomaron el estudio sistemático de estos moluscos en los años sesentas y
setentas, después de haberse estancado las investigaciones desde la década de los veintes,
donde el trabajo de Thiele (1929) fue uno de los más importantes. Los trabajos de estos
autores permitieron establecer las bases para el estudio taxonómico moderno de este grupo
de moluscos. Por otro lado, ambos revisaron la mayoría de los especímenes tipo de las
especies, en donde encontraron una serie de errores de los cuales rectificaron sólo algunos
ya que se enfocaron en las familias y géneros más representativos.
En los últimos años, los especialistas en la sistemática y biología de los quitones más
importantes son: Kaas (1993), Kaas y Van Belle (1985a, 1985b, 1987, 1990, 1994 y
1998), Watters (1981, 1990, 1991), Bullock (1985 y 1988) y Eernisse (1988, 1994, 1996 y
1990), quienes han implementado la tecnología de microscopía electrónica para el estudio
a nivel microestructural de los caracteres taxonómicos de estos moluscos.
5
Colección Nacional de Moluscos, CNMO
La CNMO está integrada por dos colecciones, una en el Departamento de Zoología y la
otra en la estación de Biología de Chamela, Jalisco ambos del Instituto de Biología,
UNAM, esta última con carácter regional. Así como otros grupos de moluscos marinos de
la colección, los quitones son parte del material que se encuentran en proceso de curación
(Naranjo, 1993).
Los quitones de la CNMO fueron recolectados por importantes biólogos mexicanos en la
década de los cuarentas y cincuentas, como la Dra. Caso Muñoz, Dr. García Cubas y el
Dr. Villalobos Figueroa. Este material se obtuvo en excursiones de la Facultad de Ciencias
UNAM y bajo la dirección del Instituto de Biología UNAM. Algunas especies como
Chiton (Diochiton) goodallii de las Islas Galápagos, fueron integradas a la colección
mediante donaciones.
La colección cuenta con la categoría de Colección Nacional de Moluscos desde 1997,
designada por la SEMARNAP.
6
II. ÁREA DE ESTUDIO
Los quitones se distribuyen en el litoral de playas rocosas de todo el mundo. Las
condiciones que permiten el establecimiento de estos moluscos en estas regiones, es la
presencia de un sustrato rocoso que suministra alimento, resguardo y área de apareamiento
para las especies (Eernisse, 1994).
Costas rocosas
Estos litorales son de las zonas más diversas y ricas que otros tipos de costas, los
habitantes más comunes son los moluscos y las algas. Las comunidades de las costas
rocosas, están expuestas en promedio cuatro veces diariamente a la acción del oleaje, en
función del movimiento de la marea. Esta acción es diferente de acuerdo a la estación del
año y a los fenómenos oceanográficos de cada región (Little y Kitching, 1996).
La importancia de las mareas en el establecimiento de los organismos, radica en la
tolerancia de éstos ante los cambios de temperatura, exposición a la insolación y
concentraciones de sal y de CO2, las cuales fluctúan constantemente a medida que el nivel
de agua cambia durante el día (Carter, 1988).
El movimiento de los quitones está regulado por el efecto de las mareas. Estos moluscos
son de hábitos nocturnos y el cambio en el nivel del agua del mar les permite desplazarse
hasta las rocas cubiertas para alimentarse de algas y pequeños invertebrados (Boyle,
1977). Algunos estudios han permitido observar que el tamaño de los quitones tiene ver
con su patrón de distribución vertical, el cual está relacionado con el tamaño del pie, es
decir, hay una relación entre la superficie de adhesión al sustrato y el tamaño del pie de los
quitones, de tal manera que los organismos más pequeños se encuentran más al fondo que
los adultos que suelen ser más costeros (Otaíza y Santelices, 1985).
7
El efecto desalojante de las corrientes locales, remolinos y contracorrientes tienden a
separar a los organismos de sus ambientes naturales. A esto se debe que la gran mayoría
de la población tenga que fijarse fuertemente a las rocas, mientras que otras especies
tengan que enterrarse en la arena o en el fango (Ommanney, 1953).
Las olas representan un elemento mecánico destructivo y erosivo para las rocas de la
costa, esto ha influido en que los habitantes de la orilla presenten una forma en general
aplanada. Por otro lado, las olas permiten que se depositen sedimentos entre las rocas y
que se renueve el oxígeno y disuelva el dióxido de carbono concentrado (Ommanney,
1953). Además las olas tienen un efecto importante en el movimiento de los organismos
para alimentarse y para huir de los depredadores, así como humectar constantemente a las
rocas más altas con la acción del rompe olas (Little y Kitching, 1996).
Una de las características principales de las playas rocosas es el de presentar una banda
horizontal de distribución de la flora y la fauna, mejor conocida como zonación. Estos
patrones de distribución de los organismos son muy similares en todo el mundo ya que el
desarrollo de las comunidades no cambia (Carter, 1988).
Debido a la semejanza de la dinámica de las costas, pueden estudiarse bajo modelos, uno
de ellos es el esquema de “Stephensons” de 1949 (en Little y Kitching, 1996), que muestra
la división de la costa rocosa. En este modelo se divide a la costa en: “línea supralitoral”,
que va desde el límite más bajo (por arriba del nivel donde los balanos se encuentran) y se
extiende hasta el límite de distribución de los gasterópodos del género Littorina, la parte
media o “litoral medio” y la “infralitoral” (Nybakken, 1993).
Las causas que explican esta distribución de los organismos se deben a factores físicos y
biológicos. En cuanto a los factores físicos el elemento más importante es la acción de las
mareas, ya que refleja la tolerancia de los organismos en cuanto al incremento de la
exposición al aire y a la desecación, así como a las temperaturas extremas. Los factores
8
biológicos son: la competencia, predación, forrajeo y el establecimiento larval (Little y
Kitching, 1996).
Estos factores físicos y biológicos determinan en gran escala el patrón de distribución
vertical de los organismos en las costas de las playas rocosas, los cuales reflejan los
límites de las especies de acuerdo a su nivel de tolerancia y de las interacciones que
puedan presentar con otros organismos costeros (Nybakken, 1993).
Los quitones se encuentran fuertemente adheridos a las rocas, entre las hendiduras o
debajo de ellas. Aunque algunas especies pueden permanecer expuestas al aire y al sol, en
general se distribuyen en las rocas siempre cubiertas por el agua, en la parte infralitoral y
en las rocas más altas, cerca del litoral medio donde el sustrato rocoso está humectado
todo el tiempo por la acción del rompe olas.
Distribución de los quitones en una costa rocosa
En la Fig. 1. Se muestra la distribución de los 6 géneros de quitones de la CNMO, en un
perfil hipotético de una costa rocosa, según lo reportado por autores como: Thiele (1929),
Smith (en Moore, 1960), Mook (1983), Ferreira (1983b), Ferreira (1984), y Bullock
(1988).
El género Chiton se distribuye entre los 2 y 4 m a partir de la zona intermareal en rocas
altas y siempre humectadas por el oleaje, estos quitones están más expuestos y entre las
grietas de las rocas (Bullock, 1988). El género Chaetopleura se localiza en este mismo
rango, pero generalmente están siempre bajo las rocas y enterrados en la arena (Ferreira,
1983b).
9
DISTRIBUCIÓN DE LOS QUITONES EN UN PERFIL DE COSTA ROCOSA
Fig. 1. Distribución de los quitones en un perfil hipotético de una costa rocosa: a) Género Chiton, b) Chaetopleura, c) Acanthopleura, d) Ischnochiton, e) Callistoplax, f) Stenoplax, g) Acanthochitona.
litorinas
a
b
c
d
e
fg
0
2
4
6
mts.
2 4 6 8 10 12 14 16 mts.
10
Los quitones del género Acanthopleura, se encuentran la mayor parte del tiempo entre los
4 y 6 mts. a partir de la zona intermareal, aunque se ha observado que presentan
movimiento según las mareas, prefieren las zonas de rompiente para alimentarse (Mook,
1983; Randall y Martin, 1987). Mientras que el género Ischnochiton se localiza entre los 8
y 10 mts. donde están cubiertos todo el tiempo por el agua, es común encontrarlos en
zonas donde las rocas son pequeñas y donde haya una gran cantidad de algas costrosas
(Ferreira, 1984).
El género Callistoplax se distribuye siempre en zonas más profundas donde hay pocas
rocas y mayor cantidad de arena (Smith en Moore, 1960). Los quitones del género
Stenoplax se localizan preferentemente entre los 10 y 12 mts. a partir de la zona
intermareal, donde las rocas son de tamaño mediano y donde haya gran cantidad de algas,
durante el día es muy común encontrarlos con especímenes del género Ischnochiton. Los
quitones del género Acanthochitona se encuentran en las zonas más profundas a diferencia
de los géneros anteriormente mencionados, ya que se localizan entre los 14 y 16 mts. con
respecto a la zona intermareal (Thiele, 1929).
Zonas de recolecta de la CNMO
Los quitones de la CNMO, corresponden a localidades en las playas rocosas mexicanas
primordialmente del Pacífico, aunque también existe material proveniente del Caribe y de
las Islas Galápagos, Ecuador. A continuación se describen estas regiones de recolecta, las
cuales se dividieron en cuatro grandes zonas.
Estas zonas se han clasificado por su origen, características geológicas y oceanográficas:
1) Golfo de California (Costa este de Baja California Sur, Mazatlán, Sinaloa y el Norte de
Jalisco), 2) Pacífico Tropical Mexicano (Zihuatanejo y Acapulco, Guerrero, y Oaxaca), 3)
Caribe Mexicano (Islas y costas de Quintana Roo) y 4) Islas Galápagos, Ecuador ( Fig. 2).
11
ZONAS DE RECOLECTA
Fig. 2. Localidades del material depositado en la Colección Nacional de
Moluscos12
Descripción de las Zonas Costeras
1) Golfo de California
Hace aproximadamente 12 millones de años el Golfo de California se originó, dando como
resultado una cuenca estructuralmente compleja, donde se registran todo tipo de accidentes
topográficos, originados por la acción del movimiento del piso oceánico del Mar de Cortés
(De la Lanza, 1991).
Los tres tipos de rocas que ocurren en la península como fuente de sedimentos hacia el
golfo son: ígneas, metamórficas y sedimentarias en el Norte y en algunas partes del Sur.
Los sedimentos depositados en este mar son de origen orgánico e inorgánico, los primeros
constituidos por formas pláncticas y bénticas, siendo en su mayoría autóctonos de la
cuenca. Los de origen inorgánico han sido el producto de la erosión de las rocas que
afloraron en los dos márgenes costeros (Shepard, 1973).
En cuanto a la oceanografía física del Golfo de California, presenta una zona única que
corresponde al área de Baja California Sur, debido a su situación geográfica y compleja
topografía. Esta zona presenta corrientes que aumentan la temperatura, salinidad y
concentraciones de oxígeno disuelto que son anormales en estas áreas.
El gradiente de temperatura media mensual es muy grande, ya que va desde los 9° C cerca
del Cabo Corrientes hasta 22° C en la boca del río Colorado. La entrada al Golfo (definida
como el área triangular limitada por la costa de México, entre Mazatlán y Cabo Corrientes)
presenta principalmente frentes, remolinos e intrusiones que pueden estar ligados a la
confluencia de tres distintas corrientes, las salinidades son las más bajas y con la mayor
precipitación de todo el golfo (De la Lanza, 1991).
Según Shepard (1973) el Golfo de California queda comprendido en tres “provincias
topográficas”: Norte, Central y Sur. La primera está delimitada desde la desembocadura del
Río Colorado hasta una línea imaginaria que comprende desde la Cuenca Salsipuedes a
13
Guaymas; la región central tiene como límite la línea entre Santa Rosa y la del Sur se
encuentra de Topolobampo hasta Cabo Corrientes, Jalisco.
Provincia Norte
Está caracterizada por capas gruesas de sedimentos provenientes del río Colorado, que han
conformado una plataforma continental muy amplia. Dos rasgos topográficos sobresalen en
esta planicie marina, el promontorio sedimentario-metamórfico llamado roca Consag y dos
pequeñas cuencas alineadas de Norte a Sur. Dentro de esta provincia topográfica se ubican
las mayores islas del Golfo de California: Tiburón, Angel de La Guarda y San Lorenzo.
Provincia Central del Golfo
Comprende una plataforma continental muy estrecha (5 km.), en el caso de la costa de
Sonora, entre Guaymas y la desembocadura del Río Mayo, la pendiente del talud es
moderada hasta una profundidad de 450 m, con pequeños escarpes y rizaduras hacia los
200 m.
Al Sur de este río la plataforma se amplía (25 km), mientras que el talud se modifica,
haciéndose más abrupto y accidentado. El relieve es más escarpado y las pendientes
mayores a 45°. La Cuenca de Guaymas es una depresión alargada en posición NO-SE, con
su porción más amplia a la altura del Sur del Puerto de Guaymas. Las capas de sedimentos
que predominan son en su mayoría biogénicos, que se han acumulado durante 2.5 m.a.
aproximadamente con velocidades elevadas de sedimentación.
Provincia Sur
En contraste con los extensos abanicos sedimentarios del Norte y las cuencas centrales de
pendientes suaves del centro del golfo, la topografía de la parte Sur está caracterizada por
ser muy irregular, con montes y cañones submarinos que hacen la topografía del piso
14
oceánico más compleja. En el margen continental del golfo la plataforma está sumamente
recortada a la altura de Topolobampo, haciéndose más amplia a lo largo de la costa de
Sinaloa y Nayarit, desapareciendo nuevamente frente a Puerto Vallarta, Jalisco. En
Mazatlán, Sinaloa el talud continental posee una pendiente moderada (entre los 80-700m) y
alcanza su máxima amplitud frente a las Islas Marías. Hacia el Sur presenta una serie de
escarpes que se acentúan frente a la isla Carmen, y a partir de la isla San José los escarpes
se hacen más amplios entre las Islas Espíritu Santo y Cerral.
2) Pacífico Tropical Mexicano
El litoral mexicano en el Océano Pacífico Tropical mide 4, 054 km. de longitud, dentro de
los cuales aproximadamente el 42% corresponde al Pacífico Tropical Mexicano, que está
comprendido entre Cabo Corrientes y la frontera con Guatemala. Presenta tres rasgos
topográficos sobresalientes: la Dorsal del Pacífico, Este, la zona de Fracturas y la Trinchera
Mesoamericana. Su topografía carece de simetría y sus dorsales son las grandes trincheras
que circunscriben la mayor parte de los límites del océano (De la Lanza, 1991).
La plataforma continental alcanza hasta 70 km de anchura, la menor amplitud se encuentra
frente a las costas de Oaxaca al oriente de Punta Galera, reduciéndose a unos 4-6 km.,
amplitud que se continúa hasta el meridiano 90° donde se inicia bruscamente una
ampliación que alcanza hasta 50 km en el Golfo de Tehuantepec, frente a las costas de
Chiapas y Guatemala, donde la plataforma es muy ancha, alcanzando su máxima
profundidad. El talud continental, se encuentra más o menos uniforme en amplitud (de 25-
50 km) y profundidad (2, 500 a 3, 000 m), que presenta laderas escarpadas especialmente
frente a las costas de Michoacán y Oaxaca.
Las rocas más profundas y expuestas a todo lo largo de la costa mexicana son
principalmente de origen ígneo y metamórfico, desde Cabo Corrientes hasta el Golfo de
Tehuantepec. Los sedimentos superficiales de la plataforma continental del estado de
Guerrero se distribuyen por lo general, según la relación arena/ lodo, en franjas paralelas a
15
la línea de costa y disminuyen gradualmente en tamaño desde arenas a lodos, conforme
aumenta la profundidad y se aproxima al talud (Carranza et al., 1975).
En el área de Acapulco en el complejo metamórfico Choloapa, los ríos son los principales
elementos de aporte de sedimentos gruesos (gravas y arenas), mientras que las lagunas
aportan los sedimentos finos (lodos). En el Golfo de Tehuantepec los sedimentos van desde
arenas medias a muy finas, donde los foraminíferos bénticos son más abundantes que los
pláncticos hacia profundidades menores a los 59 m, mientras que los aportes del continente
son escasos (De la Lanza, 1991).
La estructura térmica del Pacífico Tropical Este, se caracteriza por presentar una capa de
mezcla, donde la temperatura es casi constante. La variación anual de la temperatura
superficial fluctúa entre 26 y 28° C. En las costas de Guerrero la temperatura superficial en
febrero es de 28° C y de 15° C a 100 m de profundidad. El Golfo de Tehuantepec se
caracteriza por una distribución heterogénea de la temperatura superficial, debida al efecto
del viento. En invierno las temperaturas superficiales son bajas, donde la velocidad del
viento es alta (Carranza et al., 1975).
En cuanto al régimen de mareas que se presentan en las costas del Pacífico Tropical
Mexicano son de tipo mixto, este movimiento total de la marea se propaga desde Cabo
Corrientes hacia el Sur, entre Puerto Vallarta, Jalisco e Isla Socorro, Colima, las pleamares
y bajamares acontecen casi simultáneamente. La zona comprendida entre Manzanillo,
Colima; Zihuatanejo, Guerrero, se caracteriza porque en los cuartos de luna (menguante y
creciente), la marea se convierte en diurna unos días antes y después de dichas fases. Para
Acapulco, Guerrero, el régimen de mareas también es mixto.
El régimen de mareas para el Golfo de Tehuantepec es mixto semidiurno. Sin embargo, la
fase de marea varía muy lentamente, o sea que las horas de pleamares y bajamares en toda
esta zona ocurren casi simultáneamente.
16
17
3) Caribe Mexicano
El origen y evolución de las cuencas del Golfo de México y Mar Caribe, han sido
analizadas en base a la teoría de la tectónica de placas que se fundamenta en la expansión
del piso oceánico. El Mar Caribe se extiende en un área de 2, 640, 000 km 2 y una
profundidad superior a la del Golfo de México de 4, 000 m. Esta cuenca caribeña se
conforma por depresiones abisales, trincheras, crestas montañosas y canales submarinos.
La plataforma continental del Caribe Mexicano es muy estrecha con sólo 20 km de
extensión, frente a Cancún y gradualmente se atenúa hacia el Sur y en Pto. Morelos
prácticamente desaparece. Hacia la Isla de Cozumel y el Blanco de Flecha son elevaciones
alargadas, donde el talud se interrumpe.
El Caribe Mexicano, presenta una secuencia de afloramientos submarinos irregulares, y
está formada principalmente por sedimentos que contienen grandes cantidades de
carbonatos de tipo biogénico y zonas arrecifales muy limitadas. En la costa Este de la
Península de Yucatán dominan las arenas carbonatadas de tipo biogénico y zonas
arrecifales, localizados sobre la plataforma continental del borde oriental de la península y
en el litoral de la Isla Cozumel, los cuales aportan alrededor del 70% de las arenas
carbonatadas biogénicas.
Isla Aguada, Campeche y hasta Chetumal, Quintana Roo, presentan costas formadas por
depositación marina que origina playas e islas de barrera y costas formadas por organismos
marinos que favorecen la formación de arrecifes coralinos y zonas de arrecifes bordeantes
(De la Lanza, 1991).
17
4) Islas Galápagos, Ecuador
El archipiélago de las Galápagos es un conjunto de cumbres que se formó hace 5 m. a., son
porciones de roca volcánica que emergieron poco más de 1, 100 k. de los Andes en medio
de las profundidades del Pacífico. El archipiélago está constituido por 16 islas, 14 islotes y
47 rocas con una superficie superior a los 8, 000 km2.
Las islas más importantes son: Fernandina, Isabela, Santa María de Floreana, Pinzón, San
Salvador, Marchena, Pinta, Genovesa, Santa Cruz, Santa Fe, San Cristóbal (Chatham),
Española, Baltra y Tortuga.
La zona volcánica más activa del archipiélago es la occidental, en los volcanes de las islas
Isabela y Fernandina se han presentado erupciones recientes. Con estas circunstancias, es
natural que las tierras del archipiélago sean de roca viva, rugosa y áspera, donde se
establecen una gran diversidad de aves e invertebrados (Rubio, 1988).
La Isla Galápagos están rodeadas por aguas frías ricas en nutrientes, esto es el resultado de
la combinación de los procesos oceanográficos originados principalmente por el viento
(que sopla de Este a Oeste), que permite que el agua ecuatorial se enfríe por medio del
Sistema de Corrientes del Perú (Chávez y Brusca en James, 1991).
Estas islas se caracterizan por presentar variaciones interanuales en sus procesos
oceanográficos, ya que están bajo la influencia de varios sistemas de corrientes asociadas a
las masas de agua. Estas regiones ecuatoriales presentan una temperatura superficial
anormal si consideramos que se encuentran en una región tropical llamada “sistema de alta
presión” (Rubio, 1988).
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Ubicación geográfica de las localidades del material de la CNMO
ZONA LOCALIDAD UBICACIÓN
Piedras del Nte. y Bahía Eclipse LAT N 24° 35’ 00’’; 110° 20’ 00’’ LONG W
Baja California Sur Isla Espíritu Santo LAT N 24° 30’ 00’’; 110° 21’00’’ LONG W
Bahía Falsa, La Paz LAT N 24° 35’ 00’’; 110° 24’ 00’’ LONG W
Guaymas, Sonora Pto. Guaymas LAT N 27° 54’ 00’’; 110° 54’ 18’’ LONG W
Entre Isla Chivos e Isla Piedra LAT N 23° 10’.44’’; 106° 23’ 51’’ LONG W
Isla de los Chivos LAT N 23° 10’.46’’; 106° 24’ 53’’ LONG W
Cerro del Crestón LAT N 23° 10’ 35’’; 106° 25’ 42’’ LONG W
Mazatlán, Sinaloa Playa Sur LAT N 23° 12’ 20’’; 106° 25’ 42’’ LONG W
Playa Los Sábalos LAT N 23° 15’ 56’’; 106° 28’ 00’’ LONG W
Isla de la Piedra LAT N 23° 10’ 35’’; 106° 24’ 08’’ LONG W
Isla de los Pájaros LAT N 27° 53’ 14’’; 110° 51’ 01’’ LONG W
Jalisco Puerto Vallarta LAT N 22° 11’ 38’’; 105° 30’ 00’’ LONG W
Pulpito, Pto. Vallarta LAT N 22° 45’ 10’’; 105° 20’ 13’’ LONG W
Isla Ixtapa, Zihuatanejo LAT N 17° 40’ 41’’; 101° 39’ 20’’ LONG W
Playa Las Gatas, Zihuatanejo LAT N 17° 39’ 45’’; 101° 37’ 30’’ LONG W
Playa Camino Contramar LAT N 17° 38’ 40’’; 101° 35’ 27’’ LONG W
Guerrero Playa La Ropa LAT N 17° 37’ 50’’; 101° 32’ 50’’ LONG W
Playa Corralitos LAT N 17° 22’ 43’’; 101° 30’ 49’’ LONG W
Acapulco LAT N 16° 51’ 08’’; 99° 53’ 07’’ LONG W
Oaxaca Puerto Angel LAT N 15° 39’ 00’’; 96° 31’ 00’’ LONG W
Salina Cruz LAT N 16° 10’ 00’’; 95° 12’ 00’’ LONG W
Quintana Roo Isla Mujeres LAT N 21° 15’ 24’’; 86° 45’ 04’’ LONG W
Isla Cozumel LAT N 20° 30’ 00’’; 86° 50’ 08’’ LONG W
Islas Galápagos, Ecuador San Cristóbal, Chatham LAT N 1° 27’ 00’’; 91° 00’ 00’’ LONG W
Cu adro. 1. Relación que muestra la ubicación de las localidades de muestreo de los
quitones de la CNMO.
19
III. MATERIAL Y MÉTODO
Procesamiento de las muestras
El material estudiado de la Colección Nacional de Moluscos se encontró en formaldehído al
10%, el cual se lavó en agua corriente por una semana para eliminar cualquier resto del
fijador. Posteriormente el fijador se sustituyó por alcohol al 75%.
Los especímenes de los lotes se separaron por especie, mediante el uso de bibliografía
básica (Keen, 1958; Thorpe en Keen, 1971 y Abbott, 1974). Cada sublote se enumeró y se
le anexó una etiqueta con los mismos datos generales de la colecta original, que incluyeron:
nombre de la especie, autor y año, número de catálogo, localidad de la colecta, fecha (día,
mes y año), colectores, nombre de quién determinó a la especie y fecha de determinación
de la especie.
Simultáneamente a la identificación, se obtuvieron los datos morfométricos de cada
espécimen. Las mediciones fueron tomadas con vernier, usando la escala mínima o décimas
de mm. Los caracteres registrados fueron: longitud total del organismo (incluyendo
cinturón), ancho (incluyendo cinturón), ancho de la valva V (valva intermedia de mayor
anchura), ancho del cinturón y el peso total. El peso se registró en una balanza granataria
digital marca sartorius, en las mediciones se consideró hasta centésimas de gramo, ya que
algunos lotes presentaron organismos muy pequeños.
Los registros se vaciaron en tablas para cada especie, con las siguientes abreviaturas: Ind. #
(número para cada espécimen), No. (número de lote), Loc. (se refiere a la región de colecta,
P: Pacífico; G: Golfo de México; A: Caribe; IG: Islas Galápagos), Zona (corresponde a la
localidad de recolecta), L (longitud total del organismo, incluyendo cinturón), A (ancho del
organismo), V (longitud de la valva intermedia V), AC (ancho del cinturón), Wg (peso del
organismo en gr.) (Ver apéndice I). Finalmente se calculó la media de la longitud total y del
20
ancho de los especímenes, que nos permiten conocer las proporciones promedio del cuerpo
de la especie (Ver cuadro 4).
Metodología de Estudio en la colección
La descripción taxonómica de las especies, se llevó a cabo mediante observaciones bajo
microscopio estereoscópico de todos los especímenes. Durante las observaciones se
mantuvo a los ejemplares siempre humectados, rociándoles constantemente fijador (alcohol
al 75%) con una piseta.
El carácter cualitativo que se estudió inicialmente fue el de la morfología total del
organismo en vista ventral y dorsal (Fig. 3 y 4), forma del cuerpo y coloración en
preservado. Posteriormente se desarticularon las valvas, usando pinzas de relojero y bisturí,
de seis especímenes (cuando la muestra era lo suficientemente grande, cuando no lo era, se
desarticulaban tres especímenes y en material único se desarticuló sólo uno) de diferentes
tamaños, dos de los más pequeños, dos juveniles o de talla media y dos de la mayor
longitud o adultos.
Las valvas desarticuladas permitieron observar dorsal y ventralmente la morfología de los
caracteres taxonómicos más importantes. Dorsalmente: elevación de las valvas, tipo y
disposición de la escultura del tegumento para cada región de las valvas, cefálica (I), valvas
intermedias (II-VII) y anal (VIII), ápice, mucro, placas de inserción y apófisis (Fig. 4).
Ventralmente: color, apófisis, dientes de inserción, seno yugal, placa yugal, pliegue
periostracal y poros de los estetos (Fig. 5).
Aunque sólo se describen las valvas I, V y VIII (cefálica, intermedia y anal), las
observaciones de las valvas restantes (II-VII homólogas a la valva V, ya que también son
intermedias) permitieron detectar en algunas especies, ciertas variaciones morfológicas que
se mencionan en la descripción en el apartado de las valvas. Para estudiar los derivados
21
epidérmicos fueron desprendidos del cinturón para una mejor observación y se determinó el
tipo, superficie u ornamentación y parte basal o de fijación al cinturón.
Se ilustraron las especies estudiadas en vista dorsal (organismo completo, incluyendo
cinturón), en vista ventral las valvas cefálica (I), valva intermedia (V) y valva anal (VIII).
Para las especies no definidas o complejas, se esquematizaron las valvas en vista dorsal,
para mostrar las diferencias de tegumento que presentan con respecto a las demás, especies
denominadas como sp. A, hasta que se les asigne un nombre específico. También se
esquematizó un acercamiento de la disposición de los derivados epidérmicos del cinturón,
así como la morfología de un elemento (escama o espícula) en varios ángulos,
generalmente frontal y/o basal.
La elaboración de los esquemas en vista dorsal (organismo completo), requirió de elegir un
espécimen completo y aplanado, es decir, un organismo no enrollado para poder ser
dibujado y que presentara los caracteres taxonómicos representativos de cada especie.
Los esquemas de las valvas, corresponden a organismos diferentes al dibujado en vista
dorsal (organismos completo). Se desarticularon especímenes con valvas en buen estado o
completas en vista ventral, sobre todo de las placas de inserción. Los esquemas se
elaboraron a la escala mínima de un vernier (décimas de mm). Los trazos iniciales se
elaboraron en lápiz, sobre papel de cálculo (cuadriculado de 1 cm) y el esquema final se
elaboró sobre papel vegetal o albanene y con estilógrafos de tamaño de trazo 0.13, 0.18 y
0.25.
* Todos los esquemas de las especies de la CNMO y del Glosario de
términos son Originales del Autor del presente estudio, así mismo se
menciona la referencia bibliográfica de donde hayan sido tomados las
figuras redibujadas.
22
Quitones de la Colección Nacional de Moluscos
La CNMO cuenta con un total de 457 especímenes de quitones, los cuales están contenidos
en 7 géneros y 13 especies.
Quitones de la CNMO
Género Especie # especimenes
Chaetopleura Chaetopleura scabricula 12
Ischnochiton Ischnochiton muscarius 41
Ischnochiton aethalotus 49
Stenoplax (Stenoradsia) sonorana 4
Stenoplax Stenoplax limaciformis 2
Stenoplax sp. A 2
Callistoplax Callistoplax retusa 5
Chiton (Chiton) virgulatus 32
Chiton Chiton (Diochiton) albolineatus 122
Chiton (Diochiton) articulatus 132
Chiton (Diochiton) goodallii 3
Acanthopleura Acanthopleura granulata 22
Acanthochitona Acanthochitona sp. A 31
Total 457
Cuadro 2. Cantidad de especimenes por especie y género de la CNMO.
La mayoría de las muestras se encontraron en fijador formaldehído al 10%, el cual se
substituyó por alcohol al 75%. Algunos lotes presentaron especimenes como C. goodallii
con 3 ejemplares en seco, que representaron la totalidad de la muestra al igual que
Ischnochiton aethalotus con 49 especimenes.
23
El material del a CNMO está conformado en su mayoría por organismos adultos, los
juveniles son escasos, como los especimenes del género Stenoplax y Chiton. Por el
contrario Ischnochiton muscarius fue la especie que presentó una gran variedad de
organismos de diferentes tallas.
Las especies de la CNMO en general se distribuyen en la zona media (6-12 mts.) de la facie
rocosa de las playas (Fig. 1), por esta razón es que se registran en las muestras, una gran
cantidad de especimenes adultos. En esta zona la recolecta de los especimenes es accesible,
ya que aún con marea alta la profundidad es menor a tres metros. Estos organismos suelen
presentar ciertos problemas para ser fijados, ya que pueden adoptar una forma enrollada y
ser más difícil la observación de las estructuras taxonómicas. El 65% de los ejemplares se
encuentran enrollados, pero el resto de los especimenes se encuentran en buenas
condiciones de preservado lo que facilitó las observaciones a las estructuras estudiadas.
Aunque las muestras se mantuvieron en formaldehído por más de 50 años, la mayoría de
los especimenes mantuvieron sus colores originales, ya que se encontraron resguardadas en
gavetas obscuras, sólo algunos especimenes sufrieron alteraciones en su coloración sobre
todo en el cinturón. Tal es el caso de Acanthochitona sp. A, donde el cinturón de una
muestra presenta verdes más intensos que en otra de la misma especie. Otro claro ejemplo
es el de Stenoplax (Stenoradsia) sonorana que presentó una coloración uniforme, tanto para
las valvas como para el cinturón de amarillo verdoso, probablemente por la acción
prolongada del fijador.
Este fijador no es recomendable para preservar a los quitones, ya que ocasiona que se
ablande el material de las valvas provocando que se desprendan del cuerpo del organismo
(Ver apéndice III).
La escultura del tegumento para algunas especies fue desgastada o erosionada, tal es el caso
de los especímenes del género Chiton y Stenoplax. Otras especies como Chaetopleura y
24
Acanthopleura, se encontraron densamente cubiertas por briozoos (invertebrados
coloniales) y algas.
Tratamiento Sistemático y Descripciones
El apartado sistemático del presente estudio incluye: nombre, autor y año de la especie,
sinonimias (reportadas por autores que estudiaron la sistemática de este grupo de moluscos
y que se menciona según sea el caso) y material revisado, donde se especifica el número de
especímenes estudiados, talla mínima y máxima de los especímenes, localidad, fecha de
recolecta, número de catálogo de la Colección Nacional de Moluscos, precedido de la
abreviatura CNMO- y posteriormente el número de catálogo para cada lote, así como el
número total de los organismos observados.
La descripción de las especies contiene los siguientes caracteres: cuerpo, que especifica los
datos merísticos (mayor, la media y menor) de la longitud y ancho de la especie,
incluyendo el cinturón y el color de los especímenes en preservación; tipo de tegumento de
las valvas cefálica (I), intermedia (II-VII) y anal (VIII); cinturón, que incluye el tipo de los
derivados epidérmicos; descripción morfológica de las valvas cefálica (I), intermedias (V)
y anal (VIII). En algunas especies se describió la disposición de los ctenidios (branquias) en
el surco paleal, ya que presentaron diferencias con respecto a las demás especies.
El apartado sistemático, también incluye la distribución mundial y local de la especie;
observaciones del material revisado acerca de sus variaciones intraespecíficas y con otras
especies, así como la discusión que contiene información de su biología y de la
problemática en su sistemática actual.
25
IV. ESQUEMAS MORFOLOGICOS
QUITÓN HIPOTÉTICO EN VISTA DORSAL
Fig. 3. Representación de los tipos de escultura del tegumento y derivados epidérmicos
del cinturón en un quitón hipotético.
ANTERIOR
POSTERIOR
26
27
B
A
B
C
Fig. 4. Valvas en vista dorsal: A) valva cefálica (I); B) valva intermedia (II-VII) y C) valva anal (VIII).
28
ABC
Fig. 5. Valvas en vista ventral. A) valva cefálica (I); B) valva intermedia
(II-VII)
A
B
C
Fig. 6. Estructura interna: A) corte transversal de un quitón ( redibujado y modificado
de Barnes, 1989); B) corte transversal del cinturón y C) corte transversal del tegumento de la
valva donde se muestran los estetos (redibujado de Barnes, 1989).
pliegue exterior del manto
29
30
Fig. 7. Corte transversal de un quitón, donde se muestran las principales estructuras del aparato digestivo.
31
Fig. 8. A) dientes de la rádula (redibujado de Bullock, 1985); B) sistema nervioso (redibujado de Eernisse, 1994); C) Escama hipotética que muestra los tipos de ornamentación dorsal (modificado y redibujado de Bullock, 1985).
A B
C
32
ABCFig. 9. Estructuras taxonómicas de las valvas en vista dorsal del género Acanthochitona.A) valva cefálica (I), B) valva intermedia (V), C) valva anal (VIII).
33
INSTRUCCIONES DEL GLOSARIO
El siguiente glosario incluye la terminología más usada en el estudio sistemático del grupo de los quitones.
La primera palabra en mayúsculas marcada en negritas corresponde al término en español, las palabras entre paréntesis y minúsculas se refieren a los sinónimos más comunes de la estructura. La primera palabra entre corchetes y negritas corresponda al término y sinónimos en inglés de la misma estructura, según sea el caso. Posteriormente se explica la definición del término en cuestión.
Al final de algunas de las definiciones, se indica entre paréntesis, la figura a la que corresponde el ejemplo gráfico del término en el apartado de los esquemas morfológicos del grosario.
34
GLOSARIO
ANILLO NERVIOSO CEREBROBUCAL: [cerebrobuccal nerve ring]. Anillo de tejido nervioso que rodea a la cavidad bucal. A partir de este se origina directamente un par de nervios laterales, el nervio del pie y los conectivos bucal y subradular. (Fig. 8-B).
ANO: [anus]. Apertura posterior del tracto digestivo localizado detrás del pie, usualmente cubierto por una papila. (Fig. 6-A).
AORTA: [aorta]. Vaso sanguíneo principal dorsal localizado en el ventrículo del corazón, en la porción final del cuerpo, el cual eleva los canales de la gónada y los músculos de las valvas.
ÁPICE: [apex]. Punto elevado, borde posterior de una valva intermedia, ocasionalmente también es llamado umbo o pico de la valva. (Fig. 4-B).
APÓFISIS (Placa sutural, lámina sutural): [apophysis, sutural plate, sutural lamina]. Uno de los dos adelgazamientos localizados en la porción anterior de cada valva excepto en la valva cefálica, compuesta por el hipostraco (llamado articulamento), quedando siempre por debajo de la siguiente valva en la zona de inserción. Es una proyección anterior del articulamento de tamaño variado que se extienden a ambos lados de las valvas intermedias y anal. (Figs. 4-B,C).
ÁREA CENTRAL (Triángulo central, triángulo medio): [central area, central triangle, median triangle]. En las valvas intermedias; área media triangular delimitada en las áreas laterales por dos líneas diagonales, en la zona media presenta el área yugal o yugum. Su superficie es diferente con respecto a las áreas laterales. (Fig. 4-B).
ÁREA LATERAL (Triángulo lateral): [lateral triangle, lateral area]. Localizada en las valvas intermedias, área triangular separada del área central por medio de dos líneas diagonales o costillas. (Fig. 4-B).
ÁREAS LATEROPLEURALES: [lateropleural areas]. Zonas laterales del tracto yugal de las valvas II-VII, sin líneas o surcos diagonales que diferencien la superficie en regiones. Corresponden a la región de cada lado del tracto yugal. Utilizado principalmente para el género Acanthochitona, ya que no presentan áreas laterales, únicamente el tracto yugal hacia el centro de la valva, mientras que el resto de la superficie corresponde a las áreas lateropleurales. (Fig. 9-B).
ÁREAS RADIALES: [radial areas]. Se refiere a las valvas intermedias, corresponde a la zona del área central y las áreas laterales. Ver VALVA INTERMEDIA. (Fig. 4-B).
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ÁREAS TERMINALES: [terminal areas]. Superficie radial de la valva cefálica y de la región postmucronal de la valva anal. Ver VALVA CEFÁLICA Y ANAL. (Figs. 4-A y C).
ARTICULAMENTO: [articulamentum]. Lámina de la valva que se proyecta anteriormente para formar la apófisis, capa que forma las placas de inserción y la lámina sutural. Ver HIPOSTRACO Y APÓFISIS. (Fig. 6-B).
AURÍCULA (Atrio): [atrium, auricle]. Cada una de las dos cámaras laterales musculares del corazón, que recibe la sangre de los ctenidios por medio de los poros auriculares y que es transportada a través del ventrículo hasta el ostio auriculoventricular. (Fig. 6-A).
BOCA: [mouth]. Apertura anterior del tracto digestivo correspondiente al conducto bucal, situada frente al pie en la superficie ventral de la cabeza. (Fig. 6-A).
BORDE RADULAR: [blade]. Engrosamiento distal de los dientes radulares, con un borde filoso. Ver RÁDULA. (Fig. 8-A).
BORDE: [eave]. Porción del tegumento localizado sobre la línea donde las placas de inserción y la lámina sutural se proyectan. Según sus características se le denomina: “borde esponjoso o compacto”. Es un término usado por algunos autores para describir a las especies, pero actualmente se ha observado que es un caracter muy variable dentro de una misma especie. Ver LÁMINA SUTURAL. (Fig. 5-B).
CABEZA: [head]. Región anteroventral del cuerpo que alberga la boca del organismo, bordeada por la cavidad del manto y separada del pie por un surco transversal. (Fig. 6-A).
CÁMARA EXHALANTE: [exhalent chamber]. Región interna del surco paleal, a través del cual el agua fluye una vez que ha pasado por los ctenidios, los cuales la separan de la cámara inhalante. (Fig. 6-A).
CÁMARA INHALANTE: [inhalent chamber]. Región externa del surco paleal por donde fluye el agua antes de pasar a los ctenidios, separándose de la cámara exhalante por medio de los ctenidios. (Fig. 6-A).
CANAL NEFRIDIAL (Canal excretor): [nephridial canal, excretory canal]. Canal principal de cada órgano excretor, se extiende desde la parte anterior a la parte posterior en la parte final del pie, albergando numerosos divertículos branquiales.
CANAL RENOPERICÁRDICO (Conducto pericárdico): [renopericardial canal, pericardio duct]. Canal que inicia en el poro renopericárdico y se extiende hasta el canal excretor principal. (Fig. 6-A).
CANALES RAMIFICADOS: [branching canals]. Canales que penetran el tegumento y que llevan las terminaciones nerviosas a los órganos sensorios o estetos.
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CAPUCHÓN DENTICULAR: [denticle cap]. Estructura presente en el diente mayor lateral, de color negro y constituido de magnetita, así como de lepidocrocita y apatita mineral. Se ha encontrado que ésta estructura tiene valor taxonómico ya que la distribución de estos materiales es característica para cada especie. Ver RADULA. (Fig. 8-A).
CARINA: [keel]. Se refiere a la presencia de una saliente o elevación prominente que usualmente modifica el área central de la valva, sobremarcando su superficie formando una pendiente.
CAVIDAD BUCAL (Tubo bucal): [buccal tube]. Pequeña sección angosta del tracto digestivo, entre la boca y la cavidad bucal con cutícula alineada y plegamientos longitudinales, alberga glándulas y se encuentra contigua al saco subradular. Ver BOCA. (Figs. 7 y 6-A).
CERDAS: [bristle]. Tipo de ornamentación del cinturón, espículas modificadas en las que la base se encuentra cuticularizada y con una vaina que forma gran parte de la estructura. Ver PELOS. (Fig. 3).
CINTURÓN (Perinoto): [girdle, perinotum]. Parte muscular bien desarrollada. Estructura periférica a las valvas que forma un margen corporal. La superficie dorsal se encuentra generalmente protegida, mientras la superficie central puede presentar ornamentación como espinas, gránulos, escamas y mechones. En el se insertan y embeben los músculos que ayudan a mantener a las placas en su sitio. (Figs. 3 y 6-B).
CIRROS: [cirrus]. Proyecciones localizadas a lo largo del margen interior del manto o cinturón. Ver CINTURÓN Y PELOS. (Fig. 3).
COMISURA BUCAL: [buccal commissure]. Cordones de tejido nervioso que unen dos ganglios bucales, uno de ellos puede distinguirse en la zona dorsal y el otro ventral, llamados comisura bucal dorsal y ventral respectivamente. (Fig. 8-B).
COMISURA PEDAL (Comisura ventral): [pedal commissure, ventral commissure]. Cada uno de los nervios transversales de una serie, que unen a los cordones nerviosos pedales. (Fig. 8-B).
COMISURA PEDOLATERAL (Conectivo lateropedal): [pedolateral commissure, lateropedal connective]. Cada uno de los nervios transversales de una serie, los que unen a los cordones laterales y los del pie. (Fig. 8-B).
COMISURA SUPRARECTAL: [suprarectal commissure]. Comisura transversal que une los dos cordones nerviosos laterales a la parte posterior del cuerpo y que inerva los órganos sensoriales u osfradiales. (Fig. 8-B).
CONCHA (Placa, valva): [shell, plate, valve]. Es de constitución orgánica (Ca Co3), la cual es producida por glándulas secretoras situadas en la cutícula del manto. Además de proporcionar protección al cuerpo blando de los quitones, también le permite tener contacto
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con el medio que le rodea mediante las estructuras sensorias que se albergan en ella, como lo son los estetos y ocelos. En la clase Poliplacophora la concha está dividida en ocho porciones llamadas valvas. Ver VALVA. (Figs. 4-A, B, C y 5-A, B, C).
CONDUCTO ESPERMÁTICO: [duct sperm, spermiduct]. Gonoducto masculino. Ver GONODUCTO.
CONDUCTO EXCRETOR (Ureter, conducto emuctorial): [excretory duct, ureter, emunctorial duct]. Pequeña porción del sistema excretor entre el saco y el poro excretor.
CONECTIVO BUCAL: [buccal connective]. Cada uno de los dos cordones nerviosos, que se extienden de la zona media del anillo nervioso al ganglio bucal. (Fig. 8-B).
CONECTIVO SUBRADULAR: [subradular connective]. Uno de los dos cordones de tejido nervioso, que se prolongan hacia la zona media del anillo nervioso cerebrobucal, por medio de conectivos subradulares que se extienden dorsalmente hasta inervarse en el órgano subradular. (Fig. 8-B).
CORAZÓN: [heart]. En el sistema circulatorio; órgano contráctil sin cavidad pericardial localizado por debajo de las dos últimas valvas (VII y VIII), constituido por un ventrículo medio y un par de aurículas laterales.
CORDÓN NERVIOSO LATERAL (Cordón nervioso paleovisceral): [lateral nerve cord, palliovisceral nerve cord]. Par de nervios longitudinales que se extienden entre el anillo nervioso cerebrobucal y la parte posterior del cuerpo, donde se unen por medio de una comisura suprabucal. Se extienden dorsalmente al surco paleal e inervan a cada ctenidio, pueden unirse a los cordones nerviosos del pie por conectivos lateropedales cerrándose en el seno neurolateral. (Fig. 8-B).
CORDÓN NERVIOSO PEDAL (Cordón nervioso ventral): [pedal nerve cord, ventral nerve cord]. Par de cordones nerviosos longitudinales que corresponde a las funciones nerviosas del pie, y que se extienden del anillo nervioso cerebrobucal a la región posterior del cuerpo, se extienden dorsalmente en la región media del pie, cada nervio se conecta por medio de comisuras pedales al cordón nervioso y se encuentran rodeados por el seno neuropedal. (Fig. 8-B).
CORDONES FIBROSOS: [fiber cord]. Fibras de revestimiento de la epidermis, que se extienden en la valva dando origen a los estetos. Ver CANALES RAMIFICADOS Y ESTETOS. (Fig. 8-B).
COSTILLA: [rib]. Tipo de escultura tegumental; que se continúa por un surco que corresponde a la zona más baja del relieve, elevación en la superficie de la valva que puede disponerse radial o longitudinalmente. (Fig. 3).
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CTENIDIO (Branquia): [ctenidios, gill]. En su conjunto forman el órgano respiratorio alineados a lo largo del surco paleal; se unen al sistema circulatorio por senos branquiales. Cada branquia o ctenidio presenta un eje con dos series alternadas de largas y delgadas lamelas ciliadas. Las estructuras respiratorias en grupos primitivos de quitones son muy posteriores y cortas, mientras que en grupos más avanzados son más grandes. (Fig. 6-A, B).
DERIVADOS EPIDÉRMICOS: [epidermal formations, girdle elements]. Estructuras de origen cuticular que se albergan en la parte dorsal del cinturón. Pueden ser de carbonato de calcio o de constitución cornea, los derivados del cinturón más comunes son: escamas, espículas, pelos, cerdas y espinas. Ver CINTURÓN. (Fig. 3).
DIAFRAGMA (Septo): [diafragma, septum]. División vertical de tejido conjuntivo en la zona anterior y posterior del cuerpo, que separa el seno cefálico del seno visceral.
DIENTE: [tooth]. Elemento cuticular quitinizado, en cada hilera transversal de la rádula; de acuerdo con su posición se clasifican en raquídeo o diente central, menor y mayor lateral uncinal y dientes marginales. Ver RÁDULA. (Fig. 8-A).
DIENTE MARGINAL: [marginal tooth]. Estructura de la rádula, placa más externa o marginal. (Fig. 8-A).
DIENTE CENTRAL: [central tooth]. Corresponde al diente raquídeo de la rádula. Ver DIENTE RAQUÍDEO. (Fig. 8-A).
DIENTE DE INSERCIÓN: [insertion tooth]. Cada una de una serie de estructuras parecidas a dientes, que forman hendiduras radiadas a lo largo del margen exterior de las placas de inserción. Porciones del articulamento, entre las hendiduras de la lámina de inserción, éstos pueden presentar márgenes pectinados o lisos. (Fig. 5-A, B y C).
DIENTE LATERAL: [lateral tooth]. Localizados en la estructura radular, cada uno de los dientes situados a cada lado del diente raquídeo. El diente pequeño interior es también llamado primer intermedio o diente menor lateral; el diente externo se denomina también como segundo gancho, diente mayor lateral al diente más grande de la rádula, el cual está contiguo típicamente a un diente tricúspide puntiagudo. (Fig. 8-A).
DIENTE RAQUÍDEO (Diente central): [rachidian tooth, central tooth, uncinal plates, spatulate uncinal]. Elemento central en cada hilera transversal de dientes en la rádula, típicamente pequeño de cúspides angostas. Ver RÁDULA, DIENTE CENTRAL Y DIENTE MARGINAL. (Fig. 8-A).
DIENTE UNCINAL: [uncinal tooth]. Cada uno de los tres dientes contiguos al diente mayor lateral en cada hilera de dientes de la rádula. Los primeros 2 tienen forma de placa y pueden ser llamados como placas uncinales, el tercero puede presentar un doblez hacia su interior, el cual también puede llamarse uncinal espatulado. (Fig. 8-A).
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EMUCTORIO: [emunctorium]. Pequeña porción del órgano excretor. Ver ÓRGANO EXCRETOR.
ESCAMA: [scale]. Tipo de ornamentación del cinturón; estructuras aplanadas secretadas por glándulas secretoras de la epidermis del cinturón, sus formas pueden variar pero las principales son redondeadas, cuboides, de superficie lisa, rugosa, estriada o granular. Ver cinturón. (Figs. 3 y 8-C).
ESCULTURA: [sculpture]. Es la ornamentación del tegumento. Relieve más o menos regular, patrón presente en la superficie de las valvas. La escultura puede ser de un tipo o mixta, entre las más características se encuentran los gránulos, surcos, costillas, pústulas y superficie lisa. Ver TEGUMENTO. (Fig. 3).
ESÓFAGO: [esophagus, gutter]. Sección angosta del tracto digestivo entre la faringe y el estómago, presenta un par de glándulas de azúcar que se abren al tracto digestivo conectando a la faringe y al esófago. (Fig. 7).
ESPÍCULA: [spicule]. Tipo de ornamentación del cinturón; son proyecciones relativamente pequeñas secretadas por la epidermis del manto, las cuales se encuentran típicamente rodeadas basalmente por una vaina cuticularizada, esta vaina puede ser curvada, cilíndrica, estiliforme o plegada. Ver CINTURÓN. (Fig. 3).
ESPINA: [spine]. Ornamentación del cinturón generalmente más gruesa, estructura dura formada por grupos de cerdas, pelos o espículas. (Fig. 3).
ESTETOS: [esthete, megalesthet, aesthete]. Estructura sensorial que incluye un segmento fotoreceptor en el tegumento de la valva. De acuerdo con su tamaño, podemos distinguir megaestetos en los megaporos y microestetos en microporos. Se encuentran inervados por cordones nerviosos en un orden definido. Son estructuras que presentan córnea, lente, capa de células de pigmento, iris y retina, cuando son evidentes aparecen como manchas o poros pequeños en toda la superficie dorsal de las valvas. (Fig. 6-C).
ESTÓMAGO: [stomach]. Sección expandida del tracto digestivo entre el esófago y el intestino separado del esófago por un esfínter, en éste se pueden encontrar dos grandes glándulas hacia su parte media. (Fig. 7).
ESTRÍAS: [striate]. Fina escultura que se presenta como aparentes surcos, líneas o marcas microscópicas en el tegumento de la valva. En las escamas y espículas del cinturón, corresponden a finos surcos longitudinales sobre su superficie. En el tracto yugal son finas líneas longitudinales. (Figs. 8-C y 9-C).
FARINGE: [pharynx]. Cutícula muscular, sección alineada del tracto digestivo entre la cavidad bucal y el esófago. Puede estar situada lateralmente para formar dos divertículos. (Fig. 7).
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GANGLIO BUCAL: [buccal ganglion]. Cada uno de los dos ganglios relativamente pequeños que inervan la parte anterior del tracto digestivo, cada uno de ellos se conecta al anillo nervioso por una comisura y por conjuntivos bucales. (Fig. 8-B).
GLÁNDULA DE AZÚCAR (Glándula esofágica, glándula faríngea): [sugar gland, esophageal gland, pharyngeal gland]. Par de glándulas que se abren dentro del tracto digestivo en la unión de la faringe y el esófago que producen sustancias amilásticas. El alimento se mezcla con estas secreciones proteolíticas para llevar a cabo parte de la digestión extracelular. (Fig. 7).
GLÁNDULA DIGESTIVA (Hígado): [midgut gland, liver]. Par de glándulas abiertas en una zona posterior de la parte final del estómago, la glándula derecha es típicamente más pequeña y se extiende a lo largo del estómago, la glándula izquierda es mucho más grande y se encuentra entrecruzada o enroscada en el intestino. (Fig. 7).
GLÁNDULA SALIVAL (Glándula bucal): [salivary gland, buccal gland]. Par de glándulas cercanas a la zona de unión de la cavidad bucal y la faringe, asociada dorsalmente al intestino y ventralmente al surco ciliado, esta glándula puede ser simple o arborescente. (Fig. 7).
GÓNADA: [gonad]. Del órgano reproductor. Testículo, ovario; una sola estructura en forma de saco localizada en la región anterior del pericardio por debajo de las valvas III y IV, dando origen a un solo par de gonoductos.
GONODUCTO: [gonoduct]. Estructura pareada; para los machos se denomina espermiducto y para las hembras oviducto. Dispuestos dorsalmente a la región anterior de la gónada y al gonoporo en el surco paleal.
GONOPORO: [gonopore]. Cada una de las dos aperturas exteriores del sistema reproductor, localizado en la región anterior del surco paleal hasta los poros excretores en la zona de empalme de las valvas VI y VII. (Fig. 6-A).
HENDIDURAS DE INSERCIÓN: [slit insertion]. Divisiones que presenta la placa de inserción, estas pueden ser desde poco profundas hasta fuertemente profundas. (Figs. 4-B y 5-B, C).
HIPOSTRACO: [hypostracum]. Zona que corresponde a la capa menor de las valvas, que se proyectan hacia delante para formar la apófisis y el articulamento. (Fig. 6-B).
INTESTINO ANTERIOR: [anterior intestine]. Ver INTESTINO. (Fig. 7).
INTESTINO POSTERIOR: [posterior intestine]. Ver INTESTINO. (Fig. 7).
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INTESTINO: [intestine]. Sección enrollada del tracto digestivo situada entre el estómago y el recto; según su longitud se puede distinguir una región intestinal anterior y una posterior, en la zona media izquierda de esta estructura se albergan típicamente dos glándulas. (Fig. 7).
LÁMINA SUTURAL: [sutural lamine]. Término usado para referirse a las apófisis. Ver APÓFISIS.(Ver 4-B, C).
LÁMINA YUGAL: [jugal lamina]. Ver PLACA YUGAL.
LÍNEA DIAGONAL: [diagonal line]. Elevación o cresta diagonal de las valvas intermedias, que las divide en zonas centrales y laterales y a la valva anal la diferencia en región anteromucronal y postmucronal. (Fig. 4-B).
MACROESTETO: [macresthete]. Ver ESTETO. (Fig. 6-C).
MANTO: [mantle]. Epitelio dorsal del cuerpo que secreta una cutícula y material calcáreo que forma las diferentes capas de las valvas. (Fig. 6-B).
MECHONES: [tufs]. Grupos de pelos, espículas o espinas que se encuentran unidos por una vaina que se distribuyen en la superficie dorsal del cinturón típicamente en las regiones de inserción entre valva y valva. Ver CINTURÓN. (Fig. 3).
MEGALOPORO: [megaloporo]. Cada uno de los numerosos poros situados en la superficie externa de la valva, cada megaloporo se forma en la parte final de un canal transverso a la valva, estas estructuras pueden también albergar a los estetos. Ver ESTETO. (Fig. 6-C).
MEMBRANA RADULAR: [membrane radular, ribbon]. Membrana situada en el saco radular y en donde se insertan los dientes de la rádula. Ver RÁDULA.
METANEFRIDIO (Órgano excretor): [metanephridium, excretory organ]. Órgano excretor. Ver ÓRGANO EXCRETOR.
MICROESTETO: [micresthete]. Ver ESTETO. (Fig. 6-C).
MICROPORO: [micropore]. Uno de los pequeños y numerosos poros situados en la superficie externa de la valva, cada microporo está asociado a un megaloporo mismo que puede originar estetos. Ver ESTETO. (Fig. 6-C).
MIOSTRACO: [myostracum]. Localizado en la valva, término aplicado para varias áreas especializadas en funciones estructurales del hipostraco; sitio de inserción de la musculatura dorsoventral.
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MUCRO: [mucro]. Punto más alto de la valva anal, típicamente hacia el centro y en ocasiones localizado anterior o posteriormente con respecto a la valva, contiguo a dos líneas diagonales al mucro que dividen a la valva anal en un área anteromucral y postmucral. También se le llama mucro al ápice de las valvas intermedias, aunque el término adecuado debe ser “ápice”. Ver VALVA ANAL. (Fig. 4-C).
MUCRO FALSO: [false mucro]. Cuando la saliente o mucro de la valva anal se localiza o prolonga hasta la región postmucronal de la valva anal, este término es usado principalmente en la sistemática del género Chaetopleura.
MÚSCULO DEL CINTURÓN (Músculo longitudinal lateral): [girdle muscle, lateral longitudinal muscle]. Banda muscular que se extiende a lo largo de los dos lados anterior y posterior, localizado por debajo del margen exterior de las valvas. Tiene la función de enrollar al organismo como mecanismo de defensa.
MÚSCULO DEL MANTO: [mantle muscle]. Banda muscular que se inserta en la valva a través del manto, es posible distinguirlos entre los músculos interiores y exteriores.
MÚSCULO DEL RECTO: [rectus muscle]. Par de bandas musculares que se prolongan a partir del margen anterior (seno yugal) de una valva hasta la pared del cuerpo por debajo de la valva contigua.
MÚSCULO DORSOVENTRAL: [dorsoventral muscle]. Cada uno de los 16 pares seriados de músculos (dos pares por valva), albergados entre las valvas y el pie que permite que el organismo se adhiera al sustrato.
MÚSCULO LATERAL (Músculo lateropedal): [lateral muscle, lateropedal muscle]. Parte de la musculatura dorsoventral que se alberga desde los márgenes laterales de la valva hasta el pie. En esta estructura también es posible distinguir músculos laterales así como músculos anteriores y posteriores.
MÚSCULO LONGITUDINAL LATERAL: [lateral longitudinal muscle]. Ver MÚSCULO DEL CINTURÓN.
MÚSCULO OBLICUO: [oblique muscle]. Par de bandas musculares unidas oblicuamente del margen anterior (seno yugal) de la valva a la pared del cuerpo, por debajo de la valva contigua.
MÚSCULO TRANSVERSO: [transverse muscle]. Fibras musculares que se unen dorsoventralmente al margen anterior (apófisis) de una valva hasta el margen posterior de la valva contigua.
NEFRIDIO: [nephridium]. Órgano excretor.
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NEFRIDIOPORO (Poro excretor): [excretory pore, nefridiopore]. Cada una de las dos aperturas al exterior del sistema excretor, localizado en la zona posterior anal en el surco paleal, y posteriores a los gonoporos. (Fig. 6-B).
NEFROSTOMA: [nephrostome]. Ver PORO RENOPERICÁRDICO. (Fig. 6-A).
OCELOS: [ocellus, shell eye]. Estructura pigmentada, fotosensitiva formada por estetos modificados situados en la superficie externa de la valva. Presenta una cornea, lente, zona fibrilar, copa y células de pigmento; estos pueden distribuirse en patrones específicos dependiendo de la especie. Ver VALVA Y ESTETOS.
ODONTÓFORO (Aparato radular): [odontophore, radular apparatus]. Región anterior del tracto digestivo, constituido por la rádula (dientes), musculatura de inserción y una base cartilaginosa. Estructura también llamada aparato radular. Ver RÁDULA.
OJOS: [eye]. Ver OCELOS.
ÓRGANO EXCRETOR (Riñón nefridial, metanefridio, emunctorio): [excretory organ, nephridium kidney, metaneprhidium, emunctorium]. Órgano pareado entre el poro renopericardial y el poro excretor. Consiste de un canal de sacos y conductos excretores.
ÓRGANO SUBRADULAR: [subradular organ]. Cada una de las dos estructuras adyacentes en forma de almohadilla, órganos sensoriales localizados en el techo del saco subradular y que se extiende al abrirse la boca del animal. (Fig. 7).
OSFRADIO (Órgano sensorial): [osphradial sense organ, osphradium]. Cada uno de dos quimioreceptores, tractos cortos situados lateralmente el ano.
OSTIO AURICULOVENTRICULAR: [auriculoventricular ostium]. Del corazón, uno de los tres pares de aperturas de las aurículas laterales situados en el ventrículo medio.
OVARIO: [ovary]. Gónada de las hembras. Ver GÓNADA.
OVIDUCTO: [oviduct]. Gonoducto femenino. Ver GONODUCTO.
PELOS (Cerdas, cirros): [bristle, cirrus]. Tipo de ornamentación epidérmica del cinturón; son estructuras que presentan una vaina cuticularizada en la base. Pueden ser de material fibroso o calcáreo, ocasionalmente se les llama espículas, cuando su estructura es dura. Se diferencian fácilmente por su tamaño, ya que son generalmente más largos que las espículas. (Fig. 3).
PENDIENTE POSTMUCRONAL: [postmucronal slope]. Pendiente de la región posterior del tegumento. Visible en vista lateral de la valva anal, principalmente en el género Acanthochitona.
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PERICARDIO: [pericardium]. Del sistema circulatorio; canal situado dorsoventralmente en las dos últimas valvas (VII y VIII) que contienen al corazón y conectándose al sistema excretor por medio de dos poros pericardiales.
PERINOTO: [perinotum]. Término también usado para denominar al cinturón. Ver CINTURÓN.
PERIOSTRACO: [periostracum]. Capa orgánica superficial y delgada situada sobre el tegumento de las valvas. (Fig. 6-B).
PICO: [beak]. Proyección angular del ápice de una valva intermedia; las valvas con pico se denominan mucronadas. Ver ÁPICE. (Fig. 4-A y B).
PIE: [foot]. Única estructura deslizante en la zona ventral, formando una parte central del cuerpo provista de fibras de músculos dorsoventrales; se encuentra rodeado por el surco paleal y separado de la cabeza por una fisura. (Figs. 6-B y 7).
PLACA (Valva, concha): [plate, valve, shell]. Ver VALVA.
PLACA CEFÁLICA (Valva cefálica): [cephalic plate, head valve]. Sección que corresponde a la valva I. Ver VALVA CEFÁLICA. (Figs. 4-A y 5-A).
PLACA DE INSERCIÓN: [insertion plate]. Extensión lateral de la capa menor (hipostraco) de la valva, margen típicamente dividido por dientes de inserción que se presentan como comisuras radiadas, su función es la de anclaje de la valva al manto. Esta estructura se encuentra ausente en grupos primitivos de quitones. (Figs. 5-A, B y C).
PLACA SUTURAL: [sutural plate]. Lámina del articulamento de las valvas intermedias y anal, extendiéndose entre la lámina sutural; cuando están presentes puede estar finamente denticuladas. Término usado para referirse a las apófisis. Ver APÓFISIS. (Fig. 4-B y C).
PLACA YUGAL: [jugal lamina]. Se localiza en las valvas intermedias y la valva anal; pequeña extensión del margen anterior (seno yugal) entre las apófisis, compuesta por el articulamento que puede ser de borde liso o dentado. (Fig. 5-B y C).
PLIEGUE LATERAL (Paleal): [lateral fold]. Estructura localizada en el surco paleal. Ver PLIEGUE PALEAL.
PLIEGUE PALEAL (Pliegue lateral): [pallial fold, lateral fold]. Situado en la superficie ventral del cinturón. Se proyecta hacia la parte interna del surco paleal, éste se puede alargarse y formar un grueso doblez posterior que puede ser liso o rugoso.
PLIEGUE PERIOSTRACAL (Zona apical): [apical area, periostracal fold]. Pequeña porción del periostraco y del tegumento de las valvas intermedias y cefálicas de todos los quitones, se extiende sobre el margen ventral y se encuentra adyacente al margen posterior dorsal. (Figs. 5-A y B).
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PORO AURICULAR: [auricular pore]. Situado en el corazón, pueden ser uno o varios poros por donde la sangre circula del seno branquial a las aurículas.
POROS RADIALES: [slit ray]. Cada uno de una serie de hendiduras radiales en la capa más baja o hipostraco de la valva, puede consistir de un surco de poros para formar un diente en los márgenes de la placa de inserción. (Figs. 5-A y C).
PORO RENOPERICÁRDICO: [renopericardial pore, nefrostome]. Cada una de las dos conexiones entre el pericardio y el sistema excretor, se continúa por medio de un canal renopericardial dentro de un canal excretor principal.
PUENTES DEL CINTURÓN: [girdle bridges]. Pequeñas prolongaciones del cinturón que se extienden en las valvas hacia los puntos suturales. Algunos puentes pueden presentar una cutícula sin escamas, pelos o espinas. En otros casos como en el género Calloplax y algunas especies del género Chaetopleura pueden presentar una serie de espículas características.
PÚSTULA: [pustule]. Unidades con forma de gránulos, escultura generalmente pequeña a manera de tubérculos en los que se pueden embeber estetos, con cima o superficie cóncava, convexa o plana. (Figs. 9-A, B, C).
QUITÓN: [chiton]. Molusco de la clase Polyplacophora, que habita en las playas rocosas de todo el mundo, generalmente adheridos a las rocas o debajo de ellas. Su concha se compone de 8 piezas llamadas valvas, traslapadas entre sí, las cuales se insertan en una estructura periférica denominada cinturón. Dioicos y de hábitos nocturnos. Se alimentan de algas y de pequeños invertebrados que se encuentran sobre las rocas. Cuando se ven en peligro se enrollan en sí mismos para protegerse. (Fig. 3).
RÁDULA: [radula]. Órgano alimentario raspador que consta de varias hileras longitudinales de dientes quitinosos, la rádula se encuentra sobre una estructura cartilaginosa llamada odontóforo. Los dientes por su posición se denominan dientes laterales (menor y mayor) y raquídeo o central. (Fig. 8-A).
RECTO: [rectum, hindgut]. Pequeña porción posterior del tracto digestivo, ocasionalmente expandido en la sección posterior del tracto digestivo entre el intestino y el ano. (Fig. 7).
REGIÓN POSTMUCRONAL: [postmucronal area]. De la valva anal; área posterior al mucro, también conocida como área terminal. Esta región generalmente presenta escultura radial con respecto al mucro, diferente a la escultura de la región anteromucronal. Ver VALVA ANAL. (Fig. 4-C).
RIÑÓN: [kidney]. Ver ÓRGANO EXCRETOR.SACO MUCOSO: [slime sac]. Saco exterior del gonoducto femenino (oviducto), el cual produce material viscoso para mantener a los huevos organizados en hileras.46
SACO NEFRIDIAL (Saco excretor): [nephridial sac, excretory sac]. En el sistema excretor; amplia sección del canal principal excretor que se abre al exterior por medio de conductos y poros excretores.
SACO RADULAR (Vaina radular): [radular sheath, radular sac]. Vaina elongada que encierra las hileras de dientes y membrana radular. (Fig. 7).
SACO SUBRADULAR: [subradular pouch]. Situado en el tracto digestivo; ciego que se extiende posteriormente a partir de la cavidad bucal; en esta estructura se alberga un par de órganos subradulares.
SENO BRANQUIAL: [branchial sinus]. En el sistema circulatorio; canal sanguíneo situado en el techo del surco paleal asociado con los ctenidios; se distinguen seno branquial eferente y aferente.
SENO CEFÁLICO: [head sinus]. Término aplicable para referirse al sistema circulatorio; cavidad de sangre anterior, que en su interior se abre a la aorta separada por el diafragma desde el seno visceral, dando origen a varios senos longitudinales.
SENO NEUROLATERAL (Seno lateral): [neurolateral sinus, lateral sinus]. Del sistema circulatorio; par de canales sanguíneos longitudinales que se extienden sobre el surco paleal y que rodean a los cordones nerviosos laterales.
SENO NEUROPEDAL: [neuropedal sinus]. Del sistema circulatorio; par de canales sanguíneos longitudinales que se originan en el seno cefálico, proyectándose a lo largo de cada lado del seno ventral rodeando el cordón nervioso del pie.
SENO PEDAL: [pedal sinus]. Del sistema circulatorio; par de canales sanguíneos longitudinales los cuales se originan en el seno cefálico y se extienden ventralmente a los senos neuropedales.
SENO VENTRAL (Seno medio): [sinus ventral, median sinus]. Del sistema circulatorio; canal sanguíneo longitudinal el cual se extiende desde el seno cefálico hasta la parte posterior del cuerpo, mismo que da origen a los senos branquiales.
SENO VISCERAL: [visceral sinus]. Cavidad general del cuerpo que contiene una gran parte del tracto digestivo con funciones de seno sanguíneo, separado del seno cefálico por un diafragma.
SENO YUGAL: [jugal sinus]. Depresión o valle entre la lámina sutural, margen anterior de cada valva intermedia o anal entre las apófisis. (Fig. 4-B y C).
SENO: [sinus]. Márgenes entre las apófisis de las valvas (seno yugal) o canales sanguíneos (senos ventrales). 47
SOPORTE: [bolster]. En el aparato radular; par de estructuras ovaladas (también llamados cartílagos), que ocultan la rádula anterior, asociada a un par de vesículas que funcionan como un soporte interno y sitio de sostén de los músculos de la rádula.
SURCO PALEAL (Cavidad del manto): [pallial groove, mantle cavity]. Localizado en la parte ventral del cuerpo, surco situado entre el pie y el manto marginal o cinturón. Se encuentra a ambos lados del cuerpo, sitios de envergadura de las branquias o ctenidios; hacia la parte posterior se origina un par de poros excretores, gonoporos y un conducto mucoso. (Fig. 6-B).
TEGUMENTO: [tegumentum]. Capa delgada y porosa de las valvas; lámina orgánica de conquiolina impregnada de carbonato de calcio cuya superficie está esculpida u ornamentada. Capa situada entre la lámina superior denominada periostraco y la inferior o hipostraco, que puede envolver a los estetos y dar vuelta en el margen posterior de la valva. (Figs. 6-B y 6-C).
TEJIDO DEL BORDE: [eave tissue]. Material de las valvas, denominado como compacto o esponjoso lo cual corresponde a la cantidad de poros de los estetos. Ver BORDE.
TESTÍCULO: [testis]. Gónada masculina. Ver GÓNADA.
TRACTO MUCOSO: [mucus tract]. Situado en la parte posterior del surco paleal, formado por un epitelio que embebe células alargadas productoras de mucus, las cuales se extienden a lo largo del surco paleal. En algunos casos pueden organizarse en 2 ó 3 bandas longitudinales.
TRACTO YUGAL (Área yugal): [jugal tract, jugal area]. Se encuentran en las valvas intermedias, línea angosta en la parte media dorsal diferenciada por el grabado del área central. Superficie más alta de las valvas intermedias adyacente al yugum, de escultura diferente del resto del tegumento y con superficie lisa o estriada. (Fig. 9-B y 9-C).
TRIÁNGULO LATERAL: [lateral triangle]. Representa la zona o región lateral de las placas intermedias generalmente más elevadas que la región media de la valva. Ver ÁREA LATERAL.
TRIÁNGULO MEDIO (Área central, zona central): [median triangle cental area, central triangle]. Término también utilizado para referirse al área central de las valvas intermedias. Ver ÁREA CENTRAL.
TROCÓFORA (Pseudotrocófora): [trochophore, pseudotrocophore]. Estadio larvario de los quitones la cual se caracteriza por presentar externamente mechones de cilios apicales y larva tipo prototroca.
URÉTER: [ureter]. Conducto excretor. 48
VALVA (Placa, placa del manto, concha): [valve, plate, mantle plate, shell]. Cada una de una serie de 8 placas arqueadas, que corresponden a la concha de los quitones, que cubren parcialmente la superficie dorsal (manto) del cuerpo; constituida por varias capas (periostraco, tegumento e hipostraco) que se encuentran embebidas en el manto. Las valvas se dividen en una valva cefálica (I), seis valvas intermedias (II, III, IV, V, VI y VII) y una posterior llamada valva anal (VIII). Se encuentran separadas entre sí pero en contacto por medio de las apófisis, la superficie o escultura del tegumento de estas estructuras puede ser lisa, granulada, mucronada o con surcos. (Figs. 4-A, B, C y 5-A, B, C).
VALVA ANAL (Placa anal): [anal valve, end platte, tail valve]. Valva VIII. La última de las ocho placas que cubren la superficie dorsal del organismo, típicamente semicircular en forma, caracterizada por presentar una elevación llamada mucro y región antero y postmucronal. (Figs. 4-C y 5-C).
VALVA CEFÁLICA (Placa cefálica): [head valve, cephalic plate]. Valva I, la primera de las ocho valvas o placas que cubren al organismo en la superficie dorsal, típicamente semicircular o hemiesférica y sin apófisis. (Figs. 4-A y 5-A).
VALVA INTERMEDIA: [intermediate valve]. Cualquier placa o valva que se encuentre entre la valva cefálica y anal (II, III, IV, V, VI, VII), estas se pueden regionalizar por medio de dos líneas diagonales en una área central y dos laterales. (Figs. 4-B y 5-B).
VENTRÍCULO: [ventricle]. Canal muscular del corazón, el cual recibe la sangre de las aurículas laterales por medio del ostio auriculoventricular. El bombeo de la sangre se lleva a cabo por la parte anterior por medio de la aorta.
VESÍCULA: [vesicle]. Tipo de ornamentación del cinturón, estructura epidérmica con un ensanchamiento terminal, generalmente son espículas muy pequeñas y poco comunes, presentes en algunas especies. Ver ESPÍCULA. (Fig. 3).
YUGUM: [jugum]. Porción intermedia en el área central de las valvas intermedias, que se continúa por el ápice de la valva y que generalmente es más elevada que las áreas laterales. (Fig. 4-B).
V. LISTA SISTEMÁTICA DE LOS QUITONES DE LA COLECCIÓN NACIONAL DE MOLUSCOS (CNMO).
(Mollusca: Polyplacophora)
De acuerdo a la clasificación de Van Belle en Kaas y Van Belle, 1998.
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CLASE POLYPLACOPHORA Gray, 1821
ORDEN NEOLORICATA Bergenhayn, 1955
SOBORDEN ISCHNOCHITONINA Bergenhayn, 1930
FAMILIA ISCHNOCHITONIDAE Dall, 1889
Subfamilia Chaetopleurinae Plate, 1899
Género Chaetopleura Shuttleworth, 1853
Chaetopleura scabricula Sowerby, 1832
Subfamilia Ischnochitoninae Gray, 1847
Género Ischnochiton Gray, 1847
Ischnochiton muscarius Reeve, 1847
Ischnochiton aethalotus Dall, 1919
Género Stenoplax Dall, 1879
S. (Stenoradsia) sonorana Berry, 1956
Stenoplax limaciformis Sowerby, 1832
Stenoplax sp. A
Subfamilia Callistoplacinae Pilsbry, 1893
Género Callistoplax Dall, 1882
Callistoplax retusa Sowerby, 1832
50
FAMILIA CHITONIDAE Rafinesque, 1815
Subfamilia Chitoninae Bullock, 1988
Género Chiton Linnaeus, 1758
Chiton (Chiton) virgulatus Sowerby, 1840
Chiton (Diochiton) albolineatus Broderip y Sowerby, 1829
Chiton (Diochiton) articulatus Sowerby, 1832
Chiton (Diochiton) goodallii Broderip, 1832
Subfamilia Acanthopleurinae Dall, 1889
Género Acanthopleura Guilding, 1830
Acanthopleura granulata Gmelin, 1729
SUBORDEN ACANTHOCHITONINA Bergenhayn, 1930
FAMILIA ACANTHOCHITONIDAE Pilsbry, 1893
Género Acanthochitona Gray, 1821
Acanthochitona sp. A
51
LISTADO DE QUITONES DE MEXICO
Basado en la clasificación de Van Belle en Kaas y Van Bell. 1998.
CLASE POLYPLACOPHORA Gray, 1821ORDEN NEOLORICATA Bergenhayn, 1955
SUBORDEN LEPIDOPLEURINA Thiele, 1910FAMILIA LEPTOCHITONIDAE Dall, 1889
Subfamilia Leptochitoninae Kaas y Van Belle, 1998
Género Lepidopleurus Risso, 1826 1. Lepidopleurus bullatus Carpenter, 1857. Género Leptochiton Gray, 1847
2. Leptochiton nexus Carpenter, 1864 (Sin: Lepidopleurus lycurgus Dall, 1919). 3. Leptochiton belknapi Dall, 1878 (Sin: Lepidopleurus halistreptus Dall, 1902).4. Leptochiton rugatus Carpenter MS, Dall, 1879 (Sin: Lepidopleurus rugatus Pilsbry, 1892; Leptochiton rugatus Carpenter en Pilsbry, 1892; Leptochiton cancellatus Dall, 1879; Lepidopleurus internexus Carpenter en Pilsbry, 1892; Lepidopleurus alascensis Thiele, 1909).
SUBORDEN ISCHNOCHITONINA Bergenhayn, 1930FAMILIA ISCHNOCHITONIDAE Dall, 1889
Subfamilia Lepidochitoninae Iredale, 1914
Género Lepidochitona Gray, 18215. Lepidochitona hartwegii Carpenter, 1855. 6. Lepidochitona beanii Carpenter, 1857. 7. Lepidochitona bullatus Carpenter, 1857. 8. Lepidochitona lirulata Berry, 1963 (Sin: Dendrochiton lirulatus Berry, 1963; Dendrochiton laurae Berry, 1963).9. Lepidochitona gothica Carpenter, 1864 (Sin: Ischnochiton gothicus Carpenter, 1864).
Género Nuttallina Dall, 187110. Nuttallina crossota Berry, 1956 (Sin: Nuttallina mexicana Pilsbry en Pilsbry y Lowe, 1932).
Género Tonicia Thiele, 190611. Tonicia forbessi Carpenter, 1857 (Sin: Tonicia arnheimi Dall, 1903).
Subfamilia Chaetopleurinae Plate, 1899
Género Chaetopleura Shuttleworth, 185312. Chaetopleura scabricula Sowerby, 1832 (Sin: C. lurida Sowerby, 1832).
52
13. Chaetopleura mixta Dall, 1919 (Sin: Chaetopleura lanuginosa Dall, 1879; Chaetopleura raripustulosa Pilsbry, 1932; Chaetopleura euriplax Berry, 1945; Tonicia mixta Dall, 1919).
14. Chaetopleura shyana Ferreira, 1983.
Subfamilia Ischnochitoninae
Género Ischnochiton Gray, 184715. Ischnochiton muscarius Reeve, 1847 (Sin: Radsiella muscaria Reeve, 1847).16. Ischnochiton newcombi Pilsbry, 1892. 17. Ischnochiton guatemalensis Thiele, 1910 (Ischnochiton eucosmius Dall,
1919).18. Ischnochiton lowei Pilsbry, 1918 (Sin: Cianoplax fackenthallae Berry, 1919). 19. Ischnochiton aethalotus Dall, 1919 (Sin: Ischnochiton tridentatus Pilsbry, 1893; Radsiella tridentatus Dall, 1919). 20. Ischnochiton carolianus Ferreira, 1984.21. Ischnochiton chaceorum Kaas y Van Belle, 1990.22. Ischnochiton mexicanus Kaas, 1993.
Género Stenoplax Dall, 187923. Stenoplax (Stenoradsia) magdalensis (Hinds, 1845) (Sin: Ischnochiton acrior Carpenter en Pilsbry, 1892). 24. Stenoplax (Stenoradsia) conspicua Carpenter MS, Pilsbry, 1892 (Sin: Ischnochiton conspicuus Pilsbry, 1892).25. Stenoplax (Stenoradsia) sonorana Berry, 1956 (Sin: Stenoplax sonorana Berry, 1956). 26. Stenoplax limaciformis Sowerby, 1832.27. Stenoplax purpuracens Adams, 1845 (Sin: Chiton productus Reeve, 1847; Chiton sanguineus Reeve, 1847; Onitochiton pruinosum de Rochebrune, 1884). 28. Stenoplax boogii Haddon, 1886 (Sin: Ischnochiton aethonus Dall, 1919).29. Stenoplax corrugata Carpenter en Pilsbry, 1892 (Sin: Ischnochiton biarcuatus Dall, 1903).30. Stenoplax floridana Pilsbry, 1892. (Sin: Ischnochiton floridanus Pilsbry, 1892). 31. Stenoplax mariposa Dall, 1919. Golfo de California, México.32. Stenoplax heathiana Berry, 1946.
33. Stenoplax circumsenta Berry, 1956.
Género Lepidozona Pilsbry, 189234. Lepidozona clathrata Reeve, 1847 (Sin: Lepidopleurus clathratus Carpenter, 1857). 35. Lepidozona serrata Carpenter, 1864 (Sin. Ischnochiton serratus Carpenter, 1864).36. Lepidozona scabricostata Carpenter, 1864 (Sin: Lepidozona inefficax Berry, 1963).37. Lepidozona cooperi Dall, 1879 (Sin: Ischnochiton cooperi Dall, 1919).38. Lepidozona pectinulata Pilsbry, 1893 (Sin: Lepidopleurus pectinulatus).
39. Lepidozona crockeri Willett, 1951 (Sin. Ischnochiton crockeri Willett, 1951). 40. Lepidozona subtilis Berry, 1956 (Sin: Lepidozona pella Berry, 1864).
41. Lepidozona formosa Ferreira, 1974. 42. Lepidozona allynsmithi Ferreira, 1974. 43. Lepidozona sp. Smith, 1977 (Sin: Ischnochiton veredenties Carpenter, 1864).
44. Lepidozona allyni Ferreira, 1977 (Sin: Ischnochiton allyni Ferreira 1977).45. Lepidozona guadalupensis 1978.45. Lepidozona rothi Ferreira, 1983 (Sin: Lepidozona macleaniana Ferreira,
1985).46. Lepidozona clarionensis Ferreira, 1983.47. Lepidozona laurae Ferreira, 1985. 48. Lepidozona stohleri Ferreira, 1985.45. Lepidozona skoglundi Ferreira, 1986 (Sin: Ischnochiton skoglundi Ferreira, 1986). 51. Lepidozona sirenkoi Kaas y Van Belle, 1990.52. Lepidozona tenuicostata Kaas y Van Belle, 1990.
Subfamilia Callistoplacinae Pilsbry, 1893
Género Callistochiton Dall, 187953. Callistochiton elenensis Sowerby, 1832 (Sin: Callistochiton gabbi Pilsbry, 1893). 54. Callistochiton diegoensis Thiele, 1910 (Sin:
Callistochiton decoratus Pilsbry, 1893).55. Callistochiton colimensis Smith, 1961 (Sin: Ischnochiton colimensis Smith, 1961; Ischnochiton. lowei Pilsbry, 1932).
Género Callistoplax Dall, 1882 56. Callistoplax retusa Sowerby, 1832.
Género Ceratozona Dall, 188257. Ceratozona squalida Adams, 1845.
FAMILIA MOPALIDAESubfamilia Mopaliinae
Género Moplia Gray, 184758. Mopalia ciliata Sowerby, 1840 (Sin: Chiton ciliatus Sowerby, 1840; Chiton wosnessenskii von Middendorff, 1847; Mopalia kennerleyi Carpenter, 1864; Mopalia grayii Carpenter, 1864; Chaetopleura thouarsiana de Rochebrune, 1882; Mopalia ciliata elevata Dall, 1921). 59. Mopalia allantophora Dall, 1919. 60. Mopalia ferreirai Clark, 1991.
Género Placiphorella Dall, 1879
53
61. Placiphorella velata Carpenter MS, Dall, 1879.
62. Placiphorella hanselmani Clark, 1994.
54
FAMILIA CHITONIDAE Dall, 1889
Subfamilia Chitoninae
Género Chiton Linnaeus, 175863. Chiton tuberculatus Linnaeus, 1758. 64. Chiton squamosus Linnaeus, 1764. 65. Chiton marmoratus Gmelin, 1792.66. Chiton albolineatus Broderip y Sowerby, 1829.67. Chiton articulatus Sowerby, 1832 (Sin: Chiton laevigatus Sowerby, 1832).68. Chiton virgulatus Sowerby, 1840
Subfamilia Acanthopleurinae Dall, 1889
Género Acanthopleura Guilding, 182969. Acanthopleura granulata Gmelin, 1791.70. Acanthopleura fluxa Carpenter, 1864.
FAMILIA ACANTHOCHITONIDAE Pilsbry, 1893
Subfamilia Acanthochitoninae
Género Cryptoconchus Burrow, 1815 71. Cryptoconchus floridanus Dall, 1889.
Género Acanthochitona Gray, 1821
72. Acanthochitona arragonites Carpenter, 1857. 73. Acanthochitona avicula Carpenter, 1866.
74. Acanthochitona exqusita Pilsbry, 1893. 75. Acanthochitona angelica Dall, 1919 (Sin: A. jacqueline Smith y Ferreira, 1977, A. shaskyi Ferreira, 1987). 76. Acanthochitona imperatrix Watters, 1981.
55
VI. SISTEMÁTICA DE LA CLASE POLYPLACOPHORA
Clase Polyplacophora Gray, 1821
Diagnosis: Moluscos llamados quitones con simetría bilateral, cuerpo generalmente
ovalado o elongado y deprimido, pie expandido y situado ventralmente. Protegidos por un
cinturón periférico, en el cual se insertan ocho placas o valvas calcáreas. Estas valvas
pueden estar parcial o totalmente embebidas, las valvas se sobreponen en diferentes grados.
Presentan una cabeza diferenciada, poco desarrollada, branquias numerosas, que se
albergan en dos surcos laterales al pie. Rádula presente, heterodontos y con sexos separados
(Smith en Moore, 1960).
Comentarios: Thiele (1929) en su manual sistemático de malacología, menciona que los
quitones fueron situados junto con los cirripedios en el grupo Polyplaxiphora Blainville,
1816. Posteriormente se consideraron como un subgrupo de los gastrópodos.
La Clase también fue denominada Amphineura, nombre propuesto inicialmente por
Herman von Ihering en 1876, como un Phylum separado del Phylum Mollusca. Este nuevo
grupo incluía a las Clases Placophora (quitones) y Aplacophora (Solenogastres). En los
estudios recientes de taxonomía de los quitones, han considerado a Amphineura como una
Clase que contiene dos Ordenes Polyplacophora (Loricata) que incluye a los quitones y
Aplacophora o Solenogastres (Smith en Moore, 1960). Smith (en Moore, 1960) considera a
Amphineura como una clase aparte de los gastrópodos. Esta clase contiene dos subclases
Polyplacophora y Aplacophora. Actualmente se reconoce a los quitones dentro de la Clase
Polyplacophora del Phylum Mollusca.
56
Orden Neoloricata Bergenhayn, 1955
Diagnosis: Quitones con estructura de las valvas formada por un periostraco, tegumento,
articulamento e hipostraco. En algunos especies estas capas están más desarrolladas que en
otras, ya que pueden formar una capa anexa llamada mesostraco, excepto en las familias
más primitivas. Presentan placas de inserción y lámina sutural o apófisis (Smith en Moore,
1960).
Suborden Ischnochitonina Bergenhayn, 1930
Diagnosis: Quitones de tallas pequeñas a grandes. Valvas intermedias con áreas laterales y
central; valva anal regionalizada en áreas antero y postmucronales. Pliegue periostracal
bien desarrollado en las valvas I-VII. Las áreas laterales y terminales (valva cefálica y
región postmucronal de la valva anal) presentan el mismo tipo de escultura, mientras que en
las áreas centrales el arreglo de la escultura es generalmente longitudinal. Articulamento
bien desarrollado, consiste de placas de inserción y lámina sutural. Las placas de inserción
divididas en varias hendiduras, que forman dientes de inserción, los cuales pueden ser lisos
o pectinados. Poros de los estetos radiales en la parte ventral de las valvas y bien
desarrollados. Cinturón variable en cuanto al tipo de ornamentación que presenta, angosto
que no se extiende sobre las valvas, permitiendo que la superficie del tegumento sea mayor,
con respecto al articulamento (Smith en Moore, 1960).
Familia Ischnochitonidae Dall, 1889
Diagnosis: Quitones de cuerpo ovalado a elongado. Tegumento de las valvas intermedias
divididas en áreas laterales y central por medio de una línea diagonal. Articulamento de las
valvas cefálica y anal con varias hendiduras, las valvas intermedias presentan por cada lado
generalmente uno y algunos géneros hasta dos hendiduras.
57
Subfamilia Chaetopleurinae Plate, 1899
Diagnosis: Quitones con superficie tegumental fuertemente esculpida y definida por hileras
de nódulos que se disponen radialmente en la superficie de la valva anal, cefálica y en las
áreas laterales de las valvas intermedias, mientras que en las áreas centrales se disponen
longitudinalmente. Las placas de inserción presentan bordes con incisiones o hendiduras de
inserción y un sólo diente en las valvas intermedias. Los bordes son generalmente lisos.
Cinturón cubierto por escamas muy pequeñas y simples, en ocasiones se pueden encontrar
en formas diferentes acompañadas de espículas y pelos fibrosos, de diferentes longitudes.
El diente medio de la rádula es ancho y de forma subcuadrangular, los dientes laterales
mayores pueden ser tricúspides o bicúspides (Smith en Moore,1960).
Género Chaetopleura Shuttleworth, 1853
Diagnosis: Quitones de tallas pequeñas a grandes. Tegumento granular o noduloso que se
dispone radialmente en las áreas terminales y laterales de las valvas intermedias. Los
gránulos son más pequeños y fusionados en las áreas centrales. Las placas de inserción
presentan bordes lisos, las valvas intermedias presentan una hendidura por lado. Cinturón
cubierto por escamas pequeñas y ovaladas que pueden presentar espículas y en algunas
especies entre las escamas, pelos fibrosos. Diente mediano de la rádula ancho y
subcuadrangular, diente mayor lateral tricúspide o bicúspide (Ferreira, 1983b).
Comentarios del género: Ferreira (1983b) en un estudio sistemático del género de la
región Sur de California a Perú, indicó que existen errores en la taxonomía de algunas
especies del Nuevo Mundo, debido a que la terminología usada para describir a este género
no es la apropiada, por lo que su interpretación en ambigua.
Ferreira (1983b) menciona que uno de los términos con más confusión es el mucro y de las
porciones del cinturón entre valva y valva, término denominado “puentes del cinturón”. Por
lo que la errónea interpretación de estas estructuras en particular, no ayudan a determinar a
las especies correctamente.
58
Dicho autor basándose en la morfología de la rádula, posición del mucro y del tipo de
elementos presentes en los puentes del cinturón, reporta para el Pacífico Oriental 5
especies: C. scabricula Sowerby, 1832; C. lanuginosa Dall, 1879; C. unilineata Leloup,
1954, C. roddae Ferreira, 1983 y C. shyana Ferreira, 1983. De las cuales C. roddae sólo se
considera endémica de Centroamérica, mientras que las demás también se distribuyen en el
Golfo de California.
59
Chaetopleura scabricula Sowerby, 1832
(Figura 10)
Chaetopleura lurida Sowerby, 1832 Keen, 1958: 524; Thorpe en Keen, 1971: 524, Fig. 41; Abbott,
1974: 401,Fig. 4701.
Chaetopleura bullata Carpenter, 1856 Keen, 1958: 524, Fig. 33.
Chaetopleura parallela Dall, 1921 Abbott, 1974: 401,Fig. 4701.
Material revisado: 7 especímenes de 9.8-23.4 mm de longitud, Bahía Eclipse, BC, 18/XII/ 1960, CNMO-055; 5 especímenes de 10.1-
27.3 mm de longitud, Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro, 23/IX/1965, CNMO-048. Total de organismos 12.
Descripción: Cuerpo ovalado de 9.8– 18.1- 23.7 mm de longitud y 6.4– 12.4- 13.6 mm de
ancho incluyendo el cinturón (Fig. 10. A).
Color en preservación: grisáceo, café obscuro y blanco, especialmente en las áreas
laterales. Los organismos más frescos presentan moteado café y negro en las áreas
centrales, mientras que en las áreas laterales son más obscuras.
Tegumento: granular de dos tamaños, los pequeños se localizan en las áreas centrales de
las valvas intermedias y en la región anteromucronal de la valva anal. Los grandes en la
valva cefálica y anal (región postmucronal) y áreas laterales de las valvas intermedias (Fig.
10. A).
Cinturón: cubierto por dos tipos de derivados epidérmicos: escamas microscópicas que
son las más abundantes y que se distribuyen en toda la superficie del cinturón formando
una especie de alfombra; pelos fibrosos dispersos entre las espículas, los cuales son muy
largos con respecto a las escamas (pueden medir hasta 3 mm de longitud), que se acumulan
en las zonas de inserción entre valva y valva (Fig. 10. E).
Valva cefálica (I): con forma de abanico, ventralmente con 9-11 hendiduras en la placa de
inserción, dientes amplios y ligeramente serrados (en ocasiones pueden ser lisos), los
cuales se encuentran delimitados por líneas de poros radiales con respecto al pliegue
periostracal (Fig. 10. B). Dorsalmente, presenta gránulos alargados con cima aplanada,
hacia la periferia suelen ser más grandes y conforme se acercan al ápice disminuyen su
tamaño y altura. Estos pueden formar líneas radiales al ápice, variables en número
dependiendo del grado de madurez del organismo (Fig. 10. A).
60
Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con una hendidura a cada lado de la placa de
inserción, dientes pequeños con bordes ondulados a veces ligeramente acanalados. También
pueden presentar coloraciones café obscuro; apófisis delgadas, poco prolongadas; seno
yugal medianamente ancho y placa yugal lisa la cual es horizontal excepto en la valva II,
donde es de curvatura convexa (Fig. 10. C). Dorsalmente presenta escultura granular, más
densa hacia las áreas centrales con gránulos redondeados y achatados que forman líneas
longitudinales. Su número puede variar dependiendo del grado de madurez del organismo,
en organismos adultos es mayor que en los juveniles; ocasionalmente los gránulos se
pueden anastomosar sobre todo en la región yugal. Las áreas laterales presentan una
granulación parecida a la de la valva cefálica, los gránulos forman líneas paralelas a la línea
diagonal, las cuales, en organismos adultos (23 mm) son de 10-15 líneas (Fig. 10. A).
Valva anal (VIII): ventralmente, con alrededor de 9-11 hendiduras en la placa de
inserción; apófisis pequeñas y delgadas, más anchas que alargadas, mucro liso y poco
elevado situado en la porción media de la valva; seno yugal liso (Fig. 10. D). Región
anteromucronal con densa escultura de gránulos redondeados que forman líneas
longitudinales; la región postmucronal presenta líneas radiales de gránulos con respecto al
mucro (Fig. 10. A).
Distribución: Esta especie se extiende desde la parte central del Golfo de California,
México, hasta el Norte de Colombia (Ferreira, 1983b).
El material revisado corresponde a Bahía Eclipse, Isla Partida B. C y Playa Las Gatas,
Zihuatanejo, Guerrero, México.
Observaciones: Las valvas pueden estar cubiertas por balanos, algas y sedimentos finos.
Los organismos adultos presentan sobre el tegumento colonias de briozoos, los cuales
pueden cubrir totalmente la escultura. Es muy común también encontrar huellas o
reminiscencias de gránulos del tegumento, que fueron arrancados por la erosión del oleaje.
Comentario sobre la sistemática del género: Ferreira (1983b) realizó una revisión al
género Chaetopleura Shuttleworth, 1853 en la que menciona que Sowerby (1832) describió
61
3 especies de este género para el Pacífico Oriental, consideradas en ese entonces como
parte del género Chiton: C. luridis, C. scabriculus y C. columbiensis. Además enfatiza en
que las descripciones de éstas especies eran diferentes únicamente en las características del
cinturón denominadas como: tipo “velutino” para C. luridis; tipo “piloso” para C.
scabriculus y tipo ”granuloso” para C. columbiensis.
Esta terminología tan particular hizo difícil su uso y sobre todo el reconocimiento de los
tipos de cinturón para cada especie. Por un lado por la falta de esquemas y por el otro,
porque no se explicaba claramente la diferencia entre los tipos de cinturón, por lo que
dichas especies eran prácticamente indistinguibles.
En ese mismo estudio también mencionó que Reeve (1847) ( en Ferreira, 1983b) revisó la
escultura tegumental de estas especies y observó que no presentaban diferencias
significativas para separarlas en tres especies diferentes, sino que se trataba de una misma
especie. Finalmente concluyó que esta especie presentaba variaciones en cuanto a los
derivados epidérmicos del cinturón. Estas observaciones, permitieron que C. luridis, C.
scabriculus y C. columbiensis se consideraran como sinónimos de C. lurida.
Más tarde Ferreira (1983b) realizó una revisión al holotipo y sintipo de C. lurida, las cuales
revelaron que estos especímenes no correspondían con la descripción original, por ello se
suprimió este nombre asignándole C. scabricula Sowerby, 1832.
Discusión: Este género ha sido reportado para el Nuevo Mundo por Keen (1958), Thorpe
(en Keen, 1971), Abbott (1974), Smith (1977), Ferreira (1983a) y Kaas y Van Belle (1998).
Esta especie es conocida comúnmente por C. lurida. Pero se ha establecido que el nombre
nominal es Chaetopleura scabricula. Los autores que la han reportado con el nombre de C.
lurida son: Keen (1958), Thorpe (en Keen, 1971), Abbott (1974) Kaas y Van Belle (1980).
Los especímenes revisados presentaron variaciones intraespecíficas, sobre todo a nivel del
número y tamaño de gránulos en el tegumento. En las observaciones realizadas a varios
62
especímenes, no se encontró diferencia en las características de las valvas (apófisis, seno
yugal y dientes de inserción), en el número de hendiduras de las placas de inserción y en los
elementos del cinturón.
Ferreira (1983a) en un estudio de la fauna poliplacófora de las Islas Revillagigedo, observó
variaciones en el color del tegumento (café obscuro con bandas longitudinales) y gránulos
más pequeños. Él concluyó que estas variaciones son coespecíficas de su rango de
distribución con respecto a las de las Islas Revillagigedo y que estas distinciones
fenotípicas no eran suficientes para separar taxonómicamente a estas poblaciones,
proponiendo que cuando se estudien las poblaciones de estas islas se les denomine como
Chaetopleura scabricula de las Islas Revillagigedo.
C. scabricula se distingue de las demás especies de éste género: C. laniginosa, C.
unilineata y C. shyana además de que es la única especie reportada para el Pacífico
mexicano y porque presenta pelos córneos no espiculosos en el cinturón. Por otro lado se
diferencia claramente de las tres especies del Pacífico Oriental (con pelos en el cinturón)
por la distribución de los derivados epidérmicos, así como en la proporción del cuerpo,
escultura del tegumento y mucro, estas especies son: C. hennahi Gray, 1828; C. peruviana
Lamarck, 1819 y de C. fernandensis Plate, 1899.
63
A
Fig. 10. Chaetopleura scabricula. A) organismo completo en vista dorsal.
64
BCD E
Fig.10. B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) ampliación de las escamas y pelos fibrosos del cinturón.
D
B
C
E
65
Género Ischnochiton Gray, 1847
Diagnosis: Quitones generalmente de tallas pequeñas. Valvas ovaladas o subovaladas;
escultura del tegumento de las áreas laterales con costillas radiales, en las áreas centrales
fina escultura granular, que pueden formar costillas. Valva anal con mucro bien
desarrollado. El articulamento de la valva anal y cefálica con más de 8 hendiduras. Valvas
intermedias usualmente con dos o más hendiduras.
Comentarios: Este género es uno de los más abundantes de la fauna Polyplacophora en las
costas del Pacífico mexicano, ya que se han reportado hasta ahora 8 especies (Kaas y Van
Belle, 1998).
Thorpe (en Keen, 1971) reporta al género bajo el nombre de Radsiella Pilsbry, 1892
argumentando que sigue la recomendación de Thiele (1929), quién en un estudio al género
observó que los representantes del Viejo y Nuevo Mundo presentaban diferencias
consistentes para separar geográficamente al género en: Ischnochiton para el Viejo Mundo
y Radsiella para el Nuevo Mundo. Thorpe (op. cit.) no menciona cuales fueron las
diferencias consistentes para proponer esta división del género, sólo se limita a mencionar
que el género Radsiella presenta en las valvas intermedias dos hendiduras en la placa de
inserción.
Por otro lado los estudios realizados de este género en el Nuevo Mundo por Smith (1977),
Ferreira (1978, 1983b, 1984, 1987) y Kaas y Van Belle (1998), coinciden en mantener el
nombre original Ischnochiton, ya que Thiele (op. cit.) no presentó evidencias acerca de las
diferencias “considerables” que observó para sustentar su propuesta. Por lo tanto, en este
trabajo se apoya el argumento de los autores anteriormente mencionados.
66
Ischnochiton muscarius Reeve, 1847
(Figura 11)
Ischnochiton muscarius Keen, 1958: 521, Fig. 16.
Radsiella muscaria Thorpe en Keen, 1971: 869, Fig. 17.
Material revisado: 5 especímenes de 6.3-9.7 mm de longitud, Isla Espíritu Santo B.C, 22/ IV/ 1966, CNMO-066; 9 especímenes de 4.7-
11.5 mm de longitud, Isla Pájaros, Mazatlán, Sinaloa, 14/ V/1979, CNMO-053; 1 especímen de 11.9 mm de longitud, Pto. Mazatlán,
Sinaloa, 5/ X / 1957, CNMO-068; 2 especímenes de 9.4-17.2 mm de longitud, Isla Piedra, Mazatlán, Sinaloa, 4/ V/ 1979, CNMO-052; 3
especímenes de 13-18.2 mm de longitud, Playa Camino Contramar, Zihuatanejo, Guerrero, (sin fecha), CNMO- 021; 7 especímenes de
12.1- 18.1 mm de longitud, Playa Camino al Almacén, Zihuatanejo, Guerrero, 5/I/ 1963, CNMO-043; 3 especímenes de 7.4-25.1 mm de
longitud, Bahía Zihuatanejo, Guerrero, 6/I / 1949, CNMO-026; 4 especímenes de 8.1-19.8 mm de longitud, Playa Las Gatas, Zihuatanejo,
Guerrero, 23 / IV / 1965, CNMO-045; 2 especímenes de 13.2- 15.5 mm de longitud, Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Guerrero, 13/ XII / 1964,
CNMO-013; 2 especímenes de 10.1-13.7 mm de longitud, Isla Sacrificios, Veracruz, I/ 1962, CNMO-072. Total de especímenes
revisados 41.
Descripción: Cuerpo elongado de 6.7– 13.4– 25.1 mm de longitud y 6.1– 10.5– 13.8 mm
de ancho, incluyendo el cinturón (Fig. 11. A).
Color en preservación: variable, pero en general fluctúa entre verdes olivos, grisáceos y
café obscuro; superficie moteada con líneas y manchas blancas y café en diferentes
tonalidades, su distribución en el tegumento es variada. La valva cefálica presenta un
patrón de coloración definido, caracterizada por pequeñas manchas verde olivo o café
verdoso que sobresalen del tegumento dando un aspecto jaspeado; mientras que en la valva
anal las manchas se localizan principalmente al centro, justo en la región postmucronal y
las líneas obscuras se encuentran contiguas a Esta región. Las valvas intermedias presentan
un patrón moteado bien definido en las áreas centrales, ocasionalmente se pueden observar
bandas longitudinales obscuras en la región del yugum; las áreas laterales presentan surcos
finos (el número de éstas, depende del tamaño del organismo), tanto las líneas como las
manchas presentan la misma coloración café verdosa.
Tegumento: de las valvas cefálica y anal granular y las áreas laterales de las valvas
intermedias presentan costillas, las cuales se constituyen del arreglo longitudinal de los
gránulos (Fig. 11. A). El resto del tegumento (áreas centrales y zona anteromucronal)
presentan una granulación de tipo microscópica, la cual puede anastomosarse para formar
67
líneas o surcos muy finos sobre todo en las zonas adyacentes a las áreas laterales; en la
zona del yugum la granulación puede ser mínima y en ocasiones puede estar ausente.
Cinturón: de mediano grosor, cubierto por pequeñas escamas traslapadas entre sí,
redondeadas hacia uno de sus extremos y en el otro, presenta un pico bien pronunciado
(Fig. 11. E). Las escamas son hacia su base, verde obscuro y de la zona media al final de la
valva, blancas. Otra porción de escamas presenta el mismo patrón, pero en este caso las
regiones verde obscuras aumentan, disminuyendo así las zonas blancas originando escamas
más obscuras. El resultado son escamas de diferente color que por su distribución forman
bandas claras y obscuras intercalandas (Fig. 11. F).
Valva cefálica (I): placa más ancha que larga, ventralmente, puede ser de color verde de 9-
11 hendiduras en la placa de inserción, dientes con bordes lisos (Fig. 11. B). Dorsalmente,
presenta de 50-57 surcos finos radiales al ápice (Fig. 11. A).
Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con 2 hendiduras en la placa de inserción;
dientes lisos y pequeños; apófisis medianas; seno yugal variable en su amplitud de la II-IV
es amplio mientras que para las valvas V-VIII suele ser más angosto; en las valvas III-VII
puede ser moderadamente cóncavo y para la valva II, placa yugal lisa (Fig. 11. C).
Dorsalmente, son evidentes las áreas laterales divididas por líneas diagonales; con 6-11
finas costillas que nunca se anastomosan (Fig. 11. A).
Valva anal (VIII): ventralmente, de 10-12 hendiduras de inserción en la placa de
inserción, dientes de tamaño variable con bordes lisos; seno yugal amplio, placa yugal lisa
y moderadamente cóncava en vista dorsal. Apófisis pequeñas y poco prolongadas o
angostas, mucro prominente y situado anteriormente (Fig. 11. D). Dorsalmente, la región
postmucronal presenta de 40-45 finos surcos. Región anteromucronal granular
microscópica, generalmente los gránulos se anastomosan en los bordes adyacentes a los
surcos (Fig. 11. A).
Distribución: Esta especie se localiza desde Isla Venado, Guaymas, Sonora hasta La
Ventosa, Salina Cruz, Oaxaca, México (Ferreira, 1983b).
Los especímenes examinados pertenecen a las localidades de Isla Espíritu Santo B.C;
Mazatlán, Sin. (Isla Chivos, Isla Piedra, Isla Pájaros); Zihuatanejo, Gro. (Isla Ixtapa, Playa
Las Gatas, Playa Camino Contramar) e Isla Sacrificios, Veracruz.
68
I. muscarius sólo se distribuye en el Pacífico Oriental mexicano, por lo que puede ser
dudoso el dato de la localidad de Isla Sacrificios, Veracruz, aunque conviene confirmarlo.
Por lo pronto, no se considera para fines de distribución.
Observaciones: El material examinado presentó variaciones intraespecíficas, sobre todo de
coloración del tegumento y en el número de surcos finos en las áreas laterales de las valvas
intermedias. Ambos caracteres se modifican dependiendo del grado de madurez del
organismo.
Por ejemplo, el número de surcos de las áreas laterales es menor 4-6 en los organismos
juveniles (13 mm), mientras que en los adultos (25 mm) alcanzan un número entre 10-13.
En cuanto a la coloración del tegumento los quitones juveniles son de coloraciones muy
claras, y los adultos suelen ser más obscuros en preservación.
Ischnochiton muscarius se diferencia de las demás especies de este género por presentar
escamas con una zona más clara que la otra (verde y blanco) y por el moteado característico
obscuro de las áreas centrales. La escultura del tegumento se aprecia mejor cuando se
observa a las valvas sin exceso de fijador (secas) y a contraluz.
Discusión : Esta especie ha sido reportada por Keen (1958), Thorpe (en Keen 1971), Smith
(1977) y Ferreira (1983a).
Keen (op. cit.) y Thorpe (op. cit.) diagnosticaron a la especie incorrectamente,
particularmente cuando se refieren a la escultura del tegumento, ya que mencionan “áreas
con surcos o listones irregulares...” y “con alrededor de 50 costillas en la valva cefálica, de
6-10 en las áreas laterales y 40 en la valva anal...”.
El uso del término “costillas” es incorrecto, ya que no es posible observar costillas en el
tegumento y mucho menos “listones irregulares”. Las costillas son unidades bien definidas
que generalmente se continúan por un surco ancho y profundo o del mismo grosor de la
69
costilla. Por otro lado las costillas suelen estar elevadas, por ello en este caso no es correcto
hablar de este tipo de escultura del tegumento, sobre todo para las áreas terminales.
La descripción correcta de la escultura tegumental de I. muscarius es surcos finos que se
forman como consecuencia del arreglo radial de los gránulos (Fig. 11. A).
La sistemática de I. muscarius no ha sido bien estudiada, aunque esta es una especie con un
amplio rango de distribución y muy común en las costas mexicanas. Por ello existen
problemas en su reconocimiento, debido a que no se han definido adecuadamente
basándose en caracteres taxonómicos distintivos.
Ferreira (1983a) reconoce a esta especie para las Islas Revillagigedo y concluye que no
varían morfológicamente con respecto a los especímenes de las otras áreas de distribución.
También presenta fotografías del tegumento de las valvas (Ferreira, 1983a: 312, Fig. 7 y 8),
en las cuales se muestra muy bien el tipo de escultura de esta especie, los gránulos y los
finos surcos radiales al ápice. A pesar de la valiosa información que aporta a la sistemática
de ésta especie, Ferreira (op. cit.) no resuelve el problema de la diagnosis de la especie, ya
que la terminología que usa es muy parecida a la de Keen (op. cit.) y Thorpe (op. cit.).
70
Fig. 11. Ischnochiton muscarius. A) organismo completo en vista dorsal; B) valva cefálica I;C) valva intermedia V; D) valva anal VIII; E) escamas en vista basal y frontal; F) disposición de las escamas en el cinturón.
AB
C
D
E
F
71
Ischnochiton aethalotus Dall, 1919
(Figura 12)
Ischnochiton tridentatus Pilsbry, 1893 Keen, 1958: 522, Fig. 23.
Ischnochiton aethalotus Dall, 1919 Keen, 1958: 522.
Radsiella tridentata Pilsbry, 1893; Thorpe en Keen, 1971:869, Fig. 22.
Material revisado: 49 especímenes (secos) de 6.2 – 22.7 mm de longitud, Entre Bahía Eclipse e Isla Partida, BC, 18/XII/1960, CNMO-
056. Total de organismos 49.
Descripción: Cuerpo ovalado de talla mediana 6.2- 14.6- 22.7 mm de longitud y 4.3- 8.9-
13.4 mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 12. A).
Color en seco: verde grisáceo y café verdoso con manchones claros, sobre todo en las áreas
centrales de las valvas intermedias. Todas las valvas presentan un patrón moteado de beige,
verde claro y obscuro. Cinturón verde claro, ocasionalmente puede presentar una valva más
obscura que el resto.
Tegumento: granular microscópico que se anastomosa y forma una red muy fina, sobre
todo en las áreas centrales de las valvas intermedias y la región anteromucronal de la valva
anal. En las áreas laterales y terminales la disposición de los gránulos es anastomosada y
forma costillas, dispuestas en zigzag, algunas líneas pueden ser más sinuosas que otras (Fig.
12. A).
Cinturón: cubierto de escamas con superficie estriada, traslapadas entre sí,
aproximadamente el 50% del tamaño de I. muscarius, más anchas que largas y redondeadas
en su extremo anterior (Fig. 12. E y F).
Valvas: en general muy arqueadas, ventralmente, verde obscuro y blanco, así como
evidentes las zonas de inserción de los músculos del manto.
Valva cefálica (I): en vista ventral con alrededor de 17 hendiduras en la placa de inserción,
dientes anchos con bordes lisos, a veces ligeramente ondulados, delimitados por líneas de
poros radiadas (poros de los estetos) con respecto al pliegue periostracal y ápice
ligeramente cóncavo (Fig. 12. B). En vista dorsal moteada de blanco y verdes grisáceos,
escultura granular anastomosada formando líneas en zigzag dispuestas concéntricamente
con respecto al ápice de la valva y que son más evidentes hacia la periferia. (Fig. 12. A).
72
Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con 3 hendiduras en cada lado de la placa de
inserción, ocasionalmente se pueden presentar 2 dientes pequeños, delimitados por líneas
de poros que se unen lateralmente al pliegue periostracal. Apófisis poco prolongadas y
delgadas con bordes redondeados; seno yugal amplio y placa yugal lisa (Fig. 12. C). En
vista dorsal es poco convexo; ápice poco pronunciado. Dorsalmente, las áreas centrales
presentan escultura similar a la de la región anteromucronal, es decir, gránulos
anastomosados de tal forma que se observa una porción elevada y contigua a esta una zona
más baja, dando la apariencia de un poro y así sucesivamente. Áreas laterales elevadas con
escultura granular anastomosada, formando líneas verticales en zigzag y ocasionalmente
onduladas (Fig. 12. A).
Valva anal (VIII): ventralmente, con alrededor de 11 hendiduras en la placa de inserción,
delimitadas por líneas de poros de los estetos; seno yugal horizontal y placa yugal lisa.
Apófisis pequeñas y delgadas; superficie ventral rugosa, blanca y verde obscura (Fig. 12.
D). Dorsalmente, la regionalización es muy clara debido a la disposición y arreglo de los
gránulos, en la región anteromucronal están anastomosados dando la apariencia de una red;
la región postmucronal con gránulos más prominentes y anastomosados, formando líneas
en zigzag. Mucro elevado situado en la parte media de la valva (Fig. 12. A).
Distribución: De La Paz, Bahía Gonzaga y del Golfo de California a Guaymas, Sonora,
México (Thorpe en Keen, 1971).
Los especímenes estudiados corresponden a la zona entre Bahía Eclipse e Isla Partida, Baja
California, México.
Observaciones: Los organismos estudiados, se encontraron en seco con buenas
condiciones de preservación. Probablemente el color del tegumento pueda diferir en
especímenes preservados en fijadores y en vivo.
Discusión: Esta especie ha sido reportada por Keen (1958), Thorpe (en Keen, 1971) y Kaas
y Van Belle (1998). Keen (op. cit.) y Thorpe (op. cit.) han definido la escultura del
tegumento de las valvas como “estriada longitudinalmente en forma de V”, descripción que
73
no corresponde con la Fig. 12. A, en donde se observa la escultura de las valvas. Es
correcto decir que “presenta líneas longitudinales en zigzag” en las áreas laterales y para las
áreas terminales “líneas en zigzag concéntricas al ápice”.
Keen (op. cit.) y Thorpe (op. cit.) mencionan también que I. aethalotus es comúnmente
confundida con I. muscarius, probablemente porque en ambas descripciones se menciona
que el tipo de escultura es con costillas, lo que indica que es importante hacer énfasis en las
diferencias de la escultura del tegumento de las especies correctamente, para evitar
confusiones en su reconocimiento.
Smith (1977) en un estudio sobre la rectificación de la nomenclatura de los quitones del
Pacífico Oriental, revisó el holotipo de esta especie y observó mayor número de hendiduras
en la valva cefálica, de acuerdo a lo que se había reportado en la descripción original.
El número descrito para esta especie fue de 13 hendiduras en la valva cefálica, mientras que
Smith observó 18 hendiduras en el holotipo. Por lo tanto el número de las hendiduras
reportado para la especie fue incorrecto, por ello se mantuvo el nombre original I.
aethalotus suprimiendo el de I. tridentatus. En el presente trabajo se observó el número de
hendiduras en la valva cefálica de 10 especímenes, en los cuales se encontraron 17
hendiduras.
Smith (1977) también menciona que Thorpe (en Keen, 1971) hizo sinónimo a I. tridentatus
de I. aethalotus, sin fundamentar su propuesta. Aunque no se haya justificado el uso de la
sinonimia con I. tridentatus, así como el uso del género Radsiella para el Nuevo Mundo,
algunos autores han reportado erróneamente a la especie como Radsiella tridentatus.
En reportes de recolectas hechas en México, es muy común encontrar a las especies de este
género determinadas bajo el nombre de Radsiella. Una de las razones por las que este
nombre genérico ha sido aceptado, es por la gran influencia que el trabajo de Thorpe (en
Keen, 1971) tiene sobre la mayoría de los malacólogos en México.
74
Kaas y Van Belle (1998) reportan a esta especie como I. aetholotus (como sinónimo de I.
muscarius), probablemente sea un error de escritura al substituir la segunda “a” por una
“o”, ya que nominalmente no existe ninguna especie con este nombre.
75
AB
C
D
EF
Fig. 12. Ischnochiton aethalotus. A) vista dorsal del organismo completo; B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) vista basal y frontal de las escamas; F) disposición de las escamas en el cinturón.
76
Género Stenoplax Dall, 1879
Diagnosis: Quitones de tallas pequeñas a grandes, con cuerpo elongado, más largos que
anchos. Color muy variable. Valvas moderadamente aplanadas. Valvas intermedias, poco
arqueadas, con áreas laterales de poco a muy elevadas. La valva anal es la más grande de
las valvas, semicircular; mucro poco evidente situado central o posteriormente. Placas de
inserción de la valva cefálica de 8-14, valvas posteriores con 9-15 hendiduras y en las
valvas intermedias con 1-3 o más hendiduras. Superficie generalmente granular (los
gránulos se pueden anastomosar para formar una escultura radial o concéntrica) y con
costillas en las áreas laterales y terminales. Cinturón grueso, con escamas de pequeñas a
extremadamente pequeñas, con superficie lisa o estriada (Smith en Moore, 1960).
Comentarios: Estos quitones pueden ser herbívoros, carnívoros (S. floridana Pilsbry,
1892) y omnívoros. Además, presentan un hábitat muy restringido, se localizan sobre todo
debajo de las rocas y enterrados en substratos abundantes en oxígeno. Se les encuentra sólo
en aguas someras, siempre inundadas y hasta 2-3 m de profundidad. Sólo S. purpuracens
Adams, 1845 ha sido colectada hasta 90 m de profundidad en las costas Oeste de Florida y
Las Bahamas (Bullock, 1987).
Subgénero Stenoradsia Dall, 1879
Diagnosis: Quitones de tallas grandes, tegumento fuertemente marcado. Las hendiduras de
inserción son variadas en número, especialmente las hendiduras de la valva cefálica y anal
suelen ser numerosas (Kaas y Van Belle, 1987).
77
Stenoplax (Stenoradsia) sonorana Berry, 1956
(Figura 13)
Stenoplax conspicua sonorana Keen, 1958: 528, Fig. 47; Thorpe en Keen, 1971: 871, Fig. 23;
Abbott, 1974: 397.
Stenoplax conspicua Rehder, 1987: 331, Fig. 446.
Material revisado: 4 especímenes de 20.7- 68.3 mm de longitud, Guaymas, Sonora, 22/III/ 1972, CNMO-003. Total de organismos 7.
Descripción: Cuerpo elongado de 20.7- 50.2- 68.3 mm de longitud y de 7.8- 20.8- 28.7
mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 13. A).
Color en preservación: verde grisáceo en las zonas periféricas y blanco en las zonas
centrales y áreas laterales; región posterior del yugum y ápice rosa; yugum con una banda
obscura en forma de cuña, el cinturón ocasionalmente es verde aceituna y amarillo.
Tegumento: granular en las áreas centrales y región anteromucronal. Las áreas laterales,
valva cefálica y región postmucronal de la valva anal con gruesas costillas y de 3-4 gruesos
surcos principales, concéntricos al ápice así como otros más pequeños y menos profundos.
Yugum y ápice generalmente erosionados (Fig. 13. A).
Cinturón: cubierto de numerosas escamas arqueadas, alargadas con puntas roma y
superficie ligeramente acanalada con líneas verticales, punta redondeada, base obscura y
achatada (Fig. 13. F). Por la disposición de las escamas puede presentar manchones
obscuros y otros más claros (Fig. 13. E).
Valvas: en general gruesas y poco arqueadas, ventralmente de color rosa y verde,
evidentes las zonas de inserción de los músculos del manto.
Valva cefálica (I): ventralmente, con alrededor de 13 hendiduras en la placa de inserción,
dientes gruesos y lisos (Fig. 13. B). Dorsalmente, con escultura granular microscópica, la
cual forma costillas radiales y 4 profundos surcos principales concéntricos al ápice,
contiguos a estos se encuentran otros más pequeños y menos profundos; ápice elevado y
cóncavo (Fig. 13. A).
Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con 2 profundas y amplias hendiduras a cada
lado de la placa de inserción, especialmente en las valvas anteriores (II-IV) ya que las
posteriores (V-VII) pueden presentar hasta 4 hendiduras, dientes pequeños y lisos. La placa
78
del periostraco sobresale hacia los márgenes laterales de la valva; seno yugal amplio, placa
yugal lisa y ligeramente cóncava excepto por la placa II en donde es convexa. Superficie de
las áreas centrales es mucho mayor que la de las áreas laterales. Apófisis angostas y
prolongadas en el extremo contiguo al seno yugal (Fig. 13. C). Dorsalmente, las áreas
centrales presentan escultura granular microscópica con disposición a manera de red y de 3-
4 líneas onduladas horizontales. Ápice erosionado y poco elevado. Áreas laterales
delimitadas por una línea diagonal con escultura granular que forma costillas elevadas; de
3-4 amplios surcos verticales, los cuales coinciden y se continúan con las líneas de las áreas
centrales. Generalmente se encuentran surcos más pequeños contiguos a los principales
(Fig. 13. A).
Valva anal (VIII): más grande y ancha que el resto, región anteromucronal más arqueada
que la postmucronal. Ventralmente, con alrededor de 11 hendiduras en la placa de
inserción, dientes anchos, gruesos con bordes moderadamente ondulados y su superficie
puede ser acanalada verticalmente; el pliegue periostracal de la valva es delgado. Apófisis
angostas y prolongadas; seno yugal amplio, placa yugal lisa y ligeramente cóncava (Fig. 13.
D). Dorsalmente, en la región anteromucronal presenta escultura granular microscópica, así
como líneas concéntricas al mucro; la región postmucronal se encuentra bien delimitada y
elevada de la parte anterior por una línea diagonal. Presenta gruesa escultura granular que
forma costillas radiales y 4 profundos surcos concéntricos al mucro que se continúan con
las líneas de la región anteromucronal, adyacentes a estos se encuentran otros más
pequeños y menos profundos. Mucro poco elevado y erosionado situado en la parte media
de la valva (Fig. 13. A).
Branquias: localizadas a lo largo del surco paleal, las cuales se distribuyen en la porción
media del surco, hasta mucho antes de la región anal.
Distribución: En la mitad Norte del Golfo de California, entre Bahía de San Carlos (en la
parte occidental) y la parte oriental de Guaymas, Sonora.
El material examinado corresponde a Guaymas, Sonora, México.
79
Discusión: Esta especie ha sido reportada por Keen (1958), Thorpe (en Keen, 1971) y
Abbott (1974), Kaas y Van Belle (1987) y Rehder (1981). En general estas descripciones se
basan en el tamaño y color del organismo, excepto por la descripción en extenso de Kaas y
Van Belle (op. cit.), en la cual se detalla en la morfología de las valvas y tipo de escultura
tegumental.
Los caracteres taxonómicos de la descripción de Thorpe (en Keen, 1971) para la subespecie
S. conspicua sonorana Berry, 1956 son muy parecidos a los caracteres de S. conspicua, de
tal forma que es difícil diferenciarlas, debido a que es inadecuada su descripción
morfológica.
Rehder (1981) la describe basándose casi exclusivamente en el color y talla de la especie,
pero en organismos en preservado en difícil mantener el color original y la talla exacta, por
lo tanto esta descripción no ayuda a definir a la especie.
Kaas y Van Belle (1987) presentan la descripción extensa de la especie, en este mismo
trabajo también mencionan que inicialmente Berry (1956) la definió como una subespecie
de S. conspicua. Posteriormente él mismo observó que el diente mayor lateral de la rádula
de S. sonorana presentaba un capuchón denticular tricúspide, a diferencia de S. conspicua
en el que el capuchón era tetracúspide. Bajo este criterio se separaron a las especies en,
siendo S. sonorana exclusiva para la Bahía de Guaymas, Sonora México.
Se examinó el capuchón denticular de 1 espécimen, el cual correspondió con las
características morfológicas (capuchón tricúspide) reportadas para Stenoplax (Stenoradsia)
sonorana.
En este mismo trabajo Kaas y Van Belle (op. cit.) proponen dos subgéneros del género
Stenoplax, incluyendo a S. sonorana dentro del subgénero Stenoradsia, argumentando su
división bajo criterios de la talla y escultura tegumental. En el subgénero Stenoplax colocan
a las especies de menor talla y escultura tegumental poco marcada, mientras que en el
80
subgénero Stenoradsia colocan a las especies grandes con escultura tegumental fuertemente
marcada.
En el presente trabajo se sigue la propuesta únicamente para S. (Stenoradsia) sonorana, ya
que la especie puede ser confundida con otras de tallas y escultura tegumental similar.
81
Fig. 13. Stenoplax (Stenoradsia) sonorana. A) organismo completo en vista dorsal.
A
82
BCD EF
Fig. 13. B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) escamas en vista frontal; F). disposición de las escamas en el cinturón.
B
C
D
F
E
83
Stenoplax limaciformis Sowerby, 1832
(Figura 14)
Stenoplax limaciformis Keen, 1958: 526, Fig. 44; Thorpe en Keen, 1971: 871, Fig. 24;
Abbott, 1974: 396 y Kaas y Van Belle, 1998: 74.
Material revisado: 2 especímenes de 19.7- 24.6 mm de longitud, Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Guerrero,
23/IV/1965, CNMO-019. Total de organismos 2.
Descripción: Cuerpo muy elongado de 19.7- 24.1- 26.6 mm de longitud y 8.3- 8.5- 8.9 mm
de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 14. A).
Color en preservación: de tonalidades en verde, especialmente hacia las zonas laterales y
áreas centrales. Superficie dorsal moteada en verde y blanco; cinturón verde con algunos
manchones blancos.
Tegumento: con finas costillas longitudinales en las áreas centrales y región
anteromucronal de la valva anal que nunca se anastomosa. Áreas terminales (valva cefálica
y región postmucronal de la valva anal) y áreas laterales de las valvas intermedias con
gránulos anastomosados, que dan aspecto de costras irregulares; ápice y mucro
generalmente erosionados (Fig. 14. E, F y G).
Cinturón: cubierto por diminutas escamas traslapadas (Fig. 14. I), que le dan un aspecto
aterciopelado muy fino (Fig. 14. H). Escamas alargadas, delgadas y translúcidas. Superficie
no observada.
Valva cefálica (I): ventralmente, con un rango de 10-12 hendiduras en la placa de
inserción, dientes lisos y prolongados; de tamaños diferentes; pliegue periostracal ancho y
ápice cóncavo (Fig. 14. B). Dorsalmente, presenta gránulos anastomosados, que forman
costras irregulares; hacia el ápice, la escultura suele desaparecer (Fig. 14. E).
Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, pueden ser de color rosa, con 1 profunda
hendidura a cada lado de la placa de inserción, dientes gruesos, lisos y poco prolongados;
seno yugal amplio, placa yugal lisa y ligeramente cóncava, excepto en la valva II que es
convexa. Apófisis prolongadas, muy angostas y pequeñas (Fig. 14. C). Dorsalmente,
presenta costillas delgadas que no se anastomosan, presentes en las áreas centrales y región
yugal. Áreas laterales elevadas con gránulos que se anastomosan (Fig. 14. F).
84
Valva anal (VIII): ventralmente, con placa de inserción de 10-18 profundas hendiduras,
dientes de tamaños variados, lisos y poco prolongados. Seno yugal amplio y placa yugal
lisa; apófisis pequeñas con bordes redondeados(Fig. 14. D). Dorsalmente, presenta región
anteromucronal con finas costillas que no se anastomosan; mucro situado anteriormente;
región postmucronal con escultura granular hacia la periferia muy gruesa, con aspecto
costroso; hacia el centro del tegumento, presenta líneas onduladas concéntricas al mucro,
éstas pueden anastomosarse total o parcialmente (Fig. 14. G).
Branquias: delgadas que se extienden desde poco después de la cabeza hasta mucho antes
de la región anal, las primeras 4 suelen ser de menor tamaño que el resto.
Distribución: Se localiza desde Puertecitos y la Libertad, B. C, México hasta el Sur de
Perú (Kaas y Van Belle, 1987).
El material revisado corresponde a Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Guerrero, México.
Comentario: Bullock (1985) realizó un estudio comparativo (usando microscopía de
barrido) entre especies del Pacífico Oriental y especies del Caribe Mexicano, y observó que
S. limaciformis es muy parecida a S. purpuracens Adams, 1845 (del Caribe), ya que ambas
especies comparten caracteres morfológicos de la rádula.
Tales semejanzas fueron consideradas como evidencia, para suponer que esas especies del
Caribe y las del Pacífico Oriental son especies hermanas, en donde S. purpuracens está más
relacionada con S. limaciformis, ya que además de las similitudes de la rádula, ambas
especies presentan mucro central y costillas en el área central que no forman gránulos cerca
de las áreas laterales.
Discusión: Esta especie ha sido reportada por Keen (1958), Thorpe (en Keen, 1971),
Bullock (1985) y Kaas y Van Belle (1998).
Keen (op. cit.) y Thorpe (op. cit.) describen incorrectamente la escultura del tegumento de
esta especie, ya que mencionan que presenta “escultura de surcos concéntricos”.
85
Bullock (op. cit.) rectifica la descripción de la especie, como “nodulosa concéntrica”, donde
estos nódulos pueden anastomosarse y dar un aspecto de gránulos dispuestos radialmente.
Siendo esta descripción la que define de mejor manera la escultura del tegumento de la
especie.
Bullock (op. cit) esquematiza el tipo de escultura de esta especie de la valva I, una valva
intermedia y la valva VIII. Estos esquemas son muy importantes ya que muestran la
morfología de las valvas, el tipo y la disposición de la escultura en cada una de ellas.
También estudió la densidad de los estetos, el capuchón denticular de la rádula y la
escultura del tegumento, las cuales son muy similares en la especie del Caribe S.
purpuracens y S. limaciformis del Pacífico Oriental. Su trabajo permitió redefinir a la
especie y diferenciarla de las demás especies de este género.
La importancia del estudio de Bullock, es que esquematiza la compleja escultura del
tegumento de esta especie, permitiendo que sea fácilmente identificada sin ser confundida
con otra especie del mismo género. Por otro lado, en su estudio incluye especies del género
Stenoplax que presentan un amplio rango de distribución, como S. limaciformis.
86
Fig, 14. Stenoplax limaciformis. A) vista dorsal del organismo completo; B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral.
AB
C
D
87
Fig. 14. E) valva cefálica I; F) valva intermedia V; G) valava anal VIII en vista dorsal;
H) disposición en las escamas en el cinturón; I) escamas en la vista frontal.
88
Stenoplax sp. A
(Figura 15)
Material revisado: 2 especímenes de 29.8- 41.0 mm de longitud, (sin localidad y fecha), CNMO-031; 1 especímen de 28.5 mm de
longitud, Rocas de la casa del marino, Mazatlán, Sinaloa, 5/X/ 1957, CNMO-068. Total de organismos 3.
Descripción: Cuerpo muy elongado de 19.7- 33.1- 41 mm de longitud y 8.3- 12.5- 16.1
mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 15. A).
Color en preservación: rosa, sobre todo en las áreas laterales. Áreas centrales moteadas en
verde obscuro, amarillo y blanco especialmente en las zonas de inserción entre valva y
valva. Área yugal ocasionalmente con una línea obscura longitudinal, cinturón rosa obscuro
con manchones claros.
Tegumento: con costillas dispuestas en diferente disposición para cada región de las
valvas. Las costillas pueden ser onduladas, anastomosadas y bifurcadas o ramificadas,
dependiendo de la región en la que se encuentren (Fig. 15. E, F y G).
Cinturón: cubierto por diminutas escamas translúcidas que le dan aspecto de alfombra
(Fig. 15. I). Escamas con la cima medianamente alargadas y achatadas, que se angostan
ligeramente en su base y con superficie finamente acanalada (Fig. 15. H).
Valvas: en general poco arqueadas, anchas y prolongadas; seno yugal muy amplio; placa
yugal plana y lisa; apófisis pequeñas y poco prolongadas, ventralmente, son de color rosa
principalmente hacia el centro.
Valva cefálica (I): redondeada, placa más pequeña que el resto, ventralmente, con
alrededor de 12 hendiduras amplias en la placa de inserción, dientes prolongados con
bordes lisos de tamaños variados y delimitados por líneas de poros radiales (poros de los
estetos) al pliegue periostracal (Fig. 15. B). Dorsalmente, presenta costillas gruesas
dispuestas en zigzag, aplanadas en su base y dispuestas concéntricamente con respecto al
ápice; hacia la periferia de la valva la escultura tiene aspecto costroso irregular. Ápice
cóncavo con granulación fina (Fig. 15. E).
Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con una hendidura amplia y profunda a cada
lado de la placa de inserción, dientes lisos, pliegue periostracal delgado. Apófisis altas y
pequeñas; seno yugal muy amplio, placa yugal lisa y totalmente horizontal (Fig. 15. F).
89
Dorsalmente, las áreas centrales con costillas longitudinales que no se anastomosan y en la
región yugal casi desaparecen. Algunas costillas centrales pueden continuarse con las de las
áreas laterales. Ápice poco evidente; áreas laterales pequeñas, poco elevadas y delimitadas
por una línea diagonal; costillas onduladas más gruesas que las de las áreas centrales (Fig.
15. C).
Valva anal (VIII): más larga que las demás, semicircular en vista dorsal. Ventralmente,
con alrededor de 11 hendiduras en la placa de inserción, dientes de diferentes tamaños,
prolongados, lisos y bien separados entre ellos (Fig. 15. G). Dorsalmente en la región
anteromucronal con costillas diagonales dirigidas hacia el mucro y entrecortadas por
pequeños surcos (2-3) horizontales a la escultura. Mucro poco elevado y situado en la parte
anterior de la valva, la escultura en ésta zona suele ser nula y de superficie erosionada.
Región postmucronal poco elevada, con costillas onduladas más gruesas que en la región
anteromucronal y dirigidas concéntricamente; las costillas centrales suelen ser más elevadas
y gruesas que las demás, hacia la periferia suelen estar entrecortadas hasta perder su forma
y tener aspecto de costras de forma irregular (Fig. 15. D).
Distribución: El material examinado corresponde a Rocas de la casa del marino, Mazatlán,
Sinaloa, México.
Discusión: Esta especie ha sido definida temporalmente como Stenoplax sp. A, ya que
ninguna de las 9 especies de este género (S. magdalensis Hinds, 1845; S. boogii Haddon,
1886; S. limaciformis Sowerby, 1832; S. circumsenta Berry, 1956; S. conspicua Pilsbry,
1892; S. heatiana Berry, 1919; S. corrugata Dall, 1903; S. sonorana Berry, 1956; S.
mariposa Dall, 1919) descritas por autores como Keen (1958), Thorpe (en Keen, 1971),
Abbott (1974) y Bullock (1985) para el Pacífico Oriental, se asemejan a la especie del
presente trabajo.
Stenoplax sp. A presenta una escultura tegumental similar a la que presenta S. floridana del
Caribe y que es esquematizada por Bullock (1985). Las costillas y su disposición son muy
parecidas, aunque Stenoplax sp. A presenta una granulación anastomosada a manera de
90
costras irregulares hacia la periferia de las valvas I y VIII, mientras que en las valvas
intermedias, los gránulos anastomosados se encuentran los extremos de las áreas laterales.
Estos nódulos se van anastomosando más hacia el centro de las valvas, hasta formarse
costillas concéntricas, donde los bordes de éstas presentan hendiduras o depresiones y
algunas de ellas pueden estar entrecortadas (Fig. 15. B).
Bullock (op. cit.) en su estudio al género Stenoplax presenta especies del Caribe y del
Pacífico Oriental, de las cuales S. limaciformis y S. purpuracens son especies muy
relacionadas entre sí, ya que presentan similitudes en la escultura tegumental y en la
morfología de la rádula. Por ello las denomina “especies hermanas”, según la definición de
Mayr (1969) “pares de especies relativas las cuales están aisladas reproductivamente, que
son parecidas o idénticas morfológicamente”.
Stenoplax sp. A además de ser una especie no definida para el Pacífico Oriental, es posible
que sea “especie hermana” de S. floridana, lo que podría determinarse realizando un
estudio comparativo con material reciente de estas dos especies.
91
Fig. 15. Stenoplax sp. A. A) organismo completo en vista dorsal; B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista dorsal.
A B
C
D
92
Fig. 15. E) valva cefálica I; F) valva intermedia V; G) valva anal VIII, en vista ventral; H) disposición de las escamas en el cinturón; I) vista frontal de las escamas.
E
F
G
H
I
93
Subfamilia Callistoplacinae Pilsbry, 1893
Diagnosis: Quitones de talla pequeña, con escultura del tegumento bien marcada,
generalmente presenta costillas radiales en las áreas laterales de las valvas intermedias.
Placas de inserción, con hendiduras en todas las valvas, dientes de inserción serrados. Sin
ocelos presentes. Cinturón angosto con ornamentación variable (Smith en Moore, 1960).
Género Callistoplax, Dall, 1882
Diagnosis: Quitones de talla pequeña. Escultura del tegumento con costillas marcadas
fuertemente. Áreas centrales con líneas sinuosas, dispuestas longitudinalmente. Placas de
inserción pequeñas y lisas. Cinturón delgado y poroso. Este género difiere de
Callistochiton, principalmente por la ornamentación en el cinturón, el cual es desnudo
excepto por una serie de poros (Thiele, 1929)
94
Callistoplax retusa Sowerby, 1832
(Figura 16)
Callistoplax retusa Keen, 1984: 879, Fig. 43.
Chiton retusus Kaas y Van Belle, 1998: 158.
Material revisado: 1 espécimen de 18.1 mm de longitud, Isla Ixtapa, Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Guerrero, 23/IX/ 1965, CNMO-019;
4 especímenes de 9.2- 15.6 mm de longitud, Isla Ixtapa, Playa Corralito, Zihuatanejo, Guerrero, 27/IX/ 1965, CNMO-049. Total de
organismos 5.
Descripción: Cuerpo muy elongado, organismos de talla pequeña 9.2- 13.8- 18.1 mm de
longitud y 5.6- 7.16- 7.9 mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 16. A).
Color en preservación: café claro a beige y blanco sobre todo en las áreas laterales y ápice
de las valvas intermedias, ocasionalmente puede presentar manchones obscuros en las
placas. Cinturón beige con mechones fibrosos cafés obscuros; el área yugal a veces
presenta una línea vertical obscura, más evidente en la valva VII.
Tegumento: granular, generalmente anastomosado, que forma costillas delgadas dispuestas
verticalmente en las áreas centrales y región anteromucronal de la valva anal. Costillas
gruesas en las áreas laterales, valva cefálica y región postmucronal de la valva anal; yugum
con granulación fina no anastomosada (Fig. 16. A).
Cinturón: delgado, suave, liso y cubierto por mechones de gruesos grupos de cerdas
arqueadas en número de 3-8, que se disponen formando una sola línea periférica a lo largo
del cinturón (Fig. 16. E).
Valvas: en general pequeñas y arqueadas con un tegumento grueso y escultura granular
anastomosada, pliegue periostracal muy grueso con escultura presente.
Valva cefálica (I): ventralmente, con alrededor de 7 amplias hendiduras en la placa de
inserción, dientes anchos y poco prolongados; evidentes zonas de inserción de los músculos
del manto (Fig. 16. B). Elevada dorsalmente y presenta escultura granular anastomosada,
que forma gruesas costillas radiales con respecto al ápice, distribuyéndose en grupos de
dos, este arreglo permite la formación de líneas onduladas dispuestas horizontalmente; las
zonas más bajas o surcos son amplios y presentan una granulación no anastomosadas. Los
bordes de la valva son ondulados y el ápice cóncavo (Fig. 16. A).
95
Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con una hendidura a cada lado de la placa de
inserción, dientes lisos y márgenes de las apófisis onduladas; seno yugal amplio, placa
yugal cóncava y lisa excepto en la valva II donde es ligeramente convexa (Fig. 16. C).
Valva anal (VIII): más larga que ancha, ventralmente el periostraco de la valva sobresale
por encima de los dientes de inserción, con alrededor de 17 hendiduras en la placa de
inserción, dientes en general pequeños excepto por los marginales muy separados entre sí y
poco prolongados. Presenta superficie porosa, seno yugal amplio y placa yugal lisa; apófisis
pequeñas y poco prolongadas (Fig. 16. D). Dorsalmente, con área anteromucronal muy
amplia, con escultura granular anastomosada que forma gruesas y elevadas costillas
diagonales generalmente bifurcadas. Mucro elevado situado posteriormente, cerca del
margen posterior de la valva, el cual está modificado en forma de media luna seccionada
por rayos concéntricos. Región postmucronal dirigida hacia abajo con escultura granular
anastomosada que forma gruesas costillas radiales al mucro con líneas de crecimiento
evidentes (Fig. 16. A).
Distribución: De las Islas Tres Marías, México hasta Centro América (Thorpe en Keen,
1971). El material examinado corresponde a Isla Ixtapa y Playa Las Gatas, Zihuatanejo,
Guerrero, México.
Discusión: Este género del Pacífico Oriental está representado sólo por Callistoplax retusa.
Esta especie ha sido únicamente reportada sólo por Thorpe (en Keen, 1971). Aunque el
esquema que presenta no es muy claro, el acercamiento en vista dorsal del organismo
permite observar los característicos mechones periféricos de pelos en el cinturón. También
presenta esquemas de las valvas I, V y VIII en vista dorsal, que permite la rápida
determinación de la especie.
C. retusa es una de las pocas especies descritas e ilustradas correctamente en la 2ª edición
de Keen (1971) Esta especie no presenta ningún problema sistemático y es fácil su
determinación. Aunque las valvas pueden estar cubiertas totalmente por algas y sedimentos,
con las características del cinturón y la talla es suficiente para reconocerla.
96
Fig. 16. Callistoplax retusa. A) organismo completo en vista dorsal; B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) mechón del cinturón.
A BCDE
97
Familia Chitonidae Rafinesque, 1815
Diagnosis: Organismos de talla pequeña a grande, con escultura tegumental variada de lisa
a granular. Apófisis anchas. Seno yugal trapezoidal; placa yugal de ligeramente canalada a
pectinada. Valvas intermedias con hendiduras de inserción en número de 1-3 por cada lado.
Dientes de inserción de pectinados a lisos. Ventralmente con una típica depresión con
numerosos poros transversales en el tracto yugal. Cinturón liso con pequeñas y numerosas
escamas, espinas o espículas. Tegumento con o sin ojos verdaderos. Diente mayor lateral de
la rádula, siempre con capuchón denticular unicúspide (Bullock, 1988).
Comentarios: Bullock (1988) menciona que la estructura taxonómica que ha caracterizado
a la Familia Chitonidae, es la presencia de dientes de inserción pectinados, que ha
permitido que se mantengan juntos los grupos con escamas, espinas o sin ningún derivado
epidérmico. Pero esta clasificación taxonómica no ha resultado satisfactoria debido a que
está basada únicamente en este caracter.
Smith (1977) propuso una rectificación en la nomenclatura de los quitones, mediante la
revisión de algunos especímenes tipo, comparándolos con material reciente. Su tratamiento
sistemático acerca de ésta familia fue muy conservador, debido a que incluye a la mayoría
de las especies de esta familia como sinónimos de otras especies. Ya que según él, las
relaciones entre las especies no están bien conocidas.
Por otro lado, dicho autor resalta el hecho de que ha representado un gran problema la
identificación y determinación de algunas especies, debido a que las descripciones
originales son “inadecuadas”, así como que muchas de ellas no han sido nunca ilustradas.
A pesar de reconocer estos problemas, en su trabajo no ilustra ninguna estructura
taxonómica, y solo se limita a mencionar que las fotografías de las especies revisadas, se
encuentran disponibles en el Departamento de Zoología de la Academia de Ciencias de
California.
98
Aunque presentó un trabajo importante realizando la revisión de los especímenes tipo de
muchas especies de quitones, la falta de esquemas de las estructuras taxonómicas, no
permiten que todas sus observaciones y modificaciones a la descripción original, se
consideren como un nuevo aporte a las especies, ya que no es posible corroborarlas.
Bullock (1988) por su parte, propuso las siguientes estructuras taxonómicas que
caracterizan a la familia Chitonidae: morfología de las valvas, microestructura de la concha,
elementos del cinturón, estetos y rádula, los cuales permiten una clasificación natural de
este grupo.
En ese trabajo ilustra y describe detalladamente las estructuras de cada especie, al contrario
de Smith (1977). Además sugirió separar al género Chiton en la subfamilia Chitoninae, de
otros grupos cercanos como: Rhyssoplax, Teguloplax y Sypharochiton.
Subfamilia Chitoninae
Diagnosis: Organismos de talla pequeña a grande. Dientes de inserción con superficie
acanalada a fuertemente pectinada. Cinturón con escamas estriadas o lisas, traslapadas entre
sí. Estetos poco desarrollados (Bullock, 1988).
99
Género Chiton Linnaeus, 1767
Diagnosis: Organismos de talla grande, hasta 123 mm de longitud. Valvas aplanadas y de
elevadas a carinadas. Estructura tegumental muy variable y subtegumento poco
desarrollado. Escamas de forma y tamaño variable, lisas o estriadas longitudinalmente.
Diente mayor lateral de la rádula, con capuchón denticular mayor a los 90º. Borde distal del
diente centro lateral perpendicular con respecto al eje longitudinal del cuerpo.
Comentarios: El género Chiton fue descrito originalmente para el Nuevo Mundo.
Actualmente representa una fauna importante de las aguas someras del Pacífico Oriental,
Caribe y a lo largo de las costas de Sur América.
A pesar de la abundancia de las especies reportadas, poco se sabe acerca de su biología. C.
tuberculatus ha sido la única especie objeto de varios estudios biológicos (Bullock, 1988).
El género Chiton del Nuevo Mundo ha sido estudiado taxonómicamente por Reeve (1847),
Pilsbry (1892-1894) y Clesin (1903-1904) (en Smith, 1977). Además, los miembros de este
género en el Nuevo Mundo, presentan una gran diversidad en su morfología externa. Por lo
que ha sido necesario establecer subgéneros en la clasificación actual.
Bullock (op. cit.) enfatiza que las especies de la familia Chitonidae han sido situadas en el
género Chiton, ya que muchos autores durante la primera mitad del siglo XIX, insistieron
en colocar a la mayoría de los quitones en el género Chiton. Por ello algunos autores usaron
subgéneros para estudiarlos y evitar confusiones en su sistemática, los primeros taxónomos
en dividir al género fueron Gray (1847) y Thiele (1893) (en Smith, 1977) y (Bullock,
1988).
Bullock (op. cit.) realizó una investigación histórica acerca de los subgéneros que propone
y en donde enfatiza que Scutegeruli fue históricamente un sinónimo del subgénero
Diochiton introducido por Meuschen (1787) en (Bullock, 1988.), el cual fue no fue válido
100
ya que el nombre no estaba propuesto en su forma singular nominativa. También menciona
que Herrmannsen (1852) presentó este nombre en su forma correcta Scutigerulus. Pero aún
cuando el nombre fue escrito en forma correcta, la introducción de este nombre no es
adecuada, ya que Meuschen (op. cit.) lo usó como sinónimo del género Chiton.
Bullock (1988.) menciona que Thiele (1893) propuso el subgénero Diochiton, basándose en
las diferencias de la morfología de la rádula, patrones de distribución y nicho ecológico de
Chiton albolineatus. Pero según Bullock (op. cit.) estas diferencias no justifican el uso del
subgénero. Por ello Bullock (op. cit.) realizó un estudio más detallado de sus caracteres
taxonómicos, que fundamentan su propuesta para aceptar el subgénero Diochiton.
El subgénero está conformado por 7 especies: C. albolineatus Broderip y Sowerby, 1829 de
la provincia Panámica, la cual representa a la especie tipo del subgénero; C. squamosus
Linnaeus, 1764; C. goodallii Broderip, 1832 de las Islas Galápagos; C. marquesanus
Pilsbry, 1893 de las Islas Marquesa; C. viridis Spengel, 1797 del Caribe. Y el grupo de
especies de C. marmoratus el cual incluye la especie Panámica C. articulatus Sowerby,
1832 y la especie de las Indias C. marmoratus Gmelin, 1791.
En este mismo estudio, Bullock (1988) propone dentro del género Chiton tres subgéneros:
Chiton, Amaurochiton y Chondroplax Thiele, 1893. Mientras que Sypharochiton y
Ehyssoplax, Thiele, 1893, los consideró como géneros diferentes a este grupo taxonómico.
Estos subgéneros se basan en: 1) morfología de las valvas y poros de los estetos; 2)
elementos del cinturón (superficie de las escamas); 3) morfología de la rádula (orientación
de los dientes mayores, capuchón y ángulo del capuchón denticular) y 4) el sistema de los
estetos (características de los poros externos de los estetos).
El hecho de tomar en cuenta estas estructuras taxonómicas, hizo posible situar a especies
que no pertenecen al Nuevo Mundo en otros géneros.
101
Bullock (op. cit.) reconoce los problemas sistemáticos del género y propone la separación
del género en varios subgéneros. La cual se basa principalmente en la escultura del
tegumento y en los dientes radulares, en general hace uso de un grupo de caracteres
taxonómicos y no de uno en particular para sustentar su propuesta, de tal forma que logró
que la clasificación de éste grupo sea más natural. En el presente trabajo se sigue la
clasificación de los subgéneros propuesta por Bullock, ya que su estudio es el que se
encuentra ampliamente fundamentado.
La aportación de Bullock, es que presenta la definición y esquemas de los caracteres
taxonómicos clave para el género. Aunque en su trabajo hace énfasis en la descripción de la
rádula como un elemento eficaz para la definición de las especies de este género, el estudio
de esta estructura es válido sólo para algunos géneros, ya que hasta ahora no se ha
demostrado que la rádula tenga importancia sistemática para todas las especies de quitones
(Eernisse, 1994). Aunque la terminología que usa para algunas estructuras es antigua,
representa hasta ahora el trabajo sistemático más importante para el género Chiton del
Nuevo Mundo.
Subgénero Chiton Linnaeus
Diagnosis: Organismos de talla grande, hasta de 95 mm. Valvas subcarinadas. Yugum con
costillas longitudinales, con menor número de ellas hacía el ápice. Áreas centrales con
costillas longitudinales; áreas laterales elevadas con costillas bifurcadas (o anastomosadas)
que pueden parecer a simple vista nódulos. Escamas del cinturón grandes en general, con
costillas y pústulas apicales en su superficie.
Comentarios: Las especies que se incluyen en éste subgénero son las siguientes: C.
stokesii Broderip, 1832 y C. virgulatus Sowerby, 1840 en el Pacífico este tropical; C.
sulcatus Wood, 1815 de las Isla Galápagos y C. tuberculatus Linnaeus, 1758 para las
Antillas y Bermuda.
102
Chiton (Chiton) virgulatus Sowerby, 1840
(Figura 17)
Chiton virgulatus Sowerby, 1840, Abbott, 1954 Keen, 1958; Thorpe en Keen; 1971: 864, Fig. 7;
Kass y Van Belle, 1998.
Material revisado: 6 especímenes de 22.8-67.5 mm de longitud, Guaymas, Sonora, 4/VI /1971, CNMO-004; 1 espécimen de 21.2 mm de
longitud, (sin localidad y fecha), CNMO-062; 20 especímenes de 19.8-34.6 mm de longitud, Isla Espíritu Santo, BC, 20/IV/ 1966,
CNMO-064; 2 especímenes de 30.3-56.9 mm de longitud, Entre las piedras del Norte y Bahía Eclipse, BC, 18/ XII/ 1960, CNMO-065; 3
especímenes de 15.7-42.1 mm de longitud, Bahía Falsa, La Paz, BC, 25/ VI/ 1965, CNMO-032. Total de organismos revisados 32.
Descripción: Cuerpo elongado de tallas grandes, 15.7- 28.9–37 mm de longitud y 12.4-
17.9– 37 mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 17. A).
Color en preservación: verde obscuro a café verdoso con algunas tonalidades grisáceas,
sobre todo en organismos con mucho tiempo de preservado. Pueden presentar manchas
cafés especialmente en las áreas centrales a manera de bandas longitudinales y manchas
blancas en las áreas laterales y ocasionalmente en las áreas centrales y área yugal.
Tegumento: caracterizado por presentar costillas bien marcadas, excepto en el yugum
donde suelen adelgazarse. Las costillas forman surcos anchos y profundos que pueden ser
de diferente tamaño y disposición (Fig. 17. A).
Cinturón: cubierto por escamas pequeñas, aproximadamente el 50% de las de C.
articulatus, que son redondeadas y traslapadas entre sí, de dos verdes diferentes, las cuales
por su arreglo forman bandas claras y obscuras no delimitadas (Fig. 17. E), ocasionalmente
es posible observarlas dispersas a lo largo del cinturón sin seguir el patrón del bandeo, que
dan la apariencia de presentar manchones claros y obscuros (Fig. 17. F).
Valva cefálica (I): más ancha que larga, ventralmente con aproximadamente 20 hendiduras
en la placa de inserción, la placa es ancha y bien pronunciada, dientes prolongados y
serrados de tamaños pequeños, excepto los dientes marginales que suelen ser más anchos.
También puede presentar coloraciones verdosas y líneas radiales con respecto al pliegue
periostracal (Fig. 17. B). Dorsalmente presenta costillas radiales al ápice; en organismos
adultos en número de 50-60, y los juveniles alrededor de 30. Estas costillas se anastomosan
o se encuentran como líneas entrecortadas que no se proyectan hasta el ápice de la valva
(Fig. 17. A).
103
Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con una hendidura a cada lado de la placa de
inserción, excepto en la valva II que puede presentar una o dos hendiduras por lado; dientes
finamente serrados y delimitados por una línea porosa que se prolonga en la zona del
pliegue periostracal. Seno yugal medianamente amplio, con placa yugal serrada, dientes
delgados y de tamaño mediano (Fig. 17. C). Dorsalmente, presenta costillas, en las áreas
laterales que son más anchas y marcadas que en las áreas centrales; las áreas laterales
presentan de 8-12 costillas, las cuales generalmente se bifurcan o anastomosan. Las áreas
centrales presentan alrededor de 60 finas costillas longitudinales las cuales nunca se
anastomosan, y en la región yugal se adelgazan considerablemente. Apófisis delgadas poco
prolongadas (Fig. 17. A).
Valva anal (VIII): ventralmente, con alrededor de 22 hendiduras para los adultos en la
placa de inserción (los juveniles pueden presentar alrededor de 18 hendiduras); dientes
serrados y bien delimitados por líneas de poros radiales al pliegue periostracal; seno yugal
amplio con placa yugal serrada con dientes prolongados de forma irregular y de diferente
tamaño. Apófisis medianas y delgadas; mucro situado anteriormente (Fig. 17. D).
Dorsalmente, presenta costillas finas en la región anteromucronal y nunca se anastomosan,
en la región postmucronal presenta alrededor de 55 gruesas costillas (menor número en
organismos juveniles); costillas anastomosadas y poco onduladas (Fig. 17. A).
Distribución: Chiton virgulatus está restringido al Golfo de California (Bullock, 1988).
Abbott (1974) reportó que el rango de C. virgulatus era de Baja California a Panamá y de
C. stokesii de México a Colombia. Pero Thorpe (en Keen, 1971) al igual que Bullock
(1988) consideraron que no existía evidencia de que C. virgulatus y C. stokesii fueran
grupos simpátricos. Aunque aceptan que son especies muy cercanas entre sí.
Los especímenes revisados en este estudio corresponden a la localidad de Guaymas, Sonora
y Baja California (I. Espíritu Santo, Bahía Eclipse y Bahía Falsa).
Discusión: Esta especie ha sido reportada para el Nuevo Mundo por Abbott (1974), Keen
(1958); Thorpe (en Keen, 1971) y Kaas y Van Belle (1998).
104
Chiton virgulatus está muy relacionado con C. stokesii; se diferencian porque C. virgulatus
es más elongado, de coloraciones verdosas, con escamas más pequeñas y finas costillas
radiales en la valva cefálica y región postmucronal de la valva anal. En C. stokesii la
escultura radial de estas zonas siempre forma un patrón parecido al de un tablero de
ajedrez, dando un aspecto granuloso.
Por otro lado C. virgulatus presenta un subtegumento bien desarrollado, en el cual se
observan conductos agrupados y amplios, mientras que en C. stokesii el subtegumento no
está bien desarrollado, presenta conductos muy pequeños y no agrupados, aunque el patrón
de los poros de los estetos es muy parecido en ambas especies (Bullock, 1988). Chiton
virgulatus es fácilmente distinguible de otras especies como: C. albolineatus y C.
articulatus, ya que estos últimos presentan escultura totalmente lisa.
105
Fig. 17. Chiton (Chiton) virgulatus. A) organismo completo en vista dorsal; B) valvacefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) escamas en vista basal y frontal; F) disposición de las escamas en el cinturón.
A B
C
D
E
F
106
Subgénero Diochiton Thiele, 1893
Scutigeruli Meuschen, 1987.
Scuterigulus Meuschen, 1787.
Diochiton Thiele, 1893.
Diagnosis: Organismos de tallas grandes. Valvas redondeadas; placa yugal lisa; áreas
centrales con costillas longitudinales, las cuales son más prominentes cerca de la línea
diagonal. Áreas laterales elevadas, lisas y ocasionalmente presentan líneas de nódulos con
un patrón similar al de un tablero de ajedrez y líneas radiales al ápice. Escamas del cinturón
de tamaño variable con áreas dorsolaterales lisas o con pústulas de varios tamaños.
107
Chiton (Diochiton) albolineatus Broderip y Sowerby, 1829
(Figura 18)
Chiton albolineatus Broderip y Sowerby, 1829 en Keen, 1958: 517, Fig. 1; Thorpe en Keen, 1971:
864, Fig. 2; Abbott, 1974: 405.
Material revisado: 3 especímenes de 10.6-21.1 mm long, Pto. Mazatlán, Sin, 2/XII/1940,CNMO-009; 11 especímenes de 20-29.6 mm
long, Isla Chivos, Mazatlán, Sin., 5/IX/1979, CNMO-007; 5 especímenes de 15.2-29.2 mm long, entre Isla Chivos e I. Piedra, Mazatlán,
Sin., 3/IV/1979, CNMO-008; 33 especímenes de 6.1-22.8 long, Embarcadero Pto., Zihuatanejo, Gro, 3/II/1950, CNMO-010; 2
especímenes de 8.3-19.3mm long. Playa camino al Almacén, Zihuatanejo, Gro., 5/I/1963, CNMO-043; 12 especímenes de 10.2-33.2 mm
long, Playa las Gatas, Zihuatanejo, Gro, 9/I/1963, CNMO-018; 34 especímenes de 14.3-35.1 mm long, Playa Camino Contramar,
Zihuatanejo, Gro., 17/XII/1964, CNMO-041; 9 especímenes de 14.2-28.5 mm long, I. Ixtapa Zihuatanejo, Gro, 8/I/1963, CNMO-039; 13
especímenes de 10.6-32.3 mm long ( sin loc.), 1/II/1963, CNMIB-030. Total de especímenes revisados 122.
Descripción: Cuerpo elongado y de talla mediana 6.1- 29.8- 35.1mm de longitud y 4.6- 18-
21.7 mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 18. A).
Color en preservación: verde olivo a verde grisáceo. Líneas radiales blancas típicas en las
valvas cefálica, anal y áreas laterales de las valvas intermedias. El color es más intenso en
las áreas laterales y el yugum de algunas de las valvas intermedias, a diferencia de las áreas
centrales que son más claras, las cuales pueden presentar finas líneas obscuras horizontales
sobre todo en organismos frescos.
Tegumento: liso, la valva cefálica de los adultos presenta de 7-19 líneas blancas radiales al
ápice y de 12-18 en la valva anal. Las líneas pueden estar anastomosadas y onduladas, en
las áreas laterales son alrededor de 5 que son paralelas a la línea diagonal, en algunos casos
las líneas no se proyectan completamente ya que pueden estar entrecortadas o
anastomosadas (Fig. 18. A).
Cinturón: cubierto por escamas con forma de rombo (Fig. 18. E), verdes, lisas y
traslapadas entre sí (Fig. 18. F).
Valvas: poco arqueadas, ventralmente blancas con poros pequeños en los estetos.
Valva cefálica (I): de forma semicircular, ventralmente, con 17 hendiduras en la placa de
inserción, dientes serrados; apófisis más o menos prolongadas y delgadas (Fig. 18. B).
Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con una hendidura a cada lado de la placa de
inserción, dientes serrados y su tamaño puede variar. Yugum angosto y placa yugal lisa
108
(Fig. 18. C). Dorsalmente, a veces con valvas más obscuras que otras; también pueden
presentar 2 líneas blancas verticales, paralelas entre sí (Fig. 18. A).
Valva anal (VIII): ventralmente, con 15 hendiduras en la placa de inserción; seno yugal
mediano y placa yugal dentada o serrada (Fig. 18. d). Dorsalmente, mucro situado
anteriormente. Región anteromucronal muy angosta; región postmucronal con ligera
escultura nodular hacia la periferia (Fig. 18. A)
Distribución: De Mazatlán, Sinaloa (cerca de la entrada al Golfo de California) hasta el
Sur de México. Los registros reportados para Guaymas, Sonora y Guatemala, no han vuelto
a ser observados en recolectas recientes (Bullock, 1988).
El material revisado en el presente trabajo son de: Mazatlán, Sinaloa (Isla Chivos, Isla
Piedra); Zihuatanejo, Guerrero (Isla Ixtapa, Playa Las Gatas y Camino Contramar).
Observaciones: Los organismos juveniles presentan las mismas características que los
adultos especialmente en la coloración, aunque sólo puede variar en el número de las líneas
blancas radiales en la valva anal y cefálica (que son menos numerosas), pero los patrones
de coloración y de estructuras son los mismos. Aunque los organismos pueden perder su
coloración original, las líneas blancas radiales del tegumento son suficientes para reconocer
a esta especie.
Discusión: Thiele (1929) esquematizó en vista ventral las valvas de esta especie para
ejemplificar la sección Diochiton Thiele, 1893 de la familia Chitonidae. Este esquema no es
representativo ya que no muestra los caracteres morfológicos con detalle, de tal forma que
no ayudan en la definición de la especie. Keen (1958) y Thorpe (en Keen 1971) la
diagnostican de la especie y una fotografía de un espécimen. Ambos autores no aportaron
nada nuevo a lo que ya se conocía anteriormente reportado por Thiele (op. cit.).Bullock
(1988) presentó un trabajo sistemático muy importante al género Chiton, en el cual incluye
a C. albolineatus. Dicho estudio lo realizó al nivel de microestructura de los caracteres
taxonómicos, aportando información reciente a su descripción.
109
A B
E
C DFE
Fig. 18. Chiton (Diochiton) albolineatus. A) vista dorsal del organismo completo; B) valvacefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) escamas en vista basaly frontal (en diferentes ángulos); F) disposición de las escamas en el cinturón.
F
D
B
C
A
110
Chiton (Diochiton) marmoratus Grupo de especies
Diagnosis: Valvas subcarinadas, ventralmente lisas, con áreas laterales poco elevadas.
Comentario: En este grupo de especies Bullock (1988) incluye a C. marmoratus Gmelin,
1971 de Las Antillas y C. articulatus Sowerby, 1832 del Pacífico Oriental. Estas dos
especies las considera como especies muy cercanas posiblemente hermanas, por ello la
sitúa en este mismo grupo. Y que divergieron a partir de un ancestro común, probablemente
después de la formación del puente de tierra conformado por la región Panámica, en el
Plioceno temprano.
111
Chiton (Diochiton) articulatus Sowerby, 1832
(Figura 19)
Chiton laevigatus Sowerby,1832. en Keen, 1958: 517, Fig. 2; Thorpe en Keen, 1971: 864, Fig. 3,
Abbott, 1974: 405, Fig. 4750; Ferreira, 1983; 319, Fig. 6: 24-26.
Lophyrus striatosquamosus Carpenter, 1857 en Keen, 1958: 517, Fig. 2; Thorpe en Keen, 1971:
864, Fig. 3, Abbott, 1974: 405, Fig. 4750; Ferreira, 1983; 319, Fig. 6, 24-26.
Chiton articulatus en Keen, 1958: 517, Fig. 2; Thorpe en Keen, 1971: 864, Fig. 3, Abbott, 1974:
405, Fig. 4750; Ferreira, 1983; 319, Fig. 6: 24-26.
Material revisado: 9 especímenes de 43.4- 70.4 mm de longitud, La Paz, B.C. (sin fecha), CNMO-006; 20 especímenes de 23.5- 44.2
mm de longitud, Los Sábalos, Mazatlán, Sinaloa, 17/11/1957, CNMO- 051; 29 especímenes de 35.1-56.3 mm de longitud, Playa Sur,
Mazatlán, Sinaloa, 20/V/1947, CNMO-050; 1 especímen de 54.8 mm de longitud, Cerro del crestón, Mazatlán, Sinaloa, 27/II/1980,
CNMO-011; 11 especímenes de 30.5- 66.5 de longitud, Pto., Zihuatanejo, Guerrero, 6/I/1949, CNMO- 033; 12 especímenes de 32.6-
73.7 mm de longitud, Isla Ixtapa Zihuatanejo, Guerrero, 10/I/1963, CNMO-015; 3 especímenes de 22.3- 5 8.1 mm de longitud, Playa
Camino Contramar, Zihuatanejo, Guerrero, 25/9/1965, CNMO- 032; 7 especímenes de 15.3- 70.1 mm de longitud, Playa Las Ropas,
Zihuatanejo, Guerrero, 2/I/1963, CNMO- 028; 1 especímen de 35.7 mm de longitud, Playa las Gatas, Zihuatanejo, Guerrero, 1/VI/1963,
CNMO- 035; 14 especímenes de 31.4- 60.2 mm de longitud, Pto. Vallarta, Jalisco, 3/I/1951, CNMO- 059; 1 especímen de 60.4 mm de
longitud, Pto. Acapulco, Guerrero, 15/IX/1948, CNMO- 024; 18 especímenes de 26.1- 66.9 mm de longitud, Pto. Angel, Oaxaca, (sin
loc.), CNMO-022; 6 especímenes de 41.7- 47.6 mm de longitud, Salina Cruz, Oaxaca, I/1961, CNMO- 058. Total de especímenes
revisados 132.
Descripción: Cuerpo ovalado, de gran talla 15.3- 36.4- 73.7 mm de longitud y 10.5- 25.7-
49.3 de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 19. A).
Color en preservación: verde olivo a café verdoso, especialmente en las zonas laterales del
organismo en donde se diferencia una banda periférica obscura hacia los bordes externos
del cuerpo. Las valvas cefálica y anal pueden presentar bandas delgadas de coloración muy
tenue beige o café claro, radiales con respecto al ápice y mucro respectivamente.
Tegumento: en general liso, con líneas de crecimiento evidentes (Fig. 19. A).
Cinturón: cubierto por escamas más o menos circulares traslapadas entre sí (Fig. 19. F),
que forman franjas verdes longitudinales de dos tonalidades diferentes, una más clara que la
otra (Fig. 19. E).
Valva cefálica (I): ventralmente, con 17 hendiduras en la placa de inserción, dientes
serrados, prolongados, de tamaños variables (Fig. 19. B).
112
Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con una hendidura a cada lado de la placa de
inserción y dientes pectinados. Apófisis muy prolongadas y bien desarrolladas, seno yugal
mediano y placa yugal dentada. La superficie ventral presenta coloraciones verdosas,
especialmente hacia la base de las apófisis. Pliegue periostracal muy angosto (Fig. 19. C).
En vista dorsal las áreas laterales son ligeramente elevadas (Fig. 19. A).
Valva anal (VIII): ventralmente con 22 hendiduras en la placa de inserción, dientes
amplios y serrados, mucro situado anteriormente; seno yugal amplio y placa yugal dentada,
apófisis anchas y poco elevadas (Fig. 19. D). Dorsalmente con región anteromucronal muy
angosta y poros de los estetos numerosos (Fig. 19. A).
Distribución: Desde Mazatlán, Sinaloa, hasta las Bahías de Huatulco, Oaxaca. Los
registros reportados para Guaymas, Sonora son hasta ahora muy dudosos (Bullock, 1998).
El material examinado corresponde a La Paz, B.C; Mazatlán, Sinaloa; Zihuatanejo y
Acapulco, Guerrero; Puerto Vallarta, Jalisco; Pto. Angel y Salina Cruz, Oaxaca, México.
Observaciones: Se les puede encontrar asociados a diferentes organismos, cirripedios,
monoplacóforos y algas. En los adultos, las valvas están parcial o completamente cubiertos
por estos organismos o por acumulaciones de sedimentos que se adhieren a las placas, en
caso más severos las valvas suelen estar dañadas hasta nivel del articulamento. Los
organismos juveniles presentan mayor número de bandas en el área central, coloración más
intensa y valvas mejor preservadas que en los adultos. C. (D) articulatus es
morfológicamente muy similar a C. marmoratus, con el cual se le confunde
frecuentemente. C. marmoratus es azul-verdoso obscuro, en las zonas de inserción de los
músculos del manto; valvas más redondeadas, con escultura irregulares concéntrica en
zigzag. Bullock (op. cit.) sugiere que C. goodallii puede ser el ancestro de C. (D)
articulatus por la presencia de escultura lisa y talla grande.
Discusión: Esta especie es reportada por Abbott (1954 y 1984). Thorpe (en Keen, 1971) y
Ferreira (1983). Estos autores en sus descripciones no incluyen esquema general del
organismo ni morfología de las placas.
113
Actualmente en algunas colecciones mexicanas, todavía es posible encontrar a la especie
identificada erróneamente como C. laevigatus Sowerby, 1832.
Thorpe (en Keen, 1971) y Ferreira (1983a), tomaron a Lophyrus striatosquamosus
Carpenter, 1857 como sinónimo de C. (D) articulatus. Bullock (op. cit.) menciona que no
ha podido observar al tipo, pero que según las fotografías existentes de la especie pudo
observar la superficie lisa característica de C. (D) articulatus, sin embargo, notó
estriaciones en la superficie de las escamas, elemento que indica que se trate de una especie
diferente o no descrita. Por lo que Bullock (op. cit.) sugiere que el estatus de L.
striatosquamosus es muy cuestionable. C. (D) articulatus, es muy abundante en nuestro
país, y aunque es una especie endémica no ha sido estudiada, por lo que su biología y los
aspectos básicos acerca de su ecología son totalmente desconocidos (Smith, 1983).
En observaciones personales, en algunas playas mexicanas, C. (D) articulatus forma parte
de la alimentación de las poblaciones locales, en donde las valvas desarticuladas suelen
encontrarse entre las rocas. Particularmente en el Estado de Oaxaca, México, donde se les
conoce como “lenguas de perro”. El consumo de esta especie se debe a dos razones,
primero por el tamaño de los organismos que es de alrededor de 35 mm de longitud, y por
que se adhieren a rocas más expuestas, donde son claramente visibles y fáciles de
desprender.
Para consumirlos generalmente, separan de la concha la parte muscular del pie ayudándose
con una cuchara, se preparan con limón y sal. En algunos poblados de Oaxaca, se les puede
disfrutar también en tamales. En otras regiones del país, por ejemplo en Guerrero, México
se les conoce como “cucarachas de mar”, aunque a veces se le llama de igual manera a una
especie de crustáceo decápodo comestible. En estas zonas las personas suponen que los
quitones son parte del grupo crustáceos, y en otras ni siquiera se les reconoce como
moluscos. Conviene profundizar en la explotación artesanal de esta especie aunque en
forma local, ya que representa un recurso comestible que se le pone en peligro de extinción
al afectar su ciclo de vida.
114
Fig. 19. Chiton (Diochiton) articulatus. A) Organismo completo en vista dorsal B) valva cefálica I, C) valva intermedia V, D) valva anal VIII en vista ventral, F) escamas en vista frontal y basal (en diferentes ángulos), E) disposición de las escamas en el cinturón.
A B
C
D
E
F
115
Chiton (Diochiton) squamosus Grupo de especies
Diagnosis: Organismos de talla grande, área yugal y central, generalmente lisa; áreas
laterales poco pronunciadas. Con superficie lisa o con nódulos radiales que forman un
patrón semejante a un tablero de ajedrez. Valvas poco aplanadas, escamas con finas
pústulas.
Comentario: Bullock (1988) en este grupo de especies, incluye a C. squamosus y C.
goodallii. Además menciona que el origen de este grupo no esta bien establecido, pero las
similitudes (principalmente de talla y superficie lisa del tegumento) entre estas especies
hacen pensar que divergieron a partir de un ancestro común.
116
Chiton goodallii Broderip, 1832
(Figura 20)
Chiton goodallii Broderip, 1832 en Thorpe en Keen, 1971: 864, Fig. 4; Smith y Ferreira, 1977: 89, Fig. 13.
Material revisado: 3 especímenes (en seco) de 97.4- 131.7 mm de longitud, San. Cristóbal, Chatham, Islas Galápagos, 6/VII/ 1960,
CNMO-067. Total de organismos 3.
Descripción: Cuerpo ovalado de 97.4- 117.2- 131.7 mm de longitud y 54.1- 56.9- 59.6 mm
de ancho incluyendo el cinturón, organismos de grandes tallas (Fig. 20. A).
Color en seco: de café obscuro con tonalidades claras en las áreas centrales, la región yugal
puede presentar líneas obscuras longitudinales, y cinturón café obscuro con algunos
manchones claros.
Tegumento: liso en organismos adultos, ya que en los juveniles, es posible encontrar un
tipo de granulación poco elevada y con forma irregular en las valvas cefálica y anal. Líneas
de crecimiento evidentes (Fig. 20. A).
Cinturón: grueso y cubierto por gruesas escamas (Fig. 20. E) con puntas o ápice muy
elevado y de color obscuro, traslapadas entre sí, 2 veces más grandes que las de C.
articulatus (Fig. 20. F).
Valva cefálica (I): ventralmente, con alrededor de 24 hendiduras en la placa de inserción,
dientes muy gruesos, anchos, serrados y prolongados; pliegue periostracal muy ancho (Fig.
20. B). Dorsalmente, presenta escultura lisa, con líneas de crecimiento evidentes (Fig. 20.
A).
Valvas intermedias (II-VII): ventralmente, con placa de inserción de 2-3 profundas
hendiduras, dientes angostos, prolongados y serrados. Apófisis medianas y delgadas; seno
yugal amplio y placa yugal dentada (Fig. 20. C). Ventralmente, ligeramente convexas.
Dorsalmente, las áreas centrales son amplias y con líneas de crecimiento evidentes. Las
áreas laterales se encuentran delimitadas por una línea diagonal ligeramente elevada (Fig.
20. A).
Valva anal (VIII): ventralmente, con alrededor de 26 hendiduras en la placa de inserción,
dientes serrados y prolongados. Apófisis medianas y delgadas; seno yugal amplio, placa
117
yugal dentada y ligeramente convexa en vista ventral; área anteromucronal pequeña y lisa
con líneas de crecimiento evidentes (Fig. 20. D). Dorsalmente, mucro anterior, región
postmucronal lisa a veces con huellas o reminiscencias de escultura granular poco elevada
(Fig. 20. A).
Distribución: Esta especie tiene una distribución bien delimitada para las Islas Galápagos e
Isla Cocos. Algunos registros reportados para Centro y Sur América son muy dudosos
(Bullock, 1988).
El material del presente estudio corresponde a la localidad de San Cristóbal, Chatham, Islas
Galápagos, Ecuador.
Discusión: C. (D) goodallii al igual que C. sulcatus son especies endémicas de las Islas
Galápagos. Al parecer esta especie es cercana a C. Marquesanus por la dimensión de su
talla y escultura tegumental lisa, aunque aún no se conoce como fue que éstas especies
divergieron. Según Bullock (1988) C. (D) goodallii es una especie muy lejana
filogeneticamente, con respecto a C. articulatus y C. albolineatus.
C. goodallii es la especie de mayor talla en la CNMO. Al igual que otras especies de
quitones de talla grande C. (D) goodallii es consumido por los habitantes cercanos a su área
de distribución.
118
A BCDEF
Fig. 20. Chiton (Diochiton) goodallii. A) vista dorsal del organismo completo; B) valva cefálica I; C) valva intermedia IV; D) valva anal VIII, en vista ventral; E) escamas en vista basal y frontal; F) disposición de las escamas en el cinturón.
A B
C
D
E
F
119
Subfamilia Acanthopleurinae Dall, 1889
Diagnosis: Quitones que presentan en el tegumento ocelos bien desarrollados en todas las
valvas. Dorsalmente, el cinturón está cubierto densamente por espículas, escamas de
tamaños diferentes y de tipo calcáreo (Thiele, 1929).
Comentario: La subfamilia Acanthopleurinae fue considerada por Thiele (1929), como
parte de la familia Chitonidae. Smith (en Moore, 1960) propone que es un género de la
familia Chitonidae. Actualmente los taxónomos de los quitones, aceptan la subdivisión
propuesta por Thiele (op. cit.).
Género Acanthopleura Guilding, 1830
Diagnosis: Quitones grandes, con cuerpos ovalados y gruesos. Escultura ausente en las
valvas erosionadas. El tegumento presenta ocelos bien desarrollados evidentes a simple
vista, situados en los márgenes de las áreas laterales, estas estructuras se encuentran
rodeadas por una granulación pequeña. Valvas gruesas y generalmente de color obscuro en
vista ventral. Placas de inserción fuertemente pectinadas, las cuales se proyectan hacia
delante. La valva anal presenta dientes de inserción muy largos, más de la mitad de la
longitud del tegumento, los cuales se proyectan hacia delante. Las valvas intermedias
presentan dientes de inserción fuertemente pectinados, característica que define al género.
Mucro generalmente posterior. Cinturón grueso y ancho, cubierto densamente con anchas
espículas calcáreas, de diferentes tamaños.
120
Acanthopleura granulata Gmelin, 1729
(Figura 21)
Material Revisado: 10 especímenes de 41.4mm- 59.1mm de longitud, Isla Mujeres Q. Roo. 20 /I/ 1960, CNMO-060; 7 especímenes de
31.5mm– 39.9 mm de longitud, Isla Cozumel, Playa San. Juan, /XII/ 1959, CNMO-061; 5 especímenes de 42.4mm– 51.8mm de longitud,
Chankanab, Límite Nte, Q. Roo., 23/X/ 1998, CNMO-074. Total de organismos revisados 32.
Descripción: Cuerpo muy grueso y ovalado de 31.5– 45.3- 59.1 mm de longitud y 21.3–
30.6- 38.2 mm de ancho incluyendo el cinturón (Fig. 21. A).
Color en preservación: café, con bandeo longitudinal más obscuro en el área yugal de las
valvas intermedias, y ocasionalmente en las valvas anal y cefálica. El cinturón presenta
manchones café y blancos.
Tegumento: granular en la valva anal y cefálica al igual que en las áreas laterales de las
valvas intermedias. Región anteromucronal y áreas centrales con granulación más fina; en
organismos adultos las placas están muy erosionadas. Todas las valvas presentan ocelos en
la periferia del tegumento donde la escultura no ha sido dañada por la acción erosiva de las
olas (Fig. 21. A). Estas estructuras pueden ser de color obscuro y es notable su iridiscencia,
aún en preservado.
Cinturón: grueso y amplio, cubierto por numerosas y gruesas espículas de puntas roma de
dos diferentes tamaños, las pequeñas son las más numerosas, mientras que las grandes están
intercaladas entre las pequeñas, que pueden ser un poco más curvadas y blancas hacia la
punta. Las grandes son obscuras en su base y claras hacia la punta (Fig. 21. F). Debido a su
coloración forman gruesos manchones o franjas perpendiculares, con respecto al eje del
cuerpo (Fig. 21. E).
Valvas: en general gruesas, poco arqueadas y con tegumento desgastado, sobre todo en la
parte media de las valvas. La parte dorsal se describe parcialmente en el presente trabajo,
debido al desgaste del tegumento, que ha permitido que se pierda la regionalización de las
valvas.
Valva cefálica (I): con forma de abanico, ventralmente, verde con superficie lisa y de 9-15
hendiduras en la placa de inserción, las hendiduras son profundas y angostas. Dientes
prolongados de tamaños variados y en vista dorsal se aprecia claramente su longitud y su
superficie acanalada. Pliegue periostracal prominente y hacia la parte media de la placa es
121
evidente la región de inserción de los músculos del manto (Fig. 21. B). Dorsalmente, es
café y hacia la región yugal presenta líneas longitudinales del mismo color; presenta dos
tamaños de gránulos, los pequeños son los más numerosos que se encuentran rodeando a
los grandes, la disposición de estos permite un patrón bien definido. Entre los gránulos
pequeños podemos observar ocelos, los cuales aparecen como pequeñas esferas iridiscentes
en el tegumento no erosionado, es decir, hacia la periferia de las valvas (Fig. 21. A).
Valvas intermedias (II-VII): en vista ventral, con placa de inserción dentada, hendiduras
ausentes. Apófisis bien prolongadas aproximadamente el 75% del tegumento total de la
placa; seno yugal amplio, en vista dorsal cóncavo y placa yugal lisa. Ventralmente presenta
líneas obscuras que delimitan a las apófisis y a los dientes de inserción (Fig. 21. C).
Dorsalmente, la escultura es granular, las áreas laterales están bien delimitadas por una
línea diagonal, estas zonas presentan ornamentación granular gruesa similar al de las áreas
terminales. Las áreas centrales presentan una granulación microscópica y con líneas
longitudinales café obscuro, especialmente en la región yugal donde es posible encontrar
ocelos en la periferia del tegumento (Fig. 21. A).
Valva anal (VIII): ventralmente, con 8-12 hendiduras en la placa de inserción, dientes de
tamaños variados y dentados, dorsalmente se pueden ver acanalados, fuertes y anchos.
Ventralmente, con superficie lisa, cóncava y obscura hacia la parte central en donde se
insertan los músculos del manto. Apófisis prolongadas con más o menos la misma longitud
de largo y ancho; placa yugal lisa y seno yugal ligeramente convexo y amplio, el cual
(sobresale en vista dorsal) del periostraco de la valva (Fig. 21. D).
Distribución: Del Sur de Florida (Golfo de México) a las Costas de Brasil (Rehder, 1981).
Los organismos estudiados corresponden a las islas del estado de Quintana Roo; Isla.
Mujeres, Isla. Cozumel y Límite Norte.
Observaciones: Generalmente se adhieren en la superficie de las valvas, algas e
invertebrados sésiles: esponjas, balanos y poliquetos tubícolas. Las placas pueden perder su
escultura tegumental y forma original, debido al desgaste provocado por la acción del
oleaje.
122
Las valvas se encuentran dañadas sobre todo en su parte más posterior. La valva anal
generalmente pierde sus estructuras taxonómicas (mucro y región antero y postmucronal).
Aunque la escultura del tegumento desaparece en su mayor parte, es fácilmente
identificable por los elementos del cinturón, es decir, espículas de dos tamaños y colores
diferentes (café y blanco). Además las valvas presentan ocelos evidentes en el tegumento
no erosionado.
Acanthopleura granulata, es la única especie de su género que se distribuye en aguas
mexicanas (Caribe Mexicano), ya que sus demás congéneres se distribuyen en Australia (A.
gemmata Blainville y A. spinosa Bruguiere) y Africa (A. borbonica Deshayes).
Esta especie es muy abundante en las costas del litoral rocoso y de arrecife de Quintana
Roo, México. No se ha reportado para el Golfo de México.
Comentarios: Mook (1983) realizó un estudio acerca de la distribución de esta especie en
el Mar Caribe, en su estudio observó que A. granulata vive en zonas someras y tranquilas,
pero que se establecen en zonas de alta energía, es decir, en rocas donde las olas rompen
con fuerza humectando las rocas constantemente. Por la noche se desplazan hacia zonas de
baja energía, donde pueden alimentarse y aparearse. Aparentemente la explicación para este
comportamiento, es que se protegen de la desecación cuando el nivel del agua marina
cambia por efectos de la marea.
Discusión: La sistemática de esta especie está bien estudiada y no existe ningún problema
con su estatus taxonómico. Los estudios más importantes, son los referentes a su
distribución y movimiento diurno y nocturno a lo largo de la costa rocosa (Mook, 1983). A.
granulata, probablemente sea la especie mejor conocida en cuanto a su comportamiento de
alimentación y reproductivo.
Aunque es una especie sin problemas sistemáticos, no había sido esquematizada ni descrita
en extenso.
123
A
Fig. 21. Acanthopleura granulata. A) vista dorsal del organismo completo.
A
124
BCD EF
Fig. 21. B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vistaventral; E) disposición de las espículas en el cinturón; F) espículas en vista frontal.
125
Suborden Acanthochitonina Bergenhayn, 1930
Diagnosis: Organismos de talla pequeña a grande con valvas parcial o completamente
cubiertas por el cinturón. Tegumento reducido con respecto al articulamento. Placas de
inserción bien desarrolladas. Valvas con tracto yugal triangular y dos áreas lateropleurales
(Smith, 1977).
Familia Acanthochitonidae Pilsbry, 1893
Diagnosis: Placas de inserción con fórmula de hendiduras 5-1-2 en la valva cefálica.
Cinturón con alrededor de 18 mechones de espículas que rodean a las valvas (Keen, 1971).
Comentarios: Esta familia incluye especies principalmente tropicales y subtropicales con
problemática en su identificación, debido a que presentan una historia taxonómica confusa.
Watters (1990) realizó una revisión histórica acerca de esta familia, donde menciona que
Thorpe (1971) publicó un recuento de las especies del Pacífico, y Lyons (1988) hizo una
revisión a las especies del Caribe usando microscopía de barrido, describiendo 6 nuevas
especies y donde cuestionó las clasificaciones de esta familia elaboradas anteriormente por
Ferreira (1987).
Por su parte Watters (1990) usando la misma técnica de microscopía realizó la revisión de
la familia para la provincia Panámica, proponiendo dos subfamilias: Acanthochitoninae y
Cryptoplacininae. También incluyó la descripción del nuevo género Americhiton. En el
presente trabajo se sigue la diagnosis de la Familia Acanthochitonidae elaborada por
Pilsbry, 1893 ya que describe de mejor manera, los caracteres taxonómicos comunes en
este grupo de quitones.
126
Género Acanthochitona Gray, 1821
Diagnosis: Valva cefálica con 5 hendiduras. Escultura del tegumento con pústulas que van
de planas a cóncavas. Sin regionalización de las valvas intermedias en áreas centrales y
áreas laterales; tracto yugal bien definido el cual puede ser liso o estriado
longitudinalmente. Fórmula de las hendiduras 5-1-2; cinturón ancho y cubierto por
espículas, presenta mechones suturales en la periferia del cinturón (Watters, 1990).
Comentarios: Watters (1990) en una revisión histórica menciona que Gray (1821) fue el
primer taxónomo en separar a los Acantochitones del género Chiton, ya que el único
organismo conocido hasta la época fue clasificado como Chiton fascicularis Linnaeus, 1767
que fue publicado en una revista científica poco conocida. Posteriormente se aceptó la
propuesta de Risso (1826) en llamar a estos especímenes Acanthochites.
Más tarde Gray (1843), modificó este nombre denominándolo Acanthochitona. Mientras
que Herrmannsen (1846) y muchos autores posteriores a él, adoptaron el nombre propuesto
por Gray (1843), ya que les pareció correcto agregar una “a” al final de la palabra “Chiton”
con la finalidad de latinizar el nombre de la especie.
Según ellos con este cambio se “mestizaba” la palabra, lo que significaba que al usar este
nombre se generalizaría para todas las especies del mundo. Además de los constantes
cambios de nombre, las especies comunes de éste género presentan problemática en su
identificación, debido a la falta de material completo disponible y a las descripciones poco
precisas.
Estos problemas nos indican que es necesaria a una reevaluación del género. La cual nos
permitiría separar a las especies desde un punto de vista más confiable y natural. Para ello
se requiere de un trabajo comparativo de especímenes actuales, de las diferentes localidades
de la Costa del Pacifico del Nuevo Mundo que nos permita definir a las especies, así como
determinar la distribución y ecología de las poblaciones (Watters, 1990).
127
Acanthochitona sp. A
(Figura 22)
Material revisado: 6 especímenes de 13.2- 23.2 mm de longitud, (sin localidad y fecha desconocida), CNMO- 062; 19 especímenes de
13.2- 27.2 mm de longitud, Isla Espíritu Santo, B.C, 20/IV/ 1966, CNMO- 063; 6 especímenes de 15.7- 23.3 mm de longitud, Bahía
Falsa, B.C, 28/IV/ 1966, CNMO- 069. Total de especímenes 31.
Descripción: Cuerpo moderadamente elongado, organismos de talla mediana; 13.2- 18.6-
27.2 mm de longitud y de ancho 9.7- 14.4- 18.1 mm, incluyendo el cinturón (Fig. 22. A).
Color en preservación: variable, de café grisáceo a café verdoso con tonalidades beige;
gruesos manchones café o verdes en el cinturón, perpendiculares con respecto a las valvas y
más evidentes en vista lateral.
Tegumento: escaso, de forma subtriangular (Fig. 22. E, F y G), especialmente en las valvas
VII, VIII y cefálica. Pústulas de ovaladas a circulares, ligeramente cóncavas, las cuales se
arreglan en líneas que se dirigen hacia el ápice de la valva, las pústulas adyacentes al tracto
yugal y ápice son generalmente más pequeñas. El número de pústulas varía en promedio:
para la valva cefálica (I): 202 en las pequeñas (4.0 long., 5.3 ancho); 235 en las medianas
(4.2 long., 5.6 ancho) y 340 en las grandes (4.8 long., 6.2 ancho); valva V: 118 en las
valvas pequeñas (4.3 long., 6.8 ancho), 148 en las medianas (5.0 long., 8.2ancho) y 173 en
las grandes (5.2 long., 8.5 ancho); valva VIII: 65 en las pequeñas (3.3 long., 3.4 ancho), 79
en las medianas (3.4 long., 5.5 ancho) y 98 en las grandes (3.5 long., 6.1 ancho). (Fig. 22.
E, F y G). Estetos no observados.
Cinturón: grueso y ancho, cubierto por espículas algunas pequeñas y otras más grandes
que las primeras, las cuales se intercalan entre las pequeñas que son más abundantes (Fig.
22. H). En la parte dorsal presenta 18 mechones de finas y alargadas espículas, su longitud
es de más de 8 veces la longitud de las pequeñas (Fig. 22. I), éstos se localizan a la altura de
las zonas de inserción entre valva y valva, formando una banda periférica situada hacia los
extremos del cuerpo (Fig. 22. A). Los primeros 4 mechones anteriores son más pequeños
que los demás. Superficie de las espículas no observadas.
Valvas: en general arqueadas, pequeñas, alineadas hacia el centro del cuerpo del
organismo; superficie ventral de la valva generalmente lisa con tonalidades azul-verdosas.
Apófisis delgadas y placas de inserción prolongadas con articulamento; dientes de inserción
128
anchos con bordes lisos; tracto yugal con estrías obscuras longitudinales en número de 5-
12.
Valva cefálica (I): semicircular, tres veces el tamaño del tegumento de la valva anal. En
vista ventral 5 hendiduras amplias y profundas en la placa de inserción (Fig. 22. B). En
vista dorsal escultura más densa que el resto de las valvas, ápice cóncavo y elevado (Fig.
22. C).
Valvas intermedias (II-VII): en vista dorsal con áreas lateropleurales más largas que
anchas, sin áreas laterales (Fig. 22. F). En vista ventral el tracto yugal sobresale en el seno
yugal, con dos hendiduras laterales en la placa de inserción, situadas alrededor de la región
media de la valva, apófisis muy prolongadas y elevadas (Fig. 22. C).
Valva anal (VIII): más pequeña que las demás, en vista dorsal, con tegumento en forma de
gota o rombo (Fig. 22. G). La placa de inserción se proyecta hacia las partes laterales con
una hendiduras por lado, dirigidas hacia la región posterior, formando dientes muy
prolongados; seno yugal amplio y placa yugal ventralmente semiacanalada (Fig. 22. D). El
tracto yugal sobresale en el área del seno yugal. Mucro situado en la parte central y
ocasionalmente en la región postmucronal de la valva.
Distribución: Los especímenes revisados corresponden a la Isla Espíritu Santo y Bahía
Falsa, Baja California, México.
Observaciones: En general las espículas de los mechones periféricos suelen ser muy
grandes. Sin embargo, las condiciones de preservado no permite en algunos especímenes
apreciar su longitud real así como los manchones obscuros característicos del cinturón.
Comentario sobre la sistemática de Acanthochitona hirudiniformis:
El estudio de las especies de éste género ha presentado problemas en su clasificación
taxonómica. Un ejemplo es A. hirudiniformis Sowerby, 1832. Esta especie ha sido
reportada con varios nombres y sinónimos, la lista completa puede consultarse en Watters
(1990).
Smith y Ferreira (1977) cuestionaron la identificación original de la especie. Por ello
realizaron observaciones al material de Paita, Perú recolectado en 1938 y lo compararon
con el de las Islas Galápagos. Encontraron que el material de Perú, presentaba diferencias
importantes de talla (mayor), pústulas más grandes y menos numerosas, así como tracto
yugal delgado. Esto significó para Smith y Ferreira que las diferencias entre los
especímenes eran el resultado de especies diferentes, clasificadas erróneamente en una sola
bajo el nombre de A. hirudiniformis. De tal forma, rechazaron el hecho de que Thorpe (en
Keen, 1971) haya considerado tres especies de Sur América (A. coquimboensis Leloup,
1941; A. peruvianus Leloup, 1941 y A. tabogensis Smith, 1961) como sinónimos de A.
hirudiniformis, además de que restringieron la localidad tipo de la especie a las Islas
Chatham, Ecuador (Isla San Cristóbal).
Así mismo, Watters (1990) cuestionó las conclusiones de Smith y Ferreira (1977) acerca de
restringir la localidad tipo de la especie y propone que sea replanteada, ya que A.
conquimboensis, A. peruviana, A. panamensis y A. tabogensis fueron propuestas para las
poblaciones variantes de A. hirudiniformis hirudiniformis.
Según Watters (op. cit) esta especie se distribuye a lo largo de las costas del Pacífico desde
Baja California a la Tierra de Fuego, ya que teóricamente las poblaciones pueden
entrecruzarse, aunque esto resulta más difícil para las poblaciones de los extremos.
También enfatizó en que estas poblaciones se diferencian entre sí, principalmente por las
129
130
características del tegumento. Bajo este criterio, Watters estudió la distribución de los
estetos presentes en las pústulas y tracto yugal para separar a las especies.
Watters (op. cit) concluyó que las especies de América del Norte presentan macroestetos en
el tracto yugal organizados en líneas longitudinales. Cada macroesteto está acompañado de
3-6 microestetos; las pústulas con 1 macroesteto central y de 0-4 microestetos localizados
en la región del premacroesteto. Para los especímenes del Sur de Perú y Chile, el tracto
yugal presenta 1 macroesteto por estría, sin microestetos adyacentes; pústulas con 1
macroesteto central y de 2-6 microestetos adyacentes al más grande.
Bajo éste punto de vista separó en dos subespecies: A. hirudiniformis hirudiniformis
Sowerby, 1832 para la región Norte (Golfo de California al Nte. de Perú) y A.
hirudiniformis peruviana (que presenta dos estetos centrales por pústula) para la región Sur
(Sur de Perú, Valparaiso, Chile hasta la Tierra de Fuego). Basándose en ese criterio
también propuso un arreglo sistemático de 2 subfamilias Cryptoplacinae y
Acanthochitoninae.
131
Discusión: La especie estudiada fue definida temporalmente como Acanthochitona sp. A
ya que los caracteres taxonómicos básicos no se ajustan a ninguna de las especies
reportadas por autores como Smith y Ferreira (1977) y Watters (1990). A continuación se
presenta comparación de las dos especies con mayor similitud a Acanthochitona sp. A
Cuadro comparativo de tres especies del género Acanthochitona
Caracter
A. hirudiniformis
Smith y Ferreira (1977)
A. h. hirudiniformis
Watters (1990)
Acanthochitona sp. A
Presente trabajo
Valvas Arqueadas no carinadas Arqueadas Arqueadas no carinadas
Color tegumento Negro con zonas claras
Café verdoso obscuro con bandas
paralelas al yugum
En preservado de café verdoso
obscuro
Forma tegumento Subtriangular Pentagonal Subtriangular
Superficie del
tracto yugal
Con líneas longitudinales y
huellas remanentes de gránulos
especies del Nte. liso con líneas de
crecimiento
Estriado (5-12), con líneas de
crecimiento horizontales
Tipo tegumento Gránulos “superficie aplanada” Pustulosa Pustulosa
Estetos No observados
Macroestetos alineados
longitudinalmente en el tracto yugal,
cada uno con 3-6 microestetos, pústulas
con un esteto central y de 0 a 4
microestetos área premacroestetal
No observados
Pústulas Ovaladas Ovaladas y con forma de gota De ovaladas a circulares
# promedio de
pústulas (valva V
área lateropleural
derecha)
Número no reportado, descrito
como “numerosas” y poco
espaciadas entre ellas
No reportado ,número tomado de pág.
256, Fig. 50 y 49
valva V: 247 (5.5 mm de ancho)
valva VIII: 147 (4 mm ancho)
Valva I: 340 (4.8 long. 6.8
ancho)
V: 173 (5.2 long. 8.5 ancho)
VIII: 98 (3.5 long. 6.1 ancho)
Tegumento valva
anal Circular
Circular, con extremos laterales,
prolongados En forma de gota
Posición mucro Anterior Central Central y postmucronal
Color del cinturón Café o sepia Verde obscuro Café-verdoso obscuro
Elementos del
cinturón
Muy pequeños, dan la apariencia
de una textura aterciopelada
Para las especies del Norte, espículas
puntiagudas y de un solo tipo
Espículas grandes y pequeñas,
las pequeñas son más numerosas
Mechones 18, pequeños con pocas espículas Espículas y mechones de tamaños
variables
18, pequeños, con espículas muy
largas y puntiagudas
Cuadro 3. Comparación de los caracteres taxonómicos de A. hirudiniformis, A. h.
hirudiniformis y Acanthochitona sp. A.
132
Como se ve en el cuadro 3. Smith y Ferreira (1977) describieron con poco detalle la
escultura del tegumento y los derivados epidérmicos, siendo estos caracteres muy
importantes en la definición de las especies de este género en particular.
Por otro lado la terminología que estos autores usan en su trabajo es antigua y su
interpretación ambigua. Por ejemplo, cuando se refieren a la escultura del tegumento
mencionan “gránulos con superficie aplanada”; término reemplazado por pústulas para
determinar el tipo de escultura en el género Acanthochitona desde Thiele (1929).
Además, tampoco esquematizan las valvas ni el tegumento, lo cual facilitaría la adecuada
interpretación de la descripción, ya que sólo presentan un esquema (fotografía) del
organismo en vista dorsal que no permite observar en detalle del tipo de tegumento y de los
derivados epidérmicos.
El trabajo de Smith y Ferreira (1977) es importante porque contiene la revisión del tipo y
otros especímenes de las localidades de las Islas Galápagos y del Perú, que les permitió
detectar deficiencias importantes entre estos especímenes. Ellos concluyeron que la
localidad tipo de Acanthochitona hirudiniformis era la Isla Chatham y que esta especie es
endémica para las Islas Galápagos. En cuanto a los especímenes del Perú, concluyeron que
pertenecían a otras especies que sólo serían definidas con material reciente, que presentaran
estructuras en buenas condiciones para ser estudiadas.
Acanthochitona sp. A se considera aquí como una especie diferente de A. hirudiniformis ya
que no comparten similitudes en los caracteres morfológicos del tegumento y de los
derivados epidérmicos de la especie tipo.
Watters (1990) enfatiza la importancia de observar los estetos bajo el microscopio de
barrido para separar a las especies de este género. Dando poco peso a la morfología
externa, como lo son las valvas, escultura del tegumento y derivados epidérmicos, ya que se
basa exclusivamente en la disposición y número de los estetos que ni siquiera los contó
para reorganizar la sistemática de A. hirudiniformis del Pacífico Oriental.
133
Así Watters (1990) bajo estos criterios propuso que la subespecie A. hirudiniformis
hirudiniformis se distribuye desde el Golfo de California hasta el Norte de Perú. Según su
división, esta especie presenta dos morfos los del Sur y los del Norte, los cuales se
diferencian principalmente en el tegumento y en el número y posición de los estetos.
Acanthochitona sp. A presenta un tracto yugal estriado y dos tipos de espículas en el
cinturón, que no coinciden con los caracteres de los especímenes del Norte de A. h.
hirudiniformis.
Así mismo, Acanthochitona sp. A, presenta una cobertura de su tegumento de
aproximadamente el 43% de la superficie dorsal de la valva V (5.6 mm de ancho). Mientras
que para A. h. hirudiniformis el esquema (en Watters, 1990:256, Fig. 50) de la valva V (5.5
mm de ancho) muestra una mayor cobertura del tegumento de aproximadamente el 80% de
la superficie dorsal de la valva.
La cobertura del tegumento de las valvas indica la proporción del ancho de las placas de
inserción (apófisis) que es menor para A. h. hirudiniformis y con mayor número de
pústulas. Según el mismo esquema de la valva V, las pústulas del tegumento que presenta
son más pequeñas y numerosas que las de Acanthochitona sp. A.
Por otro lado, tanto Smith y Ferreira (op. cit) como Watters (op. cit.) mencionan
únicamente que las pústulas son “numerosas”, pero es importante especificar que tan
numerosas son, es decir, el número de pústulas promedio por valva. De lo contrario, su
argumento es muy débil.
En las observaciones realizadas a Acanthochitona sp. A presenta diferencias en el número
de pústulas de acuerdo a la talla y tipo de valva con respecto a A .h. hirudiniformis. Por
ejemplo basándose en los esquemas de Watters (1990) se contaron las pústulas de cada
valva, siendo 247 para la valva V (5.5 mm de ancho) y 147 (4 mm de ancho) para la valva
VIII (en Watters, 1990:256, Fig. 50 [V] y [VIII]:256, Fig.49).
134
Mientras que un organismo adulto de Acanthochitona sp. A presenta aproximadamente 173
pústulas para la valva V (5.2 long., 8.5 ancho) y para la valva VIII, 98 pústulas (3.5 long.,
6.1 ancho). Por lo tanto esto demuestra que el área de cada pústula es mayor en
Acanthochitona sp. A así como la longitud de las apófisis, y por otro lado que la superficie
del tegumento de A. h. hirudiniformis es mayor así como el número de pústulas.
Watters (1990) sólo se basó en argumentos de la ultraestructura del tegumento, para
proponer dos subespecies sin tomar en cuenta que los eventos geológicos, climáticos y de
especiación que las Islas Galápagos presentan son parte de una dinámica biogeográfica
exclusiva de estas islas y que dichas características están dadas por su origen y que no
pueden ser compartidas por otras localidades por muy cercanas que se encuentren. De tal
manera que Watters (op. cit) al mencionar que las poblaciones se entrecruzan desde el
Golfo de California y a todo lo largo de la costa de Sur América hasta Perú, sea un
argumento sin fundamento.
Por lo tanto, el número de las pústulas y comparar la morfología de las valvas habría sido
suficiente para definir a las especies, ya que estos caracteres son diferentes como se ha
demostrado en el cuadro 3 del presente trabajo para Acanthochitona sp A, Acanthochitona
hirudiniformis y A. hirudiniformis hirudiniformis.
Es posible que las especies del Pacífico Oriental comparten un ancestro común que por los
eventos geológicos en la formación de las tierras del Nuevo Mundo, se hayan separado
quedando aisladas reproductivamente por barreras geográficas, oceanográficas y de
comportamiento. Al paso del tiempo estos quitones se vieron presionados por el ambiente,
adaptándose a las condiciones de su nuevo hábitat y modificaron sus estructuras de manera
consecuente. Probablemente la similitud en el número y disposición de los estetos
observados bajo la microscopía de barrido, sean un caracter conservado para las especies
del Norte, denominadas por Watters como A. h. hirudiniformis. Pero como se ha
demostrado los caracteres taxonómicos clave de las valvas y tegumento, presentan
diferencias que por sí mismas separan a las especies de este género en el Pacífico Oriental.
135
La comparación de caracteres permitió concluir que Acanthochitona sp. A es una especie
que no se puede definir basándose en la descripción de los autores anteriormente
mencionados. A reserva de que se realice un estudio comparativo entre especímenes de
diferentes localidades del Nuevo Mundo, será posible intentar asignarle un nombre
específico. Acanthochitona sp. A presenta caracteres que no coinciden totalmente con A.
hirudiniformis hirudiniformis, por lo que la división en subespecies propuesta por Watters
(1990) no ayuda a la definición de esta especie del Golfo de California.
En el presente trabajo se propone cuantificar las pústulas de la valva I, V y VIII, así como
el tamaño y morfología de las espículas de los mechones y cinturón, además de los
caracteres taxonómicos para determinar a las especies definidas en el Pacífico Oriental del
género Acanthochitona.
Otros caracteres que se proponen para estudiar la sistemática de este grupo son: placas de
inserción, forma del tegumento, amplitud y superficie del tracto yugal. Haciendo
innecesario observar el tegumento bajo la microscopía de barrido como propone Watters
(op. cit.) en su estudio de la sistemática del género.
Uno de los aspectos importantes de la problemática actual en el estudio de éste grupo de
quitones, es que la terminología usada por los taxónomos no es uniforme. Eso permite que
no sea muy clara la interpretación de los caracteres. Esta ambigüedad se hace mayor
cuando no se presentan esquemas de las estructuras que permitan ser comparadas con la
descripción de la especie y con material nuevo.
Watters (op. cit) esquematiza muy bien las estructuras, sin embargo, algunas de ellas las
presenta incompletas y no incluye a la valva cefálica. Por otro lado, su descripción
morfológica es breve, muy general y hace énfasis exclusivamente en las características de
los estetos, subestimando otros caracteres morfológicos de igual importancia. A pesar de
que la revisión de Watters (op. cit) es uno de los trabajos más recientes y con mucha
influencia en el estudio de los Acantochitones, no resuelve los problemas taxonómicos del
género.
136
A BCD
Fig. 22. Acanthochitona sp. A. A) vista dorsal del organismo completo; B) valva cefálica I; C) valva intermedia V; D) valva anal VIII, en vista ventral.
AB
C
D
137
Fig. 22. E) valva cefálica I; F) valva intermedia V; G) valva anal VIII; H) espículas del cinturón; I) espículas de los mechones suturales.
H
I
E
F
G
138
VII. DIS CUSIÓN
Biogeografía
Los quitones de México se distribuyen principalmente en la Región del Pacífico Oriental,
que presenta dos provincias biogeográficas, la del Golfo de California (de Bahía Magdalena
a Topolobampo, Sinaloa) y la Provincia Panámica (de la Bahía de Tangola-Tangola en el
Golfo de Tehuantepec al Noroeste de las costas de Sur América). Mientras que en la
Región del Atlántico Occidental se extiende desde Cabo Rojo, Veracruz, México al este de
Venezuela, siendo más diversos en el Golfo y en la Provincia Panámica (que corresponde a
la zona del Pacífico Tropical mexicano) (Briggs, 1974).
Thorpe (en Keen, 1971), reportó 37 especies, únicamente para las costas mexicanas en la
Región del Pacífico Oriental. Mientras que Smith (1977) sólo reportó 20 especies. Por otro
lado Abbott (1974) reportó 40 especies para el Pacífico Oriental y la región del Atlántico.
Ferreira (1979-1983) por su parte reportó alrededor de 15 especies (Ver apéndice II).
Kaas y Van Belle (1998), han reportado alrededor de 75 especies definidas para las costas
mexicanas, de las cuales 55 se localizan en el Golfo de California y la costa Oeste de Baja
California, 10 en el Caribe y 10 especies en el Pacífico Tropical.
El 80% de las especies reportadas son endémicas de nuestro país (Kaas y Van Belle, 1998).
Pero sí consideramos los nichos ecológicos tan variados que pueden mostrar las costas
mexicanas como las Islas del Pacífico, el Golfo de California y el Golfo de Tehuantepec
por sus características geológicas y oceanográficas, podemos entonces considerar que hay
un potencial de quitones muy alto.
Desgraciadamente los estudios ecológicos y de distribución son pocos o casi nulos, de tal
forma que es imposible conocer la situación actual de las poblaciones. Al igual que la
mayoría de los moluscos costeros, los quitones también se encuentran recibiendo
139
constantemente contaminantes producto de las poblaciones cercanas y del arrastre por el
oleaje.
Sistema de clasificación de los quitones
La clasificación sistemática de los quitones está basada principalmente en el sistema de
Pilsbry, publicado en el “Manual de Conchología”, vol. 14 y 15 (1892-94), el cual se basa
en las características de las valvas y el tipo de derivados epidérmicos del cinturón. Smith
(1960) considera los mismos caracteres en su clasificación (Smith en Moore, 1960).
Thiele (1929), incluye la descripción de los dientes centrales de la rádula como otro
caracter sistemático del grupo, pero Smith (en Moore, 1960) menciona que hasta ahora no
se ha comprobado la eficiencia de estos caracteres para separar a todas las especies de
quitones, ya que sólo en algunos géneros las diferencias entre los dientes radulares son
distinguibles.
Ferreira (1974, 1976-1987) y Smith (1960, 1976 y 1977) en sus estudios sistemáticos de los
quitones, han considerado la morfología de las valvas, el tipo de escultura del tegumento y
las características de los derivados epidérmicos, como caracteres taxonómicos
fundamentales. Para algunas familias complejas, Ferreira (op. cit.) ha descrito y
esquematizado algunos dientes radulares, para separar a las especies.
Bullock (1985), consideró sólo el diente mayor lateral como un caracter taxonómico de los
quitones, así como el sistema de los poros de los estetos. En su estudio al género Chiton del
Nuevo Mundo las diferencias que muestran las especies en del diente mayor lateral, son
evidentes. Para este grupo en particular la descripción del diente radular, resulta ser buen
caracter para separar a las especies, así como para determinar las relaciones filogenéticas
entre ellas. Aunque este caracter sea suficiente para separar a las especies de éste género,
Bullock (op. cit.) también tomó en cuenta la morfología de las valvas, escultura del
tegumento, derivados epidérmicos y poros de los estetos, los cuales, además de describirlos
presentó fotografías bajo microscopio de barrido.
140
Watters (1990), se basó casi exclusivamente en la distribución y densidad de los estetos del
tegumento bajo el microscopio de barrido, para resolver los problemas sistemáticos de
grupos complejos, como la familia Acantochitonidae Pilsbry, 1893. Mientras que Kaas y
Van Belle (1985a, 1985b, 1987, 1990, 1994), basan sus estudio taxonómicos en la
descripción detallada de las estructuras morfológicas de las valvas, tegumento, cinturón y
rádula, siendo estos estudios la monografía que representa el trabajo más completo en el
estudio sistemático de los quitones.
En el presente estudio se consideraron sólo los caracteres taxonómicos, aunque los dientes
radulares no se describen, ya que la mayoría de las especies estudiadas pueden ser
determinadas describiendo detalladamente el tipo y disposición de la escultura tegumental
así como las características morfológicas de las valvas I, V y VIII en vista ventral como lo
son: placas de inserción (hendiduras y dientes de inserción), apófisis y el tipo de los
derivados epidérmicos del cinturón.
Análisis de caracteres taxonómicos de los quitones
La clasificación de los quitones se ha modificado desde los comienzos de su estudio, pero
hasta ahora la descripción de los caracteres morfológicos de las valvas se ha mantenido
desde 1892 (Smith en Moore, 1960), sin embargo, es necesario estandarizar la terminología
usada en la sistemática actual de los quitones. Aquí se presenta un análisis de caracteres de
las estructuras con importancia taxonómica como fundamento básico en los estudios
actuales de filogenia del grupo.
Las valvas presentan estructuras como la placa de inserción, hendiduras de inserción,
dientes de inserción y apófisis. Otros caracteres que se han usado para definir a los quitones
son el cinturón y sus derivados epidérmicos, así como los dientes radulares.
La forma del cuerpo de los quitones es en general ovalada, pero puede también puede ser
semicircular (Mopalia ciliata) y de elongada a muy elongada (Ischnochiton y Stenoplax).
141
Este caracter así como la talla promedio de los quitones permite conocer a que suborden
pertenecen los organismos.
Las valvas son ocho unidades en forma de placas que conforman la concha de los quitones
(Fig. 4 y 5). Aunque cada valva presenta información taxonómica muy importante, por
convención se describen únicamente las valvas: cefálica I, una valva intermedia
(generalmente la valva V) y la valva anal VIII, ya que por su morfología presentan
estructuras y regionalización diferentes entre sí.
La placa de inserción: puede presentar de pocas a numerosas hendiduras en su superficie
(Fig. 5), sólo en el Suborden Lepidopleurina están ausentes. Ventralmente se visualiza de
mejor manera la placa de inserción, misma que puede presentar longitudes muy variadas,
puede ser de poco a muy prolongada hasta sobresalir en vista dorsal y de angosta a muy
gruesa. Este caracter es muy importante, ya que muchos géneros y familias han sido
separados exclusivamente bajo este criterio, uno de los ejemplos más conocidos es el del
género Chiton (Bullock, 1988).
Las hendiduras de inserción: pueden ser de poco a muy profundas, aunque este caracter
no haya sido hasta ahora considerado en las descripciones de las especies, en los
especimenes aquí estudiados se pudieron observar las diferencias que presentan sobre todo
a nivel genérico. Aunque algunos grupos taxonómicos de quitones como el del género
Chiton hayan sido modificados para su mejor estudio sistemático, las hendiduras de
inserción permiten definir a los quitones principalmente a nivel genérico.
Los dientes de inserción: son porciones de la placa de inserción, los cuales pueden ser
serrados y lisos (Eernisse, 1994). En el género Acanthochitona la valva I presenta
exclusivamente 5 hendiduras y dientes de inserción lisos, las valvas intermedias con 1
hendidura a cada lado de la placa de inserción y la valva anal con 2 hendiduras. La
simplificación de la descripción de la placa de inserción se define por convención como
fórmula de las hendiduras de inserción: 5-1-2 (para el caso de Acanthochitona), donde el
primer número corresponde al número de hendiduras en la valva cefálica, el segundo al
142
número de hendiduras por cada lado en las valvas intermedias y el último para la valva anal
(Eernisse, 1994).
Las apófisis: son prolongaciones formadas por la placa de inserción (Fig. 4-B, C y 5-B y
C). Estas estructuras permiten el contacto entre valva y valva, así como permitir que los
organismos presenten cierto grado de flexibilidad en sus cuerpos, sobre todo cuando los
quitones se enrollan en sí mismos para protegerse de sus depredadores (Eernisse, 1994).
Estas estructuras pueden ser de dimensiones variadas tanto en su longitud como en su
ancho. Algunos autores que han investigado la filogenia de los quitones, han mencionado
que las apófisis son un caracter que apareció en los grupos más recientes de quitones
(Hyman, 1967).
Las apófisis son importantes para definir a los quitones al nivel de género y especie, un
ejemplo es el del género Chaetopleura, donde las apófisis son muy cortas y poco
prolongadas. Por otro lado el ancho de las apófisis determinan la amplitud del seno yugal,
que es un caracter principalmente usado para definir a las especies (Ferreira, 1983b).
Las valvas en vista ventral presentan poros, los cuales corresponden a los canales por los
cuales se albergan las terminaciones nerviosas que forman a los estetos que son estructuras
sensoriales características de los quitones (Fig. 5) (Bullock, 1985). Estos poros pueden estar
ausentes o ser de poco a muy numerosos, alineados radialmente con respecto al pliegue
periostracal (Fig. 5-A y B) o estar dispersos. Este caracter es usado generalmente para
definir a los quitones al nivel de género. En el presente estudio se ha observado que ésto es
correcto, ya que los poros en su disposición y densidad son similares en especies de un
mismo género, por ejemplo en el género Ischnochiton, Stenoplax y Chiton.
El tegumento: caracteriza a las valvas en vista dorsal, proporcionan información sobre
todo en el tipo y disposición de la escultura tegumental. El tipo de escultura de las valvas
puede ser liso, con costillas, gránulos, surcos y mixto (Fig. 3). Este caracter es fundamental
en el estudio de los quitones, ya que proporcionan información sobre todo al nivel de
familias, un ejemplo claro es el del género Ceratozona que presenta escultura granular de
143
diferentes tipos, los cuales pueden formar una gruesa escultura en la superficie de las
valvas.
La disposición de la escultura en el tegumento puede ser longitudinal (sobre todo en el
área central de las valvas intermedias), radial (en las áreas laterales y terminales) o mixta.
Pocos son los autores que detallan en sus descripciones la disposición de la escultura
tegumental, ya que hacen mayor énfasis en describir el tipo de la escultura. Este caracter es
clave para definir a especies muy cercanas, tal es el caso Stenoplax limaciformis. Bullock
(1985) en un estudio sistemático al género Stenoplax, mencionó que el tipo y disposición de
la escultura tegumental puede definir a especies complejas, que por su parecido son
difíciles de determinar. Bullock (op. cit.), analizó el tipo y disposición de la escultura que le
permitió determinar la cercanía de las especies de un mismo género.
La forma y dimensión del tegumento corresponde a la porción de la valva que se observa en
vista dorsal, este caracter también puede proporcionar información para clasificar a los
quitones, principalmente al nivel de familias, un ejemplo muy claro es el grupo de
Callistoplacidae, Chaetopleuridae y Acanthochitonidae
El ápice es una porción que generalmente sobresale hacia la parte posterior de las valvas,
en vista dorsal. En la valva cefálica puede ser convexo o cóncavo (Fig. 5-A y 9-A)
(Eernisse, 1994), mientras que en las valvas intermedias presentan generalmente un ápice
convexo (Fig. 4-B). Aunque en algunas especies puede estar desgastado por la erosión
provocada por las olas, es un caracter usado para definir a los quitones al nivel de especie.
En la valva anal el mucro es una elevación en vista dorsal, que se encuentra en el límite de
la región antero y postmucronal (Fig. 4-C) (Jones y Baxter, 1987). Para definir a las
especies es importante mencionar su posición con respecto a la superficie del tegumento de
la valva, es decir, anterior, medio o posterior. El uso de esta estructura taxonómica es muy
variable, ya que algunos autores la consideran al nivel de familia, género y otros la
describen únicamente cuando definen a las especies. Este caracter además de proporcionar
información acerca de la posición del mucro, también nos permite conocer la dimensión de
144
la región antero y postmucronal, ya que está relacionado con la línea diagonal que divide a
estas dos regiones. Aunque el mucro puede prolongarse hasta la región postmucronal, su
punto de origen se encuentra en la línea diagonal (Fig. 4-C). En el presente estudio se
observó que este caracter permite definir a los quitones a nivel genérico.
El cinturón: es una estructura muscular muy desarrollada en los quitones actuales, de
diferentes grosores y que presenta una cutícula que alberga glándulas productoras de
derivados epidérmicos (Smith en Moore, 1960). El grosor del cinturón define a los quitones
sobre todo al nivel de familia y subfamilia. Aunque pueden existir variaciones en las
dimensiones del cinturón, esta estructura junto con los derivados epidérmicos permiten
separar a los quitones al nivel genérico. Un ejemplo claro es el de la familia
Acanthochitonidae y del género Acanthochitona, en estos grupos taxonómicos el cinturón
es muy grueso y ancho, cubiertos densamente por finas espículas y por mechones suturales
a las valvas (Fig. 22-E, F y G).
Los derivados epidérmicos: son unidades localizadas sobre todo dorsalmente en el
cinturón, los más comunes son: escamas (elongadas, ovaladas y circulares), espículas (de
diferentes longitudes y grosores), espinas y pelos (Fig. 3). Ventralmente el cinturón
también presenta una cutícula (de glucoproteinas) y derivados epidérmicos, los cuales son
principalmente de forma rectangular. Estas escamas se encuentran fuertemente traslapadas
entre sí y están constituidas de material calcáreo exclusivamente (Eernisse, 1994).
Los derivados epidérmicos pueden presentar una superficie lisa, estriada, granular, con
costillas, reticular o mixta (Fig. 8-C) (Bullock, 1985). Algunas veces se puede observar con
microscopio estereoscópico, pero en la mayoría de las especies la ornamentación se observa
únicamente bajo microscopia de barrido. La superficie de los derivados del cinturón son
usados para definir a los quitones a nivel de especie, por ejemplo, Ischnochiton aethalotus y
Stenoplax (Stenoradsia) conspicua.
Los derivados epidérmicos, están constitudos de aragonita (estructuras calcáreas), pero
también el cinturón de algunas puede presentar pelos fibrosos y córneos. Muchas de las
145
especies que presentan un tegumento muy erosionado como Acanthopleura granulata (Fig.
21. A), pueden ser determinadas mediante las características del cinturón y de los derivados
epidérmicos, ya que las estructuras de las valvas en vista ventral se pierden, principalmente
la escultura tegumental. De tal forma que la descripción detallada del cinturón y de los
derivados epidérmicos, ayudarían a definir a las especies cuando el tegumento de las valvas
se encuentre erosionado.
La rádula es una estructura que presenta varias hileras y filas de dientes quitinosos, los
cuales se encuentran adheridos en una membrana cartilaginosa. Esta estructura es el aparato
alimentario de los quitones, con ella raspan la superficie de las rocas y de las conchas. Los
quitones, son el único grupo de moluscos que presentan una cobertura de magnetita en el
diente mayor lateral (Fig. 8. A) que le proporciona la dureza suficiente para raspar todo tipo
de superficies. Muchos autores (Ferreira, 1986, 1978, 1981; Bullock 1985; Eernisse, 1994)
han mencionado que los caracteres de las estructuras radulares no presentan importancia a
nivel sistemático, ya que dentro de una misma especie las variaciones son muy frecuentes.
Bullock (1985) menciona que sólo algunos géneros presentan especies con morfología
radular uniforme, tal es el caso del género Chiton.
En el presente estudio, se propone usar únicamente los caracteres morfológicos para definir
a los quitones, ya que en la mayoría de las especies mexicanas muestran diferencias en la
disposición y tipo de escultura tegumental, aún en especies muy cercanas.
Esta propuesta se refiere fundamente al uso de un conjunto o grupo de caracteres para
definir a las especies de quitones. Estos caracteres taxonómicos son: placas y hendiduras de
inserción, disposición y tipo de la escultura del tegumento de las áreas laterales y centrales
de las valvas intermedias y tipo de los derivados epidérmicos del cinturón. Estos caracteres
morfológicos han sido usados anteriormente por Ferreira (1976, 1977-1987), Smith (1977)
y Kaas y Van Belle (1994) quienes han aportado estudios importantes de los quitones y
resuelto problemas sistemáticos de varias especies y géneros, como Chaetopleura,
Lepidozona y Callistochiton.
146
Estudios recientes aplicados a los quitones
Los avances en la microscopia electrónica de barrido, sin duda han representado
actualmente una herramienta importante en el estudio taxonómico de los quitones, ya que
ha permitido observar claramente el detalle de la escultura tegumental y la superficie de las
escamas. Watters (1981, 1990) y Lyons (1988), han publicado varios estudios usando estas
técnicas, pero desgraciadamente han abusado en el uso de esta tecnología, ya que los
quitones han sido estudiados bajo este punto de vista exclusivamente, es decir, estos
trabajos se basan únicamente en la microestructura de los caracteres taxonómicos,
ignorando totalmente las estructuras básicas con la misma importancia taxonómica.
Un ejemplo muy claro es el reportado por Watters (1990) para la familia
Acanthochitonidae, quién basó su estudio en la densidad y número de estetos del tegumento
y de las pústulas. De acuerdo a sus resultados, Watters propone varios subgéneros y una
nueva familia. Sin embargo, como aquí se ha mencionado su propuesta no soluciona los
problemas sistemáticos de esta familia, ya que Acanthochitona sp. A de la CNMO no pudo
ser definida de acuerdo a los caracteres morfológicos en su división de subespecies.
Eernisse (1986, 1988 y 1994), ha usado la microscopia electrónica para estudiar a los
quitones en su desarrollo embrionario y algunos aspectos de su biología de la reproducción,
aportando valiosa información al estudio de estos organismos. Desgraciadamente las
nuevas técnicas de microscopia no se han usado como herramientas alternativas en los
estudios taxonómicos, sino que han sido actualmente considerados como métodos
exclusivos para la definición de las especies, dando poco interés a las estructuras
morfológicas de igual importancia.
En nuestro país son pocas las facilidades para estudiar a los quitones usando la microscopia
de barrido, de tal forma, si las especies se describen y definen únicamente con caracteres de
la ultraestructura tegumental, los resultados no podrán ser corroborados por malacólogos
mexicanos y latinoamericanos, debido a la carencia de la tecnología en microscopia
electrónica.
147
Problemática en la sistemática de los quitones
La problemática sistemática de los quitones radica principalmente en dos puntos: la
terminología y la falta de ilustraciones de las estructuras taxonómicas.
La terminología es muy variada desde el origen del estudio de los quitones y que se
modificó a medida de que su estudio se retomó en la primera década de este siglo. Esta
situación permitió que muchas de las especies ya descritas y reportadas hayan sido
consideradas como nuevas en trabajos posteriores. Más tarde las revisiones al espécimen
tipo de muchas especies, permitieron observar que estas ya habían sido definidas
anteriormente. Estos estudios también permitieron detectar errores en las descripciones
originales en el tipo de la escultura del tegumento, ya que este caracter es el más difícil de
describir, debido a que las formas que puede presentar son variadas y sinuosas. Ésta fue una
de las razones por la que hasta ahora existen confusiones para interpretar muchas
descripciones originales de las especies.
Bullock (1988), hace énfasis en que se ha usado terminología muy variada e inadecuada
para estudiar a los quitones, y menciona que esto ha provocado una serie de confusiones en
el estudio taxonómico actual de los poliplacóforos. Esta observación fue mencionada
también por Ferreira (1983b) pero sólo para algunas especies en particular, así como la
ambigüedad de la terminología ha ocasionado que la mayoría de las especies presenten
muchas sinonimias.
Bullock (op. cit.) propuso uniformizar la terminología del género Chiton y esquematizó la
mayoría de sus estructuras taxonómicas, que también pueden ser aplicables para otros
géneros. Watters (1990) en un estudio a la familia Acanthochitonidae, también mencionó la
necesidad de delimitar la terminología, sobretodo para familias complejas.
Bullock (op. cit.) y Watters (op. cit.), coincidieron en esquematizar las estructuras que usan
en sus descripciones, para evitar ambigüedades en su interpretación, al contrario de Smith
148
(op. cit.), quién se limitó a mencionar que los esquemas de las especies que él estudió se
podían consultar en el Instituto de Santa Bárbara, California.
Kaas y Van Belle (1985a, 1985b, 1987, 1990, 1994) en la Monografía de los quitones
actuales (Monograph of Living Chitons), presentan un estudio que trata de corregir estos
errores sistemáticos, ya que todas las especies que se reportan en dicho trabajo se
encuentran ilustradas, descritas en su versión extensa y con su rango de distribución,
además de que presentan claves sistemáticas de géneros y familias. Actualmente esta
investigación representa la obra más completa y fidedigna en el estudio sistemático de los
quitones. Sin embargo, la obra presenta el 50% del total de las especies definidas.
Quitones de la CNMO
El total de las especies depositadas en la CNMO es de 7 géneros y 13 especies (Cuadro. 2).
Material muy escaso en comparación con los datos de las especies reportadas para las
costas mexicanas, que son alrededor de 16 géneros y 70 especies (Kaas y Van Belle, 1998).
Estas especies fueron recolectadas principalmente en zonas del Pacífico Mexicano, pero
dentro de esta zona las localidades muestreadas son pocas. Las localidades con mayor
número de muestras fueron: Isla Ixtapa y Playa las Gatas en Zihuatanejo, Guerrero y el
Puerto de Mazatlán, Sinaloa que representan el 90% de las localidades muestreadas.
Mientras que las zonas del Golfo de México y Caribe Mexicano son escasas, ya que en el
Pacífico Tropical presenta sólo una especie en dos áreas de colectas Puerto Angel y Salina
Cruz, Oaxaca, al igual que el Caribe Mexicano, Isla mujeres e Isla Cozumel. Mientras que
el Golfo de México no cuenta con ningún registro de muestreo en la colección.
Las zonas de colecta se limitan a unas cuantas localidades (Fig. 2), ya que eran el destino
de las excursiones de los estudiantes y profesores de la asignatura de Ecología Marina que
se impartía en la Facultad de Ciencias de la UNAM, entre los cuarentas a los sesentas. El
90% del material disponible actualmente es producto de dichas prácticas de campo que
estuvieron depositadas en el Laboratorio de Sistemática y Ecología de Equinodermos del
149
Instituto de Ciencias del Mar y Limnología, UNAM (ICMyL), hasta que fue recientemente
donada a la CNMO del Instituto de Biología (Naranjo, 1993).
El método de recolecta que se ha usado para obtener las muestras malacológicas ha sido
poco planeado, ya que se restringe a la zona intermareal de las playas rocosas. Por esto la
mayoría del material existente en las colecciones en México se limita a las conchas de
moluscos marinos, que se obtienen en las playas rocosas y que han sido arrastradas por el
oleaje hasta la orilla. En particular para los quitones no sucede así, ya que las valvas se
desarticulan muy fácilmente pero se recogen siempre los quitones de las zonas más
accesibles o expuestas.
Aunque algunos géneros como Acanthochitona y Stenoplax se encuentran a mayor
profundidad (Fig. 1), también se recolectaron con cierta facilidad debido a que se
aprovechó la marea baja que permite que las zonas expuestas de la costa sean de varios
metros, de tal forma que se tuvo acceso a estas especies que en general se localizan a
profundidades mayores a los 5 m (Fig. 1).
Esto es evidente, cuando se estudian moluscos que se distribuyen a mayores profundidades
y que en las colecciones malacológicas mexicanas no existen o sólo está disponible la
concha. Es probable que se encuentren especies de gasterópodos y quitones de medias y
grandes profundidades (mayores a los 100 m), obtenidas en arrastres de red en las
campañas oceanográficas del ICMyL, pero desafortunadamente no han sido publicados los
resultados de este material.
La carencia de material malacológico de las especies conocidas, se debe a que no ha
existido un proyecto nacional para contar con un inventario de la biodiversidad de
moluscos, ya que lo que se ha hecho hasta ahora es realizar muestreos muy puntuales
donde los moluscos son recolectados como parte de la fauna acompañante de grupos
taxonómicos, para los cuales si existen líneas de investigación, como los peces y algas,
mientras que para los moluscos poco se ha hecho para reunir la información disponible
respecto al Phylum.
150
Estudio de los quitones en México
Los estudios de moluscos en México son principalmente bibliográficos basados en Keen
(1958, 1971) y Abbott (1954, 1974), dentro de los cuales los más comunes son los listados
de especies para ciertas localidades (González en Salazar, V. y N. E. González, 1993;
Reguero, R. y A. C. García, 1993). En estos listados reportan solo unas cuantas especies y
con nombres antiguos e incorrectos en la sistemática actual de los quitones.
En el presente trabajo se presenta un listado actualizado de las especies reportadas para las
costas mexicanas de la Región del Pacífico Oriental y del Caribe (Pág. 52).
Reguero y García (1993) mencionan que es necesario estudiar a los moluscos poco
conocidos, pero desgraciadamente el estudio de estos grupos en México no es una tarea
fácil, debido a que el acceso a las colecciones malacológicas es muy limitado o totalmente
denegado. Por ello no es suficiente reconocer la problemática en cuanto a la carencia de
estudios malacológicos, sino que también se requiere fomentar y facilitar el estudio de los
moluscos con el material existente en las colecciones científicas depositadas en las
diferentes instituciones. Así mismo es necesario crear proyectos de estudio que contemplen
a dichos grupos taxonómicos y donde se incorporen investigadores expertos que participen
en la formación de estudiantes con interés en la malacología.
Existen colecciones que cuentan con material malacológico, pero que no está disponible
para ser estudiado por estudiantes de biología, por ejemplo, el material obtenido en
campañas oceanográficas del ICMyL, UNAM, donde sólo se toma en cuenta para estudios
de ecología de comunidades, ya que posteriormente es almacenado por tiempo indefinido,
por lo que su estado de preservación actual es muy dudoso.
La colección de referencia de Invertebrados, Estación Mazatlán del Instituto de Ciencias
del Mar y Limnología, UNAM, es probablemente la única colección actualizada y veraz de
referencia de los quitones en México. Ya que el curador de dicha colección el Dr. Michel E.
151
Hendrickx (1994), en su catálogo de moluscos en el apartado de la Clase Polyplacophora,
menciona que la identificación de la mayoría de las especies corrió a cargo del ya
desaparecido especialista en quitones Dr. José Antonio Fernández Ferreira de la Academy
of Sciences, San Francisco, EUA y de un notable investigador del CIAD, Mazatlán el Dr. A
van der Heiden.
A pesar de la gran biodiversidad de los quitones en nuestro país, no existe hasta ahora un
estudio de sistemática básica del grupo, ni siquiera un especialista que aporte nuevos
estudios acerca del grupo. Por ello el conocimiento de estos moluscos se limita a las pocas
colecciones con ejemplares determinados por malacólogos mexicanos generalmente
inexpertos en el grupo. La falta de estudios acerca de los quitones, también ha ocasionado
que se desconozca la cantidad real de especies en nuestro país, ya que los investigadores
extranjeros sólo han estudiado parte de nuestras costas rocosas, principalmente en el Golfo
de California y parte del Mar Caribe (Ver apéndice II).
Esta falta de bibliografía en español acerca de los quitones ha ocasionado que la
bibliografía básica usada en las colecciones continuen siendo Keen (1958, 1971) y Abbott
(1954, 1974), aunque ya hayan transcurrido más de 40 años desde su aparición. Desde
entonces este material bibliográfico ha representado la única guía sistemática para
determinar quitones en las colecciones malacológicas, debido a la carencia de expertos y
por consiguiente de bibliografía más especializada de este grupo en español y a la falta de
revisiones, al menos bibliográficas.
En el presente trabajo, se ha demostrado que ambas ediciones de Keen (op. cit.) y Abbott
(op. cit.) ya no son la guía sistemática adecuada para el estudio de las especies de quitones
en nuestro país, ya que en trabajos recientes (Smith, 1976, 1977; Ferreira, 1979-1983;
Mook, 1981; Bullock, 1985, 1988; Eernisse, 1986, 1988, 1994; Kaas, 1993; Kaas y Van
Belle, 1985a, 1985b, 1987, 1990, 1994 y 1998; Lyons, 1988; Reindly y Haszpruner, 1996;
Watters, 1981, 1990 y 1991) de las especies han presentado cambios en su sistemática y no
pueden ser consideradas bajo el punto de vista de Keen (1958 y 1971) y Abbott (1954 y
1974).
152
En el presente trabajo se propone esquematizar a las especies y la escultura tegumental de
las mismas, aún con la complejidad que el grupo presenta, ya que permitiría comparar la
descripción de la especie con los esquemas, sobre todo en el tipo y disposición de la
escultura tegumental. Para expresar correctamente los caracteres de las estructuras
taxonómicas y evitar variaciones y confusiones en el lenguaje sistemático para definir a las
especies de este grupo, es necesario uniformizar la terminología usada en el estudio
sistemático de los quitones.
Atendiendo a estas necesidades de clarificar las bases del estudio taxonómico del grupo, en
esta obra se ha elaborado un glosario (Pág. 26) con las estructuras de importancia
sistemática (esquematizadas sólo las más importantes), para el adecuado estudio de dichos
organismos, así como de entender fácilmente su clasificación y la problemática en su
sistemática actual.
El presente trabajo es un esfuerzo por iniciar el estudio básico de este grupo en nuestro
país, de tal forma que represente una pequeña guía sistemática para México y
Latinoamérica, ya que algunas especies que se distribuyen en las costas mexicanas también
se distribuyen en las costas de países latinoamericanos (Ver apéndice II). Aunque las
especies que se presentan en esta obra son pocas, el glosario ilustrado, la primera lista de
quitones en México y los esquemas de las especies de la CNMO representan una aportación
importante para el estudio de los quitones en nuestro país.
Por otro lado, es necesario ampliar el número de especies posibles a la CNMO, mediante la
realización de nuevas recolectas planeadas en zonas diferentes a las reportadas en este
estudio, ya que no se ha incorporado material nuevo a la colección, desde que fue ésta fue
formada, para contar con una Colección Nacional completa y de referencia actualizada para
el estudio de los quitones en México.
153
VIII. CONCLUSIONES
1. Se estudió por primera vez la sistemática de los quitones en México y se evaluó el
conocimiento de este grupo de moluscos en nuestro país.
2. Se describieron e ilustraron a partir de 457 ejemplares, 11 especies definidas y 2
probables especies no definidas de quitones en la CNMO.
3. Se elaboró un glosario ilustrado de la terminología usada en la sistemática actual de los
quitones.
4. Se elaboró el primer listado sistemático actualizado de los quitones en México.
5. Se realizó un análisis de caracteres morfológicos de los quitones para la realización de
estudios filogenéticos futuros, así como de las relaciones entre los diferentes grupos
sistemáticos de la Clase Polyplacophora.
6. Se propone el uso de un conjunto o grupos de caracteres morfológicos para la
identificación de las especies: placa y hendiduras de inserción, tipo y disposición de la
escultura del tegumento y los derivados epidérmicos del cinturón.
7. Se propone realizar recolectas programadas en localidades particulares, que permitan
incluir un mayor número de especies en la Colección Nacional de Moluscos, así como
intercambios de material con otras colecciones malacológicas.
154
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X. APÉNDICE
Abreviaturas:
Ind. # (número para cada espécimen).No. Cat. (número de catálogo).Loc. (se refiere a la región de colecta, P, Pacífico; G, Golfo de México; A, Caribe; IG, Islas Galápagos). Zona: (corresponde a la localidad de recolecta). L: (longitud total del organismo, incluyendo cinturón). A: (ancho del organismo). V: (longitud de la valva intermedia V). AC: (ancho del cinturón). WG: (peso del organismo en gr.).
Observaciones: en esta sección se indican las condiciones de los especimenes, generalmente no se registra el peso en los ejemplares secos, lo cual se indica según sea el caso./: sin datos
I. Tablas de datos merísticos
Chaetopleura scabricula
ind # No. Cat.
Loc Zona L A V AC WG Observ.
1 055 P Bahía Eclipse, BC. 9.8 6.4 5.8 / / Org. secos2 055 P Bahía Eclipse, BC. 12.2 12.4 10.3 / / Org. Secos3 055 P Bahía Eclipse, BC. 12.5 11.7 6.8 / / Org. Secos4 055 P Bahía Eclipse, BC. 14.6 12.6 8.1 / / Org. Secos5 055 P Bahía Eclipse, BC. 17.3 12.7 9.8 / / Org. Secos6 055 P Bahía Eclipse, BC. 19.8 12.9 10.9 / / Org. Secos7 055 P Bahía Eclipse, BC. 23.4 13.5 12.3 / / Org. Secos8 055 P Playa Las Gatas, Zih. Gro. 10.1 6.9 6.2 2.1 0.08 Org. Secos9 055 P Playa Las Gatas, Zih. Gro. 20.3 13.1 11.7 3.8 2.59 Org. Secos10 055 P Playa Las Gatas, Zih, Gro. 23.7 13.6 12.1 4.5 4.18 Org. Secos11 055 P Playa Las Gatas, Zih, Gro. 26.2 16.5 15.7 5.8 4.32 Org. Secos12 055 P Playa Las Gatas, Zih, Gro. 27.3 16.5 15.9 5.8 4.57 Org. secos
Ischnochiton muscarius
Ind. # No. Cat.
Loc. Zona L A V AC WG Observ.
1 013 P Isla Ixtapa, Zih, Gro. 13.2 10.2 8.1 2.9 0.142 014 P Isla Ixtapa, Zih, Gro. 15.5 10.2 8.1 2.3 0.113 045 P Playa las Gatas, Zih, Gro 8.1 9.1 6.7 3.8 1.04
165
4 019 P Playa las Gatas, Zih, Gro 16.7 10.7 9.7 3.3 0.635 019 P Playa las Gatas, Zih, Gro 18.4 12 9.5 2.9 0.686 019 P Playa las Gatas, Zih, Gro 19.8 13.2 11.6 3.4 1.047 026 P Embarcadero, Zih, Gro. 7.4 6.2 5 1.5 0.18 026 P Embarcadero, Zih, Gro. 15.1 12 9.3 3.1 0.649 042 P Bahía, Zih, Gro. 25.1 13.8 12.4 3.5 1.2710 043 P P. camino al almacén,
Zih.12.1 9.4 6 1.6 0.25
11 043 P P. camino al almacén, Zih.
13.2 9.9 6.8 1.9 0.17
12 043 P P. camino al almacén, Zih.
13.9 10.4 7.4 2.3 0.27
13 043 P P. camino al almacén, Zih.
14.4 10.2 8.5 2.2 0.29
14 043 P P. camino al almacén, Zih.
17.1 12.9 10 3.3 0.58
15 043 P P. camino al almacén, Zih.
17.4 12.2 9.9 2.9 0.57
16 043 P P. camino al almacén, Zih.
18.1 13 11.4 2.9 0.78
17 021 P P. Camino Contramar, Zih 13 9.3 7.4 2.2 0.2318 021 P P. Camino Contramar, Zih 15.2 10.7 8.1 2 0.2119 021 P P. Camino Contramar, Zih 18.2 12.8 10.4 2.9 0.6920 008 P Isla Chivos, I. Piedra, Maz 13.4 8.6 7.3 1.6 0.2421 008 P Isla Chivos, I. Piedra, Maz 17.3 10.9 9.1 3.5 0.6322 008 P Isla Chivos, I. Piedra, Maz 17.7 6.1 5 1.7 0.4123 052 P Isla de la Piedra, Maz 9.4 8.2 6.1 2.3 0.1724 052 P Isla de la Piedra, Maz 17.2 10.6 8.5 2.7 0.4725 068 P Pto. Mazatlán, Sin 11.9 8.7 6.1 2.3 0.1826 071 P Isla Pájaros, Maz, Sin 4.7 3.4 2.9 1 0.04
127 071 P Isla Pájaros, Maz, Sin 5.2 3.6 3.1 1.1 0.03
928 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 5.4 5 4.2 1.2 0.02
129 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 6 5.2 4.1 1.7 0.03
330 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 6.5 5.9 4.6 2.7 0.04
231 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 6.7 5.1 4.8 2.9 0.04
132 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 8 7.4 5.9 3.6 0.0533 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 8.1 6.7 5.6 2.8 0.04
934 053 P Isla Pájaros, Maz, Sin 11.5 7.5 5.8 1.9 0.06
135 066 P Isla, Espiritu Sto. BC 6.3 5.4 4.7 1.4 0.3736 066 P Isla, Espiritu Sto. BC 6.9 5.7 5 2.3 0.437 066 P Isla, Espiritu Sto. BC 7.9 5.9 5.3 2.3 0.4938 066 P Isla, Espiritu Sto. BC 8.4 6.6 5.7 3.4 0.5139 066 P Isla, Espiritu Sto. BC 9.7 7.5 5.8 4.4 0.6340 072 P I. Sacrificios, Ver 10.1 8.4 6.4 1.7 0.141 072 P I. Sacrificios, Ver 13.7 9.1 8.4 2.4 0.33
Ischnochiton aethalotus
Ind.# No. Cat.
Loc. Zona L A V AC WG
1 056 P Baja California 6.2 4.3 3.9 / Org. secos2 056 P Baja California 6.9 4.5 4.1 / Org. Secos3 056 P Baja California 7.1 5.3 4.9 / Org. secos4 056 P Baja California 7.3 5.5 5 / Org. Secos5 056 P Baja California 8.4 5.6 5.5 / Org. Secos6 056 P Baja California 8.8 6.1 6 / Org. secos7 056 P Baja California 9 5.6 5.5 / Org. secos8 056 P Baja California 9.1 5.9 5.8 / Org. secos9 056 P Baja California 9.2 5.8 5.6 / Org. Secos10 056 P Baja California 9.2 6.3 5.5 / Org. secos11 056 P Baja California 9.2 6 5.7 / Org. Secos12 056 P Baja California 10.1 7.2 6.7 / Org. Secos13 056 P Baja California 10.9 7.3 7.1 / Org. secos14 056 P Baja California 11.3 7.2 7.1 / Org. secos15 056 P Baja California 11.7 7.2 7 / Org. secos16 056 P Baja California 13.1 7.8 7.5 / Org. Secos17 056 P Baja California 13.4 9.1 8.8 / Org. secos18 056 P Baja California 13.9 9.3 9.1 / Org. Secos19 056 P Baja California 15 9 8.9 / Org. Secos20 056 P Baja California 15.2 9.5 9.3 / Org. secos21 056 P Baja California 15.2 9.8 9.6 / Org. secos22 056 P Baja California 15.5 9.9 9.8 / Org. secos23 056 P Baja California 15.5 9.8 9.6 / Org. Secos24 056 P Baja California 15.8 9.4 9.2 / Org. secos25 056 P Baja California 15.8 10.1 9.9 / Org. Secos26 056 P Baja California 15.8 9.5 9.4 / Org. Secos27 056 P Baja California 16.4 10 9.7 / Org. secos28 056 P Baja California 16.4 10.1 9.8 / Org. secos29 056 P Baja California 16.4 10 9.9 / Org. secos30 056 P Baja California 16.6 10.2 9.9 / Org. Secos31 056 P Baja California 16.6 9.8 9.7 / Org. secos32 056 P Baja California 16.7 10.1 9.9 / Org. Secos33 056 P Baja California 16.8 9.8 9.7 / Org. Secos34 056 P Baja California 16.9 9.9 9.8 / Org. secos35 056 P Baja California 17 10 9.8 / Org. secos36 056 P Baja California 17 10.2 9.8 / Org. secos37 056 P Baja California 17.2 9.9 9.7 / Org. Secos38 056 P Baja California 17.4 10.3 10 / Org. secos39 056 P Baja California 17.6 10.5 10.2 / Org. Secos40 056 P Baja California 17.9 10.4 10.2 / Org. Secos41 056 P Baja California 18.1 10.5 10.4 / Org. secos42 056 P Baja California 18.7 10.6 10.4 / Org. secos43 056 P Baja California 18.9 10.5 10.4 / Org. secos44 056 P Baja California 19.2 11.3 10.8 / Org. Secos45 056 P Baja California 20.1 11.4 11.3 / Org. secos46 056 P Baja California 20.7 11.6 11.3 / Org. Secos47 056 P Baja California 21.7 12.5 12.2 / Org. Secos48 056 P Baja California 22.4 13.1 12.9 / Org. secos
166
49 056 P Baja California 22.7 13.4 13.3 / Org. secos
Stenoplax (Stenoradsia) sonorana
Ind.# No. Cat.
Loc. Zona L A V AC WG Observ.
1 003 P Guaymas, Sonora 53.7 22.6 17.6 8.9 7.032 003 P Guaymas, Sonora 68.3 28.7 21.9 9.3 12.1
33 002 P Guaymas, Sonora 20.7 7.8 5.2 3.1 / Organismo
incompleto4 001 P Guaymas, Sonora 61.3 26.3 21.4 9.2 11.0
5
Stenoplax limaciformis
Ind.# No. Cat.
Loc. Zona L A V AC WG Observ.
1 019 P Playa, Las Gatas, Zih, Guerrero
19.7 8.3 6.6 3.4 0.35
2 019 P Playa, Las Gatas, Zih, Guerrero
24.6 8.9 7.1 3.7 1.05
Stenoplax sp. A
Ind.# No. Cat.
Loc. Zona L A V AC WG Observ.
1 031 P Mazatlán, Sin. 29.8 10.7 8.8 4 1.322 " P " 41 16.1 11.2 5.6 2.13 "3 068 P Rocas, Mazatlán,
Sinaloa28.5 10.7 9 4.2 1.05
Callistoplax retusa
Ind.# No. Cat.
Loc. Zona L A V AC WG Observ.
1 019 P Playa Las Gatas, Zih, Gro.
18.1 7.9 6.5 2.2 0.55
2 046 P Isla Ixtapa, Playa Corralito, Zih, Gro.
9.2 5.6 4.2 1.6 0.08
3 046 P Isla Ixtapa, Playa Corralito, Zih, Gro.
13.1 7.3 6 2 0.23
4 046 P Isla Ixtapa, Playa Corralito, Zih, Gro.
13.4 7.3 6.1 1.8 0.36
5 046 P Isla Ixtapa, Playa Corralito, Zih, Gro.
15.6 7.7 6.7 1.9 0.44
167
Chiton (Chiton) virgulatus
Ind# No. Cat.
Loc Zona L A V AC WG Observ.
1 004 P Guaymas, Sonora 22.8 15 11.1 4 1.122 004 P Guaymas, Sonora 26.4 14.6 11.9 4.9 1.083 004 P Guaymas, Sonora 26.4 19.2 10.7 3.4 1.044 004 P Guaymas, Sonora 26.5 15.2 13 4.7 1.55 004 P Guaymas, Sonora 47.9 24.5 20.7 7.7 6.76 004 P Guaymas, Sonora 67.5 37 27.3 8 16.0
77 062 / / 21.2 14.5 10.6 3.7 0.778 064 P Isla Espíritu Santo,
B.C19.8 13 9.6 4 0.6
9 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
21.7 13.5 11 4.1 0.85
10 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
21.8 15.7 11.3 4.2 0.9
11 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
21.8 13.3 10.9 4.4 0.8
12 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
22.2 16.7 12.3 4.8 1.06
13 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
22.3 15.7 11.8 4.6 1.13
14 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
22.8 16.3 12.3 5 1.02
15 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
23.1 17 12.8 5.5 1.46
16 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
23.2 15.4 12.6 5.3 1.35
17 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
23.4 16 12.3 5 1.28
18 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
25.1 16 11.9 4.8 0.94
19 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
25.3 14.4 12.1 5.2 1.23
20 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
25.5 16.2 12.4 5.4 1.2
21 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
28.1 19.3 13.4 4.7 1.56
22 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
28.6 17.3 13.5 4.9 1.45
23 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
29.2 17.8 13.5 4.6 1.76
24 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
29.3 18.3 13.1 4.8 1.34
25 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
29.5 18.2 14.1 5.5 1.59
26 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
30.1 18.2 14.1 5.5 1.78
27 064 P Isla Espíritu Santo, B.C
34.6 22.3 16.6 6.4 3.02
28 065 P B.Eclipse e I. Piedra B.C
30.3 16.9 11.4 3.4 /
29 065 P B.Eclipse e I. Piedra 56.9 30.3 22.1 6 / organismos en seco
168
B.C30 070 P Bahía Falsa, La Paz,
B.C15.7 12.4 9.3 3.3 0.67 organismos en seco
31 032 P Bahía Falsa, La Paz, B.C
42.1 24.5 20.8 7.6 6.68 organismos en seco
32 032 P Bahía Falsa, La Paz, B.C
34.2 19.2 17.2 6.4 3.12 organismos en seco
Chiton (Diochiton) albolineatus
ind # No. Cat.
Loc. Zona L A V AC Wg
1 009 P Mazatlán, Sinaloa 10.6 7.8 6.4 1.9 0.12 009 P Mazatlán, Sinaloa 13.5 9.3 7.5 2.3 0.153 008 P Entre I. Chivos & I. Piedra. Maz,
Sin.15.2 8.1 6.7 2.3 0.1
4 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.
20 10.2 8.9 2.6 0.71
5 009 P Mazatlán, Sinaloa 21.1 16.2 12.8 3.8 0.796 008 P Entre I. Chivos & I. Piedra. Maz,
Sin.21.3 12.5 9.4 2.5 0.58
7 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.
21.4 14.7 11.3 3.5 0.48
8 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.
21.7 13.7 10.7 3.3 0.67
9 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.
22.3 11.9 10.7 3.2 0.78
10 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.
22.8 11.9 9.2 3.7 1.32
11 008 P Entre I. Chivos & I. Piedra. Maz, Sin.
22.9 12.3 10.1 2.5 0.81
12 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.
23.7 14.4 12.5 4.1 1.72
13 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.
25.6 18.2 13.4 4.5 1
14 054 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.
27.4 17.4 13 4.4 1.7
15 007 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.
27.6 16.1 12.5 2.5 1.24
16 008 P Entre I. Chivos & I. Piedra. Maz, Sin.
28.1 16.7 12.6 3.7 1.92
17 054 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.
28.2 15.4 12.8 3.5 1.57
19 054 P Isla de los Chivos, Mazatlán, Sin.
29.6 17.6 13.4 4.1 2.02
20 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
6.1 4.6 3.5 1.5 0.03
21 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
7.8 5.7 4.5 1.9 0.43
22 044 P Playa camino al almacén, Zih, Gro.
8.3 5 3.7 1 0.03
23 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
9.3 8 6.3 1.5 0.15
24 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
9.4 7.1 5.7 1.6 0.14
25 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
10.9 5.6 4.6 1.6 0.11
169
26 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
11.9 6.5 5.2 1.7 0.12
27 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
12.3 6.4 5.5 1.7 0.13
28 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
12.7 9.8 7.2 2.3 0.22
29 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
13.2 6.4 5.2 1.9 0.13
30 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
13.5 6.7 5.5 1.6 0.14
31 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
14.3 7.8 5.8 1.8 0.16
32 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
14.6 10.6 8.1 2.8 0.35
33 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
15.7 11.1 8.3 2.5 0.34
34 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
16.6 11.2 8.8 3 0.48
35 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
17.3 11.9 9.2 3.2 0.45
36 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
17.3 11.7 9.4 2.9 0.54
37 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
17.6 11.8 9.4 3.3 0.52
38 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
18 10.9 8.7 3 0.53
39 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
18.2 12.9 9.5 3.2 0.64
40 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
18.4 11.2 9.3 2.8 0.43
41 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
18.5 11.7 9.5 3.2 0.59
42 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
18.8 12.4 9.3 3.4 0.59
43 010 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
19 12.4 10.8 3.5 0.63
44 044 P Playa camino al almacén, Zih, Gro.
19.3 11.6 3.7 2.6 0.35
45 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
19.5 11.4 9.6 3.3 0.61
46 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
19.5 12.6 10 3.5 0.67
47 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
19.6 12.2 10.1 3.5 0.68
48 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
19.8 11.8 9.8 3.6 0.65
49 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
20.1 12.8 10.7 3.7 0.89
50 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
20.3 14 10.4 3.4 0.72
51 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
20.5 14 11.4 3.7 0.91
52 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
20.6 12.7 10.8 3.4 0.64
53 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
21.5 13.2 11.2 3.5 0.88
54 026 P Embarcadero de Zihuatanejo, Gro.
22.8 13.7 11.5 3.7 0.97
55 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, 10.2 7.1 5.5 1.3 0.09
Gro.56 040 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo,
Gro.15.8 11.1 8.5 2.9 0.38
57 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.
17.6 12.8 10.2 2.9 0.62
58 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.
19.2 12.1 10.3 3.1 0.66
59 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.
23.4 13.1 9.9 2.3 0.47
60 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.
25.3 15.7 13.2 4.5 1.7
61 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.
27.2 16.8 13.1 4.7 1.6
62 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.
28.9 14.3 11.9 3.3 1.17
63 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.
29.6 16.8 12.9 3.1 1.7
64 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.
30.1 15.7 13.4 3.4 1.9
65 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.
32.1 16.4 13.3 3.2 1.5
66 020 P Playa Las Gatas, Zihuatanejo, Gro.
33.2 21.7 16.3 5.2 3.27
67 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
14.3 9.4 7.2 1.9 0.17
68 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
17.5 11.2 8.3 2.7 0.38
69 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
21.3 14.5 10.6 3.3 0.76
70 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
21.8 13.1 9.8 3.4 0.71
71 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
22.4 13.7 10.1 2.9 0.9
72 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
23.2 13.8 10.5 2.8 0.85
73 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
23.7 13.4 11.2 2.8 0.86
74 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
23.9 14.7 10.4 3.2 0.86
75 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
24.3 13.6 10.7 3.2 0.78
76 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
24.6 13.8 10.5 2.6 0.78
77 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
25.1 14.3 11.1 2.9 0.9
78 041 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
25.6 15.4 12.4 3.8 1.11
79 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
25.7 14.6 11.2 3.9 0.94
80 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
25.7 14.9 11.3 3 0.79
81 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
25.7 14.5 10.7 3.1 0.83
82 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
25.8 14.5 10.3 3 0.9
83 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
26.3 14.7 11.1 3.1 0.99
84 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
26.8 16.7 12 3.3 1.01
170
85 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
27.4 14.6 11.4 3.2 1.05
86 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
27.6 16.1 12.1 3.4 1.06
87 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
28.5 16.3 12.5 3.6 1.15
88 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
28.6 18.1 12.6 3.6 1.23
89 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
28.6 16.1 12.5 3.6 1.19
90 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
28.9 17.3 12.8 3.4 1.25
91 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
30.3 16.5 12.9 3.3 1.5
92 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
30.4 19.3 13.7 3.6 1.64
93 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
31.2 17.6 13.2 3.5 1.44
94 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
32.3 17.2 13.4 3.5 1.32
95 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
33.1 21.4 15.4 3.7 2.1
96 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
33.2 18.3 13.7 3.8 1.89
97 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
33.2 17.7 14.3 3.5 2
98 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
34.6 19.4 14.5 3.5 1.97
99 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
34.7 19.2 14.3 3.7 1.96
100 021 P Playa Camino Contramar,Zih, Gro
35.1 18.6 14.1 3.2 1.97
101 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 14.2 8.9 7.3 2.2 0.24102 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 17.5 11.5 9.1 2.5 0.44103 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 18.2 10.4 8.4 2.6 0.43104 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 20.3 13.2 10.1 2.8 0.62105 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 22.3 15.6 12.5 4.1 1.41106 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 23.2 11.9 10.3 3.2 0.89107 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 26.5 14.7 12.4 3.6 1.35108 039 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 28.1 16 13.7 3.7 1.65109 013 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 28.5 16.7 14.8 4.6 1.84110 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 10.6 9.2 6.7 1.5 0.16
111 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 13.3 9.9 7.5 2.4 0.2112 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 18.5 11.1 9 2.6 0.35113 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 21.8 13.2 11.5 3.4 0.93114 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 23.1 14.7 12.4 3.9 1.27115 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 23.4 14.2 11.9 4.1 1.1116 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 25.3 14.5 12.2 3.8 1.16117 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 26.1 15.7 14.2 3.7 1.46118 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 26.8 17.4 14.5 4.6 1.91119 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 27.4 18.3 14.5 4.8 2.2120 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 28.2 16.4 14.7 5 2.07121 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 30.7 17.9 15.8 5 2.34122 030 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo, Gro 32.3 19.2 15.5 5.1 2.53
171
Chiton (Diochiton) articulatus
Ind #
No. Cat.
Loc. Zona L A V AC Wg observ.
1 057 P La Paz, BC. 43.4 30.5 27.8 6.4 7.522 057 P La Paz, BC. 44.3 32.8 30.1 6.2 10.623 057 P La Paz, BC. 49.6 32.8 30.9 6.9 11.484 057 P La Paz, BC. 49.6 37.9 34.7 7.8 16.695 057 P La Paz, BC. 54.3 44.7 32.8 8.1 15.656 057 P La Paz, BC. 59.2 38.5 37.1 8.3 22.97 057 P La Paz, BC. 60.7 40.2 38.3 8.7 26.678 057 P La Paz, BC. 62.8 37.6 37.6 8.9 29.619 057 P La Paz, BC. 70.4 45.3 45.3 9.7 42.5110 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 23.5 16.6 14.5 4.3 1.4411 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 27.7 19.3 15.3 4.1 1.5312 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 28.2 17.8 14.8 3.8 1.6213 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 28.5 18.6 15.9 5.1 2.4314 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 28.7 19.2 15.7 3.9 1.5215 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 30.7 22.2 18.7 5.7 3.5216 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 30.8 19.3 17.4 5.7 2.8117 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 31.2 19.8 16.4 4 2.118 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 33.2 22.1 18.7 5.3 3.7719 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 34.6 23.8 19.5 5.8 4.8920 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 35.1 22.6 20.1 5.5 4.4721 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 35.2 22.3 17.9 5.8 2.922 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 36.3 26.1 23.5 6.7 7.7723 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 36.2 23.2 20 4.9 4.1924 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 36.4 23.3 18.5 5.3 3.3425 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 37 24.5 21 6.2 4.6726 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 38.3 26.1 23.2 6.6 6.1227 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 38.3 25.1 21.4 5.9 5.128 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 38.7 26.4 23.5 6.6 7.3329 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 38.7 25.7 23.4 6.5 630 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 38.7 24.4 22.7 6.7 5.2131 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 39.1 27.1 23.7 7.1 6.8632 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 39.4 29.1 26.1 7.8 8.3433 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 39.5 26.3 23.4 6.7 6.6134 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 39.9 25.6 22.8 6.8 5.9835 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 40 26.4 22.8 7.2 6.7936 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 40.5 26.1 23 6.9 7.0837 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 40.8 30.2 25.2 7.3 8.8938 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 41.4 22.5 20.1 5.3 4.8239 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 42.2 26.3 24.6 7.1 8.9240 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 42.3 30.3 26.5 8.1 10.6341 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 42.3 26.8 22.1 6 5.1342 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 42.5 29.4 26.4 7.8 11.1243 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 42.9 28.4 24.4 7.1 9.3544 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 43.4 28.4 24.9 6.9 8.0945 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 43.5 30.8 26.8 7.7 11.8946 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 43.7 28.3 25.4 7.4 8.9547 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 44.1 28.3 24.8 7.1 8.12
172
48 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 44.1 28.4 24.4 7.1 9.3549 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 44.2 29.2 26.2 7.3 9.4950 051 P Los Sábalos, Maz,Sin. 44.2 31.2 26.3 7.3 12.5151 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 45.2 31.1 26.2 7.6 9.152 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 45.2 32.1 28.5 7.9 12.6653 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 45.8 31.4 28.2 7.8 11.8854 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 46.4 29.3 25.8 7.4 9.8955 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 48.7 30.1 28.3 7.9 8.4456 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 54.6 36.4 34.9 7.9 20.1357 011 P Cerro del Crestón, Maz, Sin 54.8 33.7 28.7 8.9 17.3358 050 P Playa Sur, Maz, Sin. 56.3 33.7 30.5 8.5 17.8259 014 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 32.6 20.8 18.7 4.6 3.560 015 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 42.3 27.6 25.4 7 8.4661 015 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 43.9 28.9 26.4 6.4 8.8562 034 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 48.5 30.2 27 6.7 9.7463 014 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 52.2 34.8 30.7 7.3 15.9264 034 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 58.2 37.1 31.9 6.8 14.2665 038 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 59.1 41.7 36.2 7.9 / organismo
seco66 016 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 59.4 37.1 32.9 7.9 18.6967 017 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 60.5 37.8 32.9 7.7 18.3968 012 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 65.1 40 33.7 7.8 23.4569 017 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 66.8 39.7 37.3 7.8 32.6370 012 P Isla Ixtapa, Zihuatanejo 73.7 39.6 35.9 8.2 25.3271 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 30.5 19.6 17.1 4.2 2.4872 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 33.6 21.3 18.7 4.3 3.4473 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 45.7 28.8 26.2 6.8 9.7174 027 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 46.7 31.2 28.2 6.2 9.8575 027 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 46.9 29.2 26.4 6.9 10.8876 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 47.5 28.7 25.7 6.2 7.9577 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 49.5 28.9 26.5 6.7 10.7678 027 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 52.1 32.3 30.3 7.1 12.4379 027 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 54.4 33.1 29.9 7.3 14.4280 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 65.5 36.5 33.8 7.3 26.881 033 P Pto., Zihuatanejo, Gro. 66.5 36.7 34.5 7.5 25.4482 029 P P. Camino Contramar, Zih,
Gro22.3 14.7 12.3 3.7 1.1
83 029 P P. Camino Contramar, Zih, Gro
24.5 15.7 14.1 4.5 1.31
84 037 P P. Camino Contramar, Zih, Gro
58.1 37.3 33.2 8.2 16.87
85 049 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 15.3 10.5 8.7 1.8 0.1986 049 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 15.4 10.7 8.9 2.1 0.2787 049 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 17.4 11.7 9.3 2.7 0.4588 049 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 17.7 11.4 9.6 2.4 0.4189 049 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 17.9 11.7 10.9 2.7 0.5490 044 P P. Las Gatas, Zih, Gro. 35.7 22.2 18.6 6.2 3.8691 028 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 42.3 31.8 28.4 6.8 11.992 028 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 46.4 26.8 26.5 6.4 10.2493 028 P Playa, Las Ropas, Zih, Gro. 70.1 49.3 45.3 9.7 42.5194 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 31.4 23.1 18.8 3.9 / organismos
secos
173
95 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 39.1 25.9 23.2 4.7 /96 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 42.3 30.8 25.5 3.7 / "97 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 42.8 31.7 28.4 5.5 / "98 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 43 28.2 27.9 5.4 / "99 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 45.7 32.9 26.4 5.7 / "100 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 46.1 31.4 27.2 5.7 / "101 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 49.2 34.2 29.3 6.1 / "102 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 50.8 34.7 30.9 7 / "103 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 50.9 32.5 28.7 5.6 / "104 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 51.9 36.1 31.2 6.3 / "105 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 52 33.5 31.1 6.8 / "106 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 54.2 37.3 32.8 6.4 / "107 059 P Pto. Vallarta, Jalisco 60.2 39.6 34.5 6.7 / "108 024 P Pto. Acapulco, Gro. 60.4 35.5 31.3 7.3 17.28109 022 P Pto. Angel, Oaxaca 26.1 16.4 14.2 4.2 1.33110 022 P Pto. Angel, Oaxaca 30.4 19.4 15.6 4.3 1.81111 022 P Pto. Angel, Oaxaca 30.8 21.1 17.3 5 2.65112 022 P Pto. Angel, Oaxaca 31.5 20.1 16.4 4.3 2.13113 022 P Pto. Angel, Oaxaca 34.5 19.3 16.2 4.1 2.28114 022 P Pto. Angel, Oaxaca 36.4 22.1 18.7 5.2 3.58115 022 P Pto. Angel, Oaxaca 38.5 22.6 20.2 5.4 3.58116 022 P Pto. Angel, Oaxaca 48.6 29.4 24.1 6.4 7.66117 022 P Pto. Angel, Oaxaca 47.9 32.1 28.1 6.3 10.75118 022 P Pto. Angel, Oaxaca 49.2 30.4 27.9 7.3 12.56119 022 P Pto. Angel, Oaxaca 49.7 31.3 26.9 7.1 11.3120 022 P Pto. Angel, Oaxaca 52.3 32.3 28.6 7.7 12.57121 022 P Pto. Angel, Oaxaca 54.5 31.4 27.8 7.8 10.32122 022 P Pto. Angel, Oaxaca 58.5 35.3 30.9 7.6 17.67123 022 P Pto. Angel, Oaxaca 62.3 39.6 34.2 8 24.13124 022 P Pto. Angel, Oaxaca 63.1 40.2 35.1 7.8 24.55125 022 P Pto. Angel, Oaxaca 66.9 42.4 39.1 8.7 30.47126 022 P Pto. Angel, Oaxaca 0 0 0 organismo muy
pequeño127 058 P Salina Cruz, Oaxaca 41.7 25.3 22.1 4.6 5.24128 058 P Salina Cruz, Oaxaca 42.4 25.7 21.3 5.2 5.3129 058 P Salina Cruz, Oaxaca 42.8 26.6 21.2 4.9 5.08130 058 P Salina Cruz, Oaxaca 43.5 26.7 23.4 5.1 5.98131 058 P Salina Cruz, Oaxaca 46.4 28.3 23.7 5.5 5.74132 058 P Salina Cruz, Oaxaca 47.6 29.7 23.7 5.5 7.3
Chiton (Diochiton) goodallii
Ind.
#
No. Cat.
Loc. Zona L A V AC WG Oserv.
1 067 IG Sn. Cristóbal Chatam, Islas Galápagos, Ecuador.
97.4 59.6 56.4 10.2 / Org. seco
2 067 IG " 131.7 57.2 53.5 12.4 " "3 067 IG " 122.5 54.1 51.7 11.3 " "
174
Acanthopleura granulata
Ind. #
No. cat
Loc. Zona L A V AC WG Observ.
1 060 C Isla Mujeres, Qroo. 41.4 28.4 20.8 10.9 10.92 060 C Isla Mujeres, Qroo. 43.5 30.5 23.5 12.8 12.83 060 C Isla Mujeres, Qroo. 44.2 30.6 23.2 13.4 13.44 060 C Isla Mujeres, Qroo. 46.4 30.8 23.7 13.3 13.35 060 C Isla Mujeres, Qroo. 50.2 31.1 24 13.5 13.56 060 C Isla Mujeres, Qroo. 51 34.3 27.1 13.6 13.67 060 C Isla Mujeres, Qroo. 51.7 34.1 26.8 13.5 13.58 060 C Isla Mujeres, Qroo. 55.9 35 27.4 13.8 13.89 060 C Isla Mujeres, Qroo. 57 35.3 26.7 13.4 13.410 060 C Isla Mujeres, Qroo. 59.1 38.2 28.5 14.1 14.111 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 31.5 21.3 16.2 7.6 4.8212 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 33.8 23.1 18.3 9.2 5.9613 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 34 24.2 19.1 9.4 6.4214 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 36.2 24 18.2 8.9 5.7415 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 39.2 25.2 19.9 9.8 7.1816 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 39.8 24.6 19.8 9.6 7.1617 061 C Isla Cozumel, Playa Sn Juan 39.9 26.8 19.8 10.1 8.6218 074 C Chankanab, Límite Nte,
Qroo42.4 32.6 24.3 11.2 12.99
19 074 C Chankanab, Límite Nte, Qroo
48.2 34.2 24.9 11.7 16.98
20 074 C Chankanab, Límite Nte, Qroo
49.3 35 25.1 13.2 17.29
21 074 C Chankanab, Límite Nte, Qroo
50.2 36.4 26.9 13.5 18.69
22 074 C Chankanab, Límite Nte, Qroo
51.8 37.9 28.1 14.6 22.92
Acanthochitona sp. A
Ind. #
No. cat
Loc. Zona L A V AC WG Observ.
1 062 P Isla Espíritu Santo, B.C 13.2 10.2 2.8 6.1 0.322 062 P Isla Espíritu Santo, B.C 18.4 13.4 4.4 8.5 0.943 062 P Isla Espíritu Santo, B.C 18.7 14.5 3.7 7.8 0.854 062 P Isla Espíritu Santo, B.C 20.5 14.6 4.5 9.1 1.625 062 P Isla Espíritu Santo, B.C 21.3 17.1 4.6 9.4 1.376 062 P Isla Espíritu Santo, B.C 23.2 18.1 4.7 9.3 1.26
175
7 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 13.2 9.7 3.2 5.5 0.428 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 15.1 11.5 3.8 6.9 0.579 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 15.4 12.3 4.1 7.7 0.87
10 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 15.8 12 3.6 7 0.7911 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 16 12.3 4.2 7.5 1.0212 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 16.1 11.8 4 6.8 0.63213 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 16.3 13.4 4.6 7.8 1.0214 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 16.6 11.7 4.2 7.4 0.8715 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 16.7 13.1 4.2 7.8 1.0916 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 17.9 13 4.4 7.8 0.8317 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 18.2 13.5 4.1 7.3 0.9818 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 18.7 17.5 5.5 10.1 1.9119 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 20.1 16.1 4.3 8.9 1.7820 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 21.6 16.2 5.7 11 2.121 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 22.1 14.2 5.4 8.7 1.7322 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 22.6 16.1 5.4 11.2 2.123 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 22.8 16.4 5.5 11 2.1424 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 22.9 16.3 5.6 10.6 2.1625 063 P Isla Espíritu Santo, B.C 27.2 17.8 5.3 10.3 2.0326 069 P Bahía Falsa, B.C 15.7 12.8 3.6 7.5 0.8927 069 P Bahía Falsa, B.C 17.1 13 4.7 7.8 0.9728 069 P Bahía Falsa, B.C 19.1 15.2 5 8.8 1.3229 069 P Bahía Falsa, B.C 19.4 14.8 5.1 10.2 1.4530 069 P Bahía Falsa, B.C 19.5 15.3 5.4 10.4 1.4831 069 P Bahía Falsa, B.C 23.3 16.3 6.3 10.8 1.99
176
DATOS MORFOMÉTRICOS
Especie Long x (mm) Ancho x (mm) Cinturón x (mm)
Chaetopleura scabricula 18.1 12.4 4.1
Ischnochiton muscarius 23.5 12.1 3.1
Ischnochiton aethalotus 14.6 8.9 2.6
Stenoplax (Stenoradsia) sonorana 50.2 20.8 8.4
Stenoplax limaciformis 20.6 8.7 3.2
Stenoplax sp. A 33.1 12.2 4.1
Callistoplax retusa 11.8 7.1 1.7
Chiton (Chiton) virgulatus 28.9 17.9 4.7
Chiton (Diochiton) albolineatus 22.3 13.7 3.2
Chiton (Diochiton) articulatus 37.4 26.4 6.9
Chiton (Diochiton) goodallii 117.2 56.9 11.5
Acanthopleura granulata 45.3 30.6 13.4
Acanthochitona sp. A 18.6 14.4 6.7
Cuadro 4. Relación que muestra el valor promedio (media x) en mm de los datos
morfométricos registrados en los quitones de la CNMO.
177
II. Lista de especies reportadas para el Golfo de California, Pacífico y Caribe Mexicano
Abbott, 1974. Smith, 1977. Ferreira, 1979-1983
Orden Lepidopleurida Orden Lepidopleurida Orden LepidopleuridaFamilia Acanthochitonidae Familia Acanthochitonidae
Del Sur de Florida al Oeste de las Indias Golfo de CaliforniaGénero Acanthochitona Gray,1821 Género Acanthochitona Gray,1821
Acanthochitona spiculosa ReeveAcanthochitona pygmaea Pilsbry
Acanthochitona angelica Dall, 1919
Subfamilia AcanthopleurinaeGénero Acanthopleura Guilding, 1829
Subgénero Maugeria Gray, 1857Acanthopleura granulata Gmelin
Familia CallistoplacidaeEnsenada, Baja California
Género Callistochiton Dall, 1879Callistochiton connellyi Willett, 1937
Familia Chitonidae Familia Chitonidae Familia ChitonidaeDel Golfo de California a Panamá Del Golfo de California a Panamá Islas Revillagigedo
Subfamilia ChitoninaeGénero Chiton Linné, 1758 Género Chiton Linné, 1758 Género Chiton Linaeus, 1758
Chiton articulatus Sowerby Chiton articulatus Sowerby, 1832Chiton virgulatus Sowerby
Chiton petaloides Gould, 1846
De Florida al oeste de la IndiasChiton tuberculatus LinnéChiton squamosus LinnéChiton marmoratus LinnéGénero Tonicia Gray,1847
Tonicia schrammi ShuttleworthOrden Ischnochitonina
Bergenhayn, 1930Familia Ischnochitonidae Fam. Chaetopleuridae Plate, 1899De la baja Forida a Brazil Baja California Sur a America del Sur
Género Calloplax Thiele, 1909 Género Calloplax Thiele, 1909Calloplax janeirensis Gray
Calloplax hanselmani Ferreira, 1982Familia Criptoplacidae
Florida a Pto.RicoGénero Criptoconchus Burrow,1815
Criptoconchus floridanus DallGénero Cryptochiton Middendorff,1847 Orden Ischnochitonina
Cryptochiton stelleri Middendorff Bergenhayn, 1930Familia Ischnochitonidae Familia Chaetopleurinae Fam. Chaetopleuridae Plate, 1899
Las dos costas de Florida y el Golfo Mazatlán, Sin. Baja California Sur a America del SurGénero Chaetopleura Shuttleworth,1853 Género Chaetopleura Shuttleworth,1853 Género Chaetopleura Shuttleworth,1853
Chaetopleura apiculata SayChaetopleura scabricula Sowerby, 1832
Chaetopleura lanuginosa Dall, 1879Chaetopleura unilineata Leloup, 1954Chaetopleura shyana Ferreira, 1983
Chaetopleura gemma Dall, 1879
178
Abbott, 1974 Smith, 1977 Ferreira, 1979-1983
Lepidopleurus bullatus Carpenter, 1857Género Tonicia Gray, 1847
Tonicia mixta Dall, 1919
Familia Ischnochitonidae Familia Ischnochitonidae Dall, 1889 Familia Ischnochitonidae Dall, 1889De la alta California al Golfo de Cal. Golfo de California Islas Revillagigedo
Género Ischnochiton Gray,1847 Género Ischnochiton Gray,1847 Género Ischnochiton Gray,1847Ischnochiton californiensis Berry Ischnochiton californiensis Berry, 1931Ischnochiton magdalensis HindsIschnochiton conspicuus PilsbryIschnochiton acrior Pilsbry
Ischnochiton regularis CarpenterIschnochiton mertensi Middendorff
Ischnochiton cooperi BerryIschnochiton palmulatus Pilsbry
Ischnochiton eucosmius Dall, 1919Ischnochiton mariposa Dall, 1919Ischnochiton acelidotus Dall, 1919Ischnochiton aethalotus Dall, 1919Ischnochiton aethorus Dall, 1919
I. aureotinetus Carpenter y Pilsbry, 1892Ischnochiton berryi Dall, 1919
Ischnochiton sinudentatus Pilsbry, 1892Ischnochiton corrugatus Pilsbry, 1892Ischnochiton subclathratus Pilsbry, 1892
Ischnochiton muscarius Reeve, 1847Ischnochiton carolianus Ferreira, 1984
Género Stenoplax Dall, 1879 Género Stenoplax Dall, 1879Stenoplax corrugata Carpententer y Pilsbry,
1892Stenoplax floridana Pilsbry, 1892
Stenoplax erythronota Adams, 1845Stenoplax limaciformis Sowerby, 1832
Stenoplax fallax Pilsbry, 1892Stenoplax corrugata Pilsbry, 1892Stenoplax heathiana Berry, 1946Stenoplax conspicua Dall, 1879
Stenoplax magdalensis Hinds, 1844Género Lepidozona Pilsbry, 1892
Lepidozona clarionensis Ferreira, 1983Lepidozona rothi Ferreira, 1983
Familia Lepidochitonidae Iredale, 1914San Diego a Baja California
Género Tonicella Carpenter, 1873Tonicella lineata Wood
Género Lepidochitona Gray, 1821Subgénero Cianoplax Pilsbry, 1892Lepidochitona hartwegi Carpenter
Islas RevillagigedoGénero Lepidochitona Gray, 1821
179
Abbott, 1974 Smith, 1977 Ferreira, 1979-1983
Lepidochitona keepiana Berry, 1948Lepidochitona beanii Carpenter, 1857Lepidochitona hartwegi Carpenter, 1855
Lepidochitona hartwegi Berry, 1948Lepidochitona flectens Carpenter, 1864
Lepidochitona dentiens Gould, 1846Género Dendrochiton Berry, 1911
Dendrochiton thamnoporus Berry, 1911Dendrochiton gothicus Carpenter, 1864Dendrochiton lirulatus Berry, 1863
Familia Lepidochitonidae Familia ChaetopleurinaeGénero Nutallina Carpenter,1879 Género Nutallina Dall, 1871 Género Nuttallina Dall, 1871
Nutallina californica Reeve Nuttallina californica Reeve, 1847Nutallina scabra Reeve
Nutallina allantophora Dall, 1919Nutallina magdalena Dall, 1919
Lophyrus striatosquamosus Carpenter, 1857
Nuttallina crossota Berry, 1956
Familia LepidopleuridaeGénero Lepidopleurus Risso, 1826Lepidopleurus cancellatus Sowerby
Familia Lepidopleuridae
Género Leptochiton Gray, 1847Leptochiton rugatus Pilsbry, 1892
Leptochiton nexus Carpenter, 1864Leptochiton incongeuus Dall, 1908Género Hanleyella Sirenko, 1973Hanleyella oldroydi Dall, 1919Género Oldroydia Dall, 1894Oldroydia percrassa Dall, 1894
Familia MopalidaeEste de Florida al Oeste de las Indias
Género Ceratozona Dall, 1882Ceratozona rugosa Sowerby
Género Katharina Gray,1847Katharina tunicata Wood
Género Mopalia Gray, 1847Mopalia ciliata Sowerby
Mopalia muscosa GouldMopalia lignosa Gould
Género Placiphorella Dall,1878Placyphorella velata Pilsbry
180
Thorpe en Keen, 1971 Fischer, 1995 (FAO) Presente trabajo, 1999
Orden Lepidopleurida Orden NeoloricataSuborden Acanthochitonina
Familia Acanthochitonidae Familia AcanthochitonidaeDe California a Mazatlán Isla Espíritu Santo, Baja California Sur.
Género Acanthochitona Gray, 1821 Género Acanthochitona Gray, 1821Acanthochitona arragorites Carpenter, 1857 Acanthochitona sp. AAcanthochitona auricula Carpenter, 1857
Acanthochitona exquisita Pilsbry, 1893De Acapulco a Perú
Acanthochitona rhodea Pilsbry, 1893
Familia CallistoplacinaeDe Manzanillo a Nicaragua
Género Callistochiton Dall, 1879Callistochiton colimensis
California, Mazatlán y GuaymasCallistochiton gabbi
Callistochiton infortunatusBja Cal., Golfo de Cal. Mazatlán y
ManzanilloGénero Lepidozona Pilsbry, 1892Lepidozona clathrata Reeve, 1847
Lepidozona crockeri Hertlein & Strong, 1951Lepidozona elenensis Sowerby, 1832
Lepidozona flavida Thiele, 1910Lepidozona serrata Carpenter, 1864
Lepidozona subtilis Berry, 1956
Orden ChitonidaFamilia Chitonidae Familia Chitonidae Familia Chitonidae
California a Mazatlán Del Pacífico a PanamáGénero Chiton Linnaeus, 1767 Género Chiton Linné, 1758 Género Chiton Linné, 1758
Chiton articulatus Sowerby, 1832 Chiton articulatus Sowerby, 1832 Chiton articulatus Sowerby, 1832Chiton virgulatus Sowerby, 1840 Chiton virgulatus Sowerby, 1840
Chiton albolineatus Broderip, 1829 Chiton albolineatus Broderip, 1829De México a Ecuador
Chiton stokessi Broderip, 1832 Chiton stokesii Sowerby, 1832
Orden ChitonidaFamilia Chitonidae Familia Chitonidae Familia Chitonidae
Género Chiton Linnaeus, 1767 Género Chiton Linné, 1758 Género Chiton Linné, 1758Islas Galápagos Islas Galápagos
Chiton goodallii Broderip,1832 Chiton goodallii Broderip,1832Chiton sulcatus Wood,1815
Islas GalápagosGénero Tonicia Gray, 1847Tonicia arnheimi Dall, 1903
Mazatlán a PanamaTonicia forbesii Carpenter, 1857
Thorpe en Keen, 1971 Fischer, FAO (1995) Presente trabajo, 1999
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Orden IschnochitoninaBergenhayn, 1930
Subfamilia Chaetopleurinae Subfamilia ChaetopleurinaeGénero Chaetopleura Shuttleworth, 1853 Género Chaetopleura Shuttleworth, 1853
Chaetopleura euryplax Berry, 1945Chaetopleura lurida Sowerby, 1832 Chaetopleura scabricula Sowerby, 1832
Chaetopleura mixta Dall, 1882 I.Tres Marias, Mex. hasta Centro AméricaGénero Callistoplax Sowerby, 1882 Género Callistoplax Sowerby, 1882Callistoplax retusa Sowerby,1832 Callistoplax retusa Sowerby,1832
Familia Ischnochitonidae Familia IschnochitonidaeSufamilia IschnochitoninaeGénero Stenoplax Dall,1879 Género Stenoplax Dall,1879
S. conspicua conspicua Pilsbry,1892 Stenoplax conspicua Pilsbry,1892Stenoplax limaciformis Sowerby,1832 Stenoplax limaciformis Sowerby,1832
Stenoplax magdalensis Hinds,1845Stenoplax sp. A
De Mazatlán al Sur de México De Mazatlán al Sur de MéxicoGénero Radsiella Pilsbry, 1892 Género Ischnochiton Gray, 1847Radsiella muscaria Reeve, 1847 Ischnochiton muscarius Reeve, 1847
Ischnochiton aethalotus Dall, 1919Radsiella petaloides Gould, 1846
Bahía los Angeles a PerúRadsiella rugulata
Familia ChitonidaeSubfamilia Acanthopleurinae Dall, 1889
Género Acanthopleura Guilding, 1829Acanthopleura granulata Gmelin, 1791
Familia LepidochitonidaeBaja California Sur
Género Mopaliella Thiele, 1909Mopaliella beani Carpenter, 1857
Guaymas, SonoraGénero Nuttallina Dall, 1871
Nuttallina crossota Berry, 1956
Familia LepidopleuridaeCalifornia a Guaymas
Género Leptochiton Gray,1847Leptochiton rugatus
Familia MopaliidaeGolfo de California
Género Dendrochiton Berry , 1911Dendrochiton laurae Berry, 1963Dendrochiton lirulatus Berry, 1963Género Placiphorella Dall, 1879Placiphorella velata Dall, 1879
III. RECOLECTA Y PRESERVADO DE LOS QUITONES182
A continuación se presentan algunas recomendaciones metodológicas en cuanto al trabajo
de campo y de laboratorio, para la adecuada preservación de las estructuras de los quitones
con importancia taxonómica.
Los quitones, como ya se ha mencionado anteriormente, generalmente se encuentran en
áreas poco profundas en la zona intermareal de una costa rocosa, preferentemente donde las
rocas se encuentren fragmentadas, ya que en las zonas de grandes peñascos o acantilados
son poco comunes. Debido a que la mayoría de las especies son fotonegativas, es necesario
remover las rocas, buscar debajo de ellas y entre sus hendiduras, así como en las algas que
se encuentren adheridas al sustrato y en conchas de otros moluscos.
El material que se requiere para la recolecta de los quitones en el campo es mínimo, los
utensilios más importantes son cuchillos con punta delgada y poco filo, ya que se puede
maltratar el cinturón y provocar que los ejemplares se enrollen como mecanismo de
defensa. Se recomienda tener a la mano frascos y etiquetas para mantener a los quitones por
separado y con los datos de la recolecta, ya que el contacto entre ellos mismos también
provoca el enrollamiento de su cuerpo.
Se recomienda recolectar en condiciones de marea baja, ya que es posible tener acceso a
organismos que regularmente se distribuyen a profundidades mayores. Además de que es
más seguro recolectarlos cuando el oleaje es poco activo. Tenga siempre en cuenta que los
especímenes deben ser tratados con cuidado, ya que la manipulación prolongada de los
organismos puede ocasionar que se enrollen fuertemente.
Use ambas manos para desprenderlos de las rocas, con una tome el cuchillo y con la otra
tenga listo el frasco donde lo depositará. Nunca toque al quitón con sus manos o con el
cuchillo, primero busque algún ángulo del cinturón que no se encuentre adherido al
sustrato, esto es muy frecuente, ya que las rocas no presentan una superficie totalmente lisa.
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Cuando encuentre esta hendidura, introduzca suavemente la punta del cuchillo y desprenda.
En el caso de que no encuentre ninguna zona para desprender al organismo, saque la roca
en donde se encuentre el quitón, éstos al estar expuestos a mayor cantidad de luz se
deslizarán sobre la roca para esconderse, en ese momento usted puede poner la palma de su
mano para que el organismo se desplace por ella, de tal forma que usted no tendrá
necesidad de usar el cuchillo e introducir al organismo en su recipiente con su propia mano.
El fijador inicial se preparará con agua salada (marina) al 60% de alcohol (etílico). Antes de
fijarlos en la solución se recomienda introducirlos en agua marina con 30% de agua dulce
(de la llave) durante media hora y posteriormente a una disolución al 50% durante diez
minutos. Posteriormente los ejemplares se introducirán en un recipiente de boca ancha,
donde se les agregará el fijador, procurando que al introducir la solución con una mano se
haga un poco de presión sobre el organismos en vista dorsal y con la otra vertir el fijador
(alcohol al 60% en agua salada), de tal manera que los organismos no se enrollen, haga
presión durante algunos minutos para asegurar que mantengan su forma aplanada.
Mientras los ejemplares son transportados al laboratorio para la fijación permanente, se
recomienda agregar 2 partes de glicerina al fijador inicial de agua marina. Recolectas
personales han demostrado que este es el método adecuado para obtener ejemplares en
perfectas condiciones de preservado y sobre todo la forma de los quitones es aplanada,
permitiendo que las observaciones a las estructuras taxonómicas sea la adecuada.
Algunos autores, han mencionado que el uso de láminas colocados en la parte dorsal y
ventral del organismo permiten obtener ejemplares totalmente aplanados, sin embargo, este
procedimiento en el campo resulta ser poco práctico, ya que toma mucho tiempo para su
preparación. Para ello se recomienda mantener a los quitones vivos en un recipiente grande
y de boca amplia en agua de mar al 100%, para que en el laboratorio sean procesados en un
periodo no mayor de 3 horas. El procedimiento de fijación y las sustancias (fijador de agua
marina) son las mismas, pero en este caso se necesita dos láminas de acrílico liso, una
servirá de base y la otra se colocará en la parte dorsal de los organismos, ambas láminas se
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sujetarán con fuerza y se introducirán a la sustancia fijadora inicial, donde permanecerán
hasta que los quitones ya muertos, mantengan su forma aplanada.
La fijación definitiva se lleva a cabo 24 hrs. después de la recolecta, de ésta manera se
mantienen los colores originales de las valvas y de las estructuras epidérmicas. Cuando se
introduzcan los ejemplares al fijador definitivo, se recomienda mantenerlos por algunos
días en soluciones de alcohol a mayor concentración (con el fin de eliminar los residuos de
agua salada restantes) de 80% y 90% en agua destilada, este cambio de concentraciones de
alcohol debe hacerse cada 24 hrs. un día por solución. Posteriormente se les introduce en el
fijador permanente o definitivo, alcohol al 75%.
Si se desea mantener a los organismos en seco, se recomienda mantenerlos durante
periodos prolongados de tiempo (alrededor de 4 semanas) en soluciones concentradas de
alcohol (90%), así como en un lugar seco, ventilado y obscuro por 3 semanas, por ningún
motivo desprenda el pie ni la masa visceral de estos organismos, ya que su forma aplanada
se puede perder.
Las observaciones del material en espíritu o húmedo (fijados en solución de alcohol)
requieren de mantenerlos constantemente humectados por el fijador, ya que si se secan
demasiado, las partes blandas del quitón se pueden cuartear o compactar. Si se requiere
observar la morfología de las valvas, se recomienda desprender las valvas del ejemplar más
maltratado o enrollado. Para separar las valvas del cuerpo, se corta una pequeña porción del
cinturón y con pinzas de relojero se separa suavemente el tejido blando y se extraen las
valvas tomándolas de la región del ápice, nunca las tome de las apófisis, ya que las placas
de inserción se rompen muy fácilmente. No deseche el cinturón, ni el tejido blando de los
organismos desarticulados, ya que las escamas dorsales y ventrales, así como la rádula
pueden ser utilizados para observaciones futuras en microscopía electrónica, mientras tanto
manténgalos en la solución fijadora de alcohol al 75%.
El cinturón preservado en húmedo es muy frágil y se puede desprender con cualquier tipo
de contacto, para evitarlo, tome a los especimenes siempre con pinzas gruesas y de un solo
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intento extráigalos del frasco, ya que la manipulación prolongada también permite la
pérdida de los derivados epidérmicos.
Cuando en el campo encuentre valvas o ejemplares completos de quitones, llévelos al
laboratorio, este material es el indicado para complementar las observaciones de los
estudiantes de biología, ya que se evitará desarticular ejemplares que se encuentren en
buenas condiciones de preservado, los cuales deben estar a disposición para la
investigación de este grupo de moluscos.
No use por ningún motivo formaldehído en su forma diluida o neutralizada (borato de
sodio), este ha sido un fijador usado comúnmente en las colecciones malacológicas en
México, sin embargo, para este grupo de moluscos no es recomendable ya que debilita el
cuerpo blando y las partes duras del organismo, así como permite que los pigmentos
originales de las valvas y derivados epidérmicos se pierdan con facilidad. Para finalizar, los
quitones no deben ser limpiados con sustancias removedoras, sólo en el caso de que usted
conozca las sustancias para ello y siempre y cuando tenga el conocimiento del proceso
adecuado de su mantenimiento.
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